JP2008022863A

JP2008022863A - ストレスにさらされている生細胞とさらされていない生細胞とを用いた少なくとも１つの生物学的パラメーターに結果的に生じた変化の同定法

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Publication number: JP2008022863A
Application number: JP2007258522A
Authority: JP
Inventors: Eric Perrier; ペリエエリック; Francoise Pivard; ピヴァールフランソワーズ; Jean Eric Branka; ブランカジャン−エリック; Valerie Andre; アンドレヴァレリー
Original assignee: Engelhard Lyon SA
Current assignee: BASF Beauty Care Solutions France SAS
Priority date: 2002-11-19
Filing date: 2007-10-02
Publication date: 2008-02-07
Also published as: CH694097A5; FR2847269B1; NL1022659C2; GB2395489A; GB2395489B; KR100752986B1; GB0303215D0; ES2255346A1; DE10320602A1; KR20040044077A; DE10320602B4; JP2004166685A; FR2847269A1; US20040096816A1

Abstract

【課題】本発明は、少なくとも１つの生物学的パラメーターに結果的に生じた変化を同定する方法を提供することを目的とする。
【解決手段】本発明は、少なくとも１つの生物学的パラメーターに結果的に生じた変化を同定する方法であって、
ａ）若い生細胞について
ｂ）加齢した生細胞について
ｃ）三次元組織モデルで用いられる上記２種類の細胞のうち少なくとも１種について
比較プロテオーム解析、比較トランスクリプトーム解析及び／又は比較ゲノム解析を行い、細胞の加齢により更に変化が生じる少なくとも１つの生物学的パラメーターを結果的に同定することを可能にする方法に実質的に関する。
本発明は、活性源をスクリーニングするために上記方法を使用することを含む。
【選択図】なし

Description

少なくとも１つの生物学的パラメーターに結果的に生じた変化を同定する方法であって、
ａ）若い生細胞について
ｂ）加齢した生細胞について
ｃ）三次元組織モデルで用いられる上記２種類の細胞のうち少なくとも１種について
比較プロテオーム解析、比較トランスクリプトーム解析及び／又は比較ゲノム解析を行い、細胞の加齢により変化が生じる少なくとも１つの生物学的パラメーターを結果的に同定することを可能にする方法に実質的に関する。

本発明は更に、加齢する間に変化が生じる生物学的パラメーターを少なくとも１つ変換することができる潜在的活性物質を少なくとも１つ同定する方法、又は、加齢する間に変化が生じる少なくとも１つの生物学的パラメーターの変化を防止することに関する。

本発明は更に、少なくとも１つの化粧組成物及び／又は医薬組成物を調製するための、上記の方法により選択される活性物質の使用に関する。

本発明は更に、上記の方法により選択される、化粧品又は薬学の分野における活性物質に関する。

「若い」細胞と呼ばれる細胞は、若いドナー由来の生検材料に由来する細胞、ｉｎｖｉｔｒｏ経代培養の回数が比較的少なくあまり増殖していない細胞、又は、太陽放射にあまりさらされていない生検材料（胴体、胸部、腹部、包皮等）に由来する細胞のいずれかであり、また、「加齢した」細胞と呼ばれる細胞は、加齢したドナー由来の生検材料に由来する細胞、ｉｎｖｉｔｒｏ経代培養を受けた回数が多い細胞、又は、太陽にさらされている部位（首、手、顔等）から採取した生検材料に由来する細胞のいずれかである。

上記で行った細胞モデルの様々なゲノム解析及びプロテオーム解析の手法による解析によって、上記で明らかにされた加齢の影響を調節するために、潜在的で治療に役立つターゲットを明らかにしたり、化粧品又は医薬品における活性源を選定したりすることができる。上記活性源を含む化粧又は医薬の製剤の影響は、上記の細胞モデルを用いて評価することも可能である。

細胞増殖、細胞分化及び細胞死等の細胞の機能は全て、非常に多くの遺伝子と細胞シグナル経路によって制御されている。健康若しくは異常ドナー由来又は細胞系由来の、通常は繊維芽細胞又はケラチノサイトの単層細胞培養におけるｉｎｖｉｔｒｏで得られた結果を調べると、生検において得られる結果と常に完全に適合するというわけではない。

実際、細胞増殖及び代謝性合成の制御は、単層細胞モデルと生検材料又はこれを非常に忠実に表現した三次元細胞モデルとの間で全く異なっている。同様に、三次元多細胞モデルにおいて、細胞間の制御機構が明らかにされた。これらは、細胞種間の相互関係、又は、例えば繊維芽細胞によるケラチノサイトの制御及びその逆も同様に可能にするといったような拡散因子の存在（ＳａｉｎｔｉｇｎｙＧ．、ＢｏｎｎａｒｄＭ．、ＤａｍｏｕｒＯ．、ＣｏｌｏｍｂｅｌＣ．ＡｃｔａＤｅｒｍＶｅｎｅｒｏｌ（Ｓｔｏｃｋｈ）（１９９３）７３：１７５−１８０、及び、ＬａｃｒｏｉｘＭ．、ＢｏｖｙＴ．、ＮｕｓｇｅｎｓＢ．Ｖ．、ＬａｐｉｅｒｅＣ．Ｍ．ＡｒｃｈＤｅｒｍａｔｏｌＲｅｓ（１９９５）２８７：６５９−６６４）、又は、より複雑な免疫担当再構成皮膚モデルにおける樹状細胞前駆体の内皮細胞及びマクロファージへの分化（Ａ．Ｂｌａｃｋ：ヒト再構成皮膚モデルの構造成熟と力学（“Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｍａｔｕｒａｔｉｏｎａｎｄｄｙｎａｍｉｃｓｏｆａｍｏｄｅｌｏｆｈｕｍａｎｒｅｃｏｎｓｔｒｕｃｔｅｄｓｋｉｎ”）（“Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｍａｔｕｒａｔｉｏｎｅｔｄｙｎａｍｉｑｕｅｄ’ｕｎｍｏｄｅｌｅｄｅｐｅａｕｒｅｃｏｎｓｔｒｕｉｔｅｈｕｍａｉｎｅ”）；Ｔｈｅｓｉｓ８２／２０００ＵＣＢＬ１，Ｆｒａｎｃｅ）のいずれかによるものである。

また、タンパク質の発現及び合成に関するデータが例えば生理学的加齢又は光誘導性加齢と相関のあるものとして見出せるというわけでは必ずしもなく、これらのデータと実験用単純モデルでのｉｎｖｉｖｏの結果とは時々矛盾していることが明らかとなることがある。

二次元電気泳動、タンパク質「アレイ」及びＤＮＡ「アレイ」等のプロテオーム解析又はゲノム解析に由来する技術が出現したことにより、現在では実際、複数のパラメーターを非常に高い感度で検出でき、かつ、その結果、小さな生体試料からの遺伝子発現やタンパク質合成が多岐にわたることを明らかにすることが可能である。

上記の技術は今まで、ヒト血清、又は、単層ヒト細胞によるならし培地等の様々な種類の生体試料について（ＨｕａｎｇＲ．Ｐ．、ＨｕａｎｇＲ．、ＦａｎＹ．、ＬｉｎＹ．、ＡｎａｌｙｔｉｃａｌＢｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ（２００１）２９４：５５−６２）、又は、様々な種類の細胞、並びに、例えば繊維芽細胞及びケラチノサイトの単層培養において（Ｇｕｔｓｍａｎｎ−ＣｏｎｒａｄＡ．、ＨｅｙｄａｒｉＡ．Ｒ．、ＹｏｕＳ．、ＲｉｃｈａｒｄｓｏｎＡ．、Ｅｘｐ．ＣｅｌｌＲｅｓ．（１９９８）２４１（２）：４０４−４１３）用いられている。同様に、単層培養した様々な年齢のドナー由来のケラチノサイトについて（ＣｏｍｐｔｏｎＣ．、ＴｏｎｇＴ．、ＴｒｏｏｋｍａｎＮ．、ＺｈａｏＨ．、ＲｏｙＤ．、Ｊ．Ｉｎｖｅｓｔ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．（１９９４）１０３（１）：１２７−１３３）、又は、単層培養した様々な年齢のドナー由来の繊維芽細胞について（ＲｅｅｄＭ．Ｊ．、ＦｅｒａｒａＮ．Ｓ．、ＶｅｒｎｏｎＲ．Ｂ．、「加齢と発達の機構（Ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓｏｆａｇｉｎｇａｎｄｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ）」（２００１）１２２（１１）：１２０３−１２２０）、又は、ｉｎｖｉｔｒｏで加齢した繊維芽細胞について（ＮｉｓｈｉｏＫ．、ＩｎｏｕｅＡ．、ＱｉａｏＨ．Ｋ．、ＭｉｍｕｒａＡ．、ＨｉｓｔｏｃｈｅｍＣｅｌｌＢｉｏｌ（２００１）１１６：３２１−３２７）実験が行われた。

単層培養した正常若しくは悪性のヒトメラノサイト（腫瘍組織から抽出した細胞系又はメラノサイト）に対する紫外線によるストレスの調節作用に関する研究を可能にした実験もある（ＶａｌｅｒｙＣ．、ＧｒｏｂＪ．Ｊ．、ＶｅｒｒａｎｄｏＰ．、Ｊ．Ｉｎｖｅｓｔ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．（２００１）１１７：１４７１−１４８２）。

分析技術の発展と同時に、非常に多くの表皮モデル（ロレアルのＥＰ０７８９０７４Ａ１）又は再構成上皮モデル（ＳｃｈｍａｌｚＧ．ＳｃｈｗｅｉｋｌＨ．、ＨｉｌｌｅｒＫ．Ａ．、Ｅｕｒ．Ｊ．ＯｒａｌＳｃｉ．（２０００）１０８：４４２−４４８）、及び、再構成粘膜、再構成皮膚又は色素細胞を含む再構成皮膚及び／若しくは免疫担当再構成皮膚のモデルが作られた（ＣＮＲＳのＥＰ０２９６７８）。上記モデルは、薬物毒性学的な評価並びに医薬及び化粧品成分の有効性研究に今日非常に広く用いられている。しかし、分析方法としては基本的に、組織学を画像解析と組み合わせた方法、すなわち、電気泳動分析、ウェスタンブロット、ノーザンブロット又はＲＴ−ＰＣＲ等によって代謝性合成及び制御を調べる方法が用いられる。タンパク質アレイの技術、及び、ＤＮＡアレイの技術、又は、特に複合サイトカイン決定（ｃｏｍｂｉｎｅｄｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎｓｏｆｃｙｔｏｋｉｎｅｓ）の技術は、上記モデルにおいて用いられていない。

本発明は主として、細胞の加齢におけるｉｎｖｉｖｏでの状況を反映するため、細胞の代謝を研究するモデルを提供して、技術的な問題を当初の予想に反して解決することを目的とする。

本発明は、少なくとも１つの生物学的パラメーターに結果的に生じた変化を同定する方法であって、
ａ）若い生細胞について
ｂ）加齢した生細胞について
ｃ）三次元組織モデルで用いられる上記２種類の細胞のうち少なくとも１種について
比較プロテオーム解析、比較トランスクリプトーム解析及び／又は比較ゲノム解析を行い、細胞の加齢に対して更に変化が生じる少なくとも１つの生物学的パラメーターを結果的に同定することを可能にすることを特徴とする方法を提供するという新規の技術的な問題を解決することを目的とする。

本発明は、細胞モデルを比較してそのゲノム及びタンパク質の特徴を研究することを目的とする。

上記の比較は、一方では以下のモデル：
１）再構成上皮（再構成表皮を含む）、色素細胞を含む及び／又は免疫担当性の、再構成上皮、結合性マトリックス（絨毛膜、真皮を含む）、再構成皮膚又は粘膜、色素細胞を含む及び／又は免疫担当性の再構成皮膚又は粘膜、色素細胞を含む及び／又は免疫担当性の及び／又は内皮化した及び／又はマクロファージを含有する、再構成皮膚又は粘膜、生検材料
もう一方では、以下のモデル：
２）単層又は懸濁状態で培養した、上記のモデル又は上記の様々なモデルを作っている細胞
から選択されるモデルの間で行い、
上記の比較は以下の若い細胞と加齢細胞：
・「若い細胞」と呼ばれる細胞、すなわち、若いドナー由来の生検材料から抽出した細胞、ｉｎｖｉｔｒｏであまり増幅されていない細胞、又は、太陽にさらされていない部位の体（胴体、胸部、腹部、包皮等）由来の生検材料から抽出した細胞
・「加齢細胞」と呼ばれる細胞、すなわち、加齢したドナー由来の生検材料から抽出した細胞、ｉｎｖｉｔｒｏで何度も増幅された細胞、又は、太陽にさらされる部位の体（首、顔、手等）由来の生検材料から抽出した細胞
の間で行う。

上記のようにプロテオーム解析又はゲノム解析により比較することによって、生理学的又は光誘導的に加齢する間に変化が生じる生物学的パラメーターを少なくとも１つ変換したり又はその変化を防止したりするために行動目標を定めることができる。

本発明はまた、活性源、特に化粧品又は医薬品における活性源がゲノム、トランスクリプトーム又はプロテオームの特徴に与える影響を評価するために、上述の組織モデルを用いることができるという解決策を提供することもまた目的とする。

本発明はまた、活性源を含有する又は含有しない製剤、特に活性源を含有する又は含有しない化粧又は医薬の製剤が、ゲノム又はプロテオームの特徴に与える影響を評価するためには、上述の組織モデルを用いることができるという解決策を提供することも目的とする。

本発明は上述の技術的な問題を解決することを可能にするものである。

本発明の記述において本発明者らによれば、「ゲノム解析」は、生物体の遺伝子全体の機能を研究するために、少なくともその一部分の配列表を作成して研究する行為を意味するものである。

本発明者らによれば、「トランスクリプトーム解析」は、ゲノムから転写されたＲＮＡ全体のうち少なくともその一部分の配列表を作成して研究する行為を意味するものである。

本発明者らによれば、「プロテオーム解析」は、発現したタンパク質のうち少なくともその一部分の配列表を作成して研究する行為を意味するものである。

本発明は主として、少なくとも１つの生物学的パラメーターに結果的に生じた変化を同定する方法であって、
ａ）若い生細胞について
ｂ）加齢した生細胞について
ｃ）三次元組織モデルで用いられる上記２種類の細胞のうち少なくとも１種について
比較プロテオーム解析、比較トランスクリプトーム解析及び／又は比較ゲノム解析を行い、細胞の加齢に対して更に変化が生じる少なくとも１つの生物学的パラメーターを結果的に同定することを可能にすることを特徴とする方法を提供するものである。

「若い細胞」は、若いドナー由来の生検材料に由来する細胞、ｉｎｖｉｔｒｏ経代培養の回数が比較的少なくあまり増殖していない細胞、又は、太陽放射にあまりさらされていない生検材料（胴体、胸部、腹部、包皮等）由来の細胞のいずれかである。

また、「加齢細胞」は、加齢したドナー由来の生検材料に由来する細胞、ｉｎｖｉｔｒｏ経代培養を受けた回数が多い細胞、又は、太陽にさらされている部位（首、手、顔等）から採取した生検材料に由来する細胞のいずれかである。

本発明者らによれば、経代培養は、トリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）によって増幅する行為を意味するものである。

上記組織細胞モデルは、特に生体組織を再構成する目的で生細胞を播種することができる組織モデルとして定められ、三次元モデルとも呼ばれる。上記組織モデルは特に、皮膚の場合は真皮、粘膜の場合は絨毛膜と呼ばれる、主として間質細胞を含んだ結合性マトリックスのモデル、主として上皮細胞から構成される上皮モデル、主としてケラチノサイトから構成される表皮モデル、表皮及び真皮から構成される皮膚モデル、上皮及び絨毛膜から構成される粘膜モデル、生存状態を保った生検材料（又は外植片）のモデル、及び、上述のモデルに存在する細胞を用いた単層又は懸濁状態のモデルとなることができるものとして定められる。

上記モデルにおいては、正常、健康若しくは異常細胞、又は、細胞系由来の細胞を用いることができ、上記細胞はヒト又は動物由来のものを使用することができる。

上記特徴のうち後半のものの別の形によれば、結合性マトリックス（真皮又は絨毛膜）の三次元培養モデルは、再構成真皮又は再構成絨毛膜を作るために間質細胞を播種した担体を含む。

上記表皮又は上皮の三次元培養モデルは、再構成上皮又は表皮を得るために、あらかじめ間質細胞、特に繊維芽細胞を播種し、その後上皮細胞、及び、特にケラチノサイトを播種した担体、又は、何も播種していない担体を含む。

上記再構成皮膚又は粘膜の三次元培養モデルは、再構成粘膜を得るために上皮細胞を、又は、再構成皮膚を得るためにケラチノサイトを播種した（真皮又は絨毛膜の）マトリックス担体を含む。

別の形によれば、用いられる上記三次元培養モデルは更に少なくとも１種の細胞、例えば、内皮細胞（ＥＣ）、及び／又は、リンパ球、及び／又は、脂肪細胞、及び／又は、間質性樹状細胞、及び／又は、体毛、髪、皮脂腺細胞等の皮膚の付属器といった種類の細胞が少なくとも１種更に組み込まれたモデルを含む。

有利には、色素細胞、免疫担当細胞（ランゲルハンス細胞）、神経細胞等は上皮部分に加えて導入することができる。

種類の異なる抽出した細胞（繊維芽細胞、ケラチノサイト、メラノサイト）は、別々に増幅し、別々に使用したり、三次元モデルを再構成するため、及び、単層又は懸濁状態で培養するために複数のドナーから貯蔵したりすることができる。

別の形によれば、上記樹状細胞前駆体（間質性樹状細胞）は、任意に異なっていてもよく、上記少なくとも上皮細胞及び間質細胞を含む三次元条件で樹状細胞前駆体を培養する際、内皮細胞及びマクロファージ等の少なくとも２種の追加的な細胞の起点となることが可能である。

上記で定めた組織モデルは、ゲノム解析、トランスプリクトーム解析及び／又はプロテオーム解析を行うために培養の最後に使用する。特に上記解析によって、生理学的又は光誘導的に加齢する間に変化が生じる生物学的パラメーターを少なくとも１つ変換又は防止するために可能性のある目標を選定、同定及び特徴付けすることができる。

上記可能性のある目標とは、本発明を実行することにより同定される、変換される生物学的パラメーター、又は、防止される変化である。

上記目標を定めた後、上記モデル及び検出方法と同様のものを用いて、化粧品又は医薬品における活性源をスクリーニングすることができ、また、上記活性物質を含む、又は、含まない、化粧又は医薬の製剤の有効性を証明することができる。

上記で用いられる解析方法の中で、以下のものが特に挙げられる。
−プロテオームの特徴の解析方法：二次元電気泳動、タンパク質アレイ、サイトカインアレイ及び／又は複合ＥＬＩＳＡ法
−ゲノムの特徴の解析方法：ＤＮＡアレイ、ポリメラーゼ多重連鎖反応（ＰＣＲ−ｍｕｌｔｉｐｌｅｘ）、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）及び／又はリアルタイムポリメラーゼ連鎖反応（リアルタイムＰＣＲ）
−トランスクリプトームの特徴の解析方法：ＲＮＡアレイ、ｃＤＮＡアレイ、逆転写多重ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ−ｍｕｌｔｉｐｌｅｘ）、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）及び／又はリアルタイム逆転写ポリメラーゼ連鎖反応（リアルタイムＲＴ−ＰＣＲ）

第一の態様によると、本発明は、少なくとも１つの生物学的パラメーターに結果的に生じた変化を同定する方法であって、
ａ）若い生細胞について
ｂ）加齢した生細胞について
ｃ）三次元組織モデルで用いられる上記２種類の細胞のうち少なくとも１種について
比較プロテオーム解析、比較トランスクリプトーム解析及び／又は比較ゲノム解析を行い、細胞の加齢に対して更に変化が生じる少なくとも１つの生物学的パラメーターを結果的に同定することを可能にする方法に関する。

有利には、上記若い細胞及び加齢細胞は共に三次元組織モデルにおいて用いられる。

有利には、細胞が加齢する間に変化が生じる上記生物学的パラメーターは若い細胞の代謝と加齢細胞の代謝の間の差のうちの少なくとも１つによって定められる。

有利には、上記ａ）段階の若い細胞は、若いドナー由来の生検材料に由来する細胞、有利には４０〜４５才未満の若いドナー由来の生検材料に由来する細胞、ｉｎｖｉｔｒｏ経代培養の回数が比較的少なくあまり増殖していない細胞、又は、太陽放射にあまりさらされていない生検材料（例えば胴体、胸部、腹部、包皮等）に由来する細胞のいずれかである。

有利には、上記ｂ）段階の加齢細胞は、加齢したドナー由来の生検材料に由来する細胞、有利には４０〜４５才を超える加齢したドナー由来の生検材料に由来する細胞、ｉｎｖｉｔｒｏ経代培養を受けた回数が多い細胞、又は、太陽にさらされている部位（例えば手、顔、首、襟首等）から採取した生検材料に由来する細胞のいずれかである。

有利には、上記ｂ）段階の加齢細胞は、長期間に、有利には１か月以上、より有利には２か月以上の長期間に渉って培養することにより人為的に加齢させた１種以上の細胞を含む三次元組織モデルにおいて統合された若い細胞である。

有利には、上記若い細胞又は加齢細胞は少なくとも一体のヒト又は少なくとも一体の動物由来の細胞である。

有利には、上記検討は以下の解析方法：
−プロテオームの特徴の解析方法：二次元電気泳動、タンパク質アレイ、サイトカインアレイ及び／又は複合ＥＬＩＳＡ法
−ゲノムの特徴の解析方法：ＤＮＡアレイ、ポリメラーゼ多重連鎖反応（ＰＣＲ−ｍｕｌｔｉｐｌｅｘ）、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）及び／又はリアルタイムポリメラーゼ連鎖反応（リアルタイムＰＣＲ）
−トランスクリプトームの特徴の解析方法：ＲＮＡアレイ、ｃＤＮＡアレイ、逆転写多重ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ−ｍｕｌｔｉｐｌｅｘ）、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）及び／又はリアルタイム逆転写ポリメラーゼ連鎖反応（リアルタイムＲＴ−ＰＣＲ）
から選択される少なくとも１つの解析を含む。

有利には、上記組織モデルは細胞の代謝を少なくとも部分的に維持している条件下で培養及び／又は保存される。

有利には、上記組織モデルは少なくとも繊維芽細胞又はケラチノサイトを含む。

有利には、上記モデルは、正常、健康若しくは異常細胞、又は、細胞系由来の細胞を含み、上記細胞は好ましくはヒト又は動物由来のものである。

有利には、上記組織モデルは以下のモデル：
皮膚の場合は真皮、粘膜の場合は絨毛膜と呼ばれる、主として間質細胞を含む結合性マトリックスモデル、主として上皮細胞から構成される上皮モデル、主としてケラチノサイトから構成される表皮モデル、表皮及び真皮から構成される皮膚モデル、上皮及び絨毛膜から構成される粘膜モデル
から選択される。

有利には、上記組織モデルは好ましくは以下のマトリックス担体：
−合成半透膜、具体的にはニトロセルロース半透膜、ナイロン半透膜、テフロン（登録商標）膜若しくはテフロン（登録商標）スポンジ、ポリカーボネート若しくはポリエチレン、ポリプロピレン若しくはポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）の半透膜、Ａｎｏｐｏｒｅ無機半透膜、酢酸セルロース若しくはセルロースエステル（ＨＡＴＦ）の膜、Ｂｉｏｐｏｒｅ−ＣＭ半透膜、ポリエステル半透膜又はポリグリコール酸の膜若しくは薄膜からなる群より選択される不活性な担体（上記群において、例えば、真皮モデルであるＳｋｉｎ^２ＴＭｍｏｄｅｌＺＫ１１００、Ｄｅｒｍａｇｒａｆｔ（Ｒ）及びＴｒａｎｓｃｙｔｅ（Ｒ）（ＡｄｖａｎｃｅｄＴｉｓｓｕｅＳｃｉｅｎｃｅｓ）が挙げられる）
−細胞培養処理した樹脂（葉状真皮（ａｄｅｒｍａｌｌｅａｆ）の構造：ＭｉｃｈｅｌＭ．ら、ＩｎＶｉｔｒｏＣｅｌｌ．ＤｅｖＢｉｏｌ．−Ａｎｉｍａｌ（１９９９）３５：３１８−３２６）
−ヒアルロン酸（Ｈｙａｌｏｇｒａｆｔ（Ｒ）３Ｄ−ＦｉｄｉａａｄｖａｎｃｅｄＢｉｏｐｏｌｙｍｅｒｓ）及び／又はコラーゲン及び／又はフィブロネクチン及び／又は繊維素を基盤とするゲル又は膜（上記群において、例えば、真皮モデルであるＶｉｔｒｉｘ（Ｒ）（オルガノジェネシス）が挙げられる）
より選択されるマトリックス担体を含み、多孔性マトリックスは浮上している又は浮上していないもので、１つ以上のグリコサミノグリカン類及び／又は最終的にはキトサン（ＣＮＲＳのＥＰ０２９６０７８Ａ１、ＣｏｌｅｔｉｃａのＷＯ０１／９１１８２１及びＷＯ０１／９２３２２）を含むことが可能であるコラーゲンから作られる結合性マトリックス（真皮又は絨毛膜）の組織モデルである。

上記群において、例えば、真皮モデルであるＭｉｍｅｄｅｒｍ（Ｒ）（Ｃｏｌｅｔｉｃａ）が挙げられる。

上記マトリックス担体は間質細胞、特に繊維芽細胞を含む。

有利には、上記組織モデルは好ましくは以下のマトリックス担体：
−合成半透膜、具体的にはニトロセルロース半透膜、ナイロン半透膜、テフロン（登録商標）膜若しくはテフロン（登録商標）スポンジ、ポリカーボネート若しくはポリエチレン、ポリプロピレン若しくはポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）の半透膜、Ａｎｏｐｏｒｅ無機半透膜、酢酸セルロース若しくはセルロースエステル（ＨＡＴＦ）の膜、Ｂｉｏｐｏｒｅ−ＣＭ半透膜又はポリエステル半透膜からなる群より選択される不活性な担体（上記群において、再構成表皮及び上皮のモデル（Ｓｋｉｎｅｔｈｉｃ（Ｒ））、並びに、ＥｐｉＤｅｒｍ（Ｒ）、ＥｐｉＡｉｒｗａｙ（Ｒ）、ＥｐｉＯｃｃｕｌａｒ（Ｒ）（ＭａｔｔｅｋＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）といったモデルが挙げられる）
−ヒアルロン酸及び／又はコラーゲン及び／又はフィブロネクチン及び／又は繊維素を基盤とする薄膜又は膜（上記群において、特に、Ｌａｓｅｒｓｋｉｎ（Ｒ）（ＦｉｄｉａａｄｖａｎｃｅｄＢｉｏｐｏｌｙｍｅｒｓ）、Ｅｐｉｓｋｉｎ（Ｒ）（ロレアル）といったモデルが挙げられる）
より選択されるマトリックス担体を含む表皮組織モデル又は上皮組織モデルである。

上記モデルは、間質細胞、特に繊維芽細胞を播種し、その後上皮細胞、及び、特にケラチノサイトを播種するものである。

有利には、上記上皮部分に上皮細胞、色素細胞、免疫担当細胞及び神経細胞が更に導入され、上記免疫担当細胞は好ましくはランゲルハンス細胞である。

有利には、上記組織モデルは好ましくは以下のマトリックス担体：
−合成半透膜、具体的にはニトロセルロース半透膜、ナイロン半透膜、テフロン（登録商標）膜若しくはテフロン（登録商標）スポンジ、ポリカーボネート若しくはポリエチレン、ポリプロピレン若しくはポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）の半透膜、Ａｎｏｐｏｒｅ無機半透膜、酢酸セルロース若しくはセルロースエステル（ＨＡＴＦ）の膜、Ｂｉｏｐｏｒｅ−ＣＭ半透膜又はポリエステル半透膜からなる群より選択される不活性な担体（上記不活性な担体は間質細胞、特に繊維芽細胞を含む）
−間質細胞、特に繊維芽細胞を含む、コラーゲン及び／又はヒアルロン酸及び／又はフィブロネクチン及び／又は繊維素を基盤とするゲル
−１つ以上のグリコサミノグリカン類及び／又は最終的にはキトサンを含むことが可能であるコラーゲンから作られる、浮上している又は浮上していない多孔性マトリックス（上記多孔性マトリックスは間質細胞、特に繊維芽細胞を統合したものである）
−ヒト又は動物の、上皮を剥がした真皮又は死んだ真皮
より選択される真皮の又は絨毛膜のマトリックス担体を含む再構成皮膚又は粘膜の組織モデルである。

上記群において、Ｍｉｍｅｓｋｉｎ（Ｒ）（Ｃｏｌｅｔｉｃａ）、Ａｐｌｉｇｒａｆ（Ｒ）（オルガノジェネシス）、ＡＴＳ−２０００（ＣｅｌｌＳｙｓｔｅｍｓ（Ｒ）ＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅＶｅｒｔｒｉｅｂ）、特にはＳｋｉｎ^２ＴＭ（ＺＫ１２００−１３００−２０００、ＡｄｖａｎｃｅｄＴｉｓｓｕｅＳｃｉｅｎｃｅ）といったモデルを挙げることができる。

更に、上記研究課題にもなり得る組織治療に使用できるモデルも確かに存在する。上記モデルとしては、Ｅｐｉｄｅｘ^ＴＭ（ＭｏｄｅｘＴｈｅｒａｐｅｕｔｉｑｕｅｓ）、Ｅｐｉｂａｓｅ（Ｒ）（ＬａｂｏｒａｔｏｉｒｅＧｅｎｅｖｒｉｅｒ）、Ｅｐｉｃｅｌｌ^ＴＭ（ジェンザイム）、Ａｕｔｏｄｅｒｍ^ＴＭ及びＴｒａｎｓｄｅｒｍ^ＴＭ（イノジェネティックス）を挙げることができる。

上記マトリックス担体はその後、再構成粘膜を得るために上皮細胞を、又は、再構成皮膚を得るためにケラチノサイトを播種される。

有利には、用いられる上記組織モデルは更に少なくとも１種の細胞、好ましくは、内皮細胞（ＥＣ）、及び／又は、リンパ球、マクロファージ、樹状細胞等の免疫細胞、及び／又は、脂肪細胞、及び／又は、体毛、髪、皮脂腺細胞等の皮膚の付属器といった種類の細胞が少なくとも１種更に組み込まれたモデルを含む。

第二の態様によると、本発明は、上記のように加齢する間に変化が生じる生物学的パラメーターを少なくとも１つ変換することができる潜在的活性物質を少なくとも１つスクリーニングする上記の方法の使用に関する。

有利には、上記のように加齢する間に変化が生じる生物学的パラメーターの少なくとも１つを変換することができる潜在的活性物質を少なくとも１つスクリーニングする方法は、
Ａ／上記潜在的活性物質を、上記潜在的活性物質を作用させるのに十分な時間、上記細胞モデル又は組織モデルに播種した上記加齢細胞と接触させて配置すること
Ｂ／上記細胞モデル又は組織モデルに播種した上記若い細胞
Ｃ／上記加齢細胞における細胞の代謝に対する上記物質の作用を検討するために、部分的に又は完全に、プロテオーム解析、トランスクリプトーム解析及び／又はゲノム解析を行うこと
Ｄ／上記潜在的活性物質の存在下の上記加齢細胞における細胞の代謝を、上記物質の非存在下の上記加齢細胞又は若い細胞における代謝と比較すること
Ｅ／上記潜在的活性物質の活性の有無を明らかにすること、特に加齢の間に変化が生じることが明らかにされた生物学的パラメーターの変化を防止するための上記物質の肯定的又は否定的な効果を明らかにすること
を含む。

別の態様によると、本発明は、
ａ）対照として用いられる若い細胞、好ましくは上記に記載の若い細胞を培養すること
ｂ）若い細胞と呼ばれる細胞に対して変化が生じた生物学的パラメーターを持った加齢細胞、好ましくは上記に記載の加齢細胞を、上記細胞における細胞の代謝に対して上記潜在的活性物質を結果的に作用させるのに十分な時間、少なくとも１つの潜在的活性物質の存在下で培養して、代謝を若い細胞のレベルに回復すること
ｃ）結果的に活性を持つことになる物質の存在下又は非存在下で培養した加齢細胞について、好ましくは上記の方法で、部分的に又は完全に、プロテオーム解析、トランスクリプトーム解析及び／又はゲノム解析を行うこと
ｄ）ｃ）で行った解析と、上記潜在的活性物質の非存在下で培養したａ）に記載の若い生細胞についての、好ましくは上記の方法による、部分的な又は完全な、プロテオーム解析、トランスクリプトーム解析及び／又はゲノム解析とを比較すること
ｅ）ｃ）及びｄ）での解析の比較に続いて、上記加齢により変化が生じる生物学的パラメーターを少なくとも１つ変換することができる活性物質を少なくとも１つ結果的に同定すること
を含む、加齢する間に変化が生じる生物学的パラメーターを少なくとも１つ変換することができる潜在的活性物質を少なくとも１つ同定する方法に関する。

別の態様によると、本発明は、
ａ）上記に記載の組織モデルに播種した上記に記載の加齢細胞と呼ばれる細胞と接触させて、上記潜在的活性物質を作用させるのに十分な時間、上記潜在的活性物質を配置すること
ｂ）上記物質と接触させて配置した加齢細胞について、好ましくは上記に記載の方法で、部分的に又は完全に、プロテオーム解析、トランスクリプトーム解析及び／又はゲノム解析を行うこと
ｃ）ｂ）で行った解析と、上記潜在的活性物質の非存在下で培養した生細胞についての、好ましくは上記に記載の、部分的な又は完全な、プロテオーム解析、トランスクリプトーム解析及び／又はゲノム解析とを比較すること
ｄ）ｃ）での解析の比較に続いて、加齢により変化が生じる少なくとも１つの生物学的パラメーターの変化を防止することができる活性物質を少なくとも１つ結果的に同定すること
を含む、加齢する間に変化が生じる少なくとも１つの生物学的パラメーターの変化を防止することができる潜在的活性物質を少なくとも１つ同定する方法に関する。

別の態様によると、本発明は、少なくとも１つの化粧組成物及び／又は医薬組成物を調製するための、上記の方法により選択される活性物質の使用に関する。

別の態様によると、本発明は、上記の方法により選択される化粧品又は薬学の分野における活性物質に関する。

別の態様によると、本発明は、加齢する間に変化が生じることが明らかにされた生物学的パラメーターを変換すること、及び／又は、その変化を防止することができる活性物質に関するものであり、
上記パラメーターは、若い細胞を用いた細胞モデルと、加齢細胞を用いた細胞モデルとを比較検討することにより同定されたものであり、
上記モデルの少なくとも１つは繊維芽細胞又はケラチノサイトの少なくともどちらかを含む組織モデルである。

また、以下に本発明の実例である簡潔な実施例を掲げて本発明の特徴と利点を明確に説明するが、これらは本発明の範囲を制限するものではない。上記実施例は本発明に不可欠な部分であり、従来技術に照らして新規の特徴は全て、従来技術との関係及びその特徴の概略を本発明に不可欠なものとして記載する。実施例において、特に指示のない限り、百分率は重量％で、温度は摂氏で、圧力は大気圧で表す。

実施例１
「若い」細胞又は「加齢した」細胞と呼ばれる細胞の抽出及び培養
「若い」細胞と呼ばれる細胞は、
・若いドナーから抽出した細胞、すなわち、形成外科、好ましくは包皮、腹部、乳房、最終的には歯肉又は膣の形成外科より入手した、日光にさらされていない生検材料から抽出した細胞
・若いドナーから抽出した細胞、例えば４５才未満の若いドナーから抽出した細胞
・経代培養初期で用いられる細胞、例えば、繊維芽細胞の場合は１０回未満、メラノサイトの場合は６回未満及びケラチノサイトの場合は２回未満といった経代培養初期で用いられる細胞
のいずれかである。

「加齢」細胞と呼ばれる細胞は、
・加齢したドナー由来の生検材料から抽出した細胞、及び、形成外科、好ましくは腹部、乳房、最終的には歯肉又は膣の形成外科より入手した、日光にさらされていない、高齢の患者、例えば４５才を超えるドナー由来の生検材料から抽出した細胞
・様々な年齢のドナー由来の生検材料、及び、日光にさらされた部位（顔、首、手）の形成外科より入手した生検材料より抽出した細胞
・経代培養後期で用いられる細胞、例えば、繊維芽細胞の場合は１０回を超える、メラノサイトの場合は６回を超える及びケラチノサイトの場合は２回を超えるといった経代培養後期で用いられる細胞
のいずれかである。

外植片を用いる方法若しくはコラゲナーゼ等を用いる酵素的消化により抽出した繊維芽細胞、又は、酵素的に、具体的にはディスパーゼ、サーモリシン若しくはトリプシン−ＥＤＴＡ等によって真皮−表皮を分離した後抽出したケラチノサイト若しくはメラノサイトといった種類の細胞を得ることができる。

抽出後、上記繊維芽細胞は、ウシ血清を１０％、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度１μｇ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ培地（Ｄｕｌａｂｅｃｃｏ’ｓＭｏｄｉｆｉｅｄＥａｇｌｅ’ｓＭｅｄｉｕｍ）／ＨａｍＦ１２ｇｌｕｔａｍａｘ５０／５０（ｖ／ｖ）中で増幅する。上記繊維芽細胞は、９０％コンフルエンスになるとすぐにトリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）により増幅する。

抽出後、上記ケラチノサイトは、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度１μｇ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ加えたウシ下垂体腺の抽出物を含むＫ−ＳＦＭ培地（ケラチノサイト用非血清培地、インビトロジェン）中で増幅する。上記ケラチノサイトは、９０％コンフルエンスになるとすぐにトリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）により増幅する。

抽出後、上記メラノサイトは、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度１μｇ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ、ジェネテシンを１００μｇ／ｍＬの割合で加えたＭＭＫ２培地（メラノサイト培養キット、シグマ）中で３日間増幅し、残留しているケラチノサイトを除去する。その後、ジェネテシンを除く以外は上記と同じ培地中で培養を続ける。上記メラノサイトは、９０％コンフルエンスになるとすぐにトリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）により増幅する。

実施例２
「若い」再構成真皮及び「加齢した」再構成真皮と呼ばれる再構成真皮の調製、並びに、ＲＮＡ、ＤＮＡ及びタンパク質の抽出
実施例１に記載の方法で増幅した、若いドナー（４５才未満）及び高齢のドナー（４５才を超える）をそれぞれ３人含むプールに由来する繊維芽細胞５００，０００個を、ウシ血清を１０％、アスコルビン酸−２−リン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦ（表皮成長因子）を最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−ｇｌｕｔａｍａｘ培地中の、アジ化ジフェニルホスホリル（ｄｉｐｈｅｎｙｌｐｈｏｓｐｈｏｒｙｌａｚｉｄｅ）で架橋したコラーゲンでできている真皮の基質に播種して２１日間培養する。

実験の最後に、上記再構成真皮は液体窒素中でバイオプルベライザーを用いてすりつぶす。これをＴｒｉＲｅａｇｅｎｔ（Ｒ）（Ｔ９４２４、シグマ、セントルイス、アメリカ）中に入れ、クロロホルムで抽出する。１２，０００ｇ、１５分間、４℃で遠心分離した後の上層にＲＮＡが、下層にＤＮＡが、界面にタンパク質が確認できる。

実施例３
「若い」再構成表皮及び「加齢した」再構成表皮と呼ばれる再構成表皮の調製、並びに、ＲＮＡ、ＤＮＡ及びタンパク質の抽出
実施例１に記載の方法で経代培養１回目（トリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）による１回目の増幅）まで増幅した、「若い」ケラチノサイト（３５才未満のドナーに由来する）及び「加齢した」ケラチノサイト（５５才を超えるドナーに由来する）と呼ばれるケラチノサイト４×１０^６個を、ＨｙｃｌｏｎｅＩＩウシ血清を１０％、アスコルビン酸−２−リン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦ（表皮成長因子）を最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ヒドロコルチゾンを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、ウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を最終濃度０．１２ＵＩ／ｍＬ、アイスプレルを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、トリヨードチロニンを最終濃度２×１０^−９Ｍ、アデニンを最終濃度２４．３μｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−Ｇｌｕｔａｍａｘ／ＨａｍＦ−１２（３／１ｖ／ｖの割合）培地中の、繊維芽細胞層下にあらかじめ栄養分を播種してある容器型のＢｏｙｄｅｎ挿入片（空隙率０．４μｍ、直径２５ｍｍの膜）に播種し、３〜８日間浸漬させて培養する。

上記培養したケラチノサイトはこの後、ウシ血清、ヒドロコルチゾン、アイスプレル、トリヨードチロニン及びウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を除く以外は上記浸漬培養に用いたものと同じ培地中で気液界面に１２〜１８日間おく。

実験の最後に、挿入片中の上記再構成表皮は、掻き取って集め、ＴｒｉＲｅａｇｅｎｔ（Ｒ）（シグマ）中に入れ、クロロホルムで抽出する。１２，０００ｇ、１５分間、４℃で遠心分離した後の上層にＲＮＡが、下層にＤＮＡが、界面にタンパク質が確認できる。

実施例４
「若い」再構成歯肉粘膜上皮及び「加齢した」再構成歯肉粘膜上皮と呼ばれる再構成歯肉粘膜上皮の調製、並びに、ＲＮＡ、ＤＮＡ及びタンパク質の抽出
実施例１に記載の方法で抽出した、「若い」上皮細胞と呼ばれる歯肉粘膜上皮細胞（経代培養１回目、トリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）による１回目の増幅におけるもの）及び「加齢した」上皮細胞と呼ばれる歯肉粘膜上皮細胞（経代培養４回目、トリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）による４回目の増幅におけるもの）１〜２×１０^６個を、ＨｙｃｌｏｎｅＩＩウシ血清を１０％、アスコルビン酸−２−リン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦ（表皮成長因子）を最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ヒドロコルチゾンを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、ウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を最終濃度０．１２ＵＩ／ｍＬ、アイスプレルを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、トリヨードチロニンを最終濃度２×１０^−９モル／Ｌ、アデニンを最終濃度２４．３μｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−Ｇｌｕｔａｍａｘ／ＨａｍＦ−１２（３／１ｖ／ｖの割合）培地中の、容器の形状のＢｏｙｄｅｎ挿入片（空隙率０．４μｍ、直径１０ｍｍの膜）に播種して、３〜８日間浸漬させて培養する。

上記培養した上皮細胞はこの後、ウシ血清の割合を１０％から１％に減らす以外は上記浸漬培養に用いたものと同じ培地中で浸漬させたまま１２〜１８日間おく。

実験の最後に、上記再構成上皮はＴｒｉＲｅａｇｅｎｔ（Ｒ）（シグマ）中に入れ、クロロホルムで抽出する。１２，０００ｇ、１５分間、４℃で遠心分離した後の上層にＲＮＡが、下層にＤＮＡが、界面にタンパク質が確認できる。

実施例５
「若い」再構成皮膚及び「加齢した」再構成皮膚と呼ばれる再構成皮膚の三次元多細胞モデル、並びに、ＲＮＡ、ＤＮＡ及びタンパク質の抽出
「若い」繊維芽細胞（３５才未満の３人のドナーを含むプールに由来する）及び「加齢した」繊維芽細胞（５５才を超える３人のドナーを含むプールに由来する）と呼ばれる繊維芽細胞４００，０００個を抽出し、実施例１に記載の方法で経代培養５回目（トリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）による５回目の増幅）まで増幅し、浮上したコラーゲンのスポンジを基盤とする真皮の基質の上に播種する。

簡潔には、上記真皮の基質は、以下のプロトコールに従って調製する：
−０．７５％コラーゲンゲルを２５℃で乾燥させ、薄膜を作る。
−上記コラーゲン薄膜を０．７５％コラーゲンゲルの上におく。
−２４時間凍結乾燥させ、ジメチルホルムアミド溶媒、その後ｐＨ８．９ホウ酸バッファーの中で、コラーゲンをＤＰＰＡ（アジ化ジフェニルホスホリル（ｄｉｐｈｅｎｙｌｐｈｏｓｐｈｏｒｙｌａｚｉｄｅ））５０μＬ／ｇで架橋する。
−脱塩水で洗浄し、浮上した真皮の基質を再度凍結乾燥する。

上記繊維芽細胞の培養は、ｈｙｃｌｏｎｅＩＩウシ血清を１０％、アスコルビン酸−２−リン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦ（表皮成長因子）を最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−Ｇｌｕｔａｍａｘ培地を用い、１４日間培養する。

その後、抽出して実施例１に記載の方法で経代培養２回目（トリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）による２回目の増幅）まで増幅した「若い」ケラチノサイト（３５才未満の３人のドナーを含むプールに由来する）及び「加齢した」ケラチノサイト（５５才を超える３人のドナーを含むプールに由来する）と呼ばれるケラチノサイト４００，０００個を、ＨｙｃｌｏｎｅＩＩウシ血清を１０％、アスコルビン酸−２−リン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦを最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ヒドロコルチゾンを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、ウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を最終濃度０．１２ＵＩ／ｍＬ、アイスプレルを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、トリヨードチロニンを最終濃度２×１０^−９Ｍ、アデニンを最終濃度２４．３μｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−Ｇｌｕｔａｍａｘ／ＨａｍＦ−１２（３／１ｖ／ｖの割合）培地中で真皮等価物（ｄｅｒｍａｌｅｑｕｉｖａｌｅｎｔｓ）に播種して、７日間浸漬させて培養する。

上記培養したケラチノサイトはこの後、ウシ血清、ヒドロコルチゾン、アイスプレル、トリヨードチロニン及びウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を除く以外は上記浸漬培養に用いたものと同じ培地中で気液界面に２１日間おく。

実験の最後に、上記再構成皮膚はＴｒｉＲｅａｇｅｎｔ（Ｒ）（シグマ）中に入れ、液体窒素中でバイオプルベライザーを用いてすりつぶした後、クロロホルムで抽出する。１２，０００ｇ、１５分間、４℃で遠心分離した後の上層にＲＮＡが、下層にＤＮＡが、界面にタンパク質が確認できる。

実施例６
ランゲルハンス細胞、間質性樹状細胞、マクロファージ及び内皮細胞の個体群を含む、「若い」モデル及び「加齢した」モデルと呼ばれる再構成皮膚の三次元多細胞モデル、並びに、ＲＮＡ、ＤＮＡ及びタンパク質の抽出
●ランゲルハンス細胞の分化経路において優先的に環境に適応することができる、未分化で未発達の樹状細胞の産出

一体以上のヒトのドナーから静脈血の試料をリチウム−ヘパリン等の通常の抗凝血剤中に入れたヴァキュテーナー内に採取し、抹消循環血を集めた。

上記循環血からのＣＤ１４^＋単球の分離は、ロックフェラー大学出版から出版されたＧｅｉｓｓｍａｎｎら、Ｊ．ＥＸＰ．ＭＥＤ．Ｖｏｌ１８７，Ｎｏ６，１６Ｍａｒｃｈ１９９８，９６１−９６６ページのプロトコールに従い、以下の方法で有利に行うことができる：
−Ｆｉｃｏｌｌ（Ｒ）ｇｒａｄｉｅｎｔ（ナトリウムジアトリゾエ―ト／密度１．０７７のポリスクロース；ＬｙｍｐｈｏｐｒｅｐＡｂｃｙｓ１０５３９８０）を用いて遠心分離した後、上記循環血の単核の細胞を回収し、磁気ビーズに結合した抗体混合物（主として抗ＣＤ３、抗ｆＣＤ３、抗ＣＤ７、抗ＣＤ１９、抗ＣＤ４５ＲＡ、抗ＣＤ５６、抗ＩｇＥ（抗免疫グロブリンＥ）のＣＤ）により間接的に標識する。
−磁気カラムを通した後、非磁性標識単球のみを溶出する。

上記ＣＤ１４^＋単球を、当業者には公知の任意の物理的な分離方法、及び、特に遠心沈降又は遠心分離によって溶出液の形で回収し、次の培養に用いる溶出液として溶出する。

この後上記ＣＤ１４^＋単球を、非働化ウシ胎児血清を１０％、並びに、２種のサイトカイン、具体的にはサイトカインＧＭ−ＣＳＦを４００ＵＩ／ｍＬ及びサイトカインＴＧＦβ１を１０ｎｇ／ｍＬの割合で最初から含んだＲＰＭＩ１６４０培地中に約１００万個／ｍＬの割合で添加する。

上記培養は、ＣＯ_２を５％含んだ湿気のある空気中で３７℃において行う。

上記培地は、第三のサイトカイン、具体的にはサイトカインＩＬ−１３を１０ｎｇ／ｍＬの割合で最初から添加されているものを用いる。遅くとも２日間培養する前に、培養６日目までＩＬ−１３を加えないこと以外は上記と同じ培地を追加する。６日目に、未分化で未発達の樹状細胞が産生し、これらはランゲルハンス細胞の分化経路において優先的に環境に適応することができる：
−上記ｉｎｖｉｔｒｏにおいて産生する樹状細胞の約６０〜８０％は、Ｌａｎｇｅｒｉｎを細胞内において、及び、ＭＩＰ−３αの特異的受容体であるＣＣＲ６を発現する。
−上記ｉｎｖｉｔｒｏにおいて産生する樹状細胞は、ＭＩＰ−３αによって化学的に強く引き寄せられることから、上記受容体ＣＣＲ６との相関関係が明らかである。
−上記ｉｎｖｉｔｒｏにおいて産生する樹状細胞は、成熟度の標識であるＣＤ８３、ＤＣ−ＬＡＭＰ及びＣＣＲ７を発現していないため、未成熟である。

●次に、下記プロトコールに従って、上記三次元モデルを作る。

実施例１に記載の方法で経代培養３回目から１０回目（トリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）による１０回目の増幅）まで増幅した繊維芽細胞２×１０^５個を、ｈｙｃｌｏｎｅＩＩウシ血清を１０％、アスコルビン酸−２−リン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦ（表皮成長因子）を最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ及びゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−Ｇｌｕｔａｍａｘ培地中のコラーゲン−グリコサミノグリカン−キトサンを基盤とする真皮の基質の上に播種して、２１日間培養する。その後、上記培地からＥＧＦを除いた培地中で更に１週間培養を続ける。

次に、実施例１に記載の方法で経代培養０回目から２回目（トリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）による２回目の増幅）まで増幅したケラチノサイト２×１０^５個、及び、ｉｎｖｉｔｒｏにおいて産生する未分化樹状細胞１〜３×１０^５個を、ＨｙｃｌｏｎｅＩＩウシ血清を１０％、アスコルビン酸−２−リン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦを最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ヒドロコルチゾンを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、ウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を最終濃度０．１２ＵＩ／ｍＬ、アイスプレルを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、トリヨードチロニンを最終濃度２×１０^−９Ｍ、アデニンを最終濃度２４．３μｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−Ｇｌｕｔａｍａｘ／ＨａｍＦ−１２（３／１ｖ／ｖの割合）培地中の真皮等価物（ｄｅｒｍａｌｅｑｕｉｖａｌｅｎｔｓ）上に播種して、７日間浸漬させて培養する。

上記培養物はこの後、ウシ血清、ヒドロコルチゾン、アイスプレル、トリヨードチロニン及びウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を除く以外は上記浸漬培養に用いたものと同じ培地中で気液界面に２１日間おく。

上記条件において、ランゲルハンス細胞は表皮内に、間質樹状細胞、マクロファージ及び内皮細胞は真皮内に局在している。

実験の最後に、上記免疫担当再構成皮膚はＴｒｉＲｅａｇｅｎｔ（Ｒ）（シグマ）中に入れ、液体窒素中でバイオプルベライザーを用いてすりつぶした後、クロロホルムで抽出する。１２，０００ｇ、１５分間、４℃で遠心分離した後の上層にＲＮＡが、下層にＤＮＡが、界面にタンパク質が確認できる。

実施例７
上記細胞モデルのＲＮＡ、ＤＮＡ及びタンパク質の精製
ＲＮＡは、２−プロパノールを用いて沈殿させて１２，０００ｇで１５分間遠心分離し、８０％エタノールでプラグを洗浄し、乾燥させてＤＮＡａｓｅ（ＡＭＢＩＯＮ）を用いて処理を行い、２６０ｎｍ及び２８０ｎｍでの吸収の値を読んだ後、１μｇ／μＬの割合で水に溶解する。

ＤＮＡは、ＲＮＡを含んだ上層を除去した後、エタノールを用いて２，０００ｇ、５分間、４℃で遠心分離して沈殿させる。上清は取っておくが、これはタンパク質のフラクションを含んだものである。上記ＤＮＡを含んだプラグは、０．１Ｍ酢酸バッファー、１０％エタノール、７５％エタノールを用いて２，０００ｇ、５分間、４℃で遠心分離して洗浄した後、真空下で５〜１０分間乾燥させ、最後に８ｍＭの水酸化ナトリウム溶液に溶解する。２６０ｎｍでの吸収の値を読んだ後、１２，０００ｇで１０分間遠心分離して不溶物を除去し、ＤＮＡの濃度を０．３μｇ／μＬに調整する。

エタノール抽出物（上清）に含まれるタンパク質は、１２，０００ｇ、１０分間、４℃で遠心分離し、０．３Ｍ塩酸グアニジン９５％エタノール溶液で７，５００ｇ、５分間、４℃における遠心分離を３回行うことにより洗浄した後、イソプロパノールを用いて沈殿させる。上記プラグは、真空下で５〜１０分間乾燥させた後、１％のＳＤＳに溶解する。

実施例８
「若い」再構成皮膚及び「加齢した」再構成皮膚と呼ばれる再構成皮膚に対する抗加齢複合体の効果の検討
再構成皮膚は、実施例５に記載の方法により調製した。基底膜の再構成を刺激する活性物質Ｂａｓａｌｉｎｅ（Ｒ）（改変させた麦芽タンパク質、Ｃｏｌｅｔｉｃａ、リヨン）を含む３種の活性物質からなる抗加齢複合体を、２．２５％濃度で浸漬培地に添加した、又は、添加しなかった（未処理コントロール）。この状態を１４日間保った。

免疫組織化学的な検討
１４日間培養した後、「コントロール」再構成皮膚及び「処理した」再構成皮膚は液体窒素中で凍結させ、クリオマイクロパート（低温維持装置、Ｍｉｃｒｏｍ５００Ｍ）を用いて低温で切片を作った。

全てのラミニン、５−ラミニン、ＩＶ型コラーゲン及びＶＩＩ型コラーゲンを、免疫組織化学的手法によってトレースした。ラミニンにはＮＣＬ−ＬＡＭＩＮＩＮを、ＩＶ型コラーゲンにはＮＣＬ−ＣＯＬＬ−ＩＶを、ＶＩＩ型コラーゲンにはＮＣＬ−ＣＯＬＬ−ＶＩＩを用いた。５−ラミニンの抗体にはカリニン（ｋａｌｉｎｉｎ）／ラミニンβ３を用いた。上記の抗体は全て、トレース用媒介剤であるジアミノベンジジン（ＤＡＢ）と結合したものであった。

上記の分子を証明するのに必要な操作（抗体分子の結合、洗浄、トレース等）は全て、免疫組織化学研究用の自動装置（Ｎｅｘｅｓ、Ｖｅｎｔａｎａ）を用いて行った。

再構成皮膚切片のスライドガラスをＡｘｉｏｐｈｏｔｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ（Ｚｅｉｓｓ）（４０倍）を用いて各抗体について作ったところ、これら切片は有機的構造を持った良質の基底膜であることが分かった。

その結果、再構成皮膚モデルは本検討を通して全てのラベル（全てのラミニン、ラミニン５、ＩＶ型コラーゲン及びＶＩＩ型コラーゲン）を表していることが示される。抗加齢複合体で処理した再構成皮膚の場合はより強く標識する。しかし、組織学的分析によっては若い皮膚と加齢した皮膚の真の差を見ることはできない。

「ドットブロット（Ｄｏｔ−Ｂｌｏｔ）」実験
第一段階において、コラーゲンは、０．５Ｎ酢酸培地中で４８時間４℃においてペプシン（２０ｍｇ／ｇ乾燥試料）により消化した後、再構成皮膚から抽出する。

１５，０００ｇで３０分間遠心分離した後、０．７ＭのＮａＣｌ溶液中で４℃において２時間かけて沈殿させ、１３，０００ｒｐｍで遠心分離し、Ｉ型コラーゲンを除去する。

上清に含まれるＩＶ型コラーゲンは、１．２ＭのＮａＣｌ溶液中で４℃において一晩かけて沈殿させ、１３，０００ｒｐｍで遠心分離して集める。

上清に含まれるＶＩＩ型コラーゲンは、ＴＣＡ／アセトン／ＤＴＴ混合物（Ｂｉｏｒａｄ）を用いて４℃において２時間かけて沈殿させた後、−２０℃において４５分間保ち、１３，０００ｒｐｍで３０分間遠心分離して集め、ＤＴＴ／アセトン中で遠心分離により洗浄する。

異なる型のコラーゲンを含む試料は、ＴＢＳバッファーに入れた後、ニトロセルロース膜に転写する。３％ウシ血清アルブミンを含むＴＢＳバッファーを用いて３０分間かけて飽和させた後、膜をＴＢＳバッファー中で洗浄して１時間室温でインキュベートし、一次抗体を含んだ溶液中で震盪する。０．０５％Ｔｗｅｅｎ（Ｒ）２０（ＩＣＩ）を含むＴＢＳバッファー中で洗浄した後、膜は、二次抗体中で１時間室温において震盪しながらインキュベートする。この後シグナルを、供給業者の提案通り増幅トレースキットＯｐｔｉ−４ＣＮｓｕｂｓｔｒａｔｅｋｉｔ（Ｂｉｏｒａｄ）を用いて増幅する。画像解析によるバンドの定量では、抗加齢活性物質がＩＶ型及びＶＩＩ型コラーゲンの合成に与える顕著な影響を明らかにすることはできない（感度の問題）。

リアルタイム定量ＰＣＲ実験
アクチン、ＩＶ型コラーゲン及びＶＩＩ型コラーゲンをコードしているｍＲＮＡの定量は、リアルタイム定量ＰＣＲ法によって再構成したモデルにおいて行った。これを行うために、ＩＶ型コラーゲンの特異的な部位を増幅することができるプライマー（２３１塩基対）及びＶＩＩ型コラーゲンの特異的な部位を増幅することができるプライマー（７６３塩基対）及びアクチンのシークエンスのプライマー（５４１塩基対）を用いた。

センスＩＶ型コラーゲン５’―ＧＴＡＣＴＧＣＡＡＣＣＣＴＧＧＴＧＡＴＧＴＣＴＧＣ―３’
アンチセンスＩＶ型コラーゲン５’―ＧＡＡＴＡＴＣＣＧＡＴＣＣＡＣＡＡＡＣＴＣＣＧＣＣ―３’

センスＶＩＩ型コラーゲン５’―ＧＣＣＡＣＡＧＧＡＴＡＣＡＧＧＧＴＴＴＣ―３’
アンチセンスＶＩＩ型コラーゲン５’―ＣＡＣＣＡＣＡＣＧＴＡＧＴＴＣＡＡＴＧＣ―３’

センスアクチンＧＴＧＧＧＧＣＧＣＣＣＣＡＧＧＣＡＣＣＡ
アンチセンスアクチンＣＴＣＣＴＴＡＡＴＧＴＣＡＣＧＣＡＣＧＡＴＴＴＣ

処理した及び未処理の再構成皮膚からのＲＮＡの抽出は、実施例７に記載のプロトコールに従って行った。

ＲＴ−ＰＣＲ反応は（逆転写ポリメラーゼ連鎖反応）は、「Ｏｐｔｉｃｏｎ」ｓｙｓｔｅｍ（ＭＪＲｓｅａｒｃｈ）を用いてリアルタイムＲＴ−ＰＣＲ法によって行う。

容器に導入した反応混合物（５０μＬ）は、各試料について以下の通りである。
−５ｎｇ／μＬ濃度のＲＮＡ１０μＬ
−上記で用いた様々なラベルのプライマー
−逆転写酵素及びＤＮＡポリメラーゼ酵素、標識剤ＳＹＢＲＧｒｅｅｎＩ（伸長の際にＤＮＡ二重らせんに挿入された発蛍光団）並びにＭｇＣｌ_２を含んだ反応混合物（キアゲン）

ＲＴ−ＰＣＲの条件は以下の通りである。
−逆転写：５０℃で３０分
−ＰＣＲ反応：［９４℃で１５秒、５６℃で３０秒及び７２℃で３０秒］を５０サイクル

混入がないこと及び増幅生成物の純度は、ＰＣＲ増幅生成物の融解曲線から分かる。ピークが２つあったり融解温度が正常でない生成物は除く。

分析及び計算方法
上記増幅したＤＮＡ中に取り込まれた蛍光を、ＰＣＲサイクルの間連続的に評価した。この方法により蛍光測定曲線がＰＣＲサイクルの関数として得られ、これより増幅したＤＮＡの相対量を求めることができる。

上記再構成皮膚中の細胞数を考慮するため、上記の結果は全て「ハウスキーピング遺伝子」として用いたシグナル「アクチン」に従属していると考えた。

上記実験によって、Ｃ（Ｔ）の測定閾値（サイクル閾値のこと）を０．０５〜０．０１の間の値であるＴについて固定し、その後測定の任意の単位をそれぞれの遺伝子について式：
Ｓｇｅｎｅ＜ｘ＞＝１０^７×（１／２）^{Ｃ（Ｔ）ｇｅｎｅ＜ｘ＞}
（Ｃ（Ｔ）ｇｅｎｅ＜ｘ＞は、遺伝子＜ｘ＞のＣ（Ｔ）の測定閾値（サイクル閾値）を示す）
によって計算する。

目的の遺伝子の値は、以下の割合：
Ｒ＝Ｓｇｅｎｅ＜ｘ＞／Ｓａｃｔｉｎ
の計算により、シグナル「アクチン」に従属していると考える。

上記割合を、処理した試料と未処理の試料とで比較する。その結果、加齢した再構成皮膚モデルにおいて、抗加齢複合体によりＩＶ型コラーゲン及びＶＩＩ型コラーゲンをコードするｍＲＮＡの発現が顕著に増加するということが分かる（ＩＶ型コラーゲンについて＋６５％、ｐ＜０．０５、ＶＩＩ型コラーゲンについて＋６３％、ｐ＜０．０５）。

実施例９
単層、再構成真皮及び再構成皮膚のＤＮＡアレイによる解析、「若い」モデル及び「加齢した」モデルと呼ばれるモデル間の比較
上記３つの細胞モデルを作るにあたって、同じ回数経代培養した同一のｃｅｌｌｓｔｏｃｋを用いる。

・実施例１に記載の方法で抽出した繊維芽細胞（３５才未満の及び５５才を超えるドナーをそれぞれ３人含むプールに由来する）は、ウシ血清を１０％、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ培地／ＨａｍＦ１２ｇｌｕｔａｍａｘ５０／５０（ｖ／ｖ）中でコンフルエンスまで単層培養した。上記によりマット状になったものをＴｒｉＲｅａｇｅｎｔ（Ｒ）（シグマ）中で集める。

・「若い」再構成真皮及び「加齢した」再構成真皮と呼ばれる再構成真皮は、アジ化ジフェニルホスホリル（ｄｉｐｈｅｎｙｌｐｈｏｓｐｈｏｒｙｌａｚｉｄｅ）により架橋した浮上したコラーゲンマトリックスに、繊維芽細胞４００，０００個（３５才未満の及び５５才を超えるドナーをそれぞれ少なくとも３人含むプールに由来し、実施例１に記載のプロトコールにより別々に抽出及び増幅したもの）を播種して調製する。上記再構成真皮は、ウシ血清を１０％、アスコルビン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦ（表皮成長因子）を最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−ｇｌｕｔａｍａｘ培地中で１５日間培養する。上記再構成真皮はＲｅａｇｅｎｔ（Ｒ）（シグマ）中で集める。

・「若い再構成皮膚」及び「加齢した再構成皮膚」と呼ばれる再構成皮膚は、アジ化ジフェニルホスホリル（ｄｉｐｈｅｎｙｌｐｈｏｓｐｈｏｒｙｌａｚｉｄｅ）により架橋した浮上したコラーゲンマトリックスに、繊維芽細胞４００，０００個（３５才未満の及び５５才を超えるドナーをそれぞれ少なくとも３人含むプールに由来し、実施例１に記載のプロトコールにより別々に抽出及び増幅したもの）を播種して調製する。上記のように調製した再構成真皮は、ウシ血清を１０％、アスコルビン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦ（表皮成長因子）を最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−ｇｌｕｔａｍａｘ培地中で１５日間培養する。ケラチノサイト（同一のドナープールに由来し、実施例１に記載のプロトコールにより別々に抽出及び増幅したもの）は、再構成真皮あたり４００，０００個の割合で播種する。上記培養物は、ＨｙｃｌｏｎｅＩＩウシ培地を１０％、アスコルビン酸−２−リン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦを最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ヒドロコルチゾンを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、ウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を最終濃度０．１２ＵＩ／ｍＬ、アイスプレルを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、トリヨードチロニンを最終濃度２×１０^−９Ｍ、アデニンを最終濃度２４．３μｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−Ｇｌｕｔａｍａｘ／ＨａｍＦ−１２（３／１ｖ／ｖの割合）培地でできた増殖培地中で１週間培養を続ける。このようにすると再構成皮膚が発生し、この後、ウシ血清、ヒドロコルチゾン、アイスプレル、トリヨードチロニン及びウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を除く以外は上記と同じ培地中で更に２週間培養する。上記再構成皮膚はＴｒｉＲｅａｇｅｎｔ（Ｒ）（シグマ）中で集める。

ｃＤＮＡアレイ
−簡潔には、上記試料のＲＮＡを（液体窒素中でバイオプルベライザー（三次元モデル用のバイオプルベライザー）を用いてすりつぶした後で）抽出し、ＴｒｉＲｅａｇｅｎｔ（Ｒ）の供給業者のプロトコールに従って精製する（ＤＮＡを完全に除去する）。
−精製したＲＮＡについて定性分析及び定量分析を行う。
−次の段階として、ＡｔｌａｓＰｕｒｅ（クロンテック）のプロトコールに従い、メッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）のｐｏｌｙ（Ａ）末端をビオチン化オリゴ（ｄＴ）プライマーとハイブリダイゼーションさせ、ストレプトアビジンビーズ上に選択的に捕獲することにより、ｍＲＮＡのプールを精製した。［α^３３Ｐ］−ｄＡＴＰの存在下で、アレイ上に固定されているシークエンスに特異的なプライマーのプールを用いて、ｐｏｌｙ（ｄＴ）のビーズ上に連結したｍＲＮＡを逆転写することにより、^３３Ｐで複数標識したＤＮＡプローブを作成した。上記標識したプローブは、排除カラムクロマトグラフィー（ｅｘｃｌｕｓｉｏｎｃｏｌｕｍｎｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）を用いて精製し、その性質及び当量を液体シンチレーション計数法で評価した。
−上記ＣｕｓｔｏｍＡＴＬＡＳ膜を前処理した後、それぞれの膜に固定されているｃＤＮＡを対応する標識したプローブとハイブリダイズさせた（６８℃、一晩）。この後、分析する前に薄膜を洗浄した。
−ＣｙｃｌｏｎｅＰｈｏｓｐｈｏｒｉｍａｇｅｒ（Ｐａｃｋａｒｄｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔ；３時間、この後取得するために７２時間）及びＱｕａｎｔＡｒｒａｙ（Ｐａｃｋａｒｄ、ｓｏｆｔｗａｒｅ）を用いて、スポットの放射能をオートラジオグラフィーにより分析して定量した。
−ドナーが若かったり高齢であったりといった様々な実験条件での目的の遺伝子を同定した。単層条件、単細胞三次元条件及び多細胞三次元条件下における結果を、加齢したモデルと若いモデルの差異の百分率で示す。

より具体的に細胞外マトリックスのタンパク質に興味を持つならば、例えば、フィブロネクチン前駆体をコードするＲＮＡの量が、単層及び「加齢した再構成真皮」と呼ばれる再構成真皮において、「若い」と呼ばれるモデルと比較して増加する（単層で２．１倍、再構成真皮で１．８倍）ことは上記から説明できた。一方、「加齢した再構成皮膚モデル」と呼ばれる再構成皮膚モデルでは「若い再構成皮膚モデル」と呼ばれる再構成皮膚モデルに対して、ＲＮＡ量が明らかに減少する（１．７５）。再構成皮膚モデルでの結果は、様々な年齢のドナー由来の皮膚試料について行った免疫組織化学的分析の結果を完全に裏付けるものである。単層においてフィブロネクチン前駆体のＲＮＡが増加するという結果は、ドナーの年齢、及び、単層培養した繊維芽細胞の経代培養の回数に相関してｍＲＮＡが増加するということを同様に示すｍＲＮＡの分析検討結果と一致する。上記のことから、どの細胞モデルを使用するかによって結果は異なり、かつ、単層モデル又は単細胞三次元モデルは異種の細胞による相互作用を考慮に入れていないので、これらから結果を完全に予測できるものではないことが完全に説明される。

また、上記以外の多くの遺伝子が繊維芽細胞単層、再構成真皮及び再構成皮膚の間で様々に発現しているということ、及び、上記３種のモデルにおける上記遺伝子の発現レベルが常に等しいというわけではないということも説明できた。

本発明の方法により、皮膚が加齢する間に様々な分子が合成されていることがよく把握でき、かつ、加齢する間に観察される変化を防止又は制限することを目的とする活性源をスクリーニングできる。

実施例１０
「若い再構成皮膚」及び「加齢した再構成皮膚」と呼ばれる再構成皮膚モデルにおけるフィブロネクチンをコードするｍＲＮＡのノーザンブロットによる分析
コラーゲン−ＧＡＧ−キトサンマトリックスに繊維芽細胞（３５才未満の及び５５才を超えるドナーをそれぞれ少なくとも３人含むプールに由来し、実施例１に記載のプロトコールにより別々に抽出及び増幅したもの）を４００，０００個播種して、ウシ血清を１０％、アスコルビン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦ（表皮成長因子）を最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ及びゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−ｇｌｕｔａｍａｘ培地中で１５日間培養し、若い再構成皮膚及び加齢した再構成皮膚を調製する。ケラチノサイト（同一のドナープールに由来し、実施例１に記載のプロトコールにより別々に抽出及び増幅したもの）は、再構成真皮あたり４００，０００個の割合で播種する。上記培養物は、ＨｙｃｌｏｎｅＩＩウシ血清を１０％、アスコルビン酸−２−リン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦを最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ヒドロコルチゾンを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、ウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を最終濃度０．１２ＵＩ／ｍＬ、アイスプレルを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、トリヨードチロニンを最終濃度２×１０^−９Ｍ、アデニンを最終濃度２４．３μｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−Ｇｌｕｔａｍａｘ／ＨａｍＦ−１２（３／１ｖ／ｖの割合）培地でできた増殖培地中で１週間培養を続ける。このようにすると再構成皮膚が発生し、この後、ウシ血清、ヒドロコルチゾン、アイスプレル、トリヨードチロニン及びウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を除く以外は上記と同じ培地中で更に２週間培養する。上記試料はＴｒｉＲｅａｇｅｎｔ（Ｒ）（シグマ）中で集める。

総ＲＮＡを実施例７に記載のプロトコールにより抽出する。デンシトメトリーを用いて２６０ｎｍにてＲＮＡを定量した後、溶液をＲＮＡが１μｇ／μＬになるように調整する。試料を各３〜１０μｇずつアガロース／ホルムアルデヒドのゲルの上にのせて分離した。この後、ＲＮＡを毛管現象によりＨｙｂｏｎｄ−Ｎｎｙｌｏｎ（アマシャム）膜上に一晩かけて転写した。８０℃にて９０分間加熱してＲＮＡをナイロンに共有結合させた。この後上記膜は、０．１ｍｇ／ｍＬのＥｘｐｒｅｓｓＨｙｂ（クロンテック）８ｍＬ中で６８℃にて２０分間プレハイブリダイズさせ、標識したプローブの存在下で６８℃にて一晩ハイブリダイズさせた。インキュベート後、上記膜を、１％ＳＤＳを含む２倍濃縮ＳＳＣ溶液で６８℃にて３０分間４回、０．５％ＳＤＳを含む１０倍希釈ＳＳＣ溶液で６８℃にて１回、最後に２倍濃縮ＳＳＣ溶液で洗浄した。スポットの放射能をｐｈｏｓｐｈｏｉｍａｇｅｒ（ＰａｃｋａｒｄＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）を用いて直接測定することによりＲＮＡを定量できる。結果を、アクチンシグナルに対する発現量の百分率で表す。フィブロネクチンをコードするｍＲＮＡをノーザンブロットによって定量分析することにより、「若い」再構成皮膚と呼ばれる再構成皮膚と比較して、「加齢した」再構成皮膚と呼ばれる再構成皮膚モデルにおけるｍＲＮＡが減少していること（ファクター２）を明らかにすることができる。

実施例１１
「若い」再構成皮膚及び「加齢した」再構成皮膚と呼ばれる再構成皮膚モデルにおけるＶＩＩ型コラーゲンのウェスタンブロットによる分析
コラーゲン−ＧＡＧ−キトサンマトリックスにＰ２（経代培養２回目、すなわちトリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）による２回目の増幅）の「若い」細胞及びＰ１２（経代培養１２回目、すなわちトリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）による１２回目の増幅）の「加齢した」細胞（両細胞は、実施例１に記載のプロトコールにより別々に抽出及び増幅したもの）を４００，０００個播種して、ウシ血清を１０％、アスコルビン酸−２−リン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦ（表皮成長因子）を最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ及びゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−ｇｌｕｔａｍａｘ培地中で１５日間培養し、「若い」再構成真皮及び「加齢した」再構成真皮と呼ばれる再構成真皮を調製する。Ｐ１（経代培養１回目、すなわちトリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）による１回目の増幅）の「若い」と呼ばれるケラチノサイト及びＰ３の「加齢した」と呼ばれるケラチノサイトを実施例１に記載のプロトコールにより別々に抽出及び増幅し、再構成真皮あたり４００，０００個の割合で播種する。上記培養物は、ＨｙｃｌｏｎｅＩＩウシ血清を１０％、アスコルビン酸−２−リン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦを最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ヒドロコルチゾンを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、ウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を最終濃度０．１２ＵＩ／ｍＬ、アイスプレルを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、トリヨードチロニンを最終濃度２×１０^−９Ｍ、アデニンを最終濃度２４．３μｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−Ｇｌｕｔａｍａｘ／ＨａｍＦ−１２（３／１ｖ／ｖの割合）培地でできた増殖培地中で１週間培養を続ける。このようにすると再構成皮膚が発生し、この後、ウシ血清、ヒドロコルチゾン、アイスプレル、トリヨードチロニン及びウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を除く以外は上記と同じ培地中で更に２週間培養する。

ＶＩＩ型コラーゲンを実施例８に記載のプロトコールにより抽出し、電気泳動バッファー（０．５ＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ６．８、１０％グリセリン、２％ＳＤＳ、５％メルカプトエタノール）に溶解する。上記試料を９５℃で５分間加熱する。５％ＳＤＳ−ＰＡＧＥでサイズによって分ける。フッ化ビニリデン樹脂の膜に転写する。精製ＶＩＩ型コラーゲンが抽出した試料及び分子量の標準品と平行になるようにする。

転写後、膜をブロッキングバッファー（１５ｎＭＮａＣｌ、２０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ、０．５％Ｔｗｅｅｎ２０、３％ＢＳＡ、ｐＨ７．４）中で１時間インキュベートする。ＶＩＩ型コラーゲン一次抗体（ポリクローナル、ウサギ、１／１０００）をＰＢＳ／ＢＳＡの１％溶液に添加する。室温にて２時間経過後、膜をブロッキングバッファー中で洗浄し、二次標識抗体（ＨＲＰ（ホースラディッシュペルオキシダーゼ）をコンジュゲートさせた抗ウサギＩｇＧ）と共に１時間室温でインキュベートする。ＰＢＳ中で洗浄した後、膜を３，３’−ジアミノベンジジン四塩酸塩溶液で現像する。標識が弱い場合には、増幅用キット（Ｂｉｏｒａｄ）を用い、その後トレースキットＯｐｔｉ−４ＣＮＳｕｂｓｔｒａｔｅｋｉｔ（Ｂｉｏｒａｄ）を用いることができる。

トレース後、膜を水で２、３分間洗浄して吸取紙にはさんで乾燥させる。

バンドの濃さを画像解析によって調べると、様々な年齢の試料からの抽出物に含まれるＶＩＩ型コラーゲンの量が著しく減少していることが分かる。

実施例１２
「若い」モデル及び「加齢した」モデルと呼ばれるモデルである再構成表皮との比較における、単層のケラチノサイトのＤＮＡアレイによる分析
上記３つの細胞モデルを作るにあたって、同じ回数経代培養した同一のｃｅｌｌｓｔｏｃｋを用いる。

実施例１に記載の方法で抽出したケラチノサイト（３５才未満の及び５５才を超えるドナーをそれぞれ３人含むプールに由来する）を、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ加えたＫ−ＳＦＭ（Ｇｉｂｃｏ）培地中でコンフルエンスまで単層培養した。上記によりマット状になったものをＴｒｉＲｅａｇｅｎｔ（Ｒ）（シグマ）中で集める。

実施例１に記載の方法で経代培養１回目（トリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）による１回目の増幅）まで増幅した「若い」と呼ばれるケラチノサイト（３５才未満の及び５５才を超えるドナーをそれぞれ３人含むプールに由来する）を、ＨｙｃｌｏｎｅＩＩウシ血清を１０％、アスコルビン酸−２−リン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦ（表皮成長因子）を最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ヒドロコルチゾンを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、ウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を最終濃度０．１２ＵＩ／ｍＬ、アイスプレルを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、トリヨードチロニンを最終濃度２×１０^−９Ｍ、アデニンを最終濃度２４．３μｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−Ｇｌｕｔａｍａｘ／ＨａｍＦ−１２（３／１ｖ／ｖの割合）培地中の、繊維芽細胞層下にあらかじめ栄養分を播種してある容器型のＢｏｙｄｅｎ挿入片（空隙率０．４μｍ、直径２５ｍｍの膜）に４×１０^６個の割合で播種して３〜８日間浸漬培養して再構成表皮を調製する。

上記のように培養したケラチノサイトはこの後、ウシ血清、ヒドロコルチゾン、アイスプレル、トリヨードチロニン及びウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を除く以外は上記浸漬培養に用いたものと同じ培地中で気液界面に１２〜１８日間おく。

実験の最後に、上記挿入片中のケラチノサイトの単層及び再構成表皮は掻き取って集め、ＴｒｉＲｅａｇｅｎｔ（Ｒ）（シグマ）中に入れ、クロロホルムで抽出する。１２，０００ｇ、１５分間、４℃で遠心分離した後の上層にＲＮＡが、下層にＤＮＡが、界面にタンパク質が確認できる。

実施例９に記載の方法でｃＤＮＡアレイを作る。結果として以下が得られる（ＲＥ：相対発現単位）。

本発明の方法により、表皮が加齢する間に様々な分子が合成されていることがよく把握でき、かつ、表皮が加齢する間に観察される変化を防止又は制限することを目的とする活性源をスクリーニングできる。

実施例１３
化粧品用の活性物質を「若い」再構成皮膚及び「加齢した」再構成皮膚と呼ばれる再構成皮膚に局所的に塗布した場合の効果の試験
「若い」繊維芽細胞と呼ばれる繊維芽細胞（胸部の生検材料から抽出）及び「加齢した」繊維芽細胞と呼ばれる繊維芽細胞（美容整形後に得た顔の生検材料から抽出）６００，０００個を、実施例１に記載の方法で抽出して経代培養６回目（トリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）による６回目の増幅）まで増幅し、ｈｙｃｌｏｎｅＩＩウシ血清を１０％、アスコルビン酸−２−リン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦ（表皮成長因子）を最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ及びゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−Ｇｌｕｔａｍａｘ培地中のコラーゲン−グリコサミノグリカン−キトサンを基盤とする真皮の基質の上に播種して２１日間培養する。

次に、「若い」ケラチノサイトと呼ばれるケラチノサイト（胸部の生検材料から抽出）及び「加齢した」ケラチノサイトと呼ばれるケラチノサイト（美容整形後に得た顔の生検材料から抽出）６００，０００個を、実施例１に記載の方法で増幅し、経代培養１回目（トリプシン処理（ｔｒｙｐｓｉｎａｔｉｏｎ）による１回目の増幅）の段階で、ＨｙｃｌｏｎｅＩＩウシ血清を１０％、アスコルビン酸−２−リン酸を最終濃度１ｍＭ、ＥＧＦを最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ、ヒドロコルチゾンを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、ウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を最終濃度０．１２ＵＩ／ｍＬ、アイスプレルを最終濃度０．４μｇ／ｍＬ、トリヨードチロニンを最終濃度２×１０^−９Ｍ、アデニンを最終濃度２４．３μｇ／ｍＬ、ペニシリンを最終濃度１００ＵＩ／ｍＬ、アンホテリシンＢを最終濃度１μｇ／ｍＬ、ゲンタマイシンを最終濃度２０μｇ／ｍＬ加えたＤＭＥＭ−Ｇｌｕｔａｍａｘ／ＨａｍＦ−１２（３／１ｖ／ｖの割合）培養増殖培地中の真皮等価物（ｄｅｒｍａｌｅｑｕｉｖａｌｅｎｔｓ）上に播種して、５日間浸漬培養する。

上記培養物はこの後、ウシ血清、ヒドロコルチゾン、アイスプレル、トリヨードチロニン及びウムリン（ｕｍｕｌｉｎ）を除く上記浸漬培養に用いた培地から構成される分化用培地中で気液界面に１４日間おく。

プラセボの化粧製剤及び活性物質を３％含んだ化粧製剤８μＬを、「若い再構成皮膚」及び「加齢した再構成皮膚」と呼ばれる再構成皮膚に塗布する。分化用培地中で２日間培養した後、上記化粧製剤を再構成皮膚から非常に注意深く除去し、同量の新製剤と置き換える。この操作を７回繰り返す、すなわち更に１４日間培養する。実験の最後に、上記化粧製剤を再構成皮膚から非常に注意深く除去し、再構成皮膚をＰＢＳ中で洗浄しＴｒｉＲｅａｇｅｎｔ（Ｒ）（シグマ）中に浸漬する。製剤中の化粧品用の活性物質で処理することによる効果を実施例９に記載のプロトコールに従い「ｃＤＮＡアレイ」法を用いて評価する。

実施例１４
化粧品用の活性物質を「若い」再構成真皮及び「加齢した」再構成真皮と呼ばれる再構成真皮のモデルにおいて全身に塗布した場合の効果の試験
実施例１２から、フィブロネクチン含量が、加齢した細胞と呼ばれる細胞を用いたモデルにおいて、加齢した細胞を用いたモデルに対して減少するということが分かる（４３％減少）。

実施例９に記載の方法によって再構成真皮を作る。Ｄｅｌｉｎｅｒ（Ｒ）（トウモロコシ抽出物、Ｃｏｌｅｔｉｃａ、リヨン）を培地中に２％で用い、培地は２日毎に交換する。培地を集め、実施例８に記載の方法によるドットブロット法に続いて画像解析を行い、フィブロネクチン含量を定量する。フィブロネクチン含量は２５％増加する。このことから、Ｄｅｌｉｎｅｒ（Ｒ）は実際、加齢に影響を受けるフィブロネクチン合成の減少を防止することができる。

Claims

少なくとも１つの加齢する間に変化が生じるトランスクリプトームパラメーターに結果的に生じた変化を同定する方法であって、
ａ）（ｉ）ヒアルロン酸、コラーゲン、フィブロネクチン又は繊維素からなるゲル、薄膜又は膜、又は（ｉｉ）コラーゲンから作られる多孔性マトリックスから選択され、かつ間質細胞又は上皮細胞からなるマトリックス担体からなる三次元組織モデルで培養された若い生細胞からｍＲＮＡを回収すること
ｂ）工程ａ）で定義された三次元組織モデルで培養された加齢した生細胞からｍＲＮＡを回収すること
ｃ）若い生細胞から回収したｍＲＮＡの発現レベルと、加齢した細胞から回収したｍＲＮＡの発現レベルとを、前記ｍＲＮＡで行われる比較トランスクリプトーム解析により比較すること
ｄ）細胞の加齢に対して更に変化が生じる少なくとも１つのトランスクリプトームパラメーターを同定するために、前記ｍＲＮＡで行われる比較トランスクリプトーム解析を行うことにより、若い生細胞のトランスクリプトームと加齢した生細胞のトランスクリプトームとの少なくとも一つの差を結果的に同定することを可能にすること
を特徴とする方法。
前記組織モデルが、（ｉ）ヒアルロン酸、コラーゲン、フィブロネクチン又は繊維素からなるゲル又は膜、又は（ｉｉ）コラーゲンから作られる多孔性マトリックスから選択され、かつ間質細胞からなるマトリックス担体からなる再構成真皮である請求項１記載の方法。
前記組織モデルが、ヒアルロン酸、コラーゲン、フィブロネクチン又は繊維素からなる薄膜又は膜から選択され、かつ上皮細胞からなるマトリックス担体からなる再構成表皮である請求項１記載の方法。
前記組織モデルが、（ｉ）ヒアルロン酸、コラーゲン、フィブロネクチン又は繊維素からなるゲル又は膜、又は（ｉｉ）コラーゲンから作られる多孔性マトリックスから選択され、かつ間質細胞からなるマトリックス担体からなる再構成絨毛膜である請求項１記載の方法。
前記組織モデルが、ヒアルロン酸、コラーゲン、フィブロネクチン又は繊維素からなる薄膜又は膜から選択され、かつ上皮細胞からなるマトリックス担体からなる再構成上皮である請求項１記載の方法。
前記組織モデルが、上皮部分と真皮部分を有する再構成皮膚であり、上記再構成皮膚が、（ｉ）ヒアルロン酸、コラーゲン、フィブロネクチン又は繊維素からなるゲル又は膜、又は（ｉｉ）コラーゲンから作られる多孔性マトリックスから選択され、かつ真皮部分にある間質細胞と上皮部分にある上皮細胞からなるマトリックス担体からなる請求項１記載の方法。
前記組織モデルが、上皮部分と絨毛膜部分を有する再構成粘膜であり、上記再構成粘膜が、（ｉ）ヒアルロン酸、コラーゲン、フィブロネクチン又は繊維素からなるゲル又は膜、又は（ｉｉ）コラーゲンから作られる多孔性マトリックスから選択され、かつ絨毛膜部分にある間質細胞と上皮部分にある上皮細胞からなるマトリックス担体からなる請求項１記載の方法。
工程ａ）の若い細胞は、４５才未満のドナー由来の生検材料に由来する細胞、細胞の機能別に予め決定された回数未満のｉｎｖｉｔｒｏ経代培養を受けた細胞、又は、太陽放射にあまりさらされていない生検材料に由来する細胞のいずれかであることを特徴とする請求項１に記載の方法。
若い細胞が、胴体、胸部、腹部又は包皮に由来することを特徴とする請求項１に記載の方法。
加齢細胞は、４５才を超えるドナー由来の生検材料に由来する細胞、細胞の機能別に予め決定された回数を超えるｉｎｖｉｔｒｏ経代培養を受けた細胞、又は、太陽にさらされている部位から採取した生検材料に由来する細胞のいずれかであることを特徴とする請求項１に記載の方法。
加齢細胞が、手、顔、首又は襟首に由来することを特徴とする請求項１に記載の方法。
加齢細胞は、１か月以上の長期間に渉って培養することにより人為的に加齢させた１種以上の細胞を含む三次元組織モデルにおいて統合された若い細胞であることを特徴とする請求項１に記載の方法。
前記若い細胞又は加齢細胞は少なくとも一体のヒト又は少なくとも一体の動物由来の細胞であることを特徴とする請求項１に記載の方法。
前記トランスクリプトーム解析は以下の：
ＲＮＡアレイ、ｃＤＮＡアレイ、逆転写多重ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ−ｍｕｌｔｉｐｌｅｘ）、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）又はリアルタイム逆転写ポリメラーゼ連鎖反応（リアルタイムＲＴ−ＰＣＲ）
から選択されることを特徴とする請求項１に記載の方法。
前記マトリックス担体が間質細胞及び上皮細胞からなり、前記間質細胞が繊維芽細胞であり、前記上皮細胞がケラチノサイトであることを特徴とする請求項１に記載の方法。
前記モデルは、正常若しくは異常細胞、又は、細胞系由来の細胞を含むことを特徴とする請求項１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４又は１５に記載の方法。
前記上皮部分が、上皮細胞、色素細胞、免疫担当細胞、神経細胞又はこれらのすべての細胞からなることを特徴とする請求項１１に記載の方法。
用いられる前記組織モデルは、内皮細胞（ＥＣ）、免疫細胞、樹状細胞、脂肪細胞、リンパ球、マクロファージ、脂腺細胞、又は、皮膚の付属器から選択される少なくとも１種更に組み込まれたモデルを含むことを特徴とする請求項１に記載の方法。
加齢する間に変化が生じるトランスクリプトームパラメーターを少なくとも１つ変換することができる潜在的活性物質を少なくとも１つスクリーニングする方法であって、
請求項１に記載の方法によりトランスクリプトームにおける差を同定すること、及び、加齢する間に変化が生じる細胞の代謝における差を変換することができる物質をスクリーニングすることからなる方法。
ａ）対照として用いられる請求項１に記載の若い細胞を三次元組織モデルで培養し、前記若い細胞からｍＲＮＡを回収すること
ｂ）前記若い細胞のトランスクリプトームに対して変化が生じるトランスクリプトームパラメーターを持った請求項１に記載の加齢細胞を、前記加齢細胞における細胞の代謝に対して前記潜在的活性物質を結果的に作用させるのに十分な時間、少なくとも１つの潜在的活性物質の存在下で三次元組織モデルで培養して、前記加齢細胞からｍＲＮＡを回収すること
ｃ）結果的に活性を持つことになる物質の存在下又は非存在下で培養した前記加齢細胞のｍＲＮＡについて、部分的に又は完全に、トランスクリプトーム解析を行うこと
ｄ）ｃ）で行った解析と、前記潜在的活性物質の非存在下で培養したａ）に記載の若い生細胞のｍＲＮＡについての、部分的な又は完全な、トランスクリプトーム解析とを比較すること
ｅ）ｃ）及びｄ）での解析の比較に続いて、前記加齢細胞のトランスクリプトームパラメーターを少なくとも１つ変換することができる活性物質を少なくとも１つ結果的に同定すること
を含む、加齢する間に変化が生じる生物学的パラメーターを少なくとも１つ変換することができる潜在的活性物質を少なくとも１つ同定する方法。