JP2007511547A - Bcl−2ファミリ−に属するタンパク質およびそのフラグメント、ならびに癌患者におけるそれらの使用 - Google Patents
Bcl−2ファミリ−に属するタンパク質およびそのフラグメント、ならびに癌患者におけるそれらの使用 Download PDFInfo
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Abstract
Description
本発明は、概して、癌の予防と治療の分野に関係する。具体的には、抗癌性免疫応答を誘発することができる単離されたアポトーシス調節タンパク質またはそのペプチドフラグメントが提供される。特に、Bcl−2タンパク質ファミリーに属するそのようなタンパク質、およびその免疫原性ペプチドフラグメントの、がんの処置、診断、および予後診断における使用が提供される。
広範囲の種々の化学療法薬に対する癌細胞による耐性発現は、癌の処置の成功への大きな障害となっている。薬剤耐性は、広い範囲の癌細胞のタイプにおいて観察されている。多くの機構が薬剤耐性の原因となっており、これには、薬剤の不活化、細胞膜ポンプによる薬剤の押し出し、薬剤標的の変異、およびアポトーシスを開始できないことが含まれる。アポトーシスの妨げは、ミトコンドリア膜電位の保持、およびサイトカイン刺激を含む種々の状態によって起こり得る。
本発明は、MHCクラスI制限ペプチドを、MHCクラスI HLA分子に結合することができ、それによって癌疾患に罹患している患者においてCTL免疫応答を誘発することができる、サービビン以外の種々のクラスのアポトーシス調節タンパク質、すなわち、Bcl−2タンパク質ファミリーから導くことができることの発見に基づく。これらの発見は、細胞によってインビボでTRA機能を有しているペプチドにプロセシングされるBcl−2タンパク質ファミリーに属するタンパク質がTRAP分子として作用することを示している。これらの発見により、癌疾患の制御に一般的に適応することができる新規の治療アプローチおよび診断アプローチへの道が開かれた。
本発明のおもな目的は、癌の予防または処置において医薬として使用するための、Bcl−2タンパク質ファミリーに属する単離されたタンパク質、またはその免疫原性活性のあるペプチドフラグメントを提供することである。
i)本明細書中に記載されるワクチン組成物のいずれか、および/または
ii)本明細書中に記載されるBcl−2タンパク質ファミリーに属するタンパク質のいずれか、および/または
iii)本明細書中に記載されるii)のタンパク質のペプチドフラグメントのいずれか、および/または
iv)ii)のタンパク質またはiii)のペプチドをコードする核酸のいずれか、
と、さらなる抗癌剤を含むキットにも関係する。
i)個体に由来する血液サンプルを提供する工程、
ii)Bcl−2タンパク質ファミリーに属するタンパク質またはそのペプチドフラグメントを提供する工程であって、上記タンパク質またはペプチドは、本明細書中に記載されるタンパク質またはペプチドのいずれかであり得る、工程。
iv)それによって、上記個体において上記タンパク質またはペプチドに対する免疫応答が惹起されているかどうかを決定する工程。
(材料および方法)
(1.患者)
末梢血リンパ球(PBL)を乳癌患者から採取した。PBLをLymphoprep分離器、HLA型(Department of Clinical Immunology,University Hospital,Copenhagen,Denmark)を使用して単離し、10%のDMSOを含むFCS中で凍結させた。いずれの患者にも、採血の前には免疫療法を行わなかった。
合成のペプチド(Invitrogen,Carlsbad,CA,USA)の、[35S]−メチオニンで代謝によって標識したHLA−A2分子に対する結合親和性を、以前に記載されているように、アセンブリアッセイにおいて測定した。このアッセイは、TAP欠損細胞株T2から細胞溶解の際に放出される、空のHLA分子のペプチドに媒介される安定化に基づく。安定に折り畳まれたHLA分子を、HLAクラスI特異的立体構造依存性mAb W6/32を使用して免疫沈降させ、等電点(IEF)ゲル電気泳動によって分離した。MHC重鎖のバンドを、ImageGauge Phosphorimagerプログラム(FUJI photo film Co.,Carrollton,TX,USA)を使用して定量した。バンドの強度は、アッセイの間に回復したペプチドが結合したクラスI MHC複合体の量と直接関係している。したがって、HLA−A2の安定性の程度は、添加されたペプチドの結合親和性に直接関係している。HLA−A2の回復を、50、5、0.5、0.05μMの関連するペプチドの存在下で測定した。C50値を、最大の安定性の半分に十分なペプチド濃度として、それぞれのペプチドについて計算した。
ELISPOTアッセイの感度を高めるために、PBLを、分析の前にエキソビボで一回刺激した。0日目に、PBLまたは粉砕したリンパ節を融解させ、24ウェルプレート(Nunc,Denmark)において2ml/ウェルで、2×106個の細胞の濃度で、10μMのペプチドの存在下でX−vivo培地(Bio Whittaker,Walkersville,Maryland)、5%の熱不活化ヒト血清、および2mMのL−グルタミン中にプレートした。2日後、20IU/mlの組み換えインターロイキン−2(IL−2)(Chiron,Ratingen,Germany)を培養物に添加した。培養細胞を、12日目に、反応性についてELISPOTにおいて試験した。
ELISPOTアッセイを使用して、以前に記載された(4)ように、ペプチドエピトープ特異的インターフェロン−γ放出エフェクター細胞を定量した。簡単に説明すると、ニトロセルロース膜ボトム96ウェルプレート(MultiScreen MAIP N45,Millipore,Hedehusene,Denmark)を、抗IFN−γ抗体(1−D1K,Mebtech,Nacka,Sweden)でコーティングした。ウェルを洗浄し、X−vivo培地によってブロックし、細胞を種々の細胞濃度で二連で添加した。その後、ペプチドを各ウェルに添加し、プレートを一晩インキュベートした。翌日、培地を捨て、ウェルを洗浄した後、ビオチニル化二次抗体(7−B6−1−ビオチン、Mabtech)を添加した。プレートを2時間インキュベートし、洗浄し、そしてアビジン−酵素結合体(AP−アビジン、Calbiochem,Life Technologies)を各ウェルに添加した。プレートを室温で1時間インキュベートし、酵素基質であるNBT/BCIP(Gibco,Life Technologies)を各ウェルに添加し、室温で5〜15分間インキュベートした。反応を、濃い紫色のスポットが突然発生した時点で水道水で洗浄することによって停止させた。スポットをImmunoSpot(登録商標)Series 2.0 Analyzer(CTL Analyzers,LLC,Cleveland,US)を使用して数え、ペプチド特異的CTLの頻度を、スポットを形成する細胞の数から計算した。全てのアッセイを、各ペプチド抗原について三連で行った。
(HLA−A2に対するBcl−2由来ペプチドの結合)
Bcl−2タンパク質のアミノ酸配列を、最も可能性のあるHLA−A2ノナマーであるペプチドエピトープおよびデカマーであるペプチドエピトープについて、主要なHLA−A2特異的アンカー残基(2)を使用してスクリーニングした。13個のBcl−2由来ペプチドを合成し、HIV−1 pol476−484(ILKEPVHGV)(配列番号39)由来のHLA−A2高親和性ポジティブ対照エピトープとの比較によって、アセンブリアッセイによりHLA−A2に対する結合について試験した。アセンブリアッセイは、TAP欠損細胞株T2に対して種々の濃度のペプチドを負荷した後のクラスI分子の安定性に基づく。その後、正確に折り畳まれた安定なMHC重鎖を、立体構造依存性の抗体を使用して免疫沈降させた。クラスI MHC分子の安定性の程度は、図1に示すように、添加したペプチドの結合親和性に直接関係していた。クラスI MHC分子の最大回復量の半分の回復に必要なペプチド濃度(C50値)は、HIV−1 pol476−484については0.7μMであった(表1)。8個のBcl−2由来ペプチドは、ポジティブ対照とほぼ同じ高い親和性で結合した;Bcl224、Bcl85、Bcl222、Bcl218、Bcl220、Bcl214、Bcl124、およびBcl172(それぞれ、C50=0.7、1、1、2、1、3、1、および2μM)(表1)。ペプチドBcl80、Bcl208、およびBcl180は、中程度または弱い親和性でしか結合しなかった(それぞれ、C50=36.7、および20μM)。試験したペプチドのうちの2つ(Bcl216、Bcl200)は、HLA−A2には全く結合しなかった。この研究に含めたペプチドのリストを表1に示す:
ELISPOT IFN−γ分泌アッセイを使用して、本発明者らは、乳癌患者由来の末梢血T細胞中のBcl−2由来ペプチドに対する特異的T細胞応答の存在を試験した。この方法は、癌患者において腫瘍特異的CTLを同定する場合には、かねてより非常に有効である。
(概要)
本明細書中で、本発明者らは、無関係な腫瘍タイプ、すなわち、膵臓癌、AML、およびCLLに罹患している患者由来の末梢血中でのBcl−2に対する自発的なT細胞反応性について記載する。さらに、本発明者らは、これらのBcl−2反応性T細胞が実際にペプチド特異的細胞傷害性エフェクター細胞であることを示す。したがって、Bcl−2は、抗癌免疫療法ストラテジーについて、例えば、従来の放射線治療および化学療法との組み合わせにおいて、重要な、広く適用できる標的としての役割を担うことができる。
Bcl−2ファミリーには、アポトーシスの調節におけるいくつかの重要な役割が含まれており、これには、プロアポトーシス性分子、さらには抗アポトーシス性分子が含まれる。Bcl−2は、癌の病因および進行に関係している重要な細胞因子である。本研究において、本発明者らは、癌患者におけるBcl−2の自然界における細胞性の免疫原性について試験した。
(患者)
PBLを、Lymphoprep分離器HLA型(Department of Clinical Immunology,University Hospital,Copenhagen,Denmark)を使用して単離し、10%のDMSOを含むFCS中で凍結させた。いずれの患者にも、採血前には免疫療法は行わなかった。これらの全ての測定の前に患者からインフォームドコンセントを得た。末梢血リンパ球(PBL)を、第IV期疾患を定義する遠隔転移を有している進行性疾患を示している13人のHLA−A2ポジティブ乳癌患者から採取した。患者の大部分は、1つ以上の腫瘍部位を有していた(8/13人の患者)。前療法には、化学療法、内分泌療法、および放射線治療が含まれていた。8人の患者は、すでに化学療法によって処置されているが、5人の患者は内分泌療法が行われただけであり、研究に含められる前には化学療法は施されていなかった。さらに、限局性の手術可能な乳癌を有している12人のHLA−A2ポジティブ患者を含め、血液サンプルを、最初の外科手術および化学療法の前に採取した。さらに、PBLを、第IV期疾患を定義する遠隔転移のある進行性の疾患を示している2人のHLA−A2ポジティブ膵臓癌患者から採取した。最後に、10人のHLA−A2と新たに診断されたCLL患者、および3人のAML患者に由来するPBLを、治療の前に採取した。12人のHLA−A2ポジティブである健常な個体に由来するPBLを対照とした。
Granzyme B(GrB)ELISPOTアッセイを、記載されているように抗原特異的CTL細胞傷害性を測定するために使用した。簡単に説明すると、ニトロセルロースで閉止した96ウェルプレート(MultiScreen MAIP N45,Millipore)を、GrB捕捉抗体(Capture Antibody)(BD Biosciences,Brondby,Denmark)でコーティングした。ウェルを洗浄し、5%のヒト血清を含むX−vivo培地によってブロックした。細胞を種々の細胞濃度で添加した。その後、T2細胞とペプチドを各ウェルに添加し、プレートを4時間インキュベートし、培地を捨て、ウェルを洗浄した後、GrB検出抗体(Detection Antibody)(BD Biosciences)を添加した。プレートを2時間インキュベートし、洗浄し、そしてアビジン西洋ワサビペルオキシダーゼ(BD Biosciences)を各ウェルに添加した。プレートを室温で1時間インキュベートし、AEC基質試薬(Substrate Reagent)(BD Biosciences)を各ウェルに添加し、室温で5〜10分間インキュベートした。反応を、赤色のスポットが突然発生した時点で水道水で洗浄することによって停止させた。スポットを数え、ペプチド特異的CTLの頻度を、INF−γ ELISPOTと同様に計算した。全てのアッセイを、各ペプチド抗原について二連または三連で行った。
抗原特異的細胞を、Bcl208/HLA−A2でコーティングした磁気ビーズによって、以前に記載されたように単離した。ビオチニル化されたモノマー(ProImmune,Oxford,UK)をストレプトアビジンでコーティングされた磁気ビーズ(Dynabeads M−280,Dynal A/S,Oslo,Norway)に対して、2.5μgのモノマーを5×106個のビーズとともに40μlのPBS中で室温で20分間インキュベートすることによって結合させた。磁気複合体を、磁場(Dynal A/S,Oslo,Norway)においてPBS中で3回洗浄し、その後、5%のBSAを含むPBS中で1:10の割合で、PBLと混合し、非常に穏やかに1時間回転させた。磁気複合体と会合している抗原特異的CD8+T細胞を穏やかに3回洗浄した。単離した細胞を、5%のHSを含むX−vivo中に何度も再懸濁させ、2時間インキュベートし、その後、磁気ビーズを遊離させて細胞懸濁物から除去した。この単離した細胞を、48ウェルプレートにおいて5%のHSと、106個の抗CD28、抗CD3でコーティングした、4−1BBリ癌ド(4−1BBL)を発現する人工細胞ベースの抗原提示細胞(K32/41BBL)(Carl H.June博士,Department of Pathology and Laboratory Medicine,University of Pennsylvaniaから懇意によって譲り受けた)を含むX−vivo中で培養した。1日後、単離した20単位/mlのIL−2を添加し、5日目に、標的細胞を死滅させるこれらの細胞の能力を、標準的な51Cr放出アッセイにおいていずれかを試験した。
CTLクローンを、96ウェルプレート中での限界希釈により、5%のHSを含むX−vivo中に、40 IU/ml IL−2と1μg/mlのPHAの存在下で、フィーダー細胞として放射線照射したPBMCを使用して、単離した培養物から確立させた。新しい培地とIL−2を、3〜4日おきにクローンに添加した。
CTL媒介性細胞傷害性についての従来の[51Cr]放出アッセイを、別の場所に記載したように行った。標的細胞は、関連ペプチドを有しているT2細胞、または関連ペプチドを有していないT細胞、HLA−A2ポジティブ乳癌細胞株MDA−MB−231、およびHLA−A2ネガティブ乳癌細胞株ZR75−1であった。両方の乳癌細胞株は、逆転写PCRによって試験すると、Bcl−2を発現していた(データは示さない)。
(Bcl−2由来ペプチドに対するCTL応答)
Bcl−2特異的T細胞が白血病患者に由来するPBL中にも存在するかどうかを試験するために、本発明者らは、10人のHLA−A2ポジティブCLL患者、および3人のAML患者に由来するPBLを、2つのペプチドであるbcl208とbcl214に対する反応性について試験した。Bcl−2応答は、5人のCLL患者と、2人のAML患者に存在していた(図3)。さらに、本発明者らは、2人の膵臓癌患者に由来するPBLを試験し、いずれの患者もbcl208とbcl214ペプチドに対するCTL応答を有していたことを明らかにした(図3)。同様に、12人の健常なHLA−A2ポジティブ個体を試験した。驚くべきことに、健常な個体のうちの1人においてbcl208に対する弱いCTL応答が検出された(データは示さない)。
GrB ELISPOTを使用して、本発明者らは、PBL中で検出されたbcl−2特異的T細胞が細胞傷害機能を示すかどうかを評価した。したがって、3人のbcl−2反応性乳癌の患者(pt.no.:19、20、および22)に由来するPBLを、2つのエピトープbcl208とbcl214に対する反応性について分析した(図4)。3人の患者の全てにおいて、両方のペプチドに対する応答を検出することができ、頻度は、105個のPBLあたり、約50〜140個のペプチド特異的CTLであった。対照として、本発明者らは、IFN−γ ELISPOTにおいてbcl172に対する応答だけではなく、bcl208およびbcl214に対しての応答も検出できなかった患者(pt.no.:16)と健常な対照(h1)を含めた。予想したとおり、bcl208またはbcl214に対するGrBの放出は、乳癌患者no.16においても、さらには健常な対照においても、検出されなかった。
Bcl−2反応性CTLの機能をさらに特徴づけるために、これらの細胞を、記載された様に、HLA−A2/bcl208複合体でコーティングした磁気ビーズによって富化させた。細胞を、単離の前にエキソビボで1回、ペプチドで刺激した。単離した細胞のうちの少数を限界希釈によってクローン化した。増殖しつつある細胞を、ペプチドを伴わずに、またはbcl208を用いてパルスするかのいずれかによって、GrB ELISPOTにおいてT2細胞の認識について試験した。これらのクローンのうちのいくつかは、bcl208でパルスしたT2細胞の特異的な認識を示した(データは示さない)。しかし、残念なことに、本発明者らは、さらなる分析のためにこれらのクローンを拡大させることはできなかった。
(概要)
ここでは、本発明者らは、Bcl−XLが癌患者においてT細胞認識についての標的であることを明らかにする。したがって、本発明者らは、Bcl−XLに由来するペプチドエピトープに対する自発的に生じるHLA−A2およびHLA−A3制限細胞傷害性T細胞応答を、ELISPOTおよびフローサイトメトリー染色によって記載する。したがって、Bcl−2ファミリーのタンパク質に類似しているアポトーシス阻害因子に対する細胞性免疫応答は、癌において一般的な現象を示すようであり、結果として、タンパク質のこのグループは、抗癌免疫療法についての魅力的な共通の標的タンパク質を示す。さらに、細胞中でのこれらのタンパク質の高い発現は薬剤耐性に関係しているので、免疫療法の細胞傷害性化学療法との組み合わせは、癌を処置するための非常に魅力的な方法である。
抗アポトーシス性タンパク質Bcl−XLは、bcl−x遺伝子の長い選択的スプライシングされた形態から産生されるが、一方、プロアポトーシス性タンパク質Bcl−XSは、同じ遺伝子の短い選択的スプライシングされた形態に由来する。Bcl−XLは従来の形態の治療に対する耐性、および不良な予後に直接関係しているので、癌において重要な役割を果たしている。Bcl−XLの機能阻害によりアポトーシスのプロセスは回復し、新生物細胞は化学療法や放射線治療に対して敏感に反応するようになるが、高レベルのBcl−XLを発現するように癌細胞株を操作すると多剤耐性の表現型が生じる。Bcl−XLの高い発現は、AMLおよび多発性骨髄腫、さらには、膀胱癌、乳癌、膵臓癌、および黒色腫などの充実性腫瘍を含む多種多様な悪性腫瘍において報告されている。
(患者)
末梢血リンパ球(PBL)を、種々の起点の癌に罹患している患者から、および健常な対照から採取し、Lymphoprep分離器HLA型(Department of Clinical Immunology,University Hospital,Copenhagen,Denmark)を使用して単離し、10%のDMSOを含むFCS中に凍結させた。いずれの患者にも、採血前には免疫療法は行わなかった。これらの全ての測定の前に患者からインフォームドコンセントを得た。
乳癌患者に由来するPBLを、エキソビボで1回、関連するペプチドで刺激し、7日目に、CD8+細胞を、Dynal CD8ネガティブ単離キット(Dynal Biotech ASA,Oslo,Norway)を使用してPBLから単離した。得られたCD8+ポジティブT細胞培養物をPE couplet Pro5TM MHCペンタマー(ProImmune,Oxford,UK)で染色し、その後、フルオロクロム結合mAb:CD8−APCおよびCD3−FITC(Beckton Dickinson,Immunocytometry Systems,San Jose,CA)で抗体染色した。いずれの染色も、PBS+2%のFCS中で、暗所にて4℃で30分間行った。使用したPro5TMMHCペンタマー複合体は:HLA−A2/Bcl−XL173−182(YLNDHLEPWI)(配列番号42)およびHLA−A2/HIV−1 pol476−484(ILKEPVHGV)(配列番号39)であった。サンプルを、BD FACS ariaで、DIVAソフトウェア(BD,San Jose,CA)を使用して分析した。
(Bcl−XL由来ペプチドに対する自発的なCTL応答)
bcl−x遺伝子は選択的スプライシングによって2つのmRNAに転写される。抗アポトーシス性Bcl−XLは、長い選択的スプライシングによって産生され、一方、プロアポトーシス性Bcl−XSは、この遺伝子の短い選択的スプライシシング形態から誘導される。大きいBCL−XLのタンパク質産物は、挿入されている領域(アミノ酸126〜188)によってBcl−XSとは異なる。したがって、Bcl−XLが癌患者においてT細胞についての自然界での標的であるかどうかを調べるために、本発明者らは、主要なHLA−A2特異的アンカー残基を使用して推定のHLA−A2エピトープについてこの挿入されている領域(それぞれの末端に9個のアミノ酸を含む)を精査した。その後、本発明者らは7個のBcl−XL推定ペプチド(Bcl−XL158−166(EMQVLVSRI)(配列番号44)、Bcl−XL118−126(TAYQSFEQV)(配列番号43)、Bcl−XL173−182(YLNDHLEPWI)(配列番号42)、Bcl−XL165−174(RIAAWMATYL)(配列番号45)、Bcl−XL169−178(WMATYLNDHL)(配列番号46)、Bcl−XL161−170(VLVSRIAAWM)(配列番号48)、およびBcl−XL141−150(VAFFSFGGAL)(配列番号49))を合成し、種々の起点のHLA−A2+癌患者に由来するPBLを、これらのペプチドに対するELISPOTによって精査した。この方法は、癌患者の腫瘍特異的CTLを同定するために非常に有効であることが以前に示されている。実際、強く頻繁なCTL応答が、種々の起点の癌患者において試験したペプチドのうちの4つ(Bcl−XL173−182、Bcl−XL141−150、Bcl−XL161−170、およびBcl−XL165−174)に対して検出された(図6)。全体的には、18人のHLA−A2+乳癌患者のうちの15人が、これらの4個のBcl−XLペプチドのうち少なくとも1つに対して免疫応答を有していた(応答細胞は、105個の細胞あたり>25の抗原特異的細胞の平均数±標準偏差と定義する)。同様に、6人の試験した黒色腫患者のうちの4人、および2人の試験した膵臓癌患者のうちの1人は、これらの4つのペプチドの少なくとも1つに対して免疫応答を有していた。したがって、18人の試験した乳癌患者のうちの9人は、Bcl−XL173−181に対する免疫応答を有しており、一方、6人の試験したHLA−A2+黒色腫患者のうちの2人はこのペプチドに対する免疫応答を有していた(図6a)。18人の試験した乳癌患者のうちの4人はBcl−XL141−150に対する免疫応答を有しており、一方、本発明者らは、試験した2人の膵臓癌患者のうちの1人に由来するPBLにおいて応答を検出した。本発明者らは、試験した5人の黒色腫患者のいずれに由来するPBLにおいても、このペプチドに対する応答は検出できなかった(図6b)。同様に、本発明者らは、6人の乳がん患者、および1人の試験した膵臓癌患者に由来するPBLおいて、Bcl−XL161−170に対する応答を検出した(図6c)。最後に、4人の乳癌患者、2人の黒色腫患者、および1人の膵臓癌患者は、Bcl−XL165−174に対する応答を有していた(図6d)。対照として、12人の健常なHLA−A2+個体に由来するPBLを試験した。重要なことは、健常な個体のいずれにおいても、Bcl−XL173−182、Bcl−XL141−150、Bcl−XL161−170、またはBcl−XL165−174の全てに対する応答は検出されなかったことである(図6)。
GrB ELISPOTを使用して、本発明者らは、PBL中で検出されたBcl−XL特異的T細胞が細胞傷害機能を示すかどうかを評価した。したがって、2人のBcl−XL反応性乳癌の患者(pt.no.:35および36)に由来するPBLを、Bcl−XL173−182に対する反応性について分析した(図7)。いずれの患者においても、Bcl−XL173−182に対する応答を検出することができ、頻度は、3×105個の細胞あたり、約50〜100のペプチド特異的CTLであった。対照として、本発明者らは、IFN−γ ELISPOTにおいてBcl−XL141−150に対する応答だけではなく、Bcl−XL173−182に対しての応答も検出できなかった患者(pt.no.:17)を含めた。予想したとおり、Bcl−XL173−182に対するGrBの放出は、乳癌患者no.17においては検出されなかった。
乳癌患者由来のPBL中のBcl−XL173−182特異的CTLの自発的な発生を、さらにFACS分析およびPro5(登録商標)MHC Pentamer染色を使用して評価した。乳癌患者no.36に由来するPBLを、エキソビボで1回、ペプチドで刺激し、CD8ポジティブ細胞を単離した。この培養物をHLA−A2/BCL−Xペンタマー複合体で染色した。FACS分析により、CD8+T細胞の0.24%を構成するペンタマーポジティブT細胞の集団を容易に検出できることが明らかになった(図8a)。対照的に、同じCD8+T細胞は、ELISPOTによって分析すると、約1.4%のBcl−XL173−182特異的、IFN−γ分泌CD8+T細胞を示した。
本発明者らは、種々の起点のHLA−A2+癌患者に由来するPBLを、Bcl−XL118−126(TAYQSFEQV)(配列番号43)(図9a)およびBcl−XL169−178(WMATYLNDHL)(配列46)(図9b)に対して、ELISPOTによって精査して、種々の起点の癌患者において両方のペプチドに対する弱い自発的なCTL応答を同定した。
さらに、本発明者らは、主要なHLA−A3特異的アンカー残基を使用して推定のHLA−A3エピトープについて挿入されている領域(それぞれの末端に9個のアミノ酸を含む)を精査した。その後、本発明者らは2つのペプチド:Bcl−XL165−173(RIAAWMATY)(配列番号50)およびBcl−XL149−157(ALCVESVDK)(配列番号51)を合成した。次に、種々の起点のHLA−A3+癌患者に由来するPBLを、Bcl−XL165−173(RIAAWMATY)(配列番号50)およびBcl−XL149−157(ALCVESVDK)(配列番号51)ペプチドに対して、ELISPOTによって精査した。この方法は、癌患者の腫瘍特異的CTLを同定するために非常に有効であることが以前に示されている。実際、強く頻繁なCTL応答が、種々の起点の癌患者においてBcl−XL165−173(RIAAWMATY)(配列番号50)に対して検出された。本発明者らは、5人の試験した乳癌患者のうちの4人において、HLA−A3+PBL中でBcl−XL165−173に対する応答を検出することができ(応答細胞は、105個の細胞あたり>25の抗原特異的細胞の平均数±標準偏差と定義する)、4人の試験した黒色腫患者のうちの4人、および2人の試験した膵臓癌患者のうちの2人、さらには、4人の試験した多発性骨髄腫患者のうちの1人において、HLA−A3+PBL中でBcl−XL165−173に対する応答を検出することができた(図10)。重要なことは、本発明者らによっては、対照として本発明者らが試験した7人のHLA−A3+である健常な個体のいずれにおいても、応答は検出されなかったことである(図10)。
(概要)
ここでは、本発明者らは、Mcl−1が癌患者においてT細胞認識についての標的であることを明らかにする。したがって、本発明者らは、Mcl−1に由来するペプチドエピトープに対する自発的に生じるHLA−A1およびHLA−A3制限細胞傷害性T細胞応答を、ELISPOTによって記載する。
骨髄性細胞因子−1(Mcl−1)は、初期の単球の分化において発現され、そして未熟な骨髄性細胞へのトランスフェクションの際の生存を促進することができる、Bcl−2ファミリーの死亡を阻害するメンバーである。トランスジェニックマウスにおいては、Mcl−1は広い範囲の造血性の細胞型においては生存性を、そして骨髄性細胞の不死化を促進する。高いレベルのMcl−1は、前立腺癌、膵臓癌、黒色腫、乳癌、卵巣癌患者、および子宮頸部癌、さらには、B細胞慢性リンパ性白血病(B−CLL)を含む多数のヒトの癌について、さらには、AMLおよびALLにおいては再発の際に、報告されている。B−CLL患者においては、高いレベルのMcl−1は単独療法後には完全な緩解を得ることができないことと強く関係している。多発性骨髄腫においては、Mcl−1は、悪性細胞の生存において重要な役割を果たしている。これに関しては、その自身のプロモーターの制御下でmcl−1トランス遺伝子を発現するマウスが、高い頻度でB細胞新生組織形成を生じ、これは濾胞性リンパ腫からびまん性大細胞型リンパ腫にまでの範囲に及ぶことが明らかにされている。
Mcl−1が癌患者においてT細胞についての自然界での標的であるかどうかを調べるために、本発明者らは、主要なHLA−A3特異的アンカー残基を使用して、最も可能性の高いHLA−A3ノナマーのペプチドエピトープおよびデカマーのペプチドエピトープについてのタンパク質配列を試験した。その後、本発明者らは6個のMcl−1推定ペプチド(Mcl−1185−194(YLREQATGAK)(配列番号52)、Mcl−1293−302(SITDVLVRTK)(配列番号53)、Mcl−1267−276(LISFGAFVAK)(配列番号54)、Mcl−195−103(RLLFFAPTR)(配列番号55)、Mcl−1300−308(RTKRDWLVK)(配列番号56)、Mcl−1236−244(DIKNEDDVK)(配列番号57))を合成し、種々の起点のHLA−A3+癌患者に由来するPBLを、ELISPOTアッセイを利用して、これらのペプチドに対する反応性について精査した。この方法は、癌患者の腫瘍特異的CTLを同定するために非常に有効であることが以前に示されている。実際、強く頻繁なCTL応答が、種々の起点の癌患者において、2つのMcl−1由来ペプチドに対して検出された(Mcl−195−103およびMcl−1300−108)(図11)。全体的には、6人の試験したHLA−A3+乳癌患者のうちの5人が、これらの2つのMcl−1ペプチドのうちの1つに対して免疫応答を有していた。したがって、5人の乳癌患者は、Mcl95−103に対する応答を有しており(応答細胞は、105個の細胞あたり>25の抗原特異的細胞の平均数±標準偏差と定義する)、3人の患者はMcl−1300−308に対する応答を有していた(図11)。さらに、2人の試験したHLA−A3+膵臓癌患者のうちの2人は、Mcl−195−103ペプチドに対して免疫応答を有しており、一方、これらのうちの1人は、Mcl−1300−308に対しても免疫反応を有していた。さらに、本発明者らは、B−CLLに罹患している6人の患者に由来するPBLを試験し、これらの患者のうちの2人においてMcl−195−103に対する応答を同定した。対照として、10人の健常なHLA−A3+個体に由来するPBLを試験した。重要なことは、健常なドナーのいずれにおいても、Mcl−195−103またはMcl−1300−308のいずれに対しても応答は検出されなかったことである(図11)。同様に、癌患者または健常な対照のいずれにおいても、別の4個のMcl−1に由来するペプチドのいずれに対する応答も検出されなかった(データは示さない)。
Mcl−1が癌患者においてT細胞についての自然界での標的であるかどうかを調べるために、本発明者らは、主要HLA−A1特異的アンカー残基を使用して、最も可能性の高いHLA−A1ノナマーのペプチドおよびデカマーのペプチドエピトープについてのタンパク質配列を試験した。その後、本発明者らは4個のMcl−1推定ペプチド(Mcl−1166−175(PAEEEEDDLY)(配列番号58)、Mcl−1121−129(SPEEELDGY)(配列番号59)、Mcl−1177−185(QSLEIISRY)(配列番号60)、Mcl−1339−347(AGVGAGLAY)(配列番号61))を合成し、種々の起点のHLA−A1+癌患者に由来するPBLを、ELISPOTアッセイを利用して、これらのペプチドに対する反応性について精査した。実際、CTL応答が、種々の起点の癌患者において、2つのMcl−1由来ペプチドに対して検出された(Mcl−1166−175およびMcl−1177−185)(図12)。全体的には、4人の試験したHLA−A1+乳癌患者のうちの3人が、Mcl−1177−185に対する応答を有しており、そのうちの1人はさらに、Mcl−1166−175に対する応答も有していた(図12)。さらに、7人の黒色腫患者のうちの1人は、Mcl−1177−185ペプチドに対する免疫応答を有しており、それ以外の患者は、Mcl−1166−175に対する応答を有していた。対照として、6人の健常なHLA−A1+個体に由来するPBLを試験した。重要なことは、健常なドナーのいずれにおいても、Mcl−1166−175ペプチドまたはMcl−1177−185ペプチドのいずれに対する応答も検出されなかったことである(図12)。
HLA−A3制限ペプチドMcl−1300−308の免疫原性は、より良好なHLA−A3アンカー残基、すなわちロイシンで2位のスレオニンを置き換えることによって(Mcl−1300−300L2(RLKRDWLVK)(配列番号62))高くなった。Mcl−1300−308L2に対する自発的な免疫応答は、2人の乳癌患者において検出された(データは示さない)。同様に、より免疫原性の高いエピトープを作成するために、本発明者らは、HLA−A1制限ペプチドMcl−1177−185(QSLEIISRY)(配列番号60)の3位を修飾して、2つのペプチドMcl−1177−185D3(QSDEIISRY)(配列番号63)およびMcl−1177−185E3(QSEEIISRY)(配列番号64)を作成した。
ほぼ全ての悪性腫瘍は、アポトーシスの情報伝達の障害によって特徴づけられる。これにより悪性腫瘍細胞は、内因性のアポトーシスの刺激、さらには、外因性の刺激、例えば、化学療法薬および放射線に対して耐性となる。ヒトの癌において見られるアポトーシスの障害は、多くの場合は、Bcl−2タンパク質ファミリーの抗アポトーシス性タンパク質、すなわち、Bcl−2、Bcl−XL、およびMcl−1、Bcl−w、Bfl−1A1、Bcl−b、およびBcl2−L−10の過剰発現の結果生じる。このようなアポトーシスタンパク質の阻害因子をワクチン接種の目的のために使用することは、免疫回避のいくつかの形態としてのこれらのタンパク質のダウンレギュレーションまたはその発現の欠損が持続的な腫瘍の増殖を損なうので有効である。この理由は、腫瘍細胞の生存にはBcl−2ファミリーの機能的に活性なメンバーが必要であることである。治療ストラテジーについては、腫瘍細胞の増殖および生存、抗原欠損腫瘍の選択に関係して重要ではない役割を担っている抗原の標的化が、周知の限界である。さらに、Bcl−2ファミリーのタンパク質の細胞中での高い発現が薬剤耐性に関係しているので、Bcl−2ファミリーベースの免疫療法の細胞傷害性化学療法との組み合わせは、非常に期待される癌の処置のための新しい方法である。
Bcl−2タンパク質ファミリーのペプチドは、例えば、合成(例えば、遊離のアミドNH2末端と遊離酸COOH末端を用いて、UVA Biomolecular Core Facilityで)することができる。それぞれは、凍結乾燥させられたペプチドとして提供され、これは次いで、滅菌水中で再構成され、緩衝液としての乳酸加リンガー液(LR,Baxter,Healthcare,Deerfield,IL)で、67〜80%の最終水中乳酸加リンガー濃度になるように希釈される。これらの溶液は、次いで、滅菌濾過され、ホウケイ酸塩ガラスバイアルに入れられ、IND6453に規定されたFDAガイドラインにしたがって、実体、滅菌性、一般的な安全性、および純度の確認を含む一連の品質保証試験について検討される。ペプチドの安定性試験は、これらのペプチドを−20℃で3年間保存した際には、純度、またはペプチドの濃度の低下は示さなかった。
Claims (83)
- Bcl−2タンパク質ファミリーに属する単離されたタンパク質もしくはその免疫原性活性のあるペプチドフラグメント、または、該タンパク質もしくは該ペプチドフラグメントをコードする核酸を含む、医薬として使用するためのワクチン組成物。
- 前記ワクチン組成物は、癌患者に投与される場合、癌疾患に対する免疫応答を誘発し得る、請求項1に記載の組成物。
- 前記ワクチン組成物は、Bcl−2タンパク質ファミリーのメンバーが発現される癌患者に投与される場合、癌疾患に対する免疫応答を誘発し得る、請求項1に記載の組成物。
- 前記タンパク質が、Bcl−2ファミリーの抗アポトーシス性のメンバーからなる群より選択される、請求項1〜3のいずれかに記載のワクチン組成物。
- 前記タンパク質が、Bcl−2、Bcl−w、Mcl−1、Bfl−1/A1、Bcl−b、Bcl2−L−10、およびBcl−XLからなる群より選択される、請求項1〜3のいずれかに記載のワクチン組成物。
- 前記タンパク質が、Bax、Bok/Mtd、Bad、Bik/Nbk,Bid、Hrk/DP5、Bim、Noxa、Bmf、およびPUMA/bbc3からなる群より選択される、請求項1〜3のいずれかに記載のワクチン組成物。
- 前記タンパク質がBcl−2である、請求項5に記載のワクチン組成物。
- 前記タンパク質がBcl−XLである、請求項5に記載のワクチン組成物。
- 前記タンパク質がMcl−1である、請求項5に記載のワクチン組成物。
- 癌の予防または処置において医薬として使用するための、Bcl−2タンパク質ファミリーに属するタンパク質に由来する単離された免疫原性活性のあるペプチドフラグメント。
- 前記タンパク質が、Bcl−2、Bcl−w、Mcl−1、Bfl−1/A1、Bcl−b、Bcl2−L−10、およびBcl−XLからなる群より選択される、請求項10に記載のペプチドフラグメント。
- 前記タンパク質が、Bax、Bok/Mtd、Bad、Bik/Nbk、Bid、Hrk/DP5、Bim、Noxa、Bmf、およびPUMA/bbc3からなる群より選択される、請求項10に記載のペプチドフラグメント。
- 前記タンパク質がBcl−2である、請求項11に記載のペプチドフラグメント。
- 前記タンパク質がBcl−XLである、請求項11に記載のペプチドフラグメント。
- 前記タンパク質がMcl−1である、請求項11に記載のペプチドフラグメント。
- 癌患者において細胞性免疫応答を誘発し得る、請求項10〜15のいずれかに記載のペプチドフラグメント。
- 以下の特徴:
(i)クラスI HLA分子の最大回復量の半分を回復し得るペプチドの量(C50値)によって測定される親和性で制限される、クラスI HLA分子に結合する能力、であって、該C50値は、本明細書中に記載されるアセンブリ結合アッセイによって決定した場合に、最大50μMである、能力
(ii)ELISPOTアッセイによって決定した場合に104個のPBLあたり少なくとも1個の頻度で、癌患者のPBL集団中にIFN−γを産生する細胞を誘発する能力、および/または
(iii)エピトープペプチドと反応するCTLを、腫瘍組織中においてインサイチュで検出する能力
のうちの少なくとも1つを有するMHC クラスI制限ペプチドである、請求項10〜16のいずれかに記載のペプチドフラグメント。 - 最大30μMであるC50値を有する、請求項17に記載のペプチドフラグメント。
- 最大20μMであるC50値を有する、請求項17に記載のペプチドフラグメント。
- MHCクラスI HLA−A分子によって制限される、請求項17に記載のペプチドフラグメント。
- HLA−A1、HLA−A2、HLA−A3、HLA−A11、およびHLA−A24からなる群より選択されるMHCクラスI HLA種によって制限される、請求項20に記載のペプチドフラグメント。
- HLA−A2によって制限される、請求項17に記載のペプチドフラグメント。
- ALVGACITL(配列番号1)、ALSPVPPVV(配列番号2)、SLALVGACI(配列番号3)、KTLLSLALV(配列番号4)、LLSLALVGA(配列番号5)、WLSLKTLLSL(配列番号6)、AAAGPALSPV(配列番号7)、PLFDFSWLSL(配列番号8)、FTARGRFATV(配列番号9)、YLNRHLHTWI(配列番号10)、NIALWMTEYL(配列番号11)からなる群より選択される配列を含む、請求項10〜11、および16〜19のいずれかに記載のペプチドフラグメント。
- 前記ペプチドが、TAYQSFEQV(配列番号43)、YLNDHLEPWI(配列番号42)、RIAAWMATYL(配列番号45)、WMATYLNDHL(配列番号46)、VLVSRIAAWM(配列番号48)およびVAFFSFGGAL(配列番号49)からなる群より選択される配列を含む、請求項10〜11、および16〜19のいずれかに記載のペプチドフラグメント。
- 前記ペプチドが、配列RIAAWMATY(配列番号50)を含む、請求項10〜11、および16〜19のいずれかに記載のペプチドフラグメント。
- 前記ペプチドが、RLLFFAPTR(配列番号55)およびRTKRDWLVK(配列番号56)からなる群より選択される配列を含む、請求項10〜11、および16〜19のいずれかに記載のペプチドフラグメント。
- 前記ペプチドが、PAEEEEDDLY(配列番号58)およびQSLEIISRY(配列番号60)からなる群より選択される配列を含む、請求項10〜11、および16〜19のいずれかに記載のペプチドフラグメント。
- 前記ペプチドが、RLKRDWLVK(配列番号62)、QSDEIISRY(配列番号63)、およびQSEEIISRY(配列番号64)からなる群より選択される、請求項10〜11、および16〜19のいずれかに記載のペプチドフラグメント。
- MHCクラスI HLA−B分子によって制限される、請求項17に記載のペプチドフラグメント。
- HLA−B7、HLA−B35、HLA−B44、HLA−B8、HLA−B15、HLA−B27、およびHLA−B51からなる群より選択されるMHCクラスI HLA−B種によって制限される、請求項29に記載のペプチドフラグメント。
- 最大20個のアミノ酸残基を含む、請求項10〜30のいずれかに記載のペプチドフラグメント。
- 最大15個のアミノ酸残基を含む、請求項31に記載のペプチドフラグメント。
- ノナペプチドまたはデカペプチドである、請求項32に記載のペプチドフラグメント。
- 哺乳動物種から単離されたかまたは哺乳動物種に由来する天然の配列である、請求項10〜33のいずれかに記載のタンパク質またはペプチドフラグメント。
- 前記タンパク質がヒトタンパク質である、請求項10〜34のいずれかに記載のタンパク質またはペプチドフラグメント。
- 少なくとも1つのアミノ酸残基の置換、欠失、または付加によって天然のBcl−2タンパク質ファミリーのメンバーの配列から誘導される、請求項10〜33のいずれかに記載のタンパク質またはペプチドフラグメント。
- 104個のPBLあたり少なくとも10個の頻度で癌患者のPBL集団中にINF−γを産生する細胞を誘発することができる、請求項10〜37のいずれかに記載のペプチドフラグメント。
- Bcl−2タンパク質ファミリーに属するタンパク質が発現される癌疾患を有する患者のPBL集団においてIFN−γを産生する細胞を誘発し得る、請求項10〜38のいずれかに記載のペプチドフラグメント。
- 前記癌疾患が、慢性リンパ性白血病および慢性骨髄性白血病を含む造血器悪性腫瘍、黒色腫、乳癌、子宮頸部癌、卵巣癌、肺癌、結腸癌、膵臓癌、ならびに前立腺癌からなる群より選択される、請求項39に記載のペプチドフラグメント。
- 請求項10〜40のいずれかに記載のペプチドフラグメントを含む、請求項1〜9のいずれかに記載のワクチン組成物。
- 請求項29に記載のペプチドフラグメントと組み合わせて請求項18に記載のペプチドフラグメントを含む、請求項41に記載のワクチン組成物。
- 前記ワクチンが、ワクチン接種した患者において癌細胞に対して細胞傷害性作用を有するエフェクターT細胞の産生を誘発する、請求項1〜9、および41〜42のいずれかに記載のワクチン組成物。
- Bcl−2タンパク質ファミリーには属さないか、またはBcl−2タンパク質ファミリーには由来しないタンパク質またはペプチドフラグメントから選択される免疫原性タンパク質またはペプチドフラグメントをさらに含む、請求項1〜9、および41〜43のいずれかに記載のワクチン組成物。
- 前記Bcl−2タンパク質ファミリーには属さないかまたはBcl−2タンパク質ファミリーには由来しないタンパク質またはペプチドフラグメントが、細胞のアポトーシスの調節に関係するタンパク質、またはそれに由来するペプチドフラグメントである、請求項44に記載のワクチン組成物。
- 前記Bcl−2タンパク質ファミリーには属さないかまたはBcl−2タンパク質ファミリーには由来しないタンパク質またはペプチドフラグメントから選択される免疫原性タンパク質またはペプチドフラグメントが、サービビンまたはそのペプチドフラグメントである、請求項44に記載のワクチン組成物。
- 前記Bcl−2タンパク質ファミリーには属さないかまたはBcl−2タンパク質ファミリーには由来しないタンパク質またはペプチドフラグメントから選択される免疫原性タンパク質またはペプチドフラグメントが、ML−IAPまたはそのペプチドフラグメントである、請求項44に記載のワクチン組成物。
- アジュバントを含む、請求項1〜9、および41〜47のいずれかに記載のワクチン組成物。
- 前記アジュバントが、細菌DNAベースのアジュバント、油/界面活性剤ベースのアジュバント、ウイルスdsRNAベースのアジュバント、およびイミダゾキニリンからなる群より選択される、請求項48に記載のワクチン組成物。
- 前記ワクチン組成物が、タンパク質もしくはペプチドフラグメントまたは核酸を含む抗原提示細胞を含む、請求項1〜9、および41〜49のいずれかに記載のワクチン組成物。
- 前記抗原提示細胞が樹状細胞である、請求項50に記載のワクチン組成物。
- 前記組成物がリポソームを含む、請求項1〜9、および41〜51のいずれかに記載のワクチン組成物。
- 前記核酸が請求項10〜40のいずれかに記載のペプチドをコードする、請求項1に記載のワクチン組成物。
- 前記核酸がベクター中に含まれる、請求項1および53のいずれかに記載のワクチン組成物。
- 前記ベクターがウイルスベクターおよび細菌ベクターからなる群より選択される、請求項54に記載のワクチン組成物。
- 前記ベクターが、T細胞刺激ポリペプチドをコードする核酸をさらに含む、請求項54〜55のいずれかに記載のワクチン組成物。
- 前記T細胞刺激ポリペプチドが、B7.1、ICAM−1、およびLFA−3からなる群より選択される、請求項56に記載のワクチン組成物。
- 請求項1〜9、および41〜57のいずれかに記載のワクチン組成物と、さらなる抗癌剤とを含む、キット。
- 前記抗癌剤が抗体である、請求項58に記載のキット。
- 前記抗癌剤がサイトカインである、請求項59に記載のキット。
- 癌患者における、PBL中または腫瘍組織中でのBcl−2タンパク質ファミリーのメンバーと反応性のT細胞の存在をエキソビボまたはインサイチュで診断するための組成物であって、請求項10〜40のいずれかに記載のペプチドフラグメントを含む、組成物。
- 癌患者における、PBL中または腫瘍組織中でのBcl−2タンパク質ファミリーのメンバーと反応性のT細胞の存在をエキソビボまたはインサイチュで診断するための診断キットであって、請求項10〜40のいずれかに記載のペプチドフラグメントを含む、診断キット。
- 請求項10〜40のいずれかに記載のペプチドフラグメントと、クラスI HLA分子またはそのような分子のフラグメントとの複合体。
- モノマーである、請求項63に記載の複合体。
- マルチマーである、請求項63に記載の複合体。
- 癌患者においてT細胞と反応性のBcl−2タンパク質ファミリーのメンバーの存在を検出する方法であって、該方法は、腫瘍組織または血液サンプルを請求項63に記載の複合体と接触させる工程、および該組織または該血液細胞に対する該複合体の結合を検出する工程を包含する、方法。
- 請求項10〜40のいずれかに記載のペプチドフラグメントに特異的に結合し得る、分子。
- 抗体またはそのフラグメントである、請求項67に記載の分子。
- 前記分子がT細胞レセプターである、請求項67に記載の分子。
- 請求項67または69に記載の分子の結合をブロックし得る、分子。
- 癌疾患を処置する方法であって、該方法は、請求項1〜9、および41〜57のいずれかに記載の組成物、請求項67に記載の分子、または請求項70に記載の分子、あるいは、請求項58〜60のいずれかに記載のキットの有効量を、該疾患に罹患する患者に投与する工程を包含する、方法。
- 前記処置される疾患が、Bcl−2タンパク質ファミリーのメンバーが発現される癌疾患である、請求項71に記載の方法。
- 前記癌疾患が、慢性リンパ性白血病および慢性骨髄性白血病を含む造血器悪性腫瘍、黒色腫、乳癌、子宮頸部癌、卵巣癌、肺癌、結腸癌、膵臓癌、ならびに前立腺癌からなる群より選択される、請求項71に記載の方法。
- さらなる癌の処置と併用される、請求項71に記載の方法。
- 前記さらなる処置が、化学療法、放射線治療、免疫賦活性物質での処置、遺伝子治療、抗体での処置、および樹状細胞を用いる処置からなる群より選択される、請求項71に記載の方法。
- 癌疾患の処置または予防のための医薬の製造における、請求項10〜40のいずれかに記載のペプチドフラグメント、または請求項1〜9および41〜57のいずれかに記載のワクチン組成物の使用。
- 前記処置される疾患が、Bcl−2タンパク質ファミリーのメンバーが発現される癌疾患である、請求項76に記載の使用。
- 前記癌疾患が、慢性リンパ性白血病および慢性骨髄性白血病を含む造血器悪性腫瘍、黒色腫、乳癌、子宮頸部癌、卵巣癌、肺癌、結腸癌、膵臓癌、ならびに前立腺癌からなる群より選択される、請求項76〜77のいずれかに記載の使用。
- さらなる癌の処置と併用される、請求項76〜78のいずれかに記載の使用。
- 前記さらなる処置が、化学療法、放射線治療、免疫賦活性物質での処置、遺伝子治療、抗体での処置、および樹状細胞を用いる処置からなる群より選択される、請求項79に記載の使用。
- 免疫をモニタリングする方法であって、該方法は、以下の工程:
i)個体から血液サンプルを提供する工程、
ii)Bcl−2タンパク質ファミリーに属するタンパク質またはそのペプチドフラグメントを提供する工程、
iii)該血液サンプルが、該タンパク質またはペプチドに特異的に結合する抗体またはT細胞レセプターを含むT細胞を含むかどうかを決定する工程、
iv)それによって、該個体において該タンパク質またはペプチドに対する免疫応答が惹起されているかどうかを決定する工程、
を包含する、方法。 - 前記ペプチドフラグメントがいずれかの請求項に記載のペプチドフラグメントである、請求項81に記載の方法。
- 請求項69に記載のT細胞レセプターを含む、単離されたT細胞。
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