JP2006523465A5 - - Google Patents
Download PDFInfo
- Publication number
- JP2006523465A5 JP2006523465A5 JP2006513320A JP2006513320A JP2006523465A5 JP 2006523465 A5 JP2006523465 A5 JP 2006523465A5 JP 2006513320 A JP2006513320 A JP 2006513320A JP 2006513320 A JP2006513320 A JP 2006513320A JP 2006523465 A5 JP2006523465 A5 JP 2006523465A5
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- primer
- rna
- dna
- amplification
- polynucleotide
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
- 229920003013 deoxyribonucleic acid Polymers 0.000 claims description 479
- 239000002131 composite material Substances 0.000 claims description 380
- 230000003321 amplification Effects 0.000 claims description 325
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 claims description 325
- 239000000047 product Substances 0.000 claims description 306
- 229920000023 polynucleotide Polymers 0.000 claims description 301
- 239000002157 polynucleotide Substances 0.000 claims description 301
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 claims description 201
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 claims description 196
- 238000009396 hybridization Methods 0.000 claims description 138
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 claims description 107
- 229920000160 (ribonucleotides)n+m Polymers 0.000 claims description 102
- 101710029649 MDV043 Proteins 0.000 claims description 96
- 101700011961 DPOM Proteins 0.000 claims description 95
- 101700061424 POLB Proteins 0.000 claims description 95
- 101700054624 RF1 Proteins 0.000 claims description 95
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 claims description 90
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 claims description 85
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 claims description 85
- 229920001681 Heteroduplex Polymers 0.000 claims description 80
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 claims description 73
- 239000000523 sample Substances 0.000 claims description 69
- 230000001419 dependent Effects 0.000 claims description 67
- 108010092799 EC 2.7.7.49 Proteins 0.000 claims description 57
- 230000036961 partial Effects 0.000 claims description 50
- 102000016615 EC 2.7.7.49 Human genes 0.000 claims description 45
- 102000033147 ERVK-25 Human genes 0.000 claims description 41
- 229920001850 Nucleic acid sequence Polymers 0.000 claims description 39
- 238000001514 detection method Methods 0.000 claims description 33
- 238000006073 displacement reaction Methods 0.000 claims description 30
- 101710003775 ERVK-10 Proteins 0.000 claims description 29
- 101710037030 ERVK-11 Proteins 0.000 claims description 29
- 101710009283 ERVK-18 Proteins 0.000 claims description 29
- 101710009286 ERVK-19 Proteins 0.000 claims description 29
- 101710035700 ERVK-25 Proteins 0.000 claims description 29
- 101710038044 ERVK-6 Proteins 0.000 claims description 29
- 101710014468 ERVK-7 Proteins 0.000 claims description 29
- 101710014482 ERVK-8 Proteins 0.000 claims description 29
- 101710043924 HERVK_113 Proteins 0.000 claims description 29
- 101710006375 RNASEH1 Proteins 0.000 claims description 29
- 101700078434 RT67 Proteins 0.000 claims description 29
- 101700086982 rnh Proteins 0.000 claims description 29
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims description 29
- 230000027455 binding Effects 0.000 claims description 25
- 238000003776 cleavage reaction Methods 0.000 claims description 21
- 229920001914 Ribonucleotide Polymers 0.000 claims description 17
- 239000002336 ribonucleotide Substances 0.000 claims description 17
- 125000002652 ribonucleotide group Chemical group 0.000 claims description 17
- 239000007795 chemical reaction product Substances 0.000 claims description 15
- 239000011521 glass Substances 0.000 claims description 14
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 claims description 13
- 239000005547 deoxyribonucleotide Substances 0.000 claims description 13
- 125000002637 deoxyribonucleotide group Chemical group 0.000 claims description 13
- 238000006467 substitution reaction Methods 0.000 claims description 12
- 239000011324 bead Substances 0.000 claims description 11
- 239000002245 particle Substances 0.000 claims description 10
- AHCYMLUZIRLXAA-SHYZEUOFSA-N Deoxyuridine 5'-triphosphate Chemical group O1[C@H](COP(O)(=O)OP(O)(=O)OP(O)(O)=O)[C@@H](O)C[C@@H]1N1C(=O)NC(=O)C=C1 AHCYMLUZIRLXAA-SHYZEUOFSA-N 0.000 claims description 8
- 239000004033 plastic Substances 0.000 claims description 8
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 claims description 8
- 239000000020 Nitrocellulose Substances 0.000 claims description 7
- 229920001220 nitrocellulos Polymers 0.000 claims description 7
- 239000010703 silicon Substances 0.000 claims description 6
- 229910052710 silicon Inorganic materials 0.000 claims description 6
- 239000003365 glass fiber Substances 0.000 claims description 5
- 239000000123 paper Substances 0.000 claims description 4
- 229920002477 rna polymer Polymers 0.000 description 414
- 229940088598 Enzyme Drugs 0.000 description 58
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 57
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 52
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 50
- 230000000295 complement Effects 0.000 description 42
- 238000000034 method Methods 0.000 description 35
- 229920000272 Oligonucleotide Polymers 0.000 description 32
- 108020004999 Messenger RNA Proteins 0.000 description 28
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 28
- 230000014509 gene expression Effects 0.000 description 28
- 229920002106 messenger RNA Polymers 0.000 description 28
- 238000011002 quantification Methods 0.000 description 25
- 210000004027 cells Anatomy 0.000 description 22
- 229920002676 Complementary DNA Polymers 0.000 description 20
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 20
- 239000002299 complementary DNA Substances 0.000 description 20
- 238000002493 microarray Methods 0.000 description 19
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 19
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 18
- 238000003752 polymerase chain reaction Methods 0.000 description 17
- -1 for example Polymers 0.000 description 16
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 16
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 16
- 239000000543 intermediate Substances 0.000 description 14
- 102000006382 Ribonucleases Human genes 0.000 description 13
- 108010083644 Ribonucleases Proteins 0.000 description 13
- 239000000463 material Substances 0.000 description 13
- 230000002194 synthesizing Effects 0.000 description 13
- UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M buffer Substances [Na+].OC([O-])=O UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 12
- 108020004682 Single-Stranded DNA Proteins 0.000 description 11
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 11
- 238000006011 modification reaction Methods 0.000 description 11
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 11
- 239000002585 base Substances 0.000 description 10
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 10
- 230000035772 mutation Effects 0.000 description 10
- 230000000692 anti-sense Effects 0.000 description 9
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 9
- 238000010192 crystallographic characterization Methods 0.000 description 9
- 238000010195 expression analysis Methods 0.000 description 9
- 238000005755 formation reaction Methods 0.000 description 9
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 9
- 238000003753 real-time PCR Methods 0.000 description 9
- 241000894007 species Species 0.000 description 9
- 206010049460 Abasia Diseases 0.000 description 8
- 210000000349 Chromosomes Anatomy 0.000 description 8
- 239000004677 Nylon Substances 0.000 description 8
- 229920001778 nylon Polymers 0.000 description 8
- 108020004417 Untranslated RNA Proteins 0.000 description 7
- 239000003446 ligand Substances 0.000 description 7
- 229920001894 non-coding RNA Polymers 0.000 description 7
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 7
- 239000004743 Polypropylene Substances 0.000 description 6
- 230000036425 denaturation Effects 0.000 description 6
- 238000004925 denaturation Methods 0.000 description 6
- 230000001717 pathogenic Effects 0.000 description 6
- 244000052769 pathogens Species 0.000 description 6
- 229920001155 polypropylene Polymers 0.000 description 6
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 6
- 238000005382 thermal cycling Methods 0.000 description 6
- 210000001519 tissues Anatomy 0.000 description 6
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 210000001736 Capillaries Anatomy 0.000 description 5
- 239000004793 Polystyrene Substances 0.000 description 5
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 5
- 238000004166 bioassay Methods 0.000 description 5
- 238000010804 cDNA synthesis Methods 0.000 description 5
- 230000024881 catalytic activity Effects 0.000 description 5
- 230000001809 detectable Effects 0.000 description 5
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 5
- 230000002708 enhancing Effects 0.000 description 5
- 230000001965 increased Effects 0.000 description 5
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 5
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 5
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 description 5
- 229920002223 polystyrene Polymers 0.000 description 5
- 238000004445 quantitative analysis Methods 0.000 description 5
- 230000002829 reduced Effects 0.000 description 5
- 229920002973 ribosomal RNA Polymers 0.000 description 5
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 5
- XUIMIQQOPSSXEZ-UHFFFAOYSA-N silicon Chemical compound [Si] XUIMIQQOPSSXEZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 239000007790 solid phase Substances 0.000 description 5
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 5
- 239000007858 starting material Substances 0.000 description 5
- 229920001262 Aminoallyl nucleotide Polymers 0.000 description 4
- 102000016928 DNA-Directed DNA Polymerase Human genes 0.000 description 4
- 108010014303 DNA-Directed DNA Polymerase Proteins 0.000 description 4
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 4
- 230000000875 corresponding Effects 0.000 description 4
- 230000000977 initiatory Effects 0.000 description 4
- 150000002739 metals Chemical class 0.000 description 4
- 238000006116 polymerization reaction Methods 0.000 description 4
- WCUXLLCKKVVCTQ-UHFFFAOYSA-M potassium chloride Chemical compound [Cl-].[K+] WCUXLLCKKVVCTQ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 4
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 4
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 4
- 239000012429 reaction media Substances 0.000 description 4
- 230000001960 triggered Effects 0.000 description 4
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 3
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 3
- 101700080605 NUC1 Proteins 0.000 description 3
- PYMYPHUHKUWMLA-LMVFSUKVSA-N Ribose Natural products OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-LMVFSUKVSA-N 0.000 description 3
- 108020004418 Ribosomal RNA Proteins 0.000 description 3
- 238000007792 addition Methods 0.000 description 3
- 150000001299 aldehydes Chemical class 0.000 description 3
- 125000003277 amino group Chemical group 0.000 description 3
- 239000012472 biological sample Substances 0.000 description 3
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 description 3
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 3
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 3
- 238000002372 labelling Methods 0.000 description 3
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 3
- 101700006494 nucA Proteins 0.000 description 3
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 3
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 3
- VGONTNSXDCQUGY-RRKCRQDMSA-N 2'-deoxyinosine Chemical compound C1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1N1C(N=CNC2=O)=C2N=C1 VGONTNSXDCQUGY-RRKCRQDMSA-N 0.000 description 2
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 2
- 108090000626 DNA-directed RNA polymerases Proteins 0.000 description 2
- 102000004163 DNA-directed RNA polymerases Human genes 0.000 description 2
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 2
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 2
- 108020005187 Oligonucleotide Probes Proteins 0.000 description 2
- DTBNBXWJWCWCIK-UHFFFAOYSA-N Phosphoenolpyruvic acid Natural products OC(=O)C(=C)OP(O)(O)=O DTBNBXWJWCWCIK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 2
- RWQNBRDOKXIBIV-UHFFFAOYSA-N Thymine Chemical compound CC1=CNC(=O)NC1=O RWQNBRDOKXIBIV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920001949 Transfer RNA Polymers 0.000 description 2
- 241000726445 Viroids Species 0.000 description 2
- SRBFZHDQGSBBOR-SQOUGZDYSA-N Xylose Natural products O[C@@H]1CO[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O SRBFZHDQGSBBOR-SQOUGZDYSA-N 0.000 description 2
- 150000007513 acids Chemical class 0.000 description 2
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 2
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 2
- 230000004075 alteration Effects 0.000 description 2
- 150000001412 amines Chemical group 0.000 description 2
- 238000000137 annealing Methods 0.000 description 2
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 2
- 230000003247 decreasing Effects 0.000 description 2
- 230000004059 degradation Effects 0.000 description 2
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 2
- 239000005549 deoxyribonucleoside Substances 0.000 description 2
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N diethyl ether Chemical compound CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 2
- IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N dimethylsulphoxide Chemical compound CS(C)=O IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 2
- 230000002068 genetic Effects 0.000 description 2
- 238000003205 genotyping method Methods 0.000 description 2
- 125000002887 hydroxy group Chemical group [H]O* 0.000 description 2
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 2
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 2
- 238000000370 laser capture micro-dissection Methods 0.000 description 2
- 230000000670 limiting Effects 0.000 description 2
- 125000005647 linker group Chemical group 0.000 description 2
- 239000007791 liquid phase Substances 0.000 description 2
- 230000000873 masking Effects 0.000 description 2
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 2
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 2
- 229920002111 mitochondrial RNA Polymers 0.000 description 2
- 238000010369 molecular cloning Methods 0.000 description 2
- 239000002751 oligonucleotide probe Substances 0.000 description 2
- 238000004806 packaging method and process Methods 0.000 description 2
- 230000001575 pathological Effects 0.000 description 2
- 125000006239 protecting group Chemical group 0.000 description 2
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 2
- 230000001105 regulatory Effects 0.000 description 2
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 108010068698 spleen exonuclease Proteins 0.000 description 2
- 230000035897 transcription Effects 0.000 description 2
- 239000001226 triphosphate Substances 0.000 description 2
- 235000011178 triphosphate Nutrition 0.000 description 2
- 125000002264 triphosphate group Chemical class [H]OP(=O)(O[H])OP(=O)(O[H])OP(=O)(O[H])O* 0.000 description 2
- 238000011144 upstream manufacturing Methods 0.000 description 2
- LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol Chemical compound OCC(N)(CO)CO LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- OZNBTMLHSVZFLR-GWTDSMLYSA-N 2-amino-9-[(2R,3R,4S,5R)-3,4-dihydroxy-5-(hydroxymethyl)oxolan-2-yl]-3H-purin-6-one;6-amino-1H-pyrimidin-2-one Chemical compound NC=1C=CNC(=O)N=1.C1=NC=2C(=O)NC(N)=NC=2N1[C@@H]1O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@H]1O OZNBTMLHSVZFLR-GWTDSMLYSA-N 0.000 description 1
- ZPZDIFSPRVHGIF-UHFFFAOYSA-N 3-aminopropylsilicon Chemical compound NCCC[Si] ZPZDIFSPRVHGIF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229940100198 ALKYLATING AGENTS Drugs 0.000 description 1
- DZBUGLKDJFMEHC-UHFFFAOYSA-N Acridine Chemical compound C1=CC=CC2=CC3=CC=CC=C3N=C21 DZBUGLKDJFMEHC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- GFFGJBXGBJISGV-UHFFFAOYSA-N Adenine Natural products NC1=NC=NC2=C1N=CN2 GFFGJBXGBJISGV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960000643 Adenine Drugs 0.000 description 1
- 102000002260 Alkaline Phosphatase Human genes 0.000 description 1
- 108020004774 Alkaline Phosphatase Proteins 0.000 description 1
- 229940059260 Amidate Drugs 0.000 description 1
- 108020004491 Antisense DNA Proteins 0.000 description 1
- 241000713838 Avian myeloblastosis virus Species 0.000 description 1
- 229920000195 Bacterial small RNA Polymers 0.000 description 1
- 210000004369 Blood Anatomy 0.000 description 1
- 210000004204 Blood Vessels Anatomy 0.000 description 1
- 210000000988 Bone and Bones Anatomy 0.000 description 1
- 210000004556 Brain Anatomy 0.000 description 1
- QCMYYKRYFNMIEC-UHFFFAOYSA-M COP([O-])=O Chemical class COP([O-])=O QCMYYKRYFNMIEC-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 229920000138 Chloroplast DNA Polymers 0.000 description 1
- 108020004998 Chloroplast DNA Proteins 0.000 description 1
- 108020005133 Chloroplast RNA Proteins 0.000 description 1
- 229920000453 Consensus sequence Polymers 0.000 description 1
- JYGXADMDTFJGBT-VWUMJDOOSA-N Cortisol Chemical compound O=C1CC[C@]2(C)[C@H]3[C@@H](O)C[C@](C)([C@@](CC4)(O)C(=O)CO)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 JYGXADMDTFJGBT-VWUMJDOOSA-N 0.000 description 1
- OPTASPLRGRRNAP-UHFFFAOYSA-N Cytosine Chemical compound NC=1C=CNC(=O)N=1 OPTASPLRGRRNAP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229940104302 Cytosine Drugs 0.000 description 1
- 230000004544 DNA amplification Effects 0.000 description 1
- 101700008821 EXO Proteins 0.000 description 1
- 101700083023 EXRN Proteins 0.000 description 1
- 210000003372 Endocrine Glands Anatomy 0.000 description 1
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 1
- ZMMJGEGLRURXTF-UHFFFAOYSA-N Ethidium bromide Chemical compound [Br-].C12=CC(N)=CC=C2C2=CC=C(N)C=C2[N+](CC)=C1C1=CC=CC=C1 ZMMJGEGLRURXTF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000004144 Green Fluorescent Proteins Human genes 0.000 description 1
- 108010043121 Green Fluorescent Proteins Proteins 0.000 description 1
- UYTPUPDQBNUYGX-UHFFFAOYSA-N Guanine Chemical compound O=C1NC(N)=NC2=C1N=CN2 UYTPUPDQBNUYGX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 210000002216 Heart Anatomy 0.000 description 1
- 108010001336 Horseradish Peroxidase Proteins 0.000 description 1
- UGQMRVRMYYASKQ-KMPDEGCQSA-N Inosine Natural products O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1N1C(N=CNC2=O)=C2N=C1 UGQMRVRMYYASKQ-KMPDEGCQSA-N 0.000 description 1
- UGQMRVRMYYASKQ-KQYNXXCUSA-N Inosine Chemical compound O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1N1C2=NC=NC(O)=C2N=C1 UGQMRVRMYYASKQ-KQYNXXCUSA-N 0.000 description 1
- 229920002459 Intron Polymers 0.000 description 1
- 108020004391 Introns Proteins 0.000 description 1
- 210000003734 Kidney Anatomy 0.000 description 1
- XUIIKFGFIJCVMT-LBPRGKRZSA-N L-thyroxine zwitterion Chemical compound IC1=CC(C[C@H]([NH3+])C([O-])=O)=CC(I)=C1OC1=CC(I)=C(O)C(I)=C1 XUIIKFGFIJCVMT-LBPRGKRZSA-N 0.000 description 1
- 229920000126 Latex Polymers 0.000 description 1
- 210000004072 Lung Anatomy 0.000 description 1
- TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L MgCl2 Chemical compound [Mg+2].[Cl-].[Cl-] TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 229920000460 Mitochondrial DNA Polymers 0.000 description 1
- 108020005196 Mitochondrial DNA Proteins 0.000 description 1
- 241000713869 Moloney murine leukemia virus Species 0.000 description 1
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 1
- 238000000636 Northern blotting Methods 0.000 description 1
- 108020004711 Nucleic Acid Probes Proteins 0.000 description 1
- 210000004940 Nucleus Anatomy 0.000 description 1
- 210000003635 Pituitary Gland Anatomy 0.000 description 1
- 241000700159 Rattus Species 0.000 description 1
- PYWVYCXTNDRMGF-UHFFFAOYSA-N Rhodamine B Chemical compound [Cl-].C=12C=CC(=[N+](CC)CC)C=C2OC2=CC(N(CC)CC)=CC=C2C=1C1=CC=CC=C1C(O)=O PYWVYCXTNDRMGF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 101710017605 Rv2228c Proteins 0.000 description 1
- 238000010818 SYBR green PCR Master Mix Methods 0.000 description 1
- 241000555745 Sciuridae Species 0.000 description 1
- 241000610384 Sparisoma cretense Species 0.000 description 1
- 210000000952 Spleen Anatomy 0.000 description 1
- MPLHNVLQVRSVEE-UHFFFAOYSA-N Texas Red Chemical compound [O-]S(=O)(=O)C1=CC(S(Cl)(=O)=O)=CC=C1C(C1=CC=2CCCN3CCCC(C=23)=C1O1)=C2C1=C(CCC1)C3=[N+]1CCCC3=C2 MPLHNVLQVRSVEE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000186339 Thermoanaerobacter Species 0.000 description 1
- 229940113082 Thymine Drugs 0.000 description 1
- 229940034208 Thyroxine Drugs 0.000 description 1
- 231100000765 Toxin Toxicity 0.000 description 1
- FPKOPBFLPLFWAD-UHFFFAOYSA-N Trinitrotoluene Chemical compound CC1=CC=C([N+]([O-])=O)C([N+]([O-])=O)=C1[N+]([O-])=O FPKOPBFLPLFWAD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000007984 Tris EDTA buffer Substances 0.000 description 1
- 239000007983 Tris buffer Substances 0.000 description 1
- DRTQHJPVMGBUCF-UCVXFZOQSA-N Uridine Natural products O[C@H]1[C@H](O)[C@H](CO)O[C@@H]1N1C(=O)NC(=O)C=C1 DRTQHJPVMGBUCF-UCVXFZOQSA-N 0.000 description 1
- 229940045145 Uridine Drugs 0.000 description 1
- DRTQHJPVMGBUCF-XVFCMESISA-N Uridine Chemical compound O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1N1C(=O)NC(=O)C=C1 DRTQHJPVMGBUCF-XVFCMESISA-N 0.000 description 1
- 229960003487 Xylose Drugs 0.000 description 1
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 1
- 150000001241 acetals Chemical class 0.000 description 1
- HRPVXLWXLXDGHG-UHFFFAOYSA-N acrylamide Chemical compound NC(=O)C=C HRPVXLWXLXDGHG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000003213 activating Effects 0.000 description 1
- 125000002015 acyclic group Chemical group 0.000 description 1
- OIRDTQYFTABQOQ-KQYNXXCUSA-N adenosine Chemical compound C1=NC=2C(N)=NC=NC=2N1[C@@H]1O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@H]1O OIRDTQYFTABQOQ-KQYNXXCUSA-N 0.000 description 1
- PYMYPHUHKUWMLA-UOWFLXDJSA-N aldehydo-D-lyxose Chemical compound OC[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-UOWFLXDJSA-N 0.000 description 1
- 239000003513 alkali Substances 0.000 description 1
- 125000003342 alkenyl group Chemical group 0.000 description 1
- 125000000217 alkyl group Chemical group 0.000 description 1
- 239000002168 alkylating agent Substances 0.000 description 1
- 210000004102 animal cell Anatomy 0.000 description 1
- 102000004965 antibodies Human genes 0.000 description 1
- 108090001123 antibodies Proteins 0.000 description 1
- 239000003816 antisense DNA Substances 0.000 description 1
- 150000001479 arabinose derivatives Chemical class 0.000 description 1
- 125000003118 aryl group Chemical group 0.000 description 1
- 230000003796 beauty Effects 0.000 description 1
- 239000011230 binding agent Substances 0.000 description 1
- 102000024070 binding proteins Human genes 0.000 description 1
- 108091007650 binding proteins Proteins 0.000 description 1
- 230000031018 biological processes and functions Effects 0.000 description 1
- 230000033228 biological regulation Effects 0.000 description 1
- YBJHBAHKTGYVGT-ZKWXMUAHSA-N biotin Chemical compound N1C(=O)N[C@@H]2[C@H](CCCCC(=O)O)SC[C@@H]21 YBJHBAHKTGYVGT-ZKWXMUAHSA-N 0.000 description 1
- 229960002685 biotin Drugs 0.000 description 1
- 235000020958 biotin Nutrition 0.000 description 1
- 239000011616 biotin Substances 0.000 description 1
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 1
- ZOXJGFHDIHLPTG-UHFFFAOYSA-N boron Chemical compound [B] ZOXJGFHDIHLPTG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052796 boron Inorganic materials 0.000 description 1
- 150000004657 carbamic acid derivatives Chemical class 0.000 description 1
- 125000002837 carbocyclic group Chemical group 0.000 description 1
- 125000004432 carbon atoms Chemical group C* 0.000 description 1
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 1
- 230000022131 cell cycle Effects 0.000 description 1
- 230000024245 cell differentiation Effects 0.000 description 1
- 230000003915 cell function Effects 0.000 description 1
- 230000001413 cellular Effects 0.000 description 1
- 229920002092 cellular RNA Polymers 0.000 description 1
- 239000000919 ceramic Substances 0.000 description 1
- 239000002738 chelating agent Substances 0.000 description 1
- 230000002759 chromosomal Effects 0.000 description 1
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 1
- 238000007374 clinical diagnostic method Methods 0.000 description 1
- 230000001010 compromised Effects 0.000 description 1
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 1
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 239000006184 cosolvent Substances 0.000 description 1
- 125000000392 cycloalkenyl group Chemical group 0.000 description 1
- 125000000753 cycloalkyl group Chemical group 0.000 description 1
- 238000001212 derivatisation Methods 0.000 description 1
- SHIBSTMRCDJXLN-KCZCNTNESA-N digoxigenin Chemical compound C1([C@@H]2[C@@]3([C@@](CC2)(O)[C@H]2[C@@H]([C@@]4(C)CC[C@H](O)C[C@H]4CC2)C[C@H]3O)C)=CC(=O)OC1 SHIBSTMRCDJXLN-KCZCNTNESA-N 0.000 description 1
- 239000012470 diluted sample Substances 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 239000000539 dimer Substances 0.000 description 1
- 230000005684 electric field Effects 0.000 description 1
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 210000002308 embryonic cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000002255 enzymatic Effects 0.000 description 1
- NPUKDXXFDDZOKR-LLVKDONJSA-N etomidate Chemical compound CCOC(=O)C1=CN=CN1[C@H](C)C1=CC=CC=C1 NPUKDXXFDDZOKR-LLVKDONJSA-N 0.000 description 1
- 229960001690 etomidate Drugs 0.000 description 1
- 210000003527 eukaryotic cell Anatomy 0.000 description 1
- MHMNJMPURVTYEJ-UHFFFAOYSA-N fluorescein-5-isothiocyanate Chemical compound O1C(=O)C2=CC(N=C=S)=CC=C2C21C1=CC=C(O)C=C1OC1=CC(O)=CC=C21 MHMNJMPURVTYEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000007850 fluorescent dye Substances 0.000 description 1
- 101710031367 gV-1 Proteins 0.000 description 1
- PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N gold Chemical compound [Au] PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000005090 green fluorescent protein Substances 0.000 description 1
- 239000000833 heterodimer Substances 0.000 description 1
- 229960000890 hydrocortisone Drugs 0.000 description 1
- 230000003100 immobilizing Effects 0.000 description 1
- 238000011065 in-situ storage Methods 0.000 description 1
- 238000010348 incorporation Methods 0.000 description 1
- 238000001802 infusion Methods 0.000 description 1
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 1
- 229960003786 inosine Drugs 0.000 description 1
- 238000003780 insertion Methods 0.000 description 1
- 239000004816 latex Substances 0.000 description 1
- 229950008325 levothyroxine Drugs 0.000 description 1
- 230000004301 light adaptation Effects 0.000 description 1
- 210000004962 mammalian cells Anatomy 0.000 description 1
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 1
- 238000007069 methylation reaction Methods 0.000 description 1
- 238000007479 molecular analysis Methods 0.000 description 1
- 101700045377 mvp1 Proteins 0.000 description 1
- 235000015411 nau Nutrition 0.000 description 1
- 244000026959 nau Species 0.000 description 1
- 239000002736 nonionic surfactant Substances 0.000 description 1
- 238000007899 nucleic acid hybridization Methods 0.000 description 1
- 239000002853 nucleic acid probe Substances 0.000 description 1
- 239000002777 nucleoside Substances 0.000 description 1
- 150000003833 nucleoside derivatives Chemical class 0.000 description 1
- 125000002796 nucleotidyl group Chemical group 0.000 description 1
- 229920001542 oligosaccharide Polymers 0.000 description 1
- 150000002482 oligosaccharides Polymers 0.000 description 1
- 230000003287 optical Effects 0.000 description 1
- 230000001590 oxidative Effects 0.000 description 1
- 230000000737 periodic Effects 0.000 description 1
- 230000002093 peripheral Effects 0.000 description 1
- 125000002467 phosphate group Chemical group [H]OP(=O)(O[H])O[*] 0.000 description 1
- 125000005642 phosphothioate group Chemical group 0.000 description 1
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 description 1
- 230000001124 posttranscriptional Effects 0.000 description 1
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 1
- 238000007639 printing Methods 0.000 description 1
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 1
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 1
- 230000001915 proofreading Effects 0.000 description 1
- 230000002285 radioactive Effects 0.000 description 1
- 108091007521 restriction endonucleases Proteins 0.000 description 1
- 238000010839 reverse transcription Methods 0.000 description 1
- 230000002441 reversible Effects 0.000 description 1
- 239000003161 ribonuclease inhibitor Substances 0.000 description 1
- 238000004805 robotic Methods 0.000 description 1
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 1
- 238000003530 single readout Methods 0.000 description 1
- 230000000087 stabilizing Effects 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 230000000576 supplementary Effects 0.000 description 1
- 230000001629 suppression Effects 0.000 description 1
- 239000003053 toxin Substances 0.000 description 1
- 108020003112 toxins Proteins 0.000 description 1
Description
（関連出願の相互参照）
本出願は、米国特許法１１９（ｅ）条により、２００３年４月１４日出願の米国仮出願番号６０／４６２，９６２および、２００３年４月１４日出願の６０／４６２，９６５に対する優先権を主張する。なお、これらのそれぞれは、その全体が本明細書中に参考として援用する。
本出願は、米国特許法１１９（ｅ）条により、２００３年４月１４日出願の米国仮出願番号６０／４６２，９６２および、２００３年４月１４日出願の６０／４６２，９６５に対する優先権を主張する。なお、これらのそれぞれは、その全体が本明細書中に参考として援用する。
（技術分野）
本発明は、ポリヌクレオチド増幅の分野に関する。さらに詳細には、本発明は、ランダムプライマー型ＲＮＡ／ＤＮＡ複合プライマーによる、多数の異なるポリヌクレオチドテンプレート配列を増幅する（すなわち、多数コピーを製作する）ための方法、組成物、およびキットを提供する。
本発明は、ポリヌクレオチド増幅の分野に関する。さらに詳細には、本発明は、ランダムプライマー型ＲＮＡ／ＤＮＡ複合プライマーによる、多数の異なるポリヌクレオチドテンプレート配列を増幅する（すなわち、多数コピーを製作する）ための方法、組成物、およびキットを提供する。
（背景技術）
核酸（例えば、ゲノムＤＮＡ）サンプルの品質および量が重要となる研究は数多くある。高処理ゲノム分析には試験のために大量のテンプレートが必要であるが、通常個々の患者サンプルから得られる核酸の収量は限られる。法医学的および先史考古学的研究も、核酸サンプルのサイズによって厳しく制限され得る。開始材料の制限は、例えば、複雑な病気の研究で複数の座位について遺伝子タイピングを行う際に必要で、複数のパラメータについての大規模な分析を行う場合、その分析能力に影響を及ぼす。さらに、ガンなどの様々な病的状態におけるゲノムの不安定性を分子分析によって定量する場合、極めて限定された細胞集団、例えば、レーザーキャプチャーマイクロディセクションまたは細胞ソーティングによって得られた細胞集団を用いて行うと、非常に厳密に実施することができることはよく認識されるところである。例えば、１個、または数個の細胞から得られるごく少数のポリヌクレオチドサンプルの大規模な増幅を実現する核酸増幅技術は、分析用として通常利用が可能な開始材料が限定される場合において解決法となる可能性がある。
核酸（例えば、ゲノムＤＮＡ）サンプルの品質および量が重要となる研究は数多くある。高処理ゲノム分析には試験のために大量のテンプレートが必要であるが、通常個々の患者サンプルから得られる核酸の収量は限られる。法医学的および先史考古学的研究も、核酸サンプルのサイズによって厳しく制限され得る。開始材料の制限は、例えば、複雑な病気の研究で複数の座位について遺伝子タイピングを行う際に必要で、複数のパラメータについての大規模な分析を行う場合、その分析能力に影響を及ぼす。さらに、ガンなどの様々な病的状態におけるゲノムの不安定性を分子分析によって定量する場合、極めて限定された細胞集団、例えば、レーザーキャプチャーマイクロディセクションまたは細胞ソーティングによって得られた細胞集団を用いて行うと、非常に厳密に実施することができることはよく認識されるところである。例えば、１個、または数個の細胞から得られるごく少数のポリヌクレオチドサンプルの大規模な増幅を実現する核酸増幅技術は、分析用として通常利用が可能な開始材料が限定される場合において解決法となる可能性がある。
同様に、リボ核酸（ＲＮＡ）を増幅する能力は、生物過程を解明しようとする場合重要な局面を為す。細胞の全ｍＲＮＡが、ある定義された時点における遺伝子発現活性を表す。遺伝子発現は、細胞サイクルの進行、発達調節、内的および外的刺激に対する反応等によって影響される。いずれのタイプのものであれ、生物の、ある細胞タイプの発現遺伝子のプロフィールは、正常または病的状態、各種刺激に対する反応、発達段階、細胞分化等を反映する。非コードＲＮＡも、各種細胞機能の調節およびある種の病気の原因として極めて重要であることが判明している。多くの場合、このようなＲＮＡもごく低レベルながら存在する。従って、ポリアデニル化されていないＲＮＡを含む低量のＲＮＡを増幅することが可能な増幅法は極めて重要である。
従来から、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）に基づく方法を含め、ＤＮＡ標的分子の大規模増幅（例えば、全ゲノム増幅）については様々な方法が記載されている。例えば、米国特許第５，７３１，１７１、６，３６５，３７５号；Ｄａｉｇｏ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．１５８（５）：１６２３−１６３１；Ｗａｎｇ ｅｔ
ａｌ．，（２００１），Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．６１：４１６９−４１７４；Ｚｈｅｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｃａｎｃｅｒ Ｅｐｉｄｅｍｉｏｌ．１０：６９７−７００；Ｄｉｅｔｍａｉｅｒ ｅｔ ａｌ．，（１９９９）Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．１５４（１）８３−９５；Ｓｔｏｅｃｋｌｅｉｎ ｅｔ ａｌ（２００２）Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．１６１（１）：４３−５１；米国特許第６，１２４，１２０、６，２８０，９４９号；Ｄｅａｎ ｅｔ ａｌ（２００２）ＰＮＡＳ９９（８）：５２６１−５２６６を参照されたい。しかしながら、例えば全ゲノム増幅（ＷＧＡ）のような、ＰＣＲによる大規模増幅法では、非特異的増幅人工産物（アーチファクト）が生じたり、全座位の均等な増幅ができなかったり、ＤＮＡの長さが十分でなく多くの用途に使用できない等の可能性がある。ＰＣＲ反応は増幅されやすい産物を好んで形成する傾向があるために、ＰＣＲによる方法には、増幅反応産物に表されるゲノム配列に偏倚を生じるという欠点がある。
ａｌ．，（２００１），Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．６１：４１６９−４１７４；Ｚｈｅｎｇ ｅｔ ａｌ．，（２００１）Ｃａｎｃｅｒ Ｅｐｉｄｅｍｉｏｌ．１０：６９７−７００；Ｄｉｅｔｍａｉｅｒ ｅｔ ａｌ．，（１９９９）Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．１５４（１）８３−９５；Ｓｔｏｅｃｋｌｅｉｎ ｅｔ ａｌ（２００２）Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．１６１（１）：４３−５１；米国特許第６，１２４，１２０、６，２８０，９４９号；Ｄｅａｎ ｅｔ ａｌ（２００２）ＰＮＡＳ９９（８）：５２６１−５２６６を参照されたい。しかしながら、例えば全ゲノム増幅（ＷＧＡ）のような、ＰＣＲによる大規模増幅法では、非特異的増幅人工産物（アーチファクト）が生じたり、全座位の均等な増幅ができなかったり、ＤＮＡの長さが十分でなく多くの用途に使用できない等の可能性がある。ＰＣＲ反応は増幅されやすい産物を好んで形成する傾向があるために、ＰＣＲによる方法には、増幅反応産物に表されるゲノム配列に偏倚を生じるという欠点がある。
さらに、近年、遺伝子発現の分析のためにいくつかの方法が開発されている。例えば、米国特許第６，２５１，６３９、６，６９２，９１８、６，６８６，１５６、５，７４４，３０８、６，１４３，４９５、５，８２４，５１７、５，８２９，５４７、５，８８８，７７９、５，５４５，５２２、５，７１６，７８５、５，４０９，８１８号、欧州特許第０９７１０３９Ａ２、０８７８５５３Ａ２号、米国特許出願公開第２００２／０１１５０８８、２００３／０１８６２３４、２００３／００８７２５１、および２００４／００２３２７１号を参照されたい。これらは、特定のｍＲＮＡの定量、多数のｍＲＮＡの同時定量、および、既知および未知遺伝子の発現パターンの検出および定量を含む。もっとも一般的には、ＲＮＡ増幅は、逆転写酵素−ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）法およびその変法を用いて実行される。これらの方法は、ＲＮＡを逆転写酵素で複製し、そのＲＮＡに対して相補的な１本鎖ＤＮＡ（ｃＤＮＡ）を形成し、次にポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）増幅を行って２本鎖ＤＮＡの多数コピーを生成することに基づく。これらの方法はもっとも一般的に行われるものであるけれども、いくつかの重大な欠点を有する。ａ）反応は熱サイクルを必要とする、ｂ）産物は２本鎖であり、従って、プローブに結合しにくくなっている、および、ｃ）反応は、前段増幅産物によって汚染され易く、そのため反応混合物の厳密な封じ込めが必要である。その他最近のＲＮＡ増幅法は、ｍＲＮＡの複製を、その３’末端のポリＡ尾部から開始させる。しかしながら、必ずしも全てのＲＮＡ転写物がｍＲＮＡ尾部を持つわけではない（例えば、原核細胞ＲＮＡおよび非コードＲＮＡ）。さらに、サンプル調製工程によっては、ＲＮＡ転写物の構造的完全性が危機に曝される。従って、ある状況では、定義されたポリＡ尾部での複製開始を必要としないＲＮＡ増幅法を使用することが望ましい場合がある。増幅されないＲＮＡの分析も実行可能ではあるが、相当量の開始ＲＮＡが必要とされる。一方、利用が可能なサンプルＲＮＡの全量は、それが得られた生物サンプルの量によって限定されることが多い。多くの場合生物サンプルの量は限定され、貴重である。さらに、各種ＲＮＡ分子種の量は均等ではない。一方の分子種は他方の分子種よりも多量であり、恐らく分析もやり易いことがある。ＲＮＡ配列を増幅可能とすることができれば、比較的量の少ない稀なＲＮＡ分子種でも、その分析を実行することができる。核酸増幅法によって小型サンプルの分析を可能とする能力は、エフェクター分子ライブラリーの大規模スクリーニングのパラメータを設計する際にも有利である。なぜなら、極めて大規模なスクリーニングまたは超高処理スクリーニングを実行する能力においても、また、ライブラリー成分の量が限定されるという見地からも、サンプル容量の減少は大きな関心事だからである。
従って、増幅改良法、特に、ＤＮＡまたはＲＮＡポリヌクレオチド標的の大規模増幅を可能とする方法が求められている。本明細書に記載される発明はこの需要を満たすものである。
本明細書に引用されるすべての文献（特許出願および公報を含む）は、その全体が参考として援用される。
（発明の開示）
本発明は、ランダムにハイブリダイズしたＲＮＡ／ＤＮＡによる等温性大規模増幅のための方法、組成物、およびキットを始め、その増幅法の応用を提供する。
本発明は、ランダムにハイブリダイズしたＲＮＡ／ＤＮＡによる等温性大規模増幅のための方法、組成物、およびキットを始め、その増幅法の応用を提供する。
従って、１つの局面では、本発明は、テンプレートポリヌクレオチドの増幅法であって、（ａ）反応混合物をインキュベートする工程で、前記反応混合物は（ｉ）テンプレートポリヌクレオチド、（ｉｉ）テンプレートポリヌクレオチドの複数部位にハイブリダイズすることが可能で、ＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分を含む複合プライマーである第１プライマー、（ｉｉｉ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および、（ｉｖ）ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ（別の酵素として存在してもよいし、あるいは、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼとＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼの両ポリメラーゼ活性を含む酵素として存在してもよい）を含み、インキュベーションは、複合プライマーのランダムハイブリダイゼーション、プライマー伸長、および、ある実施形態では、プライマー伸長産物のテンプレートポリヌクレオチドからの置換を可能とする条件下で行われ、それによってＲＮＡ／ＤＮＡの部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体が生成される工程；および、（ｂ）反応混合物をインキュベートする工程で、前記反応混合物は（ｉ）工程（ａ）によって生成された反応産物（またはその一定部分）、（ｉｉ）ＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分を含む複合プライマー（第１プライマーと同じであっても、別のプライマーであってもよい）、（ｉｉｉ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および、（ｉｖ）ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する因子（例えば、酵素）を含み、インキュベーションは、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からのＲＮＡの切断、プライマーハイブリダイゼーション、プライマー伸長を可能とし、かつ、（ａ）の複合体において、そのＲＮＡが切断され、別の複合プライマーがテンプレートに結合して伸長される時、プライマー伸長産物の（ａ）の複合体からの置換を可能とする条件下で行われ、それによってポリヌクレオチド（一般的には、ＤＮＡ）増幅産物の多数コピーが生成される工程を含む方法を提供する。テンプレートポリヌクレオチドがＲＮＡである実施形態では、工程（ａ）の反応混合物はさらに、（ｖ）ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する因子（例えば、酵素）を含み、それによって、テンプレートＲＮＡおよび第１プライマー伸長産物を含む複合体からテンプレートＲＮＡが切断される。ある実施形態では、工程（ｂ）の反応混合物は、工程（ａ）による反応混合物（またはその一定部分）を含む。別の実施形態では、部分的ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する因子（例えば、ＲＮアーゼＨ）、および、要すれば随意にＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼを、工程（ａ）の反応混合物に添加することによって工程（ｂ）を起動する。ある実施形態では、工程（ａ）および／または工程（ｂ）の反応混合物はさらに、補助プライマーを含む。ある実施形態では（一般に、テンプレートポリヌクレオチドがＤＮＡである実施形態）、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼは反応混合物（ａ）において省略され得る。
別の局面において、本発明は、反応混合物をインキュベートすることによってテンプレートポリヌクレオチドを増幅する方法であって、前記反応混合物は（ａ）ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体であって、前記複合体は、第１反応混合物をインキュベートすることによって生成され、前記第１反応混合物は、（ｉ）ポリヌクレオチドテンプレート、（ｉｉ）複合プライマーである第１プライマーで、前記複合プライマーはＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分とを含み、テンプレートポリヌクレオチドの複数部位にハイブリダイズすることが可能である第１プライマー、（ｉｉｉ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および、（ｉｖ）ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼを含み、インキュベーション工程は、複合体プライマーのランダムハイブリダイゼーション、プライマー伸長、および、プライマー伸長産物のテンプレートポリヌクレオチドからの置換を可能とする条件下で行われ、それによって、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体が生成され、（ｂ）ＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分を含む複合プライマー、（ｃ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および、（ｄ）ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する酵素を含み、インキュベーション工程は、プライマーハイブリダイゼーション、プライマー伸長、および、ＲＮＡのＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からの切断を可能とし、および、工程（ａ）の複合体において、そのＲＮＡが切断され、別の複合プライマーが結合して伸長される時、複合プライマーの、工程（ａ）の複合体からの置換を可能とする条件下で行われ、それによってポリヌクレオチド増幅産物の多数コピーが生成される方法を提供する。ある実施形態では、反応混合物および／または第１反応混合物はさらに、補助プライマーを含む。テンプレートポリヌクレオチドがＲＮＡである実施形態では、工程（ａ）のテンプレートＲＮＡは切断を促進する条件または因子を通じてプライマー伸長後に切断される。ある実施形態では、第１反応混合物はさらに、（ｖ）ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する因子（例えば、酵素）を含み、それによって、テンプレートＲＮＡおよび複合プライマー伸長産物を含む複合体からテンプレートＲＮＡが切断される。ある実施形態（一般に、テンプレートポリヌクレオチドがＤＮＡであるもの）では、部分的ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖を含む複合体が、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼを用いることなく生成されることがある。
別の局面において、本発明は、反応混合物をインキュベートすることによってテンプレートポリヌクレオチドを増幅する方法であって、前記反応混合物は（ａ）第１プライマー伸長産物および第２プライマー伸長産物からなる複合体であって、第１プライマー伸長産物は、標的ポリヌクレオチドにハイブリダイズしたランダムプライム型第１プライマーの、ＤＮＡポリメラーゼによる伸長によって生成され、第１プライマーはＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分を含む複合プライマーであり、テンプレートポリヌクレオチドの複数部位にハイブリダイズすることが可能であり、第２プライマー伸長産物は、第１プライマー伸長産物にハイブリダイズした第２プライマーの伸長によって生成され、（ｂ）第２プライマー伸長産物にハイブリダイズすることが可能な、ＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分を含む複合プライマー、（ｃ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および（ｄ）ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する酵素を含み、インキュベーションは、プライマーハイブリダイゼーション、プライマー伸長、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ２重鎖からのＲＮＡ切断を可能とし、かつ、工程（ａ）の複合体において、そのＲＮＡが切断され、別の複合プライマーが結合して伸長される時、複合プライマーの、工程（ａ）の複合体からの置換を可能とする条件下で行われ、それによってポリヌクレオチド増幅産物の多数コピーが生成される方法を提供する。テンプレートポリヌクレオチドがＲＮＡである実施形態では、第１プライマー伸長産物は、標的ＲＮＡにハイブリダイズしたランダムプライム型プライマーの、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼによる伸長によって生成される。ある実施形態では、第１プライマー伸長産物および／または第２プライマー伸長産物は、補助プライマーの存在下に生成される。
別の局面において、本発明は、ポリヌクレオチドテンプレートを増幅する方法であって、（ａ）テンプレートのポリヌクレオチド鎖に対して複合プライマーをランダムにプライミングさせる工程であって、複合プライマーはＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分を含み、テンプレートの複数のポリヌクレオチド部位にハイブリダイズすることが可能であり、（ｂ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、およびＲＮＡ／ＤＮＡからＲＮＡを切断する因子の存在下にテンプレート鎖をインキュベートする工程であって、ポリヌクレオチド増幅産物の多数コピーが、プライマー伸長および鎖置換を通じて生成される工程を含む方法を提供する。ある実施形態では、ランダムなプライミングはＤＮＡポリメラーゼの存在下に行われる。ある実施形態では、工程（ａ）および／または工程（ｂ）において補助プライマーが含まれる。ある実施形態（一般に、テンプレートポリヌクレオチドがＤＮＡであるもの）では、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼは、インキュベーション工程から省略される。
別の局面において、下記のような過程を持つテンプレートＲＮＡポリヌクレオチドを増幅する方法を提供する。複数のテンプレートポリヌクレオチド配列が反応混合物をインキュベートすることによって増幅される。その反応混合物は（ａ）第１プライマー伸長産物および第２プライマー伸長産物からなる複合体であって、第１プライマー伸長産物は、標的ＲＮＡ鎖にハイブリダイズした第１プライマーの、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼによる伸長によって生成され、第１プライマーはＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分を含む複合プライマーであり、第１プライマーは、テンプレートＲＮＡの複数部位にハイブリダイズすることが可能であり、第２プライマー伸長産物は、第１プライマー伸長産物にハイブリダイズした第２プライマーの伸長によって生成され、ＲＮＡは第１および第２プライマー伸長産物からなる複合体から切断され（例えば、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する酵素を、切断を可能とする条件、例えば、加熱および／またはアルカリ性条件下で使用する）、（ｂ）第２プライマー伸長産物にハイブリダイズすることが可能な、ＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分を含む複合プライマー、（ｃ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および、（ｄ）ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する酵素を含み、インキュベーションは、プライマーハイブリダイゼーション、プライマー伸長、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ２重鎖からのＲＮＡ切断を可能とし、かつ、工程（ａ）の複合体において、そのＲＮＡが切断され、別の複合プライマーが第２プライマー伸長産物に結合して伸長される時、複合プライマーの、工程（ａ）の複合体からの置換を可能とする条件下で行われ、それによってポリヌクレオチド増幅産物の多数コピーが生成される。ある実施形態では、工程（ａ）の複合体は補助プライマーの存在下に生成される。ある実施形態では、第２プライマーは、切断ＲＮＡテンプレートの断片（単数または複数）を含む。
別の局面では、本発明は、ポリヌクレオチドテンプレートを増幅する方法であって、（ａ）テンプレートポリヌクレオチドに対して第１プライマーをランダムにプライミングさせる工程であって、前記第１プライマーは、ＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分を含み、テンプレートの複数のポリヌクレオチド部位にハイブリダイズすることが可能な複合プライマーであり、（ｂ）第１プライマーをＤＮＡポリメラーゼによって伸長させる工程、（ｃ）ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する因子によって第１プライマーからＲＮＡを切断する工程、（ｄ）ＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分を含む複合プライマーである増幅プライマーをテンプレートポリヌクレオチドにハイブリダイズする工程、（ｅ）ハイブリダイズした増幅プライマーを鎖置換ＤＮＡ合成によって伸長させる工程、および、（ｆ）ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する因子によって増幅プライマーからＲＮＡを切断し、別の増幅プライマーがハイブリダイズし伸長できるようにし、それによってポリヌクレオチド増幅産物の多数コピーが生成されるようにする工程による方法を提供する。
別の局面で、本発明は、反応混合物をインキュベートすることによってテンプレートポリヌクレオチドを増幅する方法であって、前記反応混合物は（ａ）ポリヌクレオチドテンプレート鎖、（ｂ）複合プライマーである第１プライマーで、前記複合プライマーはＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分とを含み、テンプレートポリヌクレオチドの複数部位にハイブリダイズすることが可能である第１プライマー、（ｃ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、（ｄ）ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および、（ｅ）ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する因子を含み、ポリヌクレオチド増幅産物の多数コピーがプライマー伸長と鎖置換によって生成される方法を提供する。ある実施形態（一般に、テンプレートポリヌクレオチドがＤＮＡである実施形態）では、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼは反応混合物から省略される。
当業者には明白なように、ポリヌクレオチド（例えば、ＤＮＡまたはＲＮＡ）テンプレートの複数コピー、または、ポリヌクレオチドテンプレートに対して相補的なポリヌクレオチド配列の複数コピーの生産への言及は、そのような配列を含む、そのような配列を含有する、あるいは、そのような配列からなる産物を指す。当業者には明白なように、得られた混合物を合わせてインキュベートすることに言及する局面は、各種混合物（様々な組み合わせによる、および／または、部分的組み合わせによる）をインキュベートして所望の産物を形成させることを含む方法態様も含む。
本発明の方法で使用される複合プライマーの各種実施形態は本明細書に記載される。例えば、ある実施形態では、複合プライマーのＲＮＡ部分は、３’ＤＮＡ部分に対して５’である。また別の実施形態では、５’ＲＮＡ部分は、３’ＤＮＡ部分に隣接する。別の実施形態では、複合プライマーのＲＮＡ部分は７から約２０個のヌクレオチドから成り、複合プライマーのＤＮＡ部分は、約５から約２０個のヌクレオチドからなる。また別の実施形態では、複合プライマーのＲＮＡ部分は、約１０から約２０個のヌクレオチドから成り、複合プライマーのＤＮＡ部分は、約７から約２０個のヌクレオチドからなる。ある実施形態では、複合プライマーは、下記：
ある実施形態では、複合プライマーは、ランダム配列、または部分的にランダム化された配列を含むが、一方ある実施形態では（例えば、テンプレートポリヌクレオチドがＲＮＡである実施形態）、ランダムまたは部分的にランダムな配列を含むプライマーの使用は排除される。ランダムまたは部分的にランダムな配列を持つ複合プライマーを利用する実施形態では、複合プライマーは、少なくとも２種、少なくとも３種、少なくとも４種、少なくとも５種、少なくとも１０種、少なくとも１５種、少なくとも２０種、少なくとも３０種、少なくとも４０種、少なくとも５０種、または少なくとも１００種の異なる配列を含む異なるプライマーの集団またはプールであってもよい。別の実施形態では、複合プライマーは、異なる複数のヌクレオチド塩基にハイブリダイズすることが可能な「縮重」ヌクレオチド（例えば、イノシンは、四つの全ての標準的塩基にハイブリダイズすることが可能である）を１つ以上含む。
ある実施形態では、標的ポリヌクレオチド（例えば、ｍＲＮＡまたはゲノムＤＮＡ）にハイブリダイズする複合プライマーと、単一プライマー等温増幅（すなわち、前記方法の相（ｂ））に使用される複合プライマーは同じである。ある実施形態では、標的ポリヌクレオチド（例えば、ｍＲＮＡまたはゲノムＤＮＡ）にハイブリダイズする複合プライマーと、単一プライマー等温増幅に使用される複合プライマーは異なる。ある実施形態では、標的ポリヌクレオチドにハイブリダイズする、２種（またはそれを超えて）の異なる複合プライマーが本発明の方法で使用される。
本法は、例えば、ＤＮＡ（例えば、ヒトおよび他の哺乳類ゲノムＤＮＡを含むゲノムＤＮＡ）および、ＲＮＡ（例えば、全体ＲＮＡ、ｍＲＮＡ、非コードＲＮＡおよびリボソームＲＮＡ）を含む任意の標的ポリヌクレオチドを増幅するのに運用することが可能である。１つ以上の工程は、組み合わせてもよいし、および／または、継時的に（多くの場合、要求産物の形成が可能である限り、任意の順序で）実行してもよく、また明らかなように、本発明は、本明細書に記載される工程の各種組み合わせを含む。また、本発明は、開始工程、すなわち第１工程が、ここに記載される工程の内からの任意の工程である方法をも含むことは明白であり、また記載されてもいる。例えば、本発明の方法は、第１工程が複合プライマーのランダムハイブリダイゼーションであることを要求していない。本発明の方法は、後続の、「下流」工程が開始工程となる実施形態をも含む。
本法および組成物において使用が可能な酵素は、本明細書に記載される。例えば、ＲＮＡを切断する因子（例えば、酵素）はＲＮアーゼＨであってもよく、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼは逆転写酵素であってもよい。ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼは、ＲＮアーゼＨ酵素活性を含んでもよく、あるいは、別々の酵素を用いてもよい。同様に、ＤＮＡポリメラーゼは、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼとＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ両方の酵素活性を含んでもよく、あるいは、別々の酵素を用いてもよい。ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、およびＲＮＡを切断する酵素も同じ酵素であってもよいし、あるいは、上記活性のそれぞれを含む別々の酵素を用いてもよい。
ある実施形態では、本発明の方法は、標識ポリヌクレオチド産物（一般にＤＮＡ産物）を生成するのに使用される。標識ＤＮＡ産物を生成する方法の、ある実施形態では、使用される少なくとも１つのタイプのｄＮＴＰは、標識ｄＮＴＰである。標識ＤＮＡ産物を生成する方法の別の実施形態では、標識された複合プライマーが使用される。
本発明はまた、本発明の増幅法の産物を用いる（通常、分析する）方法、例えば、配列変化の検出（例えば、遺伝子タイピング、核酸変異の検出、スプライシング変異体分析等）；目的の配列の有無の決定；目的の配列の定量；遺伝子発現プロファイリング；サブトラクティブ・ハイブリダイゼーション；サブトラクティブハイブリダイゼーション・プローブの調製；差動増幅；ライブラリー（ゲノム、ｃＤＮＡ、および差動発現ライブラリーを含む）の調製；不動化核酸の調製（マイクロアレイ上に不動化した核酸であってもよい）；目的の配列の検出および定量−この中には例えば、配列決定、配列変動の検出、および遺伝子タイピングが含まれる−のためのアレイ分析（高密度アレイを含む）用標識プローブの調製；比較ゲノムハイブリダイゼーション；新規ＲＮＡの検出および／または特定；および、本発明の方法によって生成される増幅核酸産物による核酸の特性解明を提供する。
本発明のこれらの方法から任意に選択されるものを用いて、サンプル中の対象ポリヌクレオチド配列の特性解明に好適なポリヌクレオチド産物を生成することが可能である。１つの実施形態では、本発明は、対象ポリヌクレオチド配列の特性を解明する（例えば、配列の有無を検出する、および／または、定量する）方法であって、（ａ）本明細書に記載される方法の内から任意に選択される方法を用いて標的ポリヌクレオチドを増幅すること、（ｂ）その増幅産物を分析することを含む方法を提供する。増幅産物を分析する工程（ｂ）は、従来技術で既知の方法、あるいは、本明細書で記載される方法の内から任意に選択される方法を用いて、例えば、プローブにハイブリダイズする増幅産物を検出および／または定量することによって実行することが可能である。これらの増幅産物は標識されてもよいし、標識されなくともよい。本発明の方法のいずれも、方法の適当な工程において標識ヌクレオチドおよび／または標識複合プライマーを取り込むことによって標識されるポリヌクレオチド（例えば、ＤＮＡ）産物を生成するように用いることが可能である。これらの標識産物は、ｃＤＮＡマイクロアレイおよびオリゴヌクレオチドアレイのようなアレイの使用を含む従来技術で既知の方法による定量および／または特定には特に好適である。１つの局面において、本発明は、対象ポリヌクレオチド配列の特性を解明する方法であって、（ａ）本明細書に記載される方法を用いて標的ポリヌクレオチドを増幅して標識ポリヌクレオチド産物を生成すること、および、（ｂ）該標識ポリヌクレオチド産物を分析することを含む方法を提供する。ある実施形態では、ポリヌクレオチド産物の分析工程は、前記産物の量を定めることを含み、これによってサンプル中に存在する対象ポリヌクレオチド配列の量が定量される。
増幅産物はまた、例えば、オリゴヌクレオチド連結を基礎とするアッセイ、Ｉｎｖａｄｅｒ、Ｃｌｅａｖａｓｅ、またはプライマー制限伸長による分析法、および従来技術で既知のその他の方法を用いて、新たな分析、例えば、配列分析、多型検出（多重ＳＮＰ検出を含む）のためのテンプレートとして使用することも可能である。全体として大容量の投入材料を必要とする方法では、本発明の方法は、ポリヌクレオチドプールを「前段」増幅し、その後の分析に十分な投入材料を生成するために使用することが可能である。
別の実施形態では、ポリヌクレオチド産物は、例えば、それらを少なくとも１本のプローブと接触させることによって分析することが可能である。ある実施形態では、前記少なくとも１本のプローブはマイクロアレイとして提供される。マイクロアレイは、紙、ガラス、セラミックス、プラスチック、ポリプロピレン、ポリスチレン、ナイロン、ポリアクリルアミド、ニトロセルロース、シリコン、その他の金属、および、光ファイバーからなる群から選択される材料から製造される、固形または半固形基板の上に不動化された少なくとも１本のプローブを含むことが可能である。プローブは、二次元構造、または、ピン、ロッド、ファイバー、テープ、スレッド、ビーズ、粒子、マイクロタイターウェル、毛細管、および、シリンダーを含む三次元構造を取る固形または半固形基板の上に不動化することが可能である。
別の局面で、本発明は、サンプルにおける遺伝子発現プロフィールを確定する方法であって、（ａ）本明細書に記載される方法の内から任意に選択される方法を用いてサンプル中のＲＮＡテンプレートを増幅すること、および、（ｂ）サンプル中の各対象ＲＮＡ配列の増幅産物を定量しそれによってサンプルの遺伝子発現プロフィールを確定することを含む方法を提供する。本発明はさらに、サンプル中の各対象ＲＮＡ配列の増幅産物を定量することによって遺伝子発現プロフィールを確定する方法であって、サンプルは、本明細書に記載される方法の内から任意に選択される方法を用いて増幅されたＲＮＡテンプレートの多数コピーを含み、それらを通じてサンプルの遺伝子発現プロフィールが確定される方法を提供する。
さらに、本発明はまた、ポリヌクレオチドテンプレートを活性化する方法を提供する。本発明の増幅方法は、テンプレートポリヌクレオチド配列の代表的増幅を実現するので、本法によって生成される増幅産物は、元のテンプレートポリヌクレオチドの公文書供給源として使用することが可能である。従って、本発明は、本発明の方法によって生成される増幅産物を保存することによってポリヌクレオチドテンプレートを公文書化する方法を提供する。公文書化された増幅産物は、本明細書に記載されるやり方で分析してもよいし、あるいは、本発明の方法に従ってさらに増幅してもよい。
別の局面で、本発明は、本明細書に記載される方法によって生産される産物（例えば、テンプレートポリヌクレオチドの多数コピー）を提供する。
本発明はまた、本明細書に記載される増幅法に使用されるキット、複合体、反応混合物、および各種成分（および、それらの成分の各種組み合わせ）を含むシステムを提供する。
別の局面で、本発明は、本明細書に記載される複合体（一般に、最終増幅産物に対して中間体と考えられるもの）の内から任意に選択される複合体を含む組成物を提供する。
別の局面で、本発明は、本発明の方法の内から任意に選択される局面によって生産される、任意の１つ以上の産物（中間体を含む）、および、その産物（中間体を含む）を含む組成物を含む。
別の局面で、本発明は、本明細書に記載される成分の様々の組み合わせを含む反応混合物（または、反応混合物を含む組成物）を提供する。
別の局面で、本発明は、本明細書に記載される方法を実行するためのキットを提供する。これらのキットは、適当に包装され、一般に（必ずしもそうとは限らないが）適当な指示を含む状態で、増幅法に使用される１種以上の成分を含む。
別の局面で、本発明は、本明細書に記載される増幅法を実行するためのシステムを提供する。
（発明の概観とその利点）
本発明は、大規模増幅のための新規の方法、組成物およびキットを開示する。本法は、テンプレートポリヌクレオチド（例えば、ｍＲＮＡまたはゲノムＤＮＡ）内部の複数部位に結合が可能な複合プライマーを用いる増幅法であって、莫大な数のテンプレートポリヌクレオチド配列（例えば、事実上全てのゲノムＤＮＡ）の増幅を実現する方法を提供する。本法は、ＤＮＡテンプレート、またはＲＮＡテンプレートのいずれかに好適に使用される。本法は、各種の用途、例えば、比較ゲノムハイブリダイゼーション、発現プロファイリング、および、例えば、マクロアレイ法による多重分析に基づく複数遺伝子タイプの決定に直ぐに役立つポリヌクレオチド（一般に、ＤＮＡ）産物を生成する。本法は自動化し易く、加熱サイクルを必要としない。従って、本発明の方法の主要利点の１つは、配列の全プール（または、所望の増幅程度に応じてそのサブセット）の増幅を可能とする能力であって、これは、比較ゲノムハイブリダイゼーション、ｃＤＮＡライブラリーの作製、サブトラクティブハイブリダイゼーション・プローブの作製、および、複数遺伝子タイプ決定を含むアレイ使用アッセイのような応用にとって必須である。
本発明は、大規模増幅のための新規の方法、組成物およびキットを開示する。本法は、テンプレートポリヌクレオチド（例えば、ｍＲＮＡまたはゲノムＤＮＡ）内部の複数部位に結合が可能な複合プライマーを用いる増幅法であって、莫大な数のテンプレートポリヌクレオチド配列（例えば、事実上全てのゲノムＤＮＡ）の増幅を実現する方法を提供する。本法は、ＤＮＡテンプレート、またはＲＮＡテンプレートのいずれかに好適に使用される。本法は、各種の用途、例えば、比較ゲノムハイブリダイゼーション、発現プロファイリング、および、例えば、マクロアレイ法による多重分析に基づく複数遺伝子タイプの決定に直ぐに役立つポリヌクレオチド（一般に、ＤＮＡ）産物を生成する。本法は自動化し易く、加熱サイクルを必要としない。従って、本発明の方法の主要利点の１つは、配列の全プール（または、所望の増幅程度に応じてそのサブセット）の増幅を可能とする能力であって、これは、比較ゲノムハイブリダイゼーション、ｃＤＮＡライブラリーの作製、サブトラクティブハイブリダイゼーション・プローブの作製、および、複数遺伝子タイプ決定を含むアレイ使用アッセイのような応用にとって必須である。
本発明の増幅法は、複合プライマー・ランダムハイブリダイゼーション、プライマー伸長、および、鎖置換による複合プライマー伸長産物の置換を含み、ＲＮＡ−ＤＮＡヘテロ二重鎖を含む複合体が生成され、次いで、その後の増幅用基質として該複合体を用いて複合プライマー依存性等温性増幅を行う。これは、高速増幅を可能とし、かつ、本発明を、他の鎖置換増幅法、例えばＭＤＡと区別する局面である。
１つの局面において、本発明の方法は２つの相を含む。すなわち、（ａ）テンプレートポリヌクレオチドに対する複合プライマーのランダムハイブリダイゼーション、プライマー伸長、および、鎖置換ＤＮＡ合成による複合プライマー伸長産物の置換であり、これによってＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体が生成される相、および、（ｂ）ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体をその後の増幅用の基質として用いる複合プライマー依存性単一プライマー等温増幅相である。
本法は一般に、テンプレートポリヌクレオチド（例えば、ゲノムＤＮＡテンプレート、ｍＲＮＡ、または非コードＲＮＡ）にランダムにプライミングするように、特別設計のプライマー、一般にはＲＮＡ／ＤＮＡ複合プライマーを使用することを含む。本明細書で用いられる「ランダムにプライミングする」、または「ランダムハイブリダイゼーション」という用語は、複合プライマーが、テンプレートポリヌクレオチド内部の複数部位にハイブリダイズすることを意味する。ある実施形態では、本発明の局面は、プライマー伸長時、テンプレートの下流位置にハイブリダイズしたプライマーについて鎖置換ＤＮＡ合成によって（例えば、鎖置換活性を持つＤＮＡポリメラーゼによってプライマー伸長することによって）、テンプレートポリヌクレオチドからプライマー伸長産物を置換することである。
従って、本発明は、反応混合物をインキュベートする方法であって、前記反応混合物は、（ａ）ポリヌクレオチドテンプレート、（ｂ）ＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分とを含む複合プライマーであって、テンプレートポリヌクレオチドの複数部位にハイブリダイズすることが可能な複合プライマー、（ｃ）鎖置換活性を持つＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および、（ｄ）ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼを含み、インキュベーションは、複合プライマーのランダムハイブリダイゼーション、プライマー伸長、および、プライマー伸長反応産物の、テンプレートポリヌクレオチドからの置換を可能とする条件下で行われ、そのために、一般に（ａ）テンプレートポリヌクレオチドのコピー、および／または、複合プライマー配列に付属する（伸長を通じて）ポリヌクレオチド配列の相補体のコピー、および、（ｂ）テンプレートポリヌクレオチドのコピー、および、複合プライマー配列の相補体に付属する（伸長を通じて）テンプレートポリヌクレオチドの相補体のコピーを含む中間複合体集団が生成される方法を提供する。中間複合体は、２本鎖であってもよいし、あるいは、部分的に２本鎖であってもよい。中間複合体中に複合プライマー配列が存在するために、この複合体は、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖部分的ヘテロ二重鎖を含む。ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖のＲＮＡ部分は、一般に、複合プライマーのＲＮＡ部分によって導入され、ヘテロ二重鎖のＤＮＡ部分は、複合プライマーのＲＮＡ部分の相補体からなる。簡単のために、中間複合体のこの集団を「ＲＮＡ／ＤＮＡ部分ヘテロ二重鎖を含む複合体」と名づける。
一般に、複合プライマーは、テンプレートポリヌクレオチドにランダムにプライミングすることが可能な３’ＤＮＡ部分を少なくとも含む。従って、この説明が明らかにしていくように、ある配列にハイブリダイズするプライマーへの参照は、プライマーの少なくとも一部がハイブリダイズする実施形態、プライマーの２つ（またはそれを超える部分）（プライマーのハイブリダイズしていない（ループアウト）部分によって隔てられている）がハイブリダイズする実施形態、および、全プライマーがハイブリダイズする実施形態を含む。
ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体は、下記のようにさらに新たな増幅の基質となる。ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する酵素（例えば、ＲＮアーゼＨ）は、該ハイブリッドからＲＮＡ配列を切断し、３’１本鎖ＤＮＡ配列を残し、後者は、複合プライマー（これは、第１複合プライマーと同じであっても、同じでなくともよい）の結合にとって利用可能となる。ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼによる結合複合プライマーの伸長はプライマー伸長産物を生成し、これは、先に結合切断された第１プライマー伸長産物を置換するので、ポリヌクレオチド（一般に、ＤＮＡ）産物が蓄積する。一般に、ある任意のテンプレートポリヌクレオチドについて、増幅産物は、そのセンスおよびアンチセンスコピーの混合物であることが理解される。例えば、テンプレートポリヌクレオチドが２本鎖ＤＮＡである場合、増幅産物は各鎖に一致する。テンプレートポリヌクレオチドが１本鎖である場合、一般には、テンプレートポリヌクレオチドのコピー（センスコピー）、およびテンプレートポリヌクレオチドの相補体（アンチセンスコピー）である増幅産物が生産される。
本明細書に開示される方法は、ＤＮＡ（例えばゲノムＤＮＡ）およびＲＮＡ（例えばｍＲＮＡおよびリボソームＲＮＡ）の両標的を含めた任意の標的ポリヌクレオチドの増幅に適用することが可能である。本説明から明らかなように、また実施例で示されるように、本発明の方法は複合プライマー依存的である。すなわち、増幅は、複合プライマーの不在下には観察されない。
本発明の別の局面では、テンプレートポリヌクレオチド、複合プライマー、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、およびＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼを含む反応混合物には補助プライマーが存在する。本明細書で用いる場合、「補助プライマー」とは、ランダムな、および／または、部分的にランダム化されたプライマー集団を指す。増幅時にランダムプライマー集団を含めることは、増幅産物の生産効率、および／または、増幅産物の大規模再現性（テンプレートがＤＮＡであるかＲＮＡであるかを問わず、テンプレート全体的な、例えば、テンプレートの代表的な増幅を実現する）を強化すると考えられる。
ある局面では、本明細書において、ゲノムＤＮＡの大規模増幅が示される。しかしながら、本発明の増幅法は、ポリヌクレオチドのどのようなプールまたはサブセット（または、所望の増幅程度に応じて、プールまたはサブセットの相当部分を現す複数ポリヌクレオチド）の増幅にも好適である。
従って、１つの局面では、本発明は、テンプレートポリヌクレオチドの増幅法であって、（ａ）反応混合物をインキュベートする工程で、前記反応混合物は（ｉ）テンプレートポリヌクレオチド、（ｉｉ）テンプレートポリヌクレオチドの複数部位にハイブリダイズすることが可能で、ＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分を含む複合プライマーである第１プライマー、（ｉｉｉ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および、（ｉｖ）ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ（別の酵素として存在してもよいし、あるいは、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼとＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼの両ポリメラーゼ活性を含む酵素として存在してもよい）を含み、インキュベーションは、複合プライマーのランダムハイブリダイゼーション、プライマー伸長、および、プライマー伸長産物のテンプレートポリヌクレオチドからの置換を可能とする条件下で行われ、それによってＲＮＡ／ＤＮＡの部分的ヘテロ二重鎖が生成される工程；および、（ｂ）反応混合物をインキュベートする工程で、前記反応混合物は（ｉ）工程（ａ）によって生成された反応産物（またはその一定部分）、（ｉｉ）ＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分を含む複合プライマー（第１プライマーと同じであっても、別のプライマーであってもよい）、（ｉｉｉ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および、（ｉｖ）ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する因子（例えば、酵素）を含み、インキュベーションは、プライマーハイブリダイゼーション、プライマー伸長、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からのＲＮＡの切断を可能とし、かつ、（ａ）の複合体において、そのＲＮＡが切断され、別の複合プライマーがテンプレートに結合して伸長される時、（ａ）の複合体からのプライマー伸長産物の置換（すなわち、鎖置換ＤＮＡ合成）を可能とする条件下で行われ、それによってポリヌクレオチド（一般的には、ＤＮＡ）増幅産物の多数コピーが生成される工程を含む方法を提供する。テンプレートポリヌクレオチドがＲＮＡである実施形態では、工程（ａ）の反応混合物はさらに、（ｖ）ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する因子（例えば、酵素）を含み、それによって、テンプレートＲＮＡおよび第１プライマー伸長産物を含む複合体からテンプレートＲＮＡが切断される。ある実施形態では、工程（ｂ）の反応混合物は、工程（ａ）による反応混合物（またはその一定部分）を含む。別の実施形態では、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する因子（例えば、ＲＮアーゼＨ）、および、要すれば随意にＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼを、工程（ａ）の反応混合物に添加することによって工程（ｂ）を起動する。ある実施形態では、工程（ａ）および／または工程（ｂ）の反応混合物はさらに、補助プライマーを含む。
別の局面において、本発明は、反応混合物をインキュベートすることによってテンプレートポリヌクレオチドを増幅する方法であって、前記反応混合物は（ａ）第１プライマー伸長産物および第２プライマー伸長産物からなる複合体であって、第１プライマー伸長産物は、標的ポリヌクレオチドにハイブリダイズしたランダムプライム型第１プライマーの、ＤＮＡポリメラーゼによる伸長によって生成され、第１プライマーはＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分を含む複合プライマーであり、第１プライマーは、テンプレートポリヌクレオチドの複数部位にハイブリダイズすることが可能であり、第２プライマー伸長産物は、第１プライマー伸長産物にハイブリダイズした第２プライマーの伸長によって生成され、（ｂ）第２プライマー伸長産物にハイブリダイズすることが可能な、ＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分を含む複合プライマー、（ｃ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および（ｄ）ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する酵素を含み、インキュベーションは、プライマーハイブリダイゼーション、プライマー伸長、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ２重鎖からのＲＮＡ切断を可能とし、かつ、工程（ａ）の複合体において、そのＲＮＡが切断され、別の複合プライマーが結合して伸長される時、複合プライマーの、工程（ａ）の複合体からの置換を可能とする条件下で行われ、それによってポリヌクレオチド増幅産物の多数コピーが生成される方法を提供する。ある実施形態では、第１プライマー伸長産物および／または第２プライマー伸長産物は、補助プライマーの存在下に生成される。
テンプレートポリヌクレオチドがＲＮＡである本発明の別の局面では、テンプレートＲＮＡは、複合プライマーのランダムハイブリダイゼーションおよびプライマー伸長の後で切断される。テンプレートＲＮＡは、従来技術でよく知られた方法、例えば、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する因子（例えば、ＲＮアーゼＨのような酵素）による切断、熱処理による切断、および化学的処理（例えば、アルカリ性条件下における処理）による切断を含む方法によって切断することが可能である。ある実施形態では、本発明は、反応混合物をインキュベートする方法であって、前記反応混合物は（ａ）ＲＮＡテンプレート、（ｂ）複合プライマーであって、ＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分とを含み、テンプレートＲＮＡの複数部位にハイブリダイズすることが可能な複合プライマー、（ｃ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、（ｄ）ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および、（ｅ）ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断することができる酵素を含み、インキュベーションは、複合プライマーのランダムハイブリダイゼーション、プライマー伸長、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ２重鎖からのテンプレートＲＮＡの切断を可能とし、それによってＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体が生成される方法を提供する。ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体は、前述のようにその後の増幅（すなわち、単一プライマー等温増幅）用の基質となる。ある実施形態では、反応混合物に補助プライマーが含まれる。
テンプレートポリヌクレオチドはまた、ｃＤＮＡ合成によってＲＮＡテンプレートから調製されてもよい。ｃＤＮＡ合成は、標準法、例えば、適当な反応条件（例えば、温度、ｐＨ、およびイオン条件）において、ｄＮＴＰの存在下、ランダムプライマー（例えば、ランダムヘキサマー・デオキシオリゴヌクレオチド）によるプライミングおよびＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ（例えば、逆転写酵素）によるプライマー伸長方法を用いて実現してもよい。実施が必要なのは、第１鎖ｃＤＮＡ合成のみである。なぜなら、本発明の方法に従って増幅が可能なＤＮＡポリヌクレオチドを生産するのは第１鎖ｃＤＮＡ合成だからである。
本発明の方法は、増幅産物を使用する方法（所謂「応用」）を含む。本発明はさらに、本発明の増幅法の産物を使用する（通常、分析する）方法、例えば、核酸変異検出法（遺伝子タイピング法を含む）、目的の配列の有無の決定、目的の配列の定量、不動化核酸の調製、比較ゲノムハイブリダイゼーション、新規核酸配列の発見、および、本発明の方法によって生成された増幅核酸配列による核酸の特性解明のような方法を提供する。
本発明の方法の内から任意に選択される方法を用いて、サンプルにおける対象ポリヌクレオチド配列の特性解明に好適なポリヌクレオチド産物を生成することが可能である。１つの実施形態において、本発明は、対象ポリヌクレオチド配列の特性を解明する（例えば、（有無を）検出する、および／または、定量する）ための方法であって、（ａ）本明細書に記載される方法の内から任意に選択される方法を用いて標的ポリヌクレオチドを増幅すること、および、（ｂ）増幅産物を分析することを含む方法を提供する。増幅産物を分析する工程（ｂ）は、従来技術で既知の方法または本明細書に記載される方法の内から任意に選択される方法、例えば、プローブにハイブリダイズする増幅産物を検出および／または定量することによって実行することが可能である。これらの増幅産物は標識されてもよいし、されていなくてもよい。本発明の方法の内から任意に選択される方法を用いて、方法の適当な工程において標識ヌクレオチドおよび／または標識複合プライマーを取り込ませることによってポリヌクレオチド（例えば、ＤＮＡ）産物を生成することが可能である。これらの標識産物は、ｃＤＮＡマイクロアレイおよびオリゴヌクレオチドアレイのようなアレイの使用を含む、従来技術で既知の方法による定量および／または検出には特に好適である。
本発明は、本発明の増幅法を用いてポリヌクレオチド産物を生成し、その産物を、検出／定量法、例えば、アレイ技術、または溶液相技術に基づく検出／定量法を用いて分析することによって対象のポリヌクレオチド配列の特性を解明する（例えば、有無を検出する、および／または、定量する）方法を提供する。これらの増幅産物は標識されてもよいし、されていなくてもよい。
本発明の方法を用いて、ポリヌクレオチドのプール（または、所望の増幅程度に応じて、プールの相当部分を代表するポリヌクレオチド）を増幅して、後続分析のために十分な投入材料を生成してもよい。従って、本明細書に記載されるように、増幅産物はまた、例えば、配列決定、多型検出、例えば、オリゴヌクレオチド連結を基礎としたアッセイによる多型検出（多重ＳＮＰ検出を含む）、Ｉｎｖａｄｅｒ、Ｃｌｅａｖａｓｅ、またはプライマー制限伸長による分析等の、後続分析のためのテンプレートとして使用することも可能である。増幅産物はまた、本発明の方法、または、従来技術で既知の、他の増幅法による後続増幅用テンプレートとして使用してもよい。
さらに別の実施形態では、本発明は、本発明の増幅法による増幅産物を用いた、核酸のマイクロアレイを生成する方法を含めた、核酸を不動化する方法を提供する。
別の実施形態では、本発明は、ｃＤＮＡライブラリーの生成法、サブトラクティブハイブリダイゼーション・プローブの生成法、および、サブトラクティブハイブリダイゼーション・ライブラリーの生成法を提供する。
（発明の利点）
核酸の大規模増幅についてはこれまでにも様々な方法が開発されている。ＰＣＲによる方法、例えば、ＰＥＰは、非特異的増幅アーチファクトを生成したり、取り扱う座位の範囲が不完全であったり、多くの用途に使用できないほど不十分な長さのＤＮＡ産物しか生成しなかったりすることがある。さらに、ＰＣＲによる方法は、増幅され易い産物を生成するというＰＣＲ反応に特徴的な性向の問題を抱えており、そのために、増幅反応産物においてゲノム配列は偏って表示される。さらに、ＰＣＲによる方法は、厄介な熱サイクル工程を必要とする。
核酸の大規模増幅についてはこれまでにも様々な方法が開発されている。ＰＣＲによる方法、例えば、ＰＥＰは、非特異的増幅アーチファクトを生成したり、取り扱う座位の範囲が不完全であったり、多くの用途に使用できないほど不十分な長さのＤＮＡ産物しか生成しなかったりすることがある。さらに、ＰＣＲによる方法は、増幅され易い産物を生成するというＰＣＲ反応に特徴的な性向の問題を抱えており、そのために、増幅反応産物においてゲノム配列は偏って表示される。さらに、ＰＣＲによる方法は、厄介な熱サイクル工程を必要とする。
さらに、近年、遺伝子発現レベルを検出・定量するための方法がいくつか開発されている。例えば、定義されたｃＤＮＡまたはオリゴヌクレオチドのいずれかが、例えば、固体または半固体基板上の、または規定された粒子上の不連続部位に不動化されたマイクロアレイによって、ある任意の標本における多数遺伝子の発現を検出および／または定量することが可能である。これらの既知の方法を用いてサンプル中の多数のＲＮＡ分子種の有無を検出し、および／または、定量し、次に遺伝子発現プロファイリングの尺度として使用するためには、一般にｃＤＮＡを直接標識することが必要であり、そのためにはまた大量の全体投入ＲＮＡが必要とされる。従って、ｍＲＮＡを分析するために、ある任意の細胞または組織サンプルの全体ＲＮＡ調製物を用いる場合、アレイのような方法によるサンプルの遺伝子発現の分析には、一般に、５０から２００μｇ範囲の相当量の投入ＲＮＡを必要とする。同様に、アレイ技術によって遺伝子発現プロファイリングの単一分析のためには、一般に、全体ＲＮＡ調製物から精製された２から５μｇのｍＲＮＡが必要とされる。これは、必要な細胞数、または組織標本のサイズが極めて大きいので、アレイ技術に基づく方法にとっては明らかな制限となるが、しかも、これほどの細胞または組織標本を試験に利用することは、多くの場合ほとんど不可能か、または高価すぎる。この制限は、試験対象となる細胞が数少なく、および／または、インビトロで培養するのが困難な臨床標本の試験においては、また、エフェクター分子のライブラリー対する高処理スクリーニングにおいては殊に厳しい。さらに、従来の、転写によるｍＲＮＡ増幅法（例えば、Ｌｏｃｋｈａｒｔ ｅｔ ａｌ，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（１９９６），１４，１６７５−１６８０；ｖａｎ Ｇｅｌｄｅｒ ｅｔ ａｌ．，米国特許第５，７１６，７８５号に記載される）は、ＤＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼの増幅効率に限定され、これらの方法のいくつかは多段工程を必要とする。さらに、ポリメラーゼプロモーター配列が組み込まれる過程は非特異的増幅を生じ易い。
本発明の方法は、テンプレートポリヌクレオチド（ＲＮＡとＤＮＡの両方を含む）を効率的に増幅する能力を提供する。従って、本発明の増幅産物を用いることが可能な検出／定量法、例えば、アレイ技術に基づくもの、リアルタイムＰＣＲ、定量的ＴａｑＭａｎ、分子ビーコンによる定量的ＰＣＲ等の有用性は大きく強調される筈である。
本発明の方法は熱サイクル工程を必要とせず、工程は全て等温的に実施が可能である。ただし、各種工程は異なる温度で実施してもよい。この特質によって、数多くの利点、例えば、自動化の促進および高処理過程への適応を含む利点が得られる。等温反応は、一般に、熱サイクル工程によって得られるものよりも高速であり、本発明の方法を小型装置で実行するには好適である。
開始サンプルにおける核酸配列の表示を全体として変えない条件の下でテンプレートポリヌクレオチド配列（例えば、ゲノムＤＮＡ）のプールを効率的に増幅することを可能とすることは、強力なアレイ技術に基づく方法による検出法・定量法の有用性を大きく向上させる。
本発明の方法によってランダムな複製起動によるＲＮＡの効率的増幅を可能とすることは、サンプル中の配列プールの全配列（または、所望の増幅度に応じてプールの相当部分を代表する配列）、例えば、サンプルのｍＲＮＡ分子種の全長を表示する配列を表示する手段を提供する。本発明の方法は、増幅を起動するのにオリゴｄＴプライマー（ｍＲＮＡのポリＡ尾部に結合するための）に依存しない。従って、本方法は、非ポリＡ尾部ＲＮＡ、例えば、非コードＲＮＡおよび非真核細胞種のＲＮＡを増幅するのにも使用が可能である。本発明の方法は、サンプルの配列に関して事前の知識を必要としないから、新規転写物の発見に、仮にそれらが低量でしか存在せず、および／または、非コード転写物を表すものであったとしても、好適である。一般的に調製物中の核酸配列の表示を変えない条件下でＲＮＡを効率的に増幅が可能となることによって、強力なアレイ技術による検出法／定量法の有用性が大きく増強される。
（一般的技術）
別様に断らない限り、本発明の実施は、従来技術の錬度の範囲内にある、分子生物学（組み換え技術を含む）、微生物学、細胞生物学、生化学、および免疫学の通例技術を用いる。このような技術は、文献において、例えば、“Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，”第２版（Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，１９８９）；“Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ”（Ｍ．Ｊ．Ｇａｉｔ編、１９８４）；“Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ”（Ｒ．Ｉ．Ｆｒｅｓｈｎｅｙ編、１９８７）；“Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ”（Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．）；“Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ”（Ｆ．Ｍ．Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．編、１９８７、および、定期的な改版）；“ＰＣＲ：Ｔｈｅ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ Ｃｈａｉｎ Ｒｅａｃｔｉｏｎ，”（Ｍｕｌｌｉｓ ｅｔ ａｌ．，１９９４）に十分に説明されている。
別様に断らない限り、本発明の実施は、従来技術の錬度の範囲内にある、分子生物学（組み換え技術を含む）、微生物学、細胞生物学、生化学、および免疫学の通例技術を用いる。このような技術は、文献において、例えば、“Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，”第２版（Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，１９８９）；“Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ”（Ｍ．Ｊ．Ｇａｉｔ編、１９８４）；“Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ”（Ｒ．Ｉ．Ｆｒｅｓｈｎｅｙ編、１９８７）；“Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ”（Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．）；“Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ”（Ｆ．Ｍ．Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．編、１９８７、および、定期的な改版）；“ＰＣＲ：Ｔｈｅ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ Ｃｈａｉｎ Ｒｅａｃｔｉｏｎ，”（Ｍｕｌｌｉｓ ｅｔ ａｌ．，１９９４）に十分に説明されている。
本発明に使用されるプライマー、オリゴヌクレオチド、およびポリヌクレオチドは、従来技術で既知の標準技術を用いて生成することが可能である。
（定義）
本明細書で用いられる「テンプレート」、「テンプレート鎖」、「テンプレートポリヌクレオチド」、「テンプレートＤＮＡ」、「標的配列」、「標的核酸」または「標的ＤＮＡ」、「標的ポリヌクレオチド」、「テンプレートＲＮＡ」または「標的ＲＮＡ」は、増幅したいと思うポリヌクレオチドである。テンプレートポリヌクレオチドは、ＤＮＡまたはＲＮＡを含むことが可能である。テンプレート配列は、実際の配列に関して既知であっても、未知であってもよい。一般に、「標的」、「テンプレート」、およびそれらの類義語は、相互交換的に使用される。
本明細書で用いられる「テンプレート」、「テンプレート鎖」、「テンプレートポリヌクレオチド」、「テンプレートＤＮＡ」、「標的配列」、「標的核酸」または「標的ＤＮＡ」、「標的ポリヌクレオチド」、「テンプレートＲＮＡ」または「標的ＲＮＡ」は、増幅したいと思うポリヌクレオチドである。テンプレートポリヌクレオチドは、ＤＮＡまたはＲＮＡを含むことが可能である。テンプレート配列は、実際の配列に関して既知であっても、未知であってもよい。一般に、「標的」、「テンプレート」、およびそれらの類義語は、相互交換的に使用される。
本明細書で用いられる「増幅」または「増幅する」とは、一般に、所望の配列の複数コピーを生産する過程を指す。「複数コピー」とは、少なくとも２個のコピーを意味する。「コピー」とは、そのテンプレート配列に対し、完全な配列相補性、または同一性であることを必ずしも意味しない。例えば、コピーは、デオキシイノシンのようなヌクレオチド類縁体、意図的な配列変更（例えば、テンプレートに対してハイブリダイズ可能ではあるが、相補的ではない配列を含むプライマーによって導入された配列変更、または、プライマーを介して導入された非標的配列）、および／または、増幅時に起こる配列エラーを含むことが可能である。配列を「増幅する」ということは、一般には、前述のように、コピー製作はテンプレート配列に対して完全な配列相補性あるいは同一性を必ずしも意味しないという理解の下に、配列またはその相補体のコピーを製造することを指す。
本明細書において相互交換的に使用される「ポリヌクレオチド」または「核酸」とは、任意の長さのヌクレオチドポリマーを指し、ＤＮＡとＲＮＡを含む。ヌクレオチドは、デオキシリボヌクレオチド、リボヌクレオチド、修飾されたヌクレオチドまたは塩基、および／または、その類縁体、あるいは、ＤＮＡまたはＲＮＡポリメラーゼによってポリマー中に組み込みが可能な任意の基質であってもよい。ポリヌクレオチドは、メチル化ヌクレオチドおよびその類縁体のような修飾されたヌクレオチドを含んでもよい。含める場合には、ヌクレオチド構造に対する修飾は、ポリマーの集結の前または後に付与されてよい。ヌクレオチド配列は、非ヌクレオチド成分によって中断されてもよい。ポリヌクレオチドは、重合の後で、標識成分との結合等によってさらに修飾されてもよい。その他の修飾タイプとしては、例えば、「キャップ」、１個以上の天然ヌクレオチドの、類縁体による置換、ヌクレオチド間修飾、例えば、無電荷結合を伴う修飾（例えば、メチルフォスフォネート、フォスフォトリエステル、フォスフォアミデート、カルバメート等）、荷電結合（例えば、ホスホチオエート、ホスホジチオエート等）を伴う修飾、懸垂基、例えばタンパク（例えば、ヌクレアーゼ、毒素、抗体、シグナルペプチド、ポリＬリシン等）を含む修飾、介在因子による修飾（例えば、アクリジン、ソラレン等）、キレート剤を含む修飾（例えば、金属、放射性金属、ホウ素、酸化的金属等）、アルキル化剤を含む修飾、修飾型結合を伴う修飾（例えば、アルファアノマー核酸等）を始め、ポリヌクレオチドの未修飾形が挙げられる。さらに、通常糖類に存在するヒドロキシル基の内から選択される任意の基が、例えば、フォスフォン酸基、またはリン酸基によって置換されてもよいし、標準的保護基によって保護されてもよいし、あるいは活性化されて、さらに別のヌクレオチドに対する追加の基を形成してもよいし、あるいは固相支持体に接合されてもよい。５’および３’末端ＯＨは、フォスフォリル化されてもよいし、あるいは、アミン、または１から２０個の炭素原子を持つ有機キャップ基成分によって置換されてもよい。他のヒドロキシル基は、誘導体として標準的保護基を形成してもよい。ポリヌクレオチドはまた、従来技術で一般的に知られるリボースまたはデオキシリボース糖の類似形態、例えば、２’−Ｏ−メチル−、２’−Ｏ−アリル、２’−フルオロ−、または２’−アジド−リボース、炭素環式糖類縁体、α−アノマー糖、エピマー糖、例えばアラビノース、キシロース、またはリキソース、ピラノース糖、フラノース糖、セドヘプツロース、非環状類縁体、および、無塩基性ヌクレオシド類縁体、例えばメチルリボシドを含むことも可能である。１つ以上のフォスフォジエステル結合が別の結合基によって置換されてもよい。これら別の結合基としては、リン酸基が、Ｐ（Ｏ）Ｓ（「チオエート」）、Ｐ（Ｓ）Ｓ（「ジチオエート」）、（Ｏ）ＮＲ２（「アミデート」）、Ｐ（Ｏ）Ｒ、Ｐ（Ｏ）ＯＲ’、ＣＯ、またはＣＨ２（「フォルムアセタール」）によって置換される実施形態が挙げられるが、ただしそれらには限定されない。なお、上式において、ＲまたはＲ’の各々は、独立に、Ｈ、または要すれば随意にエーテル（−Ｏ−）結合を含む置換または未置換アルキル（１−２０Ｃ）、アリール、アルケニル、シクロアルキル、シクロアルケニル、またはアラルジルである。ポリヌクレオチド中の結合の必ずしも全てが同じである必要はない。前述の記述は、ＲＮＡおよびＤＮＡを含め、本明細書に記述される全てのポリヌクレオチドに適用される。
本明細書で用いられる「標識ｄＮＴＰ」または「標識ｒＮＴＰ」は、それぞれ、直接または間接的にラベルと付着したｄＮＴＰまたはｒＮＴＰ，またはその類似体を指す。例えば、「標識」ｄＮＴＰまたはｒＮＴＰは、例えば、色素および／または検出可能な成分、例えば、特異的結合ペア（例えば、ビオチン−アビジン）のメンバーによって直接標識されてもよい。「標識」ｄＮＴＰまたはｒＮＴＰはまた、ラベルが付着する／することができる、例えば、成分に付着されることによって間接的に標識されてもよい。ｄＮＴＰまたはｒＮＴＰは、該ｄＮＴＰまたはｒＮＴＰが伸長産物に取り込まれた後で、ラベルが付着し得る成分（例えば、アミノ基）を含んでもよい。本発明において有用なラベルとしては、蛍光色素（例えば、フルオレセインイソチオシアネート、テキサスレッド、ローダミン、緑色蛍光タンパク質等）、放射性同位元素（例えば、３Ｈ、３５Ｓ、３２Ｐ、３３Ｐ、１２５Ｉ、または１４Ｃ）、酵素（例えば、ＬａｃＺ、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼ）、ジゴキシゲニン、および、比色計ラベル、例えば、コロイド状金、または、有色ガラスまたはプラスチック（例えば、ポリスチレン、ポリプロピレン、ラテックス等）のビーズが挙げられる。各種抗リガンド、およびリガンドも使用が可能である（ラベル自体として、または、ラベルを付着させる手段として）。天然の抗リガンドを持つリガンド、例えば、ビオチン、サイロキシン、およびコルチゾールの場合、リガンドは、標識抗リガンドと組み合わせて使用することが可能である。
本明細書で用いるｄＮＴＰまたはｒＮＴＰの「タイプ」とは、ヌクレオチドの特定の塩基、すなわち、アデニン、シトシン、チミン、ウリジン、またはグアニンを指す。
本明細書で用いる「オリゴヌクレオチド」は、短い、一般に１本鎖の、一般に長さが約２００ヌクレオチド未満（しかし必ずしもそうでなくともよい）の、一般に合成ポリヌクレオチドを一般に指す。本発明のオリゴヌクレオチドは、複合プライマーと補助プライマーを含む。「オリゴヌクレオチド」および「ポリヌクレオチド」という用語同士は相互排除的ではない。ポリヌクレオチドに関する上の記述は、オリゴヌクレオチドにも等しく、十分に適用される。
本明細書で用いる「プライマー」は、テンプレート配列（例えば、標的ポリヌクレオチド、標的ＤＮＡ、または、プライマー伸長産物）にハイブリダイズする遊離３’−ＯＨ基を含み、テンプレートに対して相補的なポリヌクレオチドの重合を促進することが可能である。「プライマー」は、例えば、オリゴヌクレオチドであることが可能である。
本明細書で用いる「補助プライマー」とは、ランダム化および／または部分的ランダム化配列を含むプライマーの集団である。補助プライマーは本明細書に記載されるポリヌクレオチドである。ただし、一般的には補助プライマーはＤＮＡから構成される。ランダムプライマーは従来技術で既知であり、市販されている。補助プライマーの例としては、実施例１に示されるランダム化ヘキサマープライマーの集団がある。
「抑制する」というのは、参照と比較した場合に、活性、機能、および／または量を減少または低下させることである。
本明細書で用いる「ランダムにプライミングする」または「ランダムハイブリダイゼーション」とは、複合プライマーが、テンプレートポリヌクレオチド内の複数部位にハイブリダイズすることを意味する。
本明細書で用いる「ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体」とは、（ａ）テンプレートポリヌクレオチドのコピー、および／または、複合プライマー配列に付属するテンプレートポリヌクレオチド配列の相補体のコピー、および、（ｂ）テンプレートポリヌクレオチドのコピー、および／または、複合プライマー配列の相補体に付属するテンプレートポリヌクレオチドの相補体のコピーを一般的に含む、中間体複合体の集団を一般的に指す。中間体複合体の中に複合プライマー配列が存在することによって、その複合体は少なくともＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含むことになる。この部分的ヘテロ二重鎖のＲＮＡ部分は、一般に、複合プライマーのＲＮＡ部分によって（伸長を通じて）導入され、この部分的ヘテロ二重鎖のＤＮＡ部分は、複合プライマーのＲＮＡ部分の相補体を含む。本明細書において先に論じたように、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体は、後段増幅において、本法の単一プライマー等温性増幅相の際に基質として機能する。一般に、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖のＲＮＡは切断されて、複合プライマーのＲＮＡに対して相補的な配列を持つ（従って、複合プライマーに対する結合部位を形成する）３’単一鎖部分を生成する。従って、「３’単一鎖部分を含む複合体」への言及は、一般に、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖であって、そのＲＮＡが切断されたヘテロ二重鎖を含む複合体を指す。
「複合体」とは、複数の成分の集合体である。複合体は、安定であってもなくてもよく、直接または間接に検出されてもよい。例えば、先に述べたように、反応のいくつかの成分、および、反応の産物のタイプを考慮すれば、複合体の存在は推測が可能である。本発明の目的にとっては、複合体は、一般的に、最終増幅産物に対して中間体である。複合体の例としては、上述したように、複合プライマー伸長産物と第２複合プライマー伸長産物からなる複合体がある。
ポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドの「部分」または「領域」は、本明細書では相互交換的に使用されるが、２個以上の塩基からなる一連の配列である。別の実施形態では、領域または部分は、少なくとも、３、５、１０、１５、２０、２５、またはそれを超える連接ヌクレオチドの内から任意に選択されるヌクレオチドである。
別の配列に「隣接する」領域、部分、または配列は、その領域、部分、または配列に直接接触する。例えば、複合プライマーの５’ＤＮＡ部分に隣接するＲＮＡ部分はその領域に直接接触する。
「反応混合物」は、適当な条件下で反応して、複合体（中間体であるかも知れない）および／または産物を形成する、複数成分の集合体である。
“Ａ，”“ａｎ，”および“ｔｈｅ”などは、別様に指示しない限り、複数形を含む。“Ａ”断片は１個以上の断片を意味する。
ある事象、例えば、ハイブリダイゼーション、鎖伸長等が起こることを「可能とする」条件、または、ある事象が起こるのに「適当な」条件、または、「適当な」条件とは、そのような事象が起こるのを妨げない条件である。従って、これらの条件は、その事象を可能とする、強化する、促進する、および／または、その事象に導く。従来技術で既知であり、本明細書にも記述されるこのような条件は、例えば、ヌクレオチド配列の性質、温度、およびバッファー条件に依存する。これらの条件はまた、所望の事象、例えば、ハイブリダイゼーション、切断、および／または、鎖伸長にも依存する。
本明細書で用いる配列「変異」とは、参照配列と比べた場合の、目的の配列における配列変化を指す。参照配列は、野生型配列か、または、それと目的の配列とを比べて見たいと思う配列であってもよい。配列変異としては、置換、トランスバージョン、欠失、または挿入のような機構によって起こる単一ヌクレオチド変化、または、配列における１を超えるヌクレオチドの変化が挙げられる。一塩基多型（ＳＮＰ）も本明細書で用いられる配列変異である。
「マイクロアレイ」および「アレイ」は本明細書では相互交換的に使用されるが、しばしば未確定の特性を持つ生化学サンプル（標的）に対して、結合が予想される部位（例えば、ハイブリダイゼーションによって）を持つアレイ、好ましくは定序アレイを備える表面を含む。好ましい実施形態では、マイクロアレイは、基板の定義された場所に不動化された、個々別々のポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドプローブの集合体を指す。アレイは、材料、例えば、紙、ガラス、プラスチック（例えば、ポリプロピレン、ナイロン、ポリスチレン）、ポリアクリルアミド、ニトロセルロース、シリコン、光ファイバー、またはその他適当な任意の固形または半固形支持体のような材料から製造され、平面形状（例えば、ガラスプレート、シリコンチップ）、または三次元（例えば、ピン、ファイバー、ビーズ、粒子、マイクロタイターウェル、毛細管）形状に構成された基板上に形成される。アレイを形成するプローブは、例えば、下記の複数のやり方から選択される任意の数の方法を選んで基板の上に付着されてもよい。すなわち、（ｉ）フォトリソグラフィー技術によるインサイチュ合成（例えば、高密度オリゴヌクレオチドアレイ）（Ｆｏｄｏｒ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９９１），２５１：７６７−７７３；Ｐｅａｓｅ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．（１９９４），９１：５０２２−５０２６；Ｌｏｃｋｈａｒｔ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（１９９６），１４：１６７５；米国特許第５，５７８，８３２、５，５５６，７５２、および５，５１０，２７０号を参照のこと）、（ｉｉ）ガラス、ナイロン、またはニトロセルロース上に中等から低密度での（例えば、ｃＤＮＡプローブを）スポット滴下／印刷（Ｓｃｈｅｎａ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９９５），２７０：４６７−４７０；ＤｅＲｉｓｉ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ（１９９６），１４：４５７−４６０；Ｓｈａｌｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｏｍｅ Ｒｅｓ．（１９９６），６：６３９−６４５；およびＳｃｈｅｎａ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．（１９９５），９３：１０５３９−１１２８６）、（ｉｉｉ）マスキングによるもの（Ｍａｓｋｏｓ ａｎｄ Ｓｏｕｔｈｅｒｎ，Ｎｕｃ．Ａｃｉｄｓ．Ｒｅｓ．（１９９２），２０：１６７９−１６８４）、および、（ｉｖ）ナイロンまたはニトロセルロースハイブリダイゼーション膜に対するドットブロッティングによるもの（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．編，１９８９，“Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，”第２版、１−３巻、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ（Ｃｏｌｄ
Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ、ニューヨーク州）を参照）。プローブは、アンカーに対するハイブリダイゼーションによって、磁性ビーズによって、または、マイクロタイターウェルまたは毛細管における液相として、基板に対して非共有結合で不動化されてもよい。プローブ分子は、一般には、核酸、例えば、ＤＮＡ、ＲＮＡ、ＰＮＡ、およびｃＤＮＡのような核酸であるが、タンパク、ポリペプチド、オリゴ糖、細胞、組織、および、標的分子に特異的に結合することが可能な、それらの任意の置換を含んでもよい。
Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ、ニューヨーク州）を参照）。プローブは、アンカーに対するハイブリダイゼーションによって、磁性ビーズによって、または、マイクロタイターウェルまたは毛細管における液相として、基板に対して非共有結合で不動化されてもよい。プローブ分子は、一般には、核酸、例えば、ＤＮＡ、ＲＮＡ、ＰＮＡ、およびｃＤＮＡのような核酸であるが、タンパク、ポリペプチド、オリゴ糖、細胞、組織、および、標的分子に特異的に結合することが可能な、それらの任意の置換を含んでもよい。
「３’」という用語は、一般に、ポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドにおいて、同じポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドの別の領域または位置よりも、３’側の（下流の）領域または位置を指す。
「５’」という用語は、一般に、ポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドにおいて、同じポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドの別の領域または位置よりも、５’側の（上流の）領域または位置を指す。
「３’−ＤＮＡ部分」、「３’−ＤＮＡ領域」、「３’−ＲＮＡ部分」、および「３’−ＲＮＡ領域」という用語は、ポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドにおいて、該ポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドの３’末端側に位置する部分または領域を指し、その同じポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドのもっとも３’側のヌクレオチド、または、もっとも３’側のヌクレオチドに付着する成分を含んでもよいし、含まなくともよい。もっとも３’側のヌクレオチドは、好ましくは、約１から約５０個の、より好ましくは約１０から約４０個の、さらにより好ましくは約２０から約３０個のヌクレオチドであり得る。
「５’−ＤＮＡ部分」、「５’−ＤＮＡ領域」、「５’−ＲＮＡ部分」、および「５’−ＲＮＡ領域」という用語は、ポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドにおいて、該ポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドの５’末端側に位置する部分または領域を指し、その同じポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドのもっとも５’側のヌクレオチド、または、もっとも５’側のヌクレオチドに付着する成分を含んでもよいし、含まなくともよい。もっとも５’側のヌクレオチドは、好ましくは、約１から約５０個の、より好ましくは約１０から約４０個の、さらにより好ましくは約２０から約３０個のヌクレオチドであり得る。
本明細書で用いる、産物が「欠如する」または、産物の「欠如」、および「産物検出不能」とは、一般的には産物の目立った蓄積が無いことによる、微々たるレベル、または最小レベルを含む。
特許法における既に確立した原則に従って、“ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ”とは“ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ”を意味する。
（本発明の増幅法）
下記は本発明の増幅法の例である。既に一般的な記述が与えられたのであるから、その他にも各種の実施形態が実施可能であることが理解される。例えば、複合プライマー使用への言及は、本明細書に記載される複合プライマーの内から任意に選択される複合プライマーの使用が可能であることを意味する。
下記は本発明の増幅法の例である。既に一般的な記述が与えられたのであるから、その他にも各種の実施形態が実施可能であることが理解される。例えば、複合プライマー使用への言及は、本明細書に記載される複合プライマーの内から任意に選択される複合プライマーの使用が可能であることを意味する。
（複数のテンプレートポリヌクレオチド部位にハイブリダイズする複合プライマーを用いる増幅）
本発明は、ＤＮＡおよびＲＮＡテンプレートポリヌクレオチドを含むテンプレートポリヌクレオチド内部の複数部位に結合することが可能な複合プライマーによる大規模増幅法を提供する。
本発明は、ＤＮＡおよびＲＮＡテンプレートポリヌクレオチドを含むテンプレートポリヌクレオチド内部の複数部位に結合することが可能な複合プライマーによる大規模増幅法を提供する。
一般に、本発明の方法は２つの相を含む、すなわち、（ａ）複合プライマーのランダムハイブリダイゼーション、プライマー伸長、および、鎖置換による複合プライマー伸長産物の置換であって、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体が生成される相、および、（ｂ）複合プライマー依存性単一プライマー等温性増幅相である。
従って、本発明の方法は下記のように動作する。（ａ）反応混合物をインキュベートする工程であって、前記反応混合物は（ｉ）テンプレートポリヌクレオチド、（ｉｉ）複合プライマーである第１プライマーで、前記複合プライマーはＲＮＡ部分と３’ＤＮＡ部分とを含み、テンプレートポリヌクレオチドの複数部位にハイブリダイズすることが可能である第１プライマー、（ｉｉｉ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および、（ｉｖ）ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ（別の酵素として存在してもよいし、あるいは、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼとＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼの両ポリメラーゼ活性を含む酵素として存在してもよい）を含み、インキュベーション工程は、複合体プライマーのランダムハイブリダイゼーション、プライマー伸長、および、ある実施形態では、プライマー伸長産物のテンプレートポリヌクレオチドからの置換を可能とする条件下で行われ、それによって、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体が生成される工程、および、（ｂ）反応混合物をインキュベートする工程で、前記反応混合物は（ｉ）工程（ａ）によって生成された反応産物（またはその一定部分）、（ｉｉ）複合プライマー（第１プライマーと同じであってもよいし、第１プライマーとは異なるプライマーであってもよい）、（ｉｉｉ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および、（ｉｖ）ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する因子（例えば、酵素）を含み、インキュベーションは、プライマーハイブリダイゼーション、プライマー伸長、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からのＲＮＡの切断を可能とし、かつ、プライマー伸長産物において、そのＲＮＡが切断され、別の複合プライマーがテンプレートに結合して伸長される時、プライマー伸長産物の置換を可能とする条件下で行われ、それによってポリヌクレオチド（一般的には、ＤＮＡ）増幅産物の多数コピーが生成される工程である。ある実施形態では、工程（ｂ）の反応混合物は、工程（ａ）による反応混合物（または、その一定部分）を含む。別の実施形態では、工程（ｂ）は、工程（ａ）の反応混合物に、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する因子（例えば、ＲＮアーゼＨ）を添加することによって起動される。テンプレートポリヌクレオチドがＲＮＡである実施形態では、工程（ａ）の反応混合物はさらに、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する因子（例えば、酵素）を含む。
（（ａ）複合プライマーのランダムハイブリダイゼーション、プライマー伸長、および、鎖置換による複合プライマー伸長産物の置換）
本法は、一般に、特異的に設計されたプライマー、一般的にＲＮＡ／ＤＮＡ複合プライマーを使用することを含む。本増幅法の第１相では、複合プライマーを用いて、テンプレートポリヌクレオチド（例えば、ゲノムＤＮＡ）にランダムにプライミングさせる。本明細書で用いる「ランダムにプライミングする」または「ランダムハイブリダイゼーション」とは、複合プライマーが、テンプレートポリヌクレオチド内部の複数部位にハイブリダイズすることを意味する。我々は、ある種の複合プライマーは、テンプレートポリヌクレオチドの内部の複数部位に結合する（一般に、ランダムプライマーハイブリダイゼーションを促進する条件下で）こと、従って、本発明の方法に使用するのに特に好適であることを発見した。一般に、好適な複合プライマーは、テンプレート核酸の複数配列に対し、特に、複合プライマーの３’配列において、部分的相同性を示す、従って、複合プライマーは、少なくとも、テンプレートポリヌクレオチドにランダムにプライミングすることが可能な（特に、ランダムプライマーハイブリダイゼーションを可能とする条件下で）３’ＤＮＡ部分を含む。複合プライマーの選択と設計を下記にさらに記載する。
本法は、一般に、特異的に設計されたプライマー、一般的にＲＮＡ／ＤＮＡ複合プライマーを使用することを含む。本増幅法の第１相では、複合プライマーを用いて、テンプレートポリヌクレオチド（例えば、ゲノムＤＮＡ）にランダムにプライミングさせる。本明細書で用いる「ランダムにプライミングする」または「ランダムハイブリダイゼーション」とは、複合プライマーが、テンプレートポリヌクレオチド内部の複数部位にハイブリダイズすることを意味する。我々は、ある種の複合プライマーは、テンプレートポリヌクレオチドの内部の複数部位に結合する（一般に、ランダムプライマーハイブリダイゼーションを促進する条件下で）こと、従って、本発明の方法に使用するのに特に好適であることを発見した。一般に、好適な複合プライマーは、テンプレート核酸の複数配列に対し、特に、複合プライマーの３’配列において、部分的相同性を示す、従って、複合プライマーは、少なくとも、テンプレートポリヌクレオチドにランダムにプライミングすることが可能な（特に、ランダムプライマーハイブリダイゼーションを可能とする条件下で）３’ＤＮＡ部分を含む。複合プライマーの選択と設計を下記にさらに記載する。
本発明の方法に使用される複合プライマーの各種実施形態をここに記載する。例えば、図１は、本発明の方法に有用な複合プライマーの１つの実施形態を示す。図に示されるように、複合プライマーは、その３’末端にＤＮＡ部分を、その５’末端にＲＮＡ部分を含む。本明細書で論じるように、３’ＤＮＡ部分が、５’方向において、ＲＮＡ部分につながり、それがさらにＤＮＡ部分につながる、そのような複合プライマーを用いることも可能である。これら分節のそれぞれの長さは、一般に、増幅効率が最大になるように決定される。ある実施形態では、標的ポリヌクレオチドにハイブリダイズする複合プライマーと、単一プライマー等温性増幅の際に用いられる複合プライマーとは同じである。ある実施形態では、標的ポリヌクレオチドにハイブリダイズする複合プライマーと、単一プライマー等温性増幅の際に用いられる複合プライマーとは異なる。
ある配列（またはテンプレート）に結合する（ハイブリダイズする）プライマーに対する言及は、そのプライマーの少なくとも一部がハイブリダイズされた実施形態ばかりでなく、プライマー全体がハイブリダイズされた実施形態をも含む。従って、これから説明が明らかにするように、ある配列にハイブリダイズするプライマーに対する言及は、そのプライマーの少なくとも一部がハイブリダイズされた実施形態ばかりでなく、プライマーの２つ（またはそれを超える部分）が、プライマーのハイブリダイズされない（ループアウト）部分によって隔てられてハイブリダイズされる実施形態をも含む。例えば、図２は、テンプレートポリヌクレオチドの複数位置にハイブリダイズする単一複合プライマーを示す。図では、複合プライマーの様々の部分が、そのハイブリダイズされる部位（配列）に応じて、テンプレートポリヌクレオチドにハイブリダイズされる。従って、本発明の方法によれば、ＤＮＡポリメラーゼによるプライマー伸長を起動するためには、複合プライマーの３’−末端の一部だけでもハイブリダイズしなければならない。ある実施形態では、プライマー伸長が起動されるためには、例えば、プライマーの３’末端の僅かに２、３、４、５、６、７、８個、またはそれを超えるヌクレオチドがハイブリダイズする必要がある。複合プライマーの３’最末端部のハイブリダイゼーションは、プライマーの別部分のさらなるハイブリダイゼーション（介在プライマー部分がループアウトであると、ないとを問わず）によって様々の程度に安定化され得る。プライマー伸長の開始によって複合プライマーのハイブリダイゼーションを強化し（例えば、安定化し）、従ってプライマーハイブリダイゼーションを安定化するために、プライマーハイブリダイゼーションの際にＤＮＡポリメラーゼを含めることも可能である。
複合プライマーのテンプレートポリヌクレオチドに対するランダムハイブリダイゼーションは、一般に、ランダム（非特異的）プライマーハイブリダイゼーションを可能とする条件下で起こる。このような条件は、従来技術でよく知られるが、下記が挙げられる、すなわち、プライマーハイブリダイゼーションおよび／またはプライマー伸長の際に厳格度の低下（温度低下および／または厳格度を下げるバッファー条件を含む）、複合プライマーの選択および／または設計（本明細書で後述）、および、複合プライマーとテンプレートの濃度である。ハイブリダイゼーションの厳格度、複合プライマーの選択および／またはプライマー濃度を用いて複合プライマーハイブリダイゼーションの頻度を制御すること、従って、増幅産物におけるテンプレート配列のカバー範囲および／または表示を制御することが可能であることが理解される。上述のように、本発明のある局面は、テンプレートの下流位置にハイブリダイズした複合プライマーのプライマー伸長の際に、介在プライマー伸長産物を置換し、プライマー伸長産物をテンプレートポリヌクレオチドから置換させることである。鎖置換活性を有するＤＮＡポリメラーゼを用いるのが好ましい。
複合プライマーのランダムハイブリダイゼーション、プライマー伸長、および、鎖置換によるプライマー伸長産物の置換は、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む多数の複合体をもたらす。この複合体は、（ａ）テンプレートポリヌクレオチドのコピー、および／または、複合プライマー配列に付属する（伸長を通じて）ポリヌクレオチド配列の相補体のコピー、および、（ｂ）テンプレートポリヌクレオチドのコピー、および、複合プライマー配列の相補体に付属する（伸長を通じて）テンプレートポリヌクレオチドの相補体のコピーを含む。一般に、複合体のＲＮＡ部分は、複合プライマーによって導入される。
ある実施形態では、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体の生成は下記の工程を含む、すなわち、（ｉ）複合プライマーの伸長産物の形成、および（ｉｉ）第１プライマー伸長産物に沿う、プライマー伸長による第２プライマー伸長産物の形成である。例えば、ある実施形態では、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体は下記のように生成される、すなわち、テンプレートポリヌクレオチド鎖の複数部位に対する、複合プライマーのランダムハイブリダイゼーションの後に、ＤＮＡポリメラーゼが、テンプレート鎖に沿って複合プライマーを伸長し、ポリヌクレオチドテンプレート鎖に対して相補的な、複合プライマー伸長産物を生成する。プライマー伸長は、テンプレートの上流部位にハイブリダイズしたプライマーから伸長した鎖に向かって延び、その鎖を置換する。従って、上記のように、本発明のある局面は、テンプレートの下流部位にハイブリダイズした複合プライマーのプライマー伸長時における介在プライマー伸長産物の置換であり、それによって、複合プライマー伸長産物が、テンプレートポリヌクレオチドから置換させられることである。図３は、テンプレート鎖の複数部位にハイブリダイズした複合プライマーからのプライマー伸長を示し、その際、複合プライマー伸長産物は、テンプレート鎖の下流部位にハイブリダイズしたある複合プライマーからのプライマー伸長によって置換させられている。
置換させられる複合プライマー産物は、５’ＲＮＡ部分を含む、５’末端の複合プライマー配列を含む。都合のために、言及は「ある」複合プライマー伸長産物としかされていないが、複数の複合プライマー伸長産物が、複合プライマー配列に付属する（伸長を通じて）複数のテンプレートポリヌクレオチド配列の相補体として生成されることが理解される。図４は、複数の標的ポリヌクレオチド入れの相補体を含む配列に連結した（伸長によって）複合プライマー１を含む複合プライマー伸長産物の集合を示す。
置換複合プライマー伸長産物をテンプレートとして用いて、第１プライマー伸長産物に対して相補的な第２プライマー伸長産物が、複合プライマー伸長産物のＤＮＡ部分に沿って、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼによって生成され、複合プライマー伸長産物の５’ＲＮＡ部分に沿って、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼによる伸長によって、末端にＲＮＡ／ＤＮＡ複合体を含む２本鎖複合体が生成される。第２プライマー伸長産物の生成は、図５に描かれるように、複合プライマーによってランダムにプライミングされてもよい。あるいは別に、第２プライマー伸長産物は、別の複合プライマー伸長産物の３’末端によってプライミングされてもよい。第２鎖生産が、外来の（添加された）プライマー、および／または、テンプレートＲＮＡ（内在性プライマー）の断片によってプライミングされる、さらに別の実施形態が後述される。
（（ｂ）ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体をテンプレートとして用いて行う単一プライマー等温性増幅）
単一プライマー等温性増幅と命名される本発明の第２相では、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体が、下記のように、後段増幅の基質となる。すなわち、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡ配列を切断する酵素（例えば、ＲＮアーゼＨ）は、部分的ヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断し、３’単一鎖ＤＮＡ配列を含む、部分的２本鎖ポリヌクレオチド複合体を残す。この３’単一鎖配列（ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体においてＲＮＡを切断することによって形成される）は、一般に、複合プライマーのＲＮＡの相補体であり、従って、複合プライマー（第１複合プライマーと同じであっても、同じでなくともよい）に対する特異的結合部位を形成する。ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼによる、結合複合プライマーの伸長は、プライマー伸長産物を生産し、これは、以前に結合した切断されるプライマー伸長産物を置換し、そのためにポリヌクレオチド（一般に、ＤＮＡ）産物が蓄積される。例えば、米国特許第６，２５１，６３９および６，６９２，９１８号を参照されたい。図６は、複合プライマー、および、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体を、後段増幅のためのテンプレートとして用いた場合の、ＤＮＡ産物の増幅を示す。
単一プライマー等温性増幅と命名される本発明の第２相では、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体が、下記のように、後段増幅の基質となる。すなわち、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡ配列を切断する酵素（例えば、ＲＮアーゼＨ）は、部分的ヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断し、３’単一鎖ＤＮＡ配列を含む、部分的２本鎖ポリヌクレオチド複合体を残す。この３’単一鎖配列（ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体においてＲＮＡを切断することによって形成される）は、一般に、複合プライマーのＲＮＡの相補体であり、従って、複合プライマー（第１複合プライマーと同じであっても、同じでなくともよい）に対する特異的結合部位を形成する。ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼによる、結合複合プライマーの伸長は、プライマー伸長産物を生産し、これは、以前に結合した切断されるプライマー伸長産物を置換し、そのためにポリヌクレオチド（一般に、ＤＮＡ）産物が蓄積される。例えば、米国特許第６，２５１，６３９および６，６９２，９１８号を参照されたい。図６は、複合プライマー、および、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体を、後段増幅のためのテンプレートとして用いた場合の、ＤＮＡ産物の増幅を示す。
ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体を、後段増幅（単一プライマー等温性増幅とも呼ばれる）のテンプレートとして用いる増幅は、一般に、複合プライマーハイブリダイゼーション、プライマー伸長、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからのＲＮＡの切断、および、鎖置換を可能とする条件下で行われる。複合プライマーが、一般に複合プライマー配列の少なくとも一部の相補体を含む（ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体のＲＮＡを切断することによって形成される、部分的に２本鎖のポリヌクレオチドの）３’単一鎖部分にハイブリダイズする限り、複合プライマーハイブリダイゼーションは、特異的ハイブリダイゼーションを可能とする条件下にあると言ってよい。従って、ある実施形態では、反応条件は、厳格なハイブリダイゼーション（すなわち、全体的に互いに相補的である配列同士のハイブリダイゼーション）を可能とする。本明細書の説明から明らかなように、別の実施形態では、反応条件はそれほど厳しくない（すなわち、完全に相補的よりも低い相補性を持つ配列同士のハイブリダイゼーションを可能とする）。
一般に、本発明の方法は、多数の、相当多数の、極めて多数のテンプレートポリヌクレオチド配列の増幅をもたらす。ある実施形態では、最初のサンプル中に存在する事実上全てのテンプレートポリヌクレオチド（例えば、ｍＲＮＡの全て、またはゲノムＤＮＡの全て）が増幅される。別の実施形態では、例えば、従来技術で既知の方法を用いて分析対象のテンプレートサンプルに存在することが知られるマーカー配列を分析することによって評価した場合に、少なくとも５０、少なくとも１００、少なくとも２００、少なくとも３００個、またはそれを超える別々の配列（例えば、ポリヌクレオチドの遺伝子またはその他のサブセグメント、マーカー（例えば、ＳＮＰまたはその他の多型））が増幅される。増幅されるテンプレートポリヌクレオチド配列は、同じポリヌクレオチド（例えば、ゲノムＤＮＡテンプレートの１つの染色体または１つの染色体の１つの部分、または、ＲＮＡテンプレートの同じＲＮＡ）上に存在してもよいし、異なるテンプレートポリヌクレオチド（例えば、ＤＮＡテンプレートの異なる染色体または染色体の異なる部分、または、ＲＮＡテンプレートの異なるＲＮＡ）上に存在してもよい。本明細書ではゲノムＤＮＡの増幅を例示するが、当業者であれば、本発明の大規模増幅法は、任意のポリヌクレオチドプール、またはそのサブセットの増幅に好適であることが理解されよう。
説明の都合のため、ポリヌクレオチド（一般に、ＤＮＡ）産物について言及することにする。増幅産物は、一般に、所定のテンプレートポリヌクレオチドのセンスコピーとアンチセンスコピーの混合物であることが理解される。例えば、テンプレートポリヌクレオチドが２本鎖ＤＮＡである場合、増幅産物は各鎖に一致する。テンプレートポリヌクレオチドが１本鎖である場合（例えば、ＲＮＡまたは１本鎖ＤＮＡ）、一般に、テンプレートポリヌクレオチド（センスコピー）およびテンプレートポリヌクレオチドの相補体（アンチセンスコピー）のコピーである増幅産物が生産される。異なるセンスの増幅産物は、アニールして２本鎖（または、部分的２本鎖）複合体を形成することが可能であるし、あるいは、アニールを阻止して（または、その後に変性させて）、１本鎖増幅産物の混合物を生産することも可能である。増幅産物は別々の長さを持っていてもよい。
説明から明らかなように、また実施例に示されるように、本発明の方法は、複合プライマー依存性である。すなわち、複合プライマーが欠如する場合には増幅は観察されない。
上記実施形態で具体的に示されたように、全ての工程は等温性である（熱サイクル工程が要求されないという意味で）。ただし、各工程の温度は同じであっても、同じでなくともよい。全体的説明が上に与えられたわけであるから、他にも様々な実施形態の実行が可能であることが理解される。例えば、本明細書に記載され、例示されるように、ある工程は、温度を変えながら（例えば、上げながら、または下げながら）実行してもよい。
説明を簡単にするために、本発明の方法を、上に、２つの別々の工程または相として記載する。ある実施形態では、この２つの相は同時に実行してもよいことが理解される（例えば、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する酵素が第１反応混合物に含まれる場合）。別の実施形態では、工程（ｂ）は、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する酵素（例えば、リボヌクレアーゼ、例えば、ＲＮアーゼＨ）、および、要すれば随意に、実施例１に示すように、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼを加えることによって起動してもよい。この実施形態では、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する酵素を添加することによって、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体をテンプレートとして用いる後段増幅（すなわち、上の工程（ｂ））が可能となる。しかしながら、テンプレートポリヌクレオチド鎖に沿って起こる、ランダムにプライミングした複合プライマーからのプライマー伸長（および鎖置換）は、単一プライマー等温性増幅の間継続し得ることが理解される。
上には全体としてただ１つの複合プライマーが記述されたが、本増幅法は、テンプレートポリヌクレオチドにランダムにプライミングする、２本以上の別々の複合プライマーの存在下に実行してもよいことがさらに理解される。さらに、テンプレートポリヌクレオチドにランダムにプライミングする、２本以上の別々の複合プライマーを用いて実行される２種以上の別々の増幅反応の増幅ポリヌクレオチド産物を混合することも可能である。さらに、工程（ａ）（すなわち、テンプレートポリヌクレオチドに対するランダムなプライミング）と工程（ｂ）（すなわち、単一プライマー等温性増幅）において別々の複合プライマーを使用することが可能であることが理解される。この場合、別々の複合プライマーは、部分的２本鎖複合体の３’１本鎖ＤＮＡ部分（ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体からＲＮＡを切断することによって生成される）にハイブリダイズすることが可能な配列を含む。一般に、第２複合プライマーは、第１複合プライマーと重複する配列を含む。
（テンプレートポリヌクレオチドの複数部位にハイブリダイズする複合プライマーおよび補助プライマーによる増幅）
本発明の別の局面では、テンプレートポリヌクレオチド、複合プライマー、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、およびＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼを含む反応混合物中に補助プライマーが存在する。本明細書で用いる「補助プライマー」とは、ランダムに、または、部分的ランダムにプライミングするプライマーの集団を指す。補助プライマーの例は、実施例１に使用されるランダムヘキサマープライマーである。増幅の際に補助プライマー（すなわち、様々のランダムプライマーの集団）を含めることは、増幅産物の生産効率および／または標的カバー範囲を向上させると考えられる。
本発明の別の局面では、テンプレートポリヌクレオチド、複合プライマー、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、およびＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼを含む反応混合物中に補助プライマーが存在する。本明細書で用いる「補助プライマー」とは、ランダムに、または、部分的ランダムにプライミングするプライマーの集団を指す。補助プライマーの例は、実施例１に使用されるランダムヘキサマープライマーである。増幅の際に補助プライマー（すなわち、様々のランダムプライマーの集団）を含めることは、増幅産物の生産効率および／または標的カバー範囲を向上させると考えられる。
ある実施形態では、本発明の方法は下記のように動作する。すなわち、（ａ）反応混合物をインキュベートする工程で、前記反応混合物は、本明細書に記載する複合プライマー、補助プライマー、テンプレートポリヌクレオチド、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ（これらは、両方の活性を含む単一の酵素として存在してもよい）を含み、インキュベーションは、複合プライマーのランダムハイブリダイゼーション、補助プライマーのハイブリダイゼーション、プライマー伸長、および、鎖置換に適した条件下で行われ、それによってＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体が生成される工程；および、（ｂ）反応混合物をインキュベートする工程で、前記反応混合物は、工程（ａ）によって生成された反応産物（またはその一定部分）、複合プライマー（工程（ａ）の複合プライマーと同じであっても、別の複合プライマーであってもよい）、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、要すれば随意に補助プライマー、および、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する酵素を含み、インキュベーションは、プライマーハイブリダイゼーション、プライマー伸長、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からのＲＮＡの切断を可能とし、かつ、前記複合体において、そのＲＮＡが切断され、別の複合プライマーがテンプレートに結合して伸長される時、プライマー伸長産物の複合体からの置換を可能とする条件下で行われ、それによってポリヌクレオチドテンプレート配列の多数コピーが生成される工程である。
増幅時に補助プライマー（すなわち、様々のランダムプライマー集団）を含めることは、テンプレートポリヌクレオチドの生産効率および／またはカバー範囲を向上させると考えられる。理論に縛られる心算はないが、補助プライマーのプライマー伸長は、テンプレートポリヌクレオチドからの複合プライマー伸長産物の置換を増し、および／または、第２プライマー伸長産物生成を開始することが考えられる。図７は、テンプレート鎖の複数部位にハイブリダイズする複合プライマーと補助プライマーのプライマー伸長を示す。図８は、複合プライマー伸長産物にハイブリダイズした補助プライマーによって起動される第２プライマー伸長産物の生成を示す。
説明の簡単のために、補助プライマーの使用は第１相の複合プライマーのランダムハイブリダイゼーション（すなわち、工程（ａ））においてのみ記述されたが、補助プライマーは、方法の第２相、単一プライマー等温性増幅（すなわち、工程（ｂ））の反応混合物中に存在してもよいことは明らかである。
説明から明らかなように、また実施例に示されるように、本発明の方法は、複合プライマー依存性である。すなわち、複合プライマーが欠如する場合には増幅は観察されない。
（テンプレートＲＮＡの複数部位にハイブリダイズする複合プライマーおよび補助プライマーによる増幅）
本発明の別の局面では、補助プライマーは、テンプレートＲＮＡ、複合プライマー、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、およびＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼを含む反応混合物に存在する。本明細書で用いる「補助プライマー」とは、ランダムに、または、部分的ランダムにプライミングするプライマーの集団を指す。増幅の際に補助プライマー（すなわち、様々のランダムプライマーの集団）を含めることは、増幅産物の生産効率および／または標的カバー範囲を向上させると考えられる。
本発明の別の局面では、補助プライマーは、テンプレートＲＮＡ、複合プライマー、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、およびＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼを含む反応混合物に存在する。本明細書で用いる「補助プライマー」とは、ランダムに、または、部分的ランダムにプライミングするプライマーの集団を指す。増幅の際に補助プライマー（すなわち、様々のランダムプライマーの集団）を含めることは、増幅産物の生産効率および／または標的カバー範囲を向上させると考えられる。
ある実施形態では、本発明の方法は下記のように動作する。すなわち、（ａ）反応混合物をインキュベートする工程で、前記反応混合物は、本明細書に記載する複合プライマー、補助プライマー、テンプレートＲＮＡ、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ（これらは、両方の活性を含む単一の酵素として存在してもよい）を含み、インキュベーションは、複合プライマーのランダムハイブリダイゼーション、補助プライマーのハイブリダイゼーション、プライマー伸長、および、鎖置換に適した条件下で行われ、それによってＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体が生成される工程；および、（ｂ）反応混合物をインキュベートする工程で、前記反応混合物は、工程（ａ）によって生成された反応産物（またはその一定部分）、複合プライマー（工程（ａ）の複合プライマーと同じであっても、別の複合プライマーであってもよい）、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、場合により補助プライマー、および、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する酵素を含み、インキュベーションは、プライマーハイブリダイゼーション、プライマー伸長、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からのＲＮＡの切断を可能とし、かつ、前記複合体において、そのＲＮＡが切断され、別の複合プライマーがテンプレートに結合して伸長される時、プライマー伸長産物の複合体からの置換を可能とする条件下で行われ、それによってポリヌクレオチドテンプレート配列の多数コピーが生成される工程である。
増幅時に補助プライマー（すなわち、様々のランダムプライマー集団）を含めることは、テンプレートＲＮＡの生産効率および／またはカバー範囲を向上させると考えられる。理論に縛られる心算はないが、補助プライマーのプライマー伸長は、テンプレートＲＮＡからの複合プライマー伸長産物の置換を増し、および／または、第２プライマー伸長産物生成を開始することが考えられる。図７は、テンプレート鎖の複数部位にハイブリダイズする複合プライマーと補助プライマーのプライマー伸長を示す。図８は、複合プライマー伸長産物にハイブリダイズした補助プライマーによって起動される第２プライマー伸長産物の生成を示す。
説明の簡単のために、補助プライマーの使用は第１相の複合プライマーのランダムハイブリダイゼーション（すなわち、工程（ａ））においてのみ記述されたが、補助プライマーは、方法の第２相、単一プライマー等温性増幅（すなわち、工程（ｂ））の反応混合物中に存在してもよいことは明らかである。
説明から明らかなように、また実施例に示されるように、本発明の方法は、複合プライマー依存性である。すなわち、複合プライマーが欠如する場合には増幅は観察されない。
（本発明の方法に使用される成分および反応条件）
（テンプレート核酸）
増幅の標的とされる核酸（ＮＡ）は、精製された、あるいは未精製の形態の任意の供給源から得られる核酸、それは、ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡおよびｓｓＤＮＡ）、またはｔＲＮＡ、ｍＲＮＡ、ｒＲＮＡを含むＲＮＡ、ミトコンドリアＤＮＡおよびＲＮＡ、クロロプラストＤＮＡおよびＲＮＡ、ＤＮＡ−ＲＮＡハイブリッド、またはそれらの混合物、遺伝子、染色体、プラスミド、生物材料、例えば、微生物、例えば、細菌、酵母、ウィルス、ウイロイド、カビ、真菌、植物、動物、ヒトのような生物材料のゲノム、および、それらの断片であってもよい核酸を含む。好ましい標的ポリヌクレオチドとしては、ＤＮＡ（例えば、ゲノムＤＮＡ、例えば、ヒトゲノムＤＮＡおよび哺乳類ゲノムＤＮＡ（例えば、マウス、ラット）を含むゲノムＤＮＡ）、および、ＲＮＡ（例えば、ｍＲＮＡ、リボソームＲＮＡ、および全体ＲＮＡ）が挙げられる。テンプレートＲＮＡは、コードＲＮＡおよび非コードＲＮＡを含むことを理解しなければならない。配列は、天然に発生したものであっても、あるいは、組み換え核酸標的、例えば、対象の核酸断片クローンであってもよい。
（テンプレート核酸）
増幅の標的とされる核酸（ＮＡ）は、精製された、あるいは未精製の形態の任意の供給源から得られる核酸、それは、ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡおよびｓｓＤＮＡ）、またはｔＲＮＡ、ｍＲＮＡ、ｒＲＮＡを含むＲＮＡ、ミトコンドリアＤＮＡおよびＲＮＡ、クロロプラストＤＮＡおよびＲＮＡ、ＤＮＡ−ＲＮＡハイブリッド、またはそれらの混合物、遺伝子、染色体、プラスミド、生物材料、例えば、微生物、例えば、細菌、酵母、ウィルス、ウイロイド、カビ、真菌、植物、動物、ヒトのような生物材料のゲノム、および、それらの断片であってもよい核酸を含む。好ましい標的ポリヌクレオチドとしては、ＤＮＡ（例えば、ゲノムＤＮＡ、例えば、ヒトゲノムＤＮＡおよび哺乳類ゲノムＤＮＡ（例えば、マウス、ラット）を含むゲノムＤＮＡ）、および、ＲＮＡ（例えば、ｍＲＮＡ、リボソームＲＮＡ、および全体ＲＮＡ）が挙げられる。テンプレートＲＮＡは、コードＲＮＡおよび非コードＲＮＡを含むことを理解しなければならない。配列は、天然に発生したものであっても、あるいは、組み換え核酸標的、例えば、対象の核酸断片クローンであってもよい。
標的核酸は、生物サンプルのような複雑な混合物の中のほんの小部分であってもよく、従来技術で良く知られた手法を用いて各種生物材料から入手してもよい。核酸は、ごく少量の核酸を含む供給源、例えば、単一細胞、少数の細胞、患者サンプル、法医学サンプル、および、考古学サンプルを含む供給源からも入手が可能である。核酸の入手・精製は、従来技術における標準的な技術、例えば、１個の、または、ごく少数の細胞を単離するように設計された方法、例えば、細胞ソーティングまたはレーザー捕捉マイクロディセクションのような技術を用いる。本発明の方法は、ゲノムＤＮＡ（例えば、ヒトおよびその他の哺乳類ゲノムＤＮＡ）を始め、ＲＮＡ（例えば、全体ＲＮＡまたはｍＲＮＡサンプル）について使用するのに特に好適である。ＲＮＡ標的の増幅は、従来技術で既知のように、先ずｃＤＮＡを合成し、その後でｃＤＮＡテンプレートから増幅することによって実現され得る。
標的ポリヌクレオチドは、既知または未知であってよく、対象として、それぞれが同じであっても異なっていてもよい、１つを超える所望の特定の核酸配列を含んでいてもよい。標的ポリヌクレオチドが２本鎖（例えば、２本鎖ＤＮＡ、または、第１鎖ｃＤＮＡ合成によって生産されるものなどの、２本鎖のＤＮＡ／ＲＮＡハイブリッド）である場合、その標的は、まず、１本鎖となるように（例えば、変性によって、または、ＤＮＡ／ＲＮＡハイブリッドのＲＮＡ部分の切断によって）処理され得る。変性はまた、１本鎖標的分子（例えば、ＲＮＡ）に存在する二次構造を除去するように行ってもよい。ある場合には、２本鎖ＤＮＡ標的ポリヌクレオチドを、先ず、１種以上の制限エンドヌクレアーゼ酵素によって切断してもよい。
標的ポリヌクレオチドがＤＮＡである場合、標的核酸配列増幅の開始工程は、その標的を１本鎖とすることである。標的核酸が２本鎖（ｄｓ）ＤＮＡである場合、開始工程は標的の変性であってもよい。変性工程は、熱的変性、または、従来技術で既知の、他の任意の方法、例えば、アルカリ処理であってもよい。標的核酸が、ＤＮＡ−ＲＮＡハイブリッドの中に存在するのであれば、開始工程は、ハイブリッドを変性してＤＮＡを得るか、あるいは、従来技術で既知のその他の方法、例えば、熱処理、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する酵素（例えば、ＲＮアーゼＨ）による消化、または、アルカリ処理によってＲＮＡ鎖を除去して、１本鎖ＤＮＡを生成することができる。標的がＲＮＡである場合は、開始工程は、１本鎖ｃＤＮＡの合成であってもよい。ＲＮＡからｃＤＮＡを合成するための技術は従来技術で既知であり、特定標的、例えば、真核細胞ｍＲＮＡのポリＡ尾部、またはその他の特定のあるいは共通配列に結合するプライマー使用による、ＲＮＡ鎖の逆転写を含む。さらに、逆転写は、縮重、または部分的に縮重されたプライマー集団によって開始することができる。第１鎖ｃＤＮＡは、本明細書に記述するやり方でＲＮＡおよび第１鎖ｃＤＮＡの複合体から分離することが可能である。
ＲＮＡは、精製された、あるいは未精製の形態の任意の供給源から得られてよく、それは、全体ＲＮＡ、ｔＲＮＡ、ｍＲＮＡ、ｒＲＮＡ、ミトコンドリアＲＮＡ、クロロプラストＲＮＡ、ＤＮＡ−ＲＮＡハイブリッド、またはそれらの混合物のようなＲＮＡで、任意の供給源および／または種、例えば、ヒト、動物、植物、および、微生物、例えば、細菌、酵母、ウィルス、ウイロイド、カビ、真菌、植物、および、それらの断片から得られるＲＮＡであってもよい。ＲＮＡはコードＲＮＡまたは非コードＲＮＡ（非翻訳小ＲＮＡなど）であってよいことが理解される。ＲＮＡは、標準技術を用いて入手し、精製することが可能である。ＤＮＡ標的（ゲノムＤＮＡ標的を含む）の使用は、初めにそのＤＮＡ標的のＲＮＡ形への転写を必要とするかも知れない。これは、Ｋｕｒｎ、米国特許第６，２５１，６３９Ｂ１号に開示される方法、および、従来技術で既知の他の技術（例えば、発現システム）を用いて実現することが可能である。従って、Ｋｕｒｎ、米国特許第６，２５１，６３９号を含めた従来技術で既知の方法を用いて、ＤＮＡ源（例えば、ゲノムＤＮＡ）から、ＲＮＡテンプレートそのものを生成することが可能である。一般に、ゲノムＤＮＡのＲＮＡコピーは、一般にｍＲＮＡに見られない非転写配列、例えば、イントロン、制御および調節要素等を含むことが予想される。ＲＮＡ標的は、ゲノムＤＮＡ配列クローンから生成されてもよい。これはインビトロ転写することが可能である。ＤＮＡ−ＲＮＡハイブリッドの使用は、ハイブリッドを変性して１本鎖ＲＮＡを得る、変性の後にＤＮＡ鎖を転写してＲＮＡを得る、または、従来技術で既知の他の方法、例えば、ＲＮアーゼＨによる消化によって１本鎖ＤＮＡを生成することを必要とするかも知れない。
（複合プライマー）
本発明の方法は、ＲＮＡ部分とＤＮＡ部分から構成される複合プライマーを用いる。我々は、標準的核酸比較アルゴリスムを用いて分析している際に、適切な複合プライマーは、多数のゲノムＤＮＡ配列に対して、特に複合プライマーの３’配列において、部分的核酸配列相同性を示すことを観察した。例えば、複合プライマー配列は、ヒトゲノムＤＮＡデータベース（または、その他の適当なデータベース、例えば、哺乳類ゲノムＤＮＡデータベース）を探索する際に、Ｂｌａｓｔにおける探求配列として使用が可能である。一般に、探索は、部分的、または「低厳格度」配列を特定するために好適な探索パラメータ、一般にはプログラムによって与えられるもっとも厳格度の低い条件を用いて行われる。このようなパラメータは従来技術で既知であり、単語サイズ＝７の「短く、ほぼ正確なマッチ」（プライマー配列の任意位置における、僅か７個の連続ヌクレオチドの完全マッチを可能とする条件）を探索するためのＮＣＢＩ Ｂｌａｓｔプログラムの使用を含む。例えば、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｂｌａｓｔ／Ｂｌａｓｔ．ｃｇｉ？ＡＬＩＧＮＭＥＮＴＳ＝５０＆ＡＬＩＧＮＭＥＮＴ＿ＶＩＥＷ＝Ｐａｉｒｗｉｓｅ＆ＡＵＴＯ＿ＦＯＲＭＡＴ＝Ｓｅｍｉａｕｔｏ＆ＣＬＩＥＮＴ＝ｗｅｂ＆ＤＡＴＡＢＡＳＥ＝ｎｒ＆ＤＥＳＣＲＩＰＴＩＯＮＳ＝１００＆ＥＮＴＲＥＺ＿ＱＵＥＲＹ＝＞（ｎｏｎｅ）＆ＥＸＰＥＣＴ＝１０００＆ＦＯＲＭＡＴ＿ＢＬＯＣＫ＿ＯＮ＿ＲＥＳＰＡＧＥ＝Ｎｏｎｅ＆ＦＯＲＭＡＴ＿ＥＮＴＲＥＺ＿ＱＵＥＲＹ＝（ｎｏｎｅ）＆ＦＯＲＭＡＴ＿ＯＢＪＥＣＴ＝Ａｌｉｇｎｍｅｎｔ＆ＦＯＲＭＡＴ＿ＴＹＰＥ＝ＨＴＭＬ＆ＬＡＹＯＵＴ＝ＴｗｏＷｉｎｄｏｗｓ＆ＮＣＢＩ＿ＧＩ＝ｏｎ＆ＰＡＧＥ＝Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ＆ＰＲＯＧＲＡＭ＝ｂｌａｓｔｎ＆ＳＥＲＶＩＣＥ＝ｐｌａｉｎ＆ＳＥＴ＿ＤＥＦＡＵＬＴＳ．ｘ＝１６＆ＳＥＴ＿ＤＥＦＡＵＬＴＳ．ｙ＝８＆ＳＨＯＷ＿ＯＶＥＲＶＩＥＷ＝ｏｎ＆ＷＯＲＤ＿ＳＩＺＥ＝７＆ＥＮＤ＿ＯＦ＿ＨＴＴＰＧＥＴ＝Ｙｅｓ．を参照されたい。本発明の方法に有用な複合プライマー（すなわち、テンプレートポリヌクレオチドにランダムにハイブリダイズするプライマー）は、一般に、ゲノムＤＮＡ配列に対して高い部分的相同率を呈する、例えば、約１００個のゲノムＤＮＡ配列に対して連続７個のヌクレオチドの相同性が、複合プライマーの３’末端において約７０％のヒットを伴うものである。極めて独特の配列を持つ（すなわち、標的ゲノムＤＮＡ配列との相同性が低レベルである）複合プライマーは、ゲノムＤＮＡテンプレートに対して使用する場合、本発明の方法においては効率的に機能しない。
本発明の方法は、ＲＮＡ部分とＤＮＡ部分から構成される複合プライマーを用いる。我々は、標準的核酸比較アルゴリスムを用いて分析している際に、適切な複合プライマーは、多数のゲノムＤＮＡ配列に対して、特に複合プライマーの３’配列において、部分的核酸配列相同性を示すことを観察した。例えば、複合プライマー配列は、ヒトゲノムＤＮＡデータベース（または、その他の適当なデータベース、例えば、哺乳類ゲノムＤＮＡデータベース）を探索する際に、Ｂｌａｓｔにおける探求配列として使用が可能である。一般に、探索は、部分的、または「低厳格度」配列を特定するために好適な探索パラメータ、一般にはプログラムによって与えられるもっとも厳格度の低い条件を用いて行われる。このようなパラメータは従来技術で既知であり、単語サイズ＝７の「短く、ほぼ正確なマッチ」（プライマー配列の任意位置における、僅か７個の連続ヌクレオチドの完全マッチを可能とする条件）を探索するためのＮＣＢＩ Ｂｌａｓｔプログラムの使用を含む。例えば、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｂｌａｓｔ／Ｂｌａｓｔ．ｃｇｉ？ＡＬＩＧＮＭＥＮＴＳ＝５０＆ＡＬＩＧＮＭＥＮＴ＿ＶＩＥＷ＝Ｐａｉｒｗｉｓｅ＆ＡＵＴＯ＿ＦＯＲＭＡＴ＝Ｓｅｍｉａｕｔｏ＆ＣＬＩＥＮＴ＝ｗｅｂ＆ＤＡＴＡＢＡＳＥ＝ｎｒ＆ＤＥＳＣＲＩＰＴＩＯＮＳ＝１００＆ＥＮＴＲＥＺ＿ＱＵＥＲＹ＝＞（ｎｏｎｅ）＆ＥＸＰＥＣＴ＝１０００＆ＦＯＲＭＡＴ＿ＢＬＯＣＫ＿ＯＮ＿ＲＥＳＰＡＧＥ＝Ｎｏｎｅ＆ＦＯＲＭＡＴ＿ＥＮＴＲＥＺ＿ＱＵＥＲＹ＝（ｎｏｎｅ）＆ＦＯＲＭＡＴ＿ＯＢＪＥＣＴ＝Ａｌｉｇｎｍｅｎｔ＆ＦＯＲＭＡＴ＿ＴＹＰＥ＝ＨＴＭＬ＆ＬＡＹＯＵＴ＝ＴｗｏＷｉｎｄｏｗｓ＆ＮＣＢＩ＿ＧＩ＝ｏｎ＆ＰＡＧＥ＝Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ＆ＰＲＯＧＲＡＭ＝ｂｌａｓｔｎ＆ＳＥＲＶＩＣＥ＝ｐｌａｉｎ＆ＳＥＴ＿ＤＥＦＡＵＬＴＳ．ｘ＝１６＆ＳＥＴ＿ＤＥＦＡＵＬＴＳ．ｙ＝８＆ＳＨＯＷ＿ＯＶＥＲＶＩＥＷ＝ｏｎ＆ＷＯＲＤ＿ＳＩＺＥ＝７＆ＥＮＤ＿ＯＦ＿ＨＴＴＰＧＥＴ＝Ｙｅｓ．を参照されたい。本発明の方法に有用な複合プライマー（すなわち、テンプレートポリヌクレオチドにランダムにハイブリダイズするプライマー）は、一般に、ゲノムＤＮＡ配列に対して高い部分的相同率を呈する、例えば、約１００個のゲノムＤＮＡ配列に対して連続７個のヌクレオチドの相同性が、複合プライマーの３’末端において約７０％のヒットを伴うものである。極めて独特の配列を持つ（すなわち、標的ゲノムＤＮＡ配列との相同性が低レベルである）複合プライマーは、ゲノムＤＮＡテンプレートに対して使用する場合、本発明の方法においては効率的に機能しない。
上記の考察から明らかなように、ある配列（または、テンプレート）に結合する（ハイブリダイズする）プライマーに対する言及は、プライマーの少なくとも一部はハイブリダイズする実施形態、プライマーの２つ（またはそれを超えるの部分）（プライマーのハイブリダイズしていない（ループアウト）部分によって隔てられる）がハイブリダイズする実施形態、および、全プライマーがハイブリダイズする実施形態を含む。ある実施形態では、複合プライマーの５’部分、通常５’最末端部分は、特定の５’部分がテンプレートポリヌクレオチドに対してランダムにハイブリダイズしないように設計される（この構成の複合プライマーは、ハイブリダイズしないプライマーの「尾部」に基づいて「尾部付着」プライマーと呼ばれる）。ある実施形態では、複合プライマーの尾部は、複合プライマーの５’ＲＮＡ全体部分である。従って、本発明の方法によれば、ＤＮＡポリメラーゼによるプライマー伸長が開始するためには、複合プライマーの３’末端のほんの一部がハイブリダイズするだけでよい。ある実施形態では、プライマー伸長反応が起動するためには、例えば、プライマーの３’末端の、僅かに２、３、４、５、６、７個、またはそれを超えるヌクレオチドがハイブリダイズするだけでよい。複合プライマーの３’最末端部分のハイブリダイゼーションは、プライマーの別部分による後続ハイブリダイゼーション（介在プライマー部分にループアウトがあってもなくてもよい）によって様々な程度に安定化されてよいことが理解される。プライマー伸長を開始して複合プライマーのハイブリダイゼーションを強化し（例えば、安定化し）、プライマーハイブリダイゼーションを安定化するために、プライマーハイブリダイゼーション時にＤＮＡポリメラーゼを含めることも可能である。
我々はまた、本発明の方法に用いて好適な複合プライマーは、ゲノムＤＮＡテンプレートを用いる高い厳格度条件の下に複合プライマーを用いて、Ｋｕｒｎの米国特許第６，２５１，６３９号に記載される単一プライマー等温性増幅を実行し、例えば、ゲル上において視像化される反応産物の塗抹の存在を観察することによって特定が可能であることを見出した。ゲノムＤＮＡは、複合プライマーに対して相補的な配列を含まないことが好ましい。反応産物の「塗抹」の生産、すなわち、様々な分子量の産物の複合混合物の生成は、塗抹として目視が可能であり、これは、複合プライマーが、ゲノムＤＮＡのランダムプライマー増幅を実現することを示す。
別の実施例では、特定の合成標的オリゴヌクレオチド（例えば、複合プライマーハイブリダイゼーションのための特定の標的を含む標的オリゴヌクレオチド）の単一プライマー等温性増幅を、ゲノムＤＮＡテンプレート（例えば、１−１００ｎｇのヒトゲノムＤＮＡ）の存在下において、あるいは、不在下において高い厳格度の下に実行する。本発明の方法に好適な複合プライマーは、特定の合成標的の増幅効率に対するゲノムＤＮＡの強力な作用を示し、ゲノムＤＮＡ不在下に見られる増幅効率と比べて約１００倍以上の増幅効率の低下をもたらす。
複合プライマーのランダムハイブリダイゼーションおよび／または複合プライマー伸長産物の生成は、ランダム（非特異的）プライマーハイブリダイゼーションを可能とするように設計された条件を用いることによって促進される。このような条件は、従来技術においてよく知られており、下記にもさらに考察するが、プライマーハイブリダイゼーションおよび／または第１鎖合成時における厳格度の低下（温度低下および／または、低厳格度のバッファー条件、例えば、イオン強度の低下）、複合体プライマーの選択および／または設計（本明細書でさらに考察）、複合プライマーおよびテンプレート濃度、３’ハイブリダイズプライマーを安定化する因子（例えば、ＤＮＡポリメラーゼ）の有無、および、安定ハイブリダイゼーションのための温度要求を下げるＤＭＳＯのような因子の有無が挙げられる。反応条件を適当に選択して、複合プライマーハイブリダイゼーションの頻度を調節すること、従って、増幅産物におけるテンプレートポリヌクレオチド配列のカバー範囲および／または表示を調節することが可能であることが理解される。
一般に、複合プライマーは、当業者に通例として利用されるソフトウェア、例えば、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ ＩｎｓｉｇｈｔからのＯｌｉｇｏ Ｐｒｉｍｅｒ Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｓｏｆｔｗａｒｅ、および、その中に引用される資料を用いて判断した場合、プライマーダイマー形成能が見られないように設計される。当業者であれば、他の因子も核酸ハイブリダイゼーション親和性に影響を及ぼすことが理解されよう。例えば、プライマー−標的重複体およびプライマー−プライマー重複体におけるグアノシン−シトシン含量がどのようなものであれその全て、副溝結合体、ヌクレオチドのＯ−メチル化またはその他の修飾、温度、および、塩は、結合エネルギーに必要差異を持つプライマーを構築する際には重要と考えられる因子である。プライマーを設計・構築する場合のもう１つの因子は、所定の一組のハイブリダイゼーション条件下における所定の配列のハイブリダイゼーションの自由エネルギーパラメータである。所定のハイブリッド形成のための自由エネルギーパラメータは、従来技術で既知の方法によって計算することが可能であり（例えば、Ｔｉｎｏｃｏ ｅｔ ａｌ．Ｎａｔｕｒｅ（１９７３）２４６：４０−４１、および、Ｆｒｅｉｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ（１９８６）８３：９３７３−９３７７、コンピュータプログラム、例えば、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ ＩｎｓｉｇｈｔからのＯｌｉｇｏ Ｐｒｉｍｅｒ Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｓｏｆｔｗａｒｅ、およびそこに引用される参考文献を参照されたい）、所定のオリゴヌクレオチドテンプレートについて、各種複合体を形成するのに必要な自由エネルギー変化を満たすプライマー配列を予測することが可能である。
プライマーは、ＤＮＡポリメラーゼによって伸長可能でなければならない。重合による伸長に好適なプライマーの生成は、国際公開第９９／４２６１８号（および、同書に引用される参考文献）に記載されるように従来技術でよく知られている。一般に、プライマーは、特定のプライマー標的結合部位（例えば、プライマーに対して相補的な配列）を含む合成標的の増幅について高い効率を可能としなければならず、例えば、Ｋｕｒｎの米国特許第６，２５１，６３９号に記載される方法を用いて約１０６から１０９の増幅を可能としなければならない。複合プライマーは、その後において、新たな（追加の）複合プライマーの結合によるプライマー伸長産物の置換、および、ポリメラーゼによる新規プライマーの伸長が実現可能となるように設計される。さらに、プライマー伸長産物におけるＲＮＡ部分の切断は、複合プライマーによる増幅の基質とはならない増幅産物の生成をもたらす。本発明の方法に使用される複合プライマーの局面を全体的に記載する次の節では、記述される特性は、ハイブリダイゼーションおよびポリヌクレオチド増幅の起動（複合伸長産物の生産）のために、および／または、本明細書に記載される単一プライマー等温性増幅のために使用される場合、それらのプライマーに適用することが可能であることが理解される。
ある実施形態では、第１複合プライマーは、単一プライマー等温性増幅（すなわち、相（ｂ））を含む工程を含む本発明の方法に使用される。別の実施形態では、本発明の方法において第１と第２、様々の、複合プライマーが使用される。第２複合プライマーは、単一プライマー等温性増幅工程に使用され、第１複合プライマー配列のある部分、または全てを含んでもよく、第１複合プライマーは、第２複合プライマーの配列のある部分または全てを含んでもよい。ある実施形態では、第２複合プライマーは、第１複合プライマーとは異なる配列を含む。
単一プライマー等温性増幅および／または複合プライマー伸長産物形成に使用するためには、複合プライマーは、少なくとも１つのＲＮＡ部分であって、（ａ）複合体の（ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体中のＲＮＡの切断によって形成される）（ある実施形態では、第２プライマー伸長産物における）単一鎖部分の配列に、同じ単一鎖部分の配列に対するＤＮＡ部分のハイブリダイゼーションとは独立に、結合する（ハイブリダイズする）ことが可能である、および、（ｂ）単一鎖部分にハイブリダイズした場合、リボヌクレアーゼのような因子によって切断が可能であるＲＮＡ部分を含む。複合プライマーは単一鎖部分に結合し、ＤＮＡポリメラーゼによって伸長され、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を形成する。このヘテロ二重鎖においては、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドのＲＮＡを切断する因子、例えば酵素、例えばリボヌクレアーゼ（例えば、ＲＮアーゼＨ）のような因子と接触すると、プライマーの内のＲＮＡ部分だけが切断され、一方、複合プライマー伸長産物は無傷なままであり、従って、別の複合プライマーのアニーリングが可能となる。
本明細書に記載される単一プライマー等温性増幅のために使用される場合、複合プライマーはさらに、複合体の３’単一鎖部分の配列にハイブリダイズすることが可能な３’ＤＮＡ部分を、その３’１本鎖部分に対するハイブリダイゼーションの方が、ＤＮＡポリメラーゼによって複合体から置換される核酸鎖のハイブリダイゼーションよりも優勢となるような形で含む。このようなプライマーは、核酸結合親和度に影響を及ぼすよく知られた因子、例えば、配列長および／または配列個性を始めとしてハイブリダイゼーション条件に基づいて理論的に設計することが可能である。好ましい実施形態では、複合プライマーの３’ＤＮＡ部分の、複合体の（例えば、第２伸長産物の）相補配列に対するハイブリダイゼーションは、複合プライマー伸長産物に対する、置換鎖の５’末端相同配列のハイブリダイゼーションよりも優勢であった。
複合プライマーは、ＲＮＡとＤＮＡの組み合わせを含み（上述の定義を参照）、３’末端のヌクレオチドが核酸伸長に好適なヌクレオチドを有する。３’末端ヌクレオチドは、プライマー中に存在する場合ＤＮＡポリメラーゼによって伸長可能であれば、いずれのヌクレオチドあるいは類縁体であってもよい。一般に、３’末端のヌクレオチドは、３’−ＯＨを持つ。適切なプライマーは、少なくともＲＮＡの一部分と少なくともＤＮＡの一部分を含むものを含む。例えば、複合プライマーは５’−ＲＮＡ部分と３’−ＤＮＡ部分（ＲＮＡ部分は、３’−ＤＮＡ部分に隣接する）、または、介在ＲＮＡ部分を有する５’−および３’−ＤＮＡ部分を含むことが可能である。従って、１つの実施形態では、複合プライマーは５’ＲＮＡ部分と３’−ＤＮＡ部分とを含み、好ましくは、ＲＮＡ部分は３’−ＤＮＡ部分に隣接する。別の実施形態では、複合プライマーは、５’−および３’−ＤＮＡ部分を含み、少なくとも１つのＲＮＡ部分が介在する（すなわち、２つのＤＮＡ部分の間に１つのＲＮＡ部分がある）。さらに別の実施形態では、本発明の複合プライマーは、３’−ＤＮＡ部分と、少なくとも１つの介在ＲＮＡ部分（すなわち、ＤＮＡ部分の間にＲＮＡ部分がある）を含む。
３’−ＤＮＡ部分とＲＮＡ部分を含む複合プライマーにおけるＲＮＡ部分の長さは、好ましくは約１から約５０、より好ましくは約３から約２０、さらにより好ましくは約４から約１５、もっとも好ましくは約５から約１０ヌクレオチドであってもよい。３’−ＤＮＡ部分およびＲＮＡ部分を含む複合プライマーのある実施形態では、ＲＮＡ部分は、少なくとも、約１、３、４、５ヌクレオチドの中から任意に選択されるもので、その上限は、約１０、１４、１５、２０、２５、３、５０ヌクレオチドから任意に選択されるものであってもよい。ある実施形態では、複合プライマーは、約１４または約２０ヌクレオチドからなるＲＮＡ部分を持つ。
５’−ＲＮＡ部分および３’−ＤＮＡ部分を含む複合プライマーにおける５’−ＲＮＡ部分の長さは、好ましくは約３から５０ヌクレオチド、より好ましくは約５から約２０ヌクレオチド、さらにより好ましくは約７から約１８ヌクレオチド、好ましくは約８から約１７ヌクレオチド、もっとも好ましくは約１０から約１５ヌクレオチドであってよい。５’−ＲＮＡ部分および３’−ＤＮＡ部分を含む複合プライマーの別の実施形態では、５’−ＲＮＡ部分は、少なくとも約３、５、７、８、１０ヌクレオチドの中から任意に選択されるもので、その上限は、約１４、１５、１７、１８、２０、５０ヌクレオチドから任意に選択されるものであってもよい。ある実施形態では、複合プライマーは、約１４または約２０ヌクレオチドからなるＲＮＡ部分を持つ。
５’−ＲＮＡ部分および３’−ＤＮＡ部分を含み、さらに非５’−ＲＮＡ部分を含む複合プライマーの実施形態では、非５’−ＲＮＡ部分は、好ましくは約１から約７ヌクレオチド、より好ましくは約２から約６ヌクレオチド、もっとも好ましくは約３から約５ヌクレオチドであってもよい。５’−ＲＮＡ部分および３’−ＤＮＡ部分を含み、さらに非５’−ＲＮＡ部分を含む複合プライマーのある実施形態では、非５’−ＲＮＡ部分は、少なくとも約１、２、３、５の中から任意に選択されるもので、その上限は、約５、６、７、１０ヌクレオチドから任意に選択されるものであってもよい。
５’−ＲＮＡ部分および３’−ＤＮＡ部分を含み、５’−ＲＮＡ部分が３’−ＤＮＡ部分に隣接する複合プライマーの実施形態では、５’−ＲＮＡ部分の長さは、好ましくは約３から約５０ヌクレオチド、より好ましくは約５から約２０ヌクレオチド、さらにより好ましくは約７から約１８ヌクレオチド、好ましくは約８から約１７ヌクレオチド、もっとも好ましくは約１０から約１５ヌクレオチドであってもよい。５’−ＲＮＡ部分および３’−ＤＮＡ部分を含み、５’−ＲＮＡ部分が３’−ＤＮＡ部分に隣接する複合プライマーのある実施形態では、５’−ＲＮＡ部分は、少なくとも約３、５、７、８、１０ヌクレオチドの中から任意に選択されるもので、その上限は、約１４、１５、１７、１８、２０、５０ヌクレオチドから任意に選択されるものであってもよい。ある実施形態では、複合プライマーは、約１４または約２０ヌクレオチドからなるＲＮＡ部分を持つ。
５’−および３’−ＤＮＡ部分を含み、少なくとも１つの介在ＲＮＡ部分を持つ複合プライマーにおける介在ＲＮＡ部分の長さは、好ましくは約１から約７ヌクレオチド、より好ましくは約２から約６ヌクレオチド、もっとも好ましくは約３から約５ヌクレオチドであってよい。５’−および３’−ＤＮＡ部分を含み、少なくとも１つの介在ＲＮＡ部分を持つ複合プライマーのある実施形態では、介在ＲＮＡ部分は、少なくとも約１、２、３、５ヌクレオチドの中から任意に選択されるもので、その上限は、約５、６、７、１０ヌクレオチドから任意に選択されるものであってもよい。３’−ＤＮＡ部分と少なくとも１つの介在ＲＮＡ部分を含む複合プライマーの介在ＲＮＡ部分の長さは、好ましくは約１から約７ヌクレオチド、より好ましくは約２から約６ヌクレオチド、もっとも好ましくは約３から約５ヌクレオチドであってもよい。３’−ＤＮＡ部分と少なくとも１つの介在ＲＮＡ部分を含む複合プライマーのある実施形態では、介在ＲＮＡ部分は、少なくとも約１、２、３、５ヌクレオチドの中から任意に選択されるもので、その上限は、約５、６、７、１０ヌクレオチドから任意に選択されるものであってもよい。３’−ＤＮＡ部分および少なくとも１つの介在ＲＮＡ部分を含み、さらに５’−ＲＮＡ部分を含む複合プライマーにおいては、５’−ＲＮＡ部分は、好ましくは約３から約２５ヌクレオチド、より好ましくは約５から約２０ヌクレオチド、さらにより好ましくは約７から約１８ヌクレオチド、好ましくは約８から約１７ヌクレオチド、もっとも好ましくは約１０から約１５ヌクレオチドであってもよい。３’−ＤＮＡ部分および少なくとも１つの介在ＲＮＡ部分を含み、さらに５’−ＲＮＡ部分を含む複合プライマーのある実施形態では、５’−ＲＮＡ部分は、少なくとも約３、５、７、８、１０ヌクレオチドの中から任意に選択されるもので、その上限は、約１５、１７、１８、２０ヌクレオチドから任意に選択されるものであってもよい。
３’−ＤＮＡ部分およびＲＮＡ部分を含む複合プライマーにおける３’−ＤＮＡ部分の長さは、好ましくは約１から２０ヌクレオチド、より好ましくは約３から約１８ヌクレオチド、さらにより好ましくは約５から約１５ヌクレオチド、もっとも好ましくは約７から約１２ヌクレオチドである。３’−ＤＮＡ部分およびＲＮＡ部分を含む複合プライマーのある実施形態では、３’−ＤＮＡ部分は、少なくとも約１、３、５、７、１０ヌクレオチドの中から任意に選択されるもので、その上限は、約１０、１２、１５、１８、２０、２２ヌクレオチドから任意に選択されるものであってもよい。１つの実施形態では、複合プライマーは、約７ヌクレオチドからなる３’−ＤＮＡ部分を持つ。
５’−ＲＮＡ部分および３’−ＤＮＡ部分を含む複合プライマーにおける３’−ＤＮＡ部分の長さは、好ましくは約１から２０ヌクレオチド、より好ましくは約３から約１８ヌクレオチド、さらにより好ましくは約５から約１５ヌクレオチド、もっとも好ましくは約７から約１２ヌクレオチドであってよい。５’−ＲＮＡ部分および３’−ＤＮＡ部分を含む複合プライマーのある実施形態では、３’−ＤＮＡ部分は、少なくとも約１、３、５、７、１０ヌクレオチドの中から任意に選択されるもので、その上限は、約１０、１２、１５、１８、２０、２２ヌクレオチドから任意に選択されるものであってもよい。１つの実施形態では、複合プライマーは、約７ヌクレオチドからなる３’−ＤＮＡ部分を持つ。
５’−ＲＮＡ部分および３’−ＤＮＡ部分を含み、さらに非３’−ＤＮＡ部分を含む複合プライマーの実施形態では、非３’−ＤＮＡ部分は、好ましくは約１から約１０ヌクレオチド、より好ましくは約２から約８ヌクレオチド、もっとも好ましくは約３から約６ヌクレオチドであってもよい。５’−ＲＮＡ部分および３’−ＤＮＡ部分を含み、さらに非３’−ＤＮＡ部分を含む複合プライマーのある実施形態では、非３’−ＤＮＡ部分は、少なくとも約１、２、３、５ヌクレオチドの中から任意に選択されるもので、その上限は、約６、８、１０、１２ヌクレオチドから任意に選択されるものであってもよい。
５’−ＲＮＡ部分および３’−ＤＮＡ部分を含み、５’−ＲＮＡ部分が３’−ＤＮＡ部分に隣接する複合プライマーの実施形態では、３’−ＤＮＡ部分の長さは、好ましくは約１から約２０ヌクレオチド、より好ましくは約３から約１８ヌクレオチド、さらにより好ましくは約５から約１５ヌクレオチド、もっとも好ましくは約７から約１２ヌクレオチドであってもよい。５’−ＲＮＡ部分および３’−ＤＮＡ部分を含み、５’−ＲＮＡ部分が３’−ＤＮＡ部分に隣接する複合プライマーのある実施形態では、３’−ＤＮＡ部分は、少なくとも約１、３、５、７、１０ヌクレオチドの中から任意に選択されるもので、その上限は、約１０、１２、１５、１８、２０、２２ヌクレオチドから任意に選択されるものであってもよい。１つの実施形態では、複合プライマーは、約７ヌクレオチドからなる３’−ＤＮＡ部分を持つ。
５’−および３’−ＤＮＡ部分を含み、少なくとも１つの介在ＲＮＡ部分を持つ複合プライマーにおける非３’−ＤＮＡ部分の長さは、好ましくは約１から約１０ヌクレオチド、より好ましくは約２から約８ヌクレオチド、もっとも好ましくは約３から約６ヌクレオチドであってよい。５’−および３’−ＤＮＡ部分を含み、少なくとも１つの介在ＲＮＡ部分を持つプライマーのある実施形態では、非３’−ＤＮＡ部分は、少なくとも約１、２、３、５ヌクレオチドの中から任意に選択されるもので、その上限は、約６、８、１０、１２ヌクレオチドから任意に選択されるものであってもよい。
５’−および３’−ＤＮＡ部分を含み、少なくとも１つの介在ＲＮＡ部分を持つ複合プライマーにおける３’−ＤＮＡ部分の長さは、好ましくは約１から約２０ヌクレオチド、より好ましくは約３から約１８ヌクレオチド、さらにより好ましくは約５から約１５ヌクレオチド、もっとも好ましくは約７から約１２ヌクレオチドであってよい。５’−および３’−ＤＮＡ部分を含み、少なくとも１つの介在ＲＮＡ部分を持つ複合プライマーのある実施形態では、３’−ＤＮＡ部分は、少なくとも約１、３、５、７、１０ヌクレオチドの中から任意に選択されるもので、その上限は、約１０、１２、１５、１８、２０、２２ヌクレオチドから任意に選択されるものであってもよい。１つの実施形態では、複合プライマーは、約７ヌクレオチドからなる３’−ＤＮＡ部分を持つ。
３’−ＤＮＡ部分および、少なくとも１つの介在ＲＮＡ部分を含む複合プライマーにおける非３’−ＤＮＡ部分（すなわち、３’−ＤＮＡ部分以外の任意のＤＮＡ部分）の長さは、好ましくは約１から約１０ヌクレオチド、より好ましくは約２から約８ヌクレオチド、もっとも好ましくは約３から約６ヌクレオチドであってよい。３’−ＤＮＡ部分および少なくとも１つの介在ＲＮＡ部分を含む複合プライマーのある実施形態では、非３’−ＤＮＡ部分は、少なくとも約１、３、５、７、１０ヌクレオチドの中から任意に選択されるもので、その上限は、約６、８、１０、１２ヌクレオチドから任意に選択されるものであってもよい。３’−ＤＮＡ部分と少なくとも１つの介在ＲＮＡ部分を含む複合プライマーの３’−ＤＮＡ部分の長さは、好ましくは約１から約２０ヌクレオチド、より好ましくは約３から約１８ヌクレオチド、さらにより好ましくは５から１５ヌクレオチド、もっとも好ましくは約７から約１２ヌクレオチドであってもよい。３’−ＤＮＡ部分と少なくとも１つの介在ＲＮＡ部分を含む複合プライマーのある実施形態では、３’−ＤＮＡ部分は、少なくとも約１、３、５、７、１０ヌクレオチドの中から任意に選択されるもので、その上限は、約１０、１２、１５、１８、２０、２２ヌクレオチドから任意に選択されるものであってもよい。１つの実施形態では、複合プライマーは、約７ヌクレオチドからなる３’−ＤＮＡ部分を持つ。各種部分の長さは、本発明の方法の反応条件の下で適当により多く、またはより少なくすることが可能であることが理解される。
ある実施形態では、複合プライマーの５’−ＤＮＡ部分は、プライマーの５’−最末端ヌクレオチドを含む。ある実施形態では、複合プライマーの５’−ＲＮＡ部分は、プライマーの５’−最末端ヌクレオチドを含む。別の実施形態では、複合プライマーの３’−ＤＮＡ部分は、プライマーの３’−最末端ヌクレオチドを含む。別の実施形態では、３’−ＤＮＡ部分は、５’−ＲＮＡ部分に隣接し、プライマーの３’−最末端ヌクレオチドを含む（かつ、５’−ＲＮＡ部分は、プライマーの５’−最末端ヌクレオチドを含む）。
複合プライマーの全長は、好ましくは約１０から約５０ヌクレオチド、より好ましくは約１５から約３０ヌクレオチド、もっとも好ましくは約２０から約２５ヌクレオチドであってもよい。ある実施形態では、その長さは、少なくとも約１０、１５、２０、２５ヌクレオチドの中から任意に選択されるもので、その上限は、約２５、３０、５０、６０ヌクレオチドから任意に選択されるものであってもよい。ある実施形態では、複合プライマーは、約２１または約２７ヌクレオチド長である。この長さは、本発明の方法の反応条件の下で適当により多く、またはより少なくすることが可能であることが理解される。
本明細書で記述する通り、増幅反応には１種以上の異なる複合プライマーを用いてもよい。
（補助プライマー）
本明細書で用いる「補助プライマー」とは、ランダム化された、および／または、部分的にランダム化された配列を含むプライマー集団である。補助プライマーは、前述のように、ポリヌクレオチドであるが、一般に、ＤＮＡから構成される。このようなランダムプライマーは従来技術で既知である。補助プライマーの例としては、実施例１に示すランダム化ヘキサマープライマー集団がある。ある実施形態では、ランダムプライマーが結合できる配列の数を増やすために、非特異的ハイブリダイゼーションを可能とする天然の、または非天然ヌクレオチドを含んでもよい。同様に、ランダムプライマー集団の中に、プライマーとテンプレートの間のミスマッチを安定化することによって非特異的ハイブリダイゼーションを可能とする無塩基部位をランダムに導入することも可能である。プライマーは、ＤＮＡポリメラーゼによって伸長可能でなければならない。重合による伸長に好適なプライマーの生成は、国際公開第９９／４２６１８号（および、その中に引用される参考文献）に記載されるように、従来技術でよく知られている。
本明細書で用いる「補助プライマー」とは、ランダム化された、および／または、部分的にランダム化された配列を含むプライマー集団である。補助プライマーは、前述のように、ポリヌクレオチドであるが、一般に、ＤＮＡから構成される。このようなランダムプライマーは従来技術で既知である。補助プライマーの例としては、実施例１に示すランダム化ヘキサマープライマー集団がある。ある実施形態では、ランダムプライマーが結合できる配列の数を増やすために、非特異的ハイブリダイゼーションを可能とする天然の、または非天然ヌクレオチドを含んでもよい。同様に、ランダムプライマー集団の中に、プライマーとテンプレートの間のミスマッチを安定化することによって非特異的ハイブリダイゼーションを可能とする無塩基部位をランダムに導入することも可能である。プライマーは、ＤＮＡポリメラーゼによって伸長可能でなければならない。重合による伸長に好適なプライマーの生成は、国際公開第９９／４２６１８号（および、その中に引用される参考文献）に記載されるように、従来技術でよく知られている。
ある実施形態では、補助プライマーは、少なくとも６、少なくとも７、少なくとも８、少なくとも９、少なくとも１０、少なくとも１１、少なくとも１２、少なくとも１５、少なくとも１８、少なくとも２０個、またはそれを超えるヌクレオチド長を持っていてもよい。ある実施形態では、様々の長さを持つプライマーの集団が用いられる。
（ＤＮＡポリメラーゼ、およびＲＮＡ−ＤＮＡハイブリッドの切断が可能な因子）
本発明の増幅法は下記の酵素を用いる、すなわち、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および、ＲＮＡ−ＤＮＡハイブリッドのＲＮＡ鎖を切断することが可能な因子（例えば、ＲＮアーゼＨのようなリボヌクレアーゼ）である。上記活性の内の１種以上が、単一の酵素に認められ、使用されることがある。例えば、ＲＮアーゼＨ活性は、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ（例えば、逆転写酵素）によって供給することが可能であるし、または、別の酵素によって供給されてもよい。本法において有用な逆転写酵素は、ＲＮアーゼＨ活性を持っていてもよいし、持っていなくともよい。多くの逆転写酵素、例えば、トリ骨髄芽球症ウィルス（ＡＭＶ−ＲＴ）およびモロニーマウス白血病ウィルス（ＭＭＬＶ−ＲＴ）由来のものは、１種を超える活性（例えば、ポリメラーゼ活性およびリボヌクレアーゼ活性）を含み、２本鎖ｃＤＮＡ分子の形成のために機能することが可能である。一方、ある実施形態では、ＲＮアーゼＨ活性を持たない逆転写酵素を用いるのが好ましい。ＲＮアーゼＨ活性を欠如する逆転写酵素は、野生型逆転写酵素の、ＲＮアーゼＨ活性を取り除かれた突然変異形を含むものを含め、従来技術で既知である。この場合、他の供給源、例えば、大腸菌から分離したＲＮアーゼＨの添加を、２本鎖ｃＤＮＡの形成のために使用することも可能である。ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性およびＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性は、同じ酵素（例えば、Ｂｓｔポリメラーゼ）によって供給されてもよく、あるいは、これらの活性は別々の酵素によって供給されてもよい。
本発明の増幅法は下記の酵素を用いる、すなわち、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ、および、ＲＮＡ−ＤＮＡハイブリッドのＲＮＡ鎖を切断することが可能な因子（例えば、ＲＮアーゼＨのようなリボヌクレアーゼ）である。上記活性の内の１種以上が、単一の酵素に認められ、使用されることがある。例えば、ＲＮアーゼＨ活性は、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ（例えば、逆転写酵素）によって供給することが可能であるし、または、別の酵素によって供給されてもよい。本法において有用な逆転写酵素は、ＲＮアーゼＨ活性を持っていてもよいし、持っていなくともよい。多くの逆転写酵素、例えば、トリ骨髄芽球症ウィルス（ＡＭＶ−ＲＴ）およびモロニーマウス白血病ウィルス（ＭＭＬＶ−ＲＴ）由来のものは、１種を超える活性（例えば、ポリメラーゼ活性およびリボヌクレアーゼ活性）を含み、２本鎖ｃＤＮＡ分子の形成のために機能することが可能である。一方、ある実施形態では、ＲＮアーゼＨ活性を持たない逆転写酵素を用いるのが好ましい。ＲＮアーゼＨ活性を欠如する逆転写酵素は、野生型逆転写酵素の、ＲＮアーゼＨ活性を取り除かれた突然変異形を含むものを含め、従来技術で既知である。この場合、他の供給源、例えば、大腸菌から分離したＲＮアーゼＨの添加を、２本鎖ｃＤＮＡの形成のために使用することも可能である。ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性およびＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性は、同じ酵素（例えば、Ｂｓｔポリメラーゼ）によって供給されてもよく、あるいは、これらの活性は別々の酵素によって供給されてもよい。
本発明の１つの局面は、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体の形成である。この過程は、一般に、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼおよびＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼの酵素活性を利用する。一般に、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖のＲＮＡは、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断することが可能な因子（例えば、リボヌクレアーゼのような酵素）によって切断され、複合プライマーのＲＮＡに対して相補的な配列を持つ（従って、複合プライマーの結合部位を形成する）３’単一鎖部分を生成する。
本法および本発明の組成物について使用されるＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼは、本発明の方法に従ってプライマーの伸長を実行することが可能である。従って、好ましいＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼは、少なくとも主にリボヌクレオチドからなる核酸テンプレートに沿って核酸プライマーを伸長することが可能なものである。本法および本発明の組成物に用いて好適なＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼは、逆転写酵素で、例えば、ＤＮＡ−依存性およびＲＮＡ−依存性ＤＮＡポリメラーゼの両活性を持つＤＮＡポリメラーゼ、例えば、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼを含む。
本法および本発明の組成物に対して使用されるＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼは、本発明の方法に従ってプライマーの伸長を実行することが可能である。従って、好ましいポリメラーゼは、少なくとも主にデオキシヌクレオチドからなる核酸テンプレートに沿って核酸プライマーを伸長することが可能なものである。ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体の形成は、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼおよびＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼの両活性を持つＤＮＡポリメラーゼ（例えば、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ、または逆転写酵素）によって実行することが可能である。本発明の方法によるＲＮＡ配列の増幅は、置換した核酸鎖の結合するポリヌクレオチドからその核酸鎖を置換させることが可能なＤＮＡポリメラーゼの使用を含み、一般に、そのポリメラーゼの鎖置換能力が高ければ高いほど（すなわち、それほどの鎖置換能力を持たない他のポリメラーゼと比べて）好ましい。ＤＮＡポリメラーゼは、核酸鎖にハイブリダイズしたオリゴヌクレオチドの３’−末端への結合について高い親和性を持つことが好ましい。ＤＮＡポリメラーゼは、実質的にニック形成活性を持たないことが好ましい。一般に、ＤＮＡポリメラーゼは、プライマー、またはプライマー伸長ポリヌクレオチドの品質悪化を最小とするために、５’−＞３’エキソヌクレアーゼ活性を殆んどまたは全く持たないのが好ましい。一般に、このエキソヌクレアーゼ活性は、因子、例えば、ｐＨ、塩濃度、テンプレートが１本鎖か２本鎖か等、当業者には全て馴染みの因子に依存する。５’−＞３’エキソヌクレアーゼ活性を欠失させた突然変異体ＤＮＡポリメラーゼは従来技術で既知であり、本明細書に記載される増幅法に好適である。５’から３’ヌクレアーゼ、および、３’から５’ヌクレアーゼ活性の両方を欠如する突然変異体ＤＮＡポリメラーゼも記載されており、例えば、エキソ−／−クレノウＤＮＡポリメラーゼがそれである。ＤＮＡポリメラーゼは、そのポリメラーゼと、プライマー伸長産物の５’末端の間の接触発生頻度の、少なくとも約２５％、より好ましくは少なくとも約５０％、さらにより好ましくは少なくとも約７５％、もっとも好ましくは少なくとも約９０％において、テンプレート核酸からプライマー伸長産物を置換させることが好ましい。ある実施形態では、鎖置換活性を持つ熱安定ＤＮＡポリメラーゼの使用が好まれる。このようなポリメラーゼは、米国特許第５７４４３１２号（および、そこに引用される参考文献）に記載されるように、従来技術で既知である。ＤＮＡポリメラーゼは、殆んどまたは全くプルーフリーディング活性を持たないのが好ましい。
本法および本発明の組成物に使用するのに好適なＤＮＡポリメラーゼは、米国特許第５６４８２１１および５７４４３１２号に開示されるものを含み、ｅｘｏ−Ｖｅｎｔ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ）、ｅｘｏ−Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ）、Ｂｓｔ（ＢｉｏＲａｄ）、ｅｘｏ−Ｐｆｕ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ），Ｂｃａ（Ｐａｎｖｅｒａ）、配列決定級Ｔａｑ（Ｐｒｏｍｅｇａ）、ｅｘｏ−／−クレノウＤＮＡポリメラーゼ、および、ｔｈｅｒｍｏａｎａｅｒｏｂａｃｔｅｒ ｔｈｅｒｍｏｈｙｄｒｏｓｕｌｆｕｒｉｃｕｓ由来の熱安定ＤＮＡポリメラーゼを含む。
本法および本発明の組成物に使用するリボヌクレアーゼは、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッド中のリボヌクレオチドを切断することが可能である。リボヌクレアーゼは、切断されるリボヌクレオチドに隣接するヌクレオチドの性質・タイプに左右されることなく、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドのリボヌクレオチドを切断することが好ましい。リボヌクレアーゼは、配列の性質と独立に切断することが好ましい。本法および本発明の組成物に好適なリボヌクレアーゼの例は、従来技術でよく知られるが、例えば、リボヌクレアーゼＨ（ＲＮアーゼＨ），例えば、ハイブリダーゼを含む。
従来技術でよく知られるように、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性、ＲＮＡ−依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性、および、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する能力は、別々の酵素に存在してもよいし、あるいは、２つ以上の活性が同じ酵素に存在してもよい。従って、ある実施形態では、同じ酵素がＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を含み、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する。ある実施形態では、同じ酵素がＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を含み、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する。ある実施形態では、同じ酵素がＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を含み、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する。ある実施形態では、別々の酵素が、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性とＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性とを含む。ある実施形態では、別々の酵素がＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を含み、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する。ある実施形態では、別々の酵素が、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を含み、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する。
一般に、本法および本発明の組成物に使用される酵素は、前記方法および組成物の核酸成分の実質的品質悪化をもたらしてはならない。
（反応条件と検出）
本発明の方法を実行するのに適切な反応媒体および条件は、本発明の方法による核酸増幅を可能とするものである。そのような媒体および条件は当業者には既知であり、各種出版物、例えば、米国特許第５，５５４，５１６、５，７１６，７８５、５，１３０，２３８、５，１９４，３７０、６，０９０，５９１、５，４０９，８１８、５，５５４，５１７、５，１６９，７６６、５，４８０，７８４、５，３９９，４９１、５，６７９，５１２号、および、国際公開９９／４２６１８に記載される。例えば、バッファーはＴｒｉｓバッファーでよいが、ただし他のバッファーでも、バッファー成分が本発明の方法の酵素成分に対して阻害的でない限り、使用することが可能である。ｐＨは、好ましくは約５から約１１、より好ましくは約６から約１０、さらにより好ましくは約７から約９、もっとも好ましくは約７．５から約８．５である。反応媒体はまた、二価の金属イオン、例えば、Ｍｇ２＋またはＭｎ２＋を、遊離イオンの最終濃度が、約０．０１から約１５ｍＭ、もっとも好ましくは約１から１０ｍＭの範囲になるように含むことが可能である。反応媒体はまた、媒体の全体イオン強度に寄与する他の塩、例えば、ＫＣｌまたはＮａＣｌを含むことが可能である。例えば、ＫＣｌのような塩の範囲は、好ましくは約０から約１２５ｍＭ、より好ましくは約０から約１００ｍＭ、もっとも好ましくは約０から約７５ｍＭである。反応媒体はさらに、増幅反応の機能性に作用する可能性はあるが、本法の酵素成分の活性には介入しない添加物を含むことも可能である。このような添加物としては、ＢＳＡ、またはアセチル化ＢＳＡ、１本鎖結合タンパク（例えば、Ｔ４遺伝子３２タンパク）のようなタンパク、および、非イオン性界面活性剤、例えば、ＮＰ４０またはＴｒｉｔｏｎが挙げられる。酵素活性を維持することが可能な試薬、例えば、ＤＴＴも含めることが可能である。このような試薬は従来技術で既知である。適当であれば、本法で使用されるＲＮアーゼ活性を阻害しないＲＮアーゼ阻害剤（例えば、Ｒｎａｓｉｎ）も含めることが可能である。本発明の方法の内から任意に選択される局面でも、同じ温度で、または、温度を変えて実行することが可能である。増幅反応（特に、複合および第２プライマー伸長産物合成工程以外のプライマー伸長、および鎖置換）は等温的に実行することが好ましく、これによって、厄介な熱サイクル過程が回避される。増幅反応は、本発明のオリゴヌクレオチド（プライマー）の、テンプレートポリヌクレオチドおよびプライマー伸長産物に対するハイブリダイゼーションを可能とするが、用いる酵素の活性を実質的に阻害しない温度において実行される。温度は、０℃から約８５℃、約２５℃から約８５℃、約３０℃から約８０℃、約３７℃から約７５℃であってよい。
本発明の方法を実行するのに適切な反応媒体および条件は、本発明の方法による核酸増幅を可能とするものである。そのような媒体および条件は当業者には既知であり、各種出版物、例えば、米国特許第５，５５４，５１６、５，７１６，７８５、５，１３０，２３８、５，１９４，３７０、６，０９０，５９１、５，４０９，８１８、５，５５４，５１７、５，１６９，７６６、５，４８０，７８４、５，３９９，４９１、５，６７９，５１２号、および、国際公開９９／４２６１８に記載される。例えば、バッファーはＴｒｉｓバッファーでよいが、ただし他のバッファーでも、バッファー成分が本発明の方法の酵素成分に対して阻害的でない限り、使用することが可能である。ｐＨは、好ましくは約５から約１１、より好ましくは約６から約１０、さらにより好ましくは約７から約９、もっとも好ましくは約７．５から約８．５である。反応媒体はまた、二価の金属イオン、例えば、Ｍｇ２＋またはＭｎ２＋を、遊離イオンの最終濃度が、約０．０１から約１５ｍＭ、もっとも好ましくは約１から１０ｍＭの範囲になるように含むことが可能である。反応媒体はまた、媒体の全体イオン強度に寄与する他の塩、例えば、ＫＣｌまたはＮａＣｌを含むことが可能である。例えば、ＫＣｌのような塩の範囲は、好ましくは約０から約１２５ｍＭ、より好ましくは約０から約１００ｍＭ、もっとも好ましくは約０から約７５ｍＭである。反応媒体はさらに、増幅反応の機能性に作用する可能性はあるが、本法の酵素成分の活性には介入しない添加物を含むことも可能である。このような添加物としては、ＢＳＡ、またはアセチル化ＢＳＡ、１本鎖結合タンパク（例えば、Ｔ４遺伝子３２タンパク）のようなタンパク、および、非イオン性界面活性剤、例えば、ＮＰ４０またはＴｒｉｔｏｎが挙げられる。酵素活性を維持することが可能な試薬、例えば、ＤＴＴも含めることが可能である。このような試薬は従来技術で既知である。適当であれば、本法で使用されるＲＮアーゼ活性を阻害しないＲＮアーゼ阻害剤（例えば、Ｒｎａｓｉｎ）も含めることが可能である。本発明の方法の内から任意に選択される局面でも、同じ温度で、または、温度を変えて実行することが可能である。増幅反応（特に、複合および第２プライマー伸長産物合成工程以外のプライマー伸長、および鎖置換）は等温的に実行することが好ましく、これによって、厄介な熱サイクル過程が回避される。増幅反応は、本発明のオリゴヌクレオチド（プライマー）の、テンプレートポリヌクレオチドおよびプライマー伸長産物に対するハイブリダイゼーションを可能とするが、用いる酵素の活性を実質的に阻害しない温度において実行される。温度は、０℃から約８５℃、約２５℃から約８５℃、約３０℃から約８０℃、約３７℃から約７５℃であってよい。
ランダムなプライミングおよび／またはプライマー伸長および／または等温性増幅は、厳格度の低い（すなわち、完全には相補的ではない配列同士のハイブリダイゼーションも可能とする）条件の下に行なうことができる。所定の一組の反応条件においては、２つのヌクレオチド配列が互いにハイブリダイズする能力は、その２つのヌクレオチド配列の相補性の程度に基づき、相補性の程度は、マッチした相補的ヌクレオチドペアの割合に基づく。ある所定の配列において、別の配列に対して相補的なヌクレオチドの数が多ければ多いほど、ハイブリダイゼーションについて、より厳格な条件が可能となり、その２つの配列の結合はより特異的となる。逆に言うと、ハイブリダイゼーションについて、条件の厳格度が低くなればなるほど、ハイブリダイズする、および／または、部分的にハイブリダイズする複合プライマーとテンプレートポリヌクレオチドの間の結合に要求される相補性は低くなる。厳格度の低下は、下記の内から任意に選択される１つ以上を用いることによって実現される。すなわち、温度を下げる、共溶媒の比率を下げる、塩濃度を下げる等である。ハイブリダイゼーション反応の厳格度を上昇または低下させる条件は、従来技術で広く知られており、公表されている。例えば、上述のＳａｍｂｒｏｏｋ（１９８９）およびＡｕｓｕｂｅｌ（１９８７）を参照されたい。有用なハイブリダイゼーション条件は、また、例えば、Ｔｉｊｅｓｓｅｎ，１９９３，Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ Ｗｉｔｈ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｐｒｏｂｅｓ，Ｅｌｅｓｅｖｉｅｒ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ Ｂ．Ｖ．ａｎｄ
Ｋｒｉｃｋａ，１９９２，Ｎｏｎｉｓｏｔｏｐｉｃ ＤＮＡ Ｐｒｏｂｅ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，Ｃａｌｉｆ．において提供される。選択されるハイブリダイゼーション条件は、従来技術で既知の様々の要因、例えば、プライマーの長さおよび種類（例えば、ＲＮＡ、ＤＮＡ、ＰＮＡ）、および、オリゴヌクレオチドテンプレートに対するプライマーの結合領域を始め、プライマーおよびテンプレートポリヌクレオチドの濃度に依存する。
Ｋｒｉｃｋａ，１９９２，Ｎｏｎｉｓｏｔｏｐｉｃ ＤＮＡ Ｐｒｏｂｅ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，Ｃａｌｉｆ．において提供される。選択されるハイブリダイゼーション条件は、従来技術で既知の様々の要因、例えば、プライマーの長さおよび種類（例えば、ＲＮＡ、ＤＮＡ、ＰＮＡ）、および、オリゴヌクレオチドテンプレートに対するプライマーの結合領域を始め、プライマーおよびテンプレートポリヌクレオチドの濃度に依存する。
ＤＮＡポリメラーゼ活性および／またはリボヌクレアーゼ活性と適合するバッファー条件の使用に不都合とならない限り、複合プライマーのハイブリダイゼーションの厳格度は反応温度を変えることによって調節することが可能である。関連条件の例としては（厳格度の上昇順に）、約１５℃、２０℃、２５℃、３０℃、３７℃、４０℃、４５℃、５０℃、６０℃、あるいはそれを超えるインキュベーション温度があげられる。従って、ある実施状態では、複合プライマーのランダムハイブリダイゼーションは、低温で、例えば、２５℃−３７℃で行われ、次いで、本方法の等温性増幅相に好適な高温（例えば、約５０℃）でインキュベーションが行われる。ある実施形態では、温度は、５℃刻みで上昇される。別の実施形態では、温度は低温から高温にシフトされる。
本発明の方法においてプライマー伸長産物の合成に使用が可能なヌクレオチド、および／またはヌクレオチド類縁体、例えば、デオキシリボヌクレオシド三リン酸は、好ましくは約５０から約２５００μＭ、より好ましくは約１００から約２０００μＭ、さらにより好ましくは約２００から約１７００μＭ、もっとも好ましくは約２５０から約１５００μＭの量として供給される。ある実施形態では、プライマー伸長鎖においてそれがあると鎖置換が強化されるヌクレオチドまたはヌクレオチド類縁体（例えば、通常のＡＴ、ＣＧ塩基ペアよりも弱い塩基ペアを生じることによる）が含まれる。このようなヌクレオチドまたはヌクレオチド類縁体としては、デオキシイノシンおよび他の修飾塩基が挙げられるが、これらは皆従来技術で既知である。
本発明の増幅反応のオリゴヌクレオチド成分は、一般に、増幅の対象となる標的核酸配列の数を上回る。オリゴヌクレオチド成分は、標的核酸量の約１０、約１０２、約１０４、約１０６、約１０８、約１０１０、約１０１２倍で供給されるかまたは、少なくとも約１０、少なくとも約１０ ２ 、少なくとも約１０ ４ 、少なくとも約１０ ６ 、少なくとも約１０ ８ 、少なくとも約１０ １０ 、少なくとも約１０ １２ 倍で供給されてよい。複合プライマーは、それぞれ、約５０ｎＭ、約１００ｎＭ、約５００ｎＭ、約１μＭ、約２．５μＭ、約５μＭ、約１０μＭの濃度で供給されるかまたは少なくとも約５０ｎＭ、少なくとも約１００ｎＭ、少なくとも約５００ｎＭ、少なくとも約１μＭ、少なくとも約２．５μＭ、少なくとも約５μＭ、少なくとも約１０μＭの濃度で供給されてよい。複合プライマーの濃度はまた、複合プライマーハイブリダイゼーションの頻度および／または位置に影響を及ぼす。一般に、プライマー濃度の増大は、プライマーハイブリダイゼーションの頻度を増す。補助プライマーは、下記の濃度：約２５ｎＭ、約５０ｎＭ、約１００ｎＭ、約５００ｎＭ、約１μＭ、約２．５μＭ、約５μＭ、約１０μＭ、またはそれを超える濃度、のうちの任意の濃度に約がついた濃度として、または、上記濃度のうちの任意の濃度に少なくとも約がついた濃度として供給されてもよい。
１つの実施形態では、前記成分は、増幅過程の開始時に同時に添加される。別の実施形態では、成分は、増幅反応によって要求される、および／または、許容される通りに、増幅過程において適当な時点の前にまたは後に、任意の順序で添加される。このような時点は、その内のいくつかは後述されるが、当業者には簡単に特定が可能である。本発明の方法に従って核酸増幅のために使用される酵素は、その熱安定性および／または、当業者には既知の他の注意点に基づいて判断し、標的核酸変性工程前に、変性工程後に、または、プライマーの標的ポリヌクレオチドに対するハイブリダイゼーション後のいずれかにおいて、反応混合物に添加することが可能である。上記実施形態において、反応条件および組成物は、異なる反応の間では変えてもよい。
増幅過程は、各種時点で停止させ、その後の時点で再開してもよい。前記時点は、当業者には簡単に特定することが可能である。１つの時点は、複合プライマーのランダムハイブリダイゼーションの終了時である。もう１つの時点は、複合プライマーのランダムハイブリダイゼーションと複合プライマー伸長産物合成の終了時である。さらに別の時点（ある実施形態では）は、テンプレートＲＮＡの切断後である。さらに別の時点は、単一プライマー等温性増幅（ある実施形態では、これは、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する酵素（例えば、ＲＮアーゼＨ）、および必要に応じて随意にＤＮＡポリメラーゼの添加によって起動され得る）の直前である。さらに別の時点は、第２プライマー伸長産物合成の終了時である。反応を停止させる方法は、従来技術で既知であり、例えば、反応混合物を酵素活性が抑制される温度まで冷却する、または、反応混合物を酵素が破壊する温度まで加熱することを含む。反応を再開する方法も従来技術で既知であり、例えば、反応混合物の温度を、酵素活性を可能とする温度まで上昇させること、破壊された（枯渇した）酵素を補充すること、または、工程の起動に必要な試薬を添加すること（例えば、本法の単一プライマー等温性増幅相を起動するためのＲＮアーゼＨおよび／またはＤＮＡポリメラーゼの添加）を含む。ある実施形態では、１種以上の反応成分が、反応の再開の前に、再開のときに、または後に補充される。例えば、単一プライマー等温性増幅反応を始める前に、同じ複合プライマーが使用される場合は、その複合プライマーを補充することが必要となるかも知れない。あるいは別に、反応を中断することなく（すなわち、開始から完了まで）進行させてもよい。
反応は、例えば、プライマー除去のために中間複合体を精製することなく進行させることが可能である。産物は、各種時点で精製することが可能であり、かつ、そのような時点は当業者によって簡単に特定することが可能である。１つの時点は、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体の形成終了時である。別の時点は、複合プライマーのランダムハイブリダイゼーションの終了時である。
反応は、例えば、プライマー除去のために中間複合体を精製することなく進行させることが可能である。産物は、各種時点で精製することが可能であり、かつ、そのような時点は当業者によって簡単に特定することが可能である。１つの時点は、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体の形成終了時である。別の時点は、複合プライマーのランダムハイブリダイゼーションの終了時である。
増幅産物の検出は標的配列の存在を示す。定量分析も実行可能である。直接的および間接的検出法（定量法を含む）は従来技術でよく知られる。例えば、標的配列を含む未知量のポリヌクレオチドを含む試験サンプルの増幅産物の量を、標的配列を含むポリヌクレオチドの既知量を有する参照サンプルの増幅産物と比較することによって、試験サンプル中の標的配列の量を決定することが可能である。
（本発明の組成物とキット）
本発明はまた、本明細書に記載される方法で使用される組成物とキットを提供する。組成物は、本明細書に記載するものの内から任意に選択される成分、反応混合物、および／または中間体を始め、それらの任意の組み合わせであってもよい。
本発明はまた、本明細書に記載される方法で使用される組成物とキットを提供する。組成物は、本明細書に記載するものの内から任意に選択される成分、反応混合物、および／または中間体を始め、それらの任意の組み合わせであってもよい。
１つの実施形態では、本発明は、本明細書に記載される複合プライマーを含む組成物を提供する。ある実施形態では、複合プライマーは、ＤＮＡ部分に隣接するＲＮＡ部分を含む。別の実施形態では、複合プライマーは、５’−および３’−ＤＮＡ部分と、少なくとも１つの介在ＲＮＡ部分を含む。別の実施形態では、複合プライマーのＲＮＡ部分は、７から約２０個のヌクレオチドから成り、複合プライマーのＤＮＡ部分は、約５から約２０個のヌクレオチドからなる。また別の実施形態では、複合プライマーのＲＮＡ部分は、約１０から約２０個のヌクレオチドから成り、複合プライマーのＤＮＡ部分は、約７から約２０個のヌクレオチドからなる。ある実施形態では、複合プライマーは、下記：
別の実施形態では、本発明は、本明細書に記載する複合プライマー、および補助プライマー（例えば、ランダム化ヘキサマープライマー）を含む組成物を提供する。ある実施形態では、複合プライマーは、下記：
別の実施例では、本発明は、基を付着することによって誘導体形成された複合プライマーを含む組成物を提供する。この基は、核酸マイクロアレイを調製する際に用いられる固相基板に対する、複合プライマー含有ポリヌクレオチドの付着を可能とする。ある実施形態では、複合プライマーには、アミンのような正電荷帯電基が付着される。別の実施形態では、複合プライマーは、例えば、複合プライマーを、検出可能な基、例えばラベル、または、ラベルに共有結合または非共有結合が可能な基を用いて誘導体化することによって標識される。
別の実施例では、本発明は、複合プライマーと、下記の内から選択される１つ以上を含む組成物を提供する。選択の対象となるものは、ＤＮＡポリメラーゼ、ＲＮＡ／ＤＮＡ２重鎖からＲＮＡを切断する酵素、および、補助プライマー（例えば、ランダムヘキサマープライマーの集団）である。ある実施形態では、組成物はさらに標識ｄＮＴＰを含む。さらに別の実施形態では、組成物は、非標準的ヌクレオチド（例えば、ｄＵＴＰ）、および、米国特許出願公開第２００４／０００５６１４号、および、Ｋｕｒｎ等の同時係属中米国特許出願第６０／５３３，３８１号に記載されるように、無塩基部位を標識する、および／または、断片化するのに好適な試薬を含む。
組成物は、一般に、凍結乾燥形態または水性形態として、好ましくは、適当なバッファー中に存在する。
本発明はまた、本明細書に記載される増幅産物を含む組成物を提供する。従って、本発明は、本明細書に記載される方法の内から任意に選択された方法によって生産される、標的配列のコピーまたは相補体であるＤＮＡ集団（または、産物を含む組成物）を提供する。本発明はまた、均一（同じ配列）であっても、または、不均一（異なる配列）であってもよいこれらの集団からなる組成物および各種形態物（例えば、アレイ）を含む。これらの集団は、本明細書に記載される方法から得られた配列の任意の集合体であってよい。
組成物は、凍結乾燥形態であることも可能であるが、一般的には、適当な媒体中に存在する。適当な媒体としては、水性媒体（例えば、純水またはバッファー）が挙げられるが、ただしそれに限定されない。
本発明は、本発明の方法を実行するためのキットを提供する。従って、適当な包装を施された様々なキットが提供される。キットは、本明細書に記載される用法の内から任意に選択される１つ以上の用法のために使用されてよく、従って、下記の用法の中から任意に選択される１つ以上に関する指示を含んでいてもよい。その用法とは、増幅法、遺伝子タイピング、核酸突然変異検出（遺伝子タイピング法を含む）、目的の配列の有無の決定、目的の配列の定量、不動化核酸の調製（マイクロアレイ上に不動化される核酸であってもよい）、比較ゲノムハイブリダイゼーション、および、本発明の方法によって生成される核酸増幅産物による核酸の特性解明、発現プロファイリング法、サブトラクティブハイブリダイゼーション、および、サブトラクティブハイブリダイゼーション用プローブの調製、および、ライブラリー（ｃＤＮＡおよび／または差動ハイブリダイゼーションライブラリーであってもよい）調製法である。
本発明のキットは、本明細書に記載される成分から任意に選択された組み合わせを含む１つ以上の容器を含むが、下記は、そのようなキットの例である。キットは、本明細書に記載される複合プライマーの内から任意に選択されるものを含んでいてよい。ある実施形態では、キットは、下記：
キットの中の１つ以上の試薬は、乾燥粉末として供給されてよいが、通常は、賦形剤を含めて凍結乾燥される。このものは、溶解すると、本明細書に記載される方法から任意に選択される方法を実行するのに好適な濃度を有する試薬液を与える。各成分は、別々の容器に包装されてもよいし、あるいは、交差反応性や有効期限が折り合う場合には、いくつかの成分を合わせて１つの容器に入れてもよい。
本発明のキットは、意図する核酸増幅のために本発明の方法の成分を使用することに関する、および／または、適当に、種々の目的、例えば、配列変異の検出のために増幅産物を使用するための、要すれば随意に、一式の指示、一般的には、指示書を含んでもよい。ただし、指示を含む電子保存媒体（例えば、磁性ディスケット、または光ディスク）も受け入れ可能である。キットに含まれる指示は、一般に、本発明の方法を実行するのに必要な試薬（キットに含まれると否とを問わず）に関する情報、キットの使用法および／または適当な反応条件に関する説明を含む。
別の実施例では、本発明のキットは、複合プライマー伸長産物および第２プライマー伸長産物からなる複合体を含む。さらに別の実施例では、上記キットの内から任意に選択されるキットはさらに、１種以上のコントロール（例えば、テンプレートポリヌクレオチド（例えば、ゲノムＤＮＡのようなＤＮＡテンプレート、あるいは、全体ＲＮＡまたはｍＲＮＡのようなＲＮＡテンプレート）であってもよい）、複合プライマー、および／または補助プライマーを含む。
キットの成分は、便利で、適切であれば、任意に選択される包装形式で包装されてよい。成分は別々に包装されてもよく、あるいは、１つの、または複数の組み合わせで包装されてもよい。
キット中の各種成分の相対量は、本明細書に記載される方法を実行するのに必要な反応を実質的に最適化し、および／または、さらにアッセイの感度を最適化するのに必要な試薬の濃度を実現するために大きく変動させてもよい。
本発明はまた、本明細書に記載される方法を実行するシステムを提供する。これらのシステムは、上に論じた成分の各種組み合わせを含む。
どのシステム実施形態も、本明細書で記載するテンプレート（標的）配列を含んでよい。システムは一般に、本発明の増幅法を実行するための１つ以上の装置を含む。そのような装置としては、例えば、加熱装置（例えば、加熱ブロックまたは水浴）および、本明細書に記載される方法の１つ以上の工程を自動的に実行する装置が挙げられる。本発明の方法は、加熱サイクル工程がどの工程にも必要とされないので、小型装置に用いるのに特に好適である。好適な装置の非限定的例としては、ＢｉｏＡｎａｌｙｚｅｒ（Ａｇｉｌａｎｔ ａｎｄ Ｃａｌｉｐｅｒ）およびｅＳｅｎｓｏｒが挙げられる。
本発明はまた、本明細書に記載する成分の各種組み合わせを含む反応混合物（または、反応混合物を含む組成物）を提供する。反応混合物の例は上述した。ある実施形態では、本発明は、（ａ）標的ポリヌクレオチド、（ｂ）３’ＤＮＡ部分およびＲＮＡ部分を含む複合プライマー、（ｃ）補助プライマー、および（ｄ）ＤＮＡポリメラーゼを含む反応混合物を提供する。本明細書で記述する場合、複合プライマーは全て、３’ＤＮＡ部分に隣接して５’ＲＮＡ部分を含む複合プライマーを含めて、反応混合物（または、複数の複合プライマー）の中に存在してよい。反応混合物はまた、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する酵素、例えば、ＲＮアーゼＨをさらに含んでもよい。ある実施形態では、複合プライマーは、下記：
その他の反応混合物も本明細書に記載され、本発明に含まれる。
本発明はまた、本明細書に記載される複合体（本明細書に記載される方法における中間体である）の内から任意に選択される複合体を含む組成物を含む。そのような複合体の例が、図１−８に模式的に描かれる。例として、本発明の１つの複合体は、（ａ）標的ポリヌクレオチド鎖、および、（ｂ）３’ＤＮＡ部分とＲＮＡ部分を含む複合プライマーを含む複合体である。この複合プライマーは、５’にあって、３’ＤＮＡ部分に隣接するＲＮＡ部分を持ってもよい。別の例として、本発明の複合体は、（ａ）複合プライマー伸長産物、および、（ｂ）標的ポリヌクレオチドを含む複合体である。
さらに別の例では、本発明の複合体は、本明細書に記載される方法の内から任意に選択される方法によって調製された、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体である。ある実施形態では、この複合体はさらに、第２の末端に第２のＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む。さらに別の例では、本発明の複合体は、本明細書に記載される方法の内から任意に選択される方法によって産生された３’単一鎖ＤＮＡ部分を含む複合体である。ある実施形態では、複合体はさらに、第２の３’単一鎖領域を含む。別の例では、本発明の複合体は、（ａ）３’単一鎖ＤＮＡ部分を含む複合体、および、（ｂ）その３’単一鎖部分にハイブリダイズした複合プライマーである。
（本発明の増幅法および組成物を用いる方法）
本発明の方法および組成物は、様々の目的のために使用することが可能である。例示のために述べると、核酸突然変異検出法（遺伝子タイピング法を含む）、目的の配列の有無の決定、目的の配列の定量、不動化核酸の調製（マイクロアレイ上に不動化される核酸であってもよい）、比較ゲノムハイブリダイゼーション、および、本発明の方法によって生成された核酸増幅産物による核酸の特性解明、新規核酸配列（例えば、新規コードまたは非コード転写物）の検出および／または特定、および、スプライシング変異体配列の特性解明が挙げられる。発現プロファイリング法、サブトラクティブハイブリダイゼーション法、および、サブトラクティブハイブリダイゼーション用プローブの調製、および、ライブラリー（ｃＤＮＡおよび／または差動ハイブリダイゼーションライブラリーであってもよい）調製法がさらに挙げられる。
本発明の方法および組成物は、様々の目的のために使用することが可能である。例示のために述べると、核酸突然変異検出法（遺伝子タイピング法を含む）、目的の配列の有無の決定、目的の配列の定量、不動化核酸の調製（マイクロアレイ上に不動化される核酸であってもよい）、比較ゲノムハイブリダイゼーション、および、本発明の方法によって生成された核酸増幅産物による核酸の特性解明、新規核酸配列（例えば、新規コードまたは非コード転写物）の検出および／または特定、および、スプライシング変異体配列の特性解明が挙げられる。発現プロファイリング法、サブトラクティブハイブリダイゼーション法、および、サブトラクティブハイブリダイゼーション用プローブの調製、および、ライブラリー（ｃＤＮＡおよび／または差動ハイブリダイゼーションライブラリーであってもよい）調製法がさらに挙げられる。
（核酸マイクロアレイを含む、基板に不動化される核酸の調製法）
本発明のいくつかの増幅法の産物は、表面に不動化するのに適する。本発明の方法の増幅産物が一般に、テンプレートポリヌクレオチドのセンスおよびアンチセンスコピーに対応する配列の混合物を含む限り、ある定義された供給源（例えば、定義された細胞集団または単一細胞から得られたＤＮＡまたはＲＮＡ、生物特異的テンプレート（例えば、特定のウィルスまたはその他の病原体のＤＮＡまたはＲＮＡであって、その生物体を特定するのに十分なＤＮＡまたはＲＮＡ）、または、疾病特異的テンプレート）から得られるテンプレートポリヌクレオチドの増幅によって生成される配列集団を不動化することは有用である。次に、不動化された増幅産物は、各種プローブによって探査され、ハイブダイゼーション信号が比較され得る。例えば、既知の病原体または非病原体（例えば、ウィルス、またはウィルスグループ）から得られたゲノムポリヌクレオチド（ＤＮＡまたはＲＮＡ）の不動化アレイを、遺伝材料サンプル中の病原体の存在または同一性評価のために用いてもよい。このようなアレイは、疾病監視、および疾病発生の際には病原体の特定に有用であろう。疑惑のサンプルからポリヌクレオチドを分離し、従来技術で既知の任意の方法で標識し、このようなアレイにハイブリダイズさせてもよい。アレイに対するハイビリダイゼーションによって生じた信号を検出することによって、サンプルポリヌクレオチドに存在する病原体の存在または同一性に関する情報が得られる。
本発明のいくつかの増幅法の産物は、表面に不動化するのに適する。本発明の方法の増幅産物が一般に、テンプレートポリヌクレオチドのセンスおよびアンチセンスコピーに対応する配列の混合物を含む限り、ある定義された供給源（例えば、定義された細胞集団または単一細胞から得られたＤＮＡまたはＲＮＡ、生物特異的テンプレート（例えば、特定のウィルスまたはその他の病原体のＤＮＡまたはＲＮＡであって、その生物体を特定するのに十分なＤＮＡまたはＲＮＡ）、または、疾病特異的テンプレート）から得られるテンプレートポリヌクレオチドの増幅によって生成される配列集団を不動化することは有用である。次に、不動化された増幅産物は、各種プローブによって探査され、ハイブダイゼーション信号が比較され得る。例えば、既知の病原体または非病原体（例えば、ウィルス、またはウィルスグループ）から得られたゲノムポリヌクレオチド（ＤＮＡまたはＲＮＡ）の不動化アレイを、遺伝材料サンプル中の病原体の存在または同一性評価のために用いてもよい。このようなアレイは、疾病監視、および疾病発生の際には病原体の特定に有用であろう。疑惑のサンプルからポリヌクレオチドを分離し、従来技術で既知の任意の方法で標識し、このようなアレイにハイブリダイズさせてもよい。アレイに対するハイビリダイゼーションによって生じた信号を検出することによって、サンプルポリヌクレオチドに存在する病原体の存在または同一性に関する情報が得られる。
増幅産物は、固体または半固体の支持体または表面に付着させることが可能である。支持体または表面は、例えば、ガラス、プラスチック（例えば、ポリスチレン、ポリプロピレン、ナイロン）、ポリアクリルアミド、ニトロセルロース、またはその他の材料で製造されてもよい。
核酸を、例えば、ガラススライドのような固相基板に付着させるための従来のいくつかのよく知られた技術がある。１つの方法は、固相基板に付着することができる基、例えば、アミン基、アミン基の誘導体、または正電荷を有する別の基を含む修飾された塩基または類縁体を、増幅核酸中に組み込むことである。次に、この増幅産物を、増幅産物上の反応基と共有結合を形成するアルデヒド、または他の反応基でコートした、固相基板、例えば、ガラススライドに接触させて、増幅産物をガラススライドに共有結合させる。増幅産物を含むマイクロアレイは、Ｂｉｏｄｏｔ（ＢｉｏＤｏｔ，Ｉｎｃ．，アービン、カリフォルニア州）の点滴下装置、およびアルデヒド塗布ガラススライド（ＣＥＬ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｓ、ヒューストン、テキサス州）を用いて製造することが可能である。増幅産物は、アルデヒド塗布スライドに滴下し、公表された手順（Ｓｃｈｅｎａ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．（１９９５）９３：１０６１４−１０６１９）に従って処理することが可能である。アレイはまた、ロボット工学を用いて、ガラス、ナイロン（Ｒａｍｓａｙ，Ｇ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．（１９９８），１６：４０−４４）、ポリプロピレン（Ｍａｔｓｏｎ，ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ．（１９９５）、２２４（１）：１１０−６）、および、シリコンスライド（Ｍａｒｓｈａｌｌ，Ａ．ａｎｄ Ｈｏｄｇｓｏｎ，Ｊ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．（１９９８）１６：２７−３１）の上に印刷することが可能である。アレイ構築のための他の方法としては、電場におけるファインマイクロピペッティング（Ｍａｒｓｈａｌｌ ａｎｄ Ｈｏｄｇｓｏｎ、上述）、および、正電荷塗布プレートに対するポリヌクレオチドの直接滴下が挙げられる。アミノプロピルシリコン表面化学を利用する方法も、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｃｍｔ．ｃｏｒｎｉｎｇ．ｃｏｍおよびｈｔｔｐ：／／ｃｍｇｍ．ｓｔａｎｆｏｒｄ．ｅｄｕ／ｐｂｒｏｗｎ／に開示されているように、従来技術で既知である。
マイクロアレイを製造する１つの方法は、高密度ポリヌクレオチドアレイの製造である。ポリヌクレオチドの高速沈着技術は既知である（Ｂｌａｎｃｈａｒｄ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｓｅｎｓｏｒｓ ＆ Ｂｉｏｅｌｅｃｔｒｏｎｉｃｓ，１１：６８７−６９０）。その他の方法、例えば、マスキングによるマイクロアレイの製造法も用いてよい（Ｍａｓｋｏｓ ａｎｄ Ｓｏｕｔｈｅｒｎ，Ｎｕｃ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．（１９９２），２０：１６７９−１６８４）。原則として、前述したように、任意のタイプのアレイ、例えば、ナイロンハイブリダイゼーション膜に対するドットブロットも使用が可能である。しかしながら、当業者には理解されるように、多くの場合極小アレイが好まれる。なぜならハイブリダイゼーション容量がより小さくなるからである。
増幅ポリヌクレオチドは、基板、例えば、紙、ガラス、プラスチック、ポリスチレン、ポリプロピレン、ナイロン、ポリアクリルアミド、ニトロセルロース、シリコン、光ファイバー、または、その他の任意の好適な固形または半固形表面体（例えば、薄層のポリアクリルアミドゲル（Ｋｈｒａｐｋｏ，ｅｔ ａｌ．，ＤＮＡ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ（１９９１），１：３７５−３８８）を含む基板の上にマトリックス状に滴下してもよい。
アレイは、平坦な基板の上に二次元マトリックスとして配置してもよいし、または、ピン、ロッド、ファイバー、テープ、スレッド、ビーズ、粒子、マイクロタイターウェル、毛細管、シリンダー、および、標的分子のハイブリダイゼーション・検出に好適な任意の他の配置を取ってもよい。１つの実施形態では、増幅産物が付着される基板は、磁性ビーズまたは粒子である。別の実施形態では、固相基板は光ファイバーを含む。さらに別の実施形態では、増幅産物は、毛細管中の液相に分散され、次に、固体相に対して不動化される。
アレイはまた、粒子、例えば、ビーズから構成されてもよい。ビーズは、増幅産物のみによって標識されてもよいし、あるいは、増幅産物と付加したラベル、例えば、定義された色素または他のラベルとの両方によって標識されてもよい。
（核酸の特定）
本発明の方法によって得られる増幅産物についてさらに詳細な特性解明を実行することが可能である。本発明の方法の産物については、特に定量的分析を行うことが可能である。なぜなら、開始材料の各種ポリヌクレオチドの表示を一般に正確に反映する十分な量のＤＮＡが生産されるからである。
本発明の方法によって得られる増幅産物についてさらに詳細な特性解明を実行することが可能である。本発明の方法の産物については、特に定量的分析を行うことが可能である。なぜなら、開始材料の各種ポリヌクレオチドの表示を一般に正確に反映する十分な量のＤＮＡが生産されるからである。
増幅されたポリヌクレオチド産物（すなわち、本明細書に記載される増幅方法の内から任意に選択される方法によって得られた産物）は、例えば、従来技術で既知のプローブハイブリダイゼーション技術、例えば、サザンおよびノーザンブロッティング、およびプローブアレイに対するハイブリダイゼーションを用いて分析することが可能である。産物はまた、電気泳動法、例えば、従来技術で既知の、差動ディスプレイおよびサイズ特徴解明を用いて分析することも可能である。さらに、このポリヌクレオチド産物は、従来技術で既知の他の分析法および／または定量法、例えば、リアルタイムＰＣＲ、定量的ＴａｑＭａｎ、分子ビーコンによる定量的ＰＣＲ、米国特許第６，２５１，６３９、６，６８６，１５６、および、６，６９２，９１８号、米国特許公開第２００２／０１１５０８８Ａ１、２００３／０１８６２３４Ａ１、２００３／００８７２５１Ａ１、２００２／０１６４６２８、および２００３／０２１５９２６号、および、国際出願公開第０３／０８３４３号に記載される方法の開始材料として使用することも可能である。従って、本発明は、本明細書に記載される方法の産物の内から任意に選択される産物に対して適用される、これらのさらに詳細な分析的および／または定量的方法をも含む。
１つの実施形態では、本発明の増幅法は、ポリヌクレオチド産物の多数コピーを生成するのに利用され、産物はプローブに接触させることによって分析される。
ある実施形態では、本発明の増幅方法は、標識された（切断されない部分において）複合プライマーを用いて標識した１本鎖ポリヌクレオチド（一般に、ＤＮＡ）産物の多数コピーを生成するのに利用される。例えば、プライマーは、アミノアリル標識ヌクレオチドによって標識することが可能である。別の実施形態では、本発明の増幅方法は、ＤＮＡの間に標識ヌクレオチドの取り込みによって標識されるポリヌクレオチド（一般に、ＤＮＡ）産物の多数のコピーを生成するのに利用される。例えば、本発明の方法による増幅は、適当に標識されたｄＮＴＰを用いて実行することが可能である。これらの標識ヌクレオチドは、直接ラベルに付着させてもよいし、あるいは、ラベルに付着させることが可能な基を含んでもよい。ラベルは、増幅産物に対して共有結合または非共有結合させてもよい。適当なラベルは従来技術で既知であるが、例えば、特定の結合ペアのメンバーであって、結合ペアの検出可能な第２メンバーを用いて検出／定量が可能なリガンドが挙げられる。従って、例えば、Ｃｙ３−ｄＵＴＰまたはＣｙ５−ｄＵＴＰの存在下に本発明の方法に従ってテンプレートポリヌクレオチドを増幅することによって、これらのヌクレオチドは増幅産物の中に取り込まれる。さらに、アミノアリル誘導体化ヌクレオチド、例えば、アミノアリルｄＵＴＰの存在下で増幅することも可能である。アミノアリルｄＵＴＰを含む増幅産物は、Ｃｙ３またはＣｙ５のようなラベルに結合することが可能である。
別の実施形態では、増幅方法は、非標準的ヌクレオチド、例えば、ｄＵＴＰの存在下に実行されるが、非標準的ヌクレオチドを含む増幅は、米国特許出願公開第２００４／０００５６１４号に開示される方法に従って標識および／または断片化される。簡単に言うと、非標準的ヌクレオチドは（増幅産物に取り込まれた場合）切断されて、無塩基部位を生成する。次に、この無塩基部位は、無塩基部位を標識することが可能な試薬と接触させることによって標識する。さらに、無塩基部位を含むポリヌクレオチドは、その無塩基部位において切断することが可能であり、さらに詳細な分析、例えば、アレイに対するハイブリダイゼーションに好適な断片を生成する。この断片はまた、前述のようにして標識することが可能である。
標識増幅産物は、それらを、例えば、ｃＤＮＡのような適当なプローブおよび／またはオリゴヌクレオチドプローブを含む、マイクロアレイ（ガラス、チップ、プラスチックを含む、任意の適当な表面を持つ）、ビーズ、または粒子に接触させて分析（例えば、検出および／または定量）するには特に好適である。従って、本発明は、本発明の増幅法を用いて標識ポリヌクレオチド（一般に、ＤＮＡ）産物を生成し、標識産物を分析することによって、対象とする標的ポリヌクレオチドの特性を解明する（例えば、検出および／または定量する）方法を提供する。標識産物の分析は、例えば、その標識増幅産物を、例えば、固形または半固形の基板の特定部位に不動化されたプローブ、定義された粒子に不動化されたプローブ、または、ブロット（例えば、膜）に不動化されたプローブ、例えば、前述されたアレイに、ハイブリダイズすることによって実行することが可能である。標識産物を分析するその他の方法は従来技術で既知であり、例えば、標識産物を、プローブを含む溶液に接触させ、その後、溶液から、標識増幅産物とプローブを含む複合体を抽出するやり方がある。プローブの本質から、増幅産物の配列の本質が解明され、従って、外挿により、サンプル中に存在する標的ポリヌクレオチドの本質も解明される。標識産物のハイブリダイゼーションは検出可能であり、検出される特定のラベルの量は、対象とする特定の標的ポリヌクレオチドの標識増幅産物の量に比例する。
アレイの定義された部位においてハイブリダイズした標識産物の量（例えば、ラベルと関連する検出可能な信号によって示される）は、サンプル中の対応する標的ポリヌクレオチド種の検出および／または定量を指示する可能性がある。
特性解明法としては、ハイブリダイゼーションによる配列決定（例えば、Ｄｒａｍａｎａｃ、米国特許第６，２７０，９６１号参照）、および、大規模ゲノムハイブリダイゼーション（比較ゲノムハイブリダイゼーションとも呼ばれる）（例えば、Ｐｉｎｋｅｌ，米国特許第６，１５９，６８５号、Ｄａｉｇｏ ｅｔ ａｌ（２００１）Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．１５８（５）：１６２３−１６３１を参照）が挙げられる。簡単に言うと、比較ゲノムハイブリダイゼーションは、本明細書に記載される任意の方法に従って標識ポリヌクレオチド（ポリヌクレオチド断片であってもよい）の第１集団を調製することを含み、その場合、第１集団が合成される元となったテンプレートは全ゲノムＤＮＡである。（第１集団をそれと比較したいと思う）標識ポリヌクレオチドの第２集団が、第２ゲノムＤＮＡテンプレートから調製される。第１集団と第２集団は異なるラベルで標識される。ハイブリダイズした第１および第２集団を混合し、アレイまたは展開した染色体にハイブリダイズさせる。異なるラベルが検出され、比較される。
別の局面では、本発明は、標識および／または断片化核酸の定量法であって、定義された配列（例えば、マイクロアレイ上に不動化されてもよい）を持つオリゴヌクレオチド（プローブ）の使用を含む方法を提供する。
本発明の方法によって生成された増幅産物はまた、標的核酸配列に見られる変化を、その配列変化を除いてはその標的核酸配列に対して同じである参照核酸配列と比べることによって検出する分析にも好適である。標的ポリヌクレオチドがゲノムＤＮＡまたはＲＮＡである場合、その配列変化は、ゲノム配列に存在する配列変化であるかも知れないし、あるいは、ゲノム配列には反映されない配列変化、例えば、転写後変化、および／または、スプライシング変異を含むｍＲＮＡのプロセシングによる変化であるかも知れない。配列変化（相互交換的に「突然変異」と呼ばれる）としては、１個以上のヌクレオチドの欠失、置換、挿入、および／またはトランスバージョンが挙げられる。
参照核酸配列と比べることによって標的核酸配列に見られる変化を検出する、その他の、従来技術認知の分析方法も、本発明の増幅法の核酸産物に用いるのに好適である。そのような方法は従来技術でよく知られているが、特定の定義された配列を検出するための各種方法、例えば、対立遺伝子特異的プライマー伸長、対立遺伝子特異的プローブ連結、差異プローブハイブリダイゼーション、および、限定プライマー伸長に基づく方法が挙げられる。例えば、Ｋｕｒｎ等、米国特許第６，２５１，６３９Ｂ１、米国特許第５，８８８，８１９、６，００４，７４４、５，８８２，８６７、５，８５４，０３３、５，７１０，０２８、６，０２７，８８９、６，００４，７４５、５，７６３，１７８、５，０１１，７６９、５，１８５，２４３、４，８７６，１８７、５，８８２，８６７、５，７３１，１４６、国際公開第 ＵＳ８８／０２７４６号、ＷＯ９９／５５９１２、ＷＯ９２／１５７１２、ＷＯ００／０９７４５、ＷＯ９７／３２０４０、ＷＯ００／５６９２５、および５，６６０，９８８を参照されたい。従って、本発明はまた、突然変異（一塩基多型であってもよい）を含む標的ポリヌクレオチドにおける突然変異の検出法であって、（ａ）本明細書に記載される任意の方法を用いて標的ポリヌクレオチドを増幅すること、および、（ｂ）参照ポリヌクレオチドと比較することによって変化（突然変異）の存在について増幅産物を分析することを含む方法を提供する。
増幅産物はまた、さらに詳細な分析、例えば、配列決定、例えばオリゴヌクレオチド連結アッセイによる多型検出（多重ＳＮＰ検出を含む）、Ｉｎｖａｄｅｒ，Ｃｌｅａｖａｓｅ，または限定プライマー伸長による分析等のテンプレートとして使用することも可能である。全体として大容量の投入材料を必要とする方法では、本発明の方法は、ポリヌクレオチドプールを「前段」増幅し、その後の分析に十分な投入材料を生成するために使用することが可能である。
（遺伝子発現プロフィールの決定）
本発明の増幅法は、サンプル中の１種以上の遺伝子の発現レベルの定量に使用するのに特に好適である。なぜなら本明細書に記載される方法は、同じサンプル中の標的ＲＮＡを多数、莫大な数増幅することが可能だからである。前述のように、増幅産物は、本明細書に記載する、および／または、従来技術で既知の様々な方法を用いて検出し、定量することが可能である。ＲＮＡは遺伝子発現の産物であるから、サンプル中の各種ＲＮＡ分子種、例えばｍＲＮＡのレベルは、各種遺伝子の相対的発現レベル（遺伝子発現プロフィール）を示す。従って、配列の増幅産物を定量することによって決定される、サンプル中に存在する対象ＲＮＡ配列量の決定は、同じサンプル供給源の遺伝子発現プロフィールを決める。
本発明の増幅法は、サンプル中の１種以上の遺伝子の発現レベルの定量に使用するのに特に好適である。なぜなら本明細書に記載される方法は、同じサンプル中の標的ＲＮＡを多数、莫大な数増幅することが可能だからである。前述のように、増幅産物は、本明細書に記載する、および／または、従来技術で既知の様々な方法を用いて検出し、定量することが可能である。ＲＮＡは遺伝子発現の産物であるから、サンプル中の各種ＲＮＡ分子種、例えばｍＲＮＡのレベルは、各種遺伝子の相対的発現レベル（遺伝子発現プロフィール）を示す。従って、配列の増幅産物を定量することによって決定される、サンプル中に存在する対象ＲＮＡ配列量の決定は、同じサンプル供給源の遺伝子発現プロフィールを決める。
従って、本発明は、サンプル中の遺伝子発現プロフィールを定める方法であって、本明細書に記載される任意の方法を用いて、サンプル中のテンプレートＲＮＡから１本鎖産物を増幅すること、および、各ＲＮＡの増幅産物量を定量することを含み、前記各量は、サンプルにおける各ＲＮＡの量を示すものであり、それにより、サンプルの発現プロフィールが確定される方法を提供する。一般に、標識産物が形成される。ある実施形態では、標的ＲＮＡはｍＲＮＡである。増幅産物の量は、定量法および／または定性法によって定められてもよいことが理解される。増幅産物の量を定めることは、増幅産物の有無を決めることを含む。従って、発現プロフィールは、１種以上の対象ＲＮＡ配列の有無に関する情報を含むことが可能である。本明細書で用いる、産物が「欠如する」または、産物の「欠如」、および「産物検出不能」とは、微々たるレベル、または最小レベルを含む。
発現プロファイリング法は、多種多様な分子診断において、特に、事実上任意の哺乳類細胞（単一細胞を含む）、または細胞集団における遺伝子発現の研究において有用である。細胞、または細胞集団（例えば組織）は、例えば、血液、脳、脾臓、骨、心臓、血管、肺、腎臓、下垂体、内分泌腺、胚細胞、腫瘍等に由来してよい。発現プロファイリングはまた、対照（正常）サンプルを、発達、治療などの前、後、および／または最中を含めた様々な時点で採取された試験サンプルを含む試験サンプルと比較するのに有用である。
（ライブラリーの調製法）
本発明の方法のＤＮＡ産物は、ｃＤＮＡライブラリーおよびサブトラクティブハイブリダイゼーションライブラリーを含めたライブラリーを調製するのに有用である。本発明の方法を用いると、ライブラリーを、限られた量の開始材料から、例えば、限られた量の組織、または単一細胞から抽出されたｍＲＮＡから調製することが可能である。従って、１つの局面で、本発明の方法は、本発明のＤＮＡ産物からライブラリーを調製する工程を提供する。さらに別の局面では、本発明は、ライブラリーの製造法であって、本明細書に記載される任意の方法を用いてサブトラクティブハイブリダイゼーションプローブを調製することを含む方法を提供する。
本発明の方法のＤＮＡ産物は、ｃＤＮＡライブラリーおよびサブトラクティブハイブリダイゼーションライブラリーを含めたライブラリーを調製するのに有用である。本発明の方法を用いると、ライブラリーを、限られた量の開始材料から、例えば、限られた量の組織、または単一細胞から抽出されたｍＲＮＡから調製することが可能である。従って、１つの局面で、本発明の方法は、本発明のＤＮＡ産物からライブラリーを調製する工程を提供する。さらに別の局面では、本発明は、ライブラリーの製造法であって、本明細書に記載される任意の方法を用いてサブトラクティブハイブリダイゼーションプローブを調製することを含む方法を提供する。
（サブトラクティブハイブリダイゼーション法）
本発明の方法は、（少なくとも）第１および第２標的ポリヌクレオチド集団が比較されるサブトラクティブハイブリダイゼーション法に使用するためには特に好適である。なぜなら、本明細書に記載される方法は、同じサンプルの多数の標的ポリヌクレオチドを増幅することが可能であり、かつ、本発明の方法は、サブトラクティブハイブリダイゼーションにおいて「駆動因子」として用いるのに好適な１本鎖アンチセンス核酸を大量に生産するのに適しているからである。例えば、一方はセンス、もう一方はアンチセンスである２つの核酸集団を、一方の集団がモル過剰で存在するように（「駆動因子」）互いに混合させることができる。両集団に存在する配列はハイブリッドを形成するが、一方、片方の集団にしか存在しない配列は１本鎖のままである。その後、各種周知の方法を用いて、識別的に発現した配列を表す、ハイブリダイズしない分子を分離する。例えば、Ｈａｍｓｏｎ等、米国特許第５，５８９，３３９号、Ｖａｎ Ｇｅｌｄｅｒ、米国特許第６，２９１，１７０を参照されたい。本明細書に提供されるサブトラクティブハイブリダイゼーション法は、増幅標的ＲＮＡを用いるサブトラクティブハイブリダイゼーションには特に好適である。
本発明の方法は、（少なくとも）第１および第２標的ポリヌクレオチド集団が比較されるサブトラクティブハイブリダイゼーション法に使用するためには特に好適である。なぜなら、本明細書に記載される方法は、同じサンプルの多数の標的ポリヌクレオチドを増幅することが可能であり、かつ、本発明の方法は、サブトラクティブハイブリダイゼーションにおいて「駆動因子」として用いるのに好適な１本鎖アンチセンス核酸を大量に生産するのに適しているからである。例えば、一方はセンス、もう一方はアンチセンスである２つの核酸集団を、一方の集団がモル過剰で存在するように（「駆動因子」）互いに混合させることができる。両集団に存在する配列はハイブリッドを形成するが、一方、片方の集団にしか存在しない配列は１本鎖のままである。その後、各種周知の方法を用いて、識別的に発現した配列を表す、ハイブリダイズしない分子を分離する。例えば、Ｈａｍｓｏｎ等、米国特許第５，５８９，３３９号、Ｖａｎ Ｇｅｌｄｅｒ、米国特許第６，２９１，１７０を参照されたい。本明細書に提供されるサブトラクティブハイブリダイゼーション法は、増幅標的ＲＮＡを用いるサブトラクティブハイブリダイゼーションには特に好適である。
従って、本発明は、サブトラクティブハイブリダイゼーションを実行する方法であって、（ａ）本明細書に記載される任意の増幅法を用いて、第１ポリヌクレオチド集団から標的ポリヌクレオチドの相補体の複数ＤＮＡコピーを調製すること、および、（ｂ）その複数のコピーを第２ポリヌクレオチド集団にハイブリダイズさせることを含み、それによって第２ポリヌクレオチド集団のサブ集団に、第１ポリヌクレオチド集団のＤＮＡコピーと複合体を形成させる方法を提供する。本発明はまた、サブトラクティブハイブリダイゼーション法であって、本明細書に記載される任意の増幅方法を用いて、第１ポリヌクレオチド集団由来の少なくとも１つのポリヌクレオチドの相補体の複数コピーを、第２ポリヌクレオチド集団にハイブリダイズさせることを含み、第２ポリヌクレオチド集団のサブ集団に、第１ポリヌクレオチド集団の複数コピーの内のあるコピーと複合体を形成させる方法を提供する。好ましい実施形態では、サブトラクティブハイブリダイゼーションで利用されるポリヌクレオチド集団はＲＮＡ集団である。ある実施形態では、本発明の方法の、「駆動因子」１本鎖アンチセンスＤＮＡ産物が、試験因子（センス）ＲＮＡ分子種と結合される。ある実施形態では、「駆動因子」１本鎖アンチセンス核酸（一般に、ＤＮＡ）産物は、本明細書に記載される本発明の方法を用いて生産される。
別の局面では、本発明は、差動増幅法であって、試験ＲＮＡ配列とハイブリダイズする１本鎖駆動（アンチセンス）ＤＮＡ配列を、ＤＮＡ／ＲＮＡハイブリッド中に存在するＲＮＡを切断する因子、例えば、ＲＮアーゼＨによる切断に供する方法を提供する。ＲＮＡが切断されると、試験ＲＮＡ鎖から１本鎖ＤＮＡ産物を生成することができなくなる。逆に、切断されない試験因子（すなわち、駆動ＤＮＡ分子にハイブリダイズしない試験因子ＲＮＡ）は、その後の増幅において基質となり得る。識別的に発現した増幅産物は、多様な用途、例えば、差動発現ライブラリー生産のための差動発現プローブとして含む用途を有する。従って、本発明は、１種以上のＲＮＡテンプレート配列の差動増幅法であって、（ａ）本明細書に記載される任意の増幅法を用いて、第１ＲＮＡ集団からＲＮＡの相補体の複数のポリヌクレオチド（一般に、ＤＮＡ）コピーを調製すること、（ｂ）この複数コピーを第２ＲＮＡ集団にハイブリダイズさせて、第２ＲＮＡ集団のサブ集団に、ＤＮＡコピーとの複合体を形成させること、（ｃ）ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する酵素を用いて工程（ｂ）の複合体のＲＮＡを切断すること、および、（ｄ）第２ＲＮＡ集団のハイブリダイズしないサブ集団を増幅することを含み、第２ＲＮＡ集団のハイブリダイズしないサブ集団に対して相補的な１本鎖ＤＮＡの多数コピーを生成する方法を提供する。ある実施形態では、工程（ｄ）は、本明細書に記載される任意の増幅法を用いて実行される。ある実施形態では、方法は、本明細書に記載される任意の増幅法を用いて、第１ＲＮＡ集団由来の対象とする少なくとも１つのＲＮＡ配列の相補体の複数ポリヌクレオチド（一般に、ＤＮＡ）コピーを、第２ＲＮＡ集団にハイブリダイズさせ、第２ＲＮＡ集団のサブ集団に、ＤＮＡコピーとの複合体を形成させること、（ｂ）ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する酵素を用いて工程（ａ）の複合体のＲＮＡを切断すること、および、（ｃ）第２ＲＮＡ集団のハイブリダイズしないサブ集団を増幅し、それにより第２ＲＮＡ集団のハイブリダイズしないサブ集団に対して相補的な１本鎖ＤＮＡの多数コピーを生成することを含む。
下記の実施例は、本発明を具体的に説明するために示されるものであって、本発明を限定するためのものではない。
（実施例１：複合プライマーおよびランダムヘキサマープライマーによるヒトゲノムＤＮＡの大規模増幅）
大規模増幅反応は、複合プライマーＩＡ２０と、ヒトゲノムＤＮＡをテンプレートとして用いて実行した。複合プライマーＩＡ２０の配列は下記の通り。ＩＡ２０：
大規模増幅反応は、複合プライマーＩＡ２０と、ヒトゲノムＤＮＡをテンプレートとして用いて実行した。複合プライマーＩＡ２０の配列は下記の通り。ＩＡ２０：
ヒトゲノムＤＮＡ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ．，カタログ番号６５５０−１）をＴＥバッファーで希釈し、９９℃に加熱することによって変性した。いくつかのサンプルでは、ＤＮＡとプライマーは、増幅バッファー中で混合し、９６℃で２−４分加熱した。
下記の反応混合物を用いた。
あらかじめ変性させたヒトゲノムＤＮＡ（約６００コピー）２ｎｇ；
ランダムヘキサマーＮ６（最終濃度２．５μＭ）（Ｑｉａｇｅｎ−Ｏｐｅｒｏｎ、項目番号：ＰｏｌｙＮ（６−ｍｅｒ））２μｌ；
複合プライマーＩＡ２０（最終濃度２．５μＭ）０．５μｌ（１００μＭ）；
Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ（０．０４Ｕ／μｌ）（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ ＢｉｏＬａｂｓ，カタログ番号Ｍ０２７５）０．１μｌ；
バッファー（最終濃度：２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ８．５；５ｍＭ ＭｇＣｌ２；ＲＮａｓｉｎ、０．３Ｕ／μｌ；ＤＴＴ，０．５ｍＭ；アセチル化ＢＳＡ、０．１μｇ／μｌ；Ｔ４ｇｐ３２タンパク、０．１５μｇ／μｌ）１０μｌ；
ＲＮアーゼを含まない水、最終容量１５μｌまで。
ランダムヘキサマーＮ６（最終濃度２．５μＭ）（Ｑｉａｇｅｎ−Ｏｐｅｒｏｎ、項目番号：ＰｏｌｙＮ（６−ｍｅｒ））２μｌ；
複合プライマーＩＡ２０（最終濃度２．５μＭ）０．５μｌ（１００μＭ）；
Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ（０．０４Ｕ／μｌ）（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ ＢｉｏＬａｂｓ，カタログ番号Ｍ０２７５）０．１μｌ；
バッファー（最終濃度：２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ８．５；５ｍＭ ＭｇＣｌ２；ＲＮａｓｉｎ、０．３Ｕ／μｌ；ＤＴＴ，０．５ｍＭ；アセチル化ＢＳＡ、０．１μｇ／μｌ；Ｔ４ｇｐ３２タンパク、０．１５μｇ／μｌ）１０μｌ；
ＲＮアーゼを含まない水、最終容量１５μｌまで。
この混合物を３０℃で５分、次いで４０℃で５分、５０℃で２分インキュベートした。
酵素混合物５μｌ（ＲＮアーゼＨ、最終濃度０．０２５Ｕ／μｌ；およびＢｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ（大断片）、最終濃度０．２Ｕ／μｌ）を添加し、反応系を５０℃で３０−４０分インキュベートした。反応を、８０℃で５分インキュベートして酵素を失活させて停止した。
コントロール反応を準備した。この場合、複合プライマー、Ｎ６ランダムプライマー、または、ＲＮアーゼＨのいずれかを省略した。コントロール反応では、（除外された試薬の）対応する容量は水で置換された。
増幅反応産物は下記のように分析された。０．５μｌの反応混合液を４−２０％の勾配アクリルアミドゲルに負荷し、２００−２２０Ｖの定電圧で３０分電気泳動した。ゲルを、０．００５ｍｇ／ｍｌの臭化エチジウムで２分間染色し、１分間水洗した。次にゲルを視像化し、ＡｌｐｈａＩｍａｇｅｒ２２００システムにて撮影した。結果を図９に示す。レーンは、下記の成分を含む反応混合物に対応する。
レーン番号１−２：完全な反応混合物
レーン番号３−４：Ｎ６ランダムプライマーを欠く反応
レーン番号５−６：複合プライマーを欠く反応
レーン番号７−８：ＲＮアーゼＨを欠く反応。
レーン番号３−４：Ｎ６ランダムプライマーを欠く反応
レーン番号５−６：複合プライマーを欠く反応
レーン番号７−８：ＲＮアーゼＨを欠く反応。
図９は、完全反応混合物を含む反応（後述）、および、Ｎ６ランダムプライマーを欠く反応では、様々の分子量を持つ増幅産物が生産されたことを示す。しかしながら、複合プライマーまたはＲＮアーゼＨが省略された反応は、検出可能な反応産物を示さなかった。
増幅産物は、下記の手順を用いて定量した。反応は、前述のように準備し、処理した。反応混合物は１００倍に希釈し、その希釈サンプル２μｌをリアルタイムＰＣＲ定量に用いた。この定量には、染色体７の単一コピー配列を増幅する下記のプライマーペアを用いた。すなわち、
２２１ＰＦ２（５’−ＡＧＴＡＴＣＴＧＧＣＡＣＡＴＣＴＴ−３’（配列番号３））および、
２２１ＰＲ２（５’−ＧＧＧＡＧＡＴＡＴＴＡＴＴＴＧＧＣ−３’（配列番号４））。
２２１ＰＦ２（５’−ＡＧＴＡＴＣＴＧＧＣＡＣＡＴＣＴＴ−３’（配列番号３））および、
２２１ＰＲ２（５’−ＧＧＧＡＧＡＴＡＴＴＡＴＴＴＧＧＣ−３’（配列番号４））。
プライマー２２１ＰＦ２と２２１ＰＲ２による増幅は、６２塩基対のＰＣＲ産物を生産することが予測された。ＰＣＲ反応混合物は下記を含んでいた。すなわち、１０μＭの各プライマー１μｌ；水６μｌ；２ｘＳＹＢＲ Ｇｒｅｅｎ ＰＣＲ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）１０μｌ；および、希釈反応混合液２μｌ（前述のように希釈）。コントロール反応系は、テンプレートとして、増幅反応産物の代わりに、ヒトゲノムＤＮＡ２μｌを用いて行った。
用いた熱サイクルプログラムは下記の通り。９４℃１０分１サイクル、次いで９４℃３０秒、５５℃３０秒、７２℃３０秒４５サイクルである。リアルタイムＰＣＲ定量データは、Ｃｔ値（閾値サイクル）として示した。増幅産物の定量について得られた値は、２μｌのヒトゲノムＤＮＡについて得られた値（表１において「非増幅ゲノムＤＮＡ」と表示されている）と比較した。希釈された大規模増幅産物と、増幅反応に投入される元のヒトゲノムＤＮＡの間の希釈係数は１０００倍である。データを表１にまとめた。
（表１：ＳＹＢＲ Ｇｒｅｅｎ使用リアルタイムＰＣＲによる増幅産物および標的ヒトゲノムＤＮＡの定量。ヒトゲノムＤＮＡの染色体７上の単一コピー配列（２２１）を用いて増幅効率を定量した。増幅効率は、ゲノムＤＮＡの開始サンプルにおけるこの単一コピー配列、および、大規模増幅後の同じコピー配列の相対的量として表す。）
（表２）
増幅反応産物は上述の通りに分析した。様々な分子量の増幅産物が生成された。これは、複合プライマーが、多数のテンプレート配列の増幅を可能とすることを示す。
上に本発明をはっきりと理解されるよう図や実施例に基づいてやや詳細に説明したけれども、当業者には明らかなように、いくつかの変更および修正は実行可能である。従って、この説明および実施例は、本発明の範囲を限定するものと考えてはならない。
Claims (80)
- ＤＮＡテンプレートポリヌクレオチドの増幅法であって、該方法は、以下：
（ａ）反応混合物をインキュベートする工程であって、該反応混合物は、
（ｉ）ＤＮＡテンプレートポリヌクレオチド；
（ｉｉ）第１プライマーであって、該第１プライマーは、該ＤＮＡテンプレートポリヌクレオチドの複数の部位にハイブリダイズし得える複合プライマーであって、該複合プライマーは、ＲＮＡ部分および３’ＤＮＡ部分を含む、第１プライマー；
（ｉｉｉ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ；および
（ｉｖ）ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ
を含み、ここで、該インキュベーションは、該ＤＮＡテンプレートポリヌクレオチドの複数の部位に対する第１プライマーのランダムなハイブリダイゼーションおよびプライマー伸長を可能にする条件下であり、それによって、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖を含む複合体が生成される、工程；ならびに
（ｂ）反応混合物をインキュベートする工程であって、該反応混合物は、以下：
（ｉ）工程（ａ）に従って生成された反応産物の少なくとも一部；
（ｉｉ）ＲＮＡ部分および３’ＤＮＡ部分を含む複合プライマーである増幅プライマー；
（ｉｉｉ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ；および
（ｉｖ）ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する因子
を含み、ここで、該インキュベーションは、ＲＮＡの切断、プライマーハイブリダイゼーション、プライマー伸長を可能にし、かつ該プライマー伸長産物のＲＮＡが切断され、別の増幅プライマーが該テンプレートに結合し、鎖置換によって伸長される場合に、該プライマー伸長産物の置換を可能にする条件下であり、それによって、ポリヌクレオチド増幅産物の複数のコピーが生成される、工程
を包含する、方法。 - 工程（ａ）の前記ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼと、前記ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼとは、同じ酵素である、請求項１に記載の方法。
- 工程（ａ）の前記ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼと、前記ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼとは、異なる酵素である、請求項１に記載の方法。
- 前記第１プライマーと前記増幅プライマーとは、同じプライマーである、請求項１に記載の方法。
- 前記第１プライマーと前記増幅プライマーとは、異なるプライマーである、請求項１に記載の方法。
- 工程（ｂ）は、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する因子を工程（ａ）の反応混合物に添加することによって開始される、請求項１に記載の方法。
- ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する前記因子は、ＲＮアーゼＨである、請求項６に記載の方法。
- 工程（ａ）および／または工程（ｂ）の前記反応混合物は、補助プライマーをさらに含む、請求項１に記載の方法。
- 前記第１プライマーは、ランダム配列を含む、請求項１に記載の方法。
- 前記第１プライマーは、少なくとも２つの異なるプライマーである、請求項９に記載の方法。
- 前記第１プライマーは、複数の異なるプライマーである、請求項１０に記載の方法。
- 前記第１プライマーの前記ＲＮＡ部分は、前記３’−ＤＮＡ部分に対して５’側にある、請求項１に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記ＲＮＡ部分は、前記３’−ＤＮＡ部分に対して５’側にある、請求項１２に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記５’ＲＮＡ部分は、前記３’−ＤＮＡ部分に隣接する、請求項１３に記載の方法。
- 前記第１プライマーの前記５’ＲＮＡ部分は、前記３’−ＤＮＡ部分に隣接する、請求項１２に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記ＲＮＡ部分は、前記３’−ＤＮＡ部分に対して５’側にある、請求項１５に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記５’ＲＮＡ部分は、前記３’ＤＮＡ部分に隣接する、請求項１６に記載の方法。
- 前記第１プライマーの前記ＲＮＡ部分は、７〜約２０個のヌクレオチドからなる、請求項１に記載の方法。
- 前記第１プライマーの前記ＤＮＡ部分は、約５〜約２０個のヌクレオチドからなる、請求項１８に記載の方法。
- 前記第１プライマーの前記ＲＮＡ部分は、約１０〜約２０個のヌクレオチドからなる、請求項１９に記載の方法。
- 前記第１プライマーの前記ＤＮＡ部分は、約７〜約２０個のヌクレオチドからなる、請求項２０に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記ＲＮＡ部分は、７〜約２０個のヌクレオチドからなる、請求項１に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記ＤＮＡ部分は、約５〜約２０個のヌクレオチドからなる、請求項２２に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記ＲＮＡ部分は、約１０〜約２０個のヌクレオチドからなる、請求項２３に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記ＤＮＡ部分は、約７〜約２０個のヌクレオチドからなる、請求項２４に記載の方法。
- 前記第１プライマーは、
- 前記増幅プライマーは、
- 前記増幅プライマーは、
- 工程（ｂ）の前記反応混合物は、非標準的ヌクレオチドをさらに含む、請求項１に記載の方法。
- 前記非標準的ヌクレオチドは、ｄＵＴＰである、請求項２９に記載の方法。
- 工程（ｂ）の前記反応混合物は、標識ヌクレオチドをさらに含む、請求項１に記載の方法。
- ＤＮＡテンプレートポリヌクレオチドの増幅法であって、該方法は、反応混合物をインキュベートする工程を包含し、該反応混合物は、以下：
（ａ）ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体であって、該複合体は、第１反応混合物をインキュベートすることによって生成され、該第１反応混合物は、以下：
（ｉ）ＤＮＡポリヌクレオチドテンプレート；
（ｉｉ）複合プライマーである第１プライマーであって、該複合プライマーはＲＮＡ部分および３’ＤＮＡ部分を含み、該複合プライマーは、該ＤＮＡテンプレートポリヌクレオチドの複数の部位にハイブリダイズし得る、第１プライマー；
（ｉｉｉ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ；および
（ｉｖ）ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ
を含み、該インキュベーションは、該ＤＮＡテンプレートポリヌクレオチドの複数の部位に対する第１プライマーのランダムなハイブリダイゼーション、およびプライマー伸長を可能にする条件下であり、それによって、ＲＮＡ／ＤＮＡ部分的ヘテロ二重鎖を含む複合体が生成される、複合体；
（ｂ）ＲＮＡ部分および３’ＤＮＡ部分を含む複合プライマーである増幅プライマー；
（ｃ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ；および
（ｄ）ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する因子
を含み、該インキュベーションは、ＲＮＡ切断、プライマーハイブリダイゼーション、プライマー伸長を可能にし、かつ、プライマー伸長産物のＲＮＡが切断され、別の増幅プライマーが結合して伸長される場合に、該プライマー伸長産物の置換を可能にする条件下であり、それによって、ポリヌクレオチド増幅産物の複数のコピーが生成される、方法。 - ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する前記因子は、酵素である、請求項３２に記載の方法。
- ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する前記酵素は、ＲＮアーゼＨである、請求項３３に記載の方法。
- 前記ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼと、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する前記酵素とは、同じ酵素である、請求項３３に記載の方法。
- 前記ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼと、ＲＮＡ／ＤＮＡハイブリッドからＲＮＡを切断する前記酵素とは、異なる酵素である、請求項３３に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記ＲＮＡ部分は、前記３’−ＤＮＡ部分に対して５’側にある、請求項３２に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記５’ＲＮＡ部分は、前記３’−ＤＮＡ部分に隣接する、請求項３７に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記ＲＮＡ部分は、７〜約２０個のヌクレオチドからなる、請求項３２に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記ＤＮＡ部分は、約５〜約２０個のヌクレオチドからなる、請求項３９に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記ＲＮＡ部分は、約１０〜約２０個のヌクレオチドからなる、請求項４０に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記ＤＮＡ部分は、約７〜約２０個のヌクレオチドからなる、請求項４１に記載の方法。
- 前記増幅プライマーは、
- 前記反応混合物は、非標準的ヌクレオチドをさらに含む、請求項３２に記載の方法。
- 前記非標準的ヌクレオチドは、ｄＵＴＰである、請求項４４に記載の方法。
- 前記反応混合物は、標識ヌクレオチドをさらに含む、請求項３２に記載の方法。
- ＤＮＡテンプレートポリヌクレオチドの増幅法であって、該方法は、反応混合物をインキュベートする工程を包含し、前記反応混合物は、以下：
（ａ）第１プライマー伸長産物と第２プライマー伸長産物との複合体であって、該第１プライマー伸長産物は、標的ポリヌクレオチドにハイブリダイズされてランダムにプライミングされる第１プライマーをＤＮＡポリメラーゼで伸長することによって生成され、該第１プライマーは、ＲＮＡ部分および３’ＤＮＡ部分を含む複合プライマーであり、該第１プライマーは、該ＤＮＡテンプレートポリヌクレオチドの複数の部位にハイブリダイズし得、該第２プライマー伸長産物は、該第１プライマー伸長産物にハイブリダイズされる第２プライマーの伸長によって生成される、複合体；
（ｂ）増幅プライマーであって、該増幅プライマーは、ＲＮＡ部分および３’ＤＮＡ部分を含む複合プライマーであり、該第２プライマー伸長産物にハイブリダイズし得る、増幅プライマー；
（ｃ）ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ；および
（ｄ）ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する因子
を含み、該インキュベーションは、ＲＮＡ切断、プライマーハイブリダイゼーション、プライマー伸長を可能にし、かつ、複合プライマーのＲＮＡ部分が切断され、別の複合プライマーが結合して伸長される場合に、該複合プライマー伸長産物の第２プライマー伸長産物による置換を可能にする条件下であり、それによって、ポリヌクレオチド増幅産物の複数のコピーが生成される、方法。 - ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する前記因子は、酵素である、請求項４７に記載の方法。
- ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する前記酵素は、ＲＮアーゼＨである、請求項４８に記載の方法。
- 前記ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼと、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する酵素とは、同じ酵素である、請求項４８に記載の方法。
- 前記ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼと、ＲＮＡ／ＤＮＡヘテロ二重鎖からＲＮＡを切断する酵素とは、異なる酵素である、請求項４８に記載の方法。
- 前記反応混合物は、補助プライマーをさらに含む、請求項４７に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記ＲＮＡ部分は、前記３’−ＤＮＡ部分に対して５’側にある、請求項４７に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記５’ＲＮＡ部分は、前記３’−ＤＮＡ部分に隣接する、請求項５３に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記ＲＮＡ部分は、７〜約２０個のヌクレオチドからなる、請求項４７に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記ＤＮＡ部分は、約５〜約２０個のヌクレオチドからなる、請求項５５に記載の方法。
- 前記増幅プライマーの前記ＲＮＡ部分は、約１０〜約２０個のヌクレオチドからなる、請求項５６に記載の方法。
- 前記増幅プライマーのＤＮＡ部分は、約７〜約２０個のヌクレオチドからなる、請求項５７に記載の方法。
- 前記増幅プライマーは、
- 前記反応混合物は、非標準的ヌクレオチドをさらに含む、請求項４７に記載の方法。
- 前記非標準的ヌクレオチドは、ｄＵＴＰである、請求項６０に記載の方法。
- 前記反応混合物は、標識ヌクレオチドをさらに含む、請求項４７に記載の方法。
- ポリヌクレオチドアレイの作製法であって、該方法は、基板上にポリヌクレオチド増幅産物を固定する工程を包含し、該増幅産物は、請求項１、３２または４７のいずれか１項に記載の方法によって産生される、方法。
- 前記ポリヌクレオチド増幅産物は、規定された供給源に由来するテンプレートポリヌクレオチドの増幅によって生成される、請求項６３に記載の方法。
- 前記規定された供給源は、規定された細胞集団である、請求項６４に記載の方法。
- 前記基板は、紙、ガラス、プラスチック、ニトロセルロース、シリコン、および光ファイバーからなる群より選択される、請求項６３に記載の方法。
- 前記基板は粒子である、請求項６３に記載の方法。
- 前記粒子はビーズである、請求項６７に記載の方法。
- 前記ビーズは色素で標識されている、請求項６８に記載の方法。
- 核酸を特徴付けする方法であって、該方法は、ポリヌクレオチド増幅産物を分析する工程を包含し、該増幅産物は、請求項１、３２または４７のいずれか１項に記載の方法によって産生される、方法。
- 前記分析する工程は、前記増幅産物をプローブと接触させることによって実行される、請求項７０に記載の方法。
- 前記分析する工程は、前記増幅産物中の目的の配列を定量することによって実行される、請求項７０に記載の方法。
- 前記分析する工程は、前記増幅産物を配列決定することによって実行される、請求項７０に記載の方法。
- 前記分析する工程は、参照核酸配列と比較した場合の、前記増幅産物中の標的核酸配列における任意の変化を検出することによって実行される、請求項７０に記載の方法。
- 標的核酸配列中の変化の検出は、対立遺伝子特異的プライマー伸長、対立遺伝子特異的プローブ連結、差異プローブハイブリダイゼーション、および制限プライマー伸長からなる群より選択される方法によって実行される、請求項７４に記載の方法。
- ライブラリーの調製法であって、該方法は、ポリヌクレオチド増幅産物のライブラリーを調製する工程を包含し、該増幅産物は、請求項１、３２または４７のいずれかに記載の方法によって産生される、方法。
- サブトラクティブハイブリダイゼーションを実行する方法であって、該方法は、標的ポリヌクレオチドの複数のコピーを含むポリヌクレオチド増幅産物を、ポリヌクレオチド集団にハイブリダイズさせる工程を包含し、それによって、ポリヌクレオチド集団のサブ集団に、ポリヌクレオチド増幅産物との複合体を形成させ、該ポリヌクレオチド増幅産物は、請求項１、３２または４７のいずれか１項に記載の方法によって生産される、方法。
- ポリヌクレオチドテンプレートを保管する方法であって、該方法は、ポリヌクレオチド増幅産物を保存する工程を包含し、該増幅産物は、請求項１、３２または４７のいずれか１項に記載の方法によって産生される、方法。
- テンプレートポリヌクレオチドを増幅するためのキットであって、以下；
ＤＮＡテンプレートポリヌクレオチド内の複数の部位に結合し得る第１複合プライマー；
増幅プライマー；および、
請求項１、３２または４７のいずれかに記載の方法を実行するための指示書
を含む、キット。 - 補助プライマーをさらに含む、請求項７９に記載のキット。
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US46296503P | 2003-04-14 | 2003-04-14 | |
| US46296203P | 2003-04-14 | 2003-04-14 | |
| PCT/US2004/012779 WO2004092418A2 (en) | 2003-04-14 | 2004-04-14 | Global amplification using a randomly primed composite primer |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2006523465A JP2006523465A (ja) | 2006-10-19 |
| JP2006523465A5 true JP2006523465A5 (ja) | 2011-03-10 |
Family
ID=33303107
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2006513320A Pending JP2006523465A (ja) | 2003-04-14 | 2004-04-14 | ランダムにプライミングされる複合プライマーを用いる大規模増幅 |
Country Status (6)
| Country | Link |
|---|---|
| US (5) | US7402386B2 (ja) |
| EP (1) | EP1613778B1 (ja) |
| JP (1) | JP2006523465A (ja) |
| AU (1) | AU2004230494A1 (ja) |
| CA (1) | CA2521084A1 (ja) |
| WO (1) | WO2004092418A2 (ja) |
Families Citing this family (41)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US7846733B2 (en) | 2000-06-26 | 2010-12-07 | Nugen Technologies, Inc. | Methods and compositions for transcription-based nucleic acid amplification |
| EP1427847B1 (en) | 2000-12-13 | 2010-07-28 | Nugen Technologies, Inc. | Methods and compositions for generation of multiple copies of nucleic acid sequences and methods of detection thereof |
| WO2002072773A2 (en) * | 2001-03-09 | 2002-09-19 | Nugen Technologies, Inc. | Methods and compositions for amplification of rna sequences |
| KR20030082535A (ko) | 2001-03-09 | 2003-10-22 | 뉴젠 테크놀로지스 인코포레이티드 | Ｒｎａ 서열의 증폭을 위한 방법 및 조성물 |
| EP1573056A4 (en) * | 2002-05-17 | 2007-11-28 | Nugen Technologies Inc | METHODS FOR FRAGMENTATION, LABELING AND IMMOBILIZATION OF NUCLEIC ACIDS |
| US7402386B2 (en) | 2003-04-14 | 2008-07-22 | Nugen Technologies, Inc. | Global amplification using random priming by a composite primer |
| US20040259100A1 (en) * | 2003-06-20 | 2004-12-23 | Illumina, Inc. | Methods and compositions for whole genome amplification and genotyping |
| US20050181394A1 (en) * | 2003-06-20 | 2005-08-18 | Illumina, Inc. | Methods and compositions for whole genome amplification and genotyping |
| US9045796B2 (en) * | 2003-06-20 | 2015-06-02 | Illumina, Inc. | Methods and compositions for whole genome amplification and genotyping |
| CA2552007A1 (en) * | 2003-12-29 | 2005-07-21 | Nugen Technologies, Inc. | Methods for analysis of nucleic acid methylation status and methods for fragmentation, labeling and immobilization of nucleic acids |
| JP4793842B2 (ja) * | 2004-11-24 | 2011-10-12 | 独立行政法人農業生物資源研究所 | ランダムｒｎａプライマーを用いたｄｎａの増幅方法 |
| AU2005314732B2 (en) * | 2004-12-17 | 2010-03-25 | Haplopharma Inc. | Method for identifying gene with varying expression levels |
| EP1929046B1 (en) | 2005-09-07 | 2012-07-11 | Nugen Technologies, Inc. | Improved nucleic acid amplification procedure |
| WO2007136717A1 (en) * | 2006-05-16 | 2007-11-29 | Nugen Technologies, Inc. | Nucleic acid separation and purification method based on reversible charge interactions |
| CA2656315A1 (en) * | 2006-06-30 | 2008-01-10 | Nugen Technologies, Inc. | Methods for fragmentation and labeling of nucleic acids |
| JP5340167B2 (ja) | 2006-12-21 | 2013-11-13 | ジェン−プロウブ インコーポレイテッド | 核酸増幅のための方法および組成物 |
| US20090203531A1 (en) * | 2008-02-12 | 2009-08-13 | Nurith Kurn | Method for Archiving and Clonal Expansion |
| GB2470672B (en) | 2008-03-21 | 2012-09-12 | Nugen Technologies Inc | Methods of RNA amplification in the presence of DNA |
| CA2766391C (en) | 2009-07-01 | 2021-04-20 | Gen-Probe Incorporated | Methods and compositions for multiplex nucleic acid amplification |
| EP2475777A4 (en) * | 2009-09-11 | 2013-03-06 | Nugen Technologies Inc | COMPOSITIONS AND METHODS FOR COMPLETE TRANSCRIPTOMAL ANALYSIS |
| EP2714938B1 (en) * | 2011-05-27 | 2017-11-15 | President and Fellows of Harvard College | Methods of amplifying whole genome of a single cell |
| WO2012166647A1 (en) * | 2011-05-27 | 2012-12-06 | Life Technologies Corporation | Methods for manipulating biomolecules |
| SG10201510189WA (en) | 2011-10-19 | 2016-01-28 | Nugen Technologies Inc | Compositions And Methods For Directional Nucleic Acid Amplification And Sequencing |
| WO2013112923A1 (en) | 2012-01-26 | 2013-08-01 | Nugen Technologies, Inc. | Compositions and methods for targeted nucleic acid sequence enrichment and high efficiency library generation |
| ES2905448T3 (es) | 2012-05-10 | 2022-04-08 | Massachusetts Gen Hospital | Métodos para determinar una secuencia nucleotídica |
| EP2861787B1 (en) | 2012-06-18 | 2017-09-20 | Nugen Technologies, Inc. | Compositions and methods for negative selection of non-desired nucleic acid sequences |
| US20150011396A1 (en) | 2012-07-09 | 2015-01-08 | Benjamin G. Schroeder | Methods for creating directional bisulfite-converted nucleic acid libraries for next generation sequencing |
| EP2971130A4 (en) | 2013-03-15 | 2016-10-05 | Nugen Technologies Inc | SEQUENTIAL SEQUENCING |
| JP6050555B2 (ja) * | 2013-07-15 | 2016-12-21 | シージーン アイエヌシー | Ｐｔｏの切断及び延長−依存的固定化オリゴヌクレオチドハイブリダイゼーションを用いたターゲット核酸配列の検出 |
| US9410172B2 (en) | 2013-09-16 | 2016-08-09 | General Electric Company | Isothermal amplification using oligocation-conjugated primer sequences |
| JP6525473B2 (ja) | 2013-11-13 | 2019-06-05 | ニューゲン テクノロジーズ， インコーポレイテッド | 複製物配列決定リードを同定するための組成物および方法 |
| EP3099820A4 (en) | 2014-01-27 | 2018-01-03 | The General Hospital Corporation | Methods of preparing nucleic acids for sequencing |
| WO2015131107A1 (en) | 2014-02-28 | 2015-09-03 | Nugen Technologies, Inc. | Reduced representation bisulfite sequencing with diversity adaptors |
| SG11201700891SA (en) | 2014-08-06 | 2017-03-30 | Nugen Technologies Inc | Digital measurements from targeted sequencing |
| MX2018000729A (es) | 2015-07-17 | 2018-09-06 | Harvard College | Métodos para amplificar las secuencias de ácido nucleico. |
| AU2017328953B2 (en) | 2016-09-15 | 2023-09-14 | Archerdx, Llc | Methods of nucleic acid sample preparation for analysis of cell-free DNA |
| WO2018053362A1 (en) | 2016-09-15 | 2018-03-22 | ArcherDX, Inc. | Methods of nucleic acid sample preparation |
| CN111542532B (zh) * | 2017-10-04 | 2024-03-15 | 生捷科技控股公司 | 酶法合成寡核苷酸的方法和体系 |
| US11099202B2 (en) | 2017-10-20 | 2021-08-24 | Tecan Genomics, Inc. | Reagent delivery system |
| CN113275053A (zh) | 2020-02-03 | 2021-08-20 | 帝肯基因组学公司 | 试剂存储系统 |
| US11280028B1 (en) | 2021-02-24 | 2022-03-22 | Agency For Science, Technology And Research (A*Star) | Unbiased and simultaneous amplification method for preparing a double-stranded DNA library from a sample of more than one type of nucleic acid |
Family Cites Families (244)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3996345A (en) | 1974-08-12 | 1976-12-07 | Syva Company | Fluorescence quenching with immunological pairs in immunoassays |
| US4174384A (en) | 1975-06-30 | 1979-11-13 | Syva Company | Fluorescence quenching with immunological pairs in immunoassays |
| US3999345A (en) | 1975-11-10 | 1976-12-28 | Shatterproof Glass Corporation | Spandrel units |
| US4261968A (en) * | 1979-05-10 | 1981-04-14 | Syva Company | Fluorescence quenching with immunological pairs in immunoassays |
| US4458066A (en) | 1980-02-29 | 1984-07-03 | University Patents, Inc. | Process for preparing polynucleotides |
| WO1982001011A1 (en) | 1980-09-24 | 1982-04-01 | Corp Cetus | Diagnostic method and probe |
| US4362867A (en) | 1980-12-10 | 1982-12-07 | Research Corporation | Recombinant cDNA construction method and hybrid nucleotides useful in cloning |
| DE3381518D1 (de) | 1982-01-22 | 1990-06-07 | Cetus Corp | Verfahren zur charakterisierung von hla und die darin benutzten cdns-testmittel. |
| US4582788A (en) | 1982-01-22 | 1986-04-15 | Cetus Corporation | HLA typing method and cDNA probes used therein |
| US4786600A (en) | 1984-05-25 | 1988-11-22 | The Trustees Of Columbia University In The City Of New York | Autocatalytic replication of recombinant RNA |
| US4683194A (en) | 1984-05-29 | 1987-07-28 | Cetus Corporation | Method for detection of polymorphic restriction sites and nucleic acid sequences |
| US4683202A (en) | 1985-03-28 | 1987-07-28 | Cetus Corporation | Process for amplifying nucleic acid sequences |
| US5011769A (en) | 1985-12-05 | 1991-04-30 | Meiogenics U.S. Limited Partnership | Methods for detecting nucleic acid sequences |
| US4876187A (en) | 1985-12-05 | 1989-10-24 | Meiogenics, Inc. | Nucleic acid compositions with scissile linkage useful for detecting nucleic acid sequences |
| US4996143A (en) * | 1985-12-23 | 1991-02-26 | Syngene, Inc. | Fluorescent stokes shift probes for polynucleotide hybridization |
| US5721098A (en) | 1986-01-16 | 1998-02-24 | The Regents Of The University Of California | Comparative genomic hybridization |
| CA1284931C (en) | 1986-03-13 | 1991-06-18 | Henry A. Erlich | Process for detecting specific nucleotide variations and genetic polymorphisms present in nucleic acids |
| US5849478A (en) | 1986-08-14 | 1998-12-15 | Cashman; Daniel P. | Blocked-polymerase polynucleotide immunoassay method and kit |
| CA1338457C (en) | 1986-08-22 | 1996-07-16 | Henry A. Erlich | Purified thermostable enzyme |
| DE3634356A1 (de) | 1986-10-08 | 1988-04-21 | Epis Sa | Arzneimittel enthaltend alpha-halogenierte dicarbonsaeuren |
| US6270961B1 (en) | 1987-04-01 | 2001-08-07 | Hyseq, Inc. | Methods and apparatus for DNA sequencing and DNA identification |
| IL86724A (en) | 1987-06-19 | 1995-01-24 | Siska Diagnostics Inc | Methods and kits for amplification and testing of nucleic acid sequences |
| IE72468B1 (en) | 1987-07-31 | 1997-04-09 | Univ Leland Stanford Junior | Selective amplification of target polynucleotide sequences |
| US6090591A (en) | 1987-07-31 | 2000-07-18 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Selective amplification of target polynucleotide sequences |
| US6004745A (en) | 1987-09-21 | 1999-12-21 | Gen-Probe Incorporated | Hybridization protection assay |
| US5403711A (en) | 1987-11-30 | 1995-04-04 | University Of Iowa Research Foundation | Nucleic acid hybridization and amplification method for detection of specific sequences in which a complementary labeled nucleic acid probe is cleaved |
| AU622426B2 (en) | 1987-12-11 | 1992-04-09 | Abbott Laboratories | Assay using template-dependent nucleic acid probe reorganization |
| ATE92538T1 (de) | 1988-01-21 | 1993-08-15 | Genentech Inc | Verstaerkung und nachweis von nukleinsaeuresequenzen. |
| CA1340807C (en) | 1988-02-24 | 1999-11-02 | Lawrence T. Malek | Nucleic acid amplification process |
| JP2650159B2 (ja) | 1988-02-24 | 1997-09-03 | アクゾ・ノベル・エヌ・ベー | 核酸増幅方法 |
| AU623642B2 (en) | 1988-03-24 | 1992-05-21 | University Of Iowa Research Foundation, The | Catalytic hybridization systems for the detection of nucleic acid sequences based on their activity as cofactors in catalytic reactions in which a complementary labeled nucleic acid probe is cleaved |
| US5130238A (en) | 1988-06-24 | 1992-07-14 | Cangene Corporation | Enhanced nucleic acid amplification process |
| WO1990001069A1 (en) | 1988-07-20 | 1990-02-08 | Segev Diagnostics, Inc. | Process for amplifying and detecting nucleic acid sequences |
| US5185243A (en) | 1988-08-25 | 1993-02-09 | Syntex (U.S.A.) Inc. | Method for detection of specific nucleic acid sequences |
| US5508178A (en) | 1989-01-19 | 1996-04-16 | Rose; Samuel | Nucleic acid amplification using single primer |
| US5708154A (en) * | 1989-02-24 | 1998-01-13 | City Of Hope | RNA-DNA hybrid molecules of nucleic acid |
| US5106727A (en) | 1989-04-27 | 1992-04-21 | Life Technologies, Inc. | Amplification of nucleic acid sequences using oligonucleotides of random sequences as primers |
| US5043272A (en) | 1989-04-27 | 1991-08-27 | Life Technologies, Incorporated | Amplification of nucleic acid sequences using oligonucleotides of random sequence as primers |
| US5143854A (en) | 1989-06-07 | 1992-09-01 | Affymax Technologies N.V. | Large scale photolithographic solid phase synthesis of polypeptides and receptor binding screening thereof |
| US6040138A (en) * | 1995-09-15 | 2000-03-21 | Affymetrix, Inc. | Expression monitoring by hybridization to high density oligonucleotide arrays |
| DE69034177T2 (de) | 1989-07-11 | 2005-10-27 | Gen-Probe Inc., San Diego | Verfahren zur Amplifikation von Nukleinsäuresequenzen |
| CA2020958C (en) | 1989-07-11 | 2005-01-11 | Daniel L. Kacian | Nucleic acid sequence amplification methods |
| US5766849A (en) | 1989-07-11 | 1998-06-16 | Gen-Probe Incorporated | Methods of amplifying nucleic acids using promoter-containing primer sequence |
| US5545522A (en) | 1989-09-22 | 1996-08-13 | Van Gelder; Russell N. | Process for amplifying a target polynucleotide sequence using a single primer-promoter complex |
| US5427930A (en) * | 1990-01-26 | 1995-06-27 | Abbott Laboratories | Amplification of target nucleic acids using gap filling ligase chain reaction |
| US6013431A (en) | 1990-02-16 | 2000-01-11 | Molecular Tool, Inc. | Method for determining specific nucleotide variations by primer extension in the presence of mixture of labeled nucleotides and terminators |
| CA2037349C (en) | 1990-03-26 | 2008-06-17 | James G. Wetmur | Branch migration of nucleotides |
| HU218095B (hu) | 1990-05-01 | 2000-05-28 | Amgen Inc. | Eljárás átvitt szennyeződések csökkentésére, amplifikációs eljárásokban |
| US5427911A (en) | 1990-05-01 | 1995-06-27 | Yale University | Coupled amplification and sequencing of DNA |
| US5194370A (en) | 1990-05-16 | 1993-03-16 | Life Technologies, Inc. | Promoter ligation activated transcription amplification of nucleic acid sequences |
| US5693502A (en) | 1990-06-11 | 1997-12-02 | Nexstar Pharmaceuticals, Inc. | Nucleic acid ligand inhibitors to DNA polymerases |
| US5595891A (en) | 1990-07-19 | 1997-01-21 | Behringwerke Ag | Method for producing a polynucleotide for use in single primer amplification |
| US5527872A (en) | 1990-09-14 | 1996-06-18 | At&T Global Information Solutions Company | Electronic device with a spin-on glass dielectric layer |
| US6083689A (en) | 1990-10-16 | 2000-07-04 | Bayer Corporation | Sensitive immunoassays utilizing antibody conjugates with replicable DNA templates |
| US5846710A (en) | 1990-11-02 | 1998-12-08 | St. Louis University | Method for the detection of genetic diseases and gene sequence variations by single nucleotide primer extension |
| US5175243A (en) | 1990-11-14 | 1992-12-29 | Phillips Petroleum Company | Process for preparing arylene sulfide polymers with halo benzene containing deactivating group |
| US5455166A (en) | 1991-01-31 | 1995-10-03 | Becton, Dickinson And Company | Strand displacement amplification |
| KR930009227B1 (ko) | 1991-01-31 | 1993-09-24 | 삼성전자 주식회사 | 테이프 레코더의 브레이크 구동장치 |
| AU8997991A (en) | 1991-01-31 | 1992-08-06 | Becton Dickinson & Company | Exonuclease mediated strand displacement amplification |
| US5888819A (en) | 1991-03-05 | 1999-03-30 | Molecular Tool, Inc. | Method for determining nucleotide identity through primer extension |
| US6004744A (en) | 1991-03-05 | 1999-12-21 | Molecular Tool, Inc. | Method for determining nucleotide identity through extension of immobilized primer |
| US5090591A (en) * | 1991-03-18 | 1992-02-25 | Longford Equipment International Limited | Article dispenser for use with continuous strip of articles |
| WO1992018521A1 (en) | 1991-04-10 | 1992-10-29 | Life Technologies, Inc. | Method for amplifying and altering an rna sequence |
| US5340716A (en) | 1991-06-20 | 1994-08-23 | Snytex (U.S.A.) Inc. | Assay method utilizing photoactivated chemiluminescent label |
| US5169766A (en) | 1991-06-14 | 1992-12-08 | Life Technologies, Inc. | Amplification of nucleic acid molecules |
| US5665539A (en) | 1991-07-12 | 1997-09-09 | The Regents Of The University Of California | Immuno-polymerase chain reaction system for antigen detection |
| US5328985A (en) | 1991-07-12 | 1994-07-12 | The Regents Of The University Of California | Recombinant streptavidin-protein chimeras useful for conjugation of molecules in the immune system |
| EP1067134B1 (en) | 1991-11-07 | 2004-07-28 | Nanotronics, Inc. | Hybridization of polynucleotides conjugated with chromophores and fluorophores to generate donor-to-donor energy transfer system |
| US5270184A (en) | 1991-11-19 | 1993-12-14 | Becton, Dickinson And Company | Nucleic acid target generation |
| JPH07505765A (ja) | 1992-02-04 | 1995-06-29 | イー・アイ・デユポン・ドウ・ヌムール・アンド・カンパニー | 核酸の複製によるアッセイのリポーターの増幅 |
| DE69332665T2 (de) | 1992-03-11 | 2003-11-27 | Dana-Farber Cancer Institute, Inc. | Methode um mrna zu klonieren |
| US5262311A (en) | 1992-03-11 | 1993-11-16 | Dana-Farber Cancer Institute, Inc. | Methods to clone polyA mRNA |
| AU681082B2 (en) | 1992-05-06 | 1997-08-21 | Gen-Probe Incorporated | Nucleic acid sequence amplification method, composition and kit |
| AU4387193A (en) | 1992-05-29 | 1993-12-30 | Abbott Laboratories | Ligase chain reaction starting with rna sequences |
| US5710028A (en) | 1992-07-02 | 1998-01-20 | Eyal; Nurit | Method of quick screening and identification of specific DNA sequences by single nucleotide primer extension and kits therefor |
| US5766846A (en) * | 1992-07-10 | 1998-06-16 | Athena Neurosciences | Methods of screening for compounds which inhibit soluble β-amyloid peptide production |
| WO1994003812A1 (en) * | 1992-07-31 | 1994-02-17 | Syntex (U.S.A.) Inc. | Photoactivatable chemiluminescent matrices |
| ES2104160T3 (es) | 1992-07-31 | 1997-10-01 | Behringwerke Ag | Metodo para introducir secuencias definidas en el extremo 3' de polinucleotidos. |
| ZA936016B (en) | 1992-08-24 | 1994-03-10 | Akzo Nv | Method for nucleic acid amplification |
| RU2048522C1 (ru) * | 1992-10-14 | 1995-11-20 | Институт белка РАН | Способ размножения нуклеиновых кислот, способ их экспрессии и среда для их осуществления |
| US5445935A (en) | 1992-11-23 | 1995-08-29 | Royer; Catherine A. | Quantitative detection of macromolecules with fluorescent oligonucleotides |
| US5571669A (en) | 1993-01-14 | 1996-11-05 | The University Of Pennsylvania | Transcription and nucleic acid sequence determination with short primer DNA/RNA molecules and RNA polymerase |
| US5985548A (en) | 1993-02-04 | 1999-11-16 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Amplification of assay reporters by nucleic acid replication |
| US5591575A (en) | 1993-04-07 | 1997-01-07 | Amersham International Plc | Subtraction hybridization employing aziridinylbenoquinone cross-linking agents |
| US5714320A (en) * | 1993-04-15 | 1998-02-03 | University Of Rochester | Rolling circle synthesis of oligonucleotides and amplification of select randomized circular oligonucleotides |
| US6096715A (en) | 1993-05-07 | 2000-08-01 | City Of Hope | Chimeric DNA-RNA catalytic sequences |
| US5837832A (en) | 1993-06-25 | 1998-11-17 | Affymetrix, Inc. | Arrays of nucleic acid probes on biological chips |
| US6027923A (en) | 1993-07-23 | 2000-02-22 | Bio-Rad Laboratories, Inc. | Linked linear amplification of nucleic acids |
| US5731171A (en) | 1993-07-23 | 1998-03-24 | Arch Development Corp. | Sequence independent amplification of DNA |
| FR2708288B1 (fr) | 1993-07-26 | 1995-09-01 | Bio Merieux | Procédé d'amplification d'acides nucléiques par transcription utilisant le déplacement, réactifs et nécessaire pour la mise en Óoeuvre de ce procédé. |
| AU7487294A (en) | 1993-08-18 | 1995-03-14 | Id Biomedical Corporation | Compositions and methods for detecting target nucleic acid sequences utilizing flanking sequence enzyme molecules |
| US5925517A (en) | 1993-11-12 | 1999-07-20 | The Public Health Research Institute Of The City Of New York, Inc. | Detectably labeled dual conformation oligonucleotide probes, assays and kits |
| AU8102694A (en) | 1993-11-17 | 1995-06-06 | Id Biomedical Corporation | Cycling probe cleavage detection of nucleic acid sequences |
| WO1995014108A1 (en) | 1993-11-17 | 1995-05-26 | Amersham International Plc | Primer extension mass spectroscopy nucleic acid sequencing method |
| CA2140081C (en) | 1994-01-13 | 2008-04-01 | Dean L. Engelhardt | Process, construct and conjugate for producing multiple nucleic acid copies |
| US5654419A (en) | 1994-02-01 | 1997-08-05 | The Regents Of The University Of California | Fluorescent labels and their use in separations |
| JP3175110B2 (ja) | 1994-02-07 | 2001-06-11 | オーキッド・バイオサイエンシーズ・インコーポレイテッド | リガーゼ／ポリメラーゼ媒体された単一ヌクレオチド多型のジェネティックビットアナリシスおよび遺伝子解析におけるその使用 |
| US5578832A (en) | 1994-09-02 | 1996-11-26 | Affymetrix, Inc. | Method and apparatus for imaging a sample on a device |
| US5605793A (en) | 1994-02-17 | 1997-02-25 | Affymax Technologies N.V. | Methods for in vitro recombination |
| US6117679A (en) * | 1994-02-17 | 2000-09-12 | Maxygen, Inc. | Methods for generating polynucleotides having desired characteristics by iterative selection and recombination |
| US6335160B1 (en) * | 1995-02-17 | 2002-01-01 | Maxygen, Inc. | Methods and compositions for polypeptide engineering |
| US5648211A (en) | 1994-04-18 | 1997-07-15 | Becton, Dickinson And Company | Strand displacement amplification using thermophilic enzymes |
| US5705332A (en) * | 1994-04-25 | 1998-01-06 | University Of Hawaii | Detection and identification of Salmonella and Shigella |
| US5641658A (en) * | 1994-08-03 | 1997-06-24 | Mosaic Technologies, Inc. | Method for performing amplification of nucleic acid with two primers bound to a single solid support |
| US6060288A (en) * | 1994-08-03 | 2000-05-09 | Mosaic Technologies | Method for performing amplification of nucleic acid on supports |
| US5491063A (en) * | 1994-09-01 | 1996-02-13 | Hoffmann-La Roche Inc. | Methods for in-solution quenching of fluorescently labeled oligonucleotide probes |
| FR2724934B1 (fr) | 1994-09-26 | 1997-01-24 | Bio Merieux | Oligonucleotide chimere et son utilisation dans l'obtention de transcrits d'un acide nucleique |
| US6280935B1 (en) | 1994-10-13 | 2001-08-28 | Lynx Therapeutics, Inc. | Method of detecting the presence or absence of a plurality of target sequences using oligonucleotide tags |
| US5556752A (en) | 1994-10-24 | 1996-09-17 | Affymetrix, Inc. | Surface-bound, unimolecular, double-stranded DNA |
| US6309843B1 (en) | 1994-10-25 | 2001-10-30 | The Curators Of The University Of Missouri | Glycoprotein for use in determining endometrial receptivity |
| US5665545A (en) | 1994-11-28 | 1997-09-09 | Akzo Nobel N.V. | Terminal repeat amplification method |
| US5556771A (en) | 1995-02-10 | 1996-09-17 | Gen-Probe Incorporated | Stabilized compositions of reverse transcriptase and RNA polymerase for nucleic acid amplification |
| US5700642A (en) | 1995-05-22 | 1997-12-23 | Sri International | Oligonucleotide sizing using immobilized cleavable primers |
| US5830655A (en) | 1995-05-22 | 1998-11-03 | Sri International | Oligonucleotide sizing using cleavable primers |
| US5932450A (en) | 1995-06-07 | 1999-08-03 | Gen-Probe Incorporated | Enzymatic synthesis of oligonucleotides using digestible templates |
| US5882867A (en) | 1995-06-07 | 1999-03-16 | Dade Behring Marburg Gmbh | Detection of nucleic acids by formation of template-dependent product |
| US5763178A (en) | 1995-06-07 | 1998-06-09 | Trevigen, Inc. | Oscillating signal amplifier for nucleic acid detection |
| US5916777A (en) | 1995-06-07 | 1999-06-29 | Gen-Probe Incorporated | Enzymatic synthesis of oligonucleotides using 3'-ribonucleotide primers |
| JPH0920263A (ja) | 1995-07-06 | 1997-01-21 | Jidosha Kiki Co Ltd | 電動ポンプ式動力舵取装置 |
| US6291166B1 (en) | 1997-04-16 | 2001-09-18 | Xtrana, Inc. | Nucleic acid archiving |
| US5989813A (en) | 1995-07-13 | 1999-11-23 | Molecular Innovations, Inc. | Detection of amplified nucleic acid sequences using bifunctional haptenization and dyed microparticles |
| WO1997004123A1 (en) | 1995-07-19 | 1997-02-06 | Gel Tech Group Inc. | Collagen compound production in plants |
| FR2737223B1 (fr) | 1995-07-24 | 1997-09-12 | Bio Merieux | Procede d'amplification de sequences d'acide nucleique par deplacement, a l'aide d'amorces chimeres |
| US5652356A (en) | 1995-08-17 | 1997-07-29 | Hybridon, Inc. | Inverted chimeric and hybrid oligonucleotides |
| US6068829A (en) | 1995-09-11 | 2000-05-30 | The Burnham Institute | Method of identifying molecules that home to a selected organ in vivo |
| US5916779A (en) | 1995-09-21 | 1999-06-29 | Becton, Dickinson And Company | Strand displacement amplification of RNA targets |
| US5747255A (en) | 1995-09-29 | 1998-05-05 | Lynx Therapeutics, Inc. | Polynucleotide detection by isothermal amplification using cleavable oligonucleotides |
| US5871697A (en) | 1995-10-24 | 1999-02-16 | Curagen Corporation | Method and apparatus for identifying, classifying, or quantifying DNA sequences in a sample without sequencing |
| AU714486B2 (en) | 1995-11-21 | 2000-01-06 | Yale University | Unimolecular segment amplification and detection |
| US5854033A (en) | 1995-11-21 | 1998-12-29 | Yale University | Rolling circle replication reporter systems |
| DE69613856T2 (de) | 1995-12-15 | 2002-04-04 | Amersham Pharmacia Biotech Inc., Piscataway | Thermostabile dna polymerase aus thermoanaerobacter thermohydrosulfuricus und davon abgeleitete mutierte enzyme mit entfernter exonukleaseaktivität |
| US5962271A (en) | 1996-01-03 | 1999-10-05 | Cloutech Laboratories, Inc. | Methods and compositions for generating full-length cDNA having arbitrary nucleotide sequence at the 3'-end |
| US5932449A (en) | 1996-02-01 | 1999-08-03 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army | Detection of botulinum toxin |
| GB9604267D0 (en) | 1996-02-29 | 1996-05-01 | Royal Infirmary Of Edinburgh N | Mutation assay |
| US5712127A (en) * | 1996-04-29 | 1998-01-27 | Genescape Inc. | Subtractive amplification |
| EP1736554B1 (en) | 1996-05-29 | 2013-10-09 | Cornell Research Foundation, Inc. | Detection of nucleic acid sequence differences using coupled ligase detection and polymerase chain reactions |
| EP1006827A4 (en) | 1996-07-08 | 2001-07-04 | Mardix Bar Cochva | CUSTOM INSOLES |
| US6218105B1 (en) * | 1996-07-19 | 2001-04-17 | Kathleen S. Hall | High throughput papilloma virus in vitro infectivity assay |
| US5858665A (en) | 1996-07-25 | 1999-01-12 | Navix, Inc. | Homogeneous diagnostic assay method utilizing simultaneous target and signal amplification |
| US5853990A (en) | 1996-07-26 | 1998-12-29 | Edward E. Winger | Real time homogeneous nucleotide assay |
| AU4065397A (en) | 1996-08-14 | 1998-03-06 | Life Technologies, Inc. | Stable compositions for nucleic acid amplification and sequencing |
| US6255060B1 (en) | 1996-11-21 | 2001-07-03 | Trustees Of The University Of Pennsylvania | Method of detecting protein by immuno RNA |
| US5958703A (en) | 1996-12-03 | 1999-09-28 | Glaxo Group Limited | Use of modified tethers in screening compound libraries |
| DE19653439A1 (de) | 1996-12-20 | 1998-07-02 | Svante Dr Paeaebo | Verfahren zur direkten, exponentiellen Amplifikation und Sequenzierung von DNA Molekülen und dessen Anwendung |
| US6482590B1 (en) | 1996-12-20 | 2002-11-19 | Aventis Behring Gmbh | Method for polynucleotide amplification |
| EP3034626A1 (en) | 1997-04-01 | 2016-06-22 | Illumina Cambridge Limited | Method of nucleic acid sequencing |
| US6566101B1 (en) | 1997-06-16 | 2003-05-20 | Anthony P. Shuber | Primer extension methods for detecting nucleic acids |
| CA2294053A1 (en) | 1997-06-25 | 1998-12-30 | Orchid Biocomputer, Inc. | Methods for the detection of multiple single nucleotide polymorphisms in a single reaction |
| US6136533A (en) | 1997-07-03 | 2000-10-24 | Id Biomedical | Additives for use in cycling probe reactions |
| US6140086A (en) | 1997-08-15 | 2000-10-31 | Fox; Donna K. | Methods and compositions for cloning nucleic acid molecules |
| US6124120A (en) | 1997-10-08 | 2000-09-26 | Yale University | Multiple displacement amplification |
| US6485944B1 (en) | 1997-10-10 | 2002-11-26 | President And Fellows Of Harvard College | Replica amplification of nucleic acid arrays |
| WO1999023256A1 (en) * | 1997-10-30 | 1999-05-14 | Cold Spring Harbor Laboratory | Probe arrays and methods of using probe arrays for distinguishing dna |
| US5932451A (en) | 1997-11-19 | 1999-08-03 | Incyte Pharmaceuticals, Inc. | Method for unbiased mRNA amplification |
| US6345481B1 (en) | 1997-11-25 | 2002-02-12 | Premark Rwp Holdings, Inc. | Article with interlocking edges and covering product prepared therefrom |
| WO1999029901A1 (en) | 1997-12-11 | 1999-06-17 | The General Hospital Corporation | Broad range pcr amplification techniques |
| JP4317953B2 (ja) | 1998-01-22 | 2009-08-19 | 独立行政法人理化学研究所 | Ｄｎａの塩基配列決定方法 |
| US20010000077A1 (en) | 1998-02-03 | 2001-03-29 | Engelhardt Dean L. | Novel process, construct and conjugate for producing multiple nucleic acid copies |
| WO1999040219A1 (en) | 1998-02-05 | 1999-08-12 | Bavarian Nordic Research Institute A/S | Quantification by inhibition of amplification |
| US6365346B1 (en) | 1998-02-18 | 2002-04-02 | Dade Behring Inc. | Quantitative determination of nucleic acid amplification products |
| US6087103A (en) | 1998-03-04 | 2000-07-11 | Lifespan Biosciences, Inc. | Tagged ligand arrays for identifying target-ligand interactions |
| DE19813317A1 (de) | 1998-03-26 | 1999-09-30 | Roche Diagnostics Gmbh | Verbessertes Verfahren zur Primer Extension Präamplifikations-PCR |
| US20020064837A1 (en) * | 1998-05-08 | 2002-05-30 | Thuan Quoc Trinh | Method for synthesizing a nucleic acid molecule using a ribonuclease |
| US6743605B1 (en) | 1998-06-24 | 2004-06-01 | Enzo Life Sciences, Inc. | Linear amplification of specific nucleic acid sequences |
| US6316229B1 (en) | 1998-07-20 | 2001-11-13 | Yale University | Single molecule analysis target-mediated ligation of bipartite primers |
| GB9817055D0 (en) | 1998-08-05 | 1998-09-30 | Medical Res Council | Reverse transcription and amplification processes and primers therefore |
| CA2245039A1 (en) | 1998-08-13 | 2000-02-13 | Vito Scalia | Primer-specific and mispair extension assay for identifying gene variation |
| ES2294862T5 (es) | 1998-11-09 | 2011-04-12 | Eiken Kagaku Kabushiki Kaisha | Procedimiento de síntesis de ácido nucleico. |
| US20030049657A1 (en) * | 1998-11-13 | 2003-03-13 | Cherry Joshua L. | Use of primers containing non-replicatable residues for improved cycle-sequencing of nucleic acids |
| US6927024B2 (en) | 1998-11-30 | 2005-08-09 | Genentech, Inc. | PCR assay |
| US6358712B1 (en) | 1999-01-05 | 2002-03-19 | Trustee Of Boston University | Ordered gene assembly |
| JP2002537762A (ja) | 1999-01-05 | 2002-11-12 | トラスティーズ オブ ボストン ユニバーシティ | 改良型核酸クローニング |
| US6376246B1 (en) | 1999-02-05 | 2002-04-23 | Maxygen, Inc. | Oligonucleotide mediated nucleic acid recombination |
| US7074556B2 (en) | 1999-03-02 | 2006-07-11 | Invitrogen Corporation | cDNA synthesis improvements |
| WO2000056925A2 (en) | 1999-03-19 | 2000-09-28 | Aclara Biosciences, Inc. | Methods for single nucleotide polymorphism detection |
| US6951722B2 (en) * | 1999-03-19 | 2005-10-04 | Takara Bio Inc. | Method for amplifying nucleic acid sequence |
| KR100682576B1 (ko) | 1999-03-19 | 2007-02-15 | 다카라 바이오 가부시키가이샤 | 핵산 서열 증폭 방법 |
| US6355431B1 (en) | 1999-04-20 | 2002-03-12 | Illumina, Inc. | Detection of nucleic acid amplification reactions using bead arrays |
| WO2000070095A2 (en) | 1999-05-17 | 2000-11-23 | Dade Behring Inc. | Homogeneous isothermal amplification and detection of nucleic acids using a template switch oligonucleotide |
| US6132997A (en) | 1999-05-28 | 2000-10-17 | Agilent Technologies | Method for linear mRNA amplification |
| US6692918B2 (en) * | 1999-09-13 | 2004-02-17 | Nugen Technologies, Inc. | Methods and compositions for linear isothermal amplification of polynucleotide sequences |
| DK1218542T3 (da) | 1999-09-13 | 2004-08-02 | Nugen Technologies Inc | Fremgangsmåder og sammensætninger til lineær isotermisk amplifikation af polynukleotidsekvenser |
| US6107061A (en) | 1999-09-18 | 2000-08-22 | The Perkin-Elmer Corporation | Modified primer extension reactions for polynucleotide sequence detection |
| US6617442B1 (en) | 1999-09-30 | 2003-09-09 | Isis Pharmaceuticals, Inc. | Human Rnase H1 and oligonucleotide compositions thereof |
| US6300073B1 (en) | 1999-10-01 | 2001-10-09 | Clontech Laboratories, Inc. | One step RT-PCR methods, enzyme mixes and kits for use in practicing the same |
| US6271002B1 (en) | 1999-10-04 | 2001-08-07 | Rosetta Inpharmatics, Inc. | RNA amplification method |
| US6794138B1 (en) | 1999-12-16 | 2004-09-21 | Affymetrix, Inc. | Methods of small sample amplification |
| US7205129B1 (en) | 2000-02-28 | 2007-04-17 | Qiagen Gmbh | Method for reducing artifacts in nucleic acid amplification |
| US6376191B1 (en) | 2000-03-22 | 2002-04-23 | Mergen, Ltd. | Microarray-based analysis of polynucleotide sequence variations |
| WO2001073134A2 (en) | 2000-03-28 | 2001-10-04 | The Government Of The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health & Human Services, The National Institutes Of Health | Gene profiling arrays |
| DE60141087D1 (de) | 2000-06-26 | 2010-03-04 | Nugen Technologies Inc | Methoden und zusammensetzungen zur auf transkription basierenden vervielfältigung von nukleinsäuren |
| US7846733B2 (en) | 2000-06-26 | 2010-12-07 | Nugen Technologies, Inc. | Methods and compositions for transcription-based nucleic acid amplification |
| US6596490B2 (en) | 2000-07-14 | 2003-07-22 | Applied Gene Technologies, Inc. | Nucleic acid hairpin probes and uses thereof |
| US6379932B1 (en) | 2000-07-17 | 2002-04-30 | Incyte Genomics, Inc. | Single primer PCR amplification of RNA |
| AU7878301A (en) | 2000-08-23 | 2002-03-04 | Takara Shuzo Co | Method of amplifying nucleic acid |
| CA2356123A1 (en) | 2000-08-25 | 2002-02-25 | Riken | Method of preparing normalized and/or subtracted cdna |
| EP1325118B1 (en) | 2000-10-05 | 2016-05-25 | Riken | Oligonucleotide linkers comprising a variable cohesive portion and method for the preparation of polynucleotide libraries by using said linkers. |
| AU2002213096B2 (en) | 2000-10-06 | 2007-03-29 | Nugen Technologies, Inc. | Methods and probes for detection and/or quantification of nucleic acid sequences |
| US6673549B1 (en) * | 2000-10-12 | 2004-01-06 | Incyte Corporation | Genes expressed in C3A liver cell cultures treated with steroids |
| US20020127575A1 (en) | 2000-10-30 | 2002-09-12 | Glenn Hoke | Partially double-stranded nucleic acids, methods of making, and use thereof |
| AR031640A1 (es) * | 2000-12-08 | 2003-09-24 | Applied Research Systems | Amplificacion isotermica de acidos nucleicos en un soporte solido |
| EP1427847B1 (en) | 2000-12-13 | 2010-07-28 | Nugen Technologies, Inc. | Methods and compositions for generation of multiple copies of nucleic acid sequences and methods of detection thereof |
| GB0101397D0 (en) | 2001-01-19 | 2001-03-07 | Amersham Pharm Biotech Uk Ltd | Suppression of non-specific nucleic acid amplication |
| KR20030082535A (ko) * | 2001-03-09 | 2003-10-22 | 뉴젠 테크놀로지스 인코포레이티드 | Ｒｎａ 서열의 증폭을 위한 방법 및 조성물 |
| WO2002072773A2 (en) | 2001-03-09 | 2002-09-19 | Nugen Technologies, Inc. | Methods and compositions for amplification of rna sequences |
| US6585605B2 (en) | 2001-04-04 | 2003-07-01 | Callaway Golf Company | Measurement of the coefficient of restitution of a golf club |
| US20040161741A1 (en) | 2001-06-30 | 2004-08-19 | Elazar Rabani | Novel compositions and processes for analyte detection, quantification and amplification |
| CN100487116C (zh) | 2001-07-09 | 2009-05-13 | 旭化成株式会社 | 应用非织造织物纯化和检测核酸的方法 |
| WO2003008343A1 (en) | 2001-07-19 | 2003-01-30 | Optima Environnement S.A. | Flocculating agents |
| EP1281757A1 (en) | 2001-07-31 | 2003-02-05 | Direvo Biotech AG | Method for the production of nucleic acids consisting of stochastically combined parts of source nucleic acids |
| GB0118758D0 (en) | 2001-08-01 | 2001-09-26 | Sybesma Wilbert F H | Chimeric primed based real time rt-pcr for qualification of rna or dna templates in a crude sample |
| EP1420069A4 (en) * | 2001-08-20 | 2005-11-02 | Takara Bio Inc | nucleic acid amplification |
| US6617137B2 (en) | 2001-10-15 | 2003-09-09 | Molecular Staging Inc. | Method of amplifying whole genomes without subjecting the genome to denaturing conditions |
| DE60232013D1 (de) | 2001-11-20 | 2009-05-28 | Exact Sciences Corp | Automatische probenvorbereitungsverfahren und -vorrichtungen |
| EP1488001B1 (en) | 2002-03-11 | 2008-08-20 | Nugen Technologies, Inc. | Methods for generating double stranded dna comprising a 3' single stranded portion and uses of these complexes for recombination |
| EP1485503A4 (en) | 2002-03-15 | 2005-12-28 | Arcturus Bioscience Inc | IMPROVED NUCLEIC ACID AMPLIFICATION |
| AU2003222178A1 (en) * | 2002-03-29 | 2003-10-13 | Nugen Technologies, Inc. | Single primer isothermal nucleic acid amplification-enhanced analyte detection and quantification |
| EP1573056A4 (en) | 2002-05-17 | 2007-11-28 | Nugen Technologies Inc | METHODS FOR FRAGMENTATION, LABELING AND IMMOBILIZATION OF NUCLEIC ACIDS |
| US7205128B2 (en) * | 2002-08-16 | 2007-04-17 | Agilent Technologies, Inc. | Method for synthesis of the second strand of cDNA |
| WO2005003375A2 (en) * | 2003-01-29 | 2005-01-13 | 454 Corporation | Methods of amplifying and sequencing nucleic acids |
| US20060183132A1 (en) | 2005-02-14 | 2006-08-17 | Perlegen Sciences, Inc. | Selection probe amplification |
| WO2004092330A2 (en) * | 2003-04-11 | 2004-10-28 | Applera Corporation | Method of generating long nucleic acid molecules of defined sequence |
| US7402386B2 (en) * | 2003-04-14 | 2008-07-22 | Nugen Technologies, Inc. | Global amplification using random priming by a composite primer |
| GB0318110D0 (en) | 2003-08-01 | 2003-09-03 | Isaeo Ltd | Methods and kits for detecting an enzyme capable of modifying a nucleic acid |
| CA2552007A1 (en) | 2003-12-29 | 2005-07-21 | Nugen Technologies, Inc. | Methods for analysis of nucleic acid methylation status and methods for fragmentation, labeling and immobilization of nucleic acids |
| US7622281B2 (en) * | 2004-05-20 | 2009-11-24 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Methods and compositions for clonal amplification of nucleic acid |
| US7824890B2 (en) | 2005-02-19 | 2010-11-02 | Avacta Group Plc | Isothermal amplification of nucleic acids |
| WO2006099579A2 (en) | 2005-03-16 | 2006-09-21 | Applera Corporation | Compositions and methods for clonal amplification and analysis of polynucleotides |
| US8445194B2 (en) | 2005-06-15 | 2013-05-21 | Callida Genomics, Inc. | Single molecule arrays for genetic and chemical analysis |
| JP2009506788A (ja) * | 2005-09-06 | 2009-02-19 | ジェン−プローブ・インコーポレーテッド | 核酸の等温増幅のための方法、組成物及びキット |
| EP1929046B1 (en) | 2005-09-07 | 2012-07-11 | Nugen Technologies, Inc. | Improved nucleic acid amplification procedure |
| WO2007041201A2 (en) | 2005-10-03 | 2007-04-12 | Applera Corporation | Compositions, methods, and kits for amplifying nucleic acids |
| WO2007136717A1 (en) | 2006-05-16 | 2007-11-29 | Nugen Technologies, Inc. | Nucleic acid separation and purification method based on reversible charge interactions |
| US7833716B2 (en) | 2006-06-06 | 2010-11-16 | Gen-Probe Incorporated | Tagged oligonucleotides and their use in nucleic acid amplification methods |
| CA2656315A1 (en) * | 2006-06-30 | 2008-01-10 | Nugen Technologies, Inc. | Methods for fragmentation and labeling of nucleic acids |
| US9388457B2 (en) | 2007-09-14 | 2016-07-12 | Affymetrix, Inc. | Locus specific amplification using array probes |
| US20090203531A1 (en) | 2008-02-12 | 2009-08-13 | Nurith Kurn | Method for Archiving and Clonal Expansion |
| GB2470672B (en) | 2008-03-21 | 2012-09-12 | Nugen Technologies Inc | Methods of RNA amplification in the presence of DNA |
| WO2011019964A1 (en) | 2009-08-12 | 2011-02-17 | Nugen Technologies, Inc. | Methods, compositions, and kits for generating nucleic acid products substantially free of template nucleic acid |
| EP2475777A4 (en) | 2009-09-11 | 2013-03-06 | Nugen Technologies Inc | COMPOSITIONS AND METHODS FOR COMPLETE TRANSCRIPTOMAL ANALYSIS |
| WO2011053987A1 (en) * | 2009-11-02 | 2011-05-05 | Nugen Technologies, Inc. | Compositions and methods for targeted nucleic acid sequence selection and amplification |
| WO2012103154A1 (en) | 2011-01-24 | 2012-08-02 | Nugen Technologies, Inc. | Stem-loop composite rna-dna adaptor-primers: compositions and methods for library generation, amplification and other downstream manipulations |
| SG10201510189WA (en) | 2011-10-19 | 2016-01-28 | Nugen Technologies Inc | Compositions And Methods For Directional Nucleic Acid Amplification And Sequencing |
| WO2013112923A1 (en) | 2012-01-26 | 2013-08-01 | Nugen Technologies, Inc. | Compositions and methods for targeted nucleic acid sequence enrichment and high efficiency library generation |
-
2004
- 2004-04-14 US US10/824,829 patent/US7402386B2/en not_active Expired - Lifetime
- 2004-04-14 EP EP04759595.4A patent/EP1613778B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2004-04-14 AU AU2004230494A patent/AU2004230494A1/en not_active Abandoned
- 2004-04-14 JP JP2006513320A patent/JP2006523465A/ja active Pending
- 2004-04-14 WO PCT/US2004/012779 patent/WO2004092418A2/en active Application Filing
- 2004-04-14 CA CA002521084A patent/CA2521084A1/en not_active Abandoned
-
2008
- 2008-04-08 US US12/099,670 patent/US20090068709A1/en not_active Abandoned
-
2009
- 2009-10-30 US US12/609,985 patent/US20100159559A1/en not_active Abandoned
-
2012
- 2012-01-13 US US13/349,927 patent/US8465950B2/en not_active Expired - Lifetime
-
2013
- 2013-06-14 US US13/918,636 patent/US9175325B2/en not_active Expired - Fee Related
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US9175325B2 (en) | Global amplification using a randomly primed composite primer | |
| JP2006523465A5 (ja) | ||
| JP4542312B2 (ja) | Ｒｎａ配列の増幅のための方法および組成物 | |
| US7939258B2 (en) | Nucleic acid amplification procedure using RNA and DNA composite primers | |
| EP1390537B1 (en) | Methods and compositions for amplification of rna sequences | |
| AU2002252279A1 (en) | Methods and compositions for amplification of RNA sequences | |
| AU2002303118A1 (en) | Methods and compositions for amplification of RNA sequences |