JP2006006313A - コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子及びその利用 - Google Patents
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Abstract
【課題】 小型サルの中でも新世界サルの一種である超小型サル、コモンマーモセットを用いた遺伝子発現必須の「２種類以上の被検試料における所望の遺伝子の発現量の差異を当該遺伝子の転写産物量の差異として測定する際に、前記転写産物量の補正を行うための前記被検試料における遺伝子の発現量の基準となる内部標準としてのポリヌクレオチド」としてコモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子及びその利用等を提供する。
【解決手段】 コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子、及び、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子又はその部分断片であって、特定の塩基配列群に属するいずれかの塩基配列を有することを特徴とするポリヌクレオチド等。
【選択図】 なし
【解決手段】 コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子、及び、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子又はその部分断片であって、特定の塩基配列群に属するいずれかの塩基配列を有することを特徴とするポリヌクレオチド等。
【選択図】 なし
Description
本発明は、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子及びその利用に関する。
種差の問題から、医薬品の有効成分となる化学物質等のヒトに対する薬剤の効力若しくは毒性・副作用といった影響をラット、マウス等のげっ歯類では十分評価することが困難であり、よりヒトに近い実験動物の利用が求められている。
現在、アカゲザル、カニクイザル等の大型サルが当該目的のために利用されているが、コスト、操作性等の面から小型サルが実験動物として注目を集めている（例えば、非特許文献１参照）。
一方で、ラット、マウス等のげっ歯類を用いた研究では、医薬品の有効成分となる化学物質等のヒトに対する薬剤の効力若しくは毒性・副作用といった影響をより精緻に検討する目的で遺伝子発現解析に関する研究が盛んになってきている（例えば、非特許文献２参照）。
上記の研究動向において、実験動物として注目を集めている小型サルにおいても、医薬品の有効成分となる化学物質等のヒトに対する薬剤の効力若しくは毒性・副作用といった影響をより精緻に検討する目的で遺伝子発現解析に関する研究が一層重要になると考えられる。
現在、アカゲザル、カニクイザル等の大型サルが当該目的のために利用されているが、コスト、操作性等の面から小型サルが実験動物として注目を集めている（例えば、非特許文献１参照）。
一方で、ラット、マウス等のげっ歯類を用いた研究では、医薬品の有効成分となる化学物質等のヒトに対する薬剤の効力若しくは毒性・副作用といった影響をより精緻に検討する目的で遺伝子発現解析に関する研究が盛んになってきている（例えば、非特許文献２参照）。
上記の研究動向において、実験動物として注目を集めている小型サルにおいても、医薬品の有効成分となる化学物質等のヒトに対する薬剤の効力若しくは毒性・副作用といった影響をより精緻に検討する目的で遺伝子発現解析に関する研究が一層重要になると考えられる。
Mansfield, K., Comp. Med., 53, 383 (2003)
Hamadeh, H. K. et al, Tox. Sci., 67, 219 (2002)
ところで、このような遺伝子発現解析において、異なる被検試料、特に異なる個体や異なる種類の組織由来の被検試料を用いる場合には、当該被検試料の中に含まれている各遺伝子の転写産物量は大きくばらついているために、「２種類以上の被検試料における所望の遺伝子の発現量の差異を当該遺伝子の転写産物量の差異として測定する際に、前記転写産物量の補正を行うための前記被検試料における遺伝子の発現量の基準となる内部標準としてのポリヌクレオチド」の使用が必須となる。しかしながら、小型サルにおいては、現時点ではこのようなポリヌクレオチドが十分に知られておらず、当該ポリヌクレオチドの早急な取得・開発等が望まれていた。
本発明者らは、かかる状況のもと鋭意検討した結果、実験動物として注目を集めている小型サルのなかでも新世界サルの一種であるコモンマーモセット（Callithrix Jacchus）という超小型サルに注目し、当該サルを用いた遺伝子発現解析に関する研究において必須となる、「２種類以上の被検試料における所望の遺伝子の発現量の差異を当該遺伝子の転写産物量の差異として測定する際に、前記転写産物量の補正を行うための前記被検試料における遺伝子の発現量の基準となる内部標準としてのポリヌクレオチド」としてコモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子を見出し、本発明に至った。
即ち、本発明は、
１．コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子（以下、本発明遺伝子と記すこともある。）；
２．コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子又はその部分断片であって、下記のいずれかの塩基配列を有することを特徴とするポリヌクレオチド（以下、本発明ポリヌクレオチドと記すこともある。）
（１）配列番号１で示される塩基配列
（２）配列番号２で示される塩基配列
（３）配列番号３で示されるアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列をコードする塩基配列
（４）配列番号１で示される塩基配列に対して、95％以上の塩基同一性を有する塩基配列
（５）配列番号２で示される塩基配列に対して、95％以上の塩基同一性を有する塩基配列
（６）配列番号３で示されるアミノ酸配列に対して、95％以上のアミノ酸同一性を有するアミノ酸配列をコードする塩基配列
（７）前項（１）乃至（６）記載のいずれかの塩基配列を有し、かつ、５’キャップからポリＡ配列までの領域を含む成熟ｍＲＮＡに対して相補的なＤＮＡの塩基配列
（８）ベータアクチンのアミノ酸配列をコードする塩基配列
（９）前項（１）乃至（８）記載のいずれかの塩基配列に対して相補的な塩基配列
（１０）前項（１）乃至（９）記載のいずれかの塩基配列における部分塩基配列；
３．下記のいずれかの塩基配列からなることを特徴とするポリヌクレオチド。
（１）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列
（２）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列で指定される領域の中から選ばれる、連続する任意の、塩基長２０〜６０を有する塩基配列
（３）前項（１）又は（２）記載のいずれかの塩基配列に対して相補的な塩基配列；
４．DNA又はRNA検出のための組成物であって、前項２又は３記載のポリヌクレオチドを含有することを特徴とする組成物（以下、本発明組成物と記すこともある。）；
５．前項２又は３記載のポリヌクレオチドが担体上に固定化されてなることを特徴とする前項４記載の組成物；
６．２種類以上の被検試料における所望の遺伝子の発現量の差異を、当該遺伝子の転写産物量の差異として測定する際に、前記転写産物量の補正を行うための前記被検試料における遺伝子の発現量の基準となる内部標準としての前項２又は３記載のポリヌクレオチドの使用（以下、本発明使用と記すこともある。）；
７．前記被検試料がコモンマーモセット由来の試料であることを特徴とする前項６記載のポリヌクレオチドの使用；
８．２種類以上の被検試料における所望の遺伝子の発現量の差異を、当該遺伝子の転写産物量の差異として測定する方法であって、
（１）前項２又は３記載のポリヌクレオチドを用いて、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子の転写産物量を測定する第一工程、
（２）前記被検試料における所望の遺伝子を用いて、当該遺伝子の転写産物量を測定する第ニ工程、
（３）２種類以上の被検試料における各被検試料において、任意の被検試料において第一工程により測定されたベータアクチン遺伝子の転写産物量に対する、他の被検試料において第一工程により測定されたベータアクチン遺伝子の転写産物量の相対比を算出する第三工程、
（４）第ニ工程により測定された所望の遺伝子の転写産物量に第三工程により算出された相対比を乗じることにより、２種類以上の被検試料における各被検試料での第ニ工程により測定された所望の遺伝子の転写産物量を補正する第四工程、
を有することを特徴とする測定方法（以下、本発明測定方法と記すこともある。）；
９．前記被検試料がコモンマーモセット由来の試料であることを特徴とする前項７記載の測定方法；
１０．第一工程及び／又は第二工程において遺伝子の転写産物量を測定する方法が、ＤＮＡアレイ法又は定量的リバーストランスクリプターゼ−ポリメラーゼチェイン反応法のいずれかの方法であることを特徴とする前項９又は１０記載の測定方法；
等を提供するものである。
１．コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子（以下、本発明遺伝子と記すこともある。）；
２．コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子又はその部分断片であって、下記のいずれかの塩基配列を有することを特徴とするポリヌクレオチド（以下、本発明ポリヌクレオチドと記すこともある。）
（１）配列番号１で示される塩基配列
（２）配列番号２で示される塩基配列
（３）配列番号３で示されるアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列をコードする塩基配列
（４）配列番号１で示される塩基配列に対して、95％以上の塩基同一性を有する塩基配列
（５）配列番号２で示される塩基配列に対して、95％以上の塩基同一性を有する塩基配列
（６）配列番号３で示されるアミノ酸配列に対して、95％以上のアミノ酸同一性を有するアミノ酸配列をコードする塩基配列
（７）前項（１）乃至（６）記載のいずれかの塩基配列を有し、かつ、５’キャップからポリＡ配列までの領域を含む成熟ｍＲＮＡに対して相補的なＤＮＡの塩基配列
（８）ベータアクチンのアミノ酸配列をコードする塩基配列
（９）前項（１）乃至（８）記載のいずれかの塩基配列に対して相補的な塩基配列
（１０）前項（１）乃至（９）記載のいずれかの塩基配列における部分塩基配列；
３．下記のいずれかの塩基配列からなることを特徴とするポリヌクレオチド。
（１）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列
（２）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列で指定される領域の中から選ばれる、連続する任意の、塩基長２０〜６０を有する塩基配列
（３）前項（１）又は（２）記載のいずれかの塩基配列に対して相補的な塩基配列；
４．DNA又はRNA検出のための組成物であって、前項２又は３記載のポリヌクレオチドを含有することを特徴とする組成物（以下、本発明組成物と記すこともある。）；
５．前項２又は３記載のポリヌクレオチドが担体上に固定化されてなることを特徴とする前項４記載の組成物；
６．２種類以上の被検試料における所望の遺伝子の発現量の差異を、当該遺伝子の転写産物量の差異として測定する際に、前記転写産物量の補正を行うための前記被検試料における遺伝子の発現量の基準となる内部標準としての前項２又は３記載のポリヌクレオチドの使用（以下、本発明使用と記すこともある。）；
７．前記被検試料がコモンマーモセット由来の試料であることを特徴とする前項６記載のポリヌクレオチドの使用；
８．２種類以上の被検試料における所望の遺伝子の発現量の差異を、当該遺伝子の転写産物量の差異として測定する方法であって、
（１）前項２又は３記載のポリヌクレオチドを用いて、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子の転写産物量を測定する第一工程、
（２）前記被検試料における所望の遺伝子を用いて、当該遺伝子の転写産物量を測定する第ニ工程、
（３）２種類以上の被検試料における各被検試料において、任意の被検試料において第一工程により測定されたベータアクチン遺伝子の転写産物量に対する、他の被検試料において第一工程により測定されたベータアクチン遺伝子の転写産物量の相対比を算出する第三工程、
（４）第ニ工程により測定された所望の遺伝子の転写産物量に第三工程により算出された相対比を乗じることにより、２種類以上の被検試料における各被検試料での第ニ工程により測定された所望の遺伝子の転写産物量を補正する第四工程、
を有することを特徴とする測定方法（以下、本発明測定方法と記すこともある。）；
９．前記被検試料がコモンマーモセット由来の試料であることを特徴とする前項７記載の測定方法；
１０．第一工程及び／又は第二工程において遺伝子の転写産物量を測定する方法が、ＤＮＡアレイ法又は定量的リバーストランスクリプターゼ−ポリメラーゼチェイン反応法のいずれかの方法であることを特徴とする前項９又は１０記載の測定方法；
等を提供するものである。
本発明により、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子及びその利用等が提供可能となる。
以下、詳細に本発明を説明する。
本発明において利用される小型サルは、新世界サルの一種であるコモンマーモセット（Callithrix Jacchus）である。当該サルは、ヒトに近縁な真猿類に属する超小型サルであり、大型サルに比べて繁殖効率が良くしかも小型で取り扱いが容易である。
本発明において利用される小型サルは、新世界サルの一種であるコモンマーモセット（Callithrix Jacchus）である。当該サルは、ヒトに近縁な真猿類に属する超小型サルであり、大型サルに比べて繁殖効率が良くしかも小型で取り扱いが容易である。
本発明遺伝子は、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子である。当該遺伝子は、ハウスキーピング遺伝子（housekeeping gene）としての性質を有しているために、当該遺伝子の発現は、各種の薬剤処理、疾患の有無、生理的な刺激等により影響を受けにくく、その転写産物が生体組織において普遍的かつ恒常的に発現している。そのため、当該遺伝子の発現量を被検試料における遺伝子の発現量の基準となる内部標準として用いることにより、所望の遺伝子の転写産物量の補正を行うことが可能となる。勿論、特定の生物種（例えば、コモンマーモセット等が属するマーモセット種）を対象として遺伝子発現解析を行う場合には、その生物種に特有のハウスキーピング遺伝子の転写産物量を用いて当該遺伝子の転写産物量を補正することが特に好ましい。
本発明ポリヌクレオチドは、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子又はその部分断片であって、下記のいずれかの塩基配列を有することを特徴とするポリヌクレオチドである。
（１）配列番号１で示される塩基配列
（２）配列番号２で示される塩基配列
（３）配列番号３で示されるアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列をコードする塩基配列
（４）配列番号１で示される塩基配列に対して、95％以上の塩基同一性を有する塩基配列
（５）配列番号２で示される塩基配列に対して、95％以上の塩基同一性を有する塩基配列
（６）配列番号２で示されるアミノ酸配列に対して、95％以上のアミノ酸同一性を有するアミノ酸配列をコードする塩基配列
（７）前項（１）乃至（６）記載のいずれかの塩基配列を有し、かつ、５’キャップからポリＡ配列までの領域を含む成熟ｍＲＮＡに対して相補的なＤＮＡの塩基配列
（８）ベータアクチンのアミノ酸配列をコードする塩基配列
（９）前項（１）乃至（８）記載のいずれかの塩基配列に対して相補的な塩基配列
（１０）前項（１）乃至（９）記載のいずれかの塩基配列における部分塩基配列
（１）配列番号１で示される塩基配列
（２）配列番号２で示される塩基配列
（３）配列番号３で示されるアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列をコードする塩基配列
（４）配列番号１で示される塩基配列に対して、95％以上の塩基同一性を有する塩基配列
（５）配列番号２で示される塩基配列に対して、95％以上の塩基同一性を有する塩基配列
（６）配列番号２で示されるアミノ酸配列に対して、95％以上のアミノ酸同一性を有するアミノ酸配列をコードする塩基配列
（７）前項（１）乃至（６）記載のいずれかの塩基配列を有し、かつ、５’キャップからポリＡ配列までの領域を含む成熟ｍＲＮＡに対して相補的なＤＮＡの塩基配列
（８）ベータアクチンのアミノ酸配列をコードする塩基配列
（９）前項（１）乃至（８）記載のいずれかの塩基配列に対して相補的な塩基配列
（１０）前項（１）乃至（９）記載のいずれかの塩基配列における部分塩基配列
ここで、項目番号（７）で示される「前項（１）乃至（６）記載のいずれかの塩基配列を有し、かつ、５’キャップからポリＡ配列までの領域を含む成熟ｍＲＮＡに対して相補的なＤＮＡの塩基配列」とは、一般的には、完全長ｃＤＮＡと呼ばれるポリヌクレオチドの塩基配列であって、５’キャップから（、５’非翻訳領域、タンパク質コード領域、３’非翻訳領域を含み、）ポリＡ配列までの領域からなる成熟ｍＲＮＡに対して相補的なＤＮＡの塩基配列であり、当該ＤＮＡの塩基配列はハウスキーピング遺伝子としての性質（以下、本性質と記すこともある。）が保持されるものであればよい。具体的には例えば、配列番号２で示される塩基配列を含む完全長ｃＤＮＡの塩基配列を好ましいものとして挙げることができる。
また、項目番号（８）で示される「ベータアクチンのアミノ酸配列をコードする塩基配列」としては、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子のうちで、例えば、配列番号３に記載されたアミノ酸配列（375個のアミノ酸）からなる構造タンパク質のアミノ酸配列をコードする塩基配列であって、1128塩基からなる全長塩基配列等を代表的なものとして挙げることができる。アミノ酸はコドンと呼ばれる３個の塩基配列情報に基づいてコードされるが、特定のアミノ酸をコードするコドンとして複数のコドンが存在する場合が知られている。従って、本発明でいう「ベータアクチンのアミノ酸配列をコードする塩基配列」とは、アミノ酸配列及びその塩基長に相違を生じない範囲において、可能性のある全てのコドンの組み合わせを含む塩基配列の総称を意味する。具体的には、（a）配列番号１で示される塩基配列、（b）配列番号３で示されるアミノ酸配列に変化を生じない範囲において、配列番号１で示される塩基配列の中の１個以上２０個以下、好ましくは１個以上１０個以下、さらに好ましくは１個以上５個以下の塩基が置換された塩基配列等を挙げることがである。このような塩基の置換は、例えば、当該塩基配列が由来する生物の種差、個体差等により天然に生じる塩基置換であってもよいし、人為的な塩基置換（例えば、後述するような部位特異的変異導入法や突然変異処理等によって、天然のベータアクチン遺伝子の塩基配列からなるＤＮＡに塩基置換が導入された塩基配列）であってもよい。
また、項目番号（９）で示される「部分塩基配列」とは、本発明遺伝子又はこれを取得若しくは検出するために用いられるプライマー若しくはプローブを構成する塩基配列であり、項目番号（１）乃至（８）記載のいずれかの塩基配列よりも短い長さの塩基配列である。具体的には例えば、配列番号４で示される塩基配列、配列番号５で示される塩基配列等を挙げることができる。
また項目番号（３）で示される「実質的に同一のアミノ酸配列」の定義に関して、一般に生理活性を有するタンパク質のアミノ酸配列が多少変更された場合には、例えば、当該アミノ酸配列中の１又は複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されるような変更があった場合でも、当該タンパク質の生理活性が維持される場合があることはよく知られた事実であり、従って、本明細書でいう「実質的に同一のアミノ酸配列」とは、特定のアミノ酸配列（即ち、配列番号３で示されるアミノ酸配列）と実質的に同等のハウスキーピング遺伝子としての性質（即ち、本性質）が保持される限り、当該アミノ酸配列中の1又は複数のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加された変異体タンパク質も本発明の範囲に含まれることを意味する。前記で改変されるアミノ酸の数については、少なくとも１残基、具体的には1若しくは数個（ここで「数個」とは、２〜約１０個程度である。）、又はそれ以上である。かかる改変の数は、当該タンパク質の本性質が維持される範囲であればよい。より具体的には、配列番号１で示される塩基配列によりコードされるアミノ酸配列の中の１個以上２０個以下、好ましくは１個以上１０個以下、さらに好ましくは１個以上５個以下のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加された変異体タンパク質である。このような変異は、例えば、タンパク質が細胞内で受けるプロセシング、該タンパク質が由来する生物の種差、個体差、器官、組織間の差異等により天然に生じる変異であってもよいし、人為的なアミノ酸の変異（例えば、部位特異的変異導入法や突然変異処理等によって、天然のタンパク質のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるＤＮＡに変異を導入し発現させることにより作出されたタンパク質が有するアミノ酸配列の中に存在するアミノ酸の変異）であってもよい。
このようなアミノ酸の欠失、置換若しくは付加による変異体タンパク質は、保存的に置換されたアミノ酸配列を含んでいてもよい。これは特定のアミノ酸残基が物理化学的類似性（例えば、疎水性、電荷、ｐＫ、立体構造上における特徴等の類似した性質）を有する残基によって置換されていてもよいことを意味している。このような保存的置換の非限定的な例には、(1)グリシン、アラニン；(2)バリン、イソロイシン、ロイシン；(3)アスパラギン酸、グルタミン酸、アスパラギン、グルタミン、(4)セリン、スレオニン；(5)リジン、アルギニン；(6)フェニルアラニン、チロシンのグループ内での置換のような、脂肪族鎖含有アミノ酸残基の間の置換や極性基の間の置換等が挙げられる。
アミノ酸の欠失、置換若しくは付加による変異体タンパク質は、例えば、そのアミノ酸配列をコードする塩基配列を有する遺伝子に公知技術である部位特異的変異導入（例えば、Nelson and McClelland、Methods Enzymol、216; 279、1992等、アンバー変異を利用する方法（ギャップド・デュプレックス法、Nucleic Acids Res.、12、9441-9456、1984）、変異導入用プライマーを用いたPCRによる方法）を行うことにより得ることができる。
部位特異的変異導入は、導入したい変異を含む合成プライマーを用いて行うことができる。即ち、プライマーとして前記合成オリゴヌクレオチド及びその塩基配列に相補的な塩基配列を有するプライマーを用いて、コモンマーモセット由来の正常型ベータアクチン遺伝子を含むプラスミドを鋳型として、増幅反応を行う。次に、メチル化感受性制限酵素であるDpn Iで処理することにより、新たに形成された変異を有するDNAのみが残る。この反応液を用いて大腸菌XLI-Blue株を形質転換し、アンピシリン含有LB寒天培地に捲く。37 ℃で一晩培養し、増殖したコロニーからプラスミドを単離する。これにより、変異されたDNAを含むプラスミドを得ることができる。上記方法に基づくキットとしては、例えば、QuickChange Site-Directed Mutagenesis Kit（Stratagene社製）等が販売されており、これらを利用してもよい。目的の変異が導入されたことは、その塩基配列を決定することにより確認できる。
さらにまた、アミノ酸配列の欠失、置換若しくは付加を行う方法としては、前記の部位特異的変異導入の他にも、遺伝子を変異原で処理する方法又は遺伝子を制限酵素で開裂し、選択した遺伝子断片を除去、付加若しくは置換し、次いで連結する方法等も挙げることができる。
ここで「正常型ベータアクチン遺伝子」とは、同一種の生物由来の当該タンパク質のアミノ酸配列において、天然に最も高頻度に出現するアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるベータアクチン遺伝子を意味し、具体的には例えば、配列番号１で示される塩基配列を挙げることができる。
本発明において「アミノ酸同一性」、「塩基同一性」とは、２つのタンパク質又は２つのＤＮＡ若しくはＲＮＡ間の配列の同一性及び相同性をいう。前記「同一性」は、比較対象の配列の全領域にわたって、最適な状態にアラインメントされた２つの配列を比較することにより決定される。ここで、比較対象のタンパク質又はＤＮＡ若しくはＲＮＡは、２つの配列の最適なアラインメントにおいて、付加又は欠失（例えばギャップ等）を有していてもよい。このような同一性に関しては、例えば、Vector NTIを用いて、ClustalWアルゴリズム(Nucleic Acid Res.、22(22):4673-4680(1994)を利用してアラインメントを作成することにより算出することができる。尚、当該同一性は、配列解析ソフト、具体的にはVector NTI、GENETYX-MACや公共のデータベースで提供される解析ツールを用いて測定される。前記公共データベースは、例えば、ホームページアドレスhttp://www.ddbj.nig.ac.jpにおいて、一般的に利用可能である。
本発明における「アミノ酸同一性」はアミノ酸配列基準であって、例えば、約95％以上であることが好ましい。これに対して「塩基同一性」は塩基配列基準であって、例えば、約95％以上であることが好ましい。
本発明遺伝子又は本発明ポリヌクレオチドは、ハイブリダイゼーション法やPCR法等を用いて取得すればよいが、これらを取得できる方法であれば如何なる方法を用いて取得してもよい。
例えば、コモンマーモセット等のマーモセット組織又はそれらの動物由来培養細胞から、Sambrook, J. et al., Molecular Cloning: A laboratory Manual 3rd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001) 等に記載される遺伝子工学的方法に準じて取得することができる。
例えば、コモンマーモセット等のマーモセット組織又はそれらの動物由来培養細胞から、Sambrook, J. et al., Molecular Cloning: A laboratory Manual 3rd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001) 等に記載される遺伝子工学的方法に準じて取得することができる。
まず、コモンマーモセット等のマーモセット組織又はそれらの動物由来培養細胞由来の全ＲＮＡを調製する。
具体的には例えば、コモンマーモセットの肝臓等の組織を塩酸グアニジンやグアニジンチオシアネート等のタンパク質変性剤を含む溶液中で粉砕し、さらに当該粉砕物にフェノール、クロロホルム等を加えることによりタンパク質を変性させる。変性タンパク質を遠心分離により除去した後、回収された上清画分から塩酸グアニジン／フェノール法、SDS−フェノール法、グアニジンチオシアネート／CsCl法等の方法により全ＲＮＡを抽出する。尚、これらの方法に基づいた市販のキットとしては、例えば、Trizol試薬（インビトロジェン社）、Isogen（ニッポンジーン社製）等が挙げられる。
次いで、得られた全ＲＮＡを鋳型としてオリゴdTプライマーをＲＮＡのポリA配列にアニールさせ、逆転写酵素により一本鎖ｃＤＮＡを合成する。更に一本鎖ｃＤＮＡを鋳型とし、かつ大腸菌ＲＮＡseHを用いてＲＮＡ鎖にニックとギャップを入れることにより得られるＲＮＡ断片をプライマーとして大腸菌のＤＮＡポリメラーゼIを用いて二本鎖のｃＤＮＡを合成することもできる。得られたｃＤＮＡは、フェノールクロロホルム抽出、エタノール沈殿等の通常の方法により精製、回収する。尚、これらの方法に基づいた市販のキットとしては、例えば、ｃＤＮＡ合成システムプラス（アマシャムバイオサイエンス社製）やSuperScript Choice System（インビトロジェン社製）等が挙げられる。
次に、得られた二本鎖ｃＤＮＡを、例えば、プラスミドpUC118やファージλgt10等のベクターとリガーゼとを用いて連結することによりｃＤＮＡライブラリーを作製することができる。
また、コモンマーモセットの組織片又はそれらの動物由来培養細胞から、例えば、Sambrook, J. et al., Molecular Cloning: A laboratory Manual 3rd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001) 等や、村松正寶、”ラボマニュアル遺伝子工学”（丸善1998）等に記載される通常の方法に準じてゲノムＤＮＡを調製する。
例えば、試料が肝臓の場合には、抽出緩衝液［10mM Tris-HCl (pH8.0), 0.1 mM EDTA (pH8.0), 20μ g/ml, 0.5%SDS］を組織重量に対し10倍量（v/w）加え粉砕し、さらにProteinaseKを最終濃度100μｌ/ml になるように加え混合する。この混合物を50℃で３時間保温した後、フェノール／クロロホルム等を加えることによりタンパク質を変性させる。変性タンパク質を遠心分離等により除去した後、回収された上清画分にエタノールを添加しゲノムＤＮＡを沈殿させ回収する。また、試料が末梢血の場合は、DNA-Extraction kit(ストラータジーン社製)等を用いて該試料を処理することによりゲノムＤＮＡを得ることができる。得られたゲノムＤＮＡをλgt10等のベクターとリガーゼを用いて連結することによりゲノムＤＮＡライブラリーを得ることができる。
具体的には例えば、コモンマーモセットの肝臓等の組織を塩酸グアニジンやグアニジンチオシアネート等のタンパク質変性剤を含む溶液中で粉砕し、さらに当該粉砕物にフェノール、クロロホルム等を加えることによりタンパク質を変性させる。変性タンパク質を遠心分離により除去した後、回収された上清画分から塩酸グアニジン／フェノール法、SDS−フェノール法、グアニジンチオシアネート／CsCl法等の方法により全ＲＮＡを抽出する。尚、これらの方法に基づいた市販のキットとしては、例えば、Trizol試薬（インビトロジェン社）、Isogen（ニッポンジーン社製）等が挙げられる。
次いで、得られた全ＲＮＡを鋳型としてオリゴdTプライマーをＲＮＡのポリA配列にアニールさせ、逆転写酵素により一本鎖ｃＤＮＡを合成する。更に一本鎖ｃＤＮＡを鋳型とし、かつ大腸菌ＲＮＡseHを用いてＲＮＡ鎖にニックとギャップを入れることにより得られるＲＮＡ断片をプライマーとして大腸菌のＤＮＡポリメラーゼIを用いて二本鎖のｃＤＮＡを合成することもできる。得られたｃＤＮＡは、フェノールクロロホルム抽出、エタノール沈殿等の通常の方法により精製、回収する。尚、これらの方法に基づいた市販のキットとしては、例えば、ｃＤＮＡ合成システムプラス（アマシャムバイオサイエンス社製）やSuperScript Choice System（インビトロジェン社製）等が挙げられる。
次に、得られた二本鎖ｃＤＮＡを、例えば、プラスミドpUC118やファージλgt10等のベクターとリガーゼとを用いて連結することによりｃＤＮＡライブラリーを作製することができる。
また、コモンマーモセットの組織片又はそれらの動物由来培養細胞から、例えば、Sambrook, J. et al., Molecular Cloning: A laboratory Manual 3rd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001) 等や、村松正寶、”ラボマニュアル遺伝子工学”（丸善1998）等に記載される通常の方法に準じてゲノムＤＮＡを調製する。
例えば、試料が肝臓の場合には、抽出緩衝液［10mM Tris-HCl (pH8.0), 0.1 mM EDTA (pH8.0), 20μ g/ml, 0.5%SDS］を組織重量に対し10倍量（v/w）加え粉砕し、さらにProteinaseKを最終濃度100μｌ/ml になるように加え混合する。この混合物を50℃で３時間保温した後、フェノール／クロロホルム等を加えることによりタンパク質を変性させる。変性タンパク質を遠心分離等により除去した後、回収された上清画分にエタノールを添加しゲノムＤＮＡを沈殿させ回収する。また、試料が末梢血の場合は、DNA-Extraction kit(ストラータジーン社製)等を用いて該試料を処理することによりゲノムＤＮＡを得ることができる。得られたゲノムＤＮＡをλgt10等のベクターとリガーゼを用いて連結することによりゲノムＤＮＡライブラリーを得ることができる。
上記のような一本鎖又は二本鎖ｃＤＮＡそのもの、又は、ｃＤＮＡライブラリー若しくはゲノムＤＮＡライブラリーから、配列番号１で示される塩基配列の部分塩基配列又は当該部分塩基配列に相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドをプライマーとして用いるＰＣＲ反応や、上記ｃＤＮＡライブラリーやゲノムＤＮＡライブラリーから、配列番号１で示される塩基配列又は当該塩基配列の部分塩基配列を有するＤＮＡをプローブとして用いるハイブリダイゼーション法により、本発明遺伝子又は本発明ポリヌクレオチドを取得することができる。
ＰＣＲに用いられるプライマーとしては、例えば、約15塩基から約50塩基程度の長さのオリゴヌクレオチドであって、配列番号１で示される塩基配列の５’側の翻訳開始点から始まる塩基配列を有するオリゴヌクレオチド、及び、配列番号１で示される塩基配列の３’側の翻訳終了点から始まる塩基配列に相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを挙げることができる。具体的には、フォワードプライマーとしては、例えば、配列番号４で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを挙げることができる。また、リバースプライマーとしては、例えば、配列番号５で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを挙げることができる。ＰＣＲの条件としては、例えば、反応液50μl中に、Ex-Taqポリメラーゼ用10倍濃緩衝液（タカラバイオ社製）5μl、2.5mM dNTP混合液（各2.5 mMのdATP, dGTP, dCTP及びdTTPを含む。）5μl（dATP, dGTP, dCTP及びdTTP各々の最終濃度が0.25 mM）、10μMプライマー 各0.5〜2.5μl（終濃度が0.1〜0.5μM）、鋳型ｃＤＮＡ 0.1〜0.5μg、Ex-Taqポリメラーゼ（タカラバイオ社製）1.25ユニットを含む組成の反応液にて、以下の条件による３工程の増幅サイクルを繰り返して行う。まず変性工程として、例えば約90℃から約96℃、好ましくは約94℃から約95℃で、1分から15分間、好ましくは1分から2分間の保温を行う。次にプライマーのアニーリング工程として、例えば約30℃から約70℃、好ましくは約40℃から約60℃で、約3秒から約3分間、好ましくは約5秒間から約2分間の保温が行われる。さらにＤＮＡポリメラーゼによる伸長工程として、たとえば、約70℃から約75℃、好ましくは約72℃から約73℃で、約15秒間から約5分間、好ましくは約30秒間から約4分間の保温が行われる。この３工程からなる増幅サイクルを、約20回から約50回、好ましくは約25回から約40回行う。このようなＰＣＲで増幅されたＤＮＡ断片を、必要に応じて低融点アガロース電気泳動等に供して精製した後、エタノール沈殿により回収することにより、或いは、例えば、QIAquick ＰＣＲ Purification Kit（キアゲン社製）のような市販のＤＮＡ断片精製用のカラムを用いて、精製及び回収することができる。回収の際にＤＮＡ断片を溶解させる溶媒として、水、生理食塩水、1 から100 mMトリス塩酸、ＴＥ緩衝液［10 mMトリス塩酸、1 mM EDTA、pH7.4から8.0］等の適当な溶液を用いることができる。
ＰＣＲに用いられるプライマーとしては、例えば、約15塩基から約50塩基程度の長さのオリゴヌクレオチドであって、配列番号１で示される塩基配列の５’側の翻訳開始点から始まる塩基配列を有するオリゴヌクレオチド、及び、配列番号１で示される塩基配列の３’側の翻訳終了点から始まる塩基配列に相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを挙げることができる。具体的には、フォワードプライマーとしては、例えば、配列番号４で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを挙げることができる。また、リバースプライマーとしては、例えば、配列番号５で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを挙げることができる。ＰＣＲの条件としては、例えば、反応液50μl中に、Ex-Taqポリメラーゼ用10倍濃緩衝液（タカラバイオ社製）5μl、2.5mM dNTP混合液（各2.5 mMのdATP, dGTP, dCTP及びdTTPを含む。）5μl（dATP, dGTP, dCTP及びdTTP各々の最終濃度が0.25 mM）、10μMプライマー 各0.5〜2.5μl（終濃度が0.1〜0.5μM）、鋳型ｃＤＮＡ 0.1〜0.5μg、Ex-Taqポリメラーゼ（タカラバイオ社製）1.25ユニットを含む組成の反応液にて、以下の条件による３工程の増幅サイクルを繰り返して行う。まず変性工程として、例えば約90℃から約96℃、好ましくは約94℃から約95℃で、1分から15分間、好ましくは1分から2分間の保温を行う。次にプライマーのアニーリング工程として、例えば約30℃から約70℃、好ましくは約40℃から約60℃で、約3秒から約3分間、好ましくは約5秒間から約2分間の保温が行われる。さらにＤＮＡポリメラーゼによる伸長工程として、たとえば、約70℃から約75℃、好ましくは約72℃から約73℃で、約15秒間から約5分間、好ましくは約30秒間から約4分間の保温が行われる。この３工程からなる増幅サイクルを、約20回から約50回、好ましくは約25回から約40回行う。このようなＰＣＲで増幅されたＤＮＡ断片を、必要に応じて低融点アガロース電気泳動等に供して精製した後、エタノール沈殿により回収することにより、或いは、例えば、QIAquick ＰＣＲ Purification Kit（キアゲン社製）のような市販のＤＮＡ断片精製用のカラムを用いて、精製及び回収することができる。回収の際にＤＮＡ断片を溶解させる溶媒として、水、生理食塩水、1 から100 mMトリス塩酸、ＴＥ緩衝液［10 mMトリス塩酸、1 mM EDTA、pH7.4から8.0］等の適当な溶液を用いることができる。
ハイブリダイゼーション法に用いられるプローブとしては、例えば、配列番号１又は２で示される塩基配列からなるポリヌクレオチド、又は、当該ポリヌクレオチドの部分塩基配列を有するポリヌクレオチド等が挙げられる。ハイブリダイゼーションの条件としては、例えば、6×SSC（0.9M塩化ナトリウム、0.09Mクエン酸ナトリウム）、5×デンハルト溶液（0.1(w/v)フィコール400、0.1(w/v)ポリビニルピロリドン、0.1(w/v)BSA）、0.5(w/v)SDS及び100μg/ml変性サケ精子ＤＮＡ存在下に、65℃で保温し、次いで１×SSC（0.15M塩化ナトリウム、0.015Mクエン酸ナトリウム）及び0.5(w/v)SDS存在下に、室温で15分間の保温を２回行い、さらに0.1×SSC（0.015M 塩化ナトリウム、0.0015Mクエン酸ナトリウム）及び0.5(w/v)SDS存在下に、68℃で30分間保温する条件等を挙げることができる。また、例えば、5xSSC、50mMHEPES pH7.0、10xデンハルト溶液及び20μg/ml変性サケ精子ＤＮＡ存在下に65℃にて保温し、次いで2xSSC中で室温にて３０分間の保温を行い、さらに0.1xSSC中で６５℃にて４０分間の保温を２回行う条件を挙げることもできる。尚、本発明遺伝子又は本発明ポリヌクレオチドは、例えば、配列番号１で示される塩基配列に基づいて、例えばホスファイト・トリエステル法（Hunkapiller,M.et al.,Nature,310,105,1984）等の通常の方法に準じて、核酸の化学合成を行うことにより調製することもできる。
このようにして得られた本発明遺伝子又は本発明ポリヌクレオチドは、例えば、Sambrook, J. et al., Molecular Cloning: A laboratory Manual 3rd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001) 等に記載された遺伝子工学的方法に準じてベクターにクローニングすることができる。
具体的には例えば、TAクローニングキット（Invitrogen社）やpBluescriptII（Stratagene社）等の市販のプラスミドベクターを用いてクローニングすることができる。得られた本発明遺伝子又は本発明ポリヌクレオチドの塩基配列は、Maxam Gilbert法（例えば、Maxam, A. M. & W. Gilbert, Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 74, 560, 1977等に記載される）やSanger法（例えば、Sanger, F. & A. R. Coulson, J. Mol. Biol., 94, 441, 1975, Sanger, F. & Nicklen & A. R. Coulson, Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 74, 5463, 1977等に記載される）に準じて確認することができる。ABI社製モデル377等の自動ＤＮＡシークエンサーを用いる場合には、対応するＤＮＡシークエンスキット、例えば、ABI社製Big Dye Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction Kit等を用いることができる。
具体的には例えば、TAクローニングキット（Invitrogen社）やpBluescriptII（Stratagene社）等の市販のプラスミドベクターを用いてクローニングすることができる。得られた本発明遺伝子又は本発明ポリヌクレオチドの塩基配列は、Maxam Gilbert法（例えば、Maxam, A. M. & W. Gilbert, Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 74, 560, 1977等に記載される）やSanger法（例えば、Sanger, F. & A. R. Coulson, J. Mol. Biol., 94, 441, 1975, Sanger, F. & Nicklen & A. R. Coulson, Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 74, 5463, 1977等に記載される）に準じて確認することができる。ABI社製モデル377等の自動ＤＮＡシークエンサーを用いる場合には、対応するＤＮＡシークエンスキット、例えば、ABI社製Big Dye Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction Kit等を用いることができる。
本発明ポリヌクレオチドの中でも、項目番号（７）で示される「前項（１）乃至（６）記載のいずれかの塩基配列を有し、かつ、５’キャップからポリＡ配列までの領域を含む成熟ｍＲＮＡに対して相補的なＤＮＡの塩基配列」（即ち、完全長ｃＤＮＡと呼ばれるポリヌクレオチドの塩基配列）であって、５’キャップから（、５’非翻訳領域、タンパク質コード領域、３’非翻訳領域を含み、）ポリＡ配列までの領域からなる成熟ｍＲＮＡに対して相補的なＤＮＡの塩基配列であり、当該ＤＮＡの塩基配列はハウスキーピング遺伝子としての性質（即ち、本性質）が保持されてなる塩基配列からなるポリヌクレオチド（以下、本発明完全長ｃＤＮＡと記すこともある。）は、例えば、下記のような方法を用いて取得してもよい。
例えば、コモンマーモセットの組織から、特開平9-24818号公報又は特開平10-12729号公報等に記載された完全長ｃＤＮＡの取得方法に準じて取得する。
具体的には例えば、コモンマーモセットの肝臓から、上記の方法に基づいて、全ＲＮＡを抽出する。次いで、得られた全ＲＮＡを鋳型として５’キャップサイト（7MeGpppN）に特異的なジオール構造にタグになる分子を化学結合させ、このＲＮＡを鋳型としてオリゴdTプライマーをＲＮＡのポリA配列にアニールさせ、逆転写酵素により一本鎖ｃＤＮＡを合成した後、タグ分子の機能を利用して完全長ｃＤＮＡのみを分離する方法が挙げられる。得られた完全長ｃＤＮＡは、プラスミドpUC118やファージλgt10等のベクターとリガーゼとを用いて連結することにより、ｃＤＮＡライブラリーを作製する。
例えば、コモンマーモセットの組織から、特開平9-24818号公報又は特開平10-12729号公報等に記載された完全長ｃＤＮＡの取得方法に準じて取得する。
具体的には例えば、コモンマーモセットの肝臓から、上記の方法に基づいて、全ＲＮＡを抽出する。次いで、得られた全ＲＮＡを鋳型として５’キャップサイト（7MeGpppN）に特異的なジオール構造にタグになる分子を化学結合させ、このＲＮＡを鋳型としてオリゴdTプライマーをＲＮＡのポリA配列にアニールさせ、逆転写酵素により一本鎖ｃＤＮＡを合成した後、タグ分子の機能を利用して完全長ｃＤＮＡのみを分離する方法が挙げられる。得られた完全長ｃＤＮＡは、プラスミドpUC118やファージλgt10等のベクターとリガーゼとを用いて連結することにより、ｃＤＮＡライブラリーを作製する。
このようにして得られた完全長ｃＤＮＡライブラリーから、配列番号１又は２で示される塩基配列又は当該塩基配列の部分塩基配列を有するＤＮＡをプローブとして用いるハイブリダイゼーション法により、当該ポリヌクレオチドを取得することができる。尚、ハイブリダイゼーション法に用いられるプローブとしては、例えば、配列番号１又は２で示される塩基配列からなるポリヌクレオチド又は当該ポリヌクレオチドの部分塩基配列からなるポリヌクレオチド等を挙げることができる。ハイブリダイゼーションの条件としては、例えば、上記の方法が挙げられる。
また本発明遺伝子の塩基配列を基にして、Frohman, M. A. et al., Proc. Natl. Acad. Sci., USA., 85, 8998 (1988)、井上純一郎、仙波憲太郎、”別冊実験医学：ｃＤＮＡクローニング”（羊土社、1996）、等に記載される、ＰＣＲを応用したＲＡＣＥ法を用いて本発明完全長ｃＤＮＡを取得することもできる。
具体的には、例えば、５’端側のｃＤＮＡ断片を取得するために、上記の方法によりコモンマーモセットの組織から一本鎖ｃＤＮＡを合成する。合成したｃＤＮＡの第１鎖の３’端に、ターミナルデオキシヌクレオチジルトランスフェラーゼを用いて、特異的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを付加する。特異的な塩基配列は、不必要な二次構造を形成しにくく、本発明遺伝子の塩基配列に類似性がなく特異性が高いものであれば如何なる塩基配列でもかまわないが、例えば、18塩基〜24塩基からなるポリｄＡが挙げられる。５’端にオリゴヌクレオチドが付加されたｃＤＮＡを鋳型として用いるＰＣＲを行う。ＰＣＲに用いられるプライマーのうち、フォワードプライマーとしてはターミナルデオキシヌクレオチジルトランスフェラーゼを用いて３’端に付加された上記のオリゴヌクレオチドに相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドが、またリバースプライマーとしては約15塩基〜約50塩基程度の長さのオリゴヌクレオチドであって、配列番号１で示される塩基配列の５’側の翻訳開始点から数十から数千塩基離れた塩基配列に対して相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドが挙げられる。具体的には、フォワードプライマーとしては、例えば、18塩基〜24塩基を有するポリｄＴを挙げることができる。また、リバースプライマーとしては、例えば、配列番号５で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを挙げることができる。ＰＣＲの条件としては、例えば、上記の条件が挙げられる。３’端のｃＤＮＡ断片を取得するために、コモンマーモセットの組織から全ＲＮＡを抽出し、５’末端にアダプター配列が付加されたオリゴｄＴプライマーをＲＮＡのポリA配列にアニールさせ、逆転写酵素により一本鎖ｃＤＮＡを合成する。アダプター配列が付加されたオリゴｄＴプライマーの塩基配列としては、不必要な二次構造を形成しにくく、本発明遺伝子の塩基配列に類似性がなく特異性が高いものであれば如何なる塩基配列でもかまわないが、例えば、配列番号６で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドが挙げられる。合成されたｃＤＮＡの第１鎖を鋳型として用いたＰＣＲを行う。ＰＣＲに用いられるプライマーのうち、フォワードプライマーとしては、約15塩基〜約50塩基程度の長さのオリゴヌクレオチドであって、配列番号１で示される塩基配列の３’側の翻訳終了点から数十から数千塩基離れた塩基配列を有するオリゴヌクレオチドが挙げられる。リバースプライマーとしては、アダプター配列に相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドが挙げられる。具体的には、フォワードプライマーとしては、例えば、配列番号４で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドが挙げられる。また、リバースプライマーとしては、例えば、配列番号７で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを挙げることができる。ＰＣＲの条件としては、例えば、上記の条件が挙げられる。このようにして得られた５’側ｃＤＮＡ断片、３’側ｃＤＮＡ断片及び本発明遺伝子を適当な制限酵素で切断した後、両者をリガーゼにより繋ぎ合わせることにより、本発明完全長ｃＤＮＡを取得することができる。
具体的には、例えば、５’端側のｃＤＮＡ断片を取得するために、上記の方法によりコモンマーモセットの組織から一本鎖ｃＤＮＡを合成する。合成したｃＤＮＡの第１鎖の３’端に、ターミナルデオキシヌクレオチジルトランスフェラーゼを用いて、特異的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを付加する。特異的な塩基配列は、不必要な二次構造を形成しにくく、本発明遺伝子の塩基配列に類似性がなく特異性が高いものであれば如何なる塩基配列でもかまわないが、例えば、18塩基〜24塩基からなるポリｄＡが挙げられる。５’端にオリゴヌクレオチドが付加されたｃＤＮＡを鋳型として用いるＰＣＲを行う。ＰＣＲに用いられるプライマーのうち、フォワードプライマーとしてはターミナルデオキシヌクレオチジルトランスフェラーゼを用いて３’端に付加された上記のオリゴヌクレオチドに相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドが、またリバースプライマーとしては約15塩基〜約50塩基程度の長さのオリゴヌクレオチドであって、配列番号１で示される塩基配列の５’側の翻訳開始点から数十から数千塩基離れた塩基配列に対して相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドが挙げられる。具体的には、フォワードプライマーとしては、例えば、18塩基〜24塩基を有するポリｄＴを挙げることができる。また、リバースプライマーとしては、例えば、配列番号５で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを挙げることができる。ＰＣＲの条件としては、例えば、上記の条件が挙げられる。３’端のｃＤＮＡ断片を取得するために、コモンマーモセットの組織から全ＲＮＡを抽出し、５’末端にアダプター配列が付加されたオリゴｄＴプライマーをＲＮＡのポリA配列にアニールさせ、逆転写酵素により一本鎖ｃＤＮＡを合成する。アダプター配列が付加されたオリゴｄＴプライマーの塩基配列としては、不必要な二次構造を形成しにくく、本発明遺伝子の塩基配列に類似性がなく特異性が高いものであれば如何なる塩基配列でもかまわないが、例えば、配列番号６で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドが挙げられる。合成されたｃＤＮＡの第１鎖を鋳型として用いたＰＣＲを行う。ＰＣＲに用いられるプライマーのうち、フォワードプライマーとしては、約15塩基〜約50塩基程度の長さのオリゴヌクレオチドであって、配列番号１で示される塩基配列の３’側の翻訳終了点から数十から数千塩基離れた塩基配列を有するオリゴヌクレオチドが挙げられる。リバースプライマーとしては、アダプター配列に相補的な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドが挙げられる。具体的には、フォワードプライマーとしては、例えば、配列番号４で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドが挙げられる。また、リバースプライマーとしては、例えば、配列番号７で示される塩基配列からなるオリゴヌクレオチドを挙げることができる。ＰＣＲの条件としては、例えば、上記の条件が挙げられる。このようにして得られた５’側ｃＤＮＡ断片、３’側ｃＤＮＡ断片及び本発明遺伝子を適当な制限酵素で切断した後、両者をリガーゼにより繋ぎ合わせることにより、本発明完全長ｃＤＮＡを取得することができる。
このようにして得られた本発明完全長ｃＤＮＡは、例えば、Sambrook, J. et al., Molecular Cloning: A laboratory Manual 3rd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001) 等に記載の遺伝子工学的方法に準じてベクターにクローニングすることができる。具体的には例えば、TAクローニングキット（Invitrogen社）やpBluescriptII（Stratagene社）等の市販のプラスミドベクターを用いてクローニングすることができる。得られた本発明完全長ｃＤＮＡの塩基配列は、上記のMaxam Gilbert法やSanger法に準じてその塩基配列を確認することができる。
次いで、DNA又はRNAの検出のために用いられる、本発明ポリヌクレオチドについて説明する（以下、ＤＮＡ等検出用本発明ポリヌクレオチドと記すこともある）。
ＤＮＡ等検出用本発明ポリヌクレオチドは、以下のいずれかの塩基配列からなることを特徴とするポリヌクレオチドである。
（１）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列
（２）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列で指定される領域の中から選ばれる、連続する任意の、塩基長２０〜６０を有する塩基配列
（３）前項（１）又は（２）記載のいずれかの塩基配列に対して相補的な塩基配列
ここで、項目番号（２）としては、例えば、（２ａ）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列で指定される領域の中から選ばれる、連続する任意の６０塩基長を有する塩基配列、（２ｂ）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列で指定される領域の中から選ばれる、連続する任意の５０塩基長を有する塩基配列、（２ｃ）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列で指定される領域の中から選ばれる、連続する任意の３５塩基長を有する塩基配列配列、（２ｄ）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列で指定される領域の中から選ばれる、連続する任意の３０塩基長を有する塩基配列配列、（２ｄ）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列で指定される領域の中から選ばれる、連続する任意の２０塩基長を有する塩基配列配列等を挙げることができる。
ＤＮＡ等検出用本発明ポリヌクレオチドは、以下のいずれかの塩基配列からなることを特徴とするポリヌクレオチドである。
（１）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列
（２）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列で指定される領域の中から選ばれる、連続する任意の、塩基長２０〜６０を有する塩基配列
（３）前項（１）又は（２）記載のいずれかの塩基配列に対して相補的な塩基配列
ここで、項目番号（２）としては、例えば、（２ａ）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列で指定される領域の中から選ばれる、連続する任意の６０塩基長を有する塩基配列、（２ｂ）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列で指定される領域の中から選ばれる、連続する任意の５０塩基長を有する塩基配列、（２ｃ）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列で指定される領域の中から選ばれる、連続する任意の３５塩基長を有する塩基配列配列、（２ｄ）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列で指定される領域の中から選ばれる、連続する任意の３０塩基長を有する塩基配列配列、（２ｄ）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列で指定される領域の中から選ばれる、連続する任意の２０塩基長を有する塩基配列配列等を挙げることができる。
上記、項目番号（１）から（３）のいずれかの特徴を有するＤＮＡ等検出用本発明ポリヌクレオチドは、解析対象となる、所望の遺伝子を検出するために使用される１個から複数個のポリヌクレオチドと、性質の類似性を指標にして選択することができる。例えば、後述するような、長鎖のｃＤＮＡを用いてＤＮＡ又はＲＮＡを検出するＤＮＡアレイを用いる場合には、項目番号（１）で示される、塩基番号１１２６から１７２５の塩基配列からなるポリヌクレオチドを用いるのが好ましい。また、短鎖のポリヌクレオチドを用いたＤＮＡアレイや、ＲＴ−ＰＣＲの如くの方法によりＤＮＡ又はＲＮＡを検出する場合には、項目番号（２）又は（３）で示されるポリヌクレオチドのいずれかを用いるのが好ましい。具体的には、項目番号（２）としては、例えば、配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１３１から１１５５、１３６０から１３８６、１４３５から１４５８、１５９４から１６０４のいずれかから開始し、それぞれ、配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１９０から１２１４、１４１９から１４４５、１４９４から１５１７、１６５３から１６６３で終了する、連続する６０塩基長を有する塩基配列をあげることができる。また例えば、配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１１６４、１３６２から１３９６、１４３５から１４６３、１５９４から１６１２、１６５３から１６５７のいずれかから開始し、それぞれ、配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１７５から１２１３、１４１１から１４４５、１４８４から１５１２、１６４３から１６６１、１７０２から１７０６で終了する、連続する５０塩基長を有する塩基配列をあげることができる。また例えば、配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１１８０、１２６４から１２７７、１３１０から１３２４、１３６６、１３７１から１４１１、１４３５から１４７２、１５９４から１６１５、１６５３から１６７１のいずれかから開始し、それぞれ、配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１６０から１２１４、１２９８から１３１１、１３４４から１３５８、１４００、１４０５から１４４５、１４６９から１５０６、１６２８から１６４９、１６８７から１７０５で終了する、連続する３５塩基長を有する塩基配列をあげることができる。また例えば、配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１１６６、１２６４から１２８０、１３２０から１３２９、１３７１から１３８６、１４３１から１４７３、１５６１から１５６６、１５９４から１６０９、１６４９から１６７３のいずれかから開始し、それぞれ、配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１５５から１１９５、１２９３から１３０９、１３４９から１３５８、１４００から１４１５、１４６０から１５０２、１５９０から１５９５、１６２３から１６３８、１６７８から１７０２で終了する、連続する３０塩基長を有する塩基配列をあげることができる。また例えば、配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１７６、１１７８、１１９２、１２６５、１２６７、１２７８、１３０５、１３２０、１４１８から１４２０、１４３５、１４６６、１４６７、１４７１、１５７３、１５７５のいずれかから開始し、それぞれ、配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１９５、１１９７、１２１１、１２８４、１２８６、１２９７、１３２４、１３３９、１４３７から１４３９、１４５４、１４８５、１４８６、１４９０、１５９２、１５９４で終了する、連続する２０塩基長を有する塩基配列をあげることができる。より具体的には、上記で指定される塩基配列の中から、所望の遺伝子を検出するために使用される、１個から複数個のポリヌクレオチドと、配列長、融点等の性質が同等となるポリヌクレオチドを選択することが好ましい。
また、項目番号（３）で示すように、ＤＮＡアレイやノーザン法の如く、ハイブリダイゼーション法を用いてＤＮＡ又はＲＮＡを検出する場合には、上記項目番号（１）又は（２）のいずれかで示される塩基配列に対して相補的な塩基配列を有するポリヌクレオチドを用いるのが好ましい。
上述した項目番号（１）から（３）のいずれかで示される塩基配列を有することを特徴とするポリヌクレオチドは、それぞれ単独で使用することもできるだけではなく、複数個の組み合わせで使用することもできる。後述するＲＴ−ＰＣＲ法におけるプライマー、又はプローブとしての使用においては、項目番号（２）又は（３）で示される塩基配列を有するポリヌクレオチドの中から、ＰＣＲ反応を実施するのに適切なポリヌクレオチド（塩基長２０〜６０、好ましくは塩基長２０〜５０）を選択することが好ましい。ポリヌクレオチドの選択には、市販の遺伝子解析ソフト、例えば、ＤＮＡＳＩＳ（日立ソフトウエア社製）等を用いて、上記に示したポリヌクレオチドから行うことができる。また、検出時の信頼性を高める目的で、複数個の異なった遺伝子の塩基配列領域を検出するポリヌクレオチドを用いることも行われているが、この場合には、項目番号（２）又は（３）で示される塩基配列を有し、それぞれ互いに重複しない塩基配列を有するポリヌクレオチドを、複数個使用するのが望ましい。
また、項目番号（３）で示すように、ＤＮＡアレイやノーザン法の如く、ハイブリダイゼーション法を用いてＤＮＡ又はＲＮＡを検出する場合には、上記項目番号（１）又は（２）のいずれかで示される塩基配列に対して相補的な塩基配列を有するポリヌクレオチドを用いるのが好ましい。
上述した項目番号（１）から（３）のいずれかで示される塩基配列を有することを特徴とするポリヌクレオチドは、それぞれ単独で使用することもできるだけではなく、複数個の組み合わせで使用することもできる。後述するＲＴ−ＰＣＲ法におけるプライマー、又はプローブとしての使用においては、項目番号（２）又は（３）で示される塩基配列を有するポリヌクレオチドの中から、ＰＣＲ反応を実施するのに適切なポリヌクレオチド（塩基長２０〜６０、好ましくは塩基長２０〜５０）を選択することが好ましい。ポリヌクレオチドの選択には、市販の遺伝子解析ソフト、例えば、ＤＮＡＳＩＳ（日立ソフトウエア社製）等を用いて、上記に示したポリヌクレオチドから行うことができる。また、検出時の信頼性を高める目的で、複数個の異なった遺伝子の塩基配列領域を検出するポリヌクレオチドを用いることも行われているが、この場合には、項目番号（２）又は（３）で示される塩基配列を有し、それぞれ互いに重複しない塩基配列を有するポリヌクレオチドを、複数個使用するのが望ましい。
ＤＮＡ等検出用本発明ポリヌクレオチドは、これらを取得できる方法であれば如何なる
方法を用いて取得してもよい。
例えば、取得本発明遺伝子又は本発明ポリヌクレオチドの項で具体的に示したように、コモンマーモセット等のマーモセット組織又はそれらの動物由来培養細胞から、ハイブリダイゼーション法やPCR法等を用いて取得することができる他、塩基配列の情報を基づき、市販のＤＮＡ合成機により化学合成することも好ましい方法として挙げることができる。
方法を用いて取得してもよい。
例えば、取得本発明遺伝子又は本発明ポリヌクレオチドの項で具体的に示したように、コモンマーモセット等のマーモセット組織又はそれらの動物由来培養細胞から、ハイブリダイゼーション法やPCR法等を用いて取得することができる他、塩基配列の情報を基づき、市販のＤＮＡ合成機により化学合成することも好ましい方法として挙げることができる。
次いで、本発明組成物について説明する。
本発明組成物は、DNA又はRNA検出のための組成物であって、本発明ポリヌクレオチドを含有することを特徴とする。当該組成物は、本発明ポリヌクレオチドが担体上に固定化されてなる形態であってもよい。当該形態のうち、本発明ポリヌクレオチドが固体基板の表面に固定されてなる代表的なものはＤＮＡアレイである（以下、本発明ＤＮＡアレイと記すこともある。）。
遺伝子発現解析手法は、疾患の診断、分類若しくは発生予測、又は薬剤の効力若しくは毒性・副作用の機構解析等の、様々な局面で盛んに利用されている。遺伝子発現解析手法には、ノーザンブロッティング法が従来から利用されてきたが、定量的リバーストランスクリプターゼ−ポリメラーゼチェイン反応法（以下、定量的ＲＴ−ＰＣＲ法と記すこともある。）や、ＤＮＡアレイを用いた手法（以下、DNAアレイ法と記すこともある。）が開発され、現在ではこれら手法も活用されている。
前者の遺伝子発現解析手法（即ち、定量的ＲＴ−ＰＣＲ法）では、通常、複数の被検試料から独立して、所望の遺伝子の転写産物であるｍＲＮＡ又は全ＲＮＡ等のポリヌクレオチドを抽出・精製し、抽出・精製されたポリヌクレオチドに対応するｃＤＮＡをリバーストランスクリプターゼを用いて合成した後、合成されたｃＤＮＡ量をＰＣＲ法を用いて定量し、定量されたｃＤＮＡ量を複数の被検試料間で相対比較することにより、当該所望の遺伝子の発現量の差異を測定する。当該相対比較を伴う遺伝子発現解析手法を行う際に本発明組成物は有益である。
後者の遺伝子発現解析手法（即ち、DNAアレイ法）では、通常、複数の被検試料から独立して、所望の遺伝子の転写産物であるｍＲＮＡ又は全ＲＮＡ等のポリヌクレオチドを抽出・精製し、抽出・精製されたポリヌクレオチドに対応するｃＤＮＡ又はこれをin vitro転写反応することによって得られるｃＲＮＡが蛍光色素、放射性同位元素等を用いて標識された標識体を、ＤＮＡアレイに対してハイブリダイズさせた後、ハイブリダイズした標識体量を蛍光強度、放射線強度等に基づき定量し、定量されたｃＤＮＡ量又はｃＲＮＡ量を複数の被検試料間で相対比較することにより、当該所望の遺伝子の発現量の差異を測定する。当該相対比較を伴う遺伝子発現解析手法を行う際に本発明組成物は有益である。
本発明組成物は、DNA又はRNA検出のための組成物であって、本発明ポリヌクレオチドを含有することを特徴とする。当該組成物は、本発明ポリヌクレオチドが担体上に固定化されてなる形態であってもよい。当該形態のうち、本発明ポリヌクレオチドが固体基板の表面に固定されてなる代表的なものはＤＮＡアレイである（以下、本発明ＤＮＡアレイと記すこともある。）。
遺伝子発現解析手法は、疾患の診断、分類若しくは発生予測、又は薬剤の効力若しくは毒性・副作用の機構解析等の、様々な局面で盛んに利用されている。遺伝子発現解析手法には、ノーザンブロッティング法が従来から利用されてきたが、定量的リバーストランスクリプターゼ−ポリメラーゼチェイン反応法（以下、定量的ＲＴ−ＰＣＲ法と記すこともある。）や、ＤＮＡアレイを用いた手法（以下、DNAアレイ法と記すこともある。）が開発され、現在ではこれら手法も活用されている。
前者の遺伝子発現解析手法（即ち、定量的ＲＴ−ＰＣＲ法）では、通常、複数の被検試料から独立して、所望の遺伝子の転写産物であるｍＲＮＡ又は全ＲＮＡ等のポリヌクレオチドを抽出・精製し、抽出・精製されたポリヌクレオチドに対応するｃＤＮＡをリバーストランスクリプターゼを用いて合成した後、合成されたｃＤＮＡ量をＰＣＲ法を用いて定量し、定量されたｃＤＮＡ量を複数の被検試料間で相対比較することにより、当該所望の遺伝子の発現量の差異を測定する。当該相対比較を伴う遺伝子発現解析手法を行う際に本発明組成物は有益である。
後者の遺伝子発現解析手法（即ち、DNAアレイ法）では、通常、複数の被検試料から独立して、所望の遺伝子の転写産物であるｍＲＮＡ又は全ＲＮＡ等のポリヌクレオチドを抽出・精製し、抽出・精製されたポリヌクレオチドに対応するｃＤＮＡ又はこれをin vitro転写反応することによって得られるｃＲＮＡが蛍光色素、放射性同位元素等を用いて標識された標識体を、ＤＮＡアレイに対してハイブリダイズさせた後、ハイブリダイズした標識体量を蛍光強度、放射線強度等に基づき定量し、定量されたｃＤＮＡ量又はｃＲＮＡ量を複数の被検試料間で相対比較することにより、当該所望の遺伝子の発現量の差異を測定する。当該相対比較を伴う遺伝子発現解析手法を行う際に本発明組成物は有益である。
本発明ＤＮＡアレイは、固体基板の表面に配置されたＤＮＡプローブの数により、おおよそ数個から数百個のＤＮＡプローブが配置されたＤＮＡアレイ及びそれ以上の数のＤＮＡプローブが配置されたＤＮＡアレイの２種類に大別されるが、ここでは両者を含むものである。
本発明ＤＮＡアレイは、本発明ポリヌクレオチドをプローブとして含むものであり、これ以外のプローブの数やその塩基配列については特に制限されない。例えば、本発明ポリヌクレオチドをプローブとして含み、かつ、数個から数万個までの本発明遺伝子以外の遺伝子に対応するプローブを含むＤＮＡアレイが挙げられる。好ましくは、本発明ポリヌクレオチドをプローブとして含み、かつ、数個から数万個までの本発明遺伝子以外のコモンマーモセット由来の遺伝子に対応するプローブを含むＤＮＡアレイが挙げられる。
本発明ＤＮＡアレイは、本発明ポリヌクレオチドをプローブとして含むものであり、これ以外のプローブの数やその塩基配列については特に制限されない。例えば、本発明ポリヌクレオチドをプローブとして含み、かつ、数個から数万個までの本発明遺伝子以外の遺伝子に対応するプローブを含むＤＮＡアレイが挙げられる。好ましくは、本発明ポリヌクレオチドをプローブとして含み、かつ、数個から数万個までの本発明遺伝子以外のコモンマーモセット由来の遺伝子に対応するプローブを含むＤＮＡアレイが挙げられる。
本発明ＤＮＡアレイは、例えば、ゲノム機能研究プロトコール 実験医学別冊（羊土社刊）等に記載された方法に準じて、配列番号１で示された塩基配列の全部又は一部よりなるＤＮＡ断片を含むＤＮＡプローブを調製する工程、及び、調製されたＤＮＡプローブを固体基板の表面に固定化する工程の両工程により製造することができる。また、ＤＮＡプローブが有する塩基配列の情報に基づき、Fodor, S. P.A. et al., Science, 251, 767 (1991) に記載されたように、固体基板の上に塩基を順次添加して化学合成させてゆくことにより、ＤＮＡアレイを直接的に製造することも可能である。以下に、前者の製造方法を詳細に説明するが、本発明ＤＮＡアレイに係る製造法はこれに限定されるものではない。
まず、ＤＮＡプローブを調製する。ＤＮＡプローブの調製方法として、例えば、上記（１）のノーザンハイブリダイゼーション法に記載された方法と同様な方法に準じてコモンマーモセットの組織から調製されたｃＤＮＡを鋳型としてＰＣＲ法等により調製することができる。当該ｃＤＮＡを鋳型にして、Ex Taq（タカラバイオ）等のＤＮＡホ゜リメラーセ゛を用いてＰＣＲすることにより、ＤＮＡを増幅する。このようにして増幅されたＤＮＡをpUC118等のベクターに挿入してクローニングしておいてもよい。尚、当該ＤＮＡの塩基配列は、上記のMaxam Gilbert法、Sanger法等に準じた方法を用いて確認することができる。
まず、ＤＮＡプローブを調製する。ＤＮＡプローブの調製方法として、例えば、上記（１）のノーザンハイブリダイゼーション法に記載された方法と同様な方法に準じてコモンマーモセットの組織から調製されたｃＤＮＡを鋳型としてＰＣＲ法等により調製することができる。当該ｃＤＮＡを鋳型にして、Ex Taq（タカラバイオ）等のＤＮＡホ゜リメラーセ゛を用いてＰＣＲすることにより、ＤＮＡを増幅する。このようにして増幅されたＤＮＡをpUC118等のベクターに挿入してクローニングしておいてもよい。尚、当該ＤＮＡの塩基配列は、上記のMaxam Gilbert法、Sanger法等に準じた方法を用いて確認することができる。
ＰＣＲ反応後の増幅されたＤＮＡはプローブとして用いることができる。
ＰＣＲ反応後の増幅されたＤＮＡを、当該ＤＮＡを含む溶液からエタノール沈殿によって回収することにより、又は、例えば、QIAquick PCR Purification Kit（キアゲン社製）等の市販のＤＮＡ断片精製用カラムを用いて精製することができる。精製において当該ＤＮＡを溶解させる溶媒として、ジメチルスルホキシド、水、生理食塩水、1〜100 mMトリス塩酸等の適当な緩衝液又は3xSSC等の溶液を用いることができる。好ましくは、3XSSCを用いればよい。溶解の際のＤＮＡの濃度は、約1〜約100μMに調整する。ベクターにクローニングされたＤＮＡを用いる場合には、適当な制限酵素で目的とするＤＮＡ断片を切り出し、必要に応じてアガロースゲルで精製を行う。得られたＤＮＡ断片は、例えば、QIAquick Gel Extraction Kit（キアゲン社製）のような市販のＤＮＡ断片精製用カラムを用いて、ゲルを分離することができる。ゲルから分離されたＤＮＡ断片を上記の溶媒に溶解させる。また、クローニングベクターのクローニング領域の両端に通常設定されているようなT7、T3、SP6等の塩基配列をプライマーとして再度ＰＣＲを行うことにより、ＤＮＡプローブのためのＤＮＡを取得してもよい。
ＤＮＡアレイに配置されるＤＮＡ断片の長さが約20塩基〜約100塩基の場合には、塩基配列の情報を基づき、市販のＤＮＡ合成機により化学合成することも好ましい方法として挙げることができる。化学合成後のＤＮＡ断片を、上記のＤＮＡ断片精製用カラム、高速液体クロマトグラフィー等により精製し、これを上記の溶媒に溶解させる。
ＰＣＲ反応後の増幅されたＤＮＡを、当該ＤＮＡを含む溶液からエタノール沈殿によって回収することにより、又は、例えば、QIAquick PCR Purification Kit（キアゲン社製）等の市販のＤＮＡ断片精製用カラムを用いて精製することができる。精製において当該ＤＮＡを溶解させる溶媒として、ジメチルスルホキシド、水、生理食塩水、1〜100 mMトリス塩酸等の適当な緩衝液又は3xSSC等の溶液を用いることができる。好ましくは、3XSSCを用いればよい。溶解の際のＤＮＡの濃度は、約1〜約100μMに調整する。ベクターにクローニングされたＤＮＡを用いる場合には、適当な制限酵素で目的とするＤＮＡ断片を切り出し、必要に応じてアガロースゲルで精製を行う。得られたＤＮＡ断片は、例えば、QIAquick Gel Extraction Kit（キアゲン社製）のような市販のＤＮＡ断片精製用カラムを用いて、ゲルを分離することができる。ゲルから分離されたＤＮＡ断片を上記の溶媒に溶解させる。また、クローニングベクターのクローニング領域の両端に通常設定されているようなT7、T3、SP6等の塩基配列をプライマーとして再度ＰＣＲを行うことにより、ＤＮＡプローブのためのＤＮＡを取得してもよい。
ＤＮＡアレイに配置されるＤＮＡ断片の長さが約20塩基〜約100塩基の場合には、塩基配列の情報を基づき、市販のＤＮＡ合成機により化学合成することも好ましい方法として挙げることができる。化学合成後のＤＮＡ断片を、上記のＤＮＡ断片精製用カラム、高速液体クロマトグラフィー等により精製し、これを上記の溶媒に溶解させる。
次に、上記で得られたＤＮＡを、固体基板等の担体上に固定化する。担体としては、ガラス板、石英板、シリコンウエハー、メンブレンフィルター等の固体基板を挙げることができる。担体の大きさは、担体上のＤＮＡプローブの配置数、ＤＮＡプローブのスポットの大きさ等に応じて適宜設定すればよい。ＤＮＡを固定化するための方法としては、ＤＮＡの種類、担体の種類等に応じて適当な方法を選択すればよい。例えば、固定化するＤＮＡがｃＤＮＡ、ＰＣＲ増幅産物等の場合には、ＤＮＡの荷電を利用して、ポリリジン、ポリエチレンイミン、ポリアルキルアミン等のポリ陽イオンで表面処理された固体担体に静電結合させる方法、アミノ基、アルデヒド基、エポキシ基等の官能基が導入された固層表面に、アミノ基、アルデヒド基、SH基、ビオチン等の官能基が導入されたＤＮＡを共有結合させる方法等を挙げることができる。調製されたＤＮＡを担体に配置するには、マイクロピペット、ピペットマン等を用いて、当該ＤＮＡが溶解させた溶液を手操作により滴下する方法、数10μm〜数100μmのサイズで予め指示された位置に機械操作により配置する方法を用いてもよい。ＤＮＡの配置方法としては、ピン先端の担体の機械的な接触によるピン方式、インクジェットプリンターの原理を応用したインクジェット方式、毛細管によるキャピラリー方式等があり、いずれの方式を用いても良い。ピン方式としては、Affymetrix 427 Arrayer（アフィメトリクス社製）、キャピラリ−方式としてはLucidea Array Spotter（アマシャムバイオサイエンス社製）等が挙げられるが、これに限定されるものではない。配置されるＤＮＡの溶液量としては、機械式に配置する場合には0.01〜100 nl、手操作操作により配置する場合には0.1〜100μlを好ましく挙げることができる。
次に、本発明使用及び本発明測定方法について説明する。
本発明使用は、２種類以上の被検試料における所望の遺伝子の発現量の差異を、当該遺伝子の転写産物量の差異として測定する際に、前記転写産物量の補正を行うための前記被検試料における遺伝子の発現量の基準となる内部標準としての本発明ポリヌクレオチドの使用である。本発明使用では、当該被検試料がコモンマーモセット由来の試料であることがよい。
本発明測定方法は、２種類以上の被検試料における所望の遺伝子の発現量の差異を、当該遺伝子の転写産物量の差異として測定する方法であって、（１）前項２記載のポリヌクレオチドを用いて、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子の転写産物量を測定する第一工程、（２）前記被検試料における所望の遺伝子を用いて、当該遺伝子の転写産物量を測定する第ニ工程、（３）２種類以上の被検試料における各被検試料において、任意の被検試料において第一工程により測定されたベータアクチン遺伝子の転写産物量に対する、他の被検試料において第一工程により測定されたベータアクチン遺伝子の転写産物量の相対比を算出する第三工程、（４）第ニ工程により測定された所望の遺伝子の転写産物量に第三工程により算出された相対比を乗じることにより、２種類以上の被検試料における各被検試料での第ニ工程により測定された所望の遺伝子の転写産物量を補正する第四工程、を有することを特徴とする。本発明測定方法では、当該被検試料がコモンマーモセット由来の試料であることがよい。
本発明使用は、２種類以上の被検試料における所望の遺伝子の発現量の差異を、当該遺伝子の転写産物量の差異として測定する際に、前記転写産物量の補正を行うための前記被検試料における遺伝子の発現量の基準となる内部標準としての本発明ポリヌクレオチドの使用である。本発明使用では、当該被検試料がコモンマーモセット由来の試料であることがよい。
本発明測定方法は、２種類以上の被検試料における所望の遺伝子の発現量の差異を、当該遺伝子の転写産物量の差異として測定する方法であって、（１）前項２記載のポリヌクレオチドを用いて、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子の転写産物量を測定する第一工程、（２）前記被検試料における所望の遺伝子を用いて、当該遺伝子の転写産物量を測定する第ニ工程、（３）２種類以上の被検試料における各被検試料において、任意の被検試料において第一工程により測定されたベータアクチン遺伝子の転写産物量に対する、他の被検試料において第一工程により測定されたベータアクチン遺伝子の転写産物量の相対比を算出する第三工程、（４）第ニ工程により測定された所望の遺伝子の転写産物量に第三工程により算出された相対比を乗じることにより、２種類以上の被検試料における各被検試料での第ニ工程により測定された所望の遺伝子の転写産物量を補正する第四工程、を有することを特徴とする。本発明測定方法では、当該被検試料がコモンマーモセット由来の試料であることがよい。
本発明測定方法における第一工程及び第二工程での、遺伝子の転写産物量を測定する方法としては、転写産物量を定量的に測定できる方法であれば如何なる方法であってもよいが、例えば、ノーザンハイブリダイゼーション法 [Sambrook, J. et al., Molecular Cloning: A laboratory Manual 3rd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001)]、定量的ＲＴ−ＰＣＲ法、ＤＮＡアレイ法、インサイチューハイブリダイゼーション法等を挙げることができる。好ましくは、例えば、ＤＮＡアレイ法又は定量的リバーストランスクリプターゼ−ポリメラーゼチェイン反応法のいずれかの方法等が挙げられる。
（１） ノーザンハイブリダイゼーション法
まず、解析対象である所望の遺伝子の塩基配列に相当するＤＮＡを調製し、次いで、その全部若しくは一部からなるＤＮＡを標識して標識化プローブを調製する。ここで「標識化ＤＮＡプローブ」とは、特定の塩基配列を有する遺伝子に特異的にハイブリダイズし当該遺伝子の発現の有無及びその発現量を測定する目的で用いられる蛍光色素、放射性同位元素等を用いて標識された標識体であるＤＮＡ断片である。また、本発明遺伝子又は本発明ポリヌクレオチドについても同様に、そのＤＮＡを標識して標識化プローブを調製する。尚、所望の遺伝子は、コモンマーモセットの組織から上記の方法により調製されたｃＤＮＡを鋳型として用いたＰＣＲ法等によって調製することができる。当該ｃＤＮＡを鋳型にして、Ex Taq（タカラバイオ）等のＤＮＡホ゜リメラーセ゛を用いてＰＣＲすることにより、ＤＮＡを増幅する。ＰＣＲの条件は、所望の遺伝子の種類、使用するプライマーの塩基配列等により異なるが、例えば、前述のような反応条件等を挙げることができる。このようにして増幅されたＤＮＡはpUC118等をベクターに挿入してクローニングしておいてもよい。当該ＤＮＡの塩基配列は、上記のMaxam Gilbert 法、Sanger法等に準じた方法を用いて確認することができる。
まず、解析対象である所望の遺伝子の塩基配列に相当するＤＮＡを調製し、次いで、その全部若しくは一部からなるＤＮＡを標識して標識化プローブを調製する。ここで「標識化ＤＮＡプローブ」とは、特定の塩基配列を有する遺伝子に特異的にハイブリダイズし当該遺伝子の発現の有無及びその発現量を測定する目的で用いられる蛍光色素、放射性同位元素等を用いて標識された標識体であるＤＮＡ断片である。また、本発明遺伝子又は本発明ポリヌクレオチドについても同様に、そのＤＮＡを標識して標識化プローブを調製する。尚、所望の遺伝子は、コモンマーモセットの組織から上記の方法により調製されたｃＤＮＡを鋳型として用いたＰＣＲ法等によって調製することができる。当該ｃＤＮＡを鋳型にして、Ex Taq（タカラバイオ）等のＤＮＡホ゜リメラーセ゛を用いてＰＣＲすることにより、ＤＮＡを増幅する。ＰＣＲの条件は、所望の遺伝子の種類、使用するプライマーの塩基配列等により異なるが、例えば、前述のような反応条件等を挙げることができる。このようにして増幅されたＤＮＡはpUC118等をベクターに挿入してクローニングしておいてもよい。当該ＤＮＡの塩基配列は、上記のMaxam Gilbert 法、Sanger法等に準じた方法を用いて確認することができる。
このようにして調製された所望の遺伝子のＤＮＡ、及び本発明遺伝子又は本発明ポリヌクレオチドを、次のようにして蛍光色素、放射性同位元素等で標識することによりプローブを調製することができる。例えば、上記のようにして調製されたＤＮＡを鋳型とし、当該ＤＮＡの塩基配列の部分配列を有するオリゴヌクレオチドをプライマーに用いて、[α-32P]dCTP又は[α-32P]dATPを含むdNTPを反応液に添加してＰＣＲを行うことにより、32Pで標識されたプローブが得られる。また、上記のようにして調製されたＤＮＡを、例えば、Random prime labeling Kit（ロシュダイアグノースティック社）、MEGALABEL（タカラバイオ）等の市販の標識キットを用いて標識してもよい。
次に、このようにして調製されたプローブを使用して、ノーザンハイブリダイゼーション分析を行う。具体的には、本発明測定方法での第二工程において、所望の遺伝子の転写産物量を測定しようとするコモンマーモセット由来の２種以上の被検試料から全ＲＮＡ又はｍＲＮＡを調製する。調製された全ＲＮＡ20μg又はｍＲＮＡ 2μｇをアガロースゲルで分離し、10ｘSSC（1.5M NaCl、0.35M クエン酸ナトリウム）で洗浄した後、ナイロンメンブレン［例えば、Hybond−N（アマシャムバイオサイエンス社製）等］に移す。ポリエチレン袋にメンブレンを入れ、ハイブリダイゼーションバッファー〔6×SSC（0.9M NaCl、0.21M クエン酸ナトリウム）、5×デンハルト溶液［0.1% (w/v)フィコール400、0.1％ (w/v) ポリビニルピロリドン、0.1% ＢＳＡ］、0.1％ (w/v) SDS，100μg/ml変性サケ精子ＤＮＡ、50％ホルムアミド〕25 mlを加えて、50℃、2時間インキュベートした後、ハイブリダイゼーションバッファーを捨て、新たに2 ml〜6 mlのハイブリダイゼーションバッファーを加える。更に上記方法で得られた標識化プローブを加え、50℃、一晩インキュベートする。ハイブリダイゼーションバッファーとしては、上記のほかに、市販のDIG EASY Hyb(ロシュダイアグノースティック社)等を用いることができる。メンブレンを取り出して、50 ml〜100 mlの2xSSC、0.1% SDS中で室温、15分間インキュベートし、さらに同じ操作を１回繰り返し行い、最後に50 ml〜100 mlの0.1xSSC、0.1% SDS中で68℃、30分間インキュベートする。メンブレン上の標識量を測定することにより、当該遺伝子の転写産物量を測定することができる。
別途、同一の被験試料から調製された全ＲＮＡ又はｍＲＮＡを上記の方法でアガロースゲルを用いて分離し、ナイロンメンブレンに移す。上記方法で得られた、本発明遺伝子又は本発明ポリヌクレオチドに対応する標識化プローブを加え、上記の条件に従ってハイブリダイゼーションを行い、メンブレン上の標識量を測定することにより、本発明遺伝子の転写産物量を測定することができる。
また、全ＲＮＡ又はｍＲＮＡを移したナイロンメンブレンを別途用意する他に、所望の遺伝子の転写産物量を測定したナイロンメンブレンから、標識化プローブを除去して、本発明遺伝子の転写産物量を測定することもできる。この場合には、例えば、メンブレンを0.1〜 1 ％ のSDSを含む溶液中で 5 〜30 分間加温又は煮沸することにより、ハイブリダイズした標識化プローブを除去する。ナイロンメンブレンを室温に戻した後、本発明遺伝子又は本発明ポリヌクレオチドに対応する標識化プローブと前述の条件でハイブリダイゼーションを行うことにより、本発明遺伝子の転写産物量を測定することができる。
別途、同一の被験試料から調製された全ＲＮＡ又はｍＲＮＡを上記の方法でアガロースゲルを用いて分離し、ナイロンメンブレンに移す。上記方法で得られた、本発明遺伝子又は本発明ポリヌクレオチドに対応する標識化プローブを加え、上記の条件に従ってハイブリダイゼーションを行い、メンブレン上の標識量を測定することにより、本発明遺伝子の転写産物量を測定することができる。
また、全ＲＮＡ又はｍＲＮＡを移したナイロンメンブレンを別途用意する他に、所望の遺伝子の転写産物量を測定したナイロンメンブレンから、標識化プローブを除去して、本発明遺伝子の転写産物量を測定することもできる。この場合には、例えば、メンブレンを0.1〜 1 ％ のSDSを含む溶液中で 5 〜30 分間加温又は煮沸することにより、ハイブリダイズした標識化プローブを除去する。ナイロンメンブレンを室温に戻した後、本発明遺伝子又は本発明ポリヌクレオチドに対応する標識化プローブと前述の条件でハイブリダイゼーションを行うことにより、本発明遺伝子の転写産物量を測定することができる。
（２） 定量的ＲＴ−ＰＣＲ
解析対象である所望の遺伝子の転写産物量を測定しようとするコモンマーモセット由来の２種以上の被検試料から上記（１）ノーザンハイブリダイゼーション法に記載される方法と同様な方法によりｍＲＮＡを調製する。調製されたｍＲＮＡに、例えば、ＭＭＬＶ（東洋紡）等の逆転写酵素を添加し、反応緩衝液［50 mMトリス塩酸緩衝液（pH8.3）、3 mM MgCl2、75 mM KCl、10 mM DTT］中、0.5 mM dNTP及び25μg/mlオリゴｄＴ存在下で42℃、15分間〜1時間反応させることにより、前記ｍＲＮＡに対応するｃＤＮＡを調製する。尚、ｃＤＮＡ合成キット（タカラバイオ）を用いて対応するｃＤＮＡを調製してもよい。
調製されたｃＤＮＡを鋳型にして、所望の遺伝子の塩基配列の一部分からなるＤＮＡをプライマーとしたＰＣＲを行う。ＰＣＲに用いられるプライマーは、市販の遺伝子解析ソフト、例えば、ＤＮＡＳＩＳ（日立ソフトウエア社製）等を用いて設計すればよい。例えば、約15塩基から約50塩基程度の長さのオリゴヌクレオチドであって、不必要な二次構造を形成しにくく当該遺伝子に対して特異性の高い塩基配列を有するプライマー等を用いることができる。ＰＣＲの条件としては、例えば、Ex taq（タカラバイオ）を使用し、反応緩衝液［10 mMトリス塩酸緩衝液（pH8.3）、50 mM KCl，1.5 mM MgCl2］中、2.5 mM dNTP及び［α32P］-dCTP存在下で、例えば、94℃，30秒間次いで40℃〜60℃，2分間さらに72℃，2分間の保温を1サイクルとしてこれを25〜55サイクル行う条件を挙げることができる。増幅されたDNAをポリアクリルアミドゲル電気泳動に供し、分離されたＤＮＡの放射線強度を測定することにより、当該遺伝子の転写産物量を測定することができる。
また、例えば、Ex taq（タカラバイオ）を使用し、反応緩衝液［10 mMトリス塩酸緩衝液（pH8.3）、50 mM KCl，1.5 mM MgCl2］中、SYBR Green PCR Reagents (アプライドバイオシステムズ社) 25μlを含む50μlの反応液を調製し、ABI7700(アプライドバイオシステムズ社)を用いて、50℃，2分間次いで95℃，10分間の保温の後、95℃，15秒間次いで60℃，1分間の保温を１サイクルとしてこれを40サイクル実施する条件でＰＣＲを行う。増幅されたＤＮＡの蛍光強度を測定することにより、当該遺伝子の転写産物量を測定することができる。
また、当該ｃＤＮＡを鋳型にして、本発明ポリヌクレオチドをプライマーとしてＰＣＲを行う。当該ＰＣＲは所望の遺伝子の転写産物量を測定する目的のためのＰＣＲと同時点又は別時点のいずれの時期でもかまわないが、同時点が望ましい。
ＰＣＲに用いられるプライマーとしては、市販の遺伝子解析ソフト、例えば、ＤＮＡＳＩＳ（日立ソフトウエア社製）等を用いて設計すればよい。例えば、約15塩基〜約50塩基程度の長さのオリゴヌクレオチドであって、不必要な二次構造を形成しにくく当該遺伝子に対して特異性の高い塩基配列を有するプライマー等を用いることができる。ＰＣＲの条件としては、所望の遺伝子の転写産物量を測定するために用いられた条件と同一な条件であることが好ましい。例えば、Ex taq（タカラバイオ）を使用し、反応緩衝液［10 mMトリス塩酸緩衝液（pH8.3）、50 mM KCl，1.5 mM MgCl2］中、2.5 mM dNTP及び［α32P］-dCTP存在下で、例えば、94℃，30秒間次いで40℃〜60℃，2分間さらに72℃，2分間の保温を1サイクルとしてこれを25〜55サイクル行う条件を挙げることができる。増幅されたDNAをポリアクリルアミドゲル電気泳動に供し、分離されたＤＮＡの放射線強度を測定することにより、本発明遺伝子の転写産物量を測定することができる。また、例えば、Ex taq（タカラバイオ）を使用し、反応緩衝液［10 mMトリス塩酸緩衝液（pH8.3）、50 mM KCl，1.5 mM MgCl2］中、SYBR Green PCR Reagents (アプライドバイオシステムズ社) 25μlを含む50μlの反応液を調製し、ABI7700(アプライドバイオシステムズ社)を用いて、50℃，2分間次いで95℃，10分間の保温の後、95℃，15秒間次いで60℃，1分間の保温を１サイクルとしてこれを40サイクル実施する条件でＰＣＲを行う。増幅されたＤＮＡの蛍光強度を測定することにより、本発明遺伝子の転写産物量を測定することができる。
解析対象である所望の遺伝子の転写産物量を測定しようとするコモンマーモセット由来の２種以上の被検試料から上記（１）ノーザンハイブリダイゼーション法に記載される方法と同様な方法によりｍＲＮＡを調製する。調製されたｍＲＮＡに、例えば、ＭＭＬＶ（東洋紡）等の逆転写酵素を添加し、反応緩衝液［50 mMトリス塩酸緩衝液（pH8.3）、3 mM MgCl2、75 mM KCl、10 mM DTT］中、0.5 mM dNTP及び25μg/mlオリゴｄＴ存在下で42℃、15分間〜1時間反応させることにより、前記ｍＲＮＡに対応するｃＤＮＡを調製する。尚、ｃＤＮＡ合成キット（タカラバイオ）を用いて対応するｃＤＮＡを調製してもよい。
調製されたｃＤＮＡを鋳型にして、所望の遺伝子の塩基配列の一部分からなるＤＮＡをプライマーとしたＰＣＲを行う。ＰＣＲに用いられるプライマーは、市販の遺伝子解析ソフト、例えば、ＤＮＡＳＩＳ（日立ソフトウエア社製）等を用いて設計すればよい。例えば、約15塩基から約50塩基程度の長さのオリゴヌクレオチドであって、不必要な二次構造を形成しにくく当該遺伝子に対して特異性の高い塩基配列を有するプライマー等を用いることができる。ＰＣＲの条件としては、例えば、Ex taq（タカラバイオ）を使用し、反応緩衝液［10 mMトリス塩酸緩衝液（pH8.3）、50 mM KCl，1.5 mM MgCl2］中、2.5 mM dNTP及び［α32P］-dCTP存在下で、例えば、94℃，30秒間次いで40℃〜60℃，2分間さらに72℃，2分間の保温を1サイクルとしてこれを25〜55サイクル行う条件を挙げることができる。増幅されたDNAをポリアクリルアミドゲル電気泳動に供し、分離されたＤＮＡの放射線強度を測定することにより、当該遺伝子の転写産物量を測定することができる。
また、例えば、Ex taq（タカラバイオ）を使用し、反応緩衝液［10 mMトリス塩酸緩衝液（pH8.3）、50 mM KCl，1.5 mM MgCl2］中、SYBR Green PCR Reagents (アプライドバイオシステムズ社) 25μlを含む50μlの反応液を調製し、ABI7700(アプライドバイオシステムズ社)を用いて、50℃，2分間次いで95℃，10分間の保温の後、95℃，15秒間次いで60℃，1分間の保温を１サイクルとしてこれを40サイクル実施する条件でＰＣＲを行う。増幅されたＤＮＡの蛍光強度を測定することにより、当該遺伝子の転写産物量を測定することができる。
また、当該ｃＤＮＡを鋳型にして、本発明ポリヌクレオチドをプライマーとしてＰＣＲを行う。当該ＰＣＲは所望の遺伝子の転写産物量を測定する目的のためのＰＣＲと同時点又は別時点のいずれの時期でもかまわないが、同時点が望ましい。
ＰＣＲに用いられるプライマーとしては、市販の遺伝子解析ソフト、例えば、ＤＮＡＳＩＳ（日立ソフトウエア社製）等を用いて設計すればよい。例えば、約15塩基〜約50塩基程度の長さのオリゴヌクレオチドであって、不必要な二次構造を形成しにくく当該遺伝子に対して特異性の高い塩基配列を有するプライマー等を用いることができる。ＰＣＲの条件としては、所望の遺伝子の転写産物量を測定するために用いられた条件と同一な条件であることが好ましい。例えば、Ex taq（タカラバイオ）を使用し、反応緩衝液［10 mMトリス塩酸緩衝液（pH8.3）、50 mM KCl，1.5 mM MgCl2］中、2.5 mM dNTP及び［α32P］-dCTP存在下で、例えば、94℃，30秒間次いで40℃〜60℃，2分間さらに72℃，2分間の保温を1サイクルとしてこれを25〜55サイクル行う条件を挙げることができる。増幅されたDNAをポリアクリルアミドゲル電気泳動に供し、分離されたＤＮＡの放射線強度を測定することにより、本発明遺伝子の転写産物量を測定することができる。また、例えば、Ex taq（タカラバイオ）を使用し、反応緩衝液［10 mMトリス塩酸緩衝液（pH8.3）、50 mM KCl，1.5 mM MgCl2］中、SYBR Green PCR Reagents (アプライドバイオシステムズ社) 25μlを含む50μlの反応液を調製し、ABI7700(アプライドバイオシステムズ社)を用いて、50℃，2分間次いで95℃，10分間の保温の後、95℃，15秒間次いで60℃，1分間の保温を１サイクルとしてこれを40サイクル実施する条件でＰＣＲを行う。増幅されたＤＮＡの蛍光強度を測定することにより、本発明遺伝子の転写産物量を測定することができる。
（３） ＤＮＡアレイ解析
被検試料における、解析対象である所望の遺伝子の転写産物量及び本発明遺伝子の転写産物量を測定するには、通常の技術に基づいたＤＮＡアレイを用いて行えばよい。このようなＤＮＡアレイは、メンブレンフィルター、スライドガラス等の固体基板の表面に数十個から数万個のＤＮＡプローブがアレイ状に配置されたものである。これを用いることにより、被検試料における所望の遺伝子の発現の有無及びその発現量を一度に調べることができる。ここで用いられるＤＮＡプローブとしては、上記（１）のノーザンハイブリダイゼーション法に使用されるものと同様、特定の塩基配列を有する遺伝子に特異的にハイブリダイズし、当該遺伝子の発現の有無及びその発現量を測定する目的で用いられるＤＮＡ断片である。ＤＮＡアレイは、固体基板の表面に配置されたＤＮＡプローブの数により、おおよそ数個から数百個までのＤＮＡプローブが配置されたＤＮＡアレイ及びそれ以上の数のＤＮＡプローブが配置されたＤＮＡアレイの２種類に大別されるが、ここでは両者を含むものである。
本発明で用いられるＤＮＡアレイは、例えば、ゲノム機能研究プロトコール 実験医学別冊（羊土社刊）等に記載された方法に準じて製造することができる。また、ＤＮＡプローブが有する塩基配列の情報を基にづき、Fodor, S. P.A. et al., Science, 251, 767 (1991) に記載されたように、固体基板の上に塩基を順次添加して化学合成させてゆくことにより、ＤＮＡアレイを直接的に製造することも可能である。ＤＮＡアレイの製造法の詳細については、例えば、上記の通りである。
被検試料における、解析対象である所望の遺伝子の転写産物量及び本発明遺伝子の転写産物量を測定するには、通常の技術に基づいたＤＮＡアレイを用いて行えばよい。このようなＤＮＡアレイは、メンブレンフィルター、スライドガラス等の固体基板の表面に数十個から数万個のＤＮＡプローブがアレイ状に配置されたものである。これを用いることにより、被検試料における所望の遺伝子の発現の有無及びその発現量を一度に調べることができる。ここで用いられるＤＮＡプローブとしては、上記（１）のノーザンハイブリダイゼーション法に使用されるものと同様、特定の塩基配列を有する遺伝子に特異的にハイブリダイズし、当該遺伝子の発現の有無及びその発現量を測定する目的で用いられるＤＮＡ断片である。ＤＮＡアレイは、固体基板の表面に配置されたＤＮＡプローブの数により、おおよそ数個から数百個までのＤＮＡプローブが配置されたＤＮＡアレイ及びそれ以上の数のＤＮＡプローブが配置されたＤＮＡアレイの２種類に大別されるが、ここでは両者を含むものである。
本発明で用いられるＤＮＡアレイは、例えば、ゲノム機能研究プロトコール 実験医学別冊（羊土社刊）等に記載された方法に準じて製造することができる。また、ＤＮＡプローブが有する塩基配列の情報を基にづき、Fodor, S. P.A. et al., Science, 251, 767 (1991) に記載されたように、固体基板の上に塩基を順次添加して化学合成させてゆくことにより、ＤＮＡアレイを直接的に製造することも可能である。ＤＮＡアレイの製造法の詳細については、例えば、上記の通りである。
以下、ＤＮＡアレイを用いて本発明遺伝子等の転写産物量を測定する方法の一例を示す。
（３−１） ＤＮＡマクロアレイによる定量（その１）
解析対象である所望の遺伝子の転写産物量を測定しようとする被検試料から上記（１）のノーザンハイブリダイゼーション法に記載される方法と同様な方法により、ｍＲＮＡを調製する。調製されたｍＲＮＡに、例えば、MMTV（東洋紡）等の逆転写酵素を添加し、反応緩衝液［例えば、50 mMトリス塩酸緩衝液（pH8.3）、3 mM MgCl2、75 mM KCl及び10 mM DTTを含む液］中、0.5 mM dNT［α32P］-dCTP、P及び25μg/mlオリゴｄＴ存在下で、42℃、15分間〜1時間反応させることにより、標識ｃＤＮＡを調製する。このとき、ｃDNA合成キット（タカラバイオ）等を用いてもよい。解析対象である所望の遺伝子、本発明遺伝子又は本発明完全長ｃＤＮＡの塩基配列の全て又は一部に一致する塩基配列を有するＤＮＡプローブをメンブレンフィルター上にスポットして作製されたＤＮＡアレイをポリエチレン袋に入れ、ハイブリダイゼーションバッファー〔6×SSC（0.9M NaCl、0.21Mクエン酸ナトリウム）、5×デンハルト溶液［0.1％(w/v)フィコール400、0.1％(w/v)ポリビニルピロリドン、0.１％BSA］、0.１％(w/v)SDS，100μg/ml変性サケ精子DNA、50％ホルムアミド〕25 mlを加えて、50℃、2時間インキュベートした後、ハイブリダイゼーションバッファーを除去し、新たに2 ml〜6 mlのハイブリダイゼーションバッファーを添加する。更に、これに上記のＤＮＡプローブを加え、50℃、一晩インキュベートする。ハイブリダイゼーションバッファーとしては、上記のほかに、市販のDIG EASY Hyb (ロシュダイアグノースティク社)等を用いることもできる。ハイブリダイゼーション後、ＤＮＡアレイを取り出して、これを50 ml〜100 mlの２×SSC、0.1%SDSに浸した後、室温で１５分間程度インキュベートする。さらに同じ操作を1回繰り返し行い、最後に50 ml〜100 mlの0.1×SSC、0.1％SDS中、68℃、30分間インキュベートする。次いで、ＤＮＡアレイ上の標識量を測定することにより、解析対象である所望の遺伝子及び本発明遺伝子の転写産物量を測定することができる。
（３−１） ＤＮＡマクロアレイによる定量（その１）
解析対象である所望の遺伝子の転写産物量を測定しようとする被検試料から上記（１）のノーザンハイブリダイゼーション法に記載される方法と同様な方法により、ｍＲＮＡを調製する。調製されたｍＲＮＡに、例えば、MMTV（東洋紡）等の逆転写酵素を添加し、反応緩衝液［例えば、50 mMトリス塩酸緩衝液（pH8.3）、3 mM MgCl2、75 mM KCl及び10 mM DTTを含む液］中、0.5 mM dNT［α32P］-dCTP、P及び25μg/mlオリゴｄＴ存在下で、42℃、15分間〜1時間反応させることにより、標識ｃＤＮＡを調製する。このとき、ｃDNA合成キット（タカラバイオ）等を用いてもよい。解析対象である所望の遺伝子、本発明遺伝子又は本発明完全長ｃＤＮＡの塩基配列の全て又は一部に一致する塩基配列を有するＤＮＡプローブをメンブレンフィルター上にスポットして作製されたＤＮＡアレイをポリエチレン袋に入れ、ハイブリダイゼーションバッファー〔6×SSC（0.9M NaCl、0.21Mクエン酸ナトリウム）、5×デンハルト溶液［0.1％(w/v)フィコール400、0.1％(w/v)ポリビニルピロリドン、0.１％BSA］、0.１％(w/v)SDS，100μg/ml変性サケ精子DNA、50％ホルムアミド〕25 mlを加えて、50℃、2時間インキュベートした後、ハイブリダイゼーションバッファーを除去し、新たに2 ml〜6 mlのハイブリダイゼーションバッファーを添加する。更に、これに上記のＤＮＡプローブを加え、50℃、一晩インキュベートする。ハイブリダイゼーションバッファーとしては、上記のほかに、市販のDIG EASY Hyb (ロシュダイアグノースティク社)等を用いることもできる。ハイブリダイゼーション後、ＤＮＡアレイを取り出して、これを50 ml〜100 mlの２×SSC、0.1%SDSに浸した後、室温で１５分間程度インキュベートする。さらに同じ操作を1回繰り返し行い、最後に50 ml〜100 mlの0.1×SSC、0.1％SDS中、68℃、30分間インキュベートする。次いで、ＤＮＡアレイ上の標識量を測定することにより、解析対象である所望の遺伝子及び本発明遺伝子の転写産物量を測定することができる。
（３−２） ＤＮＡマイクロアレイによる定量（その２）
解析対象である所望の遺伝子の転写産物量を測定しようとする被検試料から上記（１）のノーザンハイブリダイゼーション法に記載される方法と同様な方法により、ｍＲＮＡを調製する。調製されたｍＲＮＡに、例えば、MMTV（東洋紡）等の逆転写酵素を添加し、反応緩衝液［例えば、50mMトリス塩酸緩衝液（pH8.3）、3mM MgCl2、75mM KCl及び10mM DTTを含む液］中、0.5mM ｄＮＴＰ、Cy3-dUTP（又はCy5-dUTP）及び25μg/mlオリゴｄＴ存在下で、42℃、15分間〜１時間反応させる。これにアルカリバッファー（例えば、１N NaOH、20mM EDTAを含む液）を加え、65℃10分間保温した後、Qiaquick PCR Purification kit (キアゲン社)等を用いて遊離のCy3又はCy5を除くことにより、蛍光標識ＤＮＡを調製する。調製された蛍光標識ＤＮＡを、ＤＮＡアレイに対して、上記（３−１）のＤＮＡアレイによる定量（その１）に記載された方法と同様な方法により、ハイブリダイゼーションを行う。ＤＮＡアレイ上の標識量をスキャナー等で測定することにより、解析対象である所望の遺伝子及び本発明遺伝子の転写産物量を測定することができる。
解析対象である所望の遺伝子の転写産物量を測定しようとする被検試料から上記（１）のノーザンハイブリダイゼーション法に記載される方法と同様な方法により、ｍＲＮＡを調製する。調製されたｍＲＮＡに、例えば、MMTV（東洋紡）等の逆転写酵素を添加し、反応緩衝液［例えば、50mMトリス塩酸緩衝液（pH8.3）、3mM MgCl2、75mM KCl及び10mM DTTを含む液］中、0.5mM ｄＮＴＰ、Cy3-dUTP（又はCy5-dUTP）及び25μg/mlオリゴｄＴ存在下で、42℃、15分間〜１時間反応させる。これにアルカリバッファー（例えば、１N NaOH、20mM EDTAを含む液）を加え、65℃10分間保温した後、Qiaquick PCR Purification kit (キアゲン社)等を用いて遊離のCy3又はCy5を除くことにより、蛍光標識ＤＮＡを調製する。調製された蛍光標識ＤＮＡを、ＤＮＡアレイに対して、上記（３−１）のＤＮＡアレイによる定量（その１）に記載された方法と同様な方法により、ハイブリダイゼーションを行う。ＤＮＡアレイ上の標識量をスキャナー等で測定することにより、解析対象である所望の遺伝子及び本発明遺伝子の転写産物量を測定することができる。
（４） インサイチューハイブリダイゼーション法
基本的には、（a）組織の固定、包埋及び切片の作製、（b）プローブの調製、（c）ハイブリダイゼーションによる検出からなり、予め放射性若しくは非放射性物質で標識されたＲＮＡ又はＤＮＡをプローブとすること以外は、例えば、Heiles, H. et al., Biotechniques, 6, 978, 1988、遺伝子工学ハンドブック 羊土社 278 1991、細胞工学ハンドブック、羊土社, 214, 1992、細胞工学ハンドブック、羊土社, 222, 1992等に記載される方法に準じて行うことができる。
ＲＮＡプローブを調製する場合には、まず、例えば、上記（１）のノーザンハイブリダイゼーション法に記載される方法と同様な方法により、解析対象である所望の遺伝子及び本発明遺伝子又は完全長ｃＤＮＡを取得し、当該ＤＮＡをSP6、T7、T3ＲＮＡポリメラーゼプロモーターを有するベクター（例えば、Stratagene社のBluescript、Promega社のpGEM等）に組み込んで大腸菌に導入することにより、プラスミドＤＮＡを調製する。次いで、センス（ネガティブコントロール用）、アンチセンス（ハイブリダイゼーション用）ＲＮＡができるようにプラスミドＤＮＡを制限酵素で切断する。両プラスミドＤＮＡを鋳型とし、放射性標識の場合にはα-35S-UTP等、非放射性標識の場合にはディゴキシゲニンUTP若しくはフルオレセイン修飾UTP等を基質として、SP6、T7、T3ＲＮＡポリメラーゼを用いてＲＮＡを合成しながら標識した後、アルカリ加水分解によりハイブリダイゼーションに適したサイズに切断することにより、予め放射性若しくは非放射性物質で標識されたＲＮＡを調製する。尚、これらの方法に基づいたキットとしては、例えば、放射性標識用にはＲＮＡラベリングキット（アマシャムバイオサイエンス社）が市販され、また非放射性標識用にはＤＩＧ ＲＮＡラベリングキット（ロシュダイアグノースティック社）、ＲＮＡカラーキット（アマシャムバイオサイエンス社）等が市販されている。また、ＤＮＡプローブを調製する場合には、例えば、32Ｐ等で標識された放射性ヌクレオチド若しくはビオチン、ディゴキシゲニン或いはフルオレセインで標識されたヌクレオチドを、ニックトランスレーション法[Sambrook, J. et al., Molecular Cloning: A laboratory Manual 3rd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001)]又はランダムプライム法[Feinberg, A. P., B. Vogelstein, Anal. Biochem., 132, 6 (1083), Feinberg, A. P., B. Vogelstein, Anal. Biochem., 137, 266 (1984)]によって取り込ませることにより、予め放射性若しくは非放射性物質で標識されたＤＮＡを調製する。これらの方法に基づいたキットとしては、例えば、放射性標識用にはニックトランスレーションキット（アマシャムバイオサイエンス社）、Random Prime Labeling Kit（ロシュダイアグノースティック社）が市販され、また非放射性標識用にはDIG DNA標識キット（ロシュダイアグノースティック社）、ＤＮＡカラーキット（アマシャムバイオサイエンス社）等が市販されている。
具体的には、解析対象である所望の遺伝子及び本発明遺伝子の転写産物量を測定しようとする被検試料をパラホルムアルデヒド等で固定し、パラフィン等に包埋した後、薄切切片を作製し、これをスライドグラスに張り付ける。また、当該被検試料を液体窒素中にて凍結させ、その微小薄層切片を作製し、これをスライドグラスに張り付ける。このようにしてスライドグラス切片を得る。
次に、当該被検試料の中に存在しかつ使用されるプローブと非特異的に反応する物質を除去するために、上記のようにして作製されたスライドグラス切片をプロテイナーゼＫで処理し、アセチル化する。次いで、当該スライドグラス切片と上記のようにして調製されたプローブとのハイブリダイゼーションを行う。例えば、上記のプローブを90℃、3分間加熱した後、これをハイブリダイゼーション溶液で希釈して得られる溶液を前記のスライドグラス切片の上に滴下する。滴下後、当該スライドグラス切片をフィルムで覆い、モイスチャーチャンバー中で、45℃、16時間保温することにより、ハイブリッドを形成させる。ハイブリダイゼーション後、非特異的吸着又は未反応のプローブを洗浄すること等（ＲＮＡプローブを用いた場合には、ＲＮａｓｅ処理も加える。）により除去する。スライドグラス切片の上の標識量を測定することにより、解析対象である所望の遺伝子及び本発明遺伝子の転写産物量を測定することができる。
基本的には、（a）組織の固定、包埋及び切片の作製、（b）プローブの調製、（c）ハイブリダイゼーションによる検出からなり、予め放射性若しくは非放射性物質で標識されたＲＮＡ又はＤＮＡをプローブとすること以外は、例えば、Heiles, H. et al., Biotechniques, 6, 978, 1988、遺伝子工学ハンドブック 羊土社 278 1991、細胞工学ハンドブック、羊土社, 214, 1992、細胞工学ハンドブック、羊土社, 222, 1992等に記載される方法に準じて行うことができる。
ＲＮＡプローブを調製する場合には、まず、例えば、上記（１）のノーザンハイブリダイゼーション法に記載される方法と同様な方法により、解析対象である所望の遺伝子及び本発明遺伝子又は完全長ｃＤＮＡを取得し、当該ＤＮＡをSP6、T7、T3ＲＮＡポリメラーゼプロモーターを有するベクター（例えば、Stratagene社のBluescript、Promega社のpGEM等）に組み込んで大腸菌に導入することにより、プラスミドＤＮＡを調製する。次いで、センス（ネガティブコントロール用）、アンチセンス（ハイブリダイゼーション用）ＲＮＡができるようにプラスミドＤＮＡを制限酵素で切断する。両プラスミドＤＮＡを鋳型とし、放射性標識の場合にはα-35S-UTP等、非放射性標識の場合にはディゴキシゲニンUTP若しくはフルオレセイン修飾UTP等を基質として、SP6、T7、T3ＲＮＡポリメラーゼを用いてＲＮＡを合成しながら標識した後、アルカリ加水分解によりハイブリダイゼーションに適したサイズに切断することにより、予め放射性若しくは非放射性物質で標識されたＲＮＡを調製する。尚、これらの方法に基づいたキットとしては、例えば、放射性標識用にはＲＮＡラベリングキット（アマシャムバイオサイエンス社）が市販され、また非放射性標識用にはＤＩＧ ＲＮＡラベリングキット（ロシュダイアグノースティック社）、ＲＮＡカラーキット（アマシャムバイオサイエンス社）等が市販されている。また、ＤＮＡプローブを調製する場合には、例えば、32Ｐ等で標識された放射性ヌクレオチド若しくはビオチン、ディゴキシゲニン或いはフルオレセインで標識されたヌクレオチドを、ニックトランスレーション法[Sambrook, J. et al., Molecular Cloning: A laboratory Manual 3rd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001)]又はランダムプライム法[Feinberg, A. P., B. Vogelstein, Anal. Biochem., 132, 6 (1083), Feinberg, A. P., B. Vogelstein, Anal. Biochem., 137, 266 (1984)]によって取り込ませることにより、予め放射性若しくは非放射性物質で標識されたＤＮＡを調製する。これらの方法に基づいたキットとしては、例えば、放射性標識用にはニックトランスレーションキット（アマシャムバイオサイエンス社）、Random Prime Labeling Kit（ロシュダイアグノースティック社）が市販され、また非放射性標識用にはDIG DNA標識キット（ロシュダイアグノースティック社）、ＤＮＡカラーキット（アマシャムバイオサイエンス社）等が市販されている。
具体的には、解析対象である所望の遺伝子及び本発明遺伝子の転写産物量を測定しようとする被検試料をパラホルムアルデヒド等で固定し、パラフィン等に包埋した後、薄切切片を作製し、これをスライドグラスに張り付ける。また、当該被検試料を液体窒素中にて凍結させ、その微小薄層切片を作製し、これをスライドグラスに張り付ける。このようにしてスライドグラス切片を得る。
次に、当該被検試料の中に存在しかつ使用されるプローブと非特異的に反応する物質を除去するために、上記のようにして作製されたスライドグラス切片をプロテイナーゼＫで処理し、アセチル化する。次いで、当該スライドグラス切片と上記のようにして調製されたプローブとのハイブリダイゼーションを行う。例えば、上記のプローブを90℃、3分間加熱した後、これをハイブリダイゼーション溶液で希釈して得られる溶液を前記のスライドグラス切片の上に滴下する。滴下後、当該スライドグラス切片をフィルムで覆い、モイスチャーチャンバー中で、45℃、16時間保温することにより、ハイブリッドを形成させる。ハイブリダイゼーション後、非特異的吸着又は未反応のプローブを洗浄すること等（ＲＮＡプローブを用いた場合には、ＲＮａｓｅ処理も加える。）により除去する。スライドグラス切片の上の標識量を測定することにより、解析対象である所望の遺伝子及び本発明遺伝子の転写産物量を測定することができる。
次に、本発明測定方法における第三工程では、２種類以上の被検試料における各被検試料において、任意の被検試料において第一工程により測定されたベータアクチン遺伝子の転写産物量に対する、他の被検試料において第一工程により測定されたベータアクチン遺伝子の転写産物量の相対比を算出する。
具体的には例えば、測定を行った被検試料がn個であり、x番目 (x≦n)の被検試料におけるコモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子の転写産物量をSxとし、i番目（i≦n）の被検試料におけるコモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子の転写産物量をSiとし、当該Siを基準として算出する場合には、その相対比Cxは下記の式で表される。
Cx＝Si/Sx
ここで「任意の被検試料」とは、測定を行った被検試料のうちのどの被験試料であってもかまわないが、対照となるような被検試料を測定に用いた場合にはそれを用いることが好ましい。
具体的には例えば、測定を行った被検試料がn個であり、x番目 (x≦n)の被検試料におけるコモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子の転写産物量をSxとし、i番目（i≦n）の被検試料におけるコモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子の転写産物量をSiとし、当該Siを基準として算出する場合には、その相対比Cxは下記の式で表される。
Cx＝Si/Sx
ここで「任意の被検試料」とは、測定を行った被検試料のうちのどの被験試料であってもかまわないが、対照となるような被検試料を測定に用いた場合にはそれを用いることが好ましい。
本発明測定方法における第四工程では、第ニ工程により測定された所望の遺伝子の転写産物量に第三工程により算出された相対比を乗じることにより、２種類以上の被検試料における各被検試料での第ニ工程により測定された所望の遺伝子の転写産物量を補正する。
具体的には例えば、測定を行った被検試料がn個であり、x番目 (x≦n)の被検試料における解析対象である所望の遺伝子の転写産物量をTxとし、上記の第三工程により算出されたi番目（i≦n）の被検試料に対するx番目の被検試料におけるコモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子の転写産物量の相対比をCxとし、i番目の被検試料ベータアクチン遺伝子の転写産物量を基準として算出する場合には、当該工程により補正された解析対象である所望の遺伝子の転写産物量ATxは下記の式で表される。
ATx＝Tx・Cx
具体的には例えば、測定を行った被検試料がn個であり、x番目 (x≦n)の被検試料における解析対象である所望の遺伝子の転写産物量をTxとし、上記の第三工程により算出されたi番目（i≦n）の被検試料に対するx番目の被検試料におけるコモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子の転写産物量の相対比をCxとし、i番目の被検試料ベータアクチン遺伝子の転写産物量を基準として算出する場合には、当該工程により補正された解析対象である所望の遺伝子の転写産物量ATxは下記の式で表される。
ATx＝Tx・Cx
以下の実施例により、本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの特定の実施例により限定されるものではない。
実施例１（コモンマーモセットベータアクチン遺伝子のクローニング）
（１）全ＲＮＡの調製
コモンマーモセット（日本クレア社より入手）の肝臓から全ＲＮＡの抽出を行った。
47ヶ月齢の雄コモンマーモセットを解剖し、肝臓を摘出した後、摘出された肝臓をピンセットとハサミとを用いて細分化した後、これを直ちにRNAlater（アンビオン社）に浸漬し、一晩室温で静置した後、使用直前まで−20℃にて保存した。保存された肝臓組織の湿重量1gに対して10mlのTRIZOL試薬(インビトロジェン社製)を加え、氷冷しながらポリトロンホモジナイザーにてホモジナイズし、５分間室温で放置した。次いで、これを遠心分離（4℃、9,000rpm、10分間）した後、水層を50ml遠心チューブ（旭テクノグラス社製）に回収した。回収された水層にTRIZOL試薬の1/5容量のクロロホルム（関東化学製）を添加した後、得られた混合物を15秒間上下に激しく撹拌した後、5分間室温で放置した。次いで、これを遠心分離（4℃、9,000rpm、10分間）した後、水層を新しい50ml遠心チューブに回収した。回収された水層にTRIZOL試薬の1/2容量の2-プロパノール（関東化学製）を添加した。得られた混合物を転倒混和した後、室温で10分間静置した。静置後、これを遠心分離（4℃、9,000rpm、10分間）した後、上清を除去することにより、ＲＮＡのペレットを得た。得られたペレットを、1 mlのDEPC処理滅菌蒸留水（ナカライテスク製）で溶解した。このようにして得られたＲＮＡ溶液1 mlにRNeasy Midi Kit(キアゲン社製)添付のRLT buffer (10μl β−メルカプトエタノール/mL RLT buffer) 3.8 mlを添加し、混合した。更に、当該混合物に2.8 ml エタノール(関東化学製)を添加し、混合した。当該混合液を等量に分割した後、これをRNeasy Midi Kit添付のRNeasy Spin Column 2本にアプライし、遠心分離（室温、10,000rpm、15秒間）した。遠心分離後、溶出液を再度同じRNeasy Spin Columnにアプライし、遠心分離（室温、10,000rpm、15秒間）した。遠心分離後、溶出液を捨て、エタノールで4倍希釈されたRNeasy Midi Kit添付のRPE bufferをそれぞれ2.5 mlアプライし、遠心分離（室温、10,000rpm、15秒間）した。遠心分離後、再び溶出液を捨て、エタノールで希釈されたRPE bufferをそれぞれ2.5 mlアプライし、遠心分離（室温、14,000rpm、2分間）した。遠心分離後、カラムを新しいエッペンドルフチューブに移してRNeasy Midi Kit添付の蒸留水をそれぞれ0.25 ml添加し、1分間室温で静置した。静置後、これを遠心分離（室温、10,000rpm、1分間）することにより、その溶出物として全RNAを得た。
（１）全ＲＮＡの調製
コモンマーモセット（日本クレア社より入手）の肝臓から全ＲＮＡの抽出を行った。
47ヶ月齢の雄コモンマーモセットを解剖し、肝臓を摘出した後、摘出された肝臓をピンセットとハサミとを用いて細分化した後、これを直ちにRNAlater（アンビオン社）に浸漬し、一晩室温で静置した後、使用直前まで−20℃にて保存した。保存された肝臓組織の湿重量1gに対して10mlのTRIZOL試薬(インビトロジェン社製)を加え、氷冷しながらポリトロンホモジナイザーにてホモジナイズし、５分間室温で放置した。次いで、これを遠心分離（4℃、9,000rpm、10分間）した後、水層を50ml遠心チューブ（旭テクノグラス社製）に回収した。回収された水層にTRIZOL試薬の1/5容量のクロロホルム（関東化学製）を添加した後、得られた混合物を15秒間上下に激しく撹拌した後、5分間室温で放置した。次いで、これを遠心分離（4℃、9,000rpm、10分間）した後、水層を新しい50ml遠心チューブに回収した。回収された水層にTRIZOL試薬の1/2容量の2-プロパノール（関東化学製）を添加した。得られた混合物を転倒混和した後、室温で10分間静置した。静置後、これを遠心分離（4℃、9,000rpm、10分間）した後、上清を除去することにより、ＲＮＡのペレットを得た。得られたペレットを、1 mlのDEPC処理滅菌蒸留水（ナカライテスク製）で溶解した。このようにして得られたＲＮＡ溶液1 mlにRNeasy Midi Kit(キアゲン社製)添付のRLT buffer (10μl β−メルカプトエタノール/mL RLT buffer) 3.8 mlを添加し、混合した。更に、当該混合物に2.8 ml エタノール(関東化学製)を添加し、混合した。当該混合液を等量に分割した後、これをRNeasy Midi Kit添付のRNeasy Spin Column 2本にアプライし、遠心分離（室温、10,000rpm、15秒間）した。遠心分離後、溶出液を再度同じRNeasy Spin Columnにアプライし、遠心分離（室温、10,000rpm、15秒間）した。遠心分離後、溶出液を捨て、エタノールで4倍希釈されたRNeasy Midi Kit添付のRPE bufferをそれぞれ2.5 mlアプライし、遠心分離（室温、10,000rpm、15秒間）した。遠心分離後、再び溶出液を捨て、エタノールで希釈されたRPE bufferをそれぞれ2.5 mlアプライし、遠心分離（室温、14,000rpm、2分間）した。遠心分離後、カラムを新しいエッペンドルフチューブに移してRNeasy Midi Kit添付の蒸留水をそれぞれ0.25 ml添加し、1分間室温で静置した。静置後、これを遠心分離（室温、10,000rpm、1分間）することにより、その溶出物として全RNAを得た。
（２）ｃＤＮＡの調製
上記（１）で調製された全ＲＮＡ 7μg及びオリゴｄＴプライマー(アマシャムバイオサイエンス社製) 7μg を含む84μlの混合液を、70℃、10分間加熱した後、氷上で冷却した。冷却後、当該混合物にSuperScript II Choice System for cDNA Synthesis (インビトロジェン社製)に含まれる5×First Strand cDNA Buffer 56μl、当該キットに含まれる0.1M DTT 28μl及び当該キットに含まれる10mM dNTPMix 14μl及び当該キットに含まれるSuper ScriptII RT 14μlを添加した後、42℃、1時間加熱し、さらに75℃、15分間加熱した後、当該混合物を氷上で冷却することにより、ｃＤＮＡを得た。このようにして得られたｃＤＮＡは、冷却後使用時まで−20℃で保存された。
上記（１）で調製された全ＲＮＡ 7μg及びオリゴｄＴプライマー(アマシャムバイオサイエンス社製) 7μg を含む84μlの混合液を、70℃、10分間加熱した後、氷上で冷却した。冷却後、当該混合物にSuperScript II Choice System for cDNA Synthesis (インビトロジェン社製)に含まれる5×First Strand cDNA Buffer 56μl、当該キットに含まれる0.1M DTT 28μl及び当該キットに含まれる10mM dNTPMix 14μl及び当該キットに含まれるSuper ScriptII RT 14μlを添加した後、42℃、1時間加熱し、さらに75℃、15分間加熱した後、当該混合物を氷上で冷却することにより、ｃＤＮＡを得た。このようにして得られたｃＤＮＡは、冷却後使用時まで−20℃で保存された。
（３）ＰＣＲ法による本発明遺伝子の増幅
上記で得られたｃＤＮＡを鋳型に用いて、配列番号４で示される塩基配列を有するフォワードプライマー、配列番号５で示される塩基配列を有するリバースプライマー及びEx Taqポリメラーゼ（タカラバイオ製）を用いてＰＣＲを行うことにより、増幅ＤＮＡを得た。尚、ＰＣＲの反応液組成は、上記のｃＤＮＡ 1μl、Ex taqポリメラーゼ（タカラバイオ社製）に添付された10xPCR緩衝液 5μl、Ex taqポリメラーゼ（タカラバイオ社製）に添付された2.5 mM dNTP 4μl、10μMの濃度の上記プライマーをそれぞれ1μl、Ex taqポリメラーゼ0.5μl及び滅菌精製水37.5μlとした。ＰＣＲ反応は、まず94℃で2分間加温した後、94℃で30秒間、次いで60℃で30秒間、次いで72℃で1分間の加温をサイクルとしてこれを30サイクル行う反応条件で実施された。更に、反応混合物を72℃で5分間加温した後、4℃で保存した。当該反応混合物から採取された5μlを、アガロースゲル電気泳動に供し、当該増幅ＤＮＡが単一であることを確認した後、当該増幅ＤＮＡのうち25μlをQiaquick PCR Purification Kit（キアゲン社製）を用いて精製し、30μlの滅菌精製水に回収した。回収された増幅ＤＮＡを含む溶液について、分光光度計を用いてOD260値を測定することにより、当該増幅ＤＮＡの量を定量したところ、25μg/mlであった。
上記で得られたｃＤＮＡを鋳型に用いて、配列番号４で示される塩基配列を有するフォワードプライマー、配列番号５で示される塩基配列を有するリバースプライマー及びEx Taqポリメラーゼ（タカラバイオ製）を用いてＰＣＲを行うことにより、増幅ＤＮＡを得た。尚、ＰＣＲの反応液組成は、上記のｃＤＮＡ 1μl、Ex taqポリメラーゼ（タカラバイオ社製）に添付された10xPCR緩衝液 5μl、Ex taqポリメラーゼ（タカラバイオ社製）に添付された2.5 mM dNTP 4μl、10μMの濃度の上記プライマーをそれぞれ1μl、Ex taqポリメラーゼ0.5μl及び滅菌精製水37.5μlとした。ＰＣＲ反応は、まず94℃で2分間加温した後、94℃で30秒間、次いで60℃で30秒間、次いで72℃で1分間の加温をサイクルとしてこれを30サイクル行う反応条件で実施された。更に、反応混合物を72℃で5分間加温した後、4℃で保存した。当該反応混合物から採取された5μlを、アガロースゲル電気泳動に供し、当該増幅ＤＮＡが単一であることを確認した後、当該増幅ＤＮＡのうち25μlをQiaquick PCR Purification Kit（キアゲン社製）を用いて精製し、30μlの滅菌精製水に回収した。回収された増幅ＤＮＡを含む溶液について、分光光度計を用いてOD260値を測定することにより、当該増幅ＤＮＡの量を定量したところ、25μg/mlであった。
（４）本発明遺伝子クローンの作製
上記（３）で得られた増幅ＤＮＡをＴＡベクターを用いてクローン化した。
当該増幅ＤＮＡを含む溶液1μlと50mg/mlのpGEM-Tベクター（プロメガ社製）1μlとを混合し、両者をＤＮＡライゲーションキットVer.2（タカラバイオ製）を用いて反応させた。得られた反応液を用いて大腸菌DH5αコンピテントセルを形質転換した。アンピシリン耐性、IPTG及びX-galを用いたベータガラクトシダーゼに対する染色性の欠如を指標にコロニーを採取した後、採取されたコロニーからプラスミドＤＮＡを調製した。調製されたプラスミドＤＮＡの塩基配列をABIモデル3700オートシークエンサー（アプライドバイオシステムズ社製）を用いてダイターミネーター法で決定した。シークエンシング用プライマーとしては、ＤＮＡ合成装置にて化学合成された配列番号８及び９で示された塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを使用した。得られた塩基配列に係るデータをDNA配列解析ソフトウエアDNASIS（日立ソフト社製）を用いて編集、整列化することにより、配列番号１で示された塩基配列を得た。このようにして得られた塩基配列を、BLAST法を用いて公的データベースであるNCBIの遺伝子配列に対して相同性検索を行ったところ、登録番号NM_001101であるヒトベータアクチンｍＲＮＡが有する塩基配列に相同性が高いことを見出し、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子であることを確認した。
上記（３）で得られた増幅ＤＮＡをＴＡベクターを用いてクローン化した。
当該増幅ＤＮＡを含む溶液1μlと50mg/mlのpGEM-Tベクター（プロメガ社製）1μlとを混合し、両者をＤＮＡライゲーションキットVer.2（タカラバイオ製）を用いて反応させた。得られた反応液を用いて大腸菌DH5αコンピテントセルを形質転換した。アンピシリン耐性、IPTG及びX-galを用いたベータガラクトシダーゼに対する染色性の欠如を指標にコロニーを採取した後、採取されたコロニーからプラスミドＤＮＡを調製した。調製されたプラスミドＤＮＡの塩基配列をABIモデル3700オートシークエンサー（アプライドバイオシステムズ社製）を用いてダイターミネーター法で決定した。シークエンシング用プライマーとしては、ＤＮＡ合成装置にて化学合成された配列番号８及び９で示された塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを使用した。得られた塩基配列に係るデータをDNA配列解析ソフトウエアDNASIS（日立ソフト社製）を用いて編集、整列化することにより、配列番号１で示された塩基配列を得た。このようにして得られた塩基配列を、BLAST法を用いて公的データベースであるNCBIの遺伝子配列に対して相同性検索を行ったところ、登録番号NM_001101であるヒトベータアクチンｍＲＮＡが有する塩基配列に相同性が高いことを見出し、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子であることを確認した。
（５）本発明遺伝子の３’-非翻訳領域を含むポリヌクレオチドの取得
上記で得られた本発明遺伝子の３’-非翻訳領域を含むポリヌクレオチドを取得するために、当該領域を含む本発明遺伝子クローンを、ＲＴ−ＰＣＲ法を用いて取得した。
上記（１）で調製された全ＲＮＡ 6μg及び配列番号６で示される塩基配列を有するプライマー1μg を含む20μlの混合液を、70℃、10分間加熱した後、氷上で冷却した。冷却後、当該混合物にSuperScript II Choice System for cDNA Synthesis (インビトロジェン社製)に含まれる5×First Strand cDNA Buffer 8μl、当該キットに含まれる0.1M DTT 4μl及び当該キットに含まれる10mM dNTPMix 2μl、DEPC処理水4μl及び当該キットに含まれるSuper ScriptII RT 2μlを添加した後、37℃、2時間加熱し、さらに75℃、5分間加熱した後、当該混合物を氷上で冷却することにより、ｃＤＮＡを得た。このようにして得られたｃＤＮＡを鋳型に用いて、配列番号４で示される塩基配列を有するフォワードプライマー、配列番号７で示される塩基配列を有するリバースプライマー及びEx Taqポリメラーゼ（タカラバイオ製）を用いて、上記（３）と同様の条件下でＰＣＲを行うことにより、増幅ＤＮＡを得た。上記（４）と同様にして、得られた増幅ＤＮＡをＴＡベクターを用いてクローン化後、塩基配列をABIモデル3700オートシークエンサー（アプライドバイオシステムズ社製）を用いてダイターミネーター法で決定した。シークエンシング用プライマーとしては、ＤＮＡ合成装置にて化学合成された配列番号８及び９で示された塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを使用した。得られた塩基配列を、BLAST法を用いて、配列番号１で示される上記（４）で取得した本発明遺伝子クローンの塩基配列に対して相同性検索を行ったところ、５‘−側の塩基配列が、配列番号１で示される上記（４）で取得した本発明遺伝子クローンの塩基配列と同等であったことから、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子であることを確認した。DNA配列解析ソフトウエアDNASIS（日立ソフト社製）を用いて、得られた塩基配列を、配列番号１で示される塩基配列と結合、整列化することにより、配列番号２で示された塩基配列を得た。このようにして得られた塩基配列を、BLAST法を用いて公的データベースであるNCBIの遺伝子配列に対して相同性検索を行ったところ、全長に亘って登録番号NM_0011101であるヒトベータアクチンｍＲＮＡが有する塩基配列に相同性が高いことを見出した。更に、３‘−端の塩基配列にｐｏｌｙＡ配列を有していることから、配列番号２で示される塩基配列は、３’-非翻訳領域を含むコモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子の塩基配列であることを確認した。
上記で得られた本発明遺伝子の３’-非翻訳領域を含むポリヌクレオチドを取得するために、当該領域を含む本発明遺伝子クローンを、ＲＴ−ＰＣＲ法を用いて取得した。
上記（１）で調製された全ＲＮＡ 6μg及び配列番号６で示される塩基配列を有するプライマー1μg を含む20μlの混合液を、70℃、10分間加熱した後、氷上で冷却した。冷却後、当該混合物にSuperScript II Choice System for cDNA Synthesis (インビトロジェン社製)に含まれる5×First Strand cDNA Buffer 8μl、当該キットに含まれる0.1M DTT 4μl及び当該キットに含まれる10mM dNTPMix 2μl、DEPC処理水4μl及び当該キットに含まれるSuper ScriptII RT 2μlを添加した後、37℃、2時間加熱し、さらに75℃、5分間加熱した後、当該混合物を氷上で冷却することにより、ｃＤＮＡを得た。このようにして得られたｃＤＮＡを鋳型に用いて、配列番号４で示される塩基配列を有するフォワードプライマー、配列番号７で示される塩基配列を有するリバースプライマー及びEx Taqポリメラーゼ（タカラバイオ製）を用いて、上記（３）と同様の条件下でＰＣＲを行うことにより、増幅ＤＮＡを得た。上記（４）と同様にして、得られた増幅ＤＮＡをＴＡベクターを用いてクローン化後、塩基配列をABIモデル3700オートシークエンサー（アプライドバイオシステムズ社製）を用いてダイターミネーター法で決定した。シークエンシング用プライマーとしては、ＤＮＡ合成装置にて化学合成された配列番号８及び９で示された塩基配列を有するオリゴヌクレオチドを使用した。得られた塩基配列を、BLAST法を用いて、配列番号１で示される上記（４）で取得した本発明遺伝子クローンの塩基配列に対して相同性検索を行ったところ、５‘−側の塩基配列が、配列番号１で示される上記（４）で取得した本発明遺伝子クローンの塩基配列と同等であったことから、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子であることを確認した。DNA配列解析ソフトウエアDNASIS（日立ソフト社製）を用いて、得られた塩基配列を、配列番号１で示される塩基配列と結合、整列化することにより、配列番号２で示された塩基配列を得た。このようにして得られた塩基配列を、BLAST法を用いて公的データベースであるNCBIの遺伝子配列に対して相同性検索を行ったところ、全長に亘って登録番号NM_0011101であるヒトベータアクチンｍＲＮＡが有する塩基配列に相同性が高いことを見出した。更に、３‘−端の塩基配列にｐｏｌｙＡ配列を有していることから、配列番号２で示される塩基配列は、３’-非翻訳領域を含むコモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子の塩基配列であることを確認した。
（６）ＲＴ−ＰＣＲ法を用いた本発明遺伝子の発現確認
上記（４）および（５）で取得した、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子の各組織における転写産物量を確認するために、種々の異なる個体や異なる種類の組織からＲＮＡを抽出し、ＲＴ−ＰＣＲ法を用いてｍＲＮＡの発現を調べた。
47〜132ヶ月齢の４匹のコモンマーモセット（日本クレア社より入手）より組織を摘出し、上記（１）に記載した方法を用いて全ＲＮＡを抽出した。抽出した組織は、肝臓、肺、心臓、骨格筋、脳及び腎臓（以上、個体番号１）、肝臓、心臓及び骨格筋（以上、個体番号２）、肝臓及び肺（以上、個体番号３）、脳（以上、個体番号４）の12種類である。次に、前記全ＲＮＡそれぞれ1μg及びd(T)12-18プライマー（アマシャムバイオサイエンス製）1μg を含む12μlの混合液を、70℃、10分間加熱した後、氷上で冷却した。冷却後、当該混合物にSuperScript II Choice System for cDNA Synthesis (インビトロジェン社製)に含まれる5×First Strand cDNA Buffer 4μl、当該キットに含まれる0.1M DTT 2μl及び当該キットに含まれる10mM dNTPMix 1μl及び当該キットに含まれるSuper ScriptII RT 1μlを添加した後、42℃、60分加熱し、さらに75℃、15分間加熱した後、当該混合物を4℃で冷却することにより、ｃＤＮＡを得た。
このようにして得られたｃＤＮＡに精製水80μlを添加し希釈した後、使用時まで−20℃で保存した。このようにして得られたｃＤＮＡを鋳型に用いて、配列番号１０で示される塩基配列を有するフォワードプライマー、配列番号１１で示される塩基配列を有するリバースプライマー及びEx Taqポリメラーゼ（タカラバイオ製）を用いてＲＴ−ＰＣＲを行った。尚、ＲＴ−ＰＣＲの反応液組成は、上記希釈後のｃＤＮＡ溶液を3μl、Ex taqポリメラーゼ（タカラバイオ社製）に添付された10xPCR緩衝液 3μl、Ex taqポリメラーゼ（タカラバイオ社製）に添付された2.5 mM dNTP 2.4μl、10μMの濃度の上記プライマーをそれぞれ0.6μl、Ex taqポリメラーゼ0.5μl及び滅菌精製水22.6μlとした。ＰＣＲ反応は、まず94℃で2分間加温した後、94℃で30秒間、次いで60℃で30秒間、次いで72℃で30秒間の加温をサイクルとしてこれを30サイクル行う反応条件で実施された。更に、反応混合物を72℃で5分間加温した後、4℃で保存した。当該反応混合物から採取された3μlを、エチジウムブロミドを含んだアガロースゲル電気泳動に供した。
その結果、図１に示すように、電気泳動に供した12種類のサンプルに均等の蛍光を発するバンドが検出された。この結果から、電気泳動に供した12種類のすべての組織において、個体や組織の種類に関わらずほぼ同量のベータアクチン遺伝子のｍＲＮＡが含まれていることが確認された。
上記（４）および（５）で取得した、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子の各組織における転写産物量を確認するために、種々の異なる個体や異なる種類の組織からＲＮＡを抽出し、ＲＴ−ＰＣＲ法を用いてｍＲＮＡの発現を調べた。
47〜132ヶ月齢の４匹のコモンマーモセット（日本クレア社より入手）より組織を摘出し、上記（１）に記載した方法を用いて全ＲＮＡを抽出した。抽出した組織は、肝臓、肺、心臓、骨格筋、脳及び腎臓（以上、個体番号１）、肝臓、心臓及び骨格筋（以上、個体番号２）、肝臓及び肺（以上、個体番号３）、脳（以上、個体番号４）の12種類である。次に、前記全ＲＮＡそれぞれ1μg及びd(T)12-18プライマー（アマシャムバイオサイエンス製）1μg を含む12μlの混合液を、70℃、10分間加熱した後、氷上で冷却した。冷却後、当該混合物にSuperScript II Choice System for cDNA Synthesis (インビトロジェン社製)に含まれる5×First Strand cDNA Buffer 4μl、当該キットに含まれる0.1M DTT 2μl及び当該キットに含まれる10mM dNTPMix 1μl及び当該キットに含まれるSuper ScriptII RT 1μlを添加した後、42℃、60分加熱し、さらに75℃、15分間加熱した後、当該混合物を4℃で冷却することにより、ｃＤＮＡを得た。
このようにして得られたｃＤＮＡに精製水80μlを添加し希釈した後、使用時まで−20℃で保存した。このようにして得られたｃＤＮＡを鋳型に用いて、配列番号１０で示される塩基配列を有するフォワードプライマー、配列番号１１で示される塩基配列を有するリバースプライマー及びEx Taqポリメラーゼ（タカラバイオ製）を用いてＲＴ−ＰＣＲを行った。尚、ＲＴ−ＰＣＲの反応液組成は、上記希釈後のｃＤＮＡ溶液を3μl、Ex taqポリメラーゼ（タカラバイオ社製）に添付された10xPCR緩衝液 3μl、Ex taqポリメラーゼ（タカラバイオ社製）に添付された2.5 mM dNTP 2.4μl、10μMの濃度の上記プライマーをそれぞれ0.6μl、Ex taqポリメラーゼ0.5μl及び滅菌精製水22.6μlとした。ＰＣＲ反応は、まず94℃で2分間加温した後、94℃で30秒間、次いで60℃で30秒間、次いで72℃で30秒間の加温をサイクルとしてこれを30サイクル行う反応条件で実施された。更に、反応混合物を72℃で5分間加温した後、4℃で保存した。当該反応混合物から採取された3μlを、エチジウムブロミドを含んだアガロースゲル電気泳動に供した。
その結果、図１に示すように、電気泳動に供した12種類のサンプルに均等の蛍光を発するバンドが検出された。この結果から、電気泳動に供した12種類のすべての組織において、個体や組織の種類に関わらずほぼ同量のベータアクチン遺伝子のｍＲＮＡが含まれていることが確認された。
本発明により、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子及びその利用等が提供可能となる。
配列番号1
コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子
配列番号2
ポリＡ領域を含むコモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子
配列番号3
コモンマーモセット由来のベータアクチン
配列番号4
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号5
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号6
ｃＤＮＡ合成のために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号7
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号8
ＤＮＡ塩基配列決定のために用いたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号9
ＤＮＡ塩基配列決定のために用いたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号10
ＲＴ−ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号11
ＲＴ−ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子
配列番号2
ポリＡ領域を含むコモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子
配列番号3
コモンマーモセット由来のベータアクチン
配列番号4
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号5
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号6
ｃＤＮＡ合成のために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号7
ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号8
ＤＮＡ塩基配列決定のために用いたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号9
ＤＮＡ塩基配列決定のために用いたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号10
ＲＴ−ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
配列番号11
ＲＴ−ＰＣＲのために設計されたオリゴヌクレオチドプライマー
Claims (10)
- コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子。
- コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子又はその部分断片であって、下記のいずれかの塩基配列を有することを特徴とするポリヌクレオチド。
（１）配列番号１で示される塩基配列
（２）配列番号２で示される塩基配列
（３）配列番号３で示されるアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列をコードする塩基配列
（４）配列番号１で示される塩基配列に対して、95％以上の塩基同一性を有する塩基配列
（５）配列番号２で示される塩基配列に対して、95％以上の塩基同一性を有する塩基配列
（６）配列番号３で示されるアミノ酸配列に対して、95％以上のアミノ酸同一性を有するアミノ酸配列をコードする塩基配列
（７）前項（１）乃至（６）記載のいずれかの塩基配列を有し、かつ、５’キャップからポリＡ配列までの領域を含む成熟ｍＲＮＡに対して相補的なＤＮＡの塩基配列
（８）ベータアクチンのアミノ酸配列をコードする塩基配列
（９）前項（１）乃至（８）記載のいずれかの塩基配列に対して相補的な塩基配列
（１０）前項（１）乃至（９）記載のいずれかの塩基配列における部分塩基配列 - 下記のいずれかの塩基配列からなることを特徴とするポリヌクレオチド。
（１）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列
（２）配列番号２で示される塩基配列の塩基番号１１２６から１７２５で表される塩基配列で指定される領域の中から選ばれる、連続する任意の、塩基長２０〜６０を有する塩基配列
（３）前項（１）又は（２）記載のいずれかの塩基配列に対して相補的な塩基配列 - DNA又はRNAを検出のための組成物であって、請求項２又は３記載のポリヌクレオチドを含有することを特徴とする組成物。
- 請求項２又は３記載のポリヌクレオチドが担体上に固定化されてなることを特徴とする請求項４記載の組成物。
- ２種類以上の被検試料における所望の遺伝子の発現量の差異を、当該遺伝子の転写産物量の差異として測定する際に、前記転写産物量の補正を行うための前記被検試料における遺伝子の発現量の基準となる内部標準としての請求項２又は３記載のポリヌクレオチドの使用。
- 前記被検試料がコモンマーモセット由来の試料であることを特徴とする請求項６記載のポリヌクレオチドの使用。
- ２種類以上の被検試料における所望の遺伝子の発現量の差異を、当該遺伝子の転写産物量の差異として測定する方法であって、
（１）請求項２又は３記載のポリヌクレオチドを用いて、コモンマーモセット由来のベータアクチン遺伝子の転写産物量を測定する第一工程、
（２）前記被検試料における所望の遺伝子を用いて、当該遺伝子の転写産物量を測定する第ニ工程、
（３）２種類以上の被検試料における各被検試料において、任意の被検試料において第一工程により測定されたベータアクチン遺伝子の転写産物量に対する、他の被検試料において第一工程により測定されたベータアクチン遺伝子の転写産物量の相対比を算出する第三工程、
（４）第ニ工程により測定された所望の遺伝子の転写産物量に第三工程により算出された相対比を乗じることにより、２種類以上の被検試料における各被検試料での第ニ工程により測定された所望の遺伝子の転写産物量を補正する第四工程、
を有することを特徴とする測定方法。 - 前記被検試料がコモンマーモセット由来の試料であることを特徴とする請求項８記載の測定方法。
- 第一工程及び／又は第二工程において遺伝子の転写産物量を測定する方法が、ＤＮＡアレイ法又は定量的リバーストランスクリプターゼ−ポリメラーゼチェイン反応法のいずれかの方法であることを特徴とする請求項８又は９記載の測定方法。
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|---|---|---|---|---|
| WO2007086515A1 (ja) * | 2006-01-27 | 2007-08-02 | Takeda Pharmaceutical Company Limited | 遺伝子発現解析ツール |
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| JP2002503454A (ja) * | 1998-02-04 | 2002-02-05 | ダーム、ミヒャエル・ヴェー | 体液中の腫瘍細胞の定量方法とそれに適した検査キット |
| WO2002057489A2 (en) * | 2000-12-01 | 2002-07-25 | Response Genetics, Inc. | Method of determining a chemotherapeutic regimen based on ercc1 and ts expression |
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|---|---|---|---|---|
| JP3517031B2 (ja) * | 1995-06-09 | 2004-04-05 | 日清紡績株式会社 | 生物学的活性物質の分析法 |
| US20050255114A1 (en) * | 2003-04-07 | 2005-11-17 | Nuvelo, Inc. | Methods and diagnosis for the treatment of preeclampsia |
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