JP2004173650A - α−グルコシダーゼ遺伝子を含有する組換えベクター、形質転換体およびそれを用いたα−グルコシダーゼの製造方法 - Google Patents
α−グルコシダーゼ遺伝子を含有する組換えベクター、形質転換体およびそれを用いたα−グルコシダーゼの製造方法 Download PDFInfo
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Abstract
【課題】糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素を大量生産するための手段を提供すること。
【解決手段】糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素の遺伝子を提供する。さらに、該遺伝子を含む組換えベクター、該ベクターにより形質転換された生物、該形質転換体を用いた組換え糖転移酵素及びその製造法、該組換え糖転移酵素を用いた、α１→３結合を分子内に含む糖類、特にニゲロオリゴ糖の製造方法を提供する。
【選択図】なし
【解決手段】糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素の遺伝子を提供する。さらに、該遺伝子を含む組換えベクター、該ベクターにより形質転換された生物、該形質転換体を用いた組換え糖転移酵素及びその製造法、該組換え糖転移酵素を用いた、α１→３結合を分子内に含む糖類、特にニゲロオリゴ糖の製造方法を提供する。
【選択図】なし
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質に作用して糖受容体へのα−１，３−結合、またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素の遺伝子に関するものであり、より具体的には、例えば澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質の非還元末端グルコース部の３位に、グルコース単位をα−１，３−結合する糖転移活性を有し、α−１，３−結合を分子内に含む糖類、特にニゲロース（３−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシルグルコース）等のオリゴ糖を生成する活性を有する糖転移酵素の遺伝子に関するものである。
【０００２】
更に本発明は、該遺伝子を含む組換えプラスミド、該プラスミドにより形質転換された生物（微生物、動植物細胞など）、該形質転換体を用いた糖転移酵素の製造方法、該組換え酵素を用いた糖類の製造方法、特にニゲロース、ニゲロシルグルコース、ニゲロシルマルトース等のニゲロオリゴ糖の製造方法および遺伝子組換えによって得られる上記転移酵素に関するものである。
【０００３】
本発明の糖転移酵素は分子内にα−１，３−結合を含む糖類、特にニゲロオリゴ糖を製造するうえで産業上重要な酵素であり、本発明によって得られた形質転換体は本酵素を著量に生産し、これら酵素を用いる産業界（食品、医薬など）に大いに貢献するものである。
【０００４】
【従来の技術】
オリゴ糖はその構成単糖、結合様式及び立体構造に応じ、従来から甘味料、医薬品、酵素の検定用基質、あるいは種々の薬品中間体などの用途に使用されている。天然のものに加え、これまでマルトオリゴ糖、イソマルトオリゴ糖、フラクトオリゴ糖、カップリングシュガー等のオリゴ糖が開発されている。
【０００５】
近年、ニゲロース（３−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシルグルコース）、ニゲロシルグルコース（３−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシルマルトース）等のα−１，３−結合を分子中に有するニゲロオリゴ糖について、免疫賦活活性（特許文献１）等の生理活性を有することが明らかにされた。また機能性食品素材（特許文献２）としての用途についても注目され、本糖の安価な供給が望まれている。
【０００６】
従来からα−１，３−結合のオリゴ糖は酒、蜂蜜、麹汁、ビール等に含まれることが知られているが、天然には極く僅かにしか存在しない。また本糖の生産方法としてはアスペルギルス・ニガー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ） の菌糸中に含まれる３−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシルグルコースを構成糖として含むニゲランを部分酸加水分解する方法、あるいはα−１，３−結合、α−１，４−結合を有するエルシノエ（Ｅｌｓｉｎｏｅ） 属微生物産生の特種な多糖エルシナンをα−アミラーゼで酵素分解（特許文献３）する方法が知られているが、本糖の安価な供給には至っていない。また一般に利用可能な澱粉分解物等の基質から本糖を酵素的または化学的に取得しようとする試みに関しても、公知のα−グルコシダーゼによる縮合、転移反応では本糖は極く僅かしか生成しないほか（非特許文献１）、アスペルギルス・オリザエ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）の酵素による、マルトースからニゲロースの生成についても学術報告はあるものの、その生成量は少なく実用上の価値は少なかった。
【０００７】
ところで本発明者らは先に、アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）属に属するある種の菌株が、コージビオース、ニゲロース、澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質は水解するが、ショ糖やトレハロースは実質的に水解せず、かつα−１，３−結合へのグルコース転移反応またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移反応を選択的に触媒する糖転移酵素を産生することを見いだしており、該酵素を用いて、適当な基質、特にマルトオリゴ糖に作用させ、α−１，３−結合を分子内に含むニゲロース等のオリゴ糖を高収率で製造する方法を提案している（特許文献４）。
【０００８】
ニゲロース等のオリゴ糖の大量生産の為には、本酵素の大量取得が望まれる。従来の菌株育種方法は、主として、紫外線や変異誘発剤によって得られる糖転移酵素生産菌の変異株を選抜する方法に限られていたため、安定な変異体を単離するのが困難な場合もある。また、従来法による育種の場合、好まざる形質変化を伴うことも多い。
【０００９】
【特許文献１】特開平９−５２８３４号公報
【特許文献２】特開平３−２２９５８号公報
【特許文献３】特開昭５５−１９００４号公報
【非特許文献１】フジモト、Ｈ．、ニシダ、Ｈ．、及びアジサカ、Ｋ． 、：Ａｇｒｉｃ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、５２、１３４５− 、１９８８
【特許文献４】特開平７−５９５５９号公報
【００１０】
【発明が解決しようとする課題】
上記糖転移酵素の大量生産のためには、本酵素の遺伝子を取得し、遺伝子工学的にそれを生産することが望まれる。さらに、遺伝子を取得出来れば変異体を作成することにより、活性の高い酵素を得ることができ、更には蛋白工学の技術を用いて、耐熱性、耐ｐＨ性の向上、反応速度が増大された酵素を得ることも期待できる。
【００１１】
このような状況下、本発明者らは、鋭意研究を重ねた結果、糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する上記糖転移酵素の部分アミノ酸配列情報をもとに、当該酵素の生産菌アクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｐｌｉｃａｔｕｍ ＩＦＯ３０５３８）から調製したｃＤＮＡより当該酵素をコードする遺伝子を取得することに成功し、さらに酵母等の微生物での発現にも成功した。本発明はそれらの知見に基づいて完成されたものである。従って本発明は該酵素の遺伝子を提供するものである。さらに、該遺伝子を含む組換えベクター、該ベクターにより形質転換された生物、該形質転換体を用いた組換え糖転移酵素及びその製造法、該組換え糖転移酵素を用いた、α１→３結合を分子内に含む糖類、特にニゲロオリゴ糖の製造方法を提供するものである。
【００１２】
本発明は以下の通りである。
（請求項１）以下の（ａ）若しくは（ｂ）のタンパク質をコードする遺伝子または以下の（ｃ）若しくは（ｄ）のＤＮＡからなる遺伝子。
（ａ）配列表の配列番号２のアミノ酸番号１〜９１６で示されるアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列を有し、糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質。
（ｂ）配列表の配列番号２のアミノ酸番号２６〜９１６で示されるアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質。
（ｃ）配列表の配列番号１に示される塩基配列からなるＤＮＡ、または配列番号１に示される塩基配列番号１０４〜２８５１の塩基配列からなるＤＮＡ。
（ｄ）（ｃ）に示すＤＮＡまたは（ｃ）に示すＤＮＡと相補的な配列を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ配列。
（請求項２）請求項１に記載の（ａ）若しくは（ｂ）のタンパク質をコードする遺伝子または以下の（ｃ）若しくは（ｄ）のＤＮＡからなる遺伝子を含む組換えベクター。
（請求項３）ベクターが、酵母で機能するベクターである請求項２記載の組換えベクター。
（請求項４）酵母で機能するベクターがピチア属（Ｐｉｃｈｉａ属）、サッカロミセス属（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属）またはシゾサッカロミセス属（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属）に属する宿主で機能するベクターである請求項３に記載の組換えベクター。
（請求項５）ベクターが、カビで機能するベクターである請求項２記載の組換えベクター。
（請求項６）カビで機能するベクターが、リゾープスニベウス（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ）またはリゾープスデルマー（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｄｅｌｅｍａｒ）で機能するベクターである請求項５に記載の組換えベクター。
（請求項７）請求項２〜６のいずれか一項に記載の組換えベクターを含む形質転換体。
（請求項８）宿主が、微生物、酵母またはカビである請求項７に記載の形質転換体。
（請求項９）宿主が酵母であり、組換えベクターが請求項３または４記載の組換えベクターである請求項７に記載の形質転換体。
（請求項１０）宿主がカビであり、組換えベクターが請求項５または６記載の組換えベクターである請求項７に記載の形質転換体。
（請求項１１）請求項７〜１０のいずれか一項に記載の形質転換体を培養し、糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質を採取することを特徴とする酵素の製造方法。
（請求項１２）遺伝子組換え法によって得られ、配列表の配列番号２のアミノ酸番号１〜９１６で示されるアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質。
（請求項１３）遺伝子組換え法によって得られ、配列表の配列番号２のアミノ酸番号２６〜９１６で示されるアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有する、遺伝子組換えタンパク質。
（請求項１４）請求項１２または１３に記載の糖転移酵素活性を有するタンパク質を、澱粉およびその分解物から選ばれる基質と接触させることを特徴とする、α−１，３−結合を分子内に含む糖類の製造方法。
（請求項１５）α−１，３−結合を分子内に含む糖類がニゲロオリゴ糖である請求項１４に記載の製造方法。
【００１３】
【発明の実施の形態】
本発明による糖転移酵素遺伝子は、糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質をコードする遺伝子である。さらに、この転移酵素活性を有するタンパク質（糖転移酵素）は、コージビオース、ニゲロース、澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質は水解するが、ショ糖やトレハロースは実質的に水解しない。より具体的には、配列番号２のアミノ酸番号１〜９１６で示されるアミノ酸配列またはアミノ酸番号２６〜９１６で示されるアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列（該アミノ酸配列またはその１もしくは複数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列）を有し、かつ例えば、澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質の非還元末端グルコース部の３位に、グルコース単位をα−１，３−結合する糖転移活性を有し、α−１，３−結合を分子内に含むニゲロース（３−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシルグルコース）等のオリゴ糖を生成する活性を有する糖転移酵素をコードするＤＮＡ配列である。
【００１４】
本発明によるベクター（プラスミド）は、上記のＤＮＡ配列を含む組換えプラスミドであり、本発明による形質転換体は上記の組換えプラスミドにより形質転換された細胞（微生物、動植物細胞等）である。
【００１５】
本発明による糖転移酵素の製造方法は、上記の形質転換細胞を培養し、この培養物中から、澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質に作用して糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質を採取することを特徴とするものである。
【００１６】
また、本発明による組換え糖転移酵素は上記遺伝子の発現産物である。すなわち、本発明による糖転移酵素は、配列番号２のアミノ酸番号１〜９１６で示されるアミノ酸配列またはアミノ酸番号２６〜９１６で示されるアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列を有し、かつ澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質に作用して糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質である。
【００１７】
更にまた、本発明によるα−１，３−結合を分子内に含む糖類、特にニゲロオリゴ糖の製造方法は、上記組換え糖転移酵素を、澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質と接触させる工程を含んでなるものである。
【００１８】
［糖転移酵素遺伝子］
上述のように、本発明による糖転移酵素遺伝子は、澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質に作用して糖受容体へのα−１，３−（またはα−１，３−およびα−１，４−）結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ配列であり、α−１，３−結合への転移反応を触媒する糖転移酵素の部分アミノ酸配列情報をもとに、当該酵素の生産菌アクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｐｌｉｃａｔｕｍ ＩＦＯ３０５３８）から調製したｃＤＮＡより当該酵素をコードする遺伝子を取得することに成功し、さらに酵母等の微生物での発現にも成功することによって決定されたものである。
【００１９】
［糖転移酵素遺伝子のクローニング］
アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ） より得られるα−１，３−結合（またはα−１，３−およびα−１，４−結合）をもたらす糖転移酵素にはそれぞれが分子量が異なる２つのサブユニットから成ることが明らかにされている。特定の蛋白質をコードする遺伝子を単離する場合、蛋白質の部分アミノ酸配列を決定し、その縮重コドンからなる混合オリゴヌクレオチドをプロープとして遺伝子ライブラリーから単離することが可能である。また、本発明において実施したようなＰＣＲにより単離することも可能である。しかしながら、本酵素のように酵素が２種類のサブユニットからなるヘテロオリゴマー分子である場合、２つのサブユニットがそれぞれ異なる遺伝子に独立してコードされる可能性がある。また、それらがひとつの遺伝子から由来するにしても２つのサブユニットをコードする領域が構造遺伝子のなかでどのような位置関係となっているかなどその構造については予測ができない。
【００２０】
本発明者らは、まず酵素のペプチドマップを明らかにした。そして、いくつかの部分アミノ酸配列を決定した。さらにゲノムＤＮＡを鋳型とするＰＣＲによる部分断片の取得の後、その断片情報をもとにプライマーを設計した。そして、設計したプライマーを用いたＲＴ−ＰＣＲ， ＲＡＣＥ（Ｒａｐｉｄ Ａｍｐｌｉｆｙ ｃＤＮＡ ｅｎｄ）法を用いｃＤＮＡのクローニングに成功し、遺伝子構造を解析することによってこれら２つのサブユニットが同一の遺伝子にコードされることを明らかにした。すなわち、α１→３結合をもたらす糖転移酵素は、それをコードする遺伝子から１つのポリペプチドとして生成された。
【００２１】
［糖転移酵素をコードする遺伝子を含むＤＮＡ断片］
本発明による糖転移酵素をコードしている遺伝子を含むＤＮＡ断片の具体例としては、図１に示される制限酵素地図で表されるＤＮＡ断片が挙げられる。
この断片は、アクレモニウムＡｃｒｅｍｏｎｉｕｍ属に属する菌体、より好ましくはアクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｐｌｉｃａｔｕｍ） ＩＦＯ３０５３８より調製されるｍＲＮＡを鋳型としたＲＴ−ＰＣＲ， ＲＡＣＥ（Ｒａｐｉｄ Ａｍｐｌｉｆｙ ｃＤＮＡ ｅｎｄ）法より単離することができる。本発明による糖転移酵素遺伝子は、配列番号２（糖転移酵素遺伝子から推定されるアミノ酸配列およびそれをコードするＤＮＡの塩基配列）のアミノ酸番号１〜９１６もしくはアミノ酸番号２６〜９１６で示されるアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつ上記の酵素活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ配列である。
【００２２】
本発明の好ましい態様によれば、本発明による糖転移酵素をコードするＤＮＡ配列の好ましい具体例としては、配列番号１に示される塩基配列の１０４番目から２８５１番目（配列番号２におけるアミノ酸番号１〜９１６に相当）までの塩基配列および塩基配列の１７９番目から２８５１番目（配列番号２におけるアミノ酸番号２６〜９１６に相当）が挙げられる。
【００２３】
さらに本発明による糖転移酵素をコードするＤＮＡ配列の好ましい具体例としては、配列表の配列番号１に示される塩基配列からなるＤＮＡ、または配列番号１に示される塩基配列番号１７９〜２８５１の塩基配列からなるＤＮＡと相補的な配列を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ配列を挙げることができる。
【００２４】
また、本発明は、糖転移酵素をコードするＤＮＡ配列と相補的なＤＮＡとして、配列表の配列番号１に示される塩基配列からなるＤＮＡ、または配列番号１に示される塩基配列番号１７９〜２８５１の塩基配列からなるＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ配列を包含する。
【００２５】
本発明において、ストリンジェントな条件とは、特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件をいう。この条件を明確に数値化することは困難であるが、例えば、相同性の高いＤＮＡ同士、例えば８０％以上、好ましくは９０％以上の相同性を有するＤＮＡ同士がハイブリダイズし、それより低いＤＮＡ同士がハイブリダイズされない条件が挙げられる。具体的には、一般的なサザンハイブリダイゼーションの処理条件（ハイブリ溶液の塩濃度は、５ＸＳＳＣ，５Ｘｄｅｎｈａｒｄｔ’ｓ液、０．０２％ＳＤＳ、０．５％スキムミルク溶液、１００μｇ／ｍｌサケ変性精子ＤＮＡからなる）よりも強い条件によりハイブリダイズすることを指し、この組成よりもハイブリ溶液の構成成分の濃度が高いか、ハイブリダイゼーション温度が５５度以上か、膜洗浄溶液が、０．１％ＳＤＳ、０．５ＸＳＳＣの組成より低い濃度の溶液であるか、膜洗浄温度が５０度以上の場合をいう。
【００２６】
蛋白質のアミノ酸配列が与えられば、それをコードする塩基配列は、いわゆるコドン表を参照して決定することができる。よって配列番号２に示されるアミノ酸配列をコードする種々の塩基配列を適宜選択することが可能である。本発明の好ましい態様において、配列番号２のアミノ酸番号１〜９１６または２６〜９１６に示されるアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列 とは、配列番号１に示される塩基配列の１０４番から２８５１番または１７９から２８５１番の配列を有するもの、およびその縮重関係にあるコドンが使用されている部分以外は同一の塩基配列を有し且つ上記のアミノ酸をコードする塩基配列、更には該配列において１もしくは複数（たとえば１もしくは数個）のコドンが置換、欠失、挿入もしくは付加された塩基配列をも包含するものである。配列番号１に示される塩基配列の１０４番から２８５１番または１７９から２８５１番までの配列を有するＤＮＡ断片は塩基配列が決定されていることから、そのＤＮＡ断片を取得する一つの手段は核酸合成の手法たとえば、ＤＮＡ／ＲＮＡシンセサイザー（モデル３９２，アプライドバイオシステムズ）を用い、そのマニュアルに記載の方法に従って製造することができる。またこの配列は、前記したアクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）属に属する菌体、より好ましくはアクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｐｌｉｃａｔｕｍ）ＩＦＯ３０５３８から遺伝子工学的な手法を用いて得ることが出きる。例えば、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ （Ｓａｍｂｒｏｏｋ、 Ｍａｎｉａｔｉｓ ら、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｕｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ（１９８９））などに記載の方法で好ましく行なうことができる。具体的な方法は、後記する実施例に詳細に説明されている。
【００２７】
［糖転移酵素］
本発明による糖転移酵素は、以下の活性を保持することを特徴とするものである。すなわち、コージビオース、ニゲロース、澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質は水解するが、ショ糖やトレハロースは実質的に水解しない。さらに、糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を高い選択性をもって触媒する活性を有する。α−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移は実質的に生じないか、生じたとしても、極僅かである。また、反応条件により、α−１，３−結合のグルコース転移のみを触媒する場合と、α−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する場合とがある。
【００２８】
より具体的には、例えば澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質の非還元末端グルコース部の３位に、グルコース単位をα−１，３−結合してα−１，３−結合を分子内に含むニゲロース（３−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシルグルコース）等のオリゴ糖を生成する活性により特徴付けられる。従って本発明による糖転移酵素は、澱粉及びその分解物から、α−１，３−結合を分子内に含むニゲロース（３−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシルグルコース）等のオリゴ糖を生成することができる。
【００２９】
本発明の一つの態様による糖転移酵素のアミノ酸配列は、具体的には、配列表の配列番号２で示されるアミノ酸配列のアミノ酸番号１〜９１６のアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数個のアミノ酸の挿入、置換、または欠失、若しくは両末端への付加がなされたものであって、且つ上記した糖転移酵素活性を依然として保持する、改変された配列を包含するものとする。その改変配列における糖転移酵素活性の保持とは、その活性を利用した実際の使用態様において、配列番号２に示される配列を全て有するポリペプチドと、同一の条件でほぼ同様の利用が可能な程度の活性が維持されていることをいうものとする。このような改変された配列は、配列番号２に示されている配列を参照すれば、当業者であれば格別の困難なしに選択し、製造可能であることは明らかである。
【００３０】
さらに、本発明の別の態様によれば、配列表の配列番号２のアミノ酸番号２６番から９１６番までに示されるアミノ酸配列が提供される。この配列は、本酵素が培地に分泌される過程で、１〜２５番に存在するペプチドが切断されることにより得られる場合のものであり、培地中に回収される酵素は、天然体であっても組換え体であっても実質的にこの配列を含む（上記改変配列を包含する）ものである。従って、本発明のもう一つの態様による糖転移酵素のアミノ酸配列は、配列表の配列番号２で示されるアミノ酸配列のアミノ酸番号２６〜９１６のアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数個のアミノ酸の挿入、置換、または欠失、若しくは両末端への付加がなされたものであって、且つ上記した糖転移酵素活性を依然として保持する改変された配列を包含するものとする。
【００３１】
なお、後述のように本発明遺伝子を酵母で分泌発現させた場合、この酵素タンパク質は糖鎖が結合した形で得られ、糖鎖の切断によって糖鎖のない酵素タンパク質とすることができるが、これらも糖転移酵素活性を保持している限り本発明の酵素に包含される。
【００３２】
アクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｕｐｌｉｃａｔｕｍ） ＩＦＯ３０５３８の菌体の培養にあたっては、培地に菌体を接種し、常法に従い培養すればよい。培地中には、資化しうる炭素源及び窒素源を適量含有せしめると好ましい。この炭素源窒素源については、特に制限はないが、例えば、コーングルテン、大豆粉、コーンスティープリカー、カザミノ酸、酵母エキス、ペプトン、肉エキス等が挙げられる。
【００３３】
一方炭素源としては、α１→４グルコシド結合を有するポリサッカライドまたはオリゴサッカライド、例えば澱粉やその分解物、加工物やマルトース、マルトオリゴ糖などの資化し得るマルトオリゴ糖が挙げられる。中でも、マルトース、マルトオリゴ糖などが好ましい。その他に、リン酸、Ｍｇ２＋、Ｃａ２＋、Ｍｎ２＋、Ｃｏ２＋、Ｎａ＋、Ｋ＋等の無機塩や、さらに有機微量栄養源を適宜培地中に添加することもできる。
【００３４】
［糖転移酵素をコードする遺伝子の発現／糖転移酵素の製造］
１）発現ベクター
本発明による糖転移酵素をコードするＤＮＡ断片を、宿主細胞内で複製可能であるか、あるいは染色体に組み込まれかつ同遺伝子が発現可能な状態で含むＤＮＡ分子、特に発現ベクターの形態として宿主細胞の形質転換を行なえば、宿主細胞において本発明による糖転移酵素を産生させることができる。
【００３５】
従って、本発明によれば、さらに本発明による糖転移酵素をコードする遺伝子を含んだＤＮＡ分子、特に発現ベクターが提供される。このＤＮＡ分子は、ベクター分子に本発明による糖転移酵素をコードするＤＮＡ断片を組み込むことによって得ることが出きる。本発明の好ましい態様によれば、このベクターはプラスミドである。
【００３６】
本発明によるＤＮＡ分子の作成は、前掲のＭｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌに記載の方法に準じて行なうことが出きる。
【００３７】
本発明において利用されるベクターは、使用する宿主細胞の種類を勘案しながら、ウイルス、プラスミド、コスミドベクターなどから適宜選択できる。例えば、宿主細胞が枯草菌の場合はｐＵＢ系のプラスミド、大腸菌の場合はλファージ系のバクテリオファージ、ｐＢＲ、ｐＵＣ系のプラスミド、酵母の場合はＹＥｐ、ＹＣｐ系、ＹＩＰ系のベクター、あるいはｐＬｅｕ４、ｐＰＰＬｅｕ４、ｐＪＰＬｅｕ系（特開平４−２１８３８２号公報に記載）などが挙げられる。
【００３８】
このプラスミドは形質転換体の選択マーカーを含むのが好ましく、選択マーカーとしては薬剤耐性マーカー、栄養要求マーカー遺伝子を使用することができる。
【００３９】
さらに、本発明による発現ベクターとしてのＤＮＡ分子は、糖転移酵素遺伝子の発現に必要なＤＮＡ配列、例えばプロモーター、ターミネーター、リボゾーム結合部位、転写終結シグナルなどの転写調節信号、翻訳調節信号などを有しているのが好ましい。
【００４０】
プロモーターとしては、枯草菌においてはズブチリシン、ＳＰＡＣ等のプロモーター、酵母ではアルコールデヒドロゲナーゼ（ＡＤＨ）、酸性フォスファターゼ（ＰＨＯ）、ガラクトース遺伝子（ＧＡＬ）、グリセルアルデビド３リン酸脱水素酵素遺伝子（ＧＡＰ）等のプロモーターが好ましく用いることができる。配列番号２に示しているアミノ酸配列のアミノ酸番号１番から９１６番までの配列にはシグナルペプチド（アミノ酸番号１番〜２５番）を含んでおり、後記する実施例で示すようにこの配列をそのまま、酵母由来のプロモーター、ターミネーターに挿入し酵母に導入して分泌発現をさせることが出きる。シグナルペプチドの使用は、培養上清からの精製も容易になるので好ましい。また、シグナルペプチドを酵母由来のもの（たとえばインベルターゼシグナル、酸性フォスファターゼシグナル、λ−ファクターシグナルなど）に置き換えることも好ましい。また、大腸菌においては、一般に慣用されるｌａｃプロモーターを用いたところ目的の酵素は発現されなかったが、プロモーターとしてラクトースオペロン（ｌａｃ ）、トリプトファンオペロン（ｔｒｐ ）等を用い、シャペロニンを同時に発現させる等の工夫をすれば発現が可能になることも考えられる。
【００４１】
２） 形質転換体／培養
本発明によれば、更に上記の発現ベクターを適当な宿主細胞に導入した形質転換細胞、および形質転換細胞を培養して培養物から糖転移酵素を得る糖転移酵素の製造法が提供される。
【００４２】
形質転換細胞の培養は、使用宿主細胞に関して一般的な方法を用いることができ、通常１〜４日程度の培養により細胞内または細胞外の培養物中に糖転移酵素が生成蓄積される。培養条件（培地、ｐＨ、温度等）に関しては、例えば、細菌では２５〜３７℃、酵母では２５〜３０℃、真核細胞では３７℃程度が一般的であり、たとえば遺伝子発現実験マニュアル（講談社）等を参照することができる。
【００４３】
宿主細胞としては、大腸菌、枯草菌等の細菌、カンディダ・ウチリス（Ｃａｎｄｉｄａ ｕｔｉｌｉｓ）、サッカロミセス・セレビシエ（Ｓａｃｃａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、ピチア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ Ｐａｓｔｏｒｉｓ）等の酵母以外に、リゾープス・ニベウス（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ）、リゾープス・デルマー（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｄｅｌｅｍａｒ）や高等真核生物（例えばＣＨＯ細胞など）を用いることができる。枯草菌としてはパチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）属に属する微生物を用いることが好ましい。該属には蛋白質を菌体外へ分泌する株（たとえば、パチルス・スブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ）など）が存在することが知られている。またプロテアーゼを殆ど分泌しない株も知られており、このような株を宿主として用いることも好ましい。本発明においては、宿主細胞として酵母、糸状菌または細菌が好ましいが、酵母や糸状菌がより好ましく、特にピチア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ Ｐａｓｔｏｒｉｓ）やリゾープス・デルマー（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｄｅｌｅｍａｒ）が好ましい。後記する実施例に示すように、ピチア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ Ｐａｓｔｏｒｉｓ）やリゾープス・デルマー（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｄｅｌｅｍａｒ）を宿主としてこの遺伝子を発現させたところ、培地及びペリプラズム中に高い酵素活性が認められた。
【００４４】
かくして調製された形質転換体の産生する組換え糖転移酵素の単離・精製には、公知の分離、精製方法を適当に組み合わせて行なうことが出きる。これらの分離、精製方法としては例えば塩沈殿、溶媒沈殿のような溶解性の差を利用する方法、透析、限外濾過、ゲル濾過およびＳＤＳ−ポリアクリル電気泳動のような分子量の差を利用する方法、イオン交換クロマトグラフィーのような電荷の差を利用する方法、疎水クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィーのような疎水性の差を利用する方法、さらに等電点電気泳動のような等電点の差を利用する方法等が挙げられる。具体的には、例えば実施例７に記載のように糖転移酵素を精製できるが、一般的な分離・精製法に関しては例えば蛋白質・酵素の基礎実験法（南江堂）等を参照することができる。
【００４５】
［α−１，３−結合を分子内に含む糖類の製造］
本発明によれば、上記の組換え糖転移酵素を用いたα−１，３−結合を分子内に含む糖類、特にニゲロース等のオリゴ糖の製造方法が提供される。すなわち、本発明によるオリゴ糖の製造法は、上述のような本発明による糖転移酵素を、澱粉およびその分解物から選択される基質に作用させることを特徴とするものである。ここで澱粉の分解物とは、アミロース及びアミロペクチンの分解物の他、マルトオリゴ糖等をも包含するものである。基質としては澱粉、アミロースおよび／またはアミロペクチンの分解物、マルトオリゴ糖等をそれぞれ単独で用いても構わないが、α−１，３−結合を分子内に含むニゲロース等のオリゴ糖の製造法の好ましい態様によれば、本発明による組換え糖転移酵素とデンプン分解物、更に好ましくはマルトオリゴ糖と混合し、接触させることにより、α−１，３−結合を分子内に含むオリゴ糖（通常は種々の重合度の混合物）を効率よく製造することができる。
【００４６】
本発明の糖転移酵素の好ましい基質であるデンプン分解物のグルコース重合度は特に制限されないが、たとえば、α−１，３−結合を分子内に含むオリゴ糖をシロップとして使用するのが一般的である食品の場合には、重合度は２〜１０程度、特定重合度・高純度品を使用することを要求される医薬用途の場合には、所望のオリゴ糖重合度・純度に適した基質の重合度・種類を選択すれば良い。
【００４７】
本発明の糖転移酵素と基質との混合割合は、酵素の形態（乾物、溶液など）やその他の反応条件によって大きく変化するが、通常糖転移酵素１Ｕに対して基質０．０００５〜０．５ｇ、好ましくは糖転移酵素１Ｕに対して基質０．００１〜０．１ｇである。また反応条件に関しては、通常ｐＨ４〜１０、好ましくは６〜９、温度３０〜６５℃、好ましくは４０〜６０℃、反応時間３〜９６時間、好ましくは１２〜４８時間である。
【００４８】
基本的には、得られるオリゴ糖の重合度は、糖受容体となる基質のグルコース重合度に依存し、重合度の大きい基質を使用しても反応時間を長くすれば重合度の小さいオリゴ糖を得ることもできるが、重合度の小さいオリゴ糖を糖受容体として含む基質を使用すれば、短時間でより効率的にα−１，３−結合含有の低重合オリゴ糖を得ることができることはいうまでもない。
【００４９】
生成したα−１，３−結合を分子内に含む目的のオリゴ糖は、通常の糖の分離精製法、たとえば脱色、脱塩、濃縮糖を適宜組み合わせることにより精製することができる。オリゴ糖の分離・精製の一般的方法に関しては、例えば澱粉・関連糖質実験法（学会出版センター）等を参照することができる。
【００５０】
【実施例】
以下に本発明の実施例を示すが、これは本発明を更に具体的に説明するためのものであり、本発明が以下の実施例の範囲のみに限定されるものではない。また、操作手順は特に記載しない限りＭｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ （Ｓａｍｂｒｏｏｋ、 Ｍａｎｉａｔｉｓ ら、 Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｕｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ（１９８９））に記載の方法に従った。また、以下の実施例に於て使用される本発明糖転移酵素に特異的な活性測定方法は、本発明者らが以前用いた方法に従った（特開平７−５９５５９号公報）。この活性測定方法の概要を示せば、以下の通りである。
【００５１】
＜ＨＰＬＣを用いた糖転移酵素の測定方法＞
特開平７−５９５５９号公報に従い、酵素液０．２ｍＬに対して２％マルトース（２０ｍＭ リン酸ナトリウム ｐＨ７．０に溶解したもの）０．４ｍＬと４０℃で１時間反応させた。１００℃５分で反応を停止した後、３０Ｕ／ｍＬのグルコアミラーゼ（生化学工業、１Ｍ酢酸ナトリウムｐＨ４．５に溶解したもの）０．１ｍＬと４０℃、２時間反応させた。このサンプルについても１００℃、５分で反応を停止した後、以下の条件のＨＰＬＣで分析した。
カラム：Ａｍｉｎｅｘ ＨＰＸ−４２Ａ（Ｂｉｏ−Ｒａｄ）
移動相：超純水カラム温度：８０℃
流速：０．６ｍｌ／ｍｉｎ．
検出器：ＲＩ
上記条件下で、ピーク面積で全糖中１％のニゲロシルグルコースを生成する酵素濃度を、１Ｕ／ｍＬと便宜的に定義した。
【００５２】
＜本酵素のα−グルコシターゼとしての活性測定方法＞
特開平７−５９５５９号公報と同様に行なった。即ち、試験管にあらかじめ１．０ｍＬの０．１Ｍリン酸緩衝液ｐＨ７．０、および０．５ｍＬの基質溶液（２０ｍＭ ＰＮＰＧ（シグマ）水溶液）を加え３７℃、５分間加熱を行なった。その後、酵素溶液０．５ｍＬを加え３７℃で１５分間反応させた後、２．０ｍＬの０．２Ｍ Ｎａ２ＣＯ３溶液を加えて反応を停止させた。この溶液について４００ｎｍの吸収の変化を測定し生成したｐ−ニトロフェノールの量を測定し、１分間に１μＭのｐ−ニトロフェノールを生成する活性を１ｕｎｉｔと定義した。
【００５３】
［実施例１］ 糖転移酵素の精製および部分アミノ酸配列の決定
菌体の培養、および酵素精製は以下の方法で行った。
（１）菌体の培養
コーンスターチ（日本食品化工（株）製）０．５％（ｗ／ｖ）、シェフトンＤ（シェフィールド製）０．７５％（ｗ／ｖ）、リン酸水素二カリウム０．１％（ｗ／ｖ）、炭酸ナトリウム１．０％（ｗ／ｖ）および水からなる液体培地をｐＨ８．０に調整し、５００ｍｌ容三角フラスコに１００ｍｌ入れ、１２１℃、２０分間オートクレーブした。冷却したこの液体培地に、アクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｐｌｉｃａｔｕｍ） ＩＦＯ３０５３８株を接種し、２８℃、１３０ｒｐｍで２４時間培養したものを種培養液とした。
【００５４】
上記と同じ組成の培養液を４Ｌ調製し、５Ｌ容三角フラスコに１Ｌずつ入れ、１２１℃、２０分間オートクレーブした。冷却したこの液体培地に、種培養液５％（ｖ／ｖ）を接種し、２８℃、１３０ｒｐｍで９６時間培養した。除菌した培養液中の本酵素活性は、０．００３単位／ｍｌであった。
【００５５】
（２）酵素の精製
（１）で得られた培養液を、４℃の冷却下で、１００００ｒｐｍで遠心分離して、菌体を除いた上清約４Ｌを得た。この上清をＰＭ−１０膜（ミリポア製）を用いて２００ｍｌまで濃縮し、２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）にて緩衝化したＤＥＡＥ−トヨパール６５０Ｍを充填したカラム（２．６φ×４５ｃｍ）にのせ、同緩衝液にて未吸着のタンパク質が溶出し終わるまで洗浄した。その後、０→１Ｍの食塩濃度のリニアグラディエントにて酵素を溶出した。得られた活性画分を、２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）、続いて２Ｍ硫安を含む同緩衝液に対して透析し、ＰＭ−１０膜を用いて１０ｍｌまで濃縮した。この酵素溶液を２Ｍ硫安を含む２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）にて緩衝化したブチル−トヨパール６５０Ｍを充填したカラム（１．６φ×６０ｃｍ）にのせ、同緩衝液にて未吸着のタンパク質が溶出し終わるまで洗浄した。その後、２→０Ｍの硫安濃度のリニアグラディエントにて酵素を溶出した。活性画分を回収し、２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）に対して透析した後、ＰＭ−１０膜を用いて２ｍｌまで濃縮した。この酵素溶液を２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）にて緩衝化したトヨパールＨＷ−５５Ｆを充填したカラム（１．６φ×９５ｃｍ）にのせ、同緩衝液にて酵素を溶出した。活性画分を回収し、ＰＭ−１０膜を用いて２ｍｌまで濃縮し、精製酵素標品とした。得られた精製酵素標品の総活性量は５．６単位、比活性は８．０単位／ｍｇタンパク質であった。
得られた精製酵素標品は、ポリアクリルアミドゲル電気泳動において単一のタンパク質染色バンドを示し、高度に精製された標品であることを示した。
【００５６】
アクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｐｌｉｃａｔｕｍ） ＩＦＯ３０５３８株の糖転移酵素はＳＤＳ−ＰＡＧＥでヘテロダイマーであり、分子量は約６００００と約５１０００であった。糖転移酵素の部分アミノ酸配列分析をリジルエンドペプチダーゼにより消化後、逆相液体高速クロマトグラフィーを用い各ペプチドを分離し、またＮ末端アミノ酸配列分析をエドマン分解の方法により行なった。約１００μｇの精製酵素をマイクロチューブ中にとり乾燥し、これに１１０ｍｇの尿素加え、さらに２５μＬの１０ｍＭのＥＤＴＡを含む０．５Ｍ トリス緩衝液ｐＨ７．５を直接加え、２分間激しく撹拌した。この操作を尿素が溶解するまで繰り返した。尿素溶解後、全量を３００μＬになるよう１０ｍＭのＥＤＴＡを含む０．５Ｍ トリス緩衝液ｐＨ７．５で調整し、これに３．２μＬの２−メルカプトエタノールを加え、一晩マイクロチューブのヘッドスペースを窒素ガスで置換する。
【００５７】
これに、４．８μＬの４−ビニルピリジンを加え、さらに暗所にて２時間ヘッドスペースを窒素ガスで置換する。２μＬの酢酸を加えペプチドの修飾反応を止める。得られた反応用液を一晩透析により、２０ｍＭ トリス緩衝液 ｐＨ８．０に置換する。この溶液を乾燥後、これに３７ｍｇの尿素を加え、１００μＬの０．１Ｍ トリス緩衝液（ｐＨ８．０）で尿素を完全に溶解する。ここに２００ｐｍｏｌのリジルエンドペプチダーゼを加え、３７℃でペプチドを消化させ、２４時間後さらに同量のリジルエンドペプチダーゼを加え、３７℃、２４時間ペプチドを消化させた。
【００５８】
その消化物をＣ１８カラム（資生堂 ＣＡＰＣＥＬＬ ＰＡＫ Ｃ１８ Φ４．６Ｘ１５０ｍｍ ）を用いた逆相高速液体クロマトグラフィーにより分離し、７種類のペプチド断片を得た。ペプチドの溶出溶媒としてはＡ溶媒（０．１％トリフルオロ酢酸）、Ｂ溶媒（０．１％トリフルオロ酢酸を含むアセトニトリル／ 精製水 ８：２）を用い、溶出はＢ溶媒に関し、０〜１００％の直線濃度勾配で１ｍＬ／ｍｉｎの流速で９０分間溶出させることにより行なった。得られた断片化ペプチド（ＡＣ−６４， ＡＣ−６６， ＡＣ−６７， ＡＣ−６９， ＡＣ−７２， ＡＣ−７４， ＡＣ−７６）についてのアミノ酸配列決定試験を、気相ペプチドシークエンサーＰｒｏｃｉｓｅ ４９１（アプライドバイオシステム）を用いマニュアルに従って自動エドマン分解法により行なった。
【００５９】
以下に得られた部分アミノ酸配列を記す。
ＡＣ−６４： ＡＩＤＩＲＹＲＬＬＤＹＭＹＴＡ
ＡＣ−６６： ＡＣＮＡＹＧＤＤＬＥＥＬＩＬＥ
ＡＣ−６７： ＹＷＮＮＥＦＡＬＦＦＤＫＤＥＧ
ＡＣ−６９： ＹＧＹＲＤＶＦＥＶＡＥＶＶＹ
ＡＣ−７２： ＶＲＡＬＶＤＨＬＨＥＮＤＱＨ
ＡＣ−７４： ＰＡＶＡＹＶＥＳＤＴ
ＡＣ−７６： ＶＧＸＸＬＧＤＮＬＳＮＸＸＱＹＸＥ
なお、ＡＣ−６４， ＡＣ−６７， ＡＣ−７２， ＡＣ−７４の部分アミノ酸配列を基にそれぞれセンスプライマーおよびアンチセンスプライマーを設計した。
【００６０】
実施例
１．全ＲＮＡの単離およびＰｏｌｙ（Ａ）＋ＲＮＡの精製
上記（１）に記載されている方法に従いアクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）の菌体を取得した。菌体２０ｇを液体窒素により凍結した後ＲＮＡ Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ＰｈａｒｍａｃｉａＢｉｏｔｅｃｈ）を用いてトータルＲＮＡを抽出した。
【００６１】
０．２ｍｇの全ＲＮＡ ５０μｌに等量のＥｌｕｔｉｏｎ ｂｕｆｆｅｒ（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．５， ２ｍＭ ＥＤＴＡ， ０．２％ ＳＤＳ）を加えた後、１００μｌのＯｌｉｇｏｔｅｘ ｄＴ３０〈Ｓｕｐｅｒ〉（宝酒造）を加え、６５℃、５分間保持し、さらに氷中にて３分間保持した。２０μｌの５Ｍ ＮａＣｌを加え、３７℃にて１０分間保持した後、遠心分離し沈殿を２５０μｌのＷａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．５， １ｍＭ ＥＤＴＡ， ０．１％ ＳＤＳ， ０．５Ｍ ＮａＣｌ）で懸濁した。遠心分離後、沈殿を１００μｌのＴＥ緩衝液で懸濁し、６５℃にて１０分間、さらに氷中にて３分間保持した。遠心分離後、上清をエタノール沈殿し、得られた沈殿を風乾後１０μｌの水に溶解させた。
【００６２】
２．ＲＴ−ＰＣＲ（Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ＰＣＲ）
アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）の菌体より精製したＰｏｌｙ（Ａ）＋ＲＮＡ ５００ｎｇからＳＵＰＥＲＳＣＲＩＰＴ Ｐｒｅａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ ｆｏｒ Ｆｉｒｓｔ Ｓｔｒａｎｄ ｃＤＮＡ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ（ＬＩＦＥＴＥＣＨＮＯＬＯＧＩＥＳ）を使用し、逆転写反応を行った。ただし、ｏｌｉｇｏ−ｄ（Ｔ） ｐｒｉｍｅｒの代わりに３’−Ａ Ｐ （５’− ＧＧＣＣＡＣＧＣＧＴＣＧＡＣＴＡＧＴＡＣＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴ−３’）を用いた。
【００６３】
３．３’−ＲＡＣＥ法（ｒａｐｉｄ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｃＤＮＡ ３’−ｅｎｄ）
３’−ＲＡＣＥは、Ｆｒｏｈｍａｎ， Ｍ．Ａ．らの方法に従い行った（Ｍ．Ａ．Ｆｒｏｈｍａｎ， Ｍ．Ｋ．Ｄｕｓｈ， ａｎｄ Ｇ．Ｒ．Ｍａｒｔｉｎ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ，８５， ８９９８−９００２（１９８８））。鋳型として実施例２のＲＴ−ＰＣＲ産物を、プライマーとしてＡＣ−６４ｐ（センスプライマー， ５’− ｔａｔａｇｃｃａｇｇｃａａａｃａｔｔｃｃｃ−３’）３’−ＡＵＡＰ（ａｂｒｉｄｇｅｄ ｕｎｉｖｅｒｓａｌ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｐｒｉｍｅｒ、５’−ＧＧＣＣＡＣＧＣＧＴＣＧＡＣＴＡＧＴＡＣ−３’）および３’−Ａ Ｐを使用し、９４℃， １分間−５０℃， ２分間−７２℃， ３分間の反応を３０サイクル行った。その結果、約２０００ｂｐのｃＤＮＡ断片が増幅した。本断片をＦＲＡＧ１と命名し塩基配列の解析を行った。
【００６４】
４．５’−ＲＡＣＥ法（ｒａｐｉｄ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｃＤＮＡ ５’−ｅｎｄ）
５’−ＲＡＣＥは、Ｆｒｏｈｍａｎ， Ｍ．Ａ．らの方法に従い行った（Ｍ．Ａ．Ｆｒｏｈｍａｎ， Ｍ．Ｋ．Ｄｕｓｈ， ａｎｄ Ｇ．Ｒ．Ｍａｒｔｉｎ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ，８５， ８９９８−９００２（１９８８））。ｍＲＮＡを１５ユニットのｔｅｒｍｉｎａｌ ｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）と添付緩衝液を用いて、ｍＲＮＡの５’側にオリゴ（ｄＴ）を付加した。これを鋳型に５’−ＡＵＡＰ（５’−ＧＡＣＴＣＧＡＧＴＣＧＡＣＡＴＣＧ−３’）および５’−Ａ Ｐ（５’−ＧＡＣＴＣＧＡＧＴＣＧＡＣＡＴＣＧＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴ−３’）をセンスプライマーとして、 ＡＣ−６７ｐＲＶ （５’− ｔａｇｇｇｃｇａａｔｔｃｇｔｔｇｔｔｃｃａ −３’）をアンチセンスプライマーとして行った。その結果、約１．３ｋｂの増幅断片ＦＲＡＧ−２を得，塩基配列の解析を行った。上記プライマーを用いた５’−ＲＡＣＥの条件を以下に示す。ＰＣＲの条件は９５℃３０秒、５５℃１分、７２℃１分 で３０サイクル行なった。
【００６５】
５．アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）由来α−グルコシダーゼ ｃＤＮＡの取得
アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）より精製したＰｏｌｙ（Ａ）＋ＲＮＡ ５００ｎｇを鋳型として、５’−ＲＡＣＥで得られた塩基配列から設計したＡＣ−１ｐ（５’−ｇｔｃｇａｃｇｔｃｇａｃｃｇａｔａａｃｔｇｔｃｔ−３’）およびＡＵＡＰをプライマーとしてＲＴ−ＰＣＲを行ったところ、約３０００ｂｐのｃＤＮＡを得た。本ｃＤＮＡの塩基配列を解析したところ、全塩基配列は２９７８ｂｐであり、１０３ｂｐの５’非翻訳領域と１２７ｂｐの３’非翻訳領域が存在していた。得られた塩基配列より、タンパク質のアミノ酸配列は９１６残基であった。また、得られた塩基配列は、アスペルギルス・ニガー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ）由来のα−グルコシダーゼと約４７％、シゾサッカロミセス・ポンベ（Ｓｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｏｍｂｅ）由来と４５％のホモロジーが確認されたことから、このｃＤＮＡをアクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）由来のα−グルコシダーゼ遺伝子と同定した。
【配列表】
【図面の簡単な説明】
【図１】アクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｐｌｉｃａｔｕｍ ）α−グルコシダーゼ ｃＤＮＡの遺伝子の制限酵素地図。
【図２】アクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｐｌｉｃａｔｕｍ ）からのα−グルコシダーゼ ｃＤＮＡのクローニングストラティジー。
【発明の属する技術分野】
本発明は、澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質に作用して糖受容体へのα−１，３−結合、またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素の遺伝子に関するものであり、より具体的には、例えば澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質の非還元末端グルコース部の３位に、グルコース単位をα−１，３−結合する糖転移活性を有し、α−１，３−結合を分子内に含む糖類、特にニゲロース（３−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシルグルコース）等のオリゴ糖を生成する活性を有する糖転移酵素の遺伝子に関するものである。
【０００２】
更に本発明は、該遺伝子を含む組換えプラスミド、該プラスミドにより形質転換された生物（微生物、動植物細胞など）、該形質転換体を用いた糖転移酵素の製造方法、該組換え酵素を用いた糖類の製造方法、特にニゲロース、ニゲロシルグルコース、ニゲロシルマルトース等のニゲロオリゴ糖の製造方法および遺伝子組換えによって得られる上記転移酵素に関するものである。
【０００３】
本発明の糖転移酵素は分子内にα−１，３−結合を含む糖類、特にニゲロオリゴ糖を製造するうえで産業上重要な酵素であり、本発明によって得られた形質転換体は本酵素を著量に生産し、これら酵素を用いる産業界（食品、医薬など）に大いに貢献するものである。
【０００４】
【従来の技術】
オリゴ糖はその構成単糖、結合様式及び立体構造に応じ、従来から甘味料、医薬品、酵素の検定用基質、あるいは種々の薬品中間体などの用途に使用されている。天然のものに加え、これまでマルトオリゴ糖、イソマルトオリゴ糖、フラクトオリゴ糖、カップリングシュガー等のオリゴ糖が開発されている。
【０００５】
近年、ニゲロース（３−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシルグルコース）、ニゲロシルグルコース（３−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシルマルトース）等のα−１，３−結合を分子中に有するニゲロオリゴ糖について、免疫賦活活性（特許文献１）等の生理活性を有することが明らかにされた。また機能性食品素材（特許文献２）としての用途についても注目され、本糖の安価な供給が望まれている。
【０００６】
従来からα−１，３−結合のオリゴ糖は酒、蜂蜜、麹汁、ビール等に含まれることが知られているが、天然には極く僅かにしか存在しない。また本糖の生産方法としてはアスペルギルス・ニガー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ） の菌糸中に含まれる３−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシルグルコースを構成糖として含むニゲランを部分酸加水分解する方法、あるいはα−１，３−結合、α−１，４−結合を有するエルシノエ（Ｅｌｓｉｎｏｅ） 属微生物産生の特種な多糖エルシナンをα−アミラーゼで酵素分解（特許文献３）する方法が知られているが、本糖の安価な供給には至っていない。また一般に利用可能な澱粉分解物等の基質から本糖を酵素的または化学的に取得しようとする試みに関しても、公知のα−グルコシダーゼによる縮合、転移反応では本糖は極く僅かしか生成しないほか（非特許文献１）、アスペルギルス・オリザエ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）の酵素による、マルトースからニゲロースの生成についても学術報告はあるものの、その生成量は少なく実用上の価値は少なかった。
【０００７】
ところで本発明者らは先に、アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）属に属するある種の菌株が、コージビオース、ニゲロース、澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質は水解するが、ショ糖やトレハロースは実質的に水解せず、かつα−１，３−結合へのグルコース転移反応またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移反応を選択的に触媒する糖転移酵素を産生することを見いだしており、該酵素を用いて、適当な基質、特にマルトオリゴ糖に作用させ、α−１，３−結合を分子内に含むニゲロース等のオリゴ糖を高収率で製造する方法を提案している（特許文献４）。
【０００８】
ニゲロース等のオリゴ糖の大量生産の為には、本酵素の大量取得が望まれる。従来の菌株育種方法は、主として、紫外線や変異誘発剤によって得られる糖転移酵素生産菌の変異株を選抜する方法に限られていたため、安定な変異体を単離するのが困難な場合もある。また、従来法による育種の場合、好まざる形質変化を伴うことも多い。
【０００９】
【特許文献１】特開平９−５２８３４号公報
【特許文献２】特開平３−２２９５８号公報
【特許文献３】特開昭５５−１９００４号公報
【非特許文献１】フジモト、Ｈ．、ニシダ、Ｈ．、及びアジサカ、Ｋ． 、：Ａｇｒｉｃ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、５２、１３４５− 、１９８８
【特許文献４】特開平７−５９５５９号公報
【００１０】
【発明が解決しようとする課題】
上記糖転移酵素の大量生産のためには、本酵素の遺伝子を取得し、遺伝子工学的にそれを生産することが望まれる。さらに、遺伝子を取得出来れば変異体を作成することにより、活性の高い酵素を得ることができ、更には蛋白工学の技術を用いて、耐熱性、耐ｐＨ性の向上、反応速度が増大された酵素を得ることも期待できる。
【００１１】
このような状況下、本発明者らは、鋭意研究を重ねた結果、糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する上記糖転移酵素の部分アミノ酸配列情報をもとに、当該酵素の生産菌アクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｐｌｉｃａｔｕｍ ＩＦＯ３０５３８）から調製したｃＤＮＡより当該酵素をコードする遺伝子を取得することに成功し、さらに酵母等の微生物での発現にも成功した。本発明はそれらの知見に基づいて完成されたものである。従って本発明は該酵素の遺伝子を提供するものである。さらに、該遺伝子を含む組換えベクター、該ベクターにより形質転換された生物、該形質転換体を用いた組換え糖転移酵素及びその製造法、該組換え糖転移酵素を用いた、α１→３結合を分子内に含む糖類、特にニゲロオリゴ糖の製造方法を提供するものである。
【００１２】
本発明は以下の通りである。
（請求項１）以下の（ａ）若しくは（ｂ）のタンパク質をコードする遺伝子または以下の（ｃ）若しくは（ｄ）のＤＮＡからなる遺伝子。
（ａ）配列表の配列番号２のアミノ酸番号１〜９１６で示されるアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列を有し、糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質。
（ｂ）配列表の配列番号２のアミノ酸番号２６〜９１６で示されるアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質。
（ｃ）配列表の配列番号１に示される塩基配列からなるＤＮＡ、または配列番号１に示される塩基配列番号１０４〜２８５１の塩基配列からなるＤＮＡ。
（ｄ）（ｃ）に示すＤＮＡまたは（ｃ）に示すＤＮＡと相補的な配列を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ配列。
（請求項２）請求項１に記載の（ａ）若しくは（ｂ）のタンパク質をコードする遺伝子または以下の（ｃ）若しくは（ｄ）のＤＮＡからなる遺伝子を含む組換えベクター。
（請求項３）ベクターが、酵母で機能するベクターである請求項２記載の組換えベクター。
（請求項４）酵母で機能するベクターがピチア属（Ｐｉｃｈｉａ属）、サッカロミセス属（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属）またはシゾサッカロミセス属（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属）に属する宿主で機能するベクターである請求項３に記載の組換えベクター。
（請求項５）ベクターが、カビで機能するベクターである請求項２記載の組換えベクター。
（請求項６）カビで機能するベクターが、リゾープスニベウス（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ）またはリゾープスデルマー（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｄｅｌｅｍａｒ）で機能するベクターである請求項５に記載の組換えベクター。
（請求項７）請求項２〜６のいずれか一項に記載の組換えベクターを含む形質転換体。
（請求項８）宿主が、微生物、酵母またはカビである請求項７に記載の形質転換体。
（請求項９）宿主が酵母であり、組換えベクターが請求項３または４記載の組換えベクターである請求項７に記載の形質転換体。
（請求項１０）宿主がカビであり、組換えベクターが請求項５または６記載の組換えベクターである請求項７に記載の形質転換体。
（請求項１１）請求項７〜１０のいずれか一項に記載の形質転換体を培養し、糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質を採取することを特徴とする酵素の製造方法。
（請求項１２）遺伝子組換え法によって得られ、配列表の配列番号２のアミノ酸番号１〜９１６で示されるアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質。
（請求項１３）遺伝子組換え法によって得られ、配列表の配列番号２のアミノ酸番号２６〜９１６で示されるアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有する、遺伝子組換えタンパク質。
（請求項１４）請求項１２または１３に記載の糖転移酵素活性を有するタンパク質を、澱粉およびその分解物から選ばれる基質と接触させることを特徴とする、α−１，３−結合を分子内に含む糖類の製造方法。
（請求項１５）α−１，３−結合を分子内に含む糖類がニゲロオリゴ糖である請求項１４に記載の製造方法。
【００１３】
【発明の実施の形態】
本発明による糖転移酵素遺伝子は、糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質をコードする遺伝子である。さらに、この転移酵素活性を有するタンパク質（糖転移酵素）は、コージビオース、ニゲロース、澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質は水解するが、ショ糖やトレハロースは実質的に水解しない。より具体的には、配列番号２のアミノ酸番号１〜９１６で示されるアミノ酸配列またはアミノ酸番号２６〜９１６で示されるアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列（該アミノ酸配列またはその１もしくは複数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列）を有し、かつ例えば、澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質の非還元末端グルコース部の３位に、グルコース単位をα−１，３−結合する糖転移活性を有し、α−１，３−結合を分子内に含むニゲロース（３−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシルグルコース）等のオリゴ糖を生成する活性を有する糖転移酵素をコードするＤＮＡ配列である。
【００１４】
本発明によるベクター（プラスミド）は、上記のＤＮＡ配列を含む組換えプラスミドであり、本発明による形質転換体は上記の組換えプラスミドにより形質転換された細胞（微生物、動植物細胞等）である。
【００１５】
本発明による糖転移酵素の製造方法は、上記の形質転換細胞を培養し、この培養物中から、澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質に作用して糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質を採取することを特徴とするものである。
【００１６】
また、本発明による組換え糖転移酵素は上記遺伝子の発現産物である。すなわち、本発明による糖転移酵素は、配列番号２のアミノ酸番号１〜９１６で示されるアミノ酸配列またはアミノ酸番号２６〜９１６で示されるアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列を有し、かつ澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質に作用して糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質である。
【００１７】
更にまた、本発明によるα−１，３−結合を分子内に含む糖類、特にニゲロオリゴ糖の製造方法は、上記組換え糖転移酵素を、澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質と接触させる工程を含んでなるものである。
【００１８】
［糖転移酵素遺伝子］
上述のように、本発明による糖転移酵素遺伝子は、澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質に作用して糖受容体へのα−１，３−（またはα−１，３−およびα−１，４−）結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ配列であり、α−１，３−結合への転移反応を触媒する糖転移酵素の部分アミノ酸配列情報をもとに、当該酵素の生産菌アクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｐｌｉｃａｔｕｍ ＩＦＯ３０５３８）から調製したｃＤＮＡより当該酵素をコードする遺伝子を取得することに成功し、さらに酵母等の微生物での発現にも成功することによって決定されたものである。
【００１９】
［糖転移酵素遺伝子のクローニング］
アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ） より得られるα−１，３−結合（またはα−１，３−およびα−１，４−結合）をもたらす糖転移酵素にはそれぞれが分子量が異なる２つのサブユニットから成ることが明らかにされている。特定の蛋白質をコードする遺伝子を単離する場合、蛋白質の部分アミノ酸配列を決定し、その縮重コドンからなる混合オリゴヌクレオチドをプロープとして遺伝子ライブラリーから単離することが可能である。また、本発明において実施したようなＰＣＲにより単離することも可能である。しかしながら、本酵素のように酵素が２種類のサブユニットからなるヘテロオリゴマー分子である場合、２つのサブユニットがそれぞれ異なる遺伝子に独立してコードされる可能性がある。また、それらがひとつの遺伝子から由来するにしても２つのサブユニットをコードする領域が構造遺伝子のなかでどのような位置関係となっているかなどその構造については予測ができない。
【００２０】
本発明者らは、まず酵素のペプチドマップを明らかにした。そして、いくつかの部分アミノ酸配列を決定した。さらにゲノムＤＮＡを鋳型とするＰＣＲによる部分断片の取得の後、その断片情報をもとにプライマーを設計した。そして、設計したプライマーを用いたＲＴ−ＰＣＲ， ＲＡＣＥ（Ｒａｐｉｄ Ａｍｐｌｉｆｙ ｃＤＮＡ ｅｎｄ）法を用いｃＤＮＡのクローニングに成功し、遺伝子構造を解析することによってこれら２つのサブユニットが同一の遺伝子にコードされることを明らかにした。すなわち、α１→３結合をもたらす糖転移酵素は、それをコードする遺伝子から１つのポリペプチドとして生成された。
【００２１】
［糖転移酵素をコードする遺伝子を含むＤＮＡ断片］
本発明による糖転移酵素をコードしている遺伝子を含むＤＮＡ断片の具体例としては、図１に示される制限酵素地図で表されるＤＮＡ断片が挙げられる。
この断片は、アクレモニウムＡｃｒｅｍｏｎｉｕｍ属に属する菌体、より好ましくはアクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｐｌｉｃａｔｕｍ） ＩＦＯ３０５３８より調製されるｍＲＮＡを鋳型としたＲＴ−ＰＣＲ， ＲＡＣＥ（Ｒａｐｉｄ Ａｍｐｌｉｆｙ ｃＤＮＡ ｅｎｄ）法より単離することができる。本発明による糖転移酵素遺伝子は、配列番号２（糖転移酵素遺伝子から推定されるアミノ酸配列およびそれをコードするＤＮＡの塩基配列）のアミノ酸番号１〜９１６もしくはアミノ酸番号２６〜９１６で示されるアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつ上記の酵素活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ配列である。
【００２２】
本発明の好ましい態様によれば、本発明による糖転移酵素をコードするＤＮＡ配列の好ましい具体例としては、配列番号１に示される塩基配列の１０４番目から２８５１番目（配列番号２におけるアミノ酸番号１〜９１６に相当）までの塩基配列および塩基配列の１７９番目から２８５１番目（配列番号２におけるアミノ酸番号２６〜９１６に相当）が挙げられる。
【００２３】
さらに本発明による糖転移酵素をコードするＤＮＡ配列の好ましい具体例としては、配列表の配列番号１に示される塩基配列からなるＤＮＡ、または配列番号１に示される塩基配列番号１７９〜２８５１の塩基配列からなるＤＮＡと相補的な配列を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ配列を挙げることができる。
【００２４】
また、本発明は、糖転移酵素をコードするＤＮＡ配列と相補的なＤＮＡとして、配列表の配列番号１に示される塩基配列からなるＤＮＡ、または配列番号１に示される塩基配列番号１７９〜２８５１の塩基配列からなるＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ配列を包含する。
【００２５】
本発明において、ストリンジェントな条件とは、特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件をいう。この条件を明確に数値化することは困難であるが、例えば、相同性の高いＤＮＡ同士、例えば８０％以上、好ましくは９０％以上の相同性を有するＤＮＡ同士がハイブリダイズし、それより低いＤＮＡ同士がハイブリダイズされない条件が挙げられる。具体的には、一般的なサザンハイブリダイゼーションの処理条件（ハイブリ溶液の塩濃度は、５ＸＳＳＣ，５Ｘｄｅｎｈａｒｄｔ’ｓ液、０．０２％ＳＤＳ、０．５％スキムミルク溶液、１００μｇ／ｍｌサケ変性精子ＤＮＡからなる）よりも強い条件によりハイブリダイズすることを指し、この組成よりもハイブリ溶液の構成成分の濃度が高いか、ハイブリダイゼーション温度が５５度以上か、膜洗浄溶液が、０．１％ＳＤＳ、０．５ＸＳＳＣの組成より低い濃度の溶液であるか、膜洗浄温度が５０度以上の場合をいう。
【００２６】
蛋白質のアミノ酸配列が与えられば、それをコードする塩基配列は、いわゆるコドン表を参照して決定することができる。よって配列番号２に示されるアミノ酸配列をコードする種々の塩基配列を適宜選択することが可能である。本発明の好ましい態様において、配列番号２のアミノ酸番号１〜９１６または２６〜９１６に示されるアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列 とは、配列番号１に示される塩基配列の１０４番から２８５１番または１７９から２８５１番の配列を有するもの、およびその縮重関係にあるコドンが使用されている部分以外は同一の塩基配列を有し且つ上記のアミノ酸をコードする塩基配列、更には該配列において１もしくは複数（たとえば１もしくは数個）のコドンが置換、欠失、挿入もしくは付加された塩基配列をも包含するものである。配列番号１に示される塩基配列の１０４番から２８５１番または１７９から２８５１番までの配列を有するＤＮＡ断片は塩基配列が決定されていることから、そのＤＮＡ断片を取得する一つの手段は核酸合成の手法たとえば、ＤＮＡ／ＲＮＡシンセサイザー（モデル３９２，アプライドバイオシステムズ）を用い、そのマニュアルに記載の方法に従って製造することができる。またこの配列は、前記したアクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）属に属する菌体、より好ましくはアクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｐｌｉｃａｔｕｍ）ＩＦＯ３０５３８から遺伝子工学的な手法を用いて得ることが出きる。例えば、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ （Ｓａｍｂｒｏｏｋ、 Ｍａｎｉａｔｉｓ ら、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｕｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ（１９８９））などに記載の方法で好ましく行なうことができる。具体的な方法は、後記する実施例に詳細に説明されている。
【００２７】
［糖転移酵素］
本発明による糖転移酵素は、以下の活性を保持することを特徴とするものである。すなわち、コージビオース、ニゲロース、澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質は水解するが、ショ糖やトレハロースは実質的に水解しない。さらに、糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を高い選択性をもって触媒する活性を有する。α−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移は実質的に生じないか、生じたとしても、極僅かである。また、反応条件により、α−１，３−結合のグルコース転移のみを触媒する場合と、α−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する場合とがある。
【００２８】
より具体的には、例えば澱粉及びその分解物の中から選ばれた基質の非還元末端グルコース部の３位に、グルコース単位をα−１，３−結合してα−１，３−結合を分子内に含むニゲロース（３−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシルグルコース）等のオリゴ糖を生成する活性により特徴付けられる。従って本発明による糖転移酵素は、澱粉及びその分解物から、α−１，３−結合を分子内に含むニゲロース（３−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシルグルコース）等のオリゴ糖を生成することができる。
【００２９】
本発明の一つの態様による糖転移酵素のアミノ酸配列は、具体的には、配列表の配列番号２で示されるアミノ酸配列のアミノ酸番号１〜９１６のアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数個のアミノ酸の挿入、置換、または欠失、若しくは両末端への付加がなされたものであって、且つ上記した糖転移酵素活性を依然として保持する、改変された配列を包含するものとする。その改変配列における糖転移酵素活性の保持とは、その活性を利用した実際の使用態様において、配列番号２に示される配列を全て有するポリペプチドと、同一の条件でほぼ同様の利用が可能な程度の活性が維持されていることをいうものとする。このような改変された配列は、配列番号２に示されている配列を参照すれば、当業者であれば格別の困難なしに選択し、製造可能であることは明らかである。
【００３０】
さらに、本発明の別の態様によれば、配列表の配列番号２のアミノ酸番号２６番から９１６番までに示されるアミノ酸配列が提供される。この配列は、本酵素が培地に分泌される過程で、１〜２５番に存在するペプチドが切断されることにより得られる場合のものであり、培地中に回収される酵素は、天然体であっても組換え体であっても実質的にこの配列を含む（上記改変配列を包含する）ものである。従って、本発明のもう一つの態様による糖転移酵素のアミノ酸配列は、配列表の配列番号２で示されるアミノ酸配列のアミノ酸番号２６〜９１６のアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数個のアミノ酸の挿入、置換、または欠失、若しくは両末端への付加がなされたものであって、且つ上記した糖転移酵素活性を依然として保持する改変された配列を包含するものとする。
【００３１】
なお、後述のように本発明遺伝子を酵母で分泌発現させた場合、この酵素タンパク質は糖鎖が結合した形で得られ、糖鎖の切断によって糖鎖のない酵素タンパク質とすることができるが、これらも糖転移酵素活性を保持している限り本発明の酵素に包含される。
【００３２】
アクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｕｐｌｉｃａｔｕｍ） ＩＦＯ３０５３８の菌体の培養にあたっては、培地に菌体を接種し、常法に従い培養すればよい。培地中には、資化しうる炭素源及び窒素源を適量含有せしめると好ましい。この炭素源窒素源については、特に制限はないが、例えば、コーングルテン、大豆粉、コーンスティープリカー、カザミノ酸、酵母エキス、ペプトン、肉エキス等が挙げられる。
【００３３】
一方炭素源としては、α１→４グルコシド結合を有するポリサッカライドまたはオリゴサッカライド、例えば澱粉やその分解物、加工物やマルトース、マルトオリゴ糖などの資化し得るマルトオリゴ糖が挙げられる。中でも、マルトース、マルトオリゴ糖などが好ましい。その他に、リン酸、Ｍｇ２＋、Ｃａ２＋、Ｍｎ２＋、Ｃｏ２＋、Ｎａ＋、Ｋ＋等の無機塩や、さらに有機微量栄養源を適宜培地中に添加することもできる。
【００３４】
［糖転移酵素をコードする遺伝子の発現／糖転移酵素の製造］
１）発現ベクター
本発明による糖転移酵素をコードするＤＮＡ断片を、宿主細胞内で複製可能であるか、あるいは染色体に組み込まれかつ同遺伝子が発現可能な状態で含むＤＮＡ分子、特に発現ベクターの形態として宿主細胞の形質転換を行なえば、宿主細胞において本発明による糖転移酵素を産生させることができる。
【００３５】
従って、本発明によれば、さらに本発明による糖転移酵素をコードする遺伝子を含んだＤＮＡ分子、特に発現ベクターが提供される。このＤＮＡ分子は、ベクター分子に本発明による糖転移酵素をコードするＤＮＡ断片を組み込むことによって得ることが出きる。本発明の好ましい態様によれば、このベクターはプラスミドである。
【００３６】
本発明によるＤＮＡ分子の作成は、前掲のＭｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌに記載の方法に準じて行なうことが出きる。
【００３７】
本発明において利用されるベクターは、使用する宿主細胞の種類を勘案しながら、ウイルス、プラスミド、コスミドベクターなどから適宜選択できる。例えば、宿主細胞が枯草菌の場合はｐＵＢ系のプラスミド、大腸菌の場合はλファージ系のバクテリオファージ、ｐＢＲ、ｐＵＣ系のプラスミド、酵母の場合はＹＥｐ、ＹＣｐ系、ＹＩＰ系のベクター、あるいはｐＬｅｕ４、ｐＰＰＬｅｕ４、ｐＪＰＬｅｕ系（特開平４−２１８３８２号公報に記載）などが挙げられる。
【００３８】
このプラスミドは形質転換体の選択マーカーを含むのが好ましく、選択マーカーとしては薬剤耐性マーカー、栄養要求マーカー遺伝子を使用することができる。
【００３９】
さらに、本発明による発現ベクターとしてのＤＮＡ分子は、糖転移酵素遺伝子の発現に必要なＤＮＡ配列、例えばプロモーター、ターミネーター、リボゾーム結合部位、転写終結シグナルなどの転写調節信号、翻訳調節信号などを有しているのが好ましい。
【００４０】
プロモーターとしては、枯草菌においてはズブチリシン、ＳＰＡＣ等のプロモーター、酵母ではアルコールデヒドロゲナーゼ（ＡＤＨ）、酸性フォスファターゼ（ＰＨＯ）、ガラクトース遺伝子（ＧＡＬ）、グリセルアルデビド３リン酸脱水素酵素遺伝子（ＧＡＰ）等のプロモーターが好ましく用いることができる。配列番号２に示しているアミノ酸配列のアミノ酸番号１番から９１６番までの配列にはシグナルペプチド（アミノ酸番号１番〜２５番）を含んでおり、後記する実施例で示すようにこの配列をそのまま、酵母由来のプロモーター、ターミネーターに挿入し酵母に導入して分泌発現をさせることが出きる。シグナルペプチドの使用は、培養上清からの精製も容易になるので好ましい。また、シグナルペプチドを酵母由来のもの（たとえばインベルターゼシグナル、酸性フォスファターゼシグナル、λ−ファクターシグナルなど）に置き換えることも好ましい。また、大腸菌においては、一般に慣用されるｌａｃプロモーターを用いたところ目的の酵素は発現されなかったが、プロモーターとしてラクトースオペロン（ｌａｃ ）、トリプトファンオペロン（ｔｒｐ ）等を用い、シャペロニンを同時に発現させる等の工夫をすれば発現が可能になることも考えられる。
【００４１】
２） 形質転換体／培養
本発明によれば、更に上記の発現ベクターを適当な宿主細胞に導入した形質転換細胞、および形質転換細胞を培養して培養物から糖転移酵素を得る糖転移酵素の製造法が提供される。
【００４２】
形質転換細胞の培養は、使用宿主細胞に関して一般的な方法を用いることができ、通常１〜４日程度の培養により細胞内または細胞外の培養物中に糖転移酵素が生成蓄積される。培養条件（培地、ｐＨ、温度等）に関しては、例えば、細菌では２５〜３７℃、酵母では２５〜３０℃、真核細胞では３７℃程度が一般的であり、たとえば遺伝子発現実験マニュアル（講談社）等を参照することができる。
【００４３】
宿主細胞としては、大腸菌、枯草菌等の細菌、カンディダ・ウチリス（Ｃａｎｄｉｄａ ｕｔｉｌｉｓ）、サッカロミセス・セレビシエ（Ｓａｃｃａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、ピチア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ Ｐａｓｔｏｒｉｓ）等の酵母以外に、リゾープス・ニベウス（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ）、リゾープス・デルマー（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｄｅｌｅｍａｒ）や高等真核生物（例えばＣＨＯ細胞など）を用いることができる。枯草菌としてはパチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）属に属する微生物を用いることが好ましい。該属には蛋白質を菌体外へ分泌する株（たとえば、パチルス・スブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ）など）が存在することが知られている。またプロテアーゼを殆ど分泌しない株も知られており、このような株を宿主として用いることも好ましい。本発明においては、宿主細胞として酵母、糸状菌または細菌が好ましいが、酵母や糸状菌がより好ましく、特にピチア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ Ｐａｓｔｏｒｉｓ）やリゾープス・デルマー（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｄｅｌｅｍａｒ）が好ましい。後記する実施例に示すように、ピチア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ Ｐａｓｔｏｒｉｓ）やリゾープス・デルマー（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｄｅｌｅｍａｒ）を宿主としてこの遺伝子を発現させたところ、培地及びペリプラズム中に高い酵素活性が認められた。
【００４４】
かくして調製された形質転換体の産生する組換え糖転移酵素の単離・精製には、公知の分離、精製方法を適当に組み合わせて行なうことが出きる。これらの分離、精製方法としては例えば塩沈殿、溶媒沈殿のような溶解性の差を利用する方法、透析、限外濾過、ゲル濾過およびＳＤＳ−ポリアクリル電気泳動のような分子量の差を利用する方法、イオン交換クロマトグラフィーのような電荷の差を利用する方法、疎水クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィーのような疎水性の差を利用する方法、さらに等電点電気泳動のような等電点の差を利用する方法等が挙げられる。具体的には、例えば実施例７に記載のように糖転移酵素を精製できるが、一般的な分離・精製法に関しては例えば蛋白質・酵素の基礎実験法（南江堂）等を参照することができる。
【００４５】
［α−１，３−結合を分子内に含む糖類の製造］
本発明によれば、上記の組換え糖転移酵素を用いたα−１，３−結合を分子内に含む糖類、特にニゲロース等のオリゴ糖の製造方法が提供される。すなわち、本発明によるオリゴ糖の製造法は、上述のような本発明による糖転移酵素を、澱粉およびその分解物から選択される基質に作用させることを特徴とするものである。ここで澱粉の分解物とは、アミロース及びアミロペクチンの分解物の他、マルトオリゴ糖等をも包含するものである。基質としては澱粉、アミロースおよび／またはアミロペクチンの分解物、マルトオリゴ糖等をそれぞれ単独で用いても構わないが、α−１，３−結合を分子内に含むニゲロース等のオリゴ糖の製造法の好ましい態様によれば、本発明による組換え糖転移酵素とデンプン分解物、更に好ましくはマルトオリゴ糖と混合し、接触させることにより、α−１，３−結合を分子内に含むオリゴ糖（通常は種々の重合度の混合物）を効率よく製造することができる。
【００４６】
本発明の糖転移酵素の好ましい基質であるデンプン分解物のグルコース重合度は特に制限されないが、たとえば、α−１，３−結合を分子内に含むオリゴ糖をシロップとして使用するのが一般的である食品の場合には、重合度は２〜１０程度、特定重合度・高純度品を使用することを要求される医薬用途の場合には、所望のオリゴ糖重合度・純度に適した基質の重合度・種類を選択すれば良い。
【００４７】
本発明の糖転移酵素と基質との混合割合は、酵素の形態（乾物、溶液など）やその他の反応条件によって大きく変化するが、通常糖転移酵素１Ｕに対して基質０．０００５〜０．５ｇ、好ましくは糖転移酵素１Ｕに対して基質０．００１〜０．１ｇである。また反応条件に関しては、通常ｐＨ４〜１０、好ましくは６〜９、温度３０〜６５℃、好ましくは４０〜６０℃、反応時間３〜９６時間、好ましくは１２〜４８時間である。
【００４８】
基本的には、得られるオリゴ糖の重合度は、糖受容体となる基質のグルコース重合度に依存し、重合度の大きい基質を使用しても反応時間を長くすれば重合度の小さいオリゴ糖を得ることもできるが、重合度の小さいオリゴ糖を糖受容体として含む基質を使用すれば、短時間でより効率的にα−１，３−結合含有の低重合オリゴ糖を得ることができることはいうまでもない。
【００４９】
生成したα−１，３−結合を分子内に含む目的のオリゴ糖は、通常の糖の分離精製法、たとえば脱色、脱塩、濃縮糖を適宜組み合わせることにより精製することができる。オリゴ糖の分離・精製の一般的方法に関しては、例えば澱粉・関連糖質実験法（学会出版センター）等を参照することができる。
【００５０】
【実施例】
以下に本発明の実施例を示すが、これは本発明を更に具体的に説明するためのものであり、本発明が以下の実施例の範囲のみに限定されるものではない。また、操作手順は特に記載しない限りＭｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ （Ｓａｍｂｒｏｏｋ、 Ｍａｎｉａｔｉｓ ら、 Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｕｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ（１９８９））に記載の方法に従った。また、以下の実施例に於て使用される本発明糖転移酵素に特異的な活性測定方法は、本発明者らが以前用いた方法に従った（特開平７−５９５５９号公報）。この活性測定方法の概要を示せば、以下の通りである。
【００５１】
＜ＨＰＬＣを用いた糖転移酵素の測定方法＞
特開平７−５９５５９号公報に従い、酵素液０．２ｍＬに対して２％マルトース（２０ｍＭ リン酸ナトリウム ｐＨ７．０に溶解したもの）０．４ｍＬと４０℃で１時間反応させた。１００℃５分で反応を停止した後、３０Ｕ／ｍＬのグルコアミラーゼ（生化学工業、１Ｍ酢酸ナトリウムｐＨ４．５に溶解したもの）０．１ｍＬと４０℃、２時間反応させた。このサンプルについても１００℃、５分で反応を停止した後、以下の条件のＨＰＬＣで分析した。
カラム：Ａｍｉｎｅｘ ＨＰＸ−４２Ａ（Ｂｉｏ−Ｒａｄ）
移動相：超純水カラム温度：８０℃
流速：０．６ｍｌ／ｍｉｎ．
検出器：ＲＩ
上記条件下で、ピーク面積で全糖中１％のニゲロシルグルコースを生成する酵素濃度を、１Ｕ／ｍＬと便宜的に定義した。
【００５２】
＜本酵素のα−グルコシターゼとしての活性測定方法＞
特開平７−５９５５９号公報と同様に行なった。即ち、試験管にあらかじめ１．０ｍＬの０．１Ｍリン酸緩衝液ｐＨ７．０、および０．５ｍＬの基質溶液（２０ｍＭ ＰＮＰＧ（シグマ）水溶液）を加え３７℃、５分間加熱を行なった。その後、酵素溶液０．５ｍＬを加え３７℃で１５分間反応させた後、２．０ｍＬの０．２Ｍ Ｎａ２ＣＯ３溶液を加えて反応を停止させた。この溶液について４００ｎｍの吸収の変化を測定し生成したｐ−ニトロフェノールの量を測定し、１分間に１μＭのｐ−ニトロフェノールを生成する活性を１ｕｎｉｔと定義した。
【００５３】
［実施例１］ 糖転移酵素の精製および部分アミノ酸配列の決定
菌体の培養、および酵素精製は以下の方法で行った。
（１）菌体の培養
コーンスターチ（日本食品化工（株）製）０．５％（ｗ／ｖ）、シェフトンＤ（シェフィールド製）０．７５％（ｗ／ｖ）、リン酸水素二カリウム０．１％（ｗ／ｖ）、炭酸ナトリウム１．０％（ｗ／ｖ）および水からなる液体培地をｐＨ８．０に調整し、５００ｍｌ容三角フラスコに１００ｍｌ入れ、１２１℃、２０分間オートクレーブした。冷却したこの液体培地に、アクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｐｌｉｃａｔｕｍ） ＩＦＯ３０５３８株を接種し、２８℃、１３０ｒｐｍで２４時間培養したものを種培養液とした。
【００５４】
上記と同じ組成の培養液を４Ｌ調製し、５Ｌ容三角フラスコに１Ｌずつ入れ、１２１℃、２０分間オートクレーブした。冷却したこの液体培地に、種培養液５％（ｖ／ｖ）を接種し、２８℃、１３０ｒｐｍで９６時間培養した。除菌した培養液中の本酵素活性は、０．００３単位／ｍｌであった。
【００５５】
（２）酵素の精製
（１）で得られた培養液を、４℃の冷却下で、１００００ｒｐｍで遠心分離して、菌体を除いた上清約４Ｌを得た。この上清をＰＭ−１０膜（ミリポア製）を用いて２００ｍｌまで濃縮し、２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）にて緩衝化したＤＥＡＥ−トヨパール６５０Ｍを充填したカラム（２．６φ×４５ｃｍ）にのせ、同緩衝液にて未吸着のタンパク質が溶出し終わるまで洗浄した。その後、０→１Ｍの食塩濃度のリニアグラディエントにて酵素を溶出した。得られた活性画分を、２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）、続いて２Ｍ硫安を含む同緩衝液に対して透析し、ＰＭ−１０膜を用いて１０ｍｌまで濃縮した。この酵素溶液を２Ｍ硫安を含む２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）にて緩衝化したブチル−トヨパール６５０Ｍを充填したカラム（１．６φ×６０ｃｍ）にのせ、同緩衝液にて未吸着のタンパク質が溶出し終わるまで洗浄した。その後、２→０Ｍの硫安濃度のリニアグラディエントにて酵素を溶出した。活性画分を回収し、２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）に対して透析した後、ＰＭ−１０膜を用いて２ｍｌまで濃縮した。この酵素溶液を２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）にて緩衝化したトヨパールＨＷ−５５Ｆを充填したカラム（１．６φ×９５ｃｍ）にのせ、同緩衝液にて酵素を溶出した。活性画分を回収し、ＰＭ−１０膜を用いて２ｍｌまで濃縮し、精製酵素標品とした。得られた精製酵素標品の総活性量は５．６単位、比活性は８．０単位／ｍｇタンパク質であった。
得られた精製酵素標品は、ポリアクリルアミドゲル電気泳動において単一のタンパク質染色バンドを示し、高度に精製された標品であることを示した。
【００５６】
アクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｐｌｉｃａｔｕｍ） ＩＦＯ３０５３８株の糖転移酵素はＳＤＳ−ＰＡＧＥでヘテロダイマーであり、分子量は約６００００と約５１０００であった。糖転移酵素の部分アミノ酸配列分析をリジルエンドペプチダーゼにより消化後、逆相液体高速クロマトグラフィーを用い各ペプチドを分離し、またＮ末端アミノ酸配列分析をエドマン分解の方法により行なった。約１００μｇの精製酵素をマイクロチューブ中にとり乾燥し、これに１１０ｍｇの尿素加え、さらに２５μＬの１０ｍＭのＥＤＴＡを含む０．５Ｍ トリス緩衝液ｐＨ７．５を直接加え、２分間激しく撹拌した。この操作を尿素が溶解するまで繰り返した。尿素溶解後、全量を３００μＬになるよう１０ｍＭのＥＤＴＡを含む０．５Ｍ トリス緩衝液ｐＨ７．５で調整し、これに３．２μＬの２−メルカプトエタノールを加え、一晩マイクロチューブのヘッドスペースを窒素ガスで置換する。
【００５７】
これに、４．８μＬの４−ビニルピリジンを加え、さらに暗所にて２時間ヘッドスペースを窒素ガスで置換する。２μＬの酢酸を加えペプチドの修飾反応を止める。得られた反応用液を一晩透析により、２０ｍＭ トリス緩衝液 ｐＨ８．０に置換する。この溶液を乾燥後、これに３７ｍｇの尿素を加え、１００μＬの０．１Ｍ トリス緩衝液（ｐＨ８．０）で尿素を完全に溶解する。ここに２００ｐｍｏｌのリジルエンドペプチダーゼを加え、３７℃でペプチドを消化させ、２４時間後さらに同量のリジルエンドペプチダーゼを加え、３７℃、２４時間ペプチドを消化させた。
【００５８】
その消化物をＣ１８カラム（資生堂 ＣＡＰＣＥＬＬ ＰＡＫ Ｃ１８ Φ４．６Ｘ１５０ｍｍ ）を用いた逆相高速液体クロマトグラフィーにより分離し、７種類のペプチド断片を得た。ペプチドの溶出溶媒としてはＡ溶媒（０．１％トリフルオロ酢酸）、Ｂ溶媒（０．１％トリフルオロ酢酸を含むアセトニトリル／ 精製水 ８：２）を用い、溶出はＢ溶媒に関し、０〜１００％の直線濃度勾配で１ｍＬ／ｍｉｎの流速で９０分間溶出させることにより行なった。得られた断片化ペプチド（ＡＣ−６４， ＡＣ−６６， ＡＣ−６７， ＡＣ−６９， ＡＣ−７２， ＡＣ−７４， ＡＣ−７６）についてのアミノ酸配列決定試験を、気相ペプチドシークエンサーＰｒｏｃｉｓｅ ４９１（アプライドバイオシステム）を用いマニュアルに従って自動エドマン分解法により行なった。
【００５９】
以下に得られた部分アミノ酸配列を記す。
ＡＣ−６４： ＡＩＤＩＲＹＲＬＬＤＹＭＹＴＡ
ＡＣ−６６： ＡＣＮＡＹＧＤＤＬＥＥＬＩＬＥ
ＡＣ−６７： ＹＷＮＮＥＦＡＬＦＦＤＫＤＥＧ
ＡＣ−６９： ＹＧＹＲＤＶＦＥＶＡＥＶＶＹ
ＡＣ−７２： ＶＲＡＬＶＤＨＬＨＥＮＤＱＨ
ＡＣ−７４： ＰＡＶＡＹＶＥＳＤＴ
ＡＣ−７６： ＶＧＸＸＬＧＤＮＬＳＮＸＸＱＹＸＥ
なお、ＡＣ−６４， ＡＣ−６７， ＡＣ−７２， ＡＣ−７４の部分アミノ酸配列を基にそれぞれセンスプライマーおよびアンチセンスプライマーを設計した。
【００６０】
実施例
１．全ＲＮＡの単離およびＰｏｌｙ（Ａ）＋ＲＮＡの精製
上記（１）に記載されている方法に従いアクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）の菌体を取得した。菌体２０ｇを液体窒素により凍結した後ＲＮＡ Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ Ｋｉｔ（ＰｈａｒｍａｃｉａＢｉｏｔｅｃｈ）を用いてトータルＲＮＡを抽出した。
【００６１】
０．２ｍｇの全ＲＮＡ ５０μｌに等量のＥｌｕｔｉｏｎ ｂｕｆｆｅｒ（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．５， ２ｍＭ ＥＤＴＡ， ０．２％ ＳＤＳ）を加えた後、１００μｌのＯｌｉｇｏｔｅｘ ｄＴ３０〈Ｓｕｐｅｒ〉（宝酒造）を加え、６５℃、５分間保持し、さらに氷中にて３分間保持した。２０μｌの５Ｍ ＮａＣｌを加え、３７℃にて１０分間保持した後、遠心分離し沈殿を２５０μｌのＷａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．５， １ｍＭ ＥＤＴＡ， ０．１％ ＳＤＳ， ０．５Ｍ ＮａＣｌ）で懸濁した。遠心分離後、沈殿を１００μｌのＴＥ緩衝液で懸濁し、６５℃にて１０分間、さらに氷中にて３分間保持した。遠心分離後、上清をエタノール沈殿し、得られた沈殿を風乾後１０μｌの水に溶解させた。
【００６２】
２．ＲＴ−ＰＣＲ（Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ＰＣＲ）
アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）の菌体より精製したＰｏｌｙ（Ａ）＋ＲＮＡ ５００ｎｇからＳＵＰＥＲＳＣＲＩＰＴ Ｐｒｅａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ ｆｏｒ Ｆｉｒｓｔ Ｓｔｒａｎｄ ｃＤＮＡ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ（ＬＩＦＥＴＥＣＨＮＯＬＯＧＩＥＳ）を使用し、逆転写反応を行った。ただし、ｏｌｉｇｏ−ｄ（Ｔ） ｐｒｉｍｅｒの代わりに３’−Ａ Ｐ （５’− ＧＧＣＣＡＣＧＣＧＴＣＧＡＣＴＡＧＴＡＣＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴ−３’）を用いた。
【００６３】
３．３’−ＲＡＣＥ法（ｒａｐｉｄ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｃＤＮＡ ３’−ｅｎｄ）
３’−ＲＡＣＥは、Ｆｒｏｈｍａｎ， Ｍ．Ａ．らの方法に従い行った（Ｍ．Ａ．Ｆｒｏｈｍａｎ， Ｍ．Ｋ．Ｄｕｓｈ， ａｎｄ Ｇ．Ｒ．Ｍａｒｔｉｎ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ，８５， ８９９８−９００２（１９８８））。鋳型として実施例２のＲＴ−ＰＣＲ産物を、プライマーとしてＡＣ−６４ｐ（センスプライマー， ５’− ｔａｔａｇｃｃａｇｇｃａａａｃａｔｔｃｃｃ−３’）３’−ＡＵＡＰ（ａｂｒｉｄｇｅｄ ｕｎｉｖｅｒｓａｌ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｐｒｉｍｅｒ、５’−ＧＧＣＣＡＣＧＣＧＴＣＧＡＣＴＡＧＴＡＣ−３’）および３’−Ａ Ｐを使用し、９４℃， １分間−５０℃， ２分間−７２℃， ３分間の反応を３０サイクル行った。その結果、約２０００ｂｐのｃＤＮＡ断片が増幅した。本断片をＦＲＡＧ１と命名し塩基配列の解析を行った。
【００６４】
４．５’−ＲＡＣＥ法（ｒａｐｉｄ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｃＤＮＡ ５’−ｅｎｄ）
５’−ＲＡＣＥは、Ｆｒｏｈｍａｎ， Ｍ．Ａ．らの方法に従い行った（Ｍ．Ａ．Ｆｒｏｈｍａｎ， Ｍ．Ｋ．Ｄｕｓｈ， ａｎｄ Ｇ．Ｒ．Ｍａｒｔｉｎ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ，８５， ８９９８−９００２（１９８８））。ｍＲＮＡを１５ユニットのｔｅｒｍｉｎａｌ ｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）と添付緩衝液を用いて、ｍＲＮＡの５’側にオリゴ（ｄＴ）を付加した。これを鋳型に５’−ＡＵＡＰ（５’−ＧＡＣＴＣＧＡＧＴＣＧＡＣＡＴＣＧ−３’）および５’−Ａ Ｐ（５’−ＧＡＣＴＣＧＡＧＴＣＧＡＣＡＴＣＧＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴ−３’）をセンスプライマーとして、 ＡＣ−６７ｐＲＶ （５’− ｔａｇｇｇｃｇａａｔｔｃｇｔｔｇｔｔｃｃａ −３’）をアンチセンスプライマーとして行った。その結果、約１．３ｋｂの増幅断片ＦＲＡＧ−２を得，塩基配列の解析を行った。上記プライマーを用いた５’−ＲＡＣＥの条件を以下に示す。ＰＣＲの条件は９５℃３０秒、５５℃１分、７２℃１分 で３０サイクル行なった。
【００６５】
５．アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）由来α−グルコシダーゼ ｃＤＮＡの取得
アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）より精製したＰｏｌｙ（Ａ）＋ＲＮＡ ５００ｎｇを鋳型として、５’−ＲＡＣＥで得られた塩基配列から設計したＡＣ−１ｐ（５’−ｇｔｃｇａｃｇｔｃｇａｃｃｇａｔａａｃｔｇｔｃｔ−３’）およびＡＵＡＰをプライマーとしてＲＴ−ＰＣＲを行ったところ、約３０００ｂｐのｃＤＮＡを得た。本ｃＤＮＡの塩基配列を解析したところ、全塩基配列は２９７８ｂｐであり、１０３ｂｐの５’非翻訳領域と１２７ｂｐの３’非翻訳領域が存在していた。得られた塩基配列より、タンパク質のアミノ酸配列は９１６残基であった。また、得られた塩基配列は、アスペルギルス・ニガー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ）由来のα−グルコシダーゼと約４７％、シゾサッカロミセス・ポンベ（Ｓｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｏｍｂｅ）由来と４５％のホモロジーが確認されたことから、このｃＤＮＡをアクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）由来のα−グルコシダーゼ遺伝子と同定した。
【配列表】
【図面の簡単な説明】
【図１】アクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｐｌｉｃａｔｕｍ ）α−グルコシダーゼ ｃＤＮＡの遺伝子の制限酵素地図。
【図２】アクレモニウム・インプリカタム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ ｉｍｐｌｉｃａｔｕｍ ）からのα−グルコシダーゼ ｃＤＮＡのクローニングストラティジー。
Claims (15)
- 以下の（ａ）若しくは（ｂ）のタンパク質をコードする遺伝子または以下の（ｃ）若しくは（ｄ）のＤＮＡからなる遺伝子。
（ａ）配列表の配列番号２のアミノ酸番号１〜９１６で示されるアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質。
（ｂ）配列表の配列番号２のアミノ酸番号２６〜９１６で示されるアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質。
（ｃ）配列表の配列番号１に示される塩基配列からなるＤＮＡ、または配列番号１に示される塩基配列番号１０４〜２８５１の塩基配列からなるＤＮＡ。
（ｄ）（ｃ）に示すＤＮＡまたは（ｃ）に示すＤＮＡと相補的な配列を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ配列。 - 請求項１に記載の（ａ）若しくは（ｂ）のタンパク質をコードする遺伝子または以下の（ｃ）若しくは（ｄ）のＤＮＡからなる遺伝子を含む組換えベクター。
- ベクターが、酵母で機能するベクターである請求項２記載の組換えベクター。
- 酵母で機能するベクターがピチア属（Ｐｉｃｈｉａ属）、サッカロミセス属（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属）またはシゾサッカロミセス属（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属）に属する宿主で機能するベクターである請求項３に記載の組換えベクター。
- ベクターが、カビで機能するベクターである請求項２記載の組換えベクター。
- カビで機能するベクターが、リゾープスニベウス（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｎｉｖｅｕｓ）またはリゾープスデルマー（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ ｄｅｌｅｍａｒ）で機能するベクターである請求項５に記載の組換えベクター。
- 請求項２〜６のいずれか一項に記載の組換えベクターを含む形質転換体。
- 宿主が、微生物、酵母またはカビである請求項７に記載の形質転換体。
- 宿主が酵母であり、組換えベクターが請求項３または４記載の組換えベクターである請求項７に記載の形質転換体。
- 宿主がカビであり、組換えベクターが請求項５または６記載の組換えベクターである請求項７に記載の形質転換体。
- 請求項７〜１０のいずれか一項に記載の形質転換体を培養し、糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質を採取することを特徴とする酵素の製造方法。
- 遺伝子組換え法によって得られ、配列表の配列番号２のアミノ酸番号１〜９１６で示されるアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有するタンパク質。
- 遺伝子組換え法によって得られ、配列表の配列番号２のアミノ酸番号２６〜９１６で示されるアミノ酸配列、または該アミノ酸配列において１もしくは複数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつ糖受容体へのα−１，３−結合のグルコース転移またはα−１，３−およびα−１，４−結合のグルコース転移を触媒する糖転移酵素活性を有する、遺伝子組換えタンパク質。
- 請求項１２または１３に記載の糖転移酵素活性を有するタンパク質を、澱粉およびその分解物から選ばれる基質と接触させることを特徴とする、α−１，３−結合を分子内に含む糖類の製造方法。
- α−１，３−結合を分子内に含む糖類がニゲロオリゴ糖である請求項１４に記載の製造方法。
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| JP2019521660A (ja) * | 2016-06-02 | 2019-08-08 | ネステク ソシエテ アノニム | αグルカン |
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