JP2003533555A - 葉酸−多糖複合体、その製造方法およびそれを活性成分として含む医薬組成物 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 本発明は葉酸−多糖複合体およびその製造方法に関し、より詳細には葉酸−デキストラン複合体、その製造方法、有効成分として前記複合体を含む医薬組成物ならびに腫瘍の治療に前記組成物を使用することに関する。本発明の葉酸−多糖複合体は一般式：（Ｘ）_n−Ｙを有し、Ｘは同一であるかもしくは異なり、葉酸、葉酸誘導体および葉酸受容体の経路から細胞に入ることができる他の物質から選択され、Ｙは多糖であり、ｎ≧１である。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】 （発明の技術分野） 本発明は葉酸−多糖複合体（ｆｏｌｉｃ ａｃｉｄ−ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒ
ｉｄｅ ｃｏｍｐｌｅｘ）およびその製造方法に関し、より詳細には葉酸−デキ
ストラン複合体、その製造方法、前記複合体を活性成分として含む医薬組成物、
および腫瘍の治療に前記組成物を使用することに関する。

【０００２】 （発明の背景） 特殊な葉酸結合タンパク質（ｆｏｌｉｃ ａｃｉｄ ｂｉｎｄｉｎｇ ｐｒｏ
ｔｅｉｎ、ＦＢＰ）の概念が発表された後（Ｊｏｈｎｓ ｅｔ ａｌ．：Ｊ．Ｃ
ｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．１９６１；４０：１６８４）、Ｒｏｔｈｅｒｎｂｅｒｇ
等は人体の細胞にＦＢＰを最初に見出し（Ｐｒｏｃ．Ｓｏｃ．Ｅｘｐｌ．Ｂｉｏ
ｌ．Ｍｅｄ．１９７０；１３３：４２８、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．１９７
１；５０：７１７）、またＬｅｓｌｉ等は細胞膜からＦＢＰを分離した（Ｂｉｏ
ｃｈｅｍ．１９７２；１１：１９６９）。Ａｎｔｏｎｙ等は胎盤細胞を系統的に
研究し、前記ＦＢＰが細胞膜上の葉酸受容体（ＦＲ）としての機能をもつという
ことを明確に示し（Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ １９８１；２５６（１８）：９６
８４）、系統的にまた次々とＦＲの生化学的性質を例示した（Ｂｌｏｏｄ １９
９２；７９（１１）：２８０７、Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｎｕｔｒ．１９９６；１６
：５０１）。ＦＲは細胞膜のグリセロフォスファチド・イノシトール（ｇｌｙｃ
ｅｒｏｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｅ ｉｎｏｓｉｔｏｌ、ＧＰＩ）上に固定されたあ
る種のＦＢＰであり、ＧＰＩ特異的フォスファチダーゼＣもしくはＤにより細胞
膜からこれを切り離すことができる（Ｌｅｅ ｅｔ ａｌ：Ｂｉｏｃｈｅｍ．１
９９２；３１：３２３６、Ｖｅｒｍａ ｅｔ ａｌ：Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．
１９９２；２６７（６）：４１１９）。ＦＲは本質的に細胞膜の表面に一様に存
在し、葉酸と結合した後、ＦＲはイニシエータにより促進されて、被覆されたく
ぼみ（ｐｉｔ）もしくはカベオラ（ｃｏｖｅｏｌａｅ）へと移行することができ
、したがってクラスター形成し（Ｍａｙｏｒ ｅｔ ａｌ：Ｓｃｉｅｎｃｅ １
９９４；２６４：１９４８）、次に葉酸は結果として起こるエンドサイトーシス
により細胞内に取り込まれる（Ａｎｄｅｒｓｏｎ ｅｔ ａｌ：Ｓｃｉｅｎｃｅ
１９９２；２５５：４１０）。

【０００３】 人体には主に３つの形のＦＲ：ＦＲ−α、ＦＲ−βおよびＦＲ−γがあり、Ｆ
Ｒ−γは造血細胞で発現されるある種の分泌タンパク質である（Ｓｈｅｎ ｅｔ
ａｌ：Ｂｉｏｃｈｅｍ １９９５；３４：５６６０）。ＦＲ−αおよびＦＲ− β も動物細胞の表面に存在し、ＦＲ−αは主に腫瘍細胞および腎臓細胞で発現さ
れ、またＦＲ−βは肝細胞で発現される。葉酸は細胞のアフィニティと密度をあ
る程度調節できる。葉酸の服用を制限した後、ＦＲ−αの葉酸に対するアフィニ
ティは低下し、ＦＲ−αの密度は腫瘍細胞では増加し腎臓細胞では減少するが、 ＦＲ−β のそれは明白に影響されるということはない（Ｇａｔｅｓ ｅｔ ａｌ
：Ｃｌｉｎ Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ １９９６；２：１１３５）。

【０００４】 ほとんどの腫瘍細胞上でのＦＲの発現数もしくは活性が正常細胞上のそれより
著しく大きいということが開示され（Ｃａｍｂｅｌｌ ｅｔ ａｌ：Ｃａｎｃｅ
ｒ Ｒｅｓ １９９１；５１：５３２９、Ｃｏｎｅｙ ｅｔ ａｌ：Ｃａｎｃｅ
ｒ Ｒｅｓ １９９１；５１：６１２５、Ｗｅｉｔｍａｎ ｅｔ ａｌ：Ｃａｎ
ｃｅｒ Ｒｅｓ １９９２；５２：３３９６）、腫瘍細胞を標的にする誘導媒体
として葉酸を用いる研究が急速に進む。

【０００５】 腫瘍画像診断による動物実験の結果は、放射性核種と直接あるいは間接的に結
合する、ＦＲリガンドとしての葉酸複合体は腫瘍サイトに対する著しい標的作用
をもつということを示す（Ｌｏｗ ｅｔ ａｌ：ＷＯ９６／３６３６７ Ｎｏｖ
．２１，１９９６；ＵＳＡ ５６８８４８８ Ｎｏｖ．１８，１９９７）。

【０００６】 葉酸を間接的にリポソーム表面に結合させることにより得られた葉酸−ＰＥＧ
−リポソームによる細胞培養結果は、前記の葉酸−ＰＥＧ−リポソームの腫瘍細
胞に対する標的効果は、ＰＥＧ−リポソームもしくは通常のリポソームのそれよ
り優れているということを示す（Ｌｅｅ ｅｔ ａｌ：Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ
１９９４；２６９（５）：３１９８、Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ：Ｐｒｏｃ Ｎａ
ｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ １９９５；９２：３３１８、Ｌｅｅ ｅｔ
ａｌ：Ｂｉｏｃｈｉｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ａｃｔａ １９９５；１２３３：１３
４、Ｖｏｇｅｌ ｅｔ ａｌ：Ｊ Ａｍ Ｃｈｅｍ Ｓｏｃ １９９６；１１８
（７）：１５８１、Ｔｈｏｍｐｓｏｎ ｅｔ ａｌ：ＷＯ９７／３１６２４ Ｓ
ｅｐ．４，１９９７、Ｌｕ，Ｙａｏｗｅｉ ｅｔ ａｌ：Ｔｒａｎｓａｃｔｉｏ
ｎ ｏｆ Ｓｈａｎｇｈａｉ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｍｅｄｉｃａｌ
Ｓｃｉｅｎｃｅ ２０００；２７（１）：４）。

【０００７】 葉酸−ポリマー複合体は、非リソソーム細胞質にＦＲを通して前記ポリマーを
全体として取り込み放出することができる。ウシの血清アルブミン、ウシの免疫
アルブミン、西洋ワサビ・ペルオキシダーゼ、リボヌクレアーゼ、豆セリナーゼ
（ｂｅａｎ ｓｅｒｉｎａｓｅ）阻害剤および抗ＤＮＡオリゴヌクレオチドを、
葉酸に結合させ、それらの対応する効果を示すために、ＫＢセル（ヒト上咽頭癌
細胞）、ＨｅＬａ細胞（ヒト子宮頚癌細胞）およびＸＣ細胞（ラウス肉腫ウイル
スでトランスフェクションした繊維芽細胞）に、明らかに導入することができる
（Ｌｅａｍｏｎ ｅｔ ａｌ：Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ
１９９１；８８：５５７２、Ｌｏｗ ｅｔ ａｌ：ＷＯ９０／１２０９６ Ｏ
ｃｔ．１８，１９９０）。葉酸を結合させた、抗Ｔ細胞受容体モノクローナル抗
体あるいは抗Ｆｃ受容体モノクローナル抗体は、腫瘍細胞、Ｔ細胞もしくはナチ
ュラル・キラー細胞、単球およびマクロファージとしっかりと一緒に結合して、
前記腫瘍細胞を消散させるという目的を達成することができる（Ｄａｖｉｄ ｅ
ｔ ａｌ：ＷＯ９６／３４６３０ Ｎｏｖ．７，１９９６）。さらに、葉酸に結
合した後、タンパク質の合成を阻害する働きをもつ毒素（モモルジン（Ｍｏｍｏ
ｒｄｉｎ）、ある種のタンパク質毒素、その細胞毒は通常リボソームを通過し細
胞質に入った後にのみ表れる；ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ菌の外毒素フラグメント
（ＬｙｓＰＥ３８およびＣｙｓＰＥ３５））は、腫瘍細胞の成長を抑制する、非
常に高められた能力を示す（Ｌｅａｍｏｎ ｅｔ ａｌ：Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅ
ｍ １９９２；２６７（３５）：２４９６６６、１９９３；２６８（３３）：２
４８４７）。

【０００８】 デキストラン（ｄｅｘｔｒａｎ）は、サッカロースをｌｅｕｃｏｎａｓｔｏｃ ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄａｓで発酵させることにより得られるＤ−グルコース
のポリマーである（Ｇｒｏｎｗａｌｌ ｅｔ ａｌ：Ａｃｔａ Ｐｈｙｓｉｏｌ
Ｓｃａｎｄ １９９４；７：９７、１９４５；９：１、ＵＳＡ ２４３７５１
８、ＵＳＡ ２６４４８１５）。デキストランのグルコシルの結合様式は、異な
る菌株で得られた異なるデキストランの間で互いに異なるが、主な結合様式はα
−１，６結合であり、またその他にα−１，４結合もしくはα−１，３結合があ
る（Ｖａｎ Ｃｌｅｖｅ ｅｔ ａｌ：Ｊ Ａｍ Ｃｈｅｍ Ｓｏｃ １９５６
；７８：４４３５，Ｘｕ，Ｄａｎｆｅｎｇ ｅｔ ａｌ：Ｔｒａｎｓａｃｔｉｏ
ｎ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ １９８６；２１（３），２０４）。動物
実験と臨床実験の追跡結果は、デキストランを注入した後、いかなる異常も組織
の損傷も動物の主要な器官に見出されず（Ｂｏｙｄ ｅｔ ａｌ：Ｌａｎｃｅｔ
１９５３；１：５９、Ｇｒｏｎｗａｌｌ ｅｔ ａｌ：Ａｃｔａ Ｐｈｙｓｉ
ｏｌ Ｓｃａｎｄ １９４５；９：１）、またデキストランは肝臓、脾臓、腎臓
、肺および人体の他の器官に蓄積していない（Ｗｉｌｋｉｎｓｏｎ ｅｔ ａｌ
：Ｊ Ｉｎｔｅｒａｌ ｃｈｉｒ １９５１；１１：１８６）ということを示す
。臨床的には、デキストランは、出血ショック、火傷および肝臓−腎臓症候群、
急性血栓、血栓閉塞性脈管炎、心臓梗塞、全身性硬化症などの治療のために、主
に血液増量剤（Ｇｅｌｉｎ ｅｔ ａｌ：Ａｃｔａ Ｃｈｉｒ Ｓｃａｎｄ １
９６１；１２２：３０９）および血液流動性改良剤Ｇｅｌｉｎ：Ｓｏｃｋ Ｐａ
ｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓ ａｎｄ Ｔｈｅｒａｐｙ １９６２；Ｐ３３２）として
用いられている。

【０００９】 デキストランには多数の水酸基をもつという特殊な生物学的特徴があるので、
それは多くの治療薬の担体として用いられて、前記治療薬の化学的安定性の強化
あるいは前記治療薬の生物学的有効性の向上あるいはリンパ系の疾患の診断とい
う目的を達成してきた。これらのデキストラン−治療薬複合体には、デキストラ
ン−アンチモン（Ｍｉｋｈａｉｌ ｅｔ ａｌ：Ｅｘｐｔｌ Ｐａｒａｓｉｔｏ
ｌ １９７５；３７：３４８）、デキストラン−鉄（Ｂｅｒｅｓｆｏｒｄ ｅｔ
ａｌ：Ｂｒｉｔ Ｊ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ １９５７；１２：１０７）、デキ
ストラン−インシュリン（Ａｒｍｓｔｒｏｎｇ ｅｔ ａｌ：Ｂｉｏｃｈｉｍ
Ｂｉｏｐｈｙｓ Ｒｅｓ Ｃｏｍｍ １９７２；４７：３５４）、デキストラン
−ダウノマイシン（Ｂｅｒｎｓｔｅｎ ｅｔ ａｌ：Ｊ Ｎａｌｔ Ｃａｎｃｅ
ｒ Ｉｎｓｔ １９７８；６０（２）：３７９）、デキストラン−マイトマイシ
ンＣ（Ｋｏｊｉｍａ ｅｔ ａｌ：Ｊ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ １９８０；３２：
３０）、デキストラン−ビタミンＢ₁₂（Ｓｃｒｏｌｌｉｎｉ ｅｔ ａｌ：Ｅｕ
ｒ Ｊ Ｍｅｄ Ｃｈｅｍ １９７４；９：６２１）、デキストラン−アメトプ
テリン（Ｈｕｂｅｒｔ ｅｔ ａｌ：ＥＰ０３８３１７０Ａ２）、デキストラン
−α（あるいはβ）−ジアスターゼ（あるいはトリプサーゼ（ｔｒｙｐｓａｓｅ
））（Ｍａｒｓｈａｌｌ ｅｔ ａｌ：Ａｒｃｈ Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｂｉｏｐｈ
ｙｓ １９７５；１６７：７７７）、デキストラン−硫酸塩（Ｋｏｚｏ Ｙａｍ
ａｄａ ｅｔ ａｌ；Ｊａｐ Ｃｉｒｃｕｌ ｊ １９６１；２５：５７０，５
７５，５７９）、放射性テクネチウム（^99mＴｃ）−デキストラン（Ｈｅｎｚｅ
ｅｔ ａｌ：Ｊ Ｎｕｃｌ Ｍｅｄ １９８２；２３：９２３、Ｅｒｃａｎ
ｅｔ ａｌ：Ｅｕｒ Ｊ Ｎｕｃｌ Ｍｅｄ １９８５；１１：８０、Ｌｕ，Ｗ
ｅｉｙａｏ ｅｔ ａｌ：Ｔｒａｎｓａｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｓｈａｎｇｈａｉ
Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ １９９１；１
８（４）２４６、Ｌｉｕ，Ｙｏｎｇｃｈａｎｇ ｅｔ ａｌ：Ｃｈｉｎａ Ｊ
Ｎｕｃｌ Ｍｅｄ １９９３；１３（３）：１４３）。前記のデキストラン−治
療薬複合体の中で、^99mＴｃ−デキストラン１０５注入およびスズ−デキストラ
ン１０５注入は、本発明者により開発され、リンパ系の疾患に冒された部分を特
定するためおよびリンパ系転移腫瘍の補助診断のために用いられ、正式に製造さ
れ臨床的に使用されてきた。

【００１０】 要約すると、腫瘍細胞表面上のＦＲは、葉酸によって、放射性核種、リポソー
ムおよびポリマー治療薬を前記腫瘍細胞に導入する有効な経路である；デキスト
ランは長い間血液増量剤ならびに放射性核種および他の治療薬の担体として研究
され使われているが、デキストラン自体は抗腫瘍作用を示さない。これまでに、
葉酸と多糖の複合体、特に葉酸とデキストランの複合体、および抗腫瘍体として
それらを使用することを研究した文献もしくは特許は存在しない。

【００１１】 （発明の概要） 本発明は、式Ｘ−Ｙの葉酸−多糖複合体に関し、Ｘは、葉酸、その誘導体、お
よび細胞膜上の葉酸受容体経路で細胞に入ることができる他の物質からなる群か
ら選択され、Ｙは多糖である。

【００１２】 より詳細には、本発明は、式（Ｘ）_n−Ｙの葉酸−多糖複合体に関し、Ｘは同
一であるかもしくは異なり、葉酸、葉酸の誘導体、および葉酸受容体経路で細胞
に入ることができる他の物質からなる群から選択され、Ｙはアラビア（Ａｒａｂ
ｉａ）ガラクトース以外の多糖の１種であり、ｎ≧１である。

【００１３】 また本発明は前記葉酸−多糖複合体および医薬用アジュバントを含む医薬組成
物に関する。

【００１４】 また本発明は抗腫瘍治療薬剤の製造に前記葉酸−多糖複合体を用いることを対
象とする。

【００１５】 他方、本発明は葉酸受容体陽性患者の腫瘍を治療する方法に関し、それには治
療される個人に有効量の前記葉酸−多糖を投与することが含まれる。

【００１６】 また本発明は治療薬として用いられる葉酸−多糖複合体に関する。

【００１７】 （発明の詳細な説明） 本発明は上記に定義された一群の葉酸−多糖複合体を提供する。驚くべきこと
に、前記複合体は細胞膜上の葉酸受容体経路を通って細胞内に入ることができる
だけでなく、ｉｎ ｖｉｖｏで腫瘍細胞を殺し、また正常細胞を傷つけることな
く腫瘍組織の成長を抑える。

【００１８】 本発明が対象とする、葉酸、葉酸の誘導体もしくは葉酸受容体の経路から細胞
内に入ることができる他の物質Ｘは、動物もしくは人体の細胞にそれとわかる毒
性と副作用をもたず、葉酸、フォリン酸（ｆｏｌｉｎｉｃ ａｃｉｄ）、ジヒド
ロ葉酸、テトラヒドロ葉酸、テトラヒドロプテリン、プテロイルポリグルタミン
酸、２−デアミノ−ヒドロキシ葉酸、１−デニトロ葉酸、３−デニトロ葉酸、８
−デニトロ葉酸などからなる群から選択され、「デニトロ（ｄｅｎｉｔｒｏ）」
は葉酸の前記位置の窒素原子が炭素原子で置き換えられることを意味する。好ま
しくは、Ｘは葉酸、ジヒドロ葉酸あるいはテトラヒドロ葉酸であり、より好まし
くは葉酸である。

【００１９】 本発明が対象とする様々な多糖Ｙは、動物もしくは人体の腫瘍細胞およびそれ
らの成長を顕著にまた直接的に抑える活性をもたず、またそれらは受容体に対す
るリガンド性をもたない。これらの多糖には以下のものが含まれる：（１）デキ
ストラン類、例えば：デキストラン、ニゲラン、プルラン、スクレログリカン、
レンチナン、クレスチン（コリオラン、ポリスチクチン）、パキマラン（パキマ
ン）、コルディセプス多糖（コルジセポース（ｃｏｒｄｙｃｅｐｏｓｅ））、ハ
ラタケ（ａｇａｒｉｃ）多糖、レンチナン、シゾフィラン、ナラカケモドキ多糖
、ヤマブシタケ多糖（ハリネズミタケ）、トレメラス（ｔｒｅｍｅｌｌａｓ）、
アカパンカビ多糖、ヒトヨタケ多糖、リケナン（ｌｉｃｈｅｎａｎ）、ヘテロリ
ケナン、ラミナリン、徐長卿多糖、アンジェリカ多糖、シマハスノハカズラ多糖
、アストラガルス多糖、ラミナリン、アミロース、デキストリンなど；（２）ポ
リサッカロース類、例えば：ポリサッカロース；（３）フルクトサン、例えば：
シベリア・アマドコロ根茎多糖、リコリス多糖、大麦多糖およびｓｃｉｌｌａ
ｍａｒｉｔｉｍｅ多糖、アワガエリ（ｐｈｌｅａｎ）のレブロシド（ｌｅｖｕｌ
ｏｓｉｄｅ）およびカモジグサ多糖；（４）ヘテロ多糖類、例えば：クラドスポ
リウム（ｃｌａｄｏｓｐｏｒｅ）多糖、ヘテロペニシリウム（ｈｅｔｅｔｏｐｅ
ｎｉｃｉｌｌｉｃ）多糖、ユミケカビ多糖、アカパンカビ多糖、マンネンタケ多
糖、ポルフィラン、多刺（ｍａｎｙｐｒｉｃｋｌｅ）ウコギ根多糖、コンニャク
多糖、ジンセン多糖、インジカラムス（ｉｎｄｉｃａｌａｍｕｓ）多糖、バガス
多糖、セイヨウカリン多糖、トウネズミモチ実多糖、タバシーア多糖、茶多糖な
ど；（５）硫酸化モノ−あるいはヘテロ多糖類、例えば：寒天多糖、カラギーン
多糖、ギンナンソウ多糖、クロレラ多糖、フコイジン、ヘパリン、コンドロイチ
ン硫酸など；（６）モノ−あるいはヘテロ多糖アルドン酸酸性多糖類、例えば：
ジンセンペクチン多糖および他のペクチン多糖、アラビアゴム、トラガカントゴ
ム、ガティゴム、トラガカント、アルギン酸塩など；および（７）他の親水性ポ
リマー類、例えば：ポリエチレンオキシド、メトキシポリエチレングリコールな
ど。

【００２０】 本発明においては、好ましく選択された多糖は４，０００から２，０００，０
００の分子量をもつものである。

【００２１】 好ましい実施形態において、多糖Ｙはデキストランであり、また前記デキスト
ランの好ましい分子量は１０，０００から２，０００，０００、より好ましくは
１０，０００から１５０，０００、また最も好ましくは約１０５，０００である
。

【００２２】 前記の式（Ｘ）_n−Ｙにおいて、ｎは１より大きいかもしくは等しい整数であ
る。ｎの上限は重要ではなく、使用される多糖の種類と分子量に基づき定められ
る。前記葉酸−多糖複合体を製造する縮合反応における原料の比を加減すること
により、ｎの値を調節することができる。当分野の技術者は、通常の方法、例え
ば前記複合体の抗腫瘍活性を求めることにより、ある特定の葉酸−多糖複合体に
対するｎの最適値を選択することができる。

【００２３】 上の式のｎが１より大きいとき、Ｘは同一であっても異なっていてもよい。本
発明では好ましいＸは同一である。

【００２４】 本発明において、用語「葉酸−多糖複合体」はフリーの複合体（ｆｒｅｅ ｃ
ｏｍｐｌｅｘ）およびその薬効のある適当な塩を意味する。前記複合体にアルカ
リ性窒素原子が存在する場合、それは、薬用の無機酸もしくは有機酸、例えば塩
酸、硫酸、リン酸、酢酸、プロピオン酸、コハク酸、マレイン酸、ジヒドロキシ
−ナフトエ酸、メチルスルホン酸、グリコール酸、ベンゼンスルホン酸、ｐ−ト
ルエンスルホン酸、ナフタレンスルホン酸などと塩を生成することができる。遊
離カルボキシル基が前記複合体分子に存在する場合、それは、薬用無機塩基もし
くは有機塩基、例えば水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、水酸化アンモニウム
、トリエチルアミン、エタノールアミン、ジメチルアミノ−ピリジンなどと塩を
生成することができる。

【００２５】 本発明の葉酸−多糖複合体において、葉酸（Ｘ）と多糖は共有結合で、好まし
くは葉酸のカルボキシルと多糖のヒドロキシルの間に形成されたエステル結合で
結合している。前記葉酸と多糖の間のカップリングは既知の方法で実施される。
例えば、前記葉酸のカルボキシルが始めに脱水剤、例えばヒドロキシ−ジイミダ
ゾール、カルボジイミドなどで活性化され、このことはＷＯ９０／１２０９６お
よびＷＯ９６／３４６３０に開示されており、次に多糖のヒドロキシルと反応さ
せエステル結合を生成させて本発明の複合体を得る。

【００２６】 前記複合体を製造するための好ましい解決策において、葉酸と多糖はアルカリ
触媒と脱水剤の存在下に縮合し、アルカリ触媒は通常トリエチルアミン、ピリジ
ンなどであり、好ましくはピリジンおよびジメチルアミノ−ピリジンであり、ま
た脱水剤は好ましくはカルボジイミド型脱水剤、例えばジシクロヘキシル−カル
ボジイミドおよび１−エチル−３−（３−ジメチルアミノ−プロピル）−カルボ
ジイミドである。反応は、好ましくは、不活性有機溶剤、例えば芳香族炭化水素
（ベンゼン、トルエンなど）、ケトン（アセトン）、ハロハイドロカーボン（ジ
クロロメタン、トリクロロメタンなど）、酸アミド（ホルムアミド、Ｎ，Ｎ−ジ
メチル−ホルムアミド）、スルホキシド（ジメチルスルホキシド）およびこれら
の任意の混合物中、より好ましくは非プロトン性極性溶剤、例えばＮ，Ｎ−ジメ
チル−ホルムアミド、ジメチルスルホキシドおよび他の溶剤とこれらの混合物中
で行なわれる。

【００２７】 前記縮合反応は通常室温から反応混合物の環流温度までの温度で、また好まし
くは室温などの温和な温度で実施される。

【００２８】 反応時間は一般に数分から数十時間、好ましくは１０分から２４時間、またよ
り好ましくは２０分から２０時間である。

【００２９】 反応終了後、通常の方法、例えば濾過、沈澱、結晶化、塩析、ケイ酸クロマト
グラフィ、排除クロマトグラフィなどにより、本発明の複合体を反応混合物から
分離、精製することができ、好ましくは、Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−１５およびＳ
ｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５カラム他を用いるような、デキストラン・ゲル排除ク
ロマトグラフィにより精製することができる。

【００３０】 本発明の葉酸−多糖複合体を評価するために、以下の実験が使われる。

【００３１】 １．前記葉酸−多糖複合体が葉酸受容体経路で腫瘍細胞に入るということの実
証。葉酸−デキストランはフルオレセインで標識されてモデル治療薬として用い
られ、腫瘍細胞がｉｎ ｖｉｖｏで培養される。腫瘍細胞により摂取される葉酸
−デキストランに明らかな飽和傾向があるかどうか、また葉酸−デキストランの
取り込みの程度がデキストランの取り込みより多いかどうかが、様々な培養濃度
で腫瘍細胞により摂取される葉酸−デキストランの変化およびそれと取り込みさ
れた純デキストランの変化との間の差、また同一の培養濃度で様々な培養時間で
の葉酸−デキストランの取り込みの変化を調べることにより知られる；遊離葉酸
が明白にまた競合的に葉酸−デキストランの取り込みを阻害しうるかどうかが、
様々な濃度の遊離葉酸で、同一の培養濃度および時間で腫瘍細胞により摂取され
る葉酸−デキストランの変化を調べることにより知られる；腫瘍細胞膜上の葉酸
受容体の減少が前記腫瘍細胞により摂取される葉酸−デキストランの量に影響し
うるかどうかが、様々な濃度のホスファチダ−ゼＤで予め処理された腫瘍細胞に
より摂取される葉酸−デキストランの量を調べることにより知られる。最後に、
前記葉酸−デキストランが葉酸受容体経路で腫瘍細胞に入ることができるかどう
かが包括的に評価される。

【００３２】 ２．ｉｎ ｖｉｖｏでの腫瘍細胞による葉酸−多糖の取り込みの観察。フルオ
レセインで標識された葉酸−デキストランもしくはデキストランが、腫瘍をもつ
ヌードマウスの腫瘍の側に注射され、次に２４時間後にヌードマウスは殺され、
腫瘍組織の腫瘍細胞における蛍光強度と分布が観測されて、ｉｎ ｖｉｖｏでの
腫瘍細胞に葉酸−多糖が選択的に取り込みされる結果を知る。

【００３３】 ３．ｉｎ ｖｉｖｏでの腫瘍を抑制する葉酸−多糖の作用。腫瘍のあるヌード
マウスが、ブランク・グループ、デキストラン・グループおよび葉酸−デキスト
ラン・グループに分けられ、次に、それらはそれぞれ、葉酸−デキストランもし
くはデキストランを腫瘍の側に注射されるかもしくは注射されない。継続して少
量および多量に投与した後の、腫瘍の大きさと重さの変化、腫瘍組織の形態と構
造の変化ならびに腫瘍細胞のＤＮＡ倍数体の変化が観察されて、腫瘍があるヌー
ドマウスのｉｎ ｖｉｖｏでの腫瘍を抑制する上での葉酸−多糖の作用を知る。

【００３４】 ４．葉酸−多糖の安全性の評価。腫瘍の化学療法剤の最大の欠点はそれらの毒
性が比較的強いことと副作用である。前記葉酸−多糖が同じ欠点をもつかどうか
が、葉酸−多糖の急性毒性試験により調べられる。最大濃度で葉酸−デキストラ
ンを静脈内注射した後で、活性レベル、マウスの重量変化と死亡、ならびに殺さ
れたマウスの主な内臓器官の損傷が観察されて、抗腫瘍剤としての葉酸−多糖の
基本的安全性を知る。

【００３５】 本発明においては、分子量が４，０００〜２，０００，０００の、前記デキス
トラン、ポリサッカロース、硫酸化モノ−もしくはヘテロ多糖およびモノ−もし
くはヘテロ多糖アルドン酸酸性多糖を葉酸と反応させて、共有結合で繋がった葉
酸−多糖複合体を得る。デキストランの分子量が１０５，０００である、葉酸−
デキストラン複合体をモデル治療薬として選択することにより、前記実験の結果
は以下のようになる。

【００３６】 １．ｉｎ ｖｉｔｒｏでの腫瘍細胞の培養。葉酸−デキストランによる、ｉｎ ｖｉｔｒｏでのＨｅＬａ２２９の培養結果は以下のことを示す：（１）培養濃
度の増加につれ葉酸−デキストランの取り込みが増加するが、増加の程度は徐々
に小さくなり（図１参照）、葉酸−デキストランの濃度が４．５ｍｇ／ｍｌのと
き、葉酸−デキストランの取り込みはデキストランのそれの２．７倍多い；（２
）葉酸−デキストランの取り込みは培養時間が長くなるにつれ増加するが、増加
の程度は徐々に小さくなる（図２参照）；（３）葉酸−デキストランの取り込み
は、培養流体の葉酸濃度の増加につれ著しく減少する（図３参照）；（４）葉酸
−デキストランの取り込みは、Ｈａｌａ２２９細胞を予め処理するために用いら
れたホスファチダーゼＤの濃度と共に明らかに減少する（図４参照）。葉酸−デ
キストランは葉酸受容体経路でＨｅＬａ２２９細胞に入ることができ、またそれ
らの取り込みはデキストランの取り込みより著しく多いということを知ることが
できる。

【００３７】 ２．腫瘍のあるヌードマウス（ｎａｋｅｄ ｍｉｃｅ）による、ｉｎ ｖｉｖ
ｏでの腫瘍細胞標的化と腫瘍抑制の実験。ＨｅＬａ２２９細胞が接種された、腫
瘍のあるヌードマウスの腫瘍の側に葉酸−デキストランを注射することにより実
施された腫瘍細胞標的化実験の結果は、腫瘍組織に拡散した後で腫瘍細胞に入る
葉酸−デキストランの量がデキストランの量より明らかに多く（図５参照）、ｉ
ｎ ｖｉｖｏでの腫瘍標的化は明白であるということを示す。ＨｅＬａ２２９細
胞が接種された、腫瘍のあるヌードｃｈマウスに葉酸−デキストランを用いる腫
瘍抑制実験の結果は以下のことを示す：（１）腫瘍の成長は葉酸−デキストラン
の少量投与で遅くなる；また腫瘍の成長は多量の葉酸−デキストランの服用で抑
制される（図６参照）；（２）３３日間の投与の後、葉酸−デキストラン・グル
ープの殺されたマウスの腫瘍はブランク・グループおよびデキストラン・グルー
プの腫瘍より明らかに小さく（図７と８を参照）、腫瘍の抑制率は約７５％であ
る；（３）葉酸−デキストランにはブランク・グループおよびデキストラン・グ
ループに比べて、腫瘍組織を破壊する明らかな作用がある（図９ａ、９ｂおよび
９ｃを参照）；（４）葉酸−デキストランは腫瘍組織の腫瘍細胞におけるＤＮＡ
インデックス（すなわち、腫瘍細胞のＤＮＡ質量と正常細胞のＤＮＡ質量の比、
これは以後ＤＩと表わされる）を著しく低下させることができ、ブランク・グル
ープのＤＩは３．５、デキストラン・グループでは３．１で葉酸−デキストラン
・グループでは２．３である。

【００３８】 ３．急性毒性試験。オスとメスのマウスにそれぞれ１．５ｇ／ｋｇの葉酸−デ
キストラン（溶解性が低いために、これは、最大の許容投与量で調べる実験を実
施する最大濃度である）を静脈注射した後７日間観察すると、マウスの活性は正
常であり、マウスの重さは増加し、またマウスは１匹も死なず、また主な内臓器
官にそれとわかる異常は全く見られないということを急性毒性試験結果は示す。

【００３９】 以上の実験結果は、本発明が以下の長所を有するということを証明する：（１
）デキストラン自体に抗腫瘍作用はない；（２）葉酸−デキストランは葉酸受容
体経路から細胞に入ることができ、また腫瘍組織の成長を抑える明らかな作用、
高い安全性があり毒性および副作用は少ない；（３）前記葉酸−デキストランの
抗腫瘍作用は従来の化学療法剤の作用と異なるため、本発明は治療薬で腫瘍を治
療する新しい方法を提供する。

【００４０】 葉酸−多糖についての前記実験に基づいて、本発明は、薬学的に許容される添
加剤、結合剤、懸濁剤、崩壊剤、希釈剤、滑剤、腸溶性コーティング材料、生物
学的結合材料、非水溶性構成材料および他のアジュバントと前記葉酸−多糖とを
合わせて、対応する医薬組成物を製造することができる。薬理学分野の通常の方
法により、本発明の医薬組成物の様々な投与形態を作り出すことができる。

【００４１】 好ましい医薬組成物には以下のものが含まれる：静脈内注射のためのあるいは
腫瘍内もしくはその側に注射するための、葉酸−多糖溶液もしくはｉｎ−ｓｉｔ
ｅで溶液を製造するために注射薬用の水と混合できる凍結乾燥物；炭酸水素ナト
リウムもしくは水酸化アルミニウムおよび三ケイ酸マグネシウムを含む、葉酸−
多糖の経口乾燥シロップ；および葉酸−多糖の経口腸溶性カプセル。前記組成物
はまた葉酸−多糖の経口腸溶性錠剤、動脈塞栓症に用いられる葉酸−多糖マイク
ロビーズ、結腸放出させるために用いられる葉酸−多糖経口顆粒剤、あるいは鼻
腔、子宮腔および他の腔にスプレーしてもしくは腹腔に注入して用いられる葉酸
−多糖の生物学的結合マイクロビーズでもありうる。

【００４２】 （特定の実施形態の詳細な説明） 以下の非限定的実施形態は本発明をさらに詳細に説明するために用いられる。

【００４３】 実施例１．葉酸−多糖（Ｆ−ＰＳ）の製造 １．Ｆ−ＰＳの製造 （１）葉酸−イントラデックス（ｉｎｔｒａｄｅｘ）（Ｆ−Ｄｘ） ＊ Ｄｘの分子量の影響 ０．７４ｇのジメチルアミノ−ピリジンを、ホルムアミド／Ｎ，Ｎ−ジメチル
ホルムアミド／ジクロロメタン（１０：９：１）からなる混合溶剤１２ｍｌに溶
解させ、次に０．２５ｇのＦおよび１．１６ｇのジシクロヘキシル−カルボジイ
ミドを加え、前記混合溶剤に溶解させたＤｘ（分子量：１０，０００）溶液（０
．１ｇ／ｍｌ）６ｍｌを加え、暗くして２５℃で２０時間反応させ、反応を終え
た後濾過して、濾液をアセトンに注いで薄黄色の沈澱を生成させ、前記沈澱を濾
過して集め、減圧乾燥して粗Ｆ−Ｄｘ生成物を得て、Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−１
５カラムで精製し再蒸留水で溶離させ、溶離液の最初のクロマトグラフィ画分を
捕集し、そして凍結乾燥して精製Ｆ−Ｄｘ生成物を得る。

【００４４】 ・Ｄｘ（分子量：７０，０００）をＦと反応させ前記の方法で処理する。

【００４５】 ・Ｄｘ（分子量：１０５，０００）をＦと反応させ前記の方法で処理する。

【００４６】 ・Ｄｘ（分子量：５００，０００）をＦと反応させ前記の方法で処理する。

【００４７】 ・Ｄｘ（分子量：２，０００，０００）をＦと反応させ前記の方法で処理する
。

【００４８】 ＊ＦとＤｘの質量比の影響 ・Ｄｘ（分子量：１０５，０００）とＦの反応質量比が２．４：１（ｇ／ｇ）
で、前記の反応および処理を実施する。

【００４９】 ・Ｄｘ（分子量：１０５，０００）とＦの反応質量比が１．７１：１（ｇ／ｇ
）で、前記の反応および処理を実施する。

【００５０】 ・Ｄｘ（分子量：１０５，０００）とＦの反応質量比が１．３３：１（ｇ／ｇ
）で、前記の反応および処理を実施する。

【００５１】 ・Ｄｘ（分子量：１０５，０００）とＦの反応質量比が１．２０：１（ｇ／ｇ
）で、前記の反応および処理を実施する。

【００５２】 （２）葉酸−ポリサッカロース（Ｆ−Ｆｉｃｏｌｌ） ０．６ｇのＦｉｃｏｌｌ（分子量４００，０００）を０．６ｇのＤｘ（分子量
１０，０００）の代わりに用い、ＦｉｃｏｌｌとＦの反応質量比は２．４：１（
ｇ／ｇ）で、Ｆ−Ｄｘを製造するのに用いたものと同一の反応と処理を実施する
。

【００５３】 （３）葉酸−デキストリン（Ｆ−デキストリン） ０．７４ｇのジメチルアミノ−ピリジンを８ｍｌのジメチルスルホキシドに溶
解し、次に、０．２５ｇのＦと１．１６ｇのジシクロヘキシル−カルボジイミド
を加え、ジメチルスルホキシドに溶解させたデキストリン（分子量４，５００）
溶液（０．１５ｇ／ｍｌ）４ｍｌを加え、Ｆ−Ｄｘを製造するのに用いたものと
同一の方法により反応、精製を続けて行なう。

【００５４】 （４）葉酸−ヘパリン（Ｆ−ヘパリン） ０．３７ｇのジメチルアミノ−ピリジン、０．１２５ｇのＦおよび０．５８ｇ
のジシクロヘキシル−カルボジイミドを、ホルムアミド／Ｎ，Ｎ−ジメチルホル
ムアミド／ジクロロメタン（１０：９：１）からなる混合溶剤６ｍｌに溶解させ
、次に前記混合溶剤に溶解させたヘパリンナトリウム（分子量：２，０００〜６
，０００）溶液（０．０３ｇ／ｍｌ）１０ｍｌを加え、次にＦ−Ｄｘを製造する
のに用いたものと同一の方法で反応させ、溶離液が５ｍＭの炭酸水素ナトリウム
および０．１Ｍの塩化ナトリウムの混合液であること以外は同一の方法により精
製する。

【００５５】 （５）葉酸−アラビアゴム（Ａｃａｃｉａ）（Ｆ−アラビアゴム） ０．６ｇのアラビアゴム（分子量２４０，０００〜５８０，０００）を０．６
ｇのＤｘ（分子量１０，０００）の代わりに用い、アラビアゴムとＦの反応質量
比は２．４：１（ｇ／ｇ）で、濾液をエタノールに注ぐこと以外は、Ｆ−Ｄｘを
製造するのに用いたものと同一の反応および精製方法を実施する。

【００５６】 （６）ジヒドロ葉酸−デキストラン（Ｆ₂−Ｄｘ） ０．７４ｇのジメチルアミノ−ピリジンをホルムアミド／Ｎ，Ｎ−ジメチルホ
ルムアミド／ジクロロメタン（１０：９：１）からなる混合溶剤１２ｍｌに溶解
させ、次に０．２５ｇのＦ₂および１．１６ｇのジシクロヘキシル−カルボジイ
ミドを加え、前記混合溶剤に溶解させたＤｘ（分子量：１０５，０００）溶液（
０．１ｇ／ｍｌ）６ｍｌを加え、次にＦ−Ｄｘを製造するのに用いたものと同一
の方法により、反応、精製を行なう。

【００５７】 （７）テトラヒドロ葉酸−デキストラン（Ｆ₄−Ｄｘ） ０．７４ｇのジメチルアミノ−ピリジンをホルムアミド／Ｎ，Ｎ−ジメチルホ
ルムアミド／ジクロロメタン（１０：９：１）からなる混合溶剤１２ｍｌに溶解
させ、次に０．２５ｇのＦ₄および１．１６ｇのジシクロヘキシル−カルボジイ
ミドを加え、前記混合溶剤に溶解させたＤｘ（分子量：１０５，０００）溶液（
０．１ｇ／ｍｌ）６ｍｌを加え、次にＦ−Ｄｘを製造するのに用いたものと同一
の方法により、反応、精製を行なう。

【００５８】 ２．Ｆ−ＰＳの分析 担体として高性能シリカゲル・プレートを、また展開系としてトリクロロメタ
ン／メタノール／酢酸を用い、上昇展開し乾燥しヨウ素蒸気で着色することによ
っては、試料中に遊離の葉酸の点は見出されない。Ｆ−ＰＳおよびＦの０．４％
水酸化ナトリウム溶液を上で用いられものと同じ波長域で独立にスキャンした結
果、Ｆ−ＰＳおよびＦ試料は、２５８、２８５および３６５ｎｍでの全く同一の
特性吸収ピーク、および同一のＡ２５８／Ａ３６５の比、２．９〜３．１をもつ
。Ｆを標準に用いて、３６５ｎｍで求められた前記Ｆ−ＰＳ試料のＦの結合率は
以下の通りである。

【００５９】 異なった分子量のＤｘを有するＦ−ＰＳにおけるＦの結合率 （原材料のＤｘ/Ｆ比＝2.4/１（Ｗ/Ｗ）） Ｄｘの 10,00 70,000 105,000 500,000 2000,000 分子量 (Ｄｘ10) (Ｄｘ70) (Ｄｘ105) (Ｄｘ500) (Ｄｘ2000) Ｆの結合率 8.51％ 6.38％ 8.98％ 8.54％ 8.41％ (Ｗ/Ｗ) モル比 ２：１ 11：１ 23：１ 105：１ 416：１ (Ｆ/Ｄｘ)

【００６０】 原材料Ｄｘ/Ｆ比のＦ結合率に対する効果（Ｄｘ１０５） Ｄｘ/Ｆ(Ｗ/Ｗ) 2.4：１ 1.71：１ 1.33：１ 1.20：１ Ｆの結合率 10±1％ 16±1％ 23±1％ 25±1％ (Ｗ/Ｗ) モル比 26：１ 45：１ 71：１ 80：１ (Ｆ/Ｄｘ)

【００６１】 原材料比、Ｆｉｃｏｌｌ−４００（分子量４００，０００）／Ｆが２．４：１
（Ｗ／Ｗ）であるとき、Ｆの結合率は１２．０４％（Ｆ／Ｆｉｃｏｌｌのモル比
＝１０９：１）である。

【００６２】 原材料比、デキストリン−４．５（分子量４５，０００）／Ｆが２．４：１（
Ｗ／Ｗ）であるとき、Ｆの結合率は１８．３８％（Ｆ／デキストリンのモル比＝
１．８７：１）である。

【００６３】 原材料比、ヘパリン（分子量２，０００〜６，０００）／Ｆが２．４：１（Ｗ
／Ｗ）であるとき、Ｆの結合率は７．８６％（Ｆ／ヘパリンのモル比＝０．３９
〜１．１６：１）である。

【００６４】 原材料比、アラビアゴム（分子量２４０，０００〜５８０，０００）／Ｆが２
．４：１（Ｗ／Ｗ）であるとき、Ｆの結合率は４．５３％（Ｆ／アラビアゴムの
モル比＝１．８７：１）である。

【００６５】 実施例２ 葉酸−デキストラン−フルオレセイン・イソチオシアネート（Ｆ−
Ｄｘ１０５−ＦＩＴＣ）の製造 １．デキストラン−フルオレセイン・イソチオシアネート（Ｄｘ１０５−ＦＩ
ＴＣ）の製造 （１）アセチルアセトン鉄（ｆｅｒｒｉｃ ａｃｅｔｙｌａｃｅｔｏｎｅ、Ｆ
ＡＡ）の製造には以下のことが含まれる：１．８４ｇの酢酸ナトリウムおよび２
ｇの三塩化鉄を６ｍｌの蒸留水に溶解すること、１２ｍｌのアセチルアセトンを
加えること、濾過し減圧乾燥して粗ＦＡＡ生成物を得ること、前記粗生成物を蒸
留水に溶解すること、エチルエーテルで３回抽出しすべての抽出液を一緒にする
こと、および減圧蒸留でエチルエーテルを除去すること、６０％メタノールで再
結晶して、ｍ．ｐ．が１８３〜１８４℃の赤茶色ＦＡＡ結晶を得ること。

【００６６】 （２）Ｄｘ１０５−ＦＩＴＣの製造には以下のことが含まれる：０．２ｇのＤ
ｘ１０５、２０ｍｇのＦＩＴＣおよび２０ｍｇのＦＡＡを２ｍｌのジメチルスル
ホキシドに溶解すること、暗くして９５℃で２時間反応させること、濾過し８０
〜９０℃で２時間減圧乾燥してＤｘ１０５−ＦＩＴＣ粗生成物を得ること、Ｓｅ
ｐｈａｄｅｘ Ｇ−１５カラムクロマトグラフィで精製すること、凍結乾燥して
精製Ｄｘ１０５−ＦＩＴＣ生成物を得ること。

【００６７】 （３）Ｄｘ１０５−ＦＩＴＣの分析には以下のことが含まれる：担体として高
性能シリカゲルを、また展開系としてトリクロロメタン：メタノール：アンモニ
ア（６／３．５／０．５）を用いること、上昇展開し乾燥し、２５４ｎｍの光で
観察し試料中に遊離ＦＩＴＣスポットを見出さないこと、Ｄｘ１０５−ＦＩＴＣ
およびＴＩＴＣの０．４％水酸化ナトリウム溶液試料を２３０〜５５０ｎｍの波
長範囲でスキャンすること、そしてＤｘ１０５−ＦＩＴＣおよびＦＩＴＣ試料は
、４９２ｎｍに全く同一の特性吸収ピークをもつということを見出すこと；ＦＩ
ＴＣを標準に用いて、４９２ｎｍで測定し、そしてＤｘ１０５−ＦＩＴＣ試料の
ＦＩＴＣ結合率が３．６％（ｗ／ｗ）であることを見出すこと。

【００６８】 ２．葉酸−デキストラン−フルオレセイン・イソチオシアネート（Ｆ−Ｄｘ１
０５−ＦＩＴＣ）の製造 （１）Ｆ−Ｄｘ−ＦＩＴＣの製造には以下のことが含まれる：Ｄｘ１０５−Ｆ
ＩＴＣとＦの原材料比を２．４：１に合わせること、実施例１でＦ−Ｄｘを製造
するのに用いられたものと同じ方法を用いて製造すること、そしてＳｅｐｈａｄ
ｅｘ Ｇ−１５カラムクロマトグラフィで精製すること、また凍結乾燥してＦ−
Ｄｘ１０５−ＦＩＴＣ精製物を得ること。

【００６９】 （２）Ｆ−Ｄｘ１０５−ＦＩＴＣの分析には以下のことが含まれる：実施例１
でＦ−ＰＳを分析するのに用いられたものと同じ分析方法を用いて、Ｆ−Ｄｘ１
０５−ＦＩＴＣの遊離のＦを定性的に求め、またＦの結合率を定量的に求めるこ
と、そしてＦの結合率が７．４３％（ｗ／ｗ）であるということを見出すこと。

【００７０】 実施例３．ｉｎ ｖｉｔｒｏでの、Ｆ受容体を通してのＨｅＬａ２２９細胞に
よるＦ−Ｄｘ１０５の選択的取り込み ＨｅＬａ２２９細胞（１種のヒト子宮頚がん細胞、中国科学院のＳｈａｎｇｈ
ａｉ Ｃｅｌｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅから供給された）を、３７℃のＣＯ₂イン
キュベータ中で２４時間、１０％の仔牛血清（ＮＣＳ）／ＲＰＭＩ−１６４０培
養液を用いて、ｈｅｘａｐｏｒｅ培養プレートで付着させて予め培養する。各ｐ
ｏｒｅ（直径３３ｍｍ）は、２ｘ１０⁵個のＨｅＬａ細胞を含む。元の培養液は
使用前に除去される。

【００７１】 １．取り込みへの試料濃度の影響 それぞれ１ｍｌのＲＰＭＩ−１６４０培養液を用いて製造された、Ｆ−Ｄｘ１
０５−ＦＩＴＣ溶液（０．６１２、１．１２５、２．２５および４．５０ｍｇ／
ｍｌ）およびＤｘ１０５−ＦＩＴＣ溶液（０．５８５、１．１７、２．３４およ
び４．６８ｍｇ／ｍｌ）を、予め培養されたＨｅＬａ２２９細胞を含むｐｏｒｅ
に加え、次に３７℃のＣＯ₂インキュベータ中で４時間培養する。各ｐｏｒｅを
２ｍｌのリン酸緩衝液で４回洗浄し、次に１．５ｍｌの１％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−
１００リン酸緩衝液（ｐＨ７．４）で細胞を破壊する。破壊された細胞を含む細
胞崩壊液の蛍光光学密度（ＯＤ）を、４９２ｎｍ／５１２ｎｍで蛍光分光光度計
により求める。結果は、ＨｅＬａ２２９細胞によるＦ−Ｄｘ１０５−ＦＩＴＣの
取り込みは、Ｆ−Ｄｘ１０５−ＦＩＴＣの濃度の増大につれて明らかに増加し、
増加の程度は徐々に小さくなるが、それはいつでもＤｘ１０５−ＦＩＴＣの取り
込みよりは多いということを示す（図１参照）。

【００７２】 ２．取り込みへの培養時間の影響 １ｍｌのＲＰＭＩ−１６４０培養液を用いて製造された、４．５０ｍｇ／ｍｌ
のＦ−Ｄｘ１０５−ＦＩＴＣ溶液を、予め培養されたＨｅＬａ２２９細胞を含む
ｐｏｒｅに加え、次に３７℃のＣＯ₂インキュベータ中でそれぞれ０．５、１、
２および４時間培養し、前記と同じ方法で処理し蛍光の光学密度（ＯＤ）を求め
る。結果は、ＨｅＬａ２２９細胞によるＦ−Ｄｘ１０５−ＦＩＴＣの取り込みは
、培養時間の増大につれて明らかに増加し、増加の程度は徐々に小さくなるとい
うことを示した（図２参照）。

【００７３】 ３．取り込みへの遊離葉酸の影響 遊離のＦ（２．３ｘ１０^-6、３．３ｘ１０^-5、１．２ｘ１０^-5、１．０ｘ１０^-4 、１．０ｘ１０^-3、１．０ｘ１０^-2ｍｏｌ／ｌ）を含み、１ｍｌのＲＰＭＩ−
１６４０培養液を用いて製造された、４．５ｍｇ／ｍｌのＦ−Ｄｘ１０５−ＦＩ
ＴＣ溶液を、予め培養されたＨｅＬａ２２９細胞を含むｐｏｒｅに加え、次に３
７℃のＣＯ₂インキュベータ中で４時間培養し、前記と同じ方法で処理し蛍光の
光学密度（ＯＤ）を求める。結果は、ＨｅＬａ２２９細胞によるＦ−Ｄｘ−ＦＩ
ＴＣの取り込みは、遊離のＦの濃度の増大につれて明らかに減少するということ
を示した（図３参照）。

【００７４】 ４．取り込みへの酵素処理の影響 ホスファチダーゼ−Ｄ（ＰＬＤ、キャベツから得た）をそれぞれ０、０．０７
５、０．１５、０．３０および０．６０ｍｇ／ｍｌ含むＲＰＭＩ−１６４０培養
液で、予め培養されたＨｅＬａ２２９細胞を処理し、次に前記培養液を除去し、
１ｍｌのＲＰＭＩ−１６４０培養液でそれぞれ２回洗浄し、次に、１ｍｌのＲＰ
ＭＩ−１６４０培養液を用いて製造された、４．５０ｍｇ／ｍｌのＦ−Ｄｘ１０
５−ＦＩＴＣ溶液を、前記のように処理されたＨｅＬａ２２９細胞を含むｐｏｒ
ｅに加え、３７℃のＣＯ₂インキュベータ中で４時間培養し、前記と同じ方法で
処理し蛍光の光学密度（ＯＤ）を求める。結果は、ＨｅＬａ２２９細胞によるＦ
−Ｄｘ−ＦＩＴＣの取り込みは、処理液中のＰＬＤ濃度の増大につれて明らかに
減少するということを示した（図３参照）。

【００７５】 実施例４．Ｉｎ ｖｉｖｏでのＨｅＬａ２２９によるＦ−ＤＸ１０５の選択的
取り込み １．ＨｅＬａ２２９腫瘍をもつヌードマウスモデルの作製 ＢＡＬＢ／Ｃヌードマウス（１８±１ｇ；メス；Ｔｕｍｏｒ Ｉｎｓｔｉｔｕ
ｔｅ ｏｆ Ｓｈａｎｇｈａｉ Ｃｉｔｙにより提供された）の右前足腋窩近く
に、０．１ｍｌ（１ｘ１０⁷）のＨａＬａ細胞（中国科学院のＳｈａｎｇｈａｉ Ｃｅｌｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅにより提供された）を皮下接種し、次にそれら
をＳＰＦバリア・システムで飼育して、ｉｎ ｖｉｖｏでのＨｅＬａ細胞の連続
増殖により、より大きな腫瘍塊に成長させ、そして殺して直径約２ｍｍの腫瘍塊
を無菌状態で得る。前記腫瘍塊は別のヌードマウスの同じ位置に同じ仕様で２０
＃トロカールにより移植され、次にこれらのマウスを次の使用のために１０日間
飼育する。

【００７６】 ２．ｉｎ ｖｉｖｏでのＨｅＬａ２２９によるＦ−Ｄｘ１０５の取り込み ＨｅＬａ２２９腫瘍をもつヌードマウスの２グループ（各グループのマウスは
３匹）に、それぞれ０．１ｍｌのＦ−Ｄｘ１０５−ＦＩＴＣ（５．７ｍｇ）およ
びＤｘ１０５−ＦＩＴＣ（５．７ｍｇ）を腫瘍の側に皮下注射し、次にこれらを
２４時間飼育して殺す。得られた腫瘍組織切片を蛍光顕微鏡および位相差顕微鏡
でコントラストをつけて観察しフィルムに収める。結果は、Ｆ−Ｄｘ１０５−Ｆ
ＩＴＣが腫瘍組織に拡散した後にＨｅＬａ２２９細胞に明らかに入ることができ
るということを示す（図５参照）。

【００７７】 実施例５．Ｆ−Ｄｘ１０５の腫瘍抑制作用 ＨｅＬａ２２９腫瘍があるヌードマウスの３グループにおいて（各グループの
マウスは６匹）、２つのグループにそれぞれ０．１ｍｌのＦ−Ｄｘ１０５（１．
１２ｍｇ）およびＤｘ１０５（１．１２ｍｇ）を、６日間毎日腫瘍の側に皮下注
射し、次に２０日目にこれらに、０．３ｍｌのＦ−Ｄｘ１０５（１０．５２ｍｇ
）およびＤｘ１０５（１０．５２ｍｇ）を皮下注射する。残りのグループのマウ
スを無処理（ｂｌａｎｄ）・グループとして用い、如何なる治療薬もこれらに投
与しない。これら３グループのすべてのマウスを３３日間飼育する。

【００７８】 １．腫瘍の動的変化 ３グループの、ＨｅＬａ２２９腫瘍をもつ前記ヌードマウスの腫瘍の大きさを
、投与の後１日おきに求める、すなわち、（ａ）を長手方向の直径、（ｂ）を最
大の横方向直径として、またそれら全てをキャリパーで測定し、腫瘍の大きさを
実験式：Ｖ＝πａｂ²／６により計算する。結果は、Ｆ−Ｄｘ１０５グループの
腫瘍の成長はＤｘ１０５およびブランク・グループの成長より明らかに遅く、ま
たＦ−Ｄｘ１０５グループの腫瘍の成長はより高濃度で補完的な治療薬が投与さ
れた後で明らかに抑制され、腫瘍の大きさの再増加は飼育期間中観察されないと
いうことを示す（図６参照）。

【００７９】 ２．腫瘍の抑制率 ＨｅＬａ２２９腫瘍をもつヌードマウスの３グループを投与開始後３３日目に
殺し（図７参照）、腫瘍を取り出し秤量する（図８参照）。腫瘍抑制率を以下の
式で計算する：〔１−（実験グループの腫瘍の重量／ブランク・グループの腫瘍
重量）〕ｘ１００％。結果は、Ｆ−Ｄｘ１０５の腫瘍抑制率が７０％を越え、一
方Ｄｘ１０５の腫瘍抑制率は全く注目に値するものではないということを示す（
以下の表を参照）

【００８０】 グループ 動物数 腫瘍重量（ｍｇ） 腫瘍の抑制率（％）
（開始/終了） ブランク ６/６ 393.6±201.6 − Ｄｘ105 ６/６ 416.1±286.7 -1.03 Ｆ-Ｄｘ105 ６/６ 98.4±38.3 74.36

【００８１】 ３．腫瘍組織の形態観察 ３グループの腫瘍組織を固定した後で、通常の方法で腫瘍組織の切片を得てガ
ラス・スライドの上に封入し固定し、次にこれらを位相差顕微鏡で観察しフィル
ムに収める（図９ａ、９ｂおよび９ｃを参照）。結果はＦ−Ｄｘ１０５グループ
の腫瘍組織の腫瘍細胞は死んでいるかもしくは多くが崩壊しており、前記腫瘍組
織に多くの中空の嚢が存在し、一方Ｄｘ１０５グループの腫瘍組織には、部分的
繊維形成（ｆｉｂｅｒｏｓｉｓ）および少量の死んだ腫瘍細胞のみが見出される
ということを示した。

【００８２】 ４．腫瘍組織の腫瘍細胞のＤＮＡインデックスの決定 ３グループの腫瘍組織を固定した後、エタノールを用いて腫瘍組織を勾配脱水
（ｇｒａｄｉｅｎｔ ｄｅｗａｔｅｒｉｎｇ）し、パラフィンで包埋して、切断
することにより、５μｍの腫瘍組織切片を得て、次にそれらをガラス・スライド
の上に置き、改良フォイルゲン−アズールＡ法により染色し、封入して固定する
。各組織切片の５０個の腫瘍細胞およびリンパ球細胞（正常細胞として）のＤＮ
Ａ含量をイメージ・サイトメーター、ＣＡＳ−２００で測定する。腫瘍組織の腫
瘍細胞のＤＮＡインデックス（ＤＩ；ＤＩが１により近ければより悪性の腫瘍細
胞の割合はより小さく、あるいはより大きな治療効果により優れている）を以下
の式で計算する。 結果は、Ｆ−Ｄｘ１０５グループおよびＤｘ１０５グループのＤＩ値が、ブラン
ク・グループのＤＩ値の６６％および８９％であることを示す（以下の表を参照
）。

【００８３】 グループ 切片 メインピークのＤＮＡ質量（ｍｇ） ＤＩ ブランク 6 25.59±2.95 3.51±0.33 Ｄｘ105 6 22.35±0.58 3.11±0.08 Ｆ-Ｄｘ105 6 16.74±0.83 2.33±0.12

【００８４】 実施例６．マウスでのＦ−Ｄｘ１０５の毒性試験 ２０匹の昆明（Ｋｕｎｍｉｎｇ）種マウス（２０〜２２ｇ）をオスのグループ
（１０匹のマウス）およびメスのグループ（１０匹）に分ける。投与の前、それ
らに３時間供餌せず、またそれらを秤量する。それらの尾静脈にＦ−Ｄｘ１０５
（濃度５０ｍｇ／ｍｌ）を、投与量１５００ｍｇ／ｋｇ、注入容積０．３ｍｌ／
１０ｇで皮下注射する。投与後、外見、活性、挙動および被毒マウスの数を毎日
観察し、全てのマウスを７日後に殺して、それらの主な内臓器官を調べる。結果
は、１５００ｍｇ／ｋｇのＦ−Ｄｘ１０５を皮下注射した後、これらのマウスが
１週間は奇異反応を全く示さず、それらの体重は増加し、１匹のマウスも死なず
、またそれらの主な内臓器官に異常は全く見られないということを示す。

【００８５】 実施例７．Ｆ−Ｄｘ１０５組成物 １．凍結乾燥組成物 攪拌条件下、１．２５ｇのＦ−Ｄｘ１０５を注射用の水に溶解し、次に２５ｍ
ｌに希釈して５０ｍｇ／ｍｌの溶液を得る。１０ｍｌ容器の各々を２ｍｌの前記
溶液で満たし、凍結乾燥装置で４８時間凍結乾燥して、ゆるく綿状の形態の凍結
乾燥生成物を得て、そしてこの生成物を、栓をしてアルミニウム・カバーで封入
することにより前記容器内に閉じ込める。

【００８６】 ２．乾燥シロップ組成物 （１）３３．０ｇの葉酸−デキストラン、７．４ｇの水酸化アルミニウムおよ
び３．２ｇの三ケイ酸マグネシウムを十分に混合し、１５０ｍｌの容積の１０個
の容器に入れる。使用されるときは、１００ｍｌの温水を各容器に加え振って懸
濁液を得る。

【００８７】 （２）３３．０ｇの葉酸−デキストランおよび５．０ｇの炭酸水素ナトリウム
を十分に混合し容積１５０ｍｌの１０個の容器に入れる。使用するとき、各容器
に１００ｍｌの温水を加え振って溶液を得る。

【００８８】 ３．腸溶性カプセル組成物 １０．０ｇの葉酸−デキストランおよび０．２ｇのステアリン酸マグネシウム
を十分に混合し１＃腸溶性カプセルに入れ、各カプセルには１００ｍｇの葉酸−
デキストランが含まれる。

【図面の簡単な説明】

【図１】 様々な培養濃度での、ＨｅＬａ２２９細胞によるＦ−Ｄｘ１０５およびＤｘ１
０５の取り込み（３７℃で４時間培養）を示す図である。

【図２】 様々な培養時間での、ＨｅＬａ２２９細胞によるＦ−Ｄｘ１０５の取り込み（
３７℃で培養、培養濃度は４．５ｍｇ／ｍｌ）を示す図である。

【図３】 様々な葉酸濃度（Ｆ−濃度）での、ＨｅＬａ２２９細胞によるＦ−Ｄｘ１０５
の取り込み（３７℃で４時間培養、培養濃度は４．５ｍｇ／ｍｌ）を示す図であ
る。

【図４】 様々な濃度のホスファチダ−ゼＤで予め処理されたＨｅＬａ２２９細胞による
Ｆ−Ｄｘ１０５の取り込み（３７℃で４時間培養、培養濃度は４．５ｍｇ／ｍｌ
）を示す図である。

【図５】 ＨｅＬａ２２９細胞を接種された、腫瘍があるヌードマウスの腫瘍の側に、Ｆ
−Ｄｘ１０５−ＦＩＴＣ（左）もしくはＤｘ１０５−ＦＩＴＣ（右）を注射して
２４時間後の、腫瘍組織切片の蛍光写真（明るい円形のスポットが腫瘍細胞の蛍
光である）を示す図である。

【図６】 ＨｅＬａ２２９細胞を接種された、腫瘍があるヌードマウス（グループあたり
６匹のマウス）の腫瘍の側に、Ｆ−Ｄｘ１０５およびＤｘ１０５をそれぞれ注射
した（１日目から６日目まで：５６ｍｇ／ｋｇ、１９日目：５２６ｍｇ／ｋｇ）
後の、腫瘍の大きさ（Ｖ＝πａｂ²／６）の動的な変化を示す図である。

【図７】 ＨｅＬａ２２９細胞を接種されて腫瘍があり、３３日間投与された、殺された
ヌードマウスの３グループのｉｎ ｖｉｖｏでの腫瘍の大きさの比較を示す図で
ある（上；ブランク・グループ、左下；Ｄｘ１０５、右下；Ｆ−Ｄｘ１０５）。

【図８】 ＨｅＬａ２２９細胞を接種されて腫瘍があり、３３日間投与された、殺された
ヌードマウスの３グループのｉｎ ｖｉｔｒｏでの腫瘍の大きさの比較を示す図
である。

【図９ａ】 ＨｅＬａ２２９細胞を接種され、３３日間飼育された、腫瘍があるヌードマウ
スからなるブランク・グループの腫瘍組織の切片を示す図である。

【図９ｂ】 ＨｅＬａ２２９細胞を接種され、３３日間投与された、腫瘍があるヌードマウ
スからなるＤｘ１０５グループの腫瘍組織の切片を示す図である。

【図９ｃ】 ＨｅＬａ２２９細胞を接種され、３３日間投与された、腫瘍があるヌードマウ
スからなるＦ−Ｄｘ１０５グループの腫瘍組織の切片を示す図である。

【手続補正書】特許協力条約第３４条補正の翻訳文提出書

【提出日】平成１４年３月２９日（２００２．３．２９）

【手続補正１】

【補正対象書類名】明細書

【補正対象項目名】請求項１

【補正方法】変更

【補正の内容】

【手続補正２】

【補正対象書類名】明細書

【補正対象項目名】００１２

【補正方法】変更

【補正の内容】

【００１２】 より詳細には、本発明は、式（Ｘ）_n−Ｙの葉酸−多糖複合体に関し、Ｘは同
一であるかもしくは異なり、葉酸、葉酸の誘導体、および葉酸受容体経路で細胞
に入ることができる他の物質からなる群から選択され、Ｙはアラビノガラクタン
（ａｒａｂｉｎｏｇａｌａｃｔａｎ）以外の多糖の１種であり、ｎ≧１である。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ａ６１Ｋ 31/721 Ａ６１Ｋ 31/721 31/727 31/727 31/787 31/787 Ａ６１Ｐ 35/00 Ａ６１Ｐ 35/00 Ｃ０８Ｂ 37/00 Ｃ０８Ｂ 37/00 Ｑ 37/02 37/02 37/10 37/10 (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ，ＴＲ)，ＯＡ(ＢＦ ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ， ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，Ｇ Ｍ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＭＺ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＴＺ ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ， ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＧ，ＡＬ，ＡＭ， ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，Ｂ Ｚ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＯ，ＣＲ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ ，ＤＭ，ＤＺ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ，ＧＥ， ＧＨ，ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ，ＩＳ，Ｊ Ｐ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＡ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ， ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＭＺ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，Ｒ Ｏ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＴＺ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ， ＶＮ，ＹＵ，ＺＡ，ＺＷ (72)発明者 リウ、ミン 中華人民共和国 シャンハイ、イーシュー ユアン ロード 138、 ピー、オー、ボ ックス 190、フダン ユニヴァーシティ、 スクール オブ ファーマシー (72)発明者 パン、ジュン 中華人民共和国 シャンハイ、イーシュー ユアン ロード 138、 ピー、オー、ボ ックス 190、フダン ユニヴァーシティ、 スクール オブ ファーマシー Ｆターム(参考） 4C076 AA29 AA53 BB01 CC27 DD25 DD27 DD30 DD41 4C086 AA01 AA02 AA03 EA03 EA20 EA27 MA01 MA04 MA37 MA43 MA44 MA52 NA13 NA14 ZB26 4C090 AA02 AA09 BA07 BA12 BA68 BA92 BB53 BB54 BB62 BB63 BB65 BB77 BB84 BB92 BB95 BD36 BD37 BD41 CA36 CA38 DA09 DA23

Claims (12)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 以下の一般式：（Ｘ）_n−Ｙを有し、Ｘは同一であるかもし
   くは異なり、葉酸、その誘導体および細胞膜上の葉酸受容体の経路から細胞に入
   ることができる他の物質からなる群から選択され、Ｙは多糖であり、ｎ≧１であ
   ることを特徴とする葉酸−多糖複合体。
2. 【請求項２】 Ｘが、葉酸、フォリン酸、ジヒドロ葉酸、テトラヒドロ葉酸
   、テトラヒドロプテリン、プテロイルポリグルタミン酸、２−デアミノ−ヒドロ
   キシ葉酸、１−デニトロ葉酸、３−デニトロ葉酸、８−デニトロ葉酸からなる群
   から選択される請求項１記載の葉酸−多糖複合体。
3. 【請求項３】 前記多糖Ｙが、グルカン類、ポリサッカロース類、フルクト
   サン類、ヘテロ多糖類、硫酸化モノ−あるいはヘテロ多糖類、モノ−あるいはヘ
   テロ−グリクロネート（ｇｌｙｃｕｒｏｎａｔｅ）−多糖類および他の親水性ア
   ルコール性ポリマー類からなる群から選択される請求項１記載の葉酸−多糖複合
   体。
4. 【請求項４】 前記多糖が４，０００〜２，０００，０００の分子量範囲を
   有する請求項１〜３のいずれか一項に記載の葉酸−多糖複合体。
5. 【請求項５】 前記グルカンがデキストランである請求項３記載の葉酸−多
   糖複合体。
6. 【請求項６】 前記デキストランが１０，０００〜２，０００，０００の分
   子量範囲を有する請求項５記載の葉酸−多糖複合体。
7. 【請求項７】 前記デキストランが１０，０００〜１５０，０００の分子量
   範囲を有する請求項６記載の葉酸−多糖複合体。
8. 【請求項８】 前記デキストランが約１０５，０００の分子量を有する請求
   項７記載の葉酸−多糖複合体。
9. 【請求項９】 葉酸および多糖成分をアルカリ触媒と脱水剤の存在下に縮合
   させて葉酸−多糖複合体を得ることからなることを特徴とする、葉酸−多糖複合
   体の生産方法。
10. 【請求項１０】 請求項１記載の葉酸−多糖複合体および医薬的に許容され
    るアジュバントを含むことを特徴とする、抗腫瘍薬として有用な医薬組成物。
11. 【請求項１１】 凍結乾燥粉末、乾燥シロップあるいは腸溶性カプセルの形
    態である請求項１０記載の医薬組成物。
12. 【請求項１２】 抗腫瘍治療薬剤の製造における葉酸−多糖複合体の使用。