JP2002527105A - ワクチン - Google Patents
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Abstract
Description
に関する。特に、本発明は、有効な免疫刺激剤、好ましくは、例えば、モノホス
ホリル・リピドA又はその誘導体で補強された改良A型肝炎ワクチンに関する。
本発明は、上記A型肝炎ワクチンが1成分であるところの併合ワクチンにも関す
る。
ham BiologicalsからのワクチンHavrix(商標)が、A型
肝炎の感染を防ぐために使用されることができ、そしてまた、アジュバントとし
て水酸化アルミニウムと配合される。このワクチンは、Andre et al
.の手順に従って製造される。それは、ホルモール(ホルムアルデヒド)で失活
されたHM−175A型肝炎ウイルスの減弱株を含む;Andre et al
.〔Prog Med.Virol.1990,vol37;−p72−95〕
を参照のこと。
は、A型肝炎とB型肝炎に対して同時に保護するために使用されることができる
。上記A型肝炎抗原とサルモネラ・チフィムリアム(Salmonella t
yphimurium)の精製Vi多糖の併合物であるワクチンHepatyr
ix(商標)は、肝炎と腸チフスに対して同時に保護するために使用されること
ができる。
Biologicals s.a.)は、とりわけ、3D−MPLで補強され
たA型肝炎ワクチンを開示している。 ヨーロッパ特許第0339667号(Chemo Sero)は、A型肝炎抗
原とB型肝炎抗原を併合して、併合ワクチンを製造するという一般概念について
記載している。その明細書には、使用されるアジュバントは決定的でなく:それ
は、望ましい程度までこの免疫活性を高めることができるだけでなければならず
、そしていかなる副効果をも生じさせないと述べられている。アルミニウム・ゲ
ル、特に、水酸化アルミニウム・ゲルとリン酸アルミニウム・ゲルが使用されう
ると述べられている。
法が、A型肝炎ウイルスがその中で成長するところの宿主細胞からの汚染物の少
量の残渣を残すことができるということが発見された。このような宿主細胞汚染
物は、特にそれらがヒト起源であり、天然において2倍体であり、そして低レベ
ルであるときは、そのワクチンがアルミニウム塩で補強されるときには心配ない
。しかしながら、そのワクチンが強い免疫刺激剤で補強されるとき、ワクチン接
種を受けた人が、その宿主汚染物に対して、有害な免疫応答を引き起こすことが
できる理論的な可能性が存在する。
の必要性が在る。 従って、本発明の1の局面においては、宿主細胞汚染物を実質的に含まない、
失活A型肝炎ウイルスの製法であって: a)A型肝炎ウイルスを培養し、そしてA型肝炎調製物を収獲し; b)上記A型肝炎調製物をプロテアーゼで処理し;そしてその後、 c)プロテアーゼ消化材料から無傷のウイルスを分離し; d)上記ウイルスを失活させる、 を含む前記製法が提供される。
響を及ぼさないが、上記A型肝炎調製物から宿主細胞汚染物の分解及び分離を容
易にする。 好ましくは、上記A型肝炎ウイルスは、HM−175株由来である。 宿主細胞汚染物を実質的に含まないとは、銀染色されたSDS PAGEをス
キャンすることにより、10%未満の、好ましくは、8%未満の、より好ましく
は、5%未満の宿主細胞タンパク質が検出されることができるということを意味
する。より重要には、そしてスロット・ドット・ハイブリダイゼーションにより
測定されるとき、上記ワクチン中のHAVの1投与量は、好ましくは、10ng未
満の宿主細胞タンパク質を含有する。
ができる他のプロテアーゼは、プロナーゼ(pronase)、パパイン(pa
pain)、及びペプシン(pepsin)を含む。 上記プロテアーゼ処理は、好ましくは、約2時間、室温より高い温度で、例え
ば、約37℃で、行われる。
適な方法により、例えば、パーミエーション(permeation)クロマト
グラフィーにより達成されることができる。 あるいは、上記プロテアーゼ及び消化された成分は、サイズに基づき分離する
いずれかの分離方法、例えば、限外濾過により、分離されることができる。
精製されることができる。例えば、上記生成物は、上記生成物をイオン交換クロ
マトグラフィーにかけて、核酸残渣を除去することにより、さらに精製されるこ
とができる。 本発明に係る方法のプロテアーゼ消化ステップは、2つの効果に因りA型肝炎
調製物の精製を改良することができる。第1に、上記プロテアーゼは、それらが
、上記プロテアーゼ処理に続くクロマトグラフィー分離ステップにおいてより容
易に分離するように、汚染性宿主タンパク質を消化する。第2に、汚染性宿主タ
ンパク質の消化は、上記イオン交換ステップにおいて、未消化の宿主タンパク質
と他の方法で会合されるであろう他の汚染性材料、特に核酸のよりよい分離を許
容する。これらの観察された効果は、いかなる方法においても本発明を必ずしも
限定しないと理解されよう。
実質的に含まない、失活A型肝炎ウイルスが提供される。 次に失活A型肝炎ウイルスはワクチンに配合されることができる。 従って、本発明は、さらなる局面において、宿主細胞汚染物を実質的に含まな
い失活A型肝炎ウイルスを含むA型肝炎ウイルスを提供する。
バントは、アルミニウム塩、例えば、水酸化アルミニウムのゲル又はリン酸アル
ミニウムを含むが、カルシウム、鉄又は亜鉛の塩であることも、又はアシル化チ
ロシン、又はアシル化糖、カチオン又はアニオン誘導体化多糖、又はポリホスフ
ァゼンの不溶性懸濁液であることもできる。有利には、高く精製されたA型肝炎
ウイルスは、強いアジュバント系と配合されることができる。従って、本発明の
配合物においては、上記アジュバント組成物が、Th1性状を含む免疫応答を誘
発することが望ましい。
4,IL−5、及びIL−10の産生を特徴とするTh2−型応答とは異なり、
IFN−γの産生を特徴とする。体液性応答のアイソタイプ特性は、Th1又は
Th2−型応答のためのマーカーとして、使用されることもできる。マウスにお
いては、Th1−型応答は、しばしば、IgG2aサブタイプの抗体の産生に関
係し、一方、IgG1は、Th2−型応答のマーカーである。この状況は、ヒト
においては明らかではないが、データは、IgG1とIgG4がそれぞれTh1
−とTh2−型応答のマーカーであることができるであろうということを示唆し
ている。
3−0−脱アシル化モノホスホリル・リピドA(3D−MPL)の併合物を含み
、そして好ましくは、アルミニウム塩とともに配合される。 強化系は、モノホスホリル・リピドAとサポニン誘導体の併合物、好ましくは
、WO94/00153中に開示されたような、QS21と3D−MPLの併合
物、又はQS21がWO96/33739中に開示されたようなコレステロール
でクエンチされているところのより反応原性の低い組成物を含む。
トコフェロールを含む特に強力なアジュバントが、WO95/17210中に記
載されている。 包含されることができる他の知られたアジュバントは、例えば、WO96/0
2555中に開示されたような、CpG含有オリゴヌクレオチドである。
の誘導体により補強された、本発明に係るウイルスを含むワクチンが提供される
。 好ましくは、上記ワクチンは、さらに、サポニン、より好ましくは、QS21
を含む。
ァ−トコフェロールを含む。 本発明は、医薬として許容される賦形剤又は担体、例えば、3D−MPLと、
本発明に係る精製ウイルスを混合することを含む、ワクチン配合物の製法をも提
供する。
の予防又は治療において有効であるように、他の抗原と併合されることができる
。好ましい併合は、B型肝炎抗原を含む併合を含む。 B型肝炎表面抗原(HBS Ag)の調製は、よく文書化されている。例えば、
Harfold et al.in Develop.Biol.Standa
rd 54,page 125(1983),Gregg et al.in
Biotechnology,5,page479(1987),EP−A−0
226846,EP−A−0299108、及びその文献中の引用文献を参照の
こと。
、HBV表面抗原の抗原性を提示するいずれかのHBS Ag抗原又はその断片を
含む。HBS Ag S抗原の226アミノ酸配列(Tiollais et a
l,Nature,317,489(1985)及びこの文献中の引用文献を参
照のこと)に加えて、本明細書中に記載するHBS Agは、所望により、上記文
献及びEP−A−0278940中に記載されたようなプレ−S配列の全部又は
一部を含む。特に、HBS Agは、ad血清型のB型肝炎ウイルス上のオープン
・リーディング・フレームに対して、HBS AgのL−タンパク質の残基12〜
52、その後の残基133−145、その後の残基175−400を含むアミノ
酸を含むポリペプチド(このポリペプチドをL* という;EP0414374を
参照のこと。)を含むことができる。本発明の範囲内のHBS Agは、EP01
98474(Endotronics)中に記載されたプレS1−プレS2ポリ
ペプチド又はそのアナログ、例えば、EP0304578(McCormick
and Jones)中に記載されたものをも含む。
14703又はEP0511855A1中に記載された“逸脱(escape)
空然変異体”、特に、145位においてグリシンからアルギニンへのアミノ酸置
換が存在するところのHBS Agをもいう。 通常、上記HBS Agは粒子形態になるであろう。この粒子は、例えば、Sタ
ンパク質だけを含むことができるし、又は複合粒子、例えば、(L* ,S){こ
こで、L* は先に定義したものと同じであり、そしてSはHBS AgのS−プロ
テインを表す。}であることができる。上記粒子は、有利には、それが酵母内で
発現されるところの形態である。
炎ウイルス感染の治療又は予防における使用のために、本明細書中に記載するよ
うなワクチン配合物を提供する。好ましい局面においては、本発明に係るワクチ
ンは、進行性の肝炎感染、より特にそれを患うヒトにおけるA型肝炎及び/又は
B型肝炎感染のために有用である治療用ワクチンである。
発明は、A型肝炎及び/又はB型肝炎感染の治療又は予防のためのワクチン製剤
を提供する。 有利には、本発明の肝炎ワクチン製剤は、それが1以上の他のバクテリア、ウ
イルス又は真菌(fungal)感染の治療又は予防において有効であるように
、他の抗原を含む。
hilus influenzae b)(Hib)、及びポリオ、の中の1以
上に対して保護を与えるために、本分野において知られた非肝炎抗原から選ばれ
ることができる少なくとも1の他の成分を含む。
。 上記併合ワクチンにおける使用のために好適な成分は、既に商業的に入手でき
、そして詳細は、世界保健機構から得られることができる。例えば、ポリオ成分
は、Salk失活ポリオ・ワクチン(IPV)であることができる。百日咳ワク
チン成分は、全細胞又は無細胞製品を含むことができる。
クチンである。 青年用途のための好ましい本発明に係る併合ワクチンは、以下の疾患: ヒト乳頭腫ウイルス(HPV)、単純ヘルペス・ウイルス(HSV)、エプス
タイン・バール・ウイルス(EBV)、水疱瘡ウイルス(VZV)、ヒト・Hイ
トメガロウイルス(HCMV)、トキソプラズマ・ゴンジイ(Toxoplas
ma gandii)、の中の1以上に対し保護を提供することが、本分野にお
いて知られている抗原から選ばれる1以上の成分を含む。
いて有意な有害副作用を伴わずに免疫保護応答を誘導する量として選ばれる。こ
のような量は、どの特異的免疫原が使用されるかということに依存して変化する
であろう。一般に、各投与は、A型肝炎のために投与当り0.1〜1.0μgの
タンパク質、最も好ましくは、0.06〜0.220μgタンパク質/投与を含
むであろうと予想される。A型肝炎以外の抗原、例えば、HBS Ag、HSV、
等のためには、投与当りのタンパク質の量は、より高く、例えば、約20μg/
投与までであることができる。特別なワクチンのための1以上の免疫原のそれぞ
れの最適量は、被験体(患者 subjects)における抗体力価及び/又は
他の応答の観察を含む標準的な試験により確められることができる。最初のワク
チン接種後、被験体は、約4週間以内にブーストを受容することができる。
クチンの製法であって、本明細書中に定義するような肝炎抗原をMPL又はその
誘導体と混合することを含む、前記製法が提供される。 上記方法を用いて、1以上の追加の成分が、好ましくは、失活A型肝炎ワクチ
ンと混合されて、併合ワクチンが提供される。
リプシン又は他のプロテアーゼ消化ステップを含んで、異なる組合せにおいて、
行うことができる。
掲)上で培養し、そしてそのウイルスを、上記細胞層の洗浄後に収獲して、成長
培地中で使用した血清を除去する。凍結/解凍後、界面活性剤(Tween20
(商標))を添加して、上記細胞死骸から上記ウイルスを抽出する。細胞死骸を
、0.22μm膜を通した濾過により、除去する。濾液をさらに限外濾過にかけ
る。得られた濃縮物は、最終的に、1〜2時間、5〜10,000xgにおける遠
心分離により清澄化されることができる。
シンで処理する。使用したトリプシンを2回結晶化し、そして使用前に凍結を保
った。トリプシンの添加前、上記濃縮物を、一定の撹拌の下、37℃で前もって
温める。次に、トリプシンを、濃縮物1ml当り440IUの比で添加し、そしてそ
の混合物を、37℃で、最短で2時間(最長で2.5時間)緩やかに撹拌する。
上で周囲温度で直ちに処理することができる。使用した膜は30,000ダルト
ンの名目カット−オフをもつ再生セルロースであり、そして膜1cm2 当り最大8
mlまでのトリプシン処理産物を、0.2〜0.6バールの間の経膜圧で処理して
、8〜12の目の濃縮率を達成する。
である。トリプシン処理後にパーミエーション・クロマトグラフィー・ステップ
が行れるとき、条件は、残存トリプシンをも除去するように適合されなければな
らない。使用された分離ゲルは、Permeation Sepharose
4BFFである。
されるより小さなタンパク質断片よりも、より小さな保持容量で、溶出される。 クロマトグラフィー・パラメーターは以下のようである: クロマトグラフィー材:(Pharmaciaからの)Sepharose 4BFF インジェクト容量:ゲル容量の1〜5% 溶出速度:5〜10cm/時間 温度:10〜16℃ 画分のプール:標的100ngプロット/720Elisa単位(+/−10
%) イオン交換 この精製ステップの目的は、(MRC5細胞に起源をもつ)DNA含量を低下
させることである。このステップを、バッチ原理に従って走らせる。
し、そして次に室温で1時間(最長1.5時間)緩かに撹拌しながらイオン交換
樹脂と混合する。 DNA固定の後、上記ゲルを濾過により除去する。次に、固定されていないH
AVウイルス懸濁液を、そのNaCl濃度を150mMに調整するように希釈する
。あるいは、このイオン交換精製ステップは、カラム・クロマトグラフィーによ
り行われることもできる。
マトグラフィー・パラメーターは以下のようなものである: 供給:上記プールの容量に対して3%のゲル(容量/容量) 温度:周囲 失活を、Andre et al.中に記載されたように行う。但し、250
μg/mlのホルモールを使用する。
そしてアルミニウム塩(好ましくは、水酸化アルミニウム又はリン酸アルミニウ
ム)上に事前吸着させるために、上記産物をダイアフィルトレートし、そして濃
縮する。
用いて除菌する。次に、この装置を、ダイアフィルトレーション・バッファーで
十分に濯ぎ、そしてその膜を、アミノ酸含有バッファー(Travasol)で
被覆する。最終的に、この装置を、ダイアフィルトレーション・バッファーで濯
ぐ。
ー上で滅菌濾過する。 b)精製スキーム 上記の精製ステップを、純粋な生成物が経済的なやり方で得られるような方法
で、併合した。2つのこのような精製スキームを、スキーム1に示す。この両者
が類似の生成物を作り出す。スキーム1に示すようなステップの1の形態(co
nfiguration)においては、上記ステップを実施例1a中に記載する
順番で行い、そして他の形態においては、上記トリプシン・ステップを、上記限
外濾過ステップと第1のパーミエーション・クロマトグラフィー・ステップの間
で行った。これは、第2のパーミエーション・クロマトグラフィー・ステップが
省略されることができるということを意味する。実施例2−特徴付け 精製された産物のサンプルを、SDS PAGE(12.5%アクリルアミド
、スタッキング・ゲル中1%SDS、40〜50ボルトで15時間の移動)によ
り分析した。このゲルを、AgNO3 で染色し、そしてその色を、10〜20分
間、発色させ、そして伝統的なHAVプロセス(Andre et al.)と
比較した。
り、高分子量汚染物のほとんどが除去される。実施例3−HAVワクチン配合物 3.1 HAV−アルミニウム(alum)3D−MPL 実施例1のHAV粒子を、まず、水酸化アルミニウム(Superfos)に
吸着させ、その後、遊離の3D−MPLを添加する。0.5ml投与量720EL
UのA型肝炎ウイルス粒子/0.025mgAl3+イオン、及び50μgの3D−
MPL。 3.2 HAV+HbS Ag配合物 以下の配合物を作った:
O4 Super fos型)について、アルミニウム塩0.025mg Al3+イ
オン(Al(OH)3Superfos)に吸着させた。群2と5においては、5
0μg/投与の遊離3D−MPLを、肝炎S抗原に添加し、それに上記の吸着さ
れたA型肝炎成分を添加した。群3と4においては、3D−MPLを、別々に上
記アルミニウム塩に吸着させ、そして次に上記3つの吸着された成分を互いに混
合せた。実施例4−免疫原性実験 Balb/Cマウス 10匹のマウスからなる群を、HAV/HBS 配合物(1/10HD)で2週
間間隔で3回筋中、免疫感作させた。HbS に対する抗体応答を、IIに後(po
stII)14日目に、そしてIII の後14日目に、ELISAによりモニターし
た。抗−HBS 応答のアイソタイプ特性を、IIの後14日目に分析した。HAV
に対する抗体応答をIII の後14日目にモニターした。
腔内に免疫感作させた。HbS とHAVに対する抗体応答を、注射後28日目に
ELISAによりモニターした。
nzygnostキット(ref:OQEC11)を用いて行った。このアッセ
イは、競合テスト原理に基づくELISAであり、1ステップで走らせられ、そ
して最初に、ヒト血清学のために開発された。
希釈)、及び対照の2倍希釈を、抗−HAV陰性ヒト血清中で行った。テスト/
対照サンプル(25μl)、HAV抗原溶液(50μl)、及びペルオキシダー
ゼと結合した抗−HAVマウス・モノクローナル(コンジュゲート・バッファー
中で行われた1/41希釈の50μl)の混合物を、37℃で2時間、HAVプ
レ−コートされたマイクロプレート上でインキュベートした。次に、このプレー
トを洗浄し、そしてTMBの溶液(100μl)で30分間インキュベートした
。この反応を、H2 SO4 0.5Nで停止させ、そして450/620nmで読ん
だ。
xProにより上記文献から計算し、そして mIU/mlで表す。 結果 上記結果を図1に示す。 図1の中、結果は、MPLを含有する配合物が、アルミニウム塩群単独よりも
、有意に高い、A型肝炎成分に対する抗体応答を誘発するということを表す。同
様に、図1b中に示す結果は、MPL含有配合物が、HbS Agに対する高い抗
体力価を誘発することを表す。実施例5−臨床試験 HAV/HBS(HAB)配合物を、健康な被験体に投与した。
heimからのEnzymunテスト)により計測し、そして抗−HBS 抗体の
血清力価を、テスト・キットAUSAB−Abbottを用いたラジオイムノア
ッセイ(RIA)により計測した。抗−HAV抗体についての上記アッセイのカ
ット−オフは33 mIU/mlであり、そして抗−HBS 抗体についての上記アッセ
イのカット−オフは1 mIU/mlであった。
血清陽性であると考えた。1 mIU/mlの抗−HBS 抗体力価をもつ被験体を、抗
−HBS 抗体について血清陽性であると考えた。抗−HBS についての血清保護
率を、10 mIU/mlの抗−HBS 力価をもつ被験体の割合として定義した。
においては、免疫応答の際に免疫刺激剤として働くMPLの顕著な効果が存在す
る。
目及び7ヶ月目(すなわち、最後のワクチン投与後、それぞれ、14と30日後
)に観察される顕著な既往反応をもつ、より速く、かつ、強い免疫応答を誘発す
る。 この試験の制限内で、上記候補HAB/MPLワクチンは、ひじょうに良好な
安全性及び反応原性特性を示したと結論することができる。18〜40歳の健康
な成人の試験群における2投与からなるワクチン接種の全経過の後、それはひじ
ょうに免疫原性であった。両A型肝炎抗原とB型肝炎抗原に対する強いプライミ
ング及びより速い免疫応答が存在した。
Claims (16)
- 【請求項1】 宿主細胞汚染物を実質的に含まない失活A型肝炎ウイルスの
製法であって: a)A型肝炎ウイルスを培養し、そしてA型肝炎調製物を収獲し、 b)上記A型肝炎調製物をプロテアーゼで処理し、その後、 c)無傷のウイルスを、プロテアーゼ消化タンパク質から分離し、そして d)上記ウイルスを失活させる、 を含む前記製法。 - 【請求項2】 前記A型肝炎ウイルスがHM−175株由来である、請求項
1に記載の製法。 - 【請求項3】 前記プロテアーゼがトリプシンである、請求項1又は2に記
載の製法。 - 【請求項4】 前記パートc)が、パーミエーション(permeatio
n)クロマトグラフィー・ステップを含む、請求項1〜3のいずれか1項に記載
の製法。 - 【請求項5】 プロテアーゼ消化後にイオン交換ステップをさらに含む、請
求項1〜4のいずれか1項に記載の製法。 - 【請求項6】 請求項1〜5のいずれか1項に記載の製法により得られた失
活A型肝炎ウイルス。 - 【請求項7】 宿主細胞汚染物を実質的に含まない失活A型肝炎ウイルス調
製物。 - 【請求項8】 SDS PAGEをスキャンすることにより検出することが
できる、10%未満の又は8%未満の又は5%未満の汚染性宿主細胞タンパク質
を含む、請求項7に記載の失活A型肝炎ウイルス。 - 【請求項9】 請求項6〜8のいずれか1項に記載の失活A型肝炎ウイルス
を含むA型肝炎ワクチン。 - 【請求項10】 Th1−タイプ誘発性アジュバントと配合された、請求項
9に記載のワクチン。 - 【請求項11】 前記アジュバントが、モノホスホリル・リピドA又はその
誘導体を含む、請求項10に記載のワクチン。 - 【請求項12】 QS21をさらに含む、請求項11に記載のワクチン。
- 【請求項13】 油/水エマルジョン及びトコフェロールをさらに含む、請
求項12に記載のワクチン。 - 【請求項14】 B型肝炎抗原をさらに含む、請求項9〜13のいずれか1
項に記載のワクチン。 - 【請求項15】 非肝炎抗原をさらに含む、請求項9〜14のいずれか1項
に記載のワクチン。 - 【請求項16】 A型肝炎ワクチンの製法であって、請求項6〜8のいずれ
か1項に記載の失活A型肝炎ウイルスの調製物を、医薬として許容される担体と
混合することを含む、前記製法。
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