JP2002330772A - IgE依存性ヒスタミン放出因子(HRF)の受容体、HRF結合ペプチド及びこれらをコードする核酸、並びにこれらの用途 - Google Patents
IgE依存性ヒスタミン放出因子(HRF)の受容体、HRF結合ペプチド及びこれらをコードする核酸、並びにこれらの用途Info
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Abstract
スタミン放出因子(HRF)の新規な受容体、HRF結
合ペプチド、及びこれらをコードする核酸、及びこれら
の用途を提供する。 【解決手段】 特定なアミノ酸配列又はこれと85%以
上の相同性を有するアミノ酸配列を有するHRF受容
体。(A,LまたはW)−X−X−X−X−(A,L,
SまたはW)−(A,PまたはM)のアミノ酸配列を有
するHRF結合ペプチド。これらはHRFによるヒスタ
ミン放出を抑制できる。
Description
タミン放出因子(以下、「HRF」と称する)の受容
体、HRF結合ペプチドおよびこれらをコードする核
酸、並びにこれらの用途に関する。より詳細には、本発
明は喘息;鼻炎;痰麻疹;アナフィラキシー;アレルギ
ー性気管支拡張症;食物、薬物、花粉または虫によるア
レルギー;花粉症;寒冷じん麻疹;またはアトピー性皮
膚炎等のようなアレルギー疾患を誘発するHRFの新規
な受容体、HRF結合ペプチドおよびそれらをコードす
る核酸、並びにそれらの医薬分野における用途に関す
る。
的に過敏にIgEを生成するか、IgEの分泌を増加さ
せるインターロイキン−4(IL−4)とIgEの分泌
を減少させるγ−インターフェロン(γ−IFN)の均
衡が破れて起こると考えられている。アレルゲンに曝さ
れると、即時反応が起こり、炎症と関連した様々な細胞
が集まってきて、その数時間後には好塩基球、好酸球お
よびリンパ球から、ヒスタミン又は他のサイトカインが
分泌されることによる後期反応(「LPR」と略記す
る)が起こる。該LPRでは好塩基球からヒスタミンが
分泌されるが、この時には反応を誘発したアレルゲンが
ない。そして、アレルギー患者のおよそ半分だけがLP
Rにまで進展するため、何が好塩基球よりヒスタミンを
遊離させているのか、その原因物質が何であるのかとい
うことが大きな関心事であった。これまでに、MCP−
3、MCP−1またはランテス(RANTES)等のよ
うなサイトカインがヒスタミンを分泌させることが知ら
れており、IgE−依存性LPRでは、「HRF」と呼
ばれる物質だけが、好塩基球よりヒスタミンを分泌させ
る物質であることが明らかになっている[マクドナルド
(MacDonald)ら、1995]。しかしなが
ら、HRFがどういう作用機構によって、好塩基球より
ヒスタミン分泌を誘導しているかはいまだ知られていな
い。
アミノ酸よりなる公知のタンパク質である[ボーム(B
ohm)ら、1989]。そのうち、C末端の45個の
アミノ酸は塩基性ドメインを形成しており、この部位は
微小管結合タンパク質(microtubule−as
sociated protein)のMAP−1Bと
約46%の相同性を示すことから、微小管結合タンパク
質の一種と推定されている。ゴーセ(Gachet、1
997)らは、共焦点顕微鏡(confocal mi
croscope)を用いてHRFの分布と細胞骨格網
分布がある程度一致していることを観察したが、これは
HRFが細胞骨格と結合していることを示唆するもので
ある。一方、サンチェス(San-chez、199
7)らは、HRFが一般的なCa結合タンパク質ファミ
リーに属していないにもかかわらず、Ca2+と結合する
ことを発表した。また酵母サカロマイセスセレビジエ
(Saccaromyces cerevisiae)
で、HRF遺伝子を欠失させても酵母は生存できること
も確認した。これらの結果は、HRFが重複経路(re
dundant pathway)を有する遺伝子ファ
ミリーに属することを暗示するものである。
タンパク質であるにもかかわらず、マクドナルド(Ma
cDonald、1995)らは細胞外で該HRFを発
見した。また、HRFが細胞外に存在しながらIgE感
作好塩基球を刺激し、ヒスタミンを遊離させていると知
られていた。しかしながら、IgEとHRFの明確な相
互作用はいまだ究明されていない(Schroeder
et al.、1996)。シュレーダー(Schro
eder)ら(1997)は、IgEが存在していない
時にも、抗IgE抗体で誘導されるヒスタミンを好塩基
球から放出する反応が調節されることを観察し、HRF
がIgEに結合して作用するものではなく、特異な細胞
膜受容体に結合して作用することを提示した。したがっ
て、細胞質タンパク質であるHRFがどういう経路で細
胞外に出られるのか、どういう作用機構でHRFがIg
E感作好塩基球を刺激しヒスタミンを放出させるのかは
大切な問題である。
ク質であるが、LPRアレルギー患者の血漿から多量に
検出される。このことから、アポトーシスや他の作用機
構により細胞外に放出され、好塩基球の細胞膜に存在す
るHRF受容体を介してヒスタミンを遊離させるものと
推定されていた。
め、炎症関連細胞以外の組織細胞においてもその機能を
発揮するものと推定される。しかしながら、炎症関連細
胞以外の他組織、とりわけ脳組織や神経細胞でのHRF
の機能については殆ど報告されていない。但し、最近2
−Dゲル電気永動およびプロテオミックス(prote
omics)を用いて、ヒトの脳に存在している各種タ
ンパク質の分析中に、HRFが見出されており[ランゼ
ン(Langen)ら、1999]、次いで同一グルー
プの研究陣らによって、ダウン症候群やアルツハイマー
病で死亡した患者の脳よりHRFタンパク質が減少して
いることが観察されたという報告があっただけである
[キム(Kim)ら、2001]。
の均衡調節に係わるNa+,K+−ATPアーゼは神経細
胞、とりわけ神経末端またはシナプトゾーム(syna
ptosome)の膜にも高濃度で存在し、神経活性に
重要な役割を果たしている。神経細胞膜に存在している
Na+,K+−ATPアーゼの活性が阻害され又は活性が
消失すると、色々な神経病理学的変化やアポトーシスが
誘発されると報告されている[リーズ(Lees)、1
991]。これは、脳の虚血や酸素欠乏状態でNa+,
K+−ATPアーゼの酵素活性に必須的な細胞内ATP
が枯渇するという報告[マーティン(Martin)
ら、1994;サントス(Santos)ら、199
6]にも関連している。したがって、このような脳疾患
状態では該酵素の活性も阻害されるとされている。ま
た、Na+,K+−ATPアーゼ活性が阻害される時、神
経伝達物質の放出が増加することが、マウス脳組織切
片、シナプトゾームおよび試験管内(in vitr
o)培養システムにより証明された。なお、生体内(i
n vivo)および試験管内(in vitro)で
の研究より、虚血または酸素欠乏と似た状態で神経伝達
物質の放出が増加し、その結果、シナプス後膜受容体の
活性化が神経損傷について重要な過程であると提示され
た[チェ(Choi、1990)、マーティン(Mar
tin et al.、1994)]。
ーパミン、セロトニン、ノルエピネフリン、グルタメー
ト等の神経伝達物質だけでなく、インスリン、酸化窒素
(NO)等の内因性物質によっても調節される。脳に、
植物から抽出された配糖体のウワバインと構造的に類似
した内因性Na+,K+−ATPアーゼ阻害物質である
「脳ウワバイン」が存在することが見出された[バドジ
カウスキー(Budzikowski)ら、1998]
が、ロードリゲスら[Rodriguez et.a
l、1992]は、脳の可溶性分画に、Na+,K+−A
TPアーゼの活性を特異的に阻害し、ウワバインとは構
造も特性も異なる内因性ウワバイン様因子(endog
enous ouabain−like factor)
が存在し、これにより高親和性3H−ウワバイン結合が
遮断されて神経伝達物質の放出が誘導され、また、該神
経伝達物質によるNa+,K+−ATPアーゼ活性の調節
にも関与すると報告した。最近、この物質はエンドバイ
ン(endobain)E[ヴァッタ(vatta)
ら、1999]と命名されたが、その実体については依
然明らかにされていない。
Fの新規受容体、HRF結合ペプチドおよびそれらの用
途を提供することである。
が親水性タンパク質であるにもかかわらず、細胞膜を通
過できることと、ii)酵母の2ハイブリッド分析(ye
ast two-hybrid assay)によりHR
F受容体がNa+,K+−ATPアーゼの第3細胞質ドメ
イン(CD3)であるという驚くべき事実を見出した。
なお、細胞外に分泌されたHRFが好塩基球内で、ヒス
タミンの分泌を促進する明確な作用機構も本発明者によ
り最初に究明された。
発明者はi)HRFが細胞内に入る段階を遮断すること
により、あるいはii)HRFがNa+,K+−ATPアー
ゼに結合する段階を遮断してHRFのヒスタミン分泌を
阻害することにより、アレルギー疾患の予防または治療
ができると考えた。その一環として、ドデカマーおよび
ヘプタマーファージディスプレーライブラリーをスクリ
ーニングし、HRFに結合するペプチドを研究していた
ところ、ある特定配列を有するペプチドのヒスタミン分
泌阻害率が極めて優れていることを確認し、本発明の完
成に至った。
o.)1、2および3よりなる群から選ばれたアミノ酸
配列を有する、ラットHRF受容体に関する。
りなる群から選ばれたアミノ酸配列を有する、ヒトHR
F受容体に関する。
以上の配列相同性を有するHRF受容体に関する。
TPアーゼ α1、α2、またはα3サブユニットの大
型細胞質ループ[CD3(cytoplasmic d
omain 3]で有り得る。
核酸に関する。本発明の核酸は配列番号7、8および9
よりなる群から選ばれた塩基配列(ラットHRF)、ま
たは配列番号10、11および12(ヒトHRF)より
なる群から選ばれた塩基配列を含有し得る。
ベクターに関する。
転換された形質転換体に関する。
合物および前記受容体と相互作用すると知られている化
合物と接触させる工程;前記被験化合物のうち、前記受
容体と相互作用すると知られている化合物の相互作用を
減少させる化合物を選別する工程を含む、HRF受容体
と相互作用する化合物の同定方法である[競合結合分析
(competition binding assa
y)]。
るHRF結合ペプチドに関する: (A,LまたはW)−X−X−X−X−(A,L,Sま
たはW)−(A,PまたはM) {ここで、Xは任意のアミノ酸を示す}。
はアミノ酸配列(A,LまたはW)−X−X−(Y,P
またはA)−(P,GまたはK)−(A,L,Sまたは
W)−(A,PまたはM)を有するものであり、より好
ましくは、アミノ酸配列(A,LまたはW)−(V,
Y,EまたはA)−(T,V,FまたはA)−(Y,P
またはA)−(P,GまたはK)−(A,L,Sまたは
W)−(A,PまたはM)、例えば、配列番号13、1
4、15、16、17、18、19、20、21および
22よりなる群から選ばれたアミノ酸配列を有するもの
である。さらに好ましくは、アミノ酸配列(Aまたは
W)−(YまたはA)−(VまたはA)−(Yまたは
A)−(PまたはK)−(SまたはA)−(Mまたは
A)、例えば、配列番号14、16、17、18、1
9、20、21および22よりなる群から選ばれたアミ
ノ酸配列を有するものである。最も好ましくは、アミノ
酸配列W−(YまたはA)−(VまたはA)−(Yまた
はA)−(PまたはK)−(SまたはA)−M、例え
ば、配列番号14、17、18、19、20、及び21
よりなる群から選ばれたアミノ酸配列を有するものであ
る。
ノ酸がL−アミノ酸、D−アミノ酸又はDL−アミノ酸
であってもよく、さらに修飾されたアミノ酸、例えばア
ミノ酸誘導体またはアルキル化、とりわけメチル化アミ
ノ酸を1つ以上含んでもよい。
コードする核酸に関する。
えベクターに関する。
質転換された形質転換体に関する。
F結合ペプチドまたはそれをコードする核酸を含有する
アレルギー、とりわけ、喘息;鼻炎;痰麻疹;アナフィ
ラキシー;アレルギー性気管支拡張症;食物、薬物、花
粉または虫によるアレルギー;花粉症、寒冷じん麻疹;
またはアトピー性皮膚炎の診断、予防または治療用組成
物に関する。
依存性ヒスタミン放出因子(HRF)またはそれをコー
ドする核酸を含有する神経伝達物質、例えば、ドーパミ
ン放出誘導剤に関する。
F結合ペプチドまたはそれをコードする核酸を含有する
神経伝達物質、例えば、ドーパミン放出抑制剤、とりわ
け脳卒中、アルツハイマー病またはパーキンソン病等の
ようなアポトーシス関連神経疾患の診断、予防または治
療用組成物に関する。
F結合ペプチドまたはそれをコードする核酸を含有する
マラリアの診断、予防または治療用組成物に関する。
を利用し、HRFがNa+,K+−ATPアーゼ αサブ
ユニットのうち、大型細胞質ループ(CD3)に結合す
ることを始めて見出した。なお、共同免疫沈澱法(co
immunoprecipitation)を用いて酵
母細胞および哺乳細胞で、HRFとNa+,K+−ATP
アーゼ αサブユニットのCD3が相互作用することを
確認し、その結合親和度を測定した。さらに、HRFの
受容体がNa+,K+−ATPアーゼ αサブユニットの
CD3であることを共焦点顕微鏡で確認した。
かかわらず、細胞内に侵入できることを共焦点顕微鏡と
ウエスタンブロッティング法で立証し、該HRFが細胞
内のNa+およびCa2+濃度を増加させ、この際、Na
/Ca交換体により細胞外のCa源が消耗されることを
明らかにした。また、HRFがIgEの存在下で、反応
性酸素源(ROS)を生成し、その結果細胞内により多
くのCa2+が流入されることを明らかにした。
ン放出を、HRFが促進する作用機構が明らかにされ
た。即ち、細胞外に分泌されたHRFが好塩基球内に入
り込み、Na+,K+−ATPアーゼ αサブユニット中
の第3細胞質ドメイン(CD3)と結合し、ウワバイン
の様に、Na+,K+−ATPアーゼの作用を阻害し、そ
の結果、細胞内のNa+濃度は増加し、次いでNa/C
a交換体が活性化されることによって細胞内のCa2+濃
度も増加する。また、IgEが存在すると、ROSの生
成により細胞内のCa2+が一層増加するため、結局ヒス
タミン分泌が促進される。以上の結果は、HRFの受容
体がこのNa+,K+−ATPアーゼのCD3であり、H
RFがNa+,K+−ATPアーゼの細胞質リプレッサー
であることを意味する。
実体を始めて究明し、これにより、配列番号1、2およ
び3よりなる群より選ばれたアミノ酸配列を有するHR
F受容体を提供できる。HRF受容体は夫々ラットから
分離されたNa+,K+−ATPアーゼ α1、α2およ
びα3サブユニットのCD3に属するものであり、該当
技術分野で通常の知識を有した者であれば誰でもヒトH
RF受容体を容易に同定することができる。従って、ヒ
トHRF受容体も同様に本発明の範囲内に属する。ヒト
HRF受容体は、配列番号4(α1)、5(α2)また
は6(α3)に記載のアミノ酸配列を有する。
CD3とα2 CD3との間での配列相同性は87.6
%であり、α2 CD3とα3 CD3との間での配列相
同性は89.4%であった。一方、ラットとヒトの間で
のNa+,K+−ATPアーゼα CD3の配列相同性
は、α1同士で97.5%、α2同士で99.3%、α
3同士で98.8%を示した(図18〜21参照)。従
って、本発明は前記配列番号に記載の夫々のアミノ酸配
列と85%以上の配列相同性を有するHRF受容体を提
供する。
核酸、例えば、配列番号7(ラットα1)、配列番号8
(ラットα2)および配列番号9(ラットα3)のいず
れか一つ、又は配列番号10(ヒトα1)、配列番号1
1(ヒトα2)および配列番号12(ヒトα3)のいず
れか一つに記載の塩基配列を有する核酸を提供する。同
時に、本発明は前記核酸を含有する組換えベクターおよ
び該ベクターで形質転換された形質転換体をも提供す
る。
使用することを含む、HRF受容体と相互作用する化合
物を同定する方法を提供する。本発明の競合結合分析で
は、HRF受容体及びHRFタンパクをコードする核酸
を含有した組換えベクターで形質転換された細胞を、被
験化合物および前記受容体と相互作用すると知られてい
る化合物と接触させ、前記被験化合物の中より、前記受
容体と相互作用すると知られている化合物の相互作用を
減少させる化合物を選別する。以上より、最終的には細
胞内でヒスタミン分泌が効果的に調節できる新規な化合
物をスクリーニングすることができる。
で結合し、ヒスタミンの分泌を阻害するペプチドを提供
する。一例として、本発明のHRF結合ペプチドはアミ
ノ酸配列を有する。 (A,LまたはW)−X−X−X−X−(A,L,Sま
たはW)−(A,PまたはM) {ここで、Xは任意のアミノ酸を示す} HRF結合ペプチドのアミノ酸配列の例は下記のものを
含有する。
たはA)−(P,GまたはK)−(A,L,Sまたは
W)−(A,PまたはM); 好ましくは、(A,LまたはW)−(V,Y,Eまたは
A)−(T,V,FまたはA)−(Y,PまたはA)−
(P,GまたはK)−(A,L,SまたはW)−(A,
PまたはM)であり、例えば、配列番号13〜22が挙
げられる;より好ましくは、(AまたはW)−(Yまた
はA)−(VまたはA)−(YまたはA)−(Pまたは
K)−(SまたはA)−(MまたはA)であり、例え
ば、配列番号14、16、17、18、19、20、2
1および22が挙げられる;最も好ましくは、W−(Y
またはA)−(VまたはA)−(YまたはA)−(Pま
たはK)−(SまたはA)−Mであり,例えば、配列番
号14、17、18、19、20および21が挙げられ
る。
スプレーライブラリースクリーニングを通じて得、次い
で合成ペプチドを用いて実験を繰返し行った。本発明の
ペプチドは化学的に合成されるか遺伝子組変え技術を用
いて製造することができる。好ましくは、本発明のぺプ
チドを構成するドメインを生体内に存在するタンパク質
若しくはその一部により製造してもよい。他の方法とし
ては、本発明のペプチドは、それをコードする塩基配列
を有するDNAを挿入した発現ベクターを用いて組変え
DNA技術で製造してもよい。
に製造され、サムブルック(Sambrook)らの方
法(Molecular Cloning,1989、
Cold Spring Harbor,Cold Sp
ring Harbor Laboratory Pre
ss)により適当な宿主細胞で形質転換され、適当な条
件下で発現されるように製造される。また、本発明のア
ミノ酸配列を包む融合タンパク質を用いて本発明のペプ
チドを製造することもできる。
は、当業界で公知の通常の技術により変更してもよい。
例えば、本発明のペプチドは、アミノ酸の数を変えるこ
とによって変更することができる。また、本発明のペプ
チドの活性を低下させない範囲内で、結合に直接的に関
与、または保存されるべき残基を除いた特定残基成分の
置換、或いはその順番を換えることにより変更され得
る。天然に存在するL−α−アミノ酸に変更する場合だ
けでなく、β、γ、δ−アミノ酸は勿論、D−α−アミ
ノ酸誘導体に変更することもできる。
いて、静電気力や親水性が結合に及ぼす影響を調べた結
果、典型的には、正に帯電されるアミノ酸(例えば、L
ys、Arg、His)や負に帯電されるアミノ酸(例
えば、Glu、Asp、Asn、Gln)が置換される
場合に、その敏感度が変化することが分かる。このよう
に、置換または付加される残基の数と形態は、必須的な
結合点との間に必要な空間、親水性または疎水性のよう
に要求される機能により適宜決定される。このような置
換により、本発明のペプチドの目的タンパク質に対する
親和度をより増加させることができる。
見られる。置換される残基として何を選択するかという
ことは、目的の位置に存在する分子の電気度、疎水性、
側鎖の変化またはらせん構造の変化等、ペプチドの基本
骨格を維持するのに大きな影響を及ぼす。一般的に、ペ
プチドの性質に重大な変化をもたらすのは、セリンのよ
うな親水性残基がロイシン、イソロイシン、フェニルア
ラニン、バリン、アラニンのような疎水性残基で置換さ
れる場合;リジン、アルギニンまたはヒスチジンのよう
な電気的に陽性の残基がグルタミン酸やアスパラギン酸
のような電気的に陰性の残基で置換される場合;グリシ
ンのような側鎖を持たないアミノ酸が嵩高い側鎖の残基
で置換される場合である。
チドを、該ペプチドのHRFに対する結合力およびそれ
に従うヒスタミン分泌阻害活性を維持又は増加する範
囲、すなわち、HRFに対する結合力およびそれに従う
ヒスタミン分泌阻害活性を損傷しない範囲内で、当業者
は通常の技術を利用して変更できる。従って、かかる範
囲で変更されたものは、本発明の範囲内に属する。
てのアレルギー疾患、例えば、喘息;鼻炎;痰麻疹;ア
ナフィラキシー;アレルギー性気管支拡張症;食物、薬
物、花粉または虫によるアレルギー;花粉症;寒冷じん
麻疹;またはアトピー性皮膚炎の診断、予防または治療
に有用である。前記のようなアレルギー疾患をわずらっ
ている患者の血液では、例外なくHRFが検出されるの
で(図22参照)、前記アレルギー疾患の診断、予防ま
たは治療に本発明のペプチドが有効であることは当業者
に自明なことである。
チドを含有する、アレルギーの予防または治療用組成物
を提供する。前記ペプチドの有効量は、体重1kg当り
約0.1〜5mg、好ましくは0.3〜2.5mgであ
ってもよい。本発明の組成物は、溶液またはミセルの形
で、ヒト又は動物に直接注入されるか製剤化して使用で
きる。本発明の組成物は非経口または局所投与により人
体に適用してもよいが、静脈注射、皮下注射、内皮注
射、筋肉注射等の注射により投与することが好ましい。
このために、本発明のペプチドを薬剤学的に許容可能な
担体に懸濁、または溶解させるが、このとき、とりわけ
水溶性担体を使用することが好ましい。
キットにも効果的に用いることができる。よって、HR
Fが結合するペプチド(HRF結合ペプチド)と抗HR
Fモノクローナル抗体を含む診断キットを用いた試験
で、血液反応で陽性と判定されると、アレルゲンがなく
てもアレルギーを起こし得る疾患を保有していると判断
される。即ち、LPRアレルギー患者の血液にはHRF
が浮遊しているため、血液検査の際、本キットを使用す
れば、血液中でのHRFの存在有無が分かり、この結果
LPR患者であるかどうかが判断できる。本発明では、
容器の底にHRF結合ペプチドを付着させた後、血液サ
ンプルを反応させ、さらに複合抗HRFモノクローナル
抗体(conjugated anti−HRF mo
noclonal antibodies)を加える方
法を用いてもよい。
内でNa+、K+−ATPアーゼを阻害することにより、
神経伝達物質の放出を増加させるか否かを次の様にして
調べた。すなわち、細胞内の神経伝達物質の分泌顆粒を
含有していて、特にカテコールアミンの放出調節の研究
に適しているとされている神経細胞株のPC12(Ab
u−Raya et al.、1999)の培養液にHR
Fを加え、[3H]−標識ドーパミンの放出変化を測定し
た。PC12細胞でドーパミンの基底およびK +濃度の
増加により誘導される脱分極時のK+興奮性放出(K+−
Stimulated release)がHRFの濃
度に依存して増加することを確認した。また、前記HR
F結合ペプチドが神経細胞においてもHRFにより誘導
された神経伝達物質の放出を効果的に遮断することが明
らかになった。
ーゼ活性の細胞内調節に関与するHRFは、神経細胞に
おいても神経活性に重要な役割を果たすNa+、K+−A
TPアーゼを阻害して神経伝達物質の放出を促進させ
る。従って、HRFは、神経細胞および脳より現われる
病体生理学的効果に重要な役割を演じると確信される。
こうした理由から、HRFの神経伝達物質の放出増加作
用を遮断できるHRF結合ペプチドは脳卒中、アルツハ
イマー病、パーキンソン病等のような種々のアポトーシ
スに関連する神経疾患の診断、予防または治療剤として
有用である。
合タンパク質を含有する脳卒中、アルツハイマー病、パ
ーキンソン病等のアポトーシス関連性神経疾患の診断、
予防または治療用組成物を提供する。この場合、前記の
投与経路と投与量を適用してもよい。
瘍タンパク質とも言われており、ビスティバン(Bhi
sutthibhan)ら(1998)によって、すで
に抗マラリア剤のアルテミシニンがマラリアタンパク質
のHRFに結合し作用することが明らかにされている。
従って、本発明のペプチドもHRFとの結合親和性を有
するため、アルテミシニンと同様に、マラリアの予防お
よび治療に用いられることができる。この場合、前記の
投与経路と投与量を適用してもよい。
しく説明するが、これは本発明の理解を深めるだけであ
り、本発明の範囲を何ら限定するものではない。
用したHRFのNa+,K+−ATPアーゼ大型細胞質ル
ープに対する結合実験 ラットの骨格筋より全細胞質RNAを抽出した後、pJ
G4−5ベクターを用いて、酵母の2ハイブリッド分析
用のcDNAライブラリーを製作した。Na+、K+−A
PTase α2サブユニットを用いてCD3部位をL
exA DNA結合ドメイン(pEG202ベクター)
に挿入した後、これをスクリーニング用のバイト(ba
it)として使用した。リポーター遺伝子を活性化させ
た陽性クローンを選択し、塩基配列分析、制限酵素マッ
ピングとBLASTサーチを利用して配列分析を行っ
た。これらのうち、一つのクローンがIgE依存性HR
Fの配列と完全に一致した。
2サブユニットのCD3部位をpEG202ベクターに
挿入した後、イソフォーム(isoform)による相
互作用を調べた。前記製造したすべての作製物で、Le
xAop−LEU2およびLexAop−LacZリポ
ーター遺伝子を含有する酵母細胞(EGY48/pSH
18−34)を形質転換した後、選択培地プレートで増
殖させた。
容体がNa+,K+−ATPアーゼの大型細胞質ループ
(CD3)であることを確認した。
およびCOS−7細胞における、HRFと(Na,K)
ATPアーゼの相互作用の実験 グルコシルUra−His−Trp−およびガラクトシ
ルUra−His−Trp−培地で、実施例1で調製し
た前記作製物で形質転換された酵母細胞を増殖させた
後、3000×gで5分間遠心分離を行い細胞を集め
た。集められた細胞を再び酵母溶菌緩衝液(yeast
lysis buffer;50mM Tris pH
8.0、5mM MgCl2、150mM NaCl,5
0mM NaF、2mM ZnCl2、プロテアーゼ阻害
剤カクテル)で懸濁させた後、グラスビーズに加え、攪
拌した。この混合物に、RIPA緩衝液(10mM T
ris pH8.0、10mMNaCl,1mMEDT
A,1%NP4O,0.5% デオキシコレートナトリウ
ム、0.1%SDS)を加えた後、10,000×g、
4℃で30分間遠心した。
sorb(The EnzymeCenter、In
c)を加えた後、4℃で30分間培養した後、10,0
00×gで5分間遠心した。この混合物にまた親和性の
精製抗−HA 12CA5モノクローナル抗体を加えた
後、4℃で3時間、または一晩培養した。生成された免
疫複合体に50%タンパク質Aアガロース溶液(Roc
he,USA)を加え、4℃で4時間培養した。次いで
5秒間遠心してから、ペレットをRIPA緩衝液と洗浄
緩衝液(1M NaCl,10mM Tris pH 8.
0、0.1%NP4O)で夫々洗浄した。
懸濁させた後、SDS−PAGEゲル上にローディング
した。相互作用するタンパク質を調べるため、ウサギポ
リクロナールLexA抗体を使用した。その結果を図2
に示す。図2よりHRFとNa+,K+−ATPアーゼの
大型細胞質ループが相互作用することを確認した。
めに、COS−7細胞をDMEM+培地(10%牛胎児
血清、100units/mlペニシリンおよび100
units/mlストレプトマイシン含有のDulbe
ccos modifiedEagles 培地)で増殖
させた。pCDNAneoベクター(Invitrog
en)に挿入した、N末端HA−タッグ(tag)のH
RF作製物をトランスフェクションさせた。COS−7
細胞抽出物の免疫沈澱をフロルキエヴィツ(Flork
iewicz)ら(1998)の方法により行い、相互
作用するタンパク質を調べるため、ウサギポリクローナ
ル抗Na+,K+−ATPアーゼ抗体を使用した。その結
果を図3に示す。図3より、哺乳細胞のCOS−7細胞
においても、HRFとNa+,K+−ATPアーゼの大型
細胞質ループが相互作用することを確認した。
分析を用いたNa+,K+−ATPアーゼとHRFの結合
親和度の測定実験 CM5センサーチップに、組換えラットHRFをpH
4.0、10mMアセテートに10mg/mlの濃度で
固定させた後、HBS緩衝液(0.01M Hepe
s、pH7.4、0.15M NaCl,3mM EDT
A、0.005%界面活性剤P20)を流し補正した。
この混合液に50mM NHS(N−ヒドロキシスクシ
ンイミド)と200mM EDC[N−エチル−N−
(3−ジエチルアミノプロピル)カルボジイミド]を流
し活性化させた後、Na+,K+−ATPアーゼを流し結
合親和度を測定した。その結果を図4に示した。図4
中、Kdの値は8.5×10-7Mである。
K+−ATPアーゼとHRFの相互作用の実験 COS−7細胞を、Ca2+及びMg2+を含有する3.7
%ホルムアルデヒドで10分間固定させた後、0.1%サ
ポニンを含有するマウスモノクローナル抗HRF抗体
(1:100)(梨花女子大学抗体センター)および/
またはウサギポリクローナル抗Na+,K+−ATPアー
ゼ抗体(1:100)を1時間、室温で加え染色した。
次いで、抗マウス−FITC(1:100)及び2次抗
体の抗ウサギ−ローダミン抗体(1:100)と30分
間培養した。その後、抗漂白剤溶液を加えてから、レー
ザー共焦点顕微鏡(Leica TCSNT syste
m)で観察した。その結果を図5に示した。
験 pRSET−Aベクターに、PCR(ポリメラーゼ連鎖
反応)により増幅したラットHRF全長配列(Chit
patima et al.、1988)をクローニング
した後、E.coli内で過発現(overexpre
ssion)させた。発現された組換えタンパク質をH
is−結合Niカラム(Novagen)を用い精製
し、COS−7細胞培養液に加えた後、COS−7細胞
を、Ca2+およびMg2+を含有する3.7%ホルムアル
デヒドで10分間固定した。その後、0.1%サポニン
を含有する抗Hisモノクロナール抗体(1:100)
を1時間、室温で加え染色した。次いで、2次抗体の抗
マウス−FITC(1:100)とともに30分間培養
した。その後、抗漂白剤溶液を加えレーザー共焦点顕微
鏡(Leica TCSNT system)で観察し
た。
COS−7細胞を前記の方法で処理した後、夫々細胞質
と細胞膜部分に分離し、10%SDS−PAGEゲルに
ローディングし、抗Hisモノクローナル抗体を用いて
ウエスタンブロッティングを行った。
示す。図6より、HRFを加えて1分後にHRFが細胞
内で検出されることを確認した。
及ぼす影響の測定実験 RBL−2H3細胞を3.0×105〜1.0×106c
ells/mlの濃度で24ウエルプレートにローディ
ングした後、37℃で18時間培養した。各ウエルに、
最終濃度が8Mになるように、Hams F−12培地
(フェノールレッドまたは血清欠乏2mM炭酸水素ナト
リウムおよび10mM HEPES pH7.3)と染料
のナトリウムグリーンテトラアセテート(Molecu
larProbes、Eugene、OR)を混合し、
細胞にローディングした(Amorino and Fo
x、1995)。その後、ラットIgE(Serote
c)を0.2g/mlで45〜60分間感作させた後、
約20〜60分間、室温で培養してからF−12培地で
3回洗浄した。次いで、ヒスタミン放出緩衝液に含まれ
たHRF(10〜20g/ml)を加えた後、485/
530nmで15分間、マイクロタイターリーダー(F
L600、Bio−tek Instruments,
Inc.、Winooski,VT)で蛍光強度を測定
した。その際、目盛り用に、Sigma社のグラミシジ
ンD(gramicidin D)を用いて、Na+とK
+を適正濃度に混合した溶液を測定した(Amorin
oand Fox,1995)。その結果を図7に示
す。図7より、HRFが細胞内Na+濃度を増加させる
ことを確認した。
Pアーゼ活性の阻害実験 RBL−2H3細胞を前記実施例6と同様の方法で培養
および感作させた後、クレプス−リンガー緩衝液(Kr
ebs−Ringer buffer;KRP,140
mM NaCl,5mM KCl、10mM Na2HPO
4,1mM MgSO4、1.4mM CaCl2、2.5
mMグルコース、pH7.4)で3回洗浄した。次い
で、細胞を37℃で15分間培養した後、1mMウワバ
インを含有した0.1%ウシ血清アルブミン(BSA)
含有のKRP緩衝液を加えた。86Rb+(0.5Ci/
ml,NEN)をトレーサーとして用いて5〜10分間
培養し、10〜20g/mlのHRFを加えた後、5、
10、15分後のK+の消費を夫々測定した。その結果
を図8に示す。図8より、HRFがNa+,K+−ATP
アーゼの活性度を、夫々10.8%、40.4%、5
0.7%に減少させることを確認した。
ぼす影響の測定実験 RBL−2H3細胞を前記実施例6と同様の方法で培養
した後、クレプス−リンガー緩衝液(KRP,125m
M NaCl,1.2mM KH2PO4、1.2mM M
gSO4,6mMグルコース、2mM CaCl2、25
mM Hepes、pH7.4)で洗浄した。次いで、
2μM Fluo−3−AM(Molecular Pr
obes,Eugene,OR)と0.2%BSAを含
有したKRH緩衝液で30分間培養した後、DMEM完
全培地で10〜30分間補正した。次いで、KRH緩衝
液で洗浄し、前記実施例6に記載の方法で感作させた。
感作後、HRF、抗IgE(Serotec)、各阻害
剤をヒスタミン放出緩衝液(100mM NaCl、
0.4mM MgCl2、5mM KCl、5.6mMグ
ルコース、0.1%BSA、25mM Hepes、p
H7.4)と共にカルシウムイオンの存在下又は不在下
で処理した。なお、488/515nmにおけるflu
o−3AMの蛍光強度を、レーザースキャーニング共焦
点顕微鏡で測定し、その結果を図9(a)に示した。
ロロフルオレセインジアセテート(DCFH−DA)を
用いてレーザースキャーニング共焦点顕微鏡で測定し
た。即ち、RBL−2H3細胞をIgEの存在または不
在下で、完全DMEM培地で1時間培養した。次いで、
クレプス−リンガー溶液で洗浄した後、5μM DCF
H−DAを含有したクレプス−リンガー溶液中で5分間
培養した。その後、488/515nmで蛍光をスキャ
ーニングしながら観察した。その結果を図9(b)およ
び図9(c)に示した。
a2+濃度が増加し、その際、Na/Ca交換体により細
胞外のCa2+が消費され(図9(a)参照)、IgEの
存在下ではROSが生成され、それにより細胞内Ca2+
が一層増加する(図9(b)および図9(c)参照)こ
とを確認した。
スタミン分泌との関係の確認実験 pRSET−Aベクターに、PCRで増幅したラットH
RF全長配列(Chitpatima et al.、1
988)をクローニングした後、E.coliで過発現
させた。発現された組換えタンパク質をHis−結合N
iカラム(Novagen)を用いて精製し、RBL−
2H3細胞を刺激するのに使用した。RBL−2H3を
1×106細胞を24−ウエルプレート上で増殖させた
後、ラットIgE抗体(0.2μg/ml、Serot
ec)で45〜60分間感作させ、組換えHRFタンパ
ク質20μg/mlと前記阻害剤で夫々処理した。以上
より得られたサンプルを、RIA−分析キット(Imm
unotech,フランス)を用いてアシル化ヒスタミ
ンに調製した後、125I−アシル化ヒスタミン及びモノ
クローナル抗体に競合的に結合させた。その後、該サン
プルを再びγ−計数器で測定し、その結果を図10に示
した。図10より、IgEの存在下、細胞内Ca2+濃度
が増加すると、HRFによりヒスタミンが放出されるこ
とを確認した。
ィスプレーペプチドクローンの分離 HRFをウエルに固定した後、HRF−ヘプタマーラン
ダムリピートペプチドライブラリー(New Engl
and Biolabs,USA)から、親和性に基づ
くスクリーニングによりHRFに結合できるペプチドを
分離した。
NaHCO3、pH8.6)に20μg/mlの濃度で
溶解したHRF50μlずつをポリスチレンマイクロタ
イタープレートに加え、4℃で一晩コーティングした
後、BSAで非特異的結合を遮断した。その後、0.1
%Tween/TBS(TBST)で6回洗浄してか
ら、ファージディスプレーペプチドライブラリーの原液
10μlを3%BSA/TBS40μlで希釈した溶液
を加え、静置した。5分間放置後、TBSTを用いて、
次の要領で洗浄(panning)した。第一洗浄では
一回、第2および第3洗浄では5回、第4洗浄では10
回行った。 次いで、グリシン/HCl緩衝液(pH
2.2)50μlを加えて5分間放置した後、ファージ
を溶出してから、1M Tris−HCl(pH9.
1)8μlで中和した。
R2537培養液(OD600=0.5〜1)に添加し、
37℃の攪拌インキュベータ(200rpm)上で2時
間培養した後、SB培地100mlを加え250rpm
で一晩培養した。この培養液を10,000rpm(4
℃)で5分間遠心して得られた上清液100mlに、3
0mlの5×PEG/NaCl[20%PEG(w/
v)、15%NaCl(w/v)]を加え5分間溶解さ
せてから氷中に30分間静置した。次いで、10,00
0rpm(4℃)で20分間遠心し、その上清液をすべ
て取り除き、ペレットを3%BSA/TBS 1mlに
浮遊させた。その後、14,000rpmで5分間遠心
し、その上清液を次の洗浄(panning)に使用し
た。親和性による精製とファージクローニングを4回繰
り返し、溶出ファージの滴定プレートより、夫々のファ
ージクローンを得た。ELISA分析で特異的親和度を
示したファージクローンのみについて配列分析し、その
アミノ酸配列を同定した。 図11に前記HRF結合ペ
プチドをコードする遺伝子の分離過程を概略的に示し
た。また、HRFに対して優勢的な結合を示すファージ
ディスプレーペプチドを下記の表1に示す。
和度を、以下の様にしてELISAで比較した。
養液(OD600=0.5〜1)1mlずつ分取した後、
各ファージプラークを移し、37℃インキュベータ(2
50rpm)で5時間培養した。各培養液を100μl
ずつ900μlのSB培地に加え一晩培養した後、1
4,000rpmで5分間、2回続けて遠心して得られ
た上清液をELISA分析のために使用した。
A/PBSで希釈した後、該希釈溶液を50mlずつ、
HRFまたはBSA(対照群)でコーティングしたウエ
ルに加え2時間静置した。その後、PBSTで5回洗浄
してから、3%BSA/PBSに、1:5,000の割
合で希釈したHRP−複合抗M13抗体(HRP−co
njugated anti−M13antibodi
es)(Pharmacia)を100mlずつ加え1
時間静置した。次いで、PBSTで6回、PBSで1回
洗浄した後、パーオキシダーゼ基質溶液を100μlず
つ加え、その発色度をELISAリーダーを用いて40
5nmで測定した。その結果を図12に示す。、図12
より、本発明のファージph1、ph2およびph4、
とりわけph2およびph4がHRFに特異的に結合す
ることを確認した。
クローンの結合親和性の測定 HRFの濃度を20μg/mlから1/5倍に連続希釈
した後(即ち、夫々20、4、0.8、0.16、0.
032μg/ml)、各希釈液を50μlずつとりプラ
スチックウエルに固定した。また、このウエルに前記同
様に、1/5倍で連続希釈したファージph2溶液(原
液の1/2、1/10、1/50、1/250、1/1
250)を加え、ELISA分析を行い、405nmで
その発色度を測定した。その結果を図13に示す。図1
3より本発明のファージph2クローンが、HRFを
0.4,0.08,0.016,0.032μg/ml
まで希釈した場合でも、HRFと特異的な結合親和性を
維持していることを確認した。
ァージクローン(ph2およびph4)の配列を分析
し、その配列を確認した後、ヘプタマーペプチド(p2
およびp4)を製造した。なお、陰性対照群として、ラ
ンダムペプチド(ran,アミノ酸配列:LMEGCR
A)を合成した。HRFでコーティングしたウエルに、
1,000nM ペプチド溶液を6%BSA/PBSで希
釈した溶液(1/10倍で連続希釈;1,000、10
0、10、1、0.1、0.01、0.001 nM)
を30μlずづ加え室温で30分間静置した後、各ウエ
ルに1/25倍で希釈したファージ溶液(原液)を加
え、さらに2時間静置した。その後、プレートをPBS
Tで5回洗浄してから、各ウエルにHRP−複合抗M1
3抗体を100μlずつ加え1時間静置した。再び、P
BSTで6回、PBSで1回洗浄した後、各ウエルにパ
ーオキシダーゼ基質溶液を100μlずつ加え、その発
色度より競合の有無を確認した。その結果を図14
(a)および14(b)に示す。図14(a)及び図1
4(b)より、合成ペプチドp2およびp4は、HRF
との結合において、夫々ファージクローンph2および
ph4と競合していることを確認した。
一部位に結合するか否かを試験するため、前記a)と実
質的に同一の方法により、各ウエルをHRFでコーティ
ングし、ph2に対するp1、p2およびp4の競争結
合の分析を行った。その結果を図14(c)に示す。図
14(c)より、p1、p1およびp4がすべてHRF
の同一部位に結合することを確認した。
酸配列変位 本発明のヘプタマーペプチドのHRF結合親和度に関与
する残基を確認するため、p2のアミノ酸配列を1個ず
つアラニン(A)で置換した。但し、m5の場合のみリ
ジン(K)で置換した(表2参照)。
例11と実質的に同一の方法で測定した。その結果を図
15に示す。図15より、HRF結合親和度が、p2、
m6>m7>m3>m2>m5>m1>m4であること
を確認した。
RF全長配列(Chitpatima et al.、1
988)をクローニングした後、E.coliで過発現
させた。発現された再組換えタンパク質をHis−結合
Niカラム(Novagen)で精製し、RBL−2H
3細胞を刺激するのに使用した。RBL−2H3を24
−ウエルで増殖(1×106細胞)させた後、ラットI
gE抗体(0.2μg/ml、Serotec)で45
〜60分間感作した後、20μg/mlの組換えタンパ
ク質で処理した(陽性対照群)。 その後、前記細胞に
ヘプタマーペプチドp1およびp2を容量依存的方法で
処理した。また、組換えHRFタンパク質とペプチドp
1、p2、p4およびm1〜m7を、夫々HRFと同様
に20μg/mlの濃度で処理した。
(Immunotech,フランス)を用いて、アシル
化ヒスタミンに調製した後、125I−アシル化ヒスタミ
ンと共にモノクローナル抗体に競合結合させた。このサ
ンプルを再びγ−計数器で測定し、その結果を図16お
よび図17に示した。図16から、配列番号14のペプ
チド(p2)をRBL−2H3細胞に加えた場合、0.
01μg/ml以上の濃度より、配列14のペプチド
(p2)がHRFによるヒスタミンの放出を阻害するこ
とがわかった。また、図17に示された通り、p1、p
2、p4およびm1〜m7を20μg/ml加えた際、
m2>m5>m4>p2>m3>p1=p4>m1>m
7の順でHRFによるヒスタミン分泌を阻害し、m6の
場合は、逆にヒスタミン分泌を増加させていることを確
認した。
HRFの影響の分析 HRFが酵素Na+,K+−ATPアーゼの抑制物質とし
て作用し、神経伝達物質の放出を増加させることが可能
であるかを調べた。まず、PC12細胞(Abu−Ra
ya et al.、1999)の培養液にHRFを加
え、基底状態およびK+−脱分極状態で誘導される
[3H]−標識ドーパミンの放出変化を測定した。PC
12細胞としては、パッセージナンバー5〜15より得
られた細胞を用い、該細胞を10%ウマ血清、5%ウシ
胎児血清、ペニシリン(100U/ml)およびストレ
プトマイシン(100μg/ml)が添加されたRPM
I−1640培地で5%CO2の供給下、37℃で培養
した。
め、実験一日前、ポリ−L−リジン(10μg/ml)
でコーティングされた12ウエルプレートに、細胞(1
×10―6細胞/ウエル)を培養し、[3H]−ドーパミ
ン(0.5μCi/ml)が含まれた新たな培地にロー
ディングし、さらに37℃で3時間培養した。各ウエル
をPBS(1×)1mlで2〜3回洗浄した後、クレプ
スリンガー(KR)緩衝液(125mM NaCl、5
mM KCl、2mM CaCl2、10mM HEPE
S、1.2mM MgSO4、1.2mM KH2PO4、6
mM グルコース、5mM NaHCO3)にアスコルビ
ン酸(0.2mg/ml)、パルジリン(0.6mg/
ml)およびデスピラミン(despiramine)
(2μM)を加え、該混合液をHRFと共に1mlずつ
ローディングした後、37℃で20分間反応させた。脱
分極状態での放出は50mMのKClが含有されたKR
緩衝液で測定した。また、Ca2+欠乏培地はCaCl2
を取り除き、0.5mMのEGTAを加えて調製したK
R緩衝液で測定した。
×gで10分間遠心し、放出されたドーパミンの放射能
を測定し、細胞を0.5N NaOHで可溶化した後、
組織内の放射能を測定した。ドーパミンの放出率(%)
は、下式により計算した。 [上精液の放射能/(上精液の放射能+組織内の放射
能)×100]
似細胞のPC12細胞で、ドーパミンの基底放出が、H
RFの濃度に依存して増加することがわかる。すなわ
ち、10μgのHRFで処理した場合には、細胞外のK
+濃度の増加によって誘導される脱分極時の興奮性放出
と同等程度にドーパミンの放出を促進させた。また、3
0μg以上のHRFで処理した場合には、ドーパミンの
放出が急激に増加し、細胞が培養容器の底に付着せず、
死滅することが観察された。一方、HRFは高濃度の細
胞外のK+により誘導される脱分極時の興奮性放出も濃
度依存的に増加させ、HRF濃度に従ったドーパミンの
放出増加反応が基底放出増加反応と比べて、左側にシフ
トする様子を示したが、ドーパミン放出の増加の程度
は、HRFによる基底放出増加の度合と比べ相対的に小
さかった。
による神経伝達物質放出抑制実験 前記HRFによるヒスタミンの放出を遮断するペプチド
が、神経細胞においてもHRFにより誘導された神経伝
達物質の放出を遮断するか否かを確認するために、実施
例16と実質的に同様の方法で、HRFにより増加した
ドーパミンの放出に対する配列番号14のペプチドp2
の影響を分析した。
列番号14のペプチド60μg/ml存在下では、HR
F15μg/mlにより約110%程度増加したドーパ
ミンの放出が、約60%程度抑制されたことがわかる。
従って、前記HRF結合ペプチドは、神経細胞内で、H
RFにより増加された神経伝達物質の放出を効果的に遮
断することを確認できた。
RFの好塩基球におけるヒスタミン放出を促進する作用
機構を始めて究明できた。したがって、本発明のHRF
の受容体の作用機構と優れた薬物動態学的安定性を示す
HRF結合ペプチドを用い、細胞内でのヒスタミン分泌
を効果的に阻害することにより、動物を含めてヒトの喘
息;鼻炎;痰麻疹;アナフィラキシー;アレルギー性気
管支拡張症;食物、薬物、花粉または虫によるアレルギ
ー;花粉症;寒冷じん麻疹;またはアトピー性皮膚炎等
のようなアレルギー疾患を予防、治療および診断するこ
とができる。
胞内調節に関与するHRFは、神経細胞においても神経
活性に大切な役割を果たすNa+、K+−ATPアーゼを
抑制することにより神経伝達物質の放出を促進させ、そ
の結果、神経細胞および脳で現れる病態生理学的効果に
大きい働きをすると信じられる。したがって、HRFに
よる神経伝達物質の放出増加作用を遮断する本発明のペ
プチドは、脳卒中、アルツハイマー病、パーキンソン病
等の様々なアポトーシス関連神経疾患の診断、予防およ
び治療剤として有用に用いられる。
プチドは、マラリアの診断、予防及び治療にも用いるこ
とができる。さらにまた、HRF受容体やHRF結合ペ
プチドを前駆体にして様々な非ペプチド誘導物質を製造
することもできる。
の大型細胞質ループであることを酵母の2ハイブリッド
法で確認した結果を示した図である。
胞質ループが相互作用することを、酵母細胞で共同免疫
沈澱法を用いて確認した結果を示した図である。
胞質ループが相互作用することを、COS−7細胞で共
同免疫沈澱法を用いて確認した結果を示した図である。
胞質ループの親和度をバイアコア(biacore)法
で測定した結果を示したグラフである。
の大型細胞質ループであることを、共焦点顕微鏡で確認
した結果を示した写真である。
ク質のHRFが、細胞内に侵入できることを共焦点顕微
鏡及びウエスタンブロッティング法で確認した結果を示
した写真である。
とを示したグラフである。
低下させることを示したグラフである。
内のCa2+濃度が上昇し、Na/Ca交換体により細胞
外のCa2+源が消費され、IgEの存在下でROSが生
成し、その結果、細胞内のCa2+濃度が一層上昇するこ
とを示したグラフである。
昇すると、HRFによってヒスタミンが分泌されること
を示したグラフである。
分離過程の概略を示した図である。
HRFに特異的に結合することを示したグラフである。
HRFタンパク質の結合親和度を示したグラフである。
ージでディスプレーされたペプチドと、該ペプチドと同
一アミノ酸配列を有する合成ペプチドが、同一であるこ
とを示したグラフである。
たグラフである。
ペプチドがヒスタミン放出を抑制するのに必要な量を測
定した容量−反応関係を示したグラフである。
HRF結合ペプチドの、HRFによるヒスタミン放出に
対する阻害を比較したグラフである。
ノ酸配列を示した図である。
ノ酸配列を示した図である。
配列間の配列保存性を示した図である。
配列間の配列保存性を示した図である。
配列間の配列保存性を示した図である。
配列間の配列保存性を示した図である。
列保存性を示した図である。
列保存性を示した図である。
列間の配列保存性を示した図である。
列間の配列保存性を示した図である。
列間の配列保存性を示した図である。
列間の配列保存性を示した図である。
検出されたことを示す図である。
ドーパミンの放出が上昇することを示したグラフであ
る。
チドが、HRFによるドーパミン放出を抑制することを
示したグラフである。
Claims (32)
- 【請求項1】 配列番号1、2および3よりなる群から
選ばれたアミノ酸配列を有するラットIgE依存性ヒス
タミン放出因子(HRF)受容体。 - 【請求項2】 配列番号4、5および6よりなる群から
選ばれたアミノ酸配列を有するヒトHRF受容体。 - 【請求項3】 請求項1または2のアミノ酸配列と85
%以上の相同性を有するHRF受容体。 - 【請求項4】 Na+、K+−ATPアーゼ α1、α2
またはα3サブユニットの大型細胞質ループ(larg
e cytoplasmic loop;CD3)であ
る請求項1または2に記載のHRF受容体。 - 【請求項5】 請求項1または2のHRF受容体をコ
ードする核酸。 - 【請求項6】 配列番号7、8、9、10、11および
12よりなる群から選ばれた塩基配列を有する請求項5
に記載の核酸。 - 【請求項7】 請求項5の核酸を含有する組換えベクタ
ー。 - 【請求項8】 請求項7のベクターで形質転換された形
質転換体。 - 【請求項9】 請求項8の形質転換体を、被験化合物お
よび前記受容体と相互作用すると知られている化合物と
接触させる工程;及び前記被験化合物のうち、前記受容
体と相互作用すると知られている化合物の相互作用を減
少させる化合物を選別する工程を含むHRF受容体と相
互作用する化合物のスクリーニング方法。 - 【請求項10】 下記のアミノ酸配列を有するHRF結
合ペプチド: (A,LまたはW)−X−X−X−X−(A,L,Sま
たはW)−(A,PまたはM) {ここで、Xは任意のアミノ酸を示す} - 【請求項11】 アミノ酸配列(A,LまたはW)−X
−X−(Y,PまたはA)−(P,GまたはK)−
(A,L,SまたはW)−(A,PまたはM)を有する
請求項10に記載のペプチド。 - 【請求項12】 アミノ酸配列(A,LまたはW)−
(V,Y,EまたはA)−(T,V,FまたはA)−
(Y,PまたはA)−(P,GまたはK)−(A,L,
SまたはW)−(A,PまたはM)を有する請求項11
に記載のペプチド。 - 【請求項13】 配列番号13、14、15、16、1
7、18、19、20、21および22よりなる群から
選ばれたアミノ酸配列を有する請求項12に記載のペプ
チド。 - 【請求項14】 アミノ酸配列(AまたはW)−(Yま
たはA)−(VまたはA)−(YまたはA)−(Pまた
はK)−(SまたはA)−(MまたはA)を有する請求
項12に記載のペプチド。 - 【請求項15】 配列番号14、16、17、18、1
9、20、21および22よりなる群から選ばれたアミ
ノ酸配列を有する請求項14に記載のペプチド。 - 【請求項16】 アミノ酸配列W−(YまたはA)−
(VまたはA)−(YまたはA)−(PまたはK)−
(SまたはA)−Mを有する請求項14に記載のペプチ
ド。 - 【請求項17】 配列番号14、17、18、19、2
0、及び21よりなる群から選ばれたアミノ酸配列を有
する請求項16に記載のペプチド。 - 【請求項18】 前記配列を構成するアミノ酸がL−ア
ミノ酸,D−アミノ酸またはDL−アミノ酸である請求
項10〜17のいずれかに記載のペプチド。 - 【請求項19】 前記配列を構成するアミノ酸には、修
飾されたアミノ酸が1つ以上含まれている請求項10〜
17のいずれかに記載のペプチド。 - 【請求項20】 前記修飾されたアミノ酸は、アミノ酸
誘導体またはアルキル化アミノ酸である請求項19に記
載のペプチド。 - 【請求項21】 請求項10〜17のいずれかのペプチ
ドをコードする核酸。 - 【請求項22】 請求項21の核酸を含有する組換えベ
クター。 - 【請求項23】 請求項22の組換えベクターで形質転
換された形質転換体。 - 【請求項24】 有効成分として、請求項10〜17の
いずれかのペプチドまたは請求項21の核酸を含有する
アレルギー診断、予防または治療用組成物。 - 【請求項25】 前記アレルギーは、喘息;鼻炎;痰麻
疹;アナフィラキシー;アレルギー性気管支拡張症;食
物、薬物、花粉または虫によるアレルギー;花粉症;寒
冷じん麻疹;及びアトピー性皮膚炎よりなる群から選ば
れる少なくとも1種である請求項24に記載の組成物。 - 【請求項26】 有効成分として、請求項10〜17の
いずれかのペプチドまたは請求項21の核酸を含有する
マラリア診断、予防または治療用組成物。 - 【請求項27】 有効成分として、HRFまたはHRF
をコードする核酸を含有する神経伝達物質放出誘導剤。 - 【請求項28】 前記神経伝達物質がドーパミンである
請求項27に記載の誘導剤。 - 【請求項29】 有効成分として、請求項10〜17の
いずれかのペプチドまたは請求項21の核酸を含有する
神経伝達物質放出抑制剤。 - 【請求項30】 前記神経伝達物質がドーパミンである
請求項29に記載の抑制剤。 - 【請求項31】 アポトーシス関連神経疾患の診断、予
防または治療が目的である請求項29に記載の抑制剤。 - 【請求項32】 前記アポトーシス関連神経疾患が脳卒
中、アルツハイマー病またはパーキンソン病である請求
項31に記載の抑制剤。
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