JP2000501744A

JP2000501744A - モルホゲン類似体およびその製法

Info

Publication number: JP2000501744A
Application number: JP9526303A
Authority: JP
Inventors: ケック，ピーター; エル．グリフィス，ダイアナ; デイカールソン，ウィリアム; シー．ルーガー，デビッド; テイ．サンパス，クーバー
Original assignee: クリエイティブバイオモレキゥルズ，インコーポレーテッド; ブランダイスユニバーシティー
Priority date: 1996-01-22
Filing date: 1997-01-22
Publication date: 2000-02-15
Also published as: AU2244997A; AU725295B2; DE69737809T2; DE69737809D1; CA2244228A1; EP0876401B1; US20020028453A1; WO1997026277A2; EP0876401A2; ATE364629T1; US6273598B1; WO1997026277A3

Abstract

(57)【要約】本明細書に開示された本発明は、モルホゲン類似体のコンピュータ援用設計のための方法および組成物を提供する。モルホゲン類似体を設計する出発点として、ヒト骨形成タンパク質−１（ｈＯＰ−１）の三次元構造を規定する原子座標の少なくとも一部を使用することにより、本発明を実行できる。さらに、本発明は当該モルホゲン類似体を作製する方法および得られた類似体がヒトＯＰ−１用の生物活性を模倣または開始するかを調べる方法を提供する。本発明はこのような方法で作製されるモルホゲン類似体群も提供する。

Description

【発明の詳細な説明】モルホゲン類似体およびその製法関連出願本出願は、１９９６年１月２２日出願の同時係属出願Ｕ．Ｓ．Ｓ．Ｎ．０８／５８９，５５２の一部継続出願であり、その開示は参照により本明細書に組み込む。発明の分野本発明は一般に組織形態形成タンパク質類似体として有用な化合物を設計し、同定し、作製するための方法および組成物に関する。より詳細には、本発明は、組織形態形成タンパク質である骨形成タンパク質−１（ＯＰ−１）の機能的疑似物質として作用する分子を設計し、同定し、作製するための構造ベースの方法および組成物に関する。発明の背景細胞分化は胚形成の間に始まり、生物体の一生を通し、成体の組織の修復または再生機構で種々の程度に持続する組織形態形成の中心的特徴である。成体組織での形態形成の程度は組織によって異なり、特に、所与の組織における細胞の回転の程度に関係する。細胞分化への剌激を司る細胞および分子レベルでの事象は集中的に研究されている分野である。医学および獣医学の分野では、細胞分化および組織形態形成を調節する因子の発見が、病的状態にあるまたは損傷を受けた哺乳類の組織および器官を修復し、再生する能力を非常に進歩させると予想されている。ヒトおよび動物の治療に特に有用な領域には、再建手術、例えば関節炎、気腫、骨粗鬆症、心筋症、硬変、変質性神経疾患、炎症性疾患および癌を含む組織変性疾患の治療、組織、器官および四肢の再生が含まれる。本出願および関連出願では、「形態形成の（ｍｏｒｐｈｏｇｅｎｅｔｉｃ）」と「形態形成の（ｍｏｒｐｈｏｇｅｎｉｃ）」は互換的に使用されている。近年、細胞分化に関与すると思われる多数の因子が単離されている。最近、当業界で「タンパク質のトランスフォーミング増殖因子−β（ＴＧＦ−β）スーパーファミリー」と呼ばれる構造的に関連するタンパク質の「スーパーファミリー」の明確なサブファミリーが真の組織モルホゲンとして同定された。真の組織形態形成タンパク質のこの明確な「サブファミリー」の構成要素は、形態形成活性のあるＣ末端ドメイン内に６個または７個の保存されたシステイン骨格を含む実質的なアミノ酸配列相同（Ｃ末端の１０２個のアミノ酸配列の少なくとも５０％が同一）を有しており、種々の器官や組織で組織特異的形態形成を誘導するｉｎｖｉｖｏ活性を共有している。このタンパク質は前駆細胞(proge nitor cell)と接触し、例えば、好適な細胞表面分子と結合し、形態形成で許容される環境で細胞を増殖、分化し易くする、または増殖、分化するように剌激することにより、前駆細胞と相互作用する。これらの形態形成タンパク質は、天然の組織で必要とされているような血管形成、結合組織形成および神経支配を含む、新しい器官特異的組織形成で最高に達する細胞および分子レベルの事象の発達カスケードを誘導できる。このタンパク質は軟骨および骨の両者並びに歯周組織、象牙質、肝臓および網膜組織を含む神経組織の形態形成を誘導することが認められている。今日までに同定された組織形態形成タンパク質には、骨誘導タンパク質として初めて同定されたタンパク質が含まれる。これらのタンパク質にはＯＰ−１（骨形成タンパク質−１、関連出願では「ＯＰ１」とも表されている）、Ｃ末端の「システイン７個」のドメインが６９％一致するそのドロソフィラ相同体６０Ａ、Ｃ末端のシステイン７個のドメインについてＯＰ−１と約６５％〜７５％一致している関連タンパク質ＯＰ−２（関連出願では「ＯＰ２」とも表されている）およびＯＰ−３、Ｃ末端のシステイン７個のドメインについてＯＰ−１と約８５％より高い一致を有するＯＰ−３、ＢＭＰ５、ＢＭＰ６およびその齧歯類相同体Ｖｇｒ−１、Ｃ末端のシステイン７個のドメインについてＯＰ−１と約５７％一致しているＢＭＰ６のツメガエル相同体Ｖｇｌが含まれる。他の骨誘導タンパク質には、ＣＢＭＰ２タンパク質（当業界ではＢＭＰ２およびＢＭＰ４とも呼ばれる）およびそれらのドロソフィラ相同体ＤＰＰが含まれる。別の組織形態形成タンパク質はＧＤＦ−１（マウス由来）である。例えば、ＰＣＴ出願書類のＵＳ９２／０１９６８およびＵＳ９２／０７３５８を参照のこと。これらのＰＣＴ出願書類の開示は参照により本明細書に組み込む。ＢＭＰ／ＯＰサブファミリーの構成要素およびＴＧＦ−βスーパーファミリーの選択された構成要素との間のアミノ酸配列の同一性（パーセントで表す）を第６図に示す。上記のように、これらの真の組織形態形成タンパク質は、Ｃ末端ドメインの配列が非常に一致していること、真の組織形態形成タンパク質が単にそれ自身で線維症（瘢痕）組織の形成を誘導するのではなく、機能性組織を形成する事象の完全なカスケードを誘導できることから、当業界で、ＴＧＦ−βスーパーファミリーのその他の構成要素と異なるタンパク質の明確なサブファミリーとして認識されている。具体的には、形態形成タンパク質のファミリーの構成要素は、形態形成に許容される環境で、細胞増殖および細胞分化を剌激し、分化した細胞の増殖および維持を支持することができる。形態形成タンパク質は明らかに、内分泌、パラクリン、自己分泌因子としても作用できる。形態形成タンパク質は大量の種の「クロストーク」が可能である。すなわち、これらのタンパク質の異種（外来種）相同体は機能的活性について互いに代用できる。例えば、２つのドロソフィラタンパク質であるｄｐｐと６０Ａはそれぞれ、その哺乳類の相同体であるＢＭＰ２／４およびＯＰ−１の代用となりえ、標準のラット骨形成アッセイで非骨部位での軟骨形成を誘導する。同様に、ＢＭＰ２はドロソフィラにおけるｄｐｐ^-突然変異を保護することが発見されている。しかし、これらのタンパク質は無傷の状態では組織特異的であり、各タンパク質は一般に１つまたは非常に少数の組織で発現されまたはこれらの組織に提供されるか、発達の間の特定の時期にのみ発現される。例えば、ＧＤＦ−１は主として神経組織で発現されるように思われるが、ＯＰ−２は早期（例えば８日齢の）マウスの胚で比較的高レベルで発現されるように思われる。内因的なモルホゲンは、モルホゲンが作用する細胞、その隣接細胞または遠隔組織の細胞で合成されるが、分泌されたタンパク質は作用すべき細胞まで輸送される。特に強力な組織形態形成タンパク質はＯＰ−１である。このタンパク質およびその異種における相同体は多数の組織、主として尿生殖器官の組織並びに骨、乳腺組織および唾液腺組織、生殖組織および消化管組織で発現される。ＯＰ−１は胚形成の間に種々な組織でも発現され、ＯＰ−１が存在するのとその組織で形態形成の開始が一致する。細胞膜を横切る形態形成タンパク質のシグナル形質導入は１つ以上の細胞表面受容体との特異的結合による相互作用の結果生じるものと思われる。ＴＧＦ−β タンパク質スーパーファミリーの種々の構成要素の細胞表面受容体への結合に関する最近の研究は、リガンドが、Ｉ型受容体およびＩＩ型受容体と呼ばれる２つの異なる受容体と相互作用してヘテロ複合体を形成することにより、その活性の媒介となる。細胞表面に結合したβ−グルカンも結合相互作用を増強しうる。Ｉ型受容体およびＩＩ型受容体の両者とも、セリン／スレオニンキナーゼであり、同様の構造、すなわち、本質的にキナーゼからなる細胞内ドメイン、膜を１回スパンするのに十分に短く、伸びた、疎水性配列および保持されたシステイン濃度の高いことを特徴とする細胞外ドメインを有する。形態形成タンパク質はジスルフィド結合した二量体であり、疎水性のシグナル配列と、アミノ酸数百個の長い、比較的保存されていないＮ末端前領域、切断部位、およびファミリーの構成要素により異なるＮ末端領域とにより保存されているＣ末端領域を含む成熟ドメインを含む大きな前駆体ポリペプチド鎖として発現される。Ｃ末端領域はすべての既知のモルホゲン・ファミリーの構成要素の処理済成熟タンパク質中に存在するが、約１００個のアミノ酸を含有し、保存された６個または７個のシステイン骨格を有する特徴的モチーフを有する。今日までに単離された個々の形態形成タンパク質は、単量体サブユニットが非共有的な相互作用または１つ以上のジスルフィド結合で結びつけられている二量体構造を有している。形態形成タンパク質は二量体タンパク質として活性であるが、個々の単量体サブユニットでは不活性である。形態形成タンパク質はその生物活性から、例えば、骨折などの骨の欠損の再生的治癒を誘導する治療用組成物および病的状態の骨組織例えば骨減少した骨組織で健康な代謝特性を保存または回復するための治療用組成物を含む、損傷を受けたまたは病的状態の哺乳類の組織を治療するためのモルホゲンをベースとする治療物質の開発に向けて非常に努力がなされてきた。哺乳類、特にヒトにおける非軟骨形成組織に使用するためのモルホゲンをベースとする治療物質の開発および特性化に関する業績の完全な記述は、例えば、ＥＰ０５７５，５５５、ＷＯ９３／０４６９２、ＷＯ９３／０５７５１、ＷＯ９４／０６３９９、ＷＯ９４／０３２００、ＷＯ９４／０６４４９、ＷＯ９４／１０２０３およびＷＯ９４／０６４２０に記載されており、その開示は参照により本明細書に組み込む。天然の単離された形態形成タンパク質または組換えにより作製された形態形成タンパク質を哺乳類に投与する際にある種の問題が起こる可能性がある。これらの問題には、例えば、生物学的に活性なモルホゲン二量体が不活性な単量体サブユニットに分離されることによる形態形成活性の消失および／または生理的条件下で溶解度が低いことに起因する操作上の問題が含まれる。従って、形態形成タンパク質、例えばＯＰ−１の生理作用を模倣または増強するモルホゲン類似体を同定する必要性が残っている。この類似体は修飾された形態形成的に活性なｈＯＰ−１タンパク質二量体またはその断片またはその切断類似体、ペプチドまたは有機小分子であってよい。この類似体は、天然のｈＯＰ− １に比べ、生理的条件下でより安定および／またはより可溶性にすることにより、または、例えば組織標的特異性を増強し、生体内分布を高め、または体内のクリアランス速度を低下させることにより、治療における有用性を高めることが好ましい。本発明の目的は、成熟ｈＯＰ−１の三次元構造の原子座標を規定するデータベースを提供することであり、このデータベースはその全体または一部をｈＯＰ− １の機能性類似体を設計および／または同定するコンピュータ・システムの一部として使用できる。本発明の別の目的は、ｈＯＰ−１と比較して生理的条件下での溶解性および／または安定性が高く、哺乳類でｈＯＰ−１の生物活性を模倣または増強できる分子を設計および／または同定する手段を提供することである。本発明の別の目的は、本発明方法で設計および／または同定および製造される類似体を含み、例えば骨減少症を特徴とする疾患などの代謝性骨疾患に罹患した哺乳類など、その類似体を必要とする哺乳類に投与するのに好適な治療組成物を提供することである。本発明の別の目的は、例えば、受容体結合についてｈＯＰ− １と競合できるが、受容体が媒介する下流の生物作用を誘導することはできないｈＯＰ−１拮抗物質を設計および／または同定および製造するのに有用な方法および組成物を提供することである。本発明のこれらその他の目的および特徴は以下の説明、図面および請求の範囲から明らかになろう。発明の概要本発明は部分的に、成熟した二量体のヒト骨形成タンパク質−１（ｈＯＰ−１）の三次元構造のＸ線結晶学的決定に基づく。ｈＯＰ−１の三次元構造は２．３ Åまで分解されている。本明細書では、ｈＯＰ−１について２組の原子Ｘ線結晶学的座標を示しており、１組は２．８Åの分解度まで分解したｈＯＰ−１構造を規定し、もう１組は２．３Åの分解度まで分解したものである。この開示により、当業者に、ＯＰ−１のタンパク質またはペプチド類似体を同定または設計し、またはＯＰ−１の機能を模倣する有機小分子を同定または設計するために、従来のコンピュータ援用設計（ＣＡＤ）法に使用する原子座標が提供される。１つの態様では、本発明はメモリおよびメモリと電気的に接続されているプロセッサを含むコンピュータ・システムを提供する。メモリは、それが合わさってｈＯＰ−１の三次元構造の少なくとも一部を規定する原子Ｘ線結晶学的座標を有する。好ましい実施形態では、原子座標は第１５図または第１６図に示す原子座標の一部または全部で規定される。メモリと電気的に接続されているプロセッサは、ヒトＯＰ−１の少なくとも一部を表わす三次元形状を有する分子モデルを作成する工程を含む。好ましい実施形態では、プロセッサは三次元形状の他に、ヒトＯＰ−１の少なくとも一部が溶媒の接触できる表面を表す分子モデルを作成できる。本明細書で使用する「コンピュータ・システム」という用語は、メモリと、端末などの入力／出力装置の少なくとも１つの両者と電気的に接続されているプロセッサを含む任意の汎用または特別な目的のシステムを意味するものと理解される。このようなシステムには、パーソナル・コンピュータ、ワークステーションまたはメインフレームを含むことができるが、これらに限定されるものではない。プロセッサは汎用のプロセッサもしくはマイクロプロセッサまたはＲＡＭメモリにあるプログラムを実行する特別なプロセッサであってよい。プログラムはディスクまたは予めプログラムしたＲＯＭメモリなどの記憶装置からＲＡＭに入れることができる。１つの実施形態のＲＡＭメモリはデータの記憶とプログラムの実行の両者に使用することができる。コンピュータ・システムという用語は、プロセッサとメモリが別の物理的実体中にあるシステムを含むが、ネットワークにより電気的に接続されているシステムも包含する。本発明では、プロセッサはモデリング・プログラムを実行するが、このプログラムは、ｈＯＰ−１のＸ線結晶学的座標を示すデータにアクセスし、それによって、分子の三次元モデルを構築する。さらに、このプロセッサは別のプログラム、溶媒接触可能表面プログラムも実行でき、このプログラムはｈＯＰ−１の三次元モデルを使用して、ｈＯＰ−１分子の少なくとも一部の溶媒接触可能表面を構築し、また、適宜、原子の溶媒接触可能面積を計算する。１つの実施形態では、溶媒接触可能表面プログラムおよびモデリング・プログラムは同じプログラムである。別の実施形態では、モデリング・プログラムと溶媒接触可能表面プログラムは別のプログラムである。このような実施形態では、モデリング・プログラムはモデリング・プログラムと溶媒接触可能表面プログラムの両者にアクセスできるメモリの領域内にｈＯＰ−１の三次元モデルを格納することができ、また、三次元モデルをディスク、ＣＤＲＯＭまたは磁気テープなどの外部記憶に書き込み、後から溶媒接触可能表面プログラムでアクセスすることもできる。メモリはその中に成熟した生物的活性のあるヒトＯＰ−１を規定するＸ線結晶学的座標全体を格納していてもよく、または、例えば、フィンガー１(finger 1) 領域、フィンガー２領域、ヒール(heel)領域の１つ以上を含むこのような座標のサブセットを含んでいてもよい。フィンガーおよびヒール領域に対応するタンパク質構造を以下に詳述する。別の好ましい実施形態では、プロセッサは、モルホゲン類似体またはモルホゲン拮抗物質、例えば三次元形状および、好ましくはさらにヒトＯＰ−１の少なくとも一部に対応する溶媒接触可能表面を有し、ＯＰ−１の特異活性を模倣できるタンパク質、ペプチドまたは有機小分子を同定することもできる。本明細書で使用される、ＯＰ−１（または関連モルホゲン）またはＯＰ−１の領域について、「三次元構造の少なくとも一部」または「少なくとも一部」という句は、モルホゲンの三次元表面構造の一部、または電荷分布および親水性／疎水性を含み、ＯＰ−１単量体または二量体の連続したアミノ酸残基少なくとも３個、より好ましくは少なくとも３個から１０個、最も好ましくは少なくとも１０個から形成されたモルホゲンの領域を意味するものと理解される。このような部分を形成する連続した残基はＯＰ−１分子の一次構造の連続した部分を形成する残基、ＯＰ−１単量体の三次元表面の連続した部分を形成する残基、ＯＰ−１二量体の三次元表面の連続した部分を形成する残基、またはこれらを組み合わせたものであってよい。従って、ＯＰ−１の三次元構造の一部を形成する残基はモルホゲンの一次配列中で連続している必要はないが、むしろ、モルホゲン単量体または二量体の表面の連続部分を形成する必要がある。特に、このような残基は１つのモルホゲン単量体の一次構造中で非連続的であってもよく、または二量体の形のモルホゲンの別の単量体由来の残基を含んでいてもよい。本明細書で使用されるモルホゲンの「三次元構造の一部」またはモルホゲンの「一部」を形成する残基は、表面のこの部分を形成する各原子または官能基が、表面のこの部分を形成する最も近接する各原子または官能基と、わずか４０Å、好ましくはわずか２０Å、より好ましくはわずか５〜１０Å、最も好ましくはわずか１〜５Åしか離れていない連続した三次元表面を形成する。本明細書で使用される「Ｘ線結晶学的座標」という用語は、結晶型のｈＯＰ− １分子の原子によりＸ線の単色ビームの回折により生じる反射の空間的分布に関係する一連の数学的座標（「Ｘ」、「Ｙ」および「Ｚ」の値で示される）を意味する。回折データを使用して結晶の反復単位の電子密度マップを作製し、得られた電子密度マップを使用して、結晶の単位セル内の各原子の位置を規定する。当業者には明らかなように、本明細書に示すｈＯＰ−１構造はその配向に依存しておらず、第１５図および第１６図に示した原子座標は単にｈＯＰ−１構造の１つの可能な配向を示している。従って、第１５図および第１６図に示した原子座標は、ｈＯＰ−１構造の原子の相対的な位置および特徴を変化させることなく、数学的に回転させ、翻訳し、評価し、またはこれらを組み合わせてもよいことは明らかである。このような数学的操作は本発明に含まれるものとする。さらに、本明細書に規定のＸ線原子座標には位置にいくらかの不確実性があること（例えば、Åで表される、各原子の位置についての温度による不確実性を示す第１６図のカラム「δ」参照のこと）は当業者には明らかである。従って、本発明では、ｈＯＰ−１の少なくとも一部と同じアミノ酸配列を有する予め選択したタンパク質またはペプチドは、その予め選択したタンパク質またはペプチドの中心Ｃα原子を規定する１組の原子座標を、好ましくは約１．５Å未満、最も好ましくは約０．７５Å未満の二乗平均平方根偏差まで、（図１６に示す）ｈＯＰ−１についての対応のＣα原子の上に重ねることができる場合、対応のｈＯＰ−１の部分と同じ構造を有するものと考えられる。本明細書で使用する「モルホゲン類似体」という用語は、ＯＰ−１の受容体結合活性をを模倣し、及び／または形態形成タンパク質の受容体を介する下流の生物学的作用特性を誘導できるすべての分子を意味するものと理解される。アルカリ性ホスファターゼ活性の誘導が特徴的な生物学的作用である。この類似体は、タンパク質、ペプチドまたは非ペプチジル・ベースの有機分子であってよい。従って、モルホゲン類似体という用語は化学的または生化学的性質に関係なく、このようなＯＰ−１様活性を有するすべての物質を包含する。本発明のモルホゲン類似体は生体系により、または化学的または生化学的合成手法を介して製造される簡単な物質または複雑な物質であってよい。本発明のモルホゲン類似体は大きな分子、例えば、組換えＤＮＡ法で生成した修飾ｈＯＰ−１二量体または小さな分子、例えば合理的な薬剤設計の原理に基づいてｄｅｎｏｖｏで作製された有機分子であってよい。本発明のモルホゲン類似体は、ｈＯＰ− １のムテイン（突然変異タンパク質）である物質、ｈＯＰ−１の溶媒露出表面エピトープに構造が類似しており、ＯＰ−１特異的受容体に結合する物質、ＯＰ− １反応性細胞の表面にあるＯＰ−１特異的受容体を剌激する物質であってよい。本明細書で使用する「ＯＰ−１またはＯＰ−１様生物活性」という用語は、ＯＰ−１が誘導または増強することが知られているすべての生物活性を意味するものと理解される。ＯＰ−１およびＯＰ−１様生物活性には、前駆細胞の増殖の剌激、前駆細胞の分化の剌激、分化した細胞の増殖の剌激、および分化した細胞の増殖および維持の支持が含まれるが、これらに限定されるのではない。「前駆細胞」という用語には、ゲノムの範囲および形態形成が誘導される許容される環境の組織特異性に依存して、１つ以上の特異的な型の分化細胞に分化できる、好ましくは哺乳起源の、中立（ｕｎｃｏｍｍｉｔｔｅｄ）細胞を含む。具体的には、骨、軟骨、神経および肝臓組織については、ＯＰ−１で剌激された形態形成カスケードは、選択された局所の環境に適した新しいまた再生の分化した組織の形成の際に最高に達する。従って、ＯＰ−１を介した形態形成は、瘢痕組織（例えば線維性の結合組織）が形成され、分化した機能性組織の病変またはその他の損傷を充填する単純な修復治癒過程とは有意に異なる。本明細書で使用する「モルホゲン拮抗物質」は、ＯＰ−１の受容体結合活性を模倣できる分子であるが、これは受容体を介する下流の作用を誘導することはできない。本発明の別の好ましい実施形態では、プロセッサは、座標で規定され、化学的修飾またはアミノ酸置換のいずれかによる特定部位の修飾によりヒトＯＰ−１の溶解性および／または安定性を高めるアミノ酸を同定することができる。関連した態様では、本発明はＯＰ−１またはＯＰ−１様生物活性を模倣または増強するモルホゲン類似体を作製する方法を提供する。この方法は、（ａ）ヒトＯＰ−１の少なくとも一部を表す三次元形状を規定する分子モデルを提供するステップと、（ｂ）ヒトＯＰ−１の少なくとも一部を表す三次元形状に対応する三次元形状を有する化合物を同定するステップと、（ｃ）ステップ（ｂ）で同定された化合物を製造するステップとを含む。この方法には、得られた化合物がＯＰ −１の生物活性を模倣または作動するかを決定するための生物系でこの化合物をテストする別のステップを含むことができる。上記の方法では、ステップ（ａ）および／またはステップ（ｂ）は市販のソフトウェア・パッケージを使用する電子プロセッサを使用して実行できるものと企図される。候補化合物がＯＰ−１活性を調節するかを決定する際には、当業界でよく知られており、十分証明された従来のＣＡＤおよび／または合理的な薬剤設計法を使用することにより候補化合物を繰り返し改良することができるものと企図される。さらに、これまでに同定された、得られた化合物は哺乳類に投与する目的で市販できる量で製造することができるものと企図される。別の実施形態では、第１５図および第１６図に示した原子座標を使用してモルホゲン類似体を生成することができる。第１５図および第１６図に示す原子座標を詳しく見ると、当業者には、ｈＯＰ−１の三次元構造内にもともとに位置する特定のアミノ酸配列の三次元構造を見ることができる。本明細書下記に示すように、好ましいアミノ酸配列はＨ１、Ｈ−ｎ２、Ｈ−ｃ２、Ｆ１−２、Ｆ２−２およびＦ２−３からなる群から選択される１つ以上のペプチドで規定される。このペプチドはより有効なモルホゲン類似体の製造に使用できる鋳型を提供する。好ましい実施形態では、モルホゲン類似体のアミノ酸残基のＣα原子は、第１５図および第１６図の各原子座標で規定される対応するＣα原子の６Å以内、好ましくは３Å以内、最も好ましくは２Å以内に位置する。別の好ましい実施形態では、モルホゲン類似体のアミノ酸残基のＣα原子は、ペプチド配列Ｈ１、Ｈ−ｎ２、Ｈ−ｃ２，Ｆ１−２、Ｆ２−２およびＦ２−３の少なくとも３個のアミノ酸の対応するＣα原子の６Å以内、好ましくは３Å以内、最も好ましくは２Å以内に位置するが、ここでペプチド内の個々のＣα原子は第１５図および第１６図に示す各原子座標により規定される。別の実施形態では、本発明は元の二量体ｈＯＰ−１に比べ、水性バッファ中での溶解度および／または安定性が高いモルホゲン類似体を提供する。さらに別の実施形態では、本発明は、通常は抗体で、またはＯＰ−１を体外に除去する細胞性のシカベンジャタンパク質に認識されるＯＰ−１のエピトープまたは領域を修飾により除去した修飾型の二量体ｈＯＰ−１であるモルホゲン類似体を提供する。別の実施形態では、本発明は、受容体結合特性を変化させた類似体を生成する手段を提供する。例えば、推定される受容体結合部位に属する構造、電荷分布および溶媒接触可能表面に関する情報が提供されると、受容体結合特異性および結合活性を変化または修飾することができる。１つの実施態様では、例えばＷＯ９４／０６４４９またはＷＯ９３／０５７５１に開示されたその他の公知のモルホゲンの対応のアミノ酸を参考に、この領域のアミノ酸を置換する。ヒトＯＰ−１の三次元構造を決定した後、当業者は、ＯＰ−１の構造を規定する原子座標が得られる、従来のＣＡＤおよび／または合理的な薬剤設計法を使用して、タンパク質もしくはペプチド類似体またはその他の有機小分子を同定または設計することができ、これらは従来の化学および方法で作製した後、ｉｎｖｉｔｒｏまたはｉｎｖｉｖｏでテストして、ヒトＯＰ−１の生物活性を模倣または増強するかについて評価することができる。本発明の前記その他の目的、特徴および利点は以下の本発明の好ましい実施形態の詳細な説明からさらに明らかになるであろう。図面の簡単な説明本特許の出願書類には少なくとも１枚のカラーの図面が含まれる。本特許の写しはカラー図面を含め、請求および必要な料金の支払いにより、特許・商標局から提供されよう。本発明の目的および特徴は下記の図面の説明を参照することによりさらに理解できるが、図中、同様に参照される特徴は対応の図面に共通の特徴を表す。第１Ａ図は、ｈＯＰ−１の単量体サブユニットの構造を説明するのに有用な単純化した線図である。説明については、上記の発明の概要を参照されたい。第１Ｂ図、第１Ｃ図および第１Ｄ図は、ｈＯＰ−１領域、フィンガ１領域、ヒール領域、フィンガ２領域のそれぞれのペプチド骨格の単眼視野リボン・トレースである。第１Ｅ図および第１Ｆ図はそれぞれ、左手のモチーフで表した、単量体および二量体の形のｈＯＰ−１の概略図である。第２図は、ｈＯＰ−１の単量体サブユニットの概略図である。３個のジスルフィド結合を含むｈＯＰ−１のシステイン結合部分がｈＯＰ−１単量体サブユニットの核を構成している。残基Ｃｙｓ６７−Ｃｙｓ１３６、Ｃｙｓ７１−Ｃｙｓ１３８を結合するジスルフィド結合は８残基環を形成し、残基Ｃｙｓ３８−Ｃｙｓ１０４を結合する三番目のジスルフィド結合はその環を通る。結合部分からの逆平行βシートの４本の鎖が２本のフィンガ状突起を形成する。結合部分の反対の端部に位置するα螺旋は２本のフィンガの軸に垂直で、ヒールを形成する。単量体サブユニットのＮ末端はまだ解明されていない。βシートは矢印で表わし、β １からβ８と表示する。α螺旋は管として表し、α１と表示している。システイン結合部分を構成するサブユニット内のジスルフィド結合は実線で示す。この図の最初の残基は、Ｇｌｎ３６（「Ｎ₃₆」から出発し、フィンガ１領域の二次構造を作るアミノ酸残基はＬｙｓ３９−Ｈｉｓ４１（β１）、Ｔｙｒ４４−Ｓｅｒ４６（β２）、Ｇｌｕ６０−Ａｌａ６３（β３）、Ｔｙｒ６５−Ｇｌｕ７０（β４）を含み、フィンガ２領域の二次構造を作るアミノ酸残基は、Ｃｙｓ１０３−Ａｓｎ１１０（β５）、Ｉｌｅ１１２−Ａｓｐ１１８（β６）、Ａｓｎ１２２−Ｔｙｒ１２８（β７）、Ｖａｌ１３２−Ｈｉｓ１３９（β８）を含んでおり、ヒール領域の二次構造を作るアミノ酸残基はＴｈｒ８２−Ｉｌｅ９４（α１）を含んでいる。第３図は、ｈＯＰ−１およびＴＧＦ−β２のフィンガ１、ヒールおよびフィンガ２領域の構造をベースとする配列である。ｈＯＰ−１およびＴＧＦ−β２の二量体の鎖間の接触を構成するヒール領域のアミノ酸残基は黒地に白で示した。他の鎖と接触するフィンガ１およびフィンガ２の領域のアミノ酸残基は灰色地に黒で示した。ｈＯＰ−１およびＴＧＦ−β２では、同じ残基の位置にあるアミノ酸が鎖間の接触を構成する。第４Ａ図および第４Ｂ図は、ｈＯＰ−１の三次元形状を表す立体的なペプチド骨格のリボン・トレースであり、（Ａ）は「上部」から（サブユニットの間の対称の２倍軸に沿って下降し）、螺旋状のヒール領域の軸は一般に紙に垂直で、各フィンガ１およびフィンガ２領域の軸は一般に垂直であり、（Ｂ）は「側部」からの図であり、サブユニット間の２倍軸は紙に平行であり、ヒールの軸は一般に水平で、フィンガの軸は一般に垂直である。ｈＯＰ−１単量体は約４３９４Å² の接触できる非極性表面積を有し、一方、二量体の接触できる非極性表面積は約６８３１Å²、その結果、単量体１個について、二量体化により約９７９Å²面積が隠れることになる。読者には、例えば、標準的な立体ビューア装置を使用してウォールアイ・ステレオの立体α炭素トレースの図を見て、モルホゲン類似体の設計におけるアミノ酸配列の空間での関係をより容易に可視化することが薦められる。第５Ａ図は、２．８Åまで分解された２つのｈＯＰ−１単量体サブユニットを含むｈＯＰ−１二量体を示す骨格のリボン・トレースである。１つの単量体サブユニットは緑で示し、他方のサブユニットは金色で示す。溶媒が接触できる側鎖を有する目的の受容体結合ドメイン内にあるアミノ酸残基を原子球として示す。１つのＯＰ−１単量体サブユニットのフィンガ１およびフィンガ２領域の先端および他方のＯＰ−１単量体サブユニットのヒールのＣ末端のループが受容体結合ドメインを構成すると考えられている。可変アミノ酸配列の位置にあるアミノ酸を白で示し、より保存された位置にあるアミノ酸を赤で示す。第５Ｂ図および第５Ｃ図は、静電電位に基づいて着色したＯＰ−１およびＴＧＦ−β２二量体の各溶媒接触可能表面を示す図である。静電電位が−３ｋＴ以下の表面領域は赤で示し、＋３ｋＴ以上の表面領域は青で示す。中性領域は第５Ａ図に示す骨格リボンに対応して緑と金色で示す。第６図は、ＴＧＦ−βスーパーファミリについて同一性のマトリックスを示す表である。マトリックスには、ＯＰ−１に対する３６％を超える同一のアミノ酸配列を有するＴＧＦ−βスーパーファミリの構成要素を含んでいる。マトリックスでは、ＴＧＦ−βスーパーファミリの構成要素をＯＰ−１に対するアミノ酸の同一性が低くなる順番に並べている。ＴＧＦ−β２はＯＰ−１に対して３６％同一のアミノ酸配列を有しており、マトリックスの最下段に示している。箱内には、ファミリの他の構成要素の大部分と５０％以上の同一性を有する配列のファミリを示す。７５％以上同一の配列は灰色で示す。骨を形成するために示した組換えにより発現させたＯＰ／ＢＭＰファミリの構成要素は左の余白に「＋」で示す。左の余白では、三次元構造が決定されているＴＧＦ−βスーパーファミリの構成要素を黒地に白で示す。下記のものを除き、配列はＫｉｎｇｓｌｅｙ（Kingsley（1994年）Genes and Development 8: 133-146）に参照されている：ＵＮＩＶＩＮ（Stenzel 等（1994年）Develop．Biol．166:149-158）、ＳＣＲＥＷ（Arora 等（1994年）Genes and Dev．8: 2588-2601)、ＢＭＰ−９（ Wozney等（1993年）PCT/W0 93/00432、配列番号９）、ＢＭＰ−１０（Celeste 等（1994年）PCT/W0 94/26893、配列番号１）、ＧＤＦ−５（Storm 等（1994年）Nature 368: 639-643）（ＣＤＭＰ−１とも呼ばれる（Chang 等（1994年）J． Biol．Chem．269: 28227-28234 ）、ＧＤＦ−６（Storm 等（1994年）Nature 36 8: 639-643）、ＧＤＦ−７（Storm 等（1994年）Nature 368: 639-643 ）、ＣＤＭＰ−２（Chang 等（1994年）J．Biol．Chem．269: 28227-28234）、ＯＰ−３（¹zkaynak等（1994年）PCT/WO 94/10203、配列番号１）、インヒビンβｃ（H⁶t ten等（1995年）Bioch．Biophs．Res．Comm．206: 608-613）およびＧＤＦ−１０（Cunningham等（1995年）Growth Factors 12:99-109）。上記引用文献の開示は参照して本明細書に含む。マトリックス中のいくつかの配列には別の名称、ＯＰ−１（ＢＭＰ−７）、ＢＭＰ−２（ＢＭＰ−２ａ）、ＢＭＰ−４（ＢＭＰ−２ｂ）、ＢＭＰ−６（Ｖｇｒ１）、ＯＰ−２（ＢＭＰ−８）、６０Ａ（Ｖｇｒ−Ｄ）、ＢＭＰ−３（オステオゲニン）、ＧＤＦ−５（ＣＤＭＰ−１、ＭＰ−５２）、ＧＤＦ−６（ＣＤＭＰ−２、ＢＭＰ −１３）およびＧＤＦ−７（ＣＤＭＰ−３、ＢＭＰ−１２）がある。第７図は、２．８Åの分解構造により、共に二量体ｈＯＰ−１の溶媒接触可能表面を規定するアミノ酸の概要である。第７Ａ図、第７Ｂ図および第７Ｃ図はそれぞれ、ヒトＯＰ−１のフィンガ１領域、ヒール領域、フィンガ２領域を規定するアミノ酸配列を示す。側鎖の４０％以上が溶媒に露出されているアミノ酸残基を箱内に示すが、ＴＧＦ−βスーパーファミリのＢＭＰ／ＯＰファミリ内で非常に変化する溶媒接触可能なアミノ酸残基は陰影付きの箱内に示す。第８図は、２．８Åの構造に基づく表であり、ｈＯＰ−１単量体サブユニットおよびｈＯＰ−１二量体中のアミノ酸側鎖の表面接触可能な部分の割合をまとめたものである。推定されるエピトープを構成すると考えられるアミノ酸残基には「エピトープ」と示し、表面修飾可能なアミノ酸の候補となりうるアミノ酸残基にはアスタリスクを付けた。さらに、溶解性を高くするための好ましい候補である表面修飾可能なアミノ酸にもアスタリスクを付けた。第９図は、２．８Åの構造に基づく表であり、隆起部を規定すると考えられるアミノ酸残基をまとめたものである。隆起部の受容体結合ドメインを構成すると考えられるアミノ酸残基にはアスタリスクを付けた。第１０図は、本発明の実行に使用できるコンピュータ・システムを概略的に示している。第１１Ａ図および第１１Ｂ図は、２．８Åの構造を参照して作成した表であり、ｈＯＰ−１二量体に追加の鎖間（１１Ａ）または鎖内（１１Ｂ）ジスルフィド結合を導入する部位として有用であると考えられているアミノ酸対をまとめたものである。第１２図は成熟ヒトＯＰ−１のアミノ酸配列並びにヒトＯＰ−１のフィンガ１領域、フィンガ２領域、ヒール領域を規定するペプチドのアミノ酸配列を示すアミノ酸配列表である。第１３Ａ図から第１３Ｄ図は、可溶性ＯＰ−１の存在下または非存在下で培養したＲＯＳ細胞のアルカリ性ホスファターゼ活性に対するフィンガ２およびヒールペプチドの作用を示す棒グラフである。第１３Ａ図、第１３Ｂ図、第１３Ｃ図および第１３Ｄ図はそれぞれ、可溶性ＯＰ−１の存在下（陰影付きの棒部分）または非存在下（陰影なしの棒部分）で培養したＲＯＳ細胞のアルカリ性ホスファターゼ活性に対するペプチドＦ２−２、Ｆ２−３、Ｈｎ−２およびＨｎ−３の作用を示している。第１４Ａ図および第１４Ｂ図は、フィンガ１、フィンガ２およびヒールペプチドによるＲＯＳ細胞膜からの放射性標識した可溶性ＯＰ−１の置換を示すグラフである。第１４Ａ図は、非標識可溶性ＯＰ−１（白丸および白三角）、フィンガ２ペプチドＦ２−２（黒丸）およびフィンガ２ペプチドＦ２−３（黒三角）によるＲＯＳ細胞膜からの放射性標識ＯＰ−１の置換を示している。第１４Ｂ図は、非標識可溶性ＯＰ−１（白三角）、フィンガ１ペプチドＦ１−２（黒箱）、ヒールペプチドＨ−ｎ２（白ダイヤ型）およびヒールペプチドＨ−ｃ２（白丸）によるＲＯＳ細胞膜からの放射性標識ＯＰ−１の置換を示している。第１５図は、２．８Åに分解したｈＯＰ−１の原子座標をまとめた表である。第１６図は、２．３Åに分解したｈＯＰ−１の原子座標をまとめた表である。図面に関する詳細は、ｈＯＰ−１の三次元構造、モルホゲン類似体の同定法、このようなモルホゲン類似体の作製、試験および使用法の詳細を開示する以下の説明中に開示されている。好ましい実施形態の詳細な説明Ｉ．緒言下記に示すように、現在、成熟ｈＯＰ−１の三次元結晶構造を２．３Åまで分解されている。ｈＯＰ−１の２組の原子座標を開示しており、１組の座標（第１５図参照）は２．８Åまで分解したｈＯＰ−１の構造を示し、もう一方の座標（第１６図参照）は２．３Åまで分解したｈＯＰ−１の構造を示す。従って、この開示から、生物活性を付与するに十分なヒトＯＰ−１の少なくともＣ末端の１０４個のアミノ酸の三次元空間における相対的な位置を規定する原子座標が提供される。この開示はまた、ｈＯＰ−１の構造の特徴の分析も提供する。当業者は形態形成タンパク質類似体、特にＯＰ−１類似体を作製するデータベースにこれらの座標の一部または全部を使用することができる。具体的には、当業者はデータベースの一部または全部を選択して、ｈＯＰ−１の三次元構造の一部または全部の鋳型を作製することができ、この鋳型を使用して、アミノ酸をベースとするまたはアミノ酸をベースとしない有機成分で全体または一部が構成されている所望の類似体またはその変形例を作製することができる。下記に、ｈＯＰ−１の三次元結晶構造を詳細に示すと共に、当該モルホゲン類似体また構造的な変形例を設計するためのデータベース中の座標の使用法を詳細に示す。例示のための鋳型としてのアミノ酸配列を、ＯＰ−１原子座標データベースの１つを使用してＯＰ−１類似体を設計、同定および作製するための例として示す。有用な類似体として本明細書で具体的に考えられるものには、タンパク質の受容体結合領域に類似した小さなアミノ酸分子、安定性または溶解性を高めた類似体、体内からの除去率を低減した類似体または標的組織特異性を高めた類似体が含まれる。読者はこれらの例が単に例示のためのものであることを理解されたい。座標、三次元構造、データベースにおける座標の使用に関する開示が与えられ、また当業界の現在のレベルから、本明細書には具体的に記載していないその他の類似体もこの開示から企図され、可能である。特に、本明細書の開示およびその他の非常に関係するモルホゲンについての公知のアミノ酸配列が与えられると、本発明の方法を使用して、例えば、ＢＭＰ２、ＢＭＰ４、ＯＰ２、ＢＭＰ５およびＢＭＰ６のその他のモルホゲン類似体を生成することができる。II ．ｈＯＰ−１の構造決定Ａ．２．８Å構造の決定成熟ｈＯＰ−１の結晶は、同量の１０ｍｇ／ｍｌの精製したタンパク質（¹zka ynak等（1990年）EMBO J．9: 2085-20893および Sampath等（1992年）J．Biol． Chem．267:20352-20362）と５０ｍＭ酢酸ナトリウムバッファ（ｐＨ５．０）中の８％飽和硫酸アンモニウム溶液を混合して成長させた。この結晶は空間グループＰ３₂２１の対称であり、単位セルの大きさはａ＝ｂ＝９９．４６Å、ｃ＝４２．０９Åである。１つの結晶を使用して、４℃で２．８Åまで分解した完全な生データを収集した。２組の重原子派生データを４℃で収集したが、１つは０．３ｍＭの硝酸ウラニルに７日間浸漬した結晶から得たもので、もう一方は０．５ｍＭ四塩化金（ＩＩＩ）ナトリウムに８時間浸漬した結晶から得たものである（Griffith等（1994 年）、上記）。生データおよび派生データをＲ−ＡＸＩＳ−ＩＩＣソフトウェア・セット（Hi gashi（1990年）Ａ Program for Indexing and Processing R-AXIS IIC Imaging Plate Data 、 Rigaku Corp．）で積分および換算し、ＣＣＰ４プログラムＡＮＳＣ（Collaborative Computation Project（1994年）Acta Cryst．D50:760-763 ）を使用して概算した。差異パターソン・マップのハーカー部分を調べたところ、単一のウラニル部位が明らかとなる。単一の金部位の位置は位相部位としてウラニル部位を使用するクロス・フーリエ手法により決定した。重原子ｘ、ｙ、ｚパラメータおよび占有をプログラムＴＥＮＥＹＣＫ（Ten-Eyck等（1976年）J ．Mol．Biol．100: 3-11）で改良した。これらの２つの誘導体およびその異常信号を使用して、初期位相のセットをメリット０．７２の平均値を使用して４．０ Åの分解度まで計算した。この位相を溶媒フラッタリング（Wang（1985年）Meth ．Enzymol．115: 90-112）を数サイクル実施し、ＣＣＰ４（Collaborative Comp utation Project（1994年）、上記）結晶学パッケージを使用する位相の組合せ（Reed（1986）ActaCryst．A42: 140-149）で３．５Åの解像度とした。完全に解釈できる３．５Åの分解度の電子密度マップにより、グラフィック・プログラム「Ｏ」（Jones 等（1991年）Acta Crystallogr．A47: 110-119）を使用して、ポリペプチド鎖を明確にトレースし、Ｇｌｎ３６からＨｉｓ１３９までのアミノ酸を同定できた。このモデルはプログラムＸＰＬＯＲ（Brunger 等（1987年）Science 235: 458-460）により、Ｆ_obs＞２．０σ（Ｆ_obs）である１０Åから２．８Åの分解度のすべての反射を使用して改良した。この改良には水分子は含まれなかった。理想値からの二重平均平方根（ｒｍｓ）誤差は結合長について０．０２Å、結合角度については３．２゜である。骨格のねじれ角については良好な立体化学が認められた。現在のＲ因子は２２．８％である。２．８Åの分解構造を規定する原子座標を第１５図に示す。第１５図では、「原子」とした欄には、座標を測定してある原子を示す。欄の最初の文字は元素を示す。「残基」とした欄には、座標が既に測定された原子を含むｈＯＰ−１単量体中のアミノ酸残基を示す。「鎖」とした欄には、当該の原子がｈＯＰ−１二量体の第一（Ａ）サブユニットまたは第二（Ｂ）サブユニットのどちらにあるかを示している。欄「Ｘ、Ｙ、Ｚ」は測定された原子の原子位置を規定するデカルト座標である。Ｂ．２．３Å構造の決定成熟ｈＯＰ−１の結晶を前節に記載のように生成した。液体窒素で凍結させた１個の結晶を使用し、２．３Åまで分解したデータを収集したが、これは９１％完全であった。このデータは、振動域０．５゜（重複０．１゜）、露出時間６０〜９０秒でビーム・ラインＸ１２Ｃ（National Synchrotron Light Source ）で画像プレート上で収集した。デジタル化したデータはＤＥＮＺＯおよびＳＣＡＬＥＰＡＣＫ（Molecular StructureCorporation、テキサスから入手できる）で処理し、合併し、調整した。２．８Åモデルを使用したＸ−ＰＬＯＲ剛性体調整後に計算した最初の２Ｆｏ−ＦＣマップは容易に解釈できた。モデルの一部を手動で、相互グラフィック・プログラム「Ｏ」および「Ｃｈａｉｎ」を使用して、電子密度マップに再度当てはめた。その後の調整（ＸＰＬＯＲ／ＰＲＯＦＦＴ）および手動的再構築（ＱＵＡＮＴＡ）のサイクルにより、迅速に現在のモデルに収束した。このモデルにより、１０Åから２．３Å（カットオフ１．５σ）およびＲ_free ２７％からのデータについて、従来の結晶学的Ｒ因子２３．５％が得られた。調整した構造をＰＲＯＣＨＥＣＫ（Protein Data Bank）ブルックハーベン、ニューヨークから入手できる）アルゴリズムを使用して解析し、必要に応じて補正した。理想値からの二乗平均平方根（ｒｍｓ）偏差は結合距離については０．０１５Å、角度距離については０．０３４Å、平面１−４距離については０．１４２ Åである。理想値からのｒｍｓ偏差は結合角度について１．７゜である。自由Ｒ因子を使用するルザッチ・プロット（ＥＸＰＬＯＲ）からの原子位置の誤差の上限推定値は０．２５Å〜０．３３Åである。単量体サブユニットを含む最終モデルは８２８個のタンパク質原子（すなわち、すべて非水素原子）と３３個の水分子からなる。平均温度（Ｂ）因子はタンパク質原子については３３Å²であり、溶媒原子については３７Å²である。２．３Åの分解構造を規定する原子座標を第１６図に示す。第１６図では、「原子」とした欄には、座標をすでに測定した原子を示す。この欄の最初の文字は元素を表す。「残基」とした欄には、座標を既に測定した原子を含むｈＯＰ−１単量体中のアミノ酸残基を示す。「鎖」とした欄には、ｈＯＰ−１二量体の第一（Ａ）または第二（Ｂ）単量体サブユニットのどちらに当該原子が位置するかを示す。欄「Ｘ、Ｙ、Ｚ」は測定する原子の原子位置を規定するデカルト座標である。「δ 」とした欄は各対応原子の温度因子（Ｂ）から得た座標の位置の不確実性を表す。各座標の不確実性は式δ＝√Ｂ／８π²（「Protein Crystallography」（1976 年） T.L．BlundellおよびL.N．Johnson、Academic Press、p121参照）から得たものであり、単位Åで表す。III ．ｈＯＰ−１単量体サブユニットの構造の特徴ヒトＯＰ−１はＴＧＦ−β２と同様に、第１Ａ図に示すような、Ｃ末端の７個のシステイン残基の内６個を含む独特な折り畳みパターンを有する二量体のタンパク質である。ＯＰ−１の個々のサブユニットは、ＴＧＦβ２（Daopin等（1992 年）Science 257: 369-373および Schulnegger等（1992年）Nature 358: 430-43 4 参照）と同様に、第１Ａ図に概略的に示すＣ末端の７個のシステイン残基の内６個を含む特徴的な折り畳みパターンを有している。第１Ａ図を参照すると、各サブユニットのシステイン残基の内４個が２つのジスルフィド結合を形成し、この２つのジスルフィド結合が合わさって８残基環を形成しており、別の２個のシステイン残基は環を通るジスルフィド結合を形成し、ノット様構造（システイン・ノット）を形成する。７個の保存されているシステイン残基の内の最もＮ末端側のシステインを１番として番号を付けると、２番目と６番目のシステイン残基が８残基環の一側の近くでジスルフィド結合し、３番目と７番目のシステイン残基が環の他側の近くでジスルフィド結合している。１番目と５番目の保存されたシステイン残基は環の中心部を通ってジスルフィド結合して、ノットの核を形成する。アミノ酸配列アラインメントのパターンは、この構造モチーフがＴＧＦ−βスーパーファミリの構成要素間で保存されていることを示唆している。４番目のシステインは半保存されており、存在する場合には、一般に、別のサブユニット中の対応のシステイン残基と鎖間ジスルフィド結合（ＩＣＤＢ）を形成する。各ｈＯＰ−１単量体サブユニットは３つの主要な三次構造要素とＮ末端領域を含んでいる。構造要素は、（１）ループ、（２）螺旋および（３）βシートの型の二次構造を５０％以上保持する連続したポリペプチド鎖の領域から構成されている。さらに、これらの領域では、Ｎ末端およびＣ末端の鎖は７Å以上は離れていない。１番目の保存システインと２番目の保存システインの間のアミノ酸配列（第１Ａ図）は、本明細書ではフィンガ１領域（Ｆ１）と呼ぶ逆平行βシート・フィンガを特徴とする構造領域を形成する。ヒトＯＰ−１のフィンガ１ペプチド骨格のリボン・トレースを第１Ｂ図に示す。同様に、第１Ａ図の５番目と６番目の保存システインの間の残基も、本明細書でフィンガ２領域（Ｆ２）と呼ぶ逆平行βシート・フィンガを形成する。ヒトＯＰ−１フィンガ２ペプチド骨格のリボン・トレースを第１Ｄ図に示す。βシート・フィンガは、βターンまたは幾分大きなループによりそれ自身折り畳まれているβ鎖を含み、そのため、入ってくる鎖と出てゆく鎖とが１つ以上の逆平行βシート構造を形成する１つのアミノ酸鎖である。３番目の主要な構造領域は、第１Ａ図の３番目と４番目の保存システインの間の残基を含め、本明細書でヒール領域（Ｈ）とする３回転α螺旋を特徴とする。ヒトＯＰ−１ヒールペプチド骨格のリボン・トレースを第１Ｃ図に示す。単量体構造の構成は左手（第１Ｅ図参照）のものと同様であり、ノット領域は掌（１６）と等しい位置にあり、フィンガ１領域は人差し指と中指（各々１２および１３）と等しく、α螺旋であるヒール領域はバンド（１７）のヒールと等しく、フィンガ２領域は薬指と小指（各々１４および１５）に等しい。Ｎ末端領域（本明細書に開示の２．８Å分解マップでは規定していない）は親指（１１）とほぼ等しい位置にあると予測されている。単量体の３つの主要な独立した構造要素のそれぞれのα炭素骨格を示す単眼視野(monovision)リボン・トレースを第１Ｂ図から第１Ｄ図に示す。具体的には、最初の逆平行βシート部分を含むフィンガ１領域を第１Ｂ図に示し、３回転α螺旋部分を含むヒール領域を第１Ｃ図に示し、第二および第三の逆平行βシート部分を含むフィンガ２領域を第１Ｄ図に示す。比較のために、第３図に、ｈＯＰ−１およびＴＧＦ−β２のフィンガ１、フィンガ２およびヒール領域を規定するアミノ酸配列のアラインメントを示す。第３図では、ＯＰ−１とＴＧＦ−β２のアミノ酸配列はＯＰ−１およびＴＧＦ−β２の構造における局所構造が同一の対応する領域に従って配列されている。アラインメント・ギャップはループ領域にあり、α炭素のトレースの局所コンホメーション相同性が最も低い傾向にあるループ領域にあった。ＯＰ−１およびＴＧＦ−β２の構造をベースとするアラインメントを他のＴＧＦ−βスーパーファミリの構成要素のシステイン７個のドメインの配列のための鋳型として使用した（ＴＧＦ−βスーパーファミリの他の構成要素については第６図に示す）。ＯＰ−１およびＴＧＦ−β２の構造の両者ともに、アラインメント・ギャップはループのある領域に位置する。配列の対の間の同一性の割合は、ギャップを除去し、配列の長さの幾何学的平均について正規化し、１００倍することにより、同一に並んだ配列の位置の数として計算した。第６図は、そのように並べたスーパーファミリ配列の間の、得られた対に関して存在する同一性のマトリックスである。このような原理を使用して、ｈＯＰ−１およびＴＧＦ−β２の構造を単独又は組合せて、三次元構造がまだ決定されていないＴＧＦ−βスーパーファミリに属する他のタンパク質（例えば、第６図に示したＴＧＦ−βスーパーファミリの他の構成要素）の相同性モデリングに使用できるものと企図される。このようなモデルは、当該モルホゲンの特別な候補のモルホゲン類似体の設計.に使用できるものと企図されるが、単純化するために、本明細書の以下の開示では具体的に、ｈＯＰ−１のモルホゲン類似体の設計、同定および製造について言及する。第３図も、２．８Åの分解構造の分析に基づいて、ＯＰ−１およびＴＧＦ−β ２の鎖間接触残基の比較を示している。残基は、各側鎖からの少なくとも１つの非水素原子の中心間の距離がこのファンデルワールス半径と１．１Åの合計より小さいときに、接触残基と表した。ＯＰ−１とＴＧＦ−β２との間の配列同一性が低いにも関わらず、１つの鎖のヒール領域の残基と他の鎖のフィンガ１およびフィンガ２領域の残基の間の鎖間接触はよく保存されている。ｈＯＰ−１の２．８Åの分解構造を詳細に調べると、ｈＯＰ−１のフィンガ１領域は１３残基オメガ・ループ（Ｐｈｅ４７−Ｇｌｕ６０）を含む逆平行βシートである（第２図）。第３図に示すＯＰ−１およびＴＧＦ−β２配列の構造アラインメントでは、オメガ・ループに２つのギャップがある。最初のギャップはＴＧＦ−β２のα２螺旋のＡｒｇ２６と並ぶｈＯＰ−１中の欠失を表す。この欠失が、ＴＧＦ−β２と比較すると、ＯＰ−１におけるより狭い非α螺旋ターンとなる。２番目のギャップはＯＰ−１におけるＧｌｎ５３の挿入に対応するギャップであり、その結果、Ｇｌｎ５３とＡｓｐ５４側鎖の両者が溶媒内に向くことになる。比較すると、ＴＧＦ−β２の対応の領域では、Ｌｙｓ３１のみが溶媒と接触する。オメガ・ループのコンホメーションにおけるこれらの差によっても、保存されたプロリン（Ｐｒｏ５９）がＴＧＦ−β２ではｃｉｓにあるのに対してｈＯＰ−１ではｔｒａｎｓとなる。オメガ・ループのコンホメーションは６個の非極性残基を配向しているため、これらの残基がフィンガ２との溶媒接触不能界面に関与できる。これらの６個の内４個は芳香族（Ｐｈｅ４７、Ｔｒｐ５５、Ｔｙｒ６２およびＴｙｒ６５）であり、２個は脂肪族（Ｉｌｅ５６およびＩｌｅ５７）である。すべてにおいて、オメガ・ループ骨格のコンホメーションでは、５個の極性残基（Ａｒｇ４８、Ａｓｐ４９、Ｇｌｎ５３、Ａｓｐ５４およびＧｌｕ６０）が溶媒と接触する。この領域の実効表面電荷は−２であるが、ＴＧＦ−β２では＋２である（第５図）。２．８Åの構造によると、単量体のα螺旋のみが３番目と５番目のシステイン（Ｃｙｓ７１およびＣｙｓ１０４）の間にある。この螺旋は残基Ｔｈｒ８２からＩｌｅ９４まで３回転半延びており、両親媒性であり、多くの疎水性残基を含み、これが二量体中では他の単量体のフィンガ１およびフィンガ２からの残基と接触する（第３図）。数個の親水性残基（Ｔｈｒ８２、Ｈｉｓ８４およびＧｌｎ８８）が二量体の２倍軸付近の内部溶媒ポケットの１つの壁を形成し、その他の親水性残基（Ａｓｎ８３、Ｈｉｓ９２およびＡｓｎ９５）が外部の溶媒と接触する。螺旋のＣ末端からシステイン・ノットまでのループのコンホメーションはＯＰ −１とＴＧＦ−β２で同様である。対照的に、螺旋のＮ末端にあるループはＯＰ −１で３残基長く、その結果ＴＧＦ−β２と折り畳みの型が異なる。ＯＰ−１のこのループでは、Ｎ結合糖部分がＡｓｎ８０に結合していると考えられているが、ＴＧＦ−β２には対応のグリコシル化部分は存在しない。さらに、このループはＯＰ−１では非荷電であるが、ＴＧＦ−β２ではマイナスの電荷を持つ。２．８Åの構造によると、フィンガ２はＯＰ−１の第二の逆平行βシートである（第２図）。ポリペプチド鎖は、残基Ａｓｐ１１８から残基Ａｓｎ１２２までの３：５回転の間のセグメントβ６とβ７の間で方向転換する（Sibanda 等（19 91年）Methods in Enzymol．202: 59-82）。対照的に、ＴＧＦ−β２はこのループの残基が１つ少なく、２：２回転である（Sibanda等（1991年）上記）。セグメントβ７とβ８の間のＡｒｇ１２９からＶａｌ１３２までの残基は、鎖β５のＣ末端と交差し、フィンガ２の逆平行β構造で１８０゜のねじれを形成するペプチド・ブリッジを形成する。他のシステイン・ノット増殖因子でも同様の構造が認められるが、ペプチド・ブリッジの長さは異なる（McDonald等（1991年）Natu re 354: 411-414 ）。単量体内で、フィンガ２は、芳香族残基Ｔｙｒ１１６、Ｐｈｅ１１７およびＴｙｒ１２８および脂肪族残基Ｖａｌ１１４、Ｌｅｕ１１５、Ｖａｌ１２３、Ｍｅｔ１３１およびＶａｌ１３３が溶媒接触不能界面に寄与することにより、フィンガ１との鎖内鎖を形成する。ＯＰ−１とＴＧＦ−β２では、フィンガ２ターンの領域内の３つの電荷が異なる。すなわち、ＯＰ−１は２個のマイナスの電荷を有するのに対し、ＴＧＦ−β２は１つのプラスの電荷を有する。ターンとペプチド・ブリッジの間の領域では、ＯＰ−１の実効電荷は＋３であるのに対し、ＴＧＦ−β２では中性である（第５図）。各単量体サブユニットのＮ末端は非常に移動度が高いと考えられており、ｈＯＰ−１の２．８Å分解構造ではまだ明らかになっていない。Ｎ末端領域は生物活性に影響を与えることなく除去することができるので、ｉｎｖｉｖｏの特定部位へのターゲティングを増強するまたはｉｎｖｉｖｏの画像実験に使用するために、成熟ｈＯＰ−１のこの部分を除去し、抗体などの他のタンパク質またはペプチド配列および／または放射性標識した部位で置換することができるものと企図される。また、Ｎ末端領域を、親和性精製スキームに使用するためにイオン・キレーティング・モチーフ（例えばＨｉｓ₆）で置換することや、水性溶媒への溶解度を高めるためにタンパク質またはペプチドで置換することもできる。IV ．ｈＯＰ−１二量体の構造の特徴第４図は２．８Åの構造に基づく、ｈＯＰ−１二量体複合体のペプチド骨格を表す立体リボン・トレース図である。二量体複合体中の２つの単量体サブユニットは、一つのサブユニットのヒール領域が他のサブユニットのフィンガ領域と接触し、分子の核を形成する結合サブユニットのノット領域を形成するように対称の配向を示す。４番目のシステインは第二の鎖の４番目のシステインと鎖間ジスルフィド結合を形成し、それにより、掌の中心でこれらの鎖が同等に結合する。このように形成された二量体は、サブユニットの間の対称の２倍軸を頂部から見おろしたときに、楕円体（葉巻形）である（第４Ａ図）。側部から見ると、２つのサブユニット分子は互いにわずかな角度で配向しているため、曲がった「葉巻」に似ている（第４Ｂ図）。第４図に示すように、二量体の元の単量体サブユニットを共に規定する構造要素をそれぞれ４３、４３’、４４、４４’、４５、４５’、４６および４６’と表示するが、要素４３、４４、４５および４６は１つのサブユニットで規定され、４３’、４４’、４５’および４６’は別のサブユニットに属する。具体的には、４３と４３’はフィンガ１領域を示し、４４と４４’はヒール領域を示し、４５と４５’はフィンガ２領域を示し、４６と４６’は各サブユニットの１番目と５番目の保存システインを結合し、ノット様構造を形成するジスルフィド結合を表す。第４図から、１つのサブユニットからのヒール領域、例えば４４と、他のサブユニットからのフィンガ１およびフィンガ２領域、例えば４３’および４５’が相互に作用することが判る。これらの３つの要素が互いに共同して、同種受容体のリガンド結合相互作用表面を規定する。螺旋軸とは、螺旋領域のα炭素から等距離にある線と定義されている。二量体中の螺旋の軸間の二面角を規定するには４点の配列が必要である。２つの内側の点はＯＰ−１の残基Ｈｉｓ８４またはＴＧＦ−β２のα炭素に隣接した螺旋軸上にそれぞれくるよう選んだ。２つの外側の点は各螺旋軸上にくるよう選択したが、その位置は任意とする。螺旋間の角度を測定するために、二面角を規定するために使用した最初の２点が内側の点の上に重なるように移した。得られた３点で角を規定する。ＯＰ−１二量体とＴＧＦ−β２二量体の主な違いはヒール領域の螺旋の相対配向である。ＯＰ−１のヒール領域の螺旋の軸の間の角度は４３゜で、これはＴＧＦ−β２について測定されたものより１０゜大きい。螺旋の間の二面角の測定値はＯＰ−１では−２０゜であり、これはＴＧＦ−β２より１４゜小さい。これらの螺旋配向の違いにも関わらず、第３図に斜線で示したように、同じ螺旋およびフィンガ残基位置が鎖間の結合に関与している。Ａ．ｈＯＰ−１二量体と個々の単量体サブユニットにおける相違単量体サブユニットが二量体化する間、各単量体サブユニット表面上の幾つかのアミノ酸はｈＯＰ−１二量体中に埋もれてしまう。第８図は、２．８Ａのアミノ酸構造体に基づいて測定した、ｈＯＰ−１二量体中の特定アミノ酸残基とｈＯＰ−１単量体サブユニット中の特定アミノ酸残基の表面接近可能性における相違を明示したものである。二量体化する間の非極性表面積の損失量を、１．４Ａプローブを使ったＡＣＣＥＳＳ（２．１版）を用いて計算した（Lee 等、（1971年）J．Mol．Biol，55:379-400）。非極性表面積は、炭素および硫黄両原子が接近可能な総表面積として定義される。ＡＣＣＥＳＳにおける表面積測定アルゴリズムによって、アミノ酸構造体はＺ軸に垂直な０．２５Ａのスラブにスライスされる。そのため、結果は、Ｚ軸に対する構造体の配向に影響される（ Lee 等、（1971年）前記文献）。この影響を最小限に抑えるため、各構造体の３つの垂直の配向と１つの中間の配向について評価した。各非極性原子について、４つの配向のうち接近可能面積の測定値が最大のものを妥当な値として、これらの計算結果を組合せた。ここで報告されているＴＧＦ−β２の値は、Brookhaven National LaboratoryのProtein Data Bank（Bernstein等、（1977年）J．Mol． Biol，112:535-542）から１９９４年に譲渡された登録２ＴＧＩ（Daopin等、（1 992年）前記文献）と登録１ＴＦＧ（Schlunegger 等、（1992年）前記文献）の座標を使用して計算した。第８図において、「残基」の列は問題の対象としているアミノ酸を示している。「単量体面積％」の列は、ｈＯＰ−１単量体の表面に露出しているアミノ酸の百分率を、「二量体面積％」の列は、ｈＯＰ−１二量体の表面に露出しているアミノ酸の百分率を示しており、また、「隠れた面積％」の列は、ｈＯＰ−１二量体形成のために各単量体サブユニットが二量体化する際に損失した、各アミノ酸の表面積量を示している。この解析によって、二量体化する間に埋もれてしまい、そのため、恐らくは２個の単量体サブユニットの境界面に位置していると思われるアミノ酸が明らかになる。例えば、Ｈｉｓ８４の表面積の７０．７５％は二量体化する間に隠れてしまう。二量体ｈＯＰ−１の構造を吟味すれば、Ｈｉｓ８４が２個の単量体の境界面に位置していることは明らかである。Ｂ．ＯＰ−１およびＴＧＦ−β２の表面における溶液の静電ポテンシャルＯＰ−１およびＴＧＦ−β２（１ＴＦＧ）（Schlunegger 等、（1992年）前記文献）の両二量体を取り囲む溶液の静電ポテンシャルをＤＥＬＰＨＩ（Gilson等、（1987年）Nature，330:84-86 およびNicholls等、（1991年）J．Comput．Che m．12:435-445）（Biosym Technologies，Inc.，San Diego，CA）を使用して計算した。計算は、溶媒の誘電定数８０、溶媒半径１．４Ａ、イオン強度０．１４５Ｍおよびイオン半径２．０Ａとして実施した。タンパク質内部は誘電定数２．０としてモデル化した。使用した形式電荷およびその分布は下記の通りである。ＡｓｐのＯＤ１およびＯＤ２両原子の電荷はそれぞれ−０．５、ＧｌｕのＯＥ１およびＯＥ２両原子の電荷はそれぞれ−０．５、ＨｉｓのＮＤ１およびＮＥ２両原子の電荷はそれぞれ０．２５、ＬｙｓのＮＺ原子の電荷は＋１．０、ＡｒｇのＮＨ１およびＮＨ２両原子の電荷はそれぞれ＋０．５、およびＣ末端カルボキシ基のＯＸＴ原子の電荷は−１．０とした。ＯＰ−１およびＴＧＦ−β２の表面における電荷分布の相違は、第５Ｂ図および第５Ｃ図の色分布をそれぞれ比較することによって観察できる。静電ポテンシャルが−３ｋＴ以下の表面領域は赤で、＋３ｋＴ以上の表面領域は青で表されている。中性の領域は緑または金色で表され、第５Ａ図に示される骨格ひもに相当する。下記の項で触れるが、ＯＰ−１およびＴＧＦ−β２の表面における静電ポテンシャルの相違は、ＴＧＦ−βスーパーファミリ・メンバのその同族受容体との特異的相互作用において重要な役割を果していると言えよう。Ｃ．受容体結合ドメイン理論に縛られさえしなければ、ＴＧＦ−βスーパーファミリの他のメンバと並べて（第３図参照）ｈＯＰ−１のアミノ酸配列から測定されるように、ｈＯＰ− １の受容体結合領域には、溶媒に接近可能であってかつ不均一系化合物の種々の位置に位置するアミノ酸が含まれていると予想される。ＴＧＦ−β２と同様、ｈＯＰ−１の分岐構造特性は主としてフィンガ１およびフィンガ２の外部ループに発現し、これらループはヒール領域の螺旋に接しており、Ｎ末端ドメインの残基はシステイン・ノットの第１番目のシステインの前にある。これらの領域は溶媒に接近可能である。ＯＰ−１およびＴＧＦ−β２の両二量体構造においては、一つの鎖からのフィンガ２の先端とフィンガ１のオメガ・ループおよび他の鎖のヒール領域のα一螺旋のＣ末端基が、約長さ４０Ａ×幅１５Ａの連続的なリッジ(r idge)（第５図）を形成している。このリッジは同族の受容体と相互作用する一次構造特性を含んでいると予想され、また、異なるＴＧＦ−βスーパーファミリ・メンバ間の結合特異性はこのリッジの表面におけるコンホメーションおよび静電の変化に由来すると予想される。リッジの中央部を構成するフィンガ１のオメガ・ループのコンホメーションにおける相違およびリッジの一端を形成するフィンガ２の末端のターンにおける相違が注目される。しかし、ｈＯＰ−１とＴＧＦ−β２とではリッジの表面電荷に著しい相違がある（第５Ｂ図および第５Ｃ図参照）。ｈＯＰ−１ではフィンガ領域の末端はマイナスに荷電しており、一方、ＴＧＦ−β２ではフィンガ領域の末端はプラスに荷電している。すなわち、ｈＯＰ−１の受容体結合リッジでは純荷電は−４となり、それに対して、ＴＧＦ−β２の受容体結合リッジでは＋３となる。逆に、フィンガ２のターンのＣ末端に位置するβ鎖（第２図のβ７）については、ｈＯＰ−１ではプラスに荷電しており、一方ＴＧＦ−β２ではマイナスに荷電している（第５Ｂ図および第５Ｃ図）。ＴＧＦ−βスーパーファミリ・メンバのその同族受容体との特異的相互作用において静電荷分布が重要な役割を果していることが、これらの特性によって示唆される。第９図は、２．８Ａの構造体からリッジを構成していると考えられるアミノ酸残基について要約した図であり、また、各アミノ酸残基がヒール、フィンガ１またはフィンガ２のいずれのドメインに配置されているかを示す図である。第９図はまた、ｈＯＰ−１の受容体結合ドメインのすべてではないにしろ、少なくとも一部を構成していると考えられるアミノ酸残基を表にまとめたものである。Ｖ．モルホゲン類似体の設計モルホゲン類似体の設計が従来の球／棒を用いた模型作製法によって容易になり得ることは予想されることであるが、モルホゲン類似体の設計能力が、最新のコンピュータを駆使した模型作製法および設計法を使用して著しく増強されることもまた予想される。本明細書で後に詳細に検討するが、モルホゲン類似体の設計は、例えば、Bios ym，Technologies Inc．社が販売するINSIGHTII、DISCOVERおよびDELPHI、またM olecular Simulations，I nc．社が販売するＱＵＡＮＴＡおよびＣＨＡＲＭＮなどの従来のコンピュータ模型作製プログラムを同様に実行する、Silicon Graphics Inc．社またはEvans an d Suthcrland Computer Corp．社製の従来の分子模型作製コンピュータまたはワークステーションを使用することで容易になると予想される。また、第１０図で説明するような総合的特性を備えたコンピュータ・システムも、本発明の実施に有用であり得ることを理解されたい。さらに具体的に言えば、第１０図は、例えば内部のバスまたは外部のネットワークを介した電気的相互通信システム（１００）に、プロセッサ（１０１）、ＲＡＭ（１０２）、ＲＯＭ（１０３）、端末（１０４）および随意で、例えばディスケット、ＣＤＲＯＭまたは磁気テープ（１０５）などの外部記憶装置を備えた典型的なコンピュータ・ワークステーションの略図である。座標は、例えば生理的緩衝液中における活性ｈＯＰ−１二量体の溶解性および／または安定性などを増強する目的で、例えば部位特異的突然変異誘発法などを用いてｈＯＰ−１二量体を再操作するための基礎を提供するためだけでなく、ｈＯＰ−１の生物活性によく似たペプチドまたは他の小分子をｄｅｎｏｖｏ（新規）設計する、また、ｄｅｎｏｖｏ（新規）生産するための出発点を提供するためにも使用することができる。以下に、モルホゲン類似体の設計におけるｈＯＰ−１原子座標の有用性を例示によって説明するが、以下の例は例示を目的したものであり、いかなる点においても本発明を限定するものでないことを理解されたい。Ａ．ｈＯＰ−１二量体の操作一つの実施形態においては、ｈＯＰ−１に関する原子座標の有用性のおかげで、当業者は理論的にアミノ酸置換を実施することが可能となり、また、実験室環境で実際に候補分子を作製したりテストする前に、特定のアミノ酸置換がＯＰ− １二量体のパッキングを破壊するかどうか、およびモルホゲン類似体が鋳型ＯＰ −１分子に比べてより安定でありおよび／またはより溶解性が大であり得るかどうかを計算によって決定することが可能となる。このような方法によって、当業者は実用的出ない置換を省くことができ、より有望な類似体候補に鋭意誠心することができるようになる。（ｉ）ｈＯＰ−１二量体の安定性の増強ｈＯＰ−１を確定する原子座標を手にした当業者は、ｈＯＰ−１二量体に鎖間または鎖内共有および／または非共有的相互作用を追加的に導入し、各単量体サブユニットが解離またはおりたたみが開くのを防ぐことによってその二量体を安定化することができる。巧みに操作された好ましい共有的相互作用には、例えば操作ジスルフィド結合が含まれ、また、巧みに操作された好ましい非共有相互作用には、例えば水素結合、塩架橋および疎水相互作用が含まれる。例えばジスルフィド結合を追加して導入するために、当業者は、例えばＩＮＳＩＧＨＴ、ＤＩＳＣＯＶＥＲ、ＣＨＡＲＭＮおよびＱＵＡＮＴＡなどの標準的な分子模型作製プログラムを使って、一対のシステインアミノ酸残基を導入するのに好適な部位を同定することができる。安定化ジスルフィド結合導入のための潜在的な部位としてアミノ酸対を同定するのに有用な別のプログラムが、米国特許第４，９０８，７７３号に記載されているが、その開示を参照によって本明細書に組み込むものとする。例えば、ＩＮＳＩＧＨＴプログラムを使用する当業者はアミノ酸対の検索をすることができる。その場合、各アミノ酸のＣβ原子間の距離は約３．０Åないし５．０Åであって、約３．５Åないし約４．５Å離れていればより好ましい。この目的では、Ｃβ−Ｃβ結合を含まないグリシンは、最初にコンピュータ上でアラニンに転化される。ジスルフィド結合のＣβ−Ｃβの考えられる距離は３．１ Åないし４．６Åの範囲であるが、この範囲外での分離は隣接する原子の僅かなシフトによって適応することができる。Ｃαの距離ではなくＣβ検索によって、Ｃα−Ｃβ結合の妥当な距離と適当な配向が確実になる。タンパク質の構造にこのような追加的な結合を付加する効果は、Ｃｙｓに結合にしている２個の候補残基を突然変異させ、Ｃα−Ｃβ結合付近の新たな各Ｃｙｓを回転させて２個のγ 硫黄を２Åの距離範囲にできるだけ接近させ、γ硫黄間にジスルフィドを形成して、５Åのジスルフィド結合内の構造領域を最小にするエネルギーによって測定される。追加的なジスルフィド結合の導入によって引き起こされる構造の変形は、最小化され突然変異したモデル構造を本来の構造に重ね合せて検査すれば明らかになる。追加的な結合を導入すると、非極性界面または埋もれた残基の過度的露出が防止され、溶解性は改善されるであろうと予想される。第１１Ａ図は、先に提示した選択基準に基づいて作成した、追加的な鎖間ジスルフィド結合を導入するためにシステイン残基に突然変異を起こすことができるような、２．８Åの構造のアミノ酸残基の一覧である。参考として、表１１Ａには、天然ｈＯＰ−１に自然に生じる鎖間ジスルフィド結合、すなわち１個の単量体サブユニットのＣｙｓ−１０３と他の単量体サブユニットの対Ｃｙｓ−１０３とを結合させるジスルフィド結合の長さも含めてある。修飾に好適な好ましい残基の対には、１本の鎖の８３の位置にある残基ともう一方の鎖の１３０の位置にある残基の対が含まれる。追加的な鎖間結合は、第一番目のサブユニットのヒール螺旋のＮ末端を第二番目のサブユニットのフィンガ２の領域の中央に結合させることによって、二量体構造を安定化させるものと予想される。１本の鎖の８２の位置ともう一方の鎖の１３０の位置の間のジスルフィド結合も幾何学的には実行可能であるが、Ｔｈｒ８２がＯＰ−１のＮＡＴグリコシル化部位の一部であるため、その修飾によって適当なグリコシル化が阻害されることがある。第１１Ｂ図は、先に提示した選択基準に基づいて作成した、追加的な鎖内ジスルフィド結合を導入するためにシステイン残基に突然変異を起こすことができるようなアミノ酸残基の概要である。先に注目したように、推定の受容体結合領域は、物理的に隣接しているが配列上は隔てられている領域を少なくとも２つ、すなわちフィンガ１とフィンガ２の先端を含む。推定の受容体結合リッジの構造上無欠の状態は、フィンガ１とフィンガ２の残基間に鎖内ジスルフィド結合を巧みに形成することによって安定化が可能であると予想される。好ましい実施形態においては、フィンガ１の５８の位置の残基をフィンガ２の１１４の位置の残基とジスルフィド結合させることが可能である。５８と１１５の位置にある残基間の結合も実行可能であろう、しかしこの場合、ジスルフィド結合がフィンガ２の推定受容体結合領域に近付くように移動することが予想される。６５と１３３の位置間の結合も可能であるが、この結合は各鎖のノット領域付近に位置すると予想され、したがってフィンガ１とフィンガ２の先端の推定受容体結合領域の安定化にはほとんど効果がないと言えよう。さらに、このような結合がノット領域のジスルフィド結合に接近することによって、適当な構造が形成が妨げられることもあり得る。非共有相互作用に関しては、鎖間水素結合が増えることによってｈＯＰ−１二量体の構造安定性が増強されることが予想される。荷電している残基の領域における（タンパク質の他の電荷による）静電ポテンシャルは、その残基のｐＫに影響を及ぼす。ヒスチジンおよびＮ末端第一級アミノ基のいずれのｐＫもほぼ中性であるため、分子表面に電荷を置くことによってそのｐＫを修飾することは可能であろう。ｈＯＰ−１のＨｉｓ８４位置に埋もれているＨｉｓは、もう一方の鎖のＡｌａ６４およびＴｙｒ６５残基の骨格カルボキシル基との水素結合にあずかることによって、二量体の構造の安定化を促進していると予想される。したがって、この効果は表面電荷の導入によって増強され、それによって分子構造が一層安定化することが予想される。例えば、Ｔｙｒ６５またはＶａｌ１３２をＡｓｐに突然変異させことによって、６４および６５位置のアミノ酸残基のカルボニル結合はさらに極性を増し、また、Ｈｉｓ８４のｐＫ値も増す。Ｈｉｓ８４のｐＫは、Ｔｙｒ４４、Ａｌａ６３またはＡｓｎ１１０の残基をＡｓｐで置換することによってさらに影響を受けることになろう。本目的での好ましい修飾はＴｙｒ６５→Ａｓｐ６５であると予想される。同様な基本原理を使用することで、当業者は、その置換によって鎖間塩架橋、内部水素結合または疎水性相互作用の導入が容易になるようなアミノ酸対を同定することができる。このような決定は、分子モデル化の分野において通常のレヴェルの技術を有する当業者ならば当然行える範囲のものである。標的アミノ酸対が同定されると、例えばカッセト式突然変異誘発法またはオリゴヌクレオチド特異的突然変異誘発法などの従来の部位特異的突然変異誘発法によって、標的アミノ酸の所望の置換基との部位特異的置換が容易になる。このような手法については、当業界でことごとく引照されているので本明細書では検討しない。部位特異的置換が、結果として得られる修飾ｈＯＰ−１二量体または突然変異タンパク質の安定性にもたらす効果は、それらを産生および精製した後に、円二色性、分析用遠心機、示差走査熱量計、蛍光またはその他の分光学的手法などの当業界では公知の標準的な方法を用いて測定することができる。（ii）ｈＯＰ−１二量体の水溶性の増強ＯＰ−１の水溶液中での溶解性は限られている。しかし、ｈＯＰ−１原子座標を使用することによって、当業者がこの二量体の溶媒接触可能な表面においてアミノ酸を置換することが可能となり、それによって二量体ｈＯＰ−１の誘電特性を増大することが可能となると予想される。例えば、グリシン、アラニン、バリン、ロイシンおよびイソロイシンなどの溶媒接触可能な疎水性アミノ酸を、リシン、アルギニン、ヒスチジン、アスパラギン酸、アスパラギン、グルタミン酸およびグルタミンなどのより極性の強い残基によって置換することもできよう。溶媒接触可能なアミノ酸は、１．４Åのプローブを使用したＡＣＣＥＳＳ（２．１版）などのコンピュータ・プログラムを用いて同定することが可能である（ Lee 等（1972年）前記文献）。第７図では、側鎖領域の少なくとも２０％が溶媒に露出しているアミノ酸残基を、四角で囲ってある。表面残基を修飾する際、特にｈＯＰ−１類似体を注射可能な分子として使用することになている場合には、非宿主と認定できるような新たなエピトープを産生しないことが重要である。１０Åの球状プローブで見られるようなアミノ酸側鎖は、表面エピトープの可能性があると考えられる。当業者ならば、１０Åの球状プローブを使用したＡＣＣＥＳＳを用いて潜在的なエピトープを同定することができるが、この処理はＩＮＳＩＧＨＴＩＩなどのグラフィック・パッケージを使って、手法で実行される。第８図に、潜在的なエピトープと同定された残基の側鎖を明示する。二量体の溶解性を改善するための修飾候補となる残基の位置も明示してある。置換候補として好ましいアミノ酸には、例えばＡｌａ６３、Ａｌａ７２、Ａｌａ８１、Ａｌａ１１１、Ａｌａ１３５、Ｉｌｅ８６、Ｉｌｅ１１２、Ｔｙｒ５２、Ｔｙｒ６５およびＴｙｒ１２８が含まれる。溶媒接触可能な疎水性または非極性アミノ酸が同定されれば（第９図参照）、これらのアミノ酸は理論上、コンピュータを使ってより極性の強いアミノ酸と置換することができる。修飾ｈＯＰ−１二量体を取り囲む溶液の静電ポテンシャルおよびその二量体の自由エネルギーに及ぼされるアミノ酸置換効果は、プログラムＤＥＬＰＨＩ（Gilson等（1987年）前記文献、Nicholl 等（1991年）前記文献）を使って計算することができる。好ましいアミノ酸置換基は、潜在的な抗原部位を導入することなしに、ｈＯＰ−１二量体の自由エネルギーを低下させる。前述したように、このような抗原部位は、１０Åのプローブを使用したＡＣＣＥＳＳ（２．１版）のようなコンピュータ・プログラムを実行することによって検出できる。また、置換に好適な好ましい表面残基は、受容体結合ドメインの一部を構成しないものと予想される。このようにして得られたモルホゲン類似体候補物質は、従来の部位特異的突然変異誘発法を用いて産生することができ、また、部位特異的修飾がｈＯＰ−１二量体の安定性に及ぼす効果は、例えば修飾ｈＯＰ−１二量体と本来のｈＯＰ− １二量体の分配係数または「塩析特性」を比較することによって測定できる。例えば、Scopes（1987年）のProtein Purificationに収録のPrinciples and Pract ice 第２版（Springer-Verlag ）、およびEnglard 等（1990年）Methods in Enz ymology 182:285-300 を参照されたい。（iii）グリコシル化部位の操作溶媒接触可能な各アミノ酸残基をより極性の強いまたは疎水性のアミノ酸残基と置換するだけでなく、一つまたはそれ以上の溶媒接触可能なアミノ酸残基を置換して新たな真核グリコシル化部位を形成するか、また別には、既存のグリコシル化部位を除去するもしくは変更することもできよう。グリコシル化部位については、当業界では公知でありそのことごとくが記述されている。新たなグリコシル化部位が加わることによって、または既存の部位を変更することによって、例えば、モルホゲン類似体の溶解性を増強するＮ−アセチル−シアル酸などのグリコシル基が一つまたはそれ以上加わることになろう。本明細書で記述したように、このような部位は、当業界では公知の部位特異的突然変異誘発法によって導入することが可能である。このような部位は新たな抗原決定基を形成しないことが好ましい（抗原決定基も短期間の治療に使用する場合には許容できる）。表８を参照すると、抗原エピトープではないと思われ、したがって追加的なグリコシル化部位導入の候補として使うことができそうな、２．８Åの構造を基にした、表面接触可能なアミノ酸残基が同定される。Ｂ．ｈＯＰ−１構造に基づく小分子の操作ｈＯＰ−１の原子座標の有用性のおかげで、当業者は、ｈＯＰ−１の生物活性によく似た一定の化学的特徴を有するペプチドまたは非ペプチジル・ベースの有機分子小分子を設計することができる。問題の対象である化学的特徴には、例えば、特定のタンパク質ドメインの三次元構造、特定のタンパク質ドメインの溶媒接触可能表面、荷電および／または疎水性化学的部分の空間的分布、静電荷分布、またはそれらの組合せが含まれる。このような化学的特徴は、ｈＯＰ−１の三次元表示から容易に決定することができよう。（ｉ）ペプチドどのアミノ酸残基が受容体結合ドメインに寄与しているかを決定すれば（前記文献）、当業者は、予め選択した受容体結合モチーフを規定するアミノ酸配列を有する合成ペプチドを設計することができる。潜在的に生物活性である擬似ペプチドを設計するのに有用なコンピュータ・プログラムについては、米国特許第５，３３１，５７３号に記載されているが、その開示を本明細書は参照によって組み込むものとする。所望のアミノ酸配列の選択に加えて、後述する標準的な分子モデル作成ソフトウェア・パッケージを使用する当業者は、例えば、問題の対象であるペプチドの環化を容易にするように、予め選択された位置に追加的なシステインアミノ酸が配置されている特定のペプチドを設計することができる。追加的なシステイン残基を酸化することによってペプチドが環化し、それによってペプチドは、天然のｈＯＰ−１の相当するアミノ酸配列のコンホメーションによく似たコンホメーションを強いられる。例えば、合成ペプチドを環化するのに使用されるジスルフィド結合などの標準的な共有結合であればいかなるものであれ、本発明の実施に有用であろう。環化の化学作用を起こす別の方法は、国際特許出願ＰＣＴ／ＷＯ９５／０１８００で議論されているが、その開示を本明細書は参照によって組み込むものとする。また、別のｈＯＰ−１サブユニット・ドメインから得たアミノ酸配列を含有する単一のペプチド、例えば、フィンガ１領域の先端を規定しているアミノ酸配列を含有する単一のペプチドは、ポリペプチドリンカーによってフィンガ２領域の先端を規定しているアミノ酸配列に結合していると予想される。各フィンガ領域を規定しているアミノ酸配列はまた、例えば各フィンガ領域モチーフを環化するためのジスルフィド結合などの手段を含んでいる。したがって、結果として得られるペプチドは、フィンガ１領域の先端によく似た三次元ドメインを規定する第一のアミノ酸配列と、フィンガ２領域の先端によく似た三次元ドメインを確定する第二のアミノ酸配列を有する単一のポリペプチド鎖を含んでいることになる。このようなペプチドは、後述する標準的なプロトコルのいずれを用いても合成することができ、また、ＯＰ−１様活性をスクリーニングすることができよう。（ii）有機分子先に議論したように、ｈＯＰ−１の受容体結合ドメインを決定ししだい、当業者は、非ペプチジル・ベースの小分子、例えばその構造および化学的特徴がｈＯＰ−１の受容体結合ドメイン表面の少なくとも一部分に見られる構造および化学的特徴によく似た有機小分子を設計することができると予想される。受容体結合表面にとって重要なのは、互いに受容体結合表面を規定している複数のアミノ酸の側鎖内に存在する化学的相互作用部分の空間的配列であり、それゆえ本発明の好ましい実施形態は、ある一定の空間的関係にある化学的相互作用部分を保持する枠組みを有している合成有機分子であって、その空間的関係がｈＯＰ−１の受容体結合部位を構成するアミノ酸の側鎖に配置された化学的部分の空間的関係によく似ているような合成有機分子を設計かつ形成することに関わる。好ましい化学的部分には、ｈＯＰ−１の受容体結合ドメインを構成しているとされるアミノ酸の側鎖によって規定される化学的部分（第９図参照）が含まれるが、それに限定されるものではない。したがって、モルホゲン類似体の受容体結合表面に、アミノ酸残基は含まれなくともよいが、その残基に配置されている化学的部分は含まれなければならないことを理解されたい。例えば、問題とされる化学基が同定されしだい、従来のコンピュータ・プログラムを使用している当業者は、受容体相互作用化学的部分を好適な保持体である枠組みに配置させた小分子を設計することができる。有用なコンピュータ・プログラムについては、例えば、Dixon（1992年）Tibtech 10:357-363、Tschinke等（1993年）J．Med．Chem．36:3863-3870およびEisen等（1994年）Proteins: Str ucture，Function，and Genetics19:199-221に記載されているが、その開示を本明細書は参照によって組み込むものとする。「ＣＡＶＥＡＴ」という名のある特別なコンピュータ・プログラムは、例えばＣａｍｂｒｉｄｇｅＳｔｒｕｃｔｕｒａｌＤａｔａｂａｓｅなどのデータベースで、所望の空間的配向をする化学的部分を有する構造（Bartlett等（1989年）「Molecular Recognition: Chemical and Biological Problems 」（Roberts ，S.M.，編）pp.182-196）を検索する。ＣＡＶＥＡＴプログラムは、テンダミスタット（Bartlett等（1989年）前記文献）の三次元構造にある、選択されたアミノ酸側鎖の配向に基づいて、テンダミスタットの類似体、すなわちα−アミラーゼの７４残基酵素阻害剤を設計するのに使用されている。別法として、ｉｎｖｉｖｏまたはｉｎｖｉｔｒｏアッセイで測定するなど、ＯＰ−１の生物活性によく似た一連の類似体を同定ししだい、当業者は定量的構造活性相関（ＱＳＡＲ）を展開する助けとなるような、また、追加的モルホゲン類似体のｄｅｎｏｖｏ（新規）設計の助けとなるような種々のコンピュータ・プログラムを使用することができよう。その他の有用なコンピュータ・プログラムについては、例えば、Connolly-Martin（1991 年）Methods in Enzymology 203:587-613、Dixon（1992 年）前記文献、Waszkowyo z等（1994年）J．Med．Chem．37:3994-4002に記載されている。このように、例えば、ＯＰ−１（または関連モルホゲン）の三次元構造の一部分、しかも生物学的重要性が既知である領域または気付かれている領域に該当する一部分から着手することができる。このような領域の一つは、β６シートとβ ７シート（すなわち、残基のおよそ１１８から１２２）の間の溶媒接触可能ループまたはフィンガ２の「先端」領域である。この領域（および幾つかのフランキング残基）を含む合成環状ペプチド（すなわち、Ｆ２−２およびＦ２−３）を産生し、それらがＯＰ−１様生物活性を有することを証明した（後述の実施例参照）。本明細書で開示されるこの領域の三次元構造に基づけば、より効果的なＯＰ −１様（または一般に、モルホゲン様）類似体を産生することができる。例えば、第７図ないし第９図および第１５図に非常に詳しく示すように、Ａｓｐ１１８とＡｓｐ１１９の荷電しているγ−カルボキシル基およびＳｅｒ１２０とＳｅｒ１２１の相対的に親水性のヒドロキシル基は、溶媒接触可能であってＯＰ−１受容体結合に関わっているとされる。ＯＰ−１の三次元におけるこれらの基の相対的位置を第１５図および第１６図に示す。これらの官能基によって、ＯＰ−１の表面の三次元構造の連続的な部分が規定される。しかし、これら残基のペプチド骨格は、溶媒接触可能ではなく、そのため、ＯＰ−１分子の三次元表面の一部分を形成するとは考えられていない。当業者は、ＯＰ−１類似体またはモルホゲン類似体を選択または設計する際、同じまたは実質的に同等の（例えば、チオ対ヒドロキシル）官能基を、実質的に同じ（例えば、±１−３Å）三次元コンホメーションに有するような分子を選択または設計することができる。同じことは、ＯＰ−１単量体または二量体において問題の対象である他の領域（例えば、受容体結合ドメイン、フィンガ１、フィンガ２もしくはヒール領域、またはそれらの溶媒接触可能部分）についても言える。溶媒接触可能残基および推定受容体接触残基を含め、本明細書で開示される三次元構造を用いることによって、当業者はＯＰ−１（または関連モルホゲン）分子の三次元構造の一部分を選択し、さらにその「部分」を鋳型として使用することによって、機能上その鋳型の構造によく似た類似体を選択または設計することができる。当業者は、モルホゲン類似体の分子の枠組みまたは骨格を、それが、（１）電荷分布および疎水／親水特性も含めてモルホゲンの連続的三次元表面のタンパク質によく似た官能基を結合し、（２）水素結合および静電相互作用を含めて適切な三次元表面相互作用および空間的相関関係を維持、または少なくとも官能基に維持させるように、自由に選択することができる。前述のように、ペプチドは必要な官能基をすべて提供することができ、また、適切な三次元構造を呈することができるため、このようなモルホゲン類似体の産生には明らかに好ましい。フィンガ領域のペプチド類似体の幾つかの例について、本明細書で以下に記述する。ペプチドを環化すると水素結合が維持され、鋳型の構造によく似た構造が形成される。これらのペプチドは、フィンガ２の直線状に一次配列したアミノ酸から合成される。また別のペプチドとして、例えば、折りたたまれたＯＰ−１単量体に生じるフィンガ１とフィンガ２の、両先端の構造によく似るように構築されたフィンガ１とフィンガ２の両部分が化合しているペプチドも形成することができる。Ｆ２、Ｆ３またはその他の生物学的に活性なペプチドもそのままで使用でき、またより好ましくは、ｉｎｖｉｖｏでより安定または活性な化合物を産生するための反復的修飾により重要な化合物になるように使用することができる。例えば、ペプチド骨格をｉｎｖｉｖｏで還元する、または還元加水分解するために置換することができる。別法として、構造的修飾を骨格に導入することもでき、または、受容体に結合する際のタンパク質の構造により正確に似たアミノ酸置換によって導入することもできる。これら第二世代の構造について、その結合増強状態を検査することができる。さらに、結合に最小限必要とされる残基の接触を測定するために、アラニンによるアミノ酸の反復的置換（「アラニン・スキャン」）を使用することもできる。これら最小限の官能基が分かれば、最小限必要とされる官能基の荷電分布または静電分布によく似た完全に合成の分子を産生することができ、また、所望の結合親和性を有する第二世代の分子に機能上よく似た適切な塊および構造を提供する、完全に合成の分子を産生することができる。VI ．モルホゲン類似体の産生前述したように、本発明のモルホゲン類似体は、修飾ｈＯＰ−１二量体タンパク質またはペプチドもしくは有機小分子などの小分子を含んでいることが可能である。適切な方法である限りいかなる方法であっても、予め選択されたモルホゲン類似体の産生に使用できると予想される。このような方法には、例えば、好適な宿主細胞からの生物学的産生法または有機合成化学作用を利用した合成産生法などの方法が含まれるといえよう。例えば、修飾ｈＯＰ−１二量体タンパク質またはｈＯＰベースのペプチドは、当業界では公知でありかつそのことごとくが文書で立証されている従来の組換えＤＮＡ技術を用いて産生することができよう。このような状況下では、タンパク質やペプチドは、各タンパク質やペプチドの配列をコード化する核酸の配列を作成することによって産生することができよう。また、その後、得られた核酸は適切な宿主細胞で発現させることができる。例えば、タンパク質およびペプチドを、合成ヌクレオチドの配列および／または合成ＤＮＡ分子を産生するためのＤＮＡ制限断片の集合体によって製造することができよう。次いで、ＤＮＡ分子を発現ビヒクル(vehicle)、例えば発現プラスミドなどに連結反応させて、例えば大腸菌などの適切な宿主細胞に形質導入する。次いで、ＤＮＡ分子によってコードしたタンパク質を発現させ、精製し、必要であれば折りたたみ、ｉｎｖｉｔｒｏでＯＰ−１受容体との結合活性を検査し、引き続いて、モルホゲン類似体がｈＯＰ−１様生物活性を誘発または剌激しているかどうかを評価するための検査を行う。問題の対象であるアミノ酸配列をコードするＤＮＡの操作、増幅および組換え方法は、当業界では一般に公知であるので本明細書ではその詳細を記述しない。ｈＯＰ−１およびその同族受容体をコード化する遺伝子の同定法および分離法についても十分理解されており、特許およびその他の文献に記載されている。簡単に述べれば、本明細書に開示の生合成構造物をコードするＤＮＡの構築は、ＤＮＡにおいて配列特異的切断をして平滑末端または付着末端を生じる種々の制限酵素、すなわちＤＮＡリガーゼの使用を含んだ公知の技術、付着末端の平滑末端ＤＮＡへの酵素付加、すなわち短鎖オリゴヌクレオチドまたは中鎖オリゴヌクレオチドのアセンブリによる合成ＤＮＡの構築を可能にする技術、ｃＤＮＡ合成技術、ライブラリからの核酸配列を増幅するための複製連鎖反応（ＰＣＲ）技術、ならびにＯＰ−１遺伝子、またはＴＧＦ−βスーパーファミリの他のメンバとその同族受容体をコード化する遺伝子を分離するための合成プローブを用いて実施される。細菌、哺乳動物、もしくは幾つか名をあげるべき昆虫類からの種々のプロモータ配列、発現の達成に用いられるその他の調節ＤＮＡ配列および種々の宿主細胞なども知られており、利用可能である。従来のトランスフェクション技術、ならびに同様に従来の技術であるＤＮＡクローニングおよびサブクローニング技術は本発明の実施に有用であり、また、当業者には既知の技術である。プラスミド、ならびに動物ウイルスおよびバクテリオファージを含めたウイルス類などの種々のベクトルを使用することができよう。このべクトルは、クローン・ファミリのいずれがベクトルの組換えＤＮＡを首尾よく組み込んだかを同定するために使用される検出可能な表現型特性を、首尾よくトランスフェクションされた細胞に対して付与する種々の標識遺伝子を利用することができよう。本明細書に開示した生合成構造物をコードするＤＮＡを得るための一つの方法は、従来の自動オリゴヌクレオチド合成装置で産生した後、適切なリガーゼと連結させた合成オリゴヌクレオチドのアセンブリによる方法である。例えば、重複した相補的ＤＮＡ断片を、連結の間に重合するのを防ぐため末端部分は加リン酸分解しない状態で、ホスホラミドンの化学的作用を用いて合成することができよう。合成ＤＮＡの一端を特定の制限エンドヌクレアーゼの作用部位に該当する「付着末端」に置き、もう一方の端は別の制限エンドヌクレアーゼの作用部位に該当する末端に置く。相補的ＤＮＡ断片同士を連結させて、合成ＤＮＡ構造物を形成する。適切なＤＮＡ分子が合成されたら、それを発現ベクトルに統合し、タンパク質発現のための適切な宿主細胞中にトランスフェクションすることができよう。有用な原核宿主細胞には大腸菌および枯草菌が含まれるが、それに限定されるものではない。有用な真核宿主細胞には酵母細胞、昆虫細胞、骨髄腫細胞、繊維芽３Ｔ３細胞、サル腎臓細胞またはＣＯＳ細胞、チャイニーズ・ハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、ミンク肺上皮細胞、ヒト包皮繊維芽細胞、ヒト・グリオブラストーマ細胞、および奇形がん腫細胞が含まれるが、それに限定されるものではない。別法として、遺伝子を、ウサギ網状赤血球溶解物系などの無細胞系で発現させることもできよう。このベクトルは、転写プロモータ／転写終止配列、エンハンサ配列、好ましいリボゾーム結合部位配列、好ましいｍＲＮＡリーダ配列、好ましいタンパク質プロセッシング配列、タンパク質分泌のための好ましいシグナル配列その他を含め、組換えタンパク質の適正な発現を促進する種々の配列を補足的に含むことができよう。問題の対象である遺伝子をコード化するＤＮＡ配列を操作して、潜在的な阻害配列を排除することまたは不必要な二次構造の形成を最小限に抑えることが可能であろう。モルホゲン・タンパク質類似体のタンパク質を、融合タンパク質として発現させることも可能であろう。このタンパク質は、翻訳された後、細胞それ自身から精製されるかまたは培養基から回収され、所望であれば特異的プロテアーゼ部位で切断される。例えば、この遺伝子が大腸菌内で発現するということであれば、それをクローニングして適切な発現ベクトルにする。これは、ＴｒｐまたはＴａｃなどのプロモータ配列の下流にある遺伝子工学的操作をした遺伝子を、および／またはタンパク質Ａの断片Ｂ（ＦＢ）などのリーダ・ペプチドをコードする遺伝子を位置決めすることによって達成できる。発現の間、結果として得られる融合タンパク質は細胞の細胞質にある屈折可能体にたまり、したがってその細胞をフレンチ・プレスまたは音波処理で破壊した後、それらを回収することができよう。次いで、分離した屈折可能体を可溶性にし、多くの他の組換えタンパク質に関してすでに確立されている方法で、発現したタンパク質を折りたたみ、必要に応じてリーダ配列を切断する。遺伝子工学的操作を行った遺伝子が真核細胞において発現するには、容易にトランスフェクトし、その配列が再配列を受けていない外来ＤＮＡを安定に保持することが可能で、しかも能率良く転写、翻訳、翻訳後修飾およびタンパク質の分泌を行うために必要とされる細胞成分を有している細胞および細胞系が必要である。さらに、問題の対象である遺伝子を運搬する好適なベクトルが必要であり、哺乳動物の細胞へトランスフェクションするためのＤＮＡベクトルの設計には、適切な転写開始配列、転写終結配列およびエンハンサ配列、ならびにコザック共通配列などの翻訳能率を高める配列を含め、本明細書で記述したような問題の対象である遺伝子の発現を促進する適切な配列が含まれていなければならない。好ましいＤＮＡベクトルには、標識遺伝子および問題の対象である遺伝子の複写数を増幅するための手段も含まれる。有用な細胞、タンパク質発現促進配列、標識遺伝子および遺伝子増幅方法を含め、哺乳動物の細胞内で外来タンパク質を産生する技術状況についての詳細な検討は、Bendig（1988年）Genetic Engineering 7:91-127に開示されている。特定の哺乳動物の細胞内で外来遺伝子を発現させるために有用であってその特徴が最も明確にされている転写プロモータは、ＳＶ４０初期プロモータ、アデノウイルス・プロモータ（ＡｄＭＬＰ）、マウス・メタロチオネイン−Ｉプロモータ（ｍＭＴ−Ｉ）、ラウス肉腫ウイルス（ＲＳＶ）末端反復配列（ＬＴＲ）、マウス乳がんウイルス末端反復配列（ＭＭＴＶ−ＬＴＲ）、およびヒト・サイトメガロウイルス主要中間−初期プロモータ（ｈＣＭＶ）である。これらプロモータの全てのＤＮＡ配列については、当業界で知られておりまた市販されている。ｄｈｆｒ−細胞系の選択可能なＤＨＦＲ遺伝子を使用する方法は、哺乳動物の細胞系で遺伝子を増幅するのに有用であって、その特徴が十分明確にされている方法である。簡単に述べれば、ＤＨＦＲ遺伝子を、問題の対象である遺伝子を運搬するベクトルに供給し、次いでＤＨＦＲで代謝される細胞障害医薬品メトトレキセートを高濃度で添加すると、ＤＨＦＲ遺伝子の複写数および問題の対象である関連遺伝子の複写数が増幅されることになる。トランスフェクションしたチャイニーズ・ハムスター卵巣細胞株（ＣＨＯ細胞）の選択可能かつ増幅可能標識遺伝子であるＤＨＦＲは、当業界では特にその特徴が明確にされている。その他の増幅可能標識遺伝子には、アデノシンデアミナーゼ（ＡＤＡ）およびグルタミンシンテターゼ（ＧＳ）が含まれる。細胞／細胞株の選択も重要であり、実験のニーズによって決まる。ＣＯＳ細胞によって過渡遺伝子発現が可能となり、本発明の生合成構造物を迅速にスクリーンする有用な手段が得られる。一般的に、ＣＯＳ細胞は、問題の対象である遺伝子を運搬するシミアン・ウイルス４０（ＳＶ４０）ベクトルでトランスフェクションされる。トランスフェクションされたＣＯＳ細胞はやがて死滅するため、所望のタンパク質産物が長期に渡って産生されることが防かれ、予備的類似体の結合活性を検査するための有用な技術となり得る。本発明による一本鎖構造体を哺乳動物細胞において発現させるのに使用可能な種々の細胞、細胞株およびＤＮＡ配列については、当業界では明確に特徴づけられており容易に入手可能である。その他のプロモータ、選択可能な標識、遺伝子増幅方法および細胞も、本発明のタンパク質発現に使用することができよう。組換えタンパク質のトランスフェクション、発現および精製の詳細については、当業界においては文書で十分立証されており、当業者には明らかであろう。哺乳動物細胞の発現系で外来遺伝子を組換え産生する際に使用される各ステップの、種々の技術的側面の詳細については、例えば、Ausubel 等編、Current Protocols in Molecular Biology，John Wiley ＆ Sons， New York（1989年）などの、当業界の多数のテキストおよび実験マニュアルに見いだすことができる。別法として、例えばMerrifield（1963年）J．Am．Chem．Soc.,85:2149に記載の方法に類似の方法などの標準的な固相ペプチド合成法を用いて、長さが通常アミノ酸５０個までの小ペプチドであるモルホゲン類似体を合成することもできよう。例えば、合成の間、保護側鎖を有するＮ−α−保護アミノ酸を、例えばポリスチレン・ビーズなどの不溶性ポリマー支持体にＣ末端によって結合している生長ポリペプチド鎖に順次添加する。ペプチドは、ジシクロヘキシルカルボジイミドなどの試薬と反応することによって活性化しているＮ−α−脱保護アミノ酸の α−カルボキシル基に、Ｎ−α−脱保護アミノ酸のアミノ基が結合することによって合成される。遊離アミノ基が活性カルボキシル基に付着するとペプチド結合が形成されることになる。最も一般的に使用されているＮ−α−保護基には、酸性不安定基であるＢｏｃ基および塩基性不安定基であるＦｍｏｃ基が含まれる。簡単に述べると、Ｃ末端Ｎ−α−保護アミノ酸を先ずポリスチレン・ビーズに付着させる。次いで、Ｎ−α−保護基を除去する。脱保護α−アミノ基を、隣接するＮ−α−保護アミノ酸の活性α−カルボキシラート基に共役させる。所望のペプチドが合成されるまでこのプロセスを繰り返す。得られたペプチドを不溶性ポリマー支持体から切断し、アミノ酸側鎖を脱保護する。例えば、その長さがアミノ酸約５０個以上の比較的長いペプチドは一般に、保護ペプチド断片の縮合によって得られる。適切な化学作用、樹脂、保護基、保護アミノ酸および試薬の詳細については、当業界では公知であるので、本明細書ではその詳細について検討しない。例えば、Atherton等（1963年）Solid Phase Peptide Synthesis: A Pra ctical Approach （ＩＲＬ出版）、Bodanszky（1993年）Peptide Chemistry，A Practical Textbook,２版、SpringerVerlag、およびFields等（1990年）Int．J ．Peptide Protein Res．35:161-214 などを参照されたい。本明細書は、それらの開示を参照によって組み込むものとする。得られたペプチドの精製は、分離用ＨＰＬＣ、例えばゲル浸透クロマトグラフィ、分配クロマトグラフィおよび／またはイオン交換クロマトグラフィなどの従来の方法を用いて達成される。適切なマトリックスおよび緩衝液の選択については当業界では公知であり、したがって本明細書では詳細に記述しないものとする。ＯＰ−１様生物活性を誘発する非ペプチド有機小分子の産生に関しては、それらの分子は良く知られており、かつ特許およびその他の文献で立証済みの標準的な有機化学的作用を用いて合成することができる。VII ．結合および生物活性のスクリーニングモルホゲン類似体がＯＰ−１様生物活性を誘導するかどうかを判定する第一段階として、当業者は、標準的なリガンド−受容体検定を使用して、モルホゲン類似体がＯＰ−１受容体に優先的に結合するか否かを判定することができる。標準的な受容体−リガンド検定については、例えば、Legerski等（1992年）BioChem ．Biophys．Res．Comm．183:672-679; Frakar等（1978年）Biochem．Biophys．R es．Comm．80:849-857; Chio 等（19 90年）Nature 343:266-269; Dahlman 等（1988年）Biochem 27:1813-1817; Stra der等（1989年）J．Biol．Chem．264:13572-13578; D'Dowd等（1988年）J．Biol ．Chem．263:15985-15992などを参照されたい。本発明の実施に有用な一般的なリガンド／受容体結合検定では、予め選択したＯＰ−１受容体に対する定量可能な既知の親和性を有する精製ＯＰ−１（例えば、参照により本明細書に組み込むTen Dijke 等（1994年）Science 264:101-103 を参照のこと）が、例えば、放射標識、色素産生標識、蛍光標識など、検出可能な部分で標識される。さまざまな濃度の無標識モルホゲン類似体の存在下で、精製受容体のアリコート、受容体の結合ドメイン・フラグメント、または問題の受容体をその表面に発現する細胞が、標識ＯＰ−１とともに培養される。モルホゲン類似体の相対的な結合親和性は、標識ＯＰ−１の受容体との結合を抑制する候補（無標識モルホゲン類似体）の能力を定量することによって測定することができる。検定の実施においては、一定濃度の受容体およびＯＰ−１が、無標識モルホゲン類似体の存在する条件および存在しない条件下で培養される。標識ＯＰ− １を加える前に、受容体を、候補モルホゲン類似体と予備培養することによって、感度を向上させることができる。標識競合者を加えたのち、競合者が結合するのに十分な時間放置し、次いで、遊離の標識ＯＰ−１および結合した標識ＯＰ− １を他から分離して、そのどちらかを測定する。スクリーニング法の実施に有用な標識には、放射性標識（例えば¹²⁵Ｉ、¹³¹Ｉ、¹¹¹Ｉｎ、または⁷⁷Ｂｒ）、色素産生標識、分光標識（Haughland 著「Handboo k of Fluorescent and Research Chemicals５ed.」Molecular Probes，Inc、米オレゴン州ユージン（19 94年）に記載のものなど）、および例えばワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、またはβ−ガラクトシダーゼなど、化学発光または蛍光原基質と組合せて使用される高い代謝回転速度を有する複合酵素などがある。続いて、ＯＰ−１の生物活性の測定用に開発された従来のｉｎｖｉｖｏおよびｉｎｖｉｔｒｏ検定を使用して、生物活性、すなわち生じたモルホゲン類似体の作動剤または拮抗剤としての特性を、特徴づけることができる。本発明の実施に有用であると信じられているさまざまな特定の検定は、後の実施例１で詳細に説明する。さらに、標準ＯＰ−１検定の多くは自動化することができ、これによって、多数のモルホゲン類似体の同時スクリーニングが容易となることを理解されたい。このような自動化手順は、薬物スクリーニング分野の熟練者には周知のことであり、したがって本明細書で論じることはしない。有用なモルホゲン類似体の同定に続いて、問題のモルホゲン類似体を発現する細胞株を生産するか、または適当なアミノ酸配列を規定する合成ペプチドを生産することによって、モルホゲン類似体を、商業的に有用な量（例えば、制限なく、グラム、キログラム単位で）生産することができる。しかし、適当な細胞株を生産する通常の手法、および合成ペプチドを生産する通常の手法は周知であり、当技術分野において詳細に文書化されているので、本明細書で詳細に論じることはしない。VIII ．製剤および生物活性ＯＰ−１類似体を含むモルホゲン類似体を、これらを必要とする哺乳類、好ましくはヒトへの投与用に薬品組成物の一部として製剤することができる。これらの組成物は、適当な手段によって、例えば、非経口的、経口的、または局所的に投与することができる。モルホゲン類似体が所望の組織部位に注射などによって局所的に投与される場合、または静脈内、皮下、筋肉内、眼窩内、眼、心室内、頭蓋内、包内、脊椎内、槽内、腹腔内、頬、直腸、膣、鼻腔内、またはエーロゾル投与などによって全身に投与される場合には、これらの組成物は水溶液からなることが好ましい。この溶液は、これの哺乳類への投与が、哺乳類の正常な電解液および体液の量のバランスに不利な影響を及ぼさないような生理的に許容できるものであることが好ましい。したがってこの水溶液は、例えば、ｐＨ７〜７．４の通常の生理食塩水（０．９％ＮａＣｌ、０．１５Ｍ）を含むことができる。経口または非経口全身投与に有用な溶液は、例えば、「Remington's Pharmace utical Sciences」（Gennaro，A．編、MackPub.，1990 年。この開示は、参照により本明細書に組み込む）に記載されているものなどの製薬分野において周知の方法よって調製することができる。製剤には、ポリエチレングリコールなどのポリアルキレングリコール、植物油、および水素添加ナフタリンなどを含めることができる。直接投与用の製剤には特に、グリセリンおよびその他の高粘度の組成物を含めることができる。例えば、ヒアルロン酸、コラーゲン、リン酸三カルシウム、ポリブチラート、ポリラクチド、ポリグリコリド、およびラクチド／グリコリドコポリマーなどを含む生物適合性、好ましくは生物再吸収性のポリマーは、ｉｎｖｉｖｏでのモルホゲン類似体の遊離を制御する有用な賦形剤になりえる。この類似体の潜在的に有用な他の非経口吐出システムに、エチレン−酢酸ビニルコポリマー粒子、浸透ポンプ、移植可能な注入システム、およびリポソームを含めることができる。吸入投与用の製剤には、賦形剤として例えばラクトースを含める、例えばポリオキシエチレン−９−ラウリルエーテル、グリココロール酸塩、またはデオキシコロール酸塩を含む水溶液とする、あるいは点鼻薬の形態で投与する油性溶液とする、あるいは鼻腔内に塗布するゲル剤とするなどがある。また、ＯＰ−１類似体を含む、本明細書の記載のとおりに同定したモルホゲン類似体を経口投与してもよい。例えば、モルホゲン類似体の液体製剤を、「Remi ngton's Pharmaceutical Sciences」（前掲）に記載されているものなどの標準作業方法に従って調製することができる。こうすることにより該液体製剤を、飲料または他の補助食品に加えて投与することができる。経口投与は、これらの液体製剤のエーロゾルを使用することによっても実施することもできる。また、当技術分野で認知された乳化剤を使用して調製した固体製剤を、経口投与に適したタブレット、カプセル、またはトローチに成形することもできる。任意選択で、類似体を、所望の組織による類似体の取込みを増強する手段を含んだ組成物に製剤することができる。例えば、テトラサイクリンおよびジホスホン酸塩（ビスホスホン酸塩）は、哺乳類に全身的に供給されると、骨の無機質、特に骨の再造形域に結合することが知られている。したがって、このような成分を使用すると、骨組織への類似体の供給を増強することができる。代わりに、細胞の表面抗原などの所望の標的組織に特異的に関係したアクセス可能な物質に特異的に結合する抗体、またはこれの一部を使用することもできる。所望であれば、このような特定のターゲティング分子を、例えば、標準的な遺伝子操作手法の使用、または化学的架橋によって、例えば、Ａｓｐ−Ｐｒｏ結合などの酸不安定結合を形成させ、この類似体に共有結合させることができる。有用なターゲティング分子は、例えば、米国特許第５０９１５１３号の教示に従って設計することができる。また、担体マトリックス、すなわち不溶性ポリマーマトリックスと結合すると、いくつかのモルホゲン類似体が最高水準のｉｎｖｉｖｏ活性を示すようになることも考えられる。例えば、米国特許第５２６６６８３号を参照されたい。この開示は、参照により本明細書に組み込む。現在好ましい担体マトリックスは、外因性、同種異系、またはオートジェネシスによるものである。しかし、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリ酪酸、ならびにこれらの誘導体およびコポリマーを含む合成材料も、適当な担体マトリックスの生成に使用できると考えられる。好ましい合成および天然マトリックス材料、これらの調整方法、本発明のモルホゲン類似体とこれらを製剤する方法、および投与方法は、当技術分野では周知であり、したがって本明細書で詳細に論じることはしない。例えば米国特許第５２６６６８３号を参照されたい。さらに、これらの類似体を、単独で、または組織形態形成に有益な効果を有することが知られている他の物質と組合せて、これらを必要としている哺乳類に投与することができる。このような物質（以下、補助因子）の例には、組織修復および再生を促進し、および／または炎症を抑制する物質が含まれる。骨粗しょう症の個体の骨組織の成長を剌激するのに有用な補助因子の例には、ビタミンＤ₃、カルシトニン、プロスタグランジン、副甲状腺ホルモン、デキサメタゾン、エストロゲン、およびＩＧＦ−ＩまたはＩＧＦ−ＩＩが含まれる。ただしこれらに限定されるわけではない。神経組織の修復および再生に有用な補助因子には、神経成長因子を含めることができる。その他の有用な補助因子には、防腐剤、抗生物質、抗ウイルス剤、抗かび剤、鎮痛剤、および麻酔剤を含む症状緩和補助因子がある。類似体は、製薬上許容できる非毒性の賦形剤および担体との混合によって、製薬組成物に製剤されることが好ましい。前述のとおり、このような組成物は全身への投与に合わせて調製することができる。例えば、非経口投与では、溶液や懸濁液の形態に、経口投与では、タブレットやカプセル剤の形態に、鼻腔内投与では、粉剤、点鼻薬またはエーロゾル剤の形態に調製することができる。組織表面に付着させたい場合には、この組成物に、フィブリノーゲン−トロンビン分散剤、または、例えばＰＣＴ出願書類のＵＳ９１／０９２７５に開示されているもののようなその他の生物接着剤を含めることができる。このＰＣＴ出願書類の開示は参照により本明細書に組み込む。こうすることにより組成物を、塗布、噴霧、またはその他の方法で所望の組織表面に適用することができる。この組成物をヒトまたは他の哺乳類に非経口または経口投与する目的で、治療に有効な量、例えば、適当な濃度のモルホゲン類似体を、所望の効果を誘導するのに十分な時間、標的組織に供給できる量の製剤にすることがきる。この組成物は、組織特異的な機能の保守、老化組織（例えば骨減少骨組織）の組織特異的な表現型の回復などのモホルゲンに関係した生物的応答に対する哺乳類の要求を緩和することが好ましい。当業者なら理解することだが、治療用組成物に記載された化合物の濃度は、投与する薬物の量、使用する化合物の化学的特徴（例えば疎水性）、および投与経路を含むいくつかの因子によって変化する。好ましい薬物投与量も、病気、組織損失または欠陥の種類および程度、特定の患者の全般的な健康状態、選択された化合物の相対的な生物的有効性、化合物の製剤、製剤中の賦形剤の有無およびその種類、ならびに投与経路などの変量によって決まることが多い。一般的に言って、本発明の治療用分子を個体に提供する場合、一般的な投与量は、１日につき体重１ｋｇ当たり約１０ｎｇ〜約１ｇ、好ましい投与量は、１日につき体重１ｋｇ当たり約０．１ｍｇ〜１００ｍｇである。IX ．実施例本発明の実施は、以下の実施例からより完全に理解されるであろう。これらは、例示の目的で本明細書に示したに過ぎず、いかなる意味においても本発明を限定するものとして解釈してはならない。実施例１．鎖間ジスルフィド結合の導入によるｈＯＰ−１二量体の安定化セクションＶ．Ａ．（ｉ）で論じたように、１つまたは複数の鎖間ジスルフィドを追加導入するとｈＯＰ−１二量体がさらに安定すると考えられる。追加の鎖間ジスルフィド結合の導入について次に説明する。前掲の¹zkaynak等（1990年）に記載されているように、ヒトＯＰ−１ｃＤＮＡのＳｍａＩ−ＢａｍＨＩフラグメントが、事前にＥｃｏＲＶおよびＢａｍＨＩで切断したＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＫＳ＋（米カリフォルニア州ラホーヤのStratagene Cloning Systems社から市販されている）にクローニングされる。Ｅ．ｃｏｌｉに形質転換させたのち、生じたコロニーを、ＯＰ−１ｃＤＮＡ挿入断片を含む所望のコロニーが青色となる青色−白色選抜プロセスによってスクリーニングする。正しいクローンが制限スクリーニングによって識別され、予想される以下の制限フラグメントが得られる。制限酵素フラグメント大きさ（ｂｐ）ＥｃｏＲＩ８４，７８９，３４２５ＸｈｏＩ１６１，１２２３，２９１４Ｓａｃ II ９７，６５０，３５５１２つの追加鎖間ジスルフィド架橋を導入するために、Ａｓｎ８３およびＡｓｎ１３０がＣｙｓで置換された二重システイン突然変異体を作成する。システイン突然変異体は、合成オリゴヌクレオチドを使用した部位特異的突然変異誘発、およびＰＣＲまたは部位特異的突然変異誘発法によって調製することができる。例えば、Kunkel等（1985年）Proc．Natl，Acad Sci. USA 822:488、Kunkel等（1985年）Mech．Enzymol．154:367、および米国特許第４８７３１９２号を参照されたい。どちらの突然変異によってもフレームシフトは起こらず、したがって、突然変異誘発生成物で形質転換されたＥ．ｃｏｌｉが白色のコロニーを与える場合は、配列の誤りを示す。適当な突然変異の存在は、通常のジデオキシシークエンシングによって証明される。次いで、適当なオリゴヌクレオチドを使用したオリゴヌクレオチド特異的突然変異誘発によって突然変異遺伝子のＮ末端およびＣ末端にリンカーが導入される。好ましいＮ末端リンカーは非反復配列のＮｏｔＩ部位を導入し、好ましいＣ末端リンカーは、非反復配列のＢｇｌＩＩ部位（ＡＧＡＴＣＴ）が続く突然変異タンパク質遺伝子の終端に、非抑制終止コドンＴＡＡを導入する。生じたそれぞれの突然変異遺伝子は、制限酵素ＮｄｅＩおよびＢｇｌＩＩによってクローニングベクトルから切り出され、分離されて、予めＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩで切断されたｐＥＴベクトル（米マサチューセッツ州ビバリーのNew England Biolab 社製）に独立に連結される。次いで連結生成物がＥ．ｃｏｌｉに形質転換されて、個別の突然変異タンパク質を含み、これを発現する形質転換細胞が識別される。Ｔ７ＲＮＡポリメラーゼの発現（λＣＥ６ファージの感染により始まる）後、突然変異類似体を含む二重システインの発現が誘導される。発現の間に、突然変異類似体が、細胞ペーストから回収された混在粒として生成される。次いで、突然変異タンパク質を、６Ｍグアニジン−ＨＣｌ、ｐＨ８．２の０．２Ｍトリス−ＨＣｌ)０．１Ｍの２−メルカプトエタノール溶液に溶解し、この混合物を、６Ｍ尿素、ｐＨ７．５の２．５ｍＭトリス−ＨＣｌ、および１ｍＭのＥＤＴＡで徹底的に透析する。最終的な濃度が０．１Ｍになるように２−メルカプトエタノールを加え、溶液を室温で培養する。この混合物を、ｐＨ７．５の２．５ｍＭトリス−ＨＣｌ、および１ｍＭのＥＤＴＡを含む緩衝液で徹底的に透析する。折りたたまれた突然変異タンパク質を、表面固定化ＯＰ−１受容体を充填したカラム上で、アフィニティ・クロマトグラフィによって精製する。結合しなかった物質を前述のとおりに水洗によって除去し、特異的ＯＰ−１受容体に結合した物質を溶離させる。精製後、結合の追加による安定化効果を蛍光偏光法によって判定する。例えば、蛍光異方性用に修正した蛍光分光光度計（Photon Technology International 社製）を使用して、モルホゲン類似体（突然変異タンパク質）および天然のｈＯＰ−１の回転率を温度の関数として判定する。突然変異タンパク質二量体が、天然のｈＯＰ−１二量体よりもより高い温度まで低い回転率を示すことが予想される。これは、突然変異タンパク質二量体が、二量体として残留していること、および野生型タンパク質よりも、より高い温度まで安定であることを示す。生じた突然変異タンパク質の生物活性を、天然のｈＯＰ−１の生物活性を判定するために今日までに開発された生物検定を使用して検査することができる。このような生物検定のさまざまな例を以下に説明する。検査を容易にするために以下の生物検定を説明する。損傷を受けた骨、肝臓、腎臓、または神経組織、セメント質および／または歯周靭帯を含む歯周組織、胃腸組織、腎臓組織、ならびに免疫細胞の媒介により損傷を受けた組織の修復または再生への適用に対する形態形成タンパク質または類似体の有効性を検査するための特定のｉｎｖｉｖｏ検定は、一般に公開された文献に開示されており、これらには例えば、ＥＰ０５７５５５５、ＷＯ９３／０４６９２、ＷＯ９３／０５７５１、ＷＯ／０６３９９、ＷＯ９４／０３２００、ＷＯ９４／０６４４９、およびＷＯ９４／０６４２０などが含まれる。当業者ならば、これらの検定のいずれででも過度の実験を要さずに類似体を検査することができよう。Ａ．ラットおよびヒト骨芽細胞に対する分裂誘発効果以下の実施例は、ＯＰ−１モルホゲン類似体が、ｉｎｖｉｔｒｏでの骨芽細胞の増殖を誘導するか否かを判定するのに有用な一般的な検定である。この実施例、および骨芽細胞培養を使用する他の全ての実施例では、ラット濃縮骨芽細胞一次培養を使用することが好ましい。これらの培養は、個別の細胞が異なる分化段階にあるという点で異質性であるが、樹立細胞系から得られた骨芽細胞培養よりも、ｉｎｖｉｖｏでの骨芽細胞の代謝および機能を正確に反映すると信じられている。特に断らない限り、言及する全ての化学薬品は、セントルイスのSigm a Chemical社、サンディエゴのCalbiochem社、およびミルウォーキーのAldrich Chemical社を含むいくつかの販売元から容易に入手できる標準的な市販試薬である。簡潔に説明する。ラット濃縮骨芽細胞一次培養は、例えば、Wong等（1975年） Proc．Natl．Acad Sci．USA 72:3167-3171に記載されているような標準的な手順に従って、新生ラットの頭蓋冠（例えば、米マサチューセッツ州ウィルミントンのCharle s River Laboratories社のロング−エバンス系統の１〜２日齢の動物）の逐次的なコラゲナーゼ消化によって調製される。次いで、ラット骨芽細胞の単個細胞浮遊液を、多数のウェルを有するプレート（例えば、２４ウェルのプレートで、骨芽細胞の濃度を１ウェルあたり５００００個とする）上の、１０％ＦＢＳ（ウシ胎児血清）、Ｌ−グルタミン、およびペニシリン／ストレプトマイシンを含むａｌｐｈａＭＥＭ培地（修正イーグル培地。米ニューヨーク州Ｇｉｂｃｏ社製）中で平板培養する。細胞は、３７℃で２４時間培養する。その後この増殖培地を、１％ＦＢＳを含むａｌｐｈａＭＥＭ培地と置き換え、さらに２４時間培養する。実験のこの時点で、細胞は、血清が除かれた増殖培地中にある。培養細胞を、４つのグループに分割する。すなわち、（１）例えば、０．１、１．０、１０．０，４０．０および８０．０ｎｇのＯＰ−１モルホゲン類似体（突然変異タンパク質）を入れたウェル、（２）０．１、１．０、１０．０および４０．０ｎｇの野生型ＯＰ−１を入れたウェル、（３）０．１、１．０、１０．０および４０．０ｎｇのＴＧＦ−βを入れたウェル、および（４）増殖因子を入れないコントロール・グループである。次いで細胞をさらに１８時間培養し、その後、ウェルを、２ｍＣｉ／ウェルの³Ｈ−チミジンでパルス標識し、さらに６時間培養する。次いで、過剰な標識を、０．１５ＭのＮａＣｌ冷溶液で洗い流し、次いで、２５０ｍｌの１０％トリクロロ酢酸を各ウェルに加え、ウェルを室温で３０分間培養する。次いで細胞を、冷蒸留水で３回洗い、２５０ｍ１の１％ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）を加え３７℃で３０分間、溶解させる。得られた細胞溶解産物を標準的な手段を使用して回収し、細胞のＤＮＡへの³Ｈ− チミジンの取込みを液体シンチレーションによって測定し、細胞の分裂誘発活性の指標とする。この実験では、ＯＰ−１モルホゲン類似体構造（突然変異タンパク質）も天然ＯＰ−１と同様に、³Ｈ−チミジンのＤＮＡへの取込みを剌激し、したがって、骨芽細胞の細胞増殖を促進すると考えられる。対照的に、ＴＧＦ− βの効果は、一過性で二相性であると予想される。さらに、高い濃度でＴＧＦ− βは、骨芽細胞の細胞増殖にあまり大きな効果を持たないと考えられる。骨芽細胞増殖に対するＯＰ−１モルホゲン類似体のｉｎｖｉｔｒｏでの効果を、（正常な成人患者の骨組織から採取し、前述のとおりに調製した）ヒトの一次骨芽細胞、およびヒトの骨肉腫由来の細胞株を使用して評価することもできる。Ｂ．前駆細胞の剌激以下の実施例は、ＯＰ−１モルホゲン類似体が間葉の前駆細胞の増殖を剌激する能力を示すために設計されたものである。有用でナイーブな幹細胞には、従来の手法を使用して骨髄または臍帯血から分離することができる多能性幹細胞（例えばFaradji 等（1988年）Vox Sang．55(3):133-138、またはBroxmeyer 等（198 9年）Proc．Natl．Acad．Sci．USA．86:3828-3832を参照のこと）、および血液から得たナイーブな幹細胞が含まれる。代替として、（例えば培養された中胚葉細胞株起源の）胚細胞を使用することもできる。前駆細胞を取得し、ＯＰ−１モルホゲン類似体が細胞増殖を剌激する能力を判定するための他の方法は、ｉｎｖｉｖｏの供給元から前駆細胞を獲得するものである。例えば、移動性の前駆細胞の流入を可能とする生物適合性の基質材料を、移動性の前駆細胞の流入が起こるのに十分な時間、ｉｎｖｉｖｏ部位に移植する。例えば、Sampath 等（1983年）Proc．Natl．Acad．Sci．USA 80;6591-6595、または米国特許第４９７５５２６号の開示に従って製剤した骨起源のグアニジン抽出された基質を、Ｓａｍｐａｔｈ他の方法に本質的に従ってラットの皮下部位に移植する。３日後、移植片を除去し、基質に付随する前駆細胞を分散させ、培養する。ただし、獲得した前駆細胞は、候補ＯＰ−１モルホゲン類似体ともに後に述べるような標準的な細胞培養条件下でｉｎｖｉｔｒｏで培養する。外部からの剌激がない場合、前駆細胞はそれ自体では培地内で増殖しないか、わずかに増殖するだけである。しかし、生物的に活性なＯＰ−１モルホゲン類似体の存在下で培養された前駆細胞は、ＯＰ−１の場合と同様に増殖する。細胞増殖は、当技術分野で周知の標準法を使用して、視覚的にまたは分光測光法によって判定することができる。Ｃ．モルホゲン誘導性細胞分化ＯＰ−１ベースのモルホゲン類似体による細胞分化の誘導を判定するのには、種々の検定を使用することができる。（１）胚間葉の分化天然のＯＰ−１と同様に、ＯＰ−１モルホゲン類似体（突然変異タンパク質）も細胞分化を誘導すると考えられる。ＯＰ−１モルホゲン類似体の細胞分化を誘導する能力は、当技術分野で十分な記載のある標準的な細胞培養法および細胞染色法を使用して、ＯＰ−１モルホゲン類似体の存在下で初期間葉細胞を培養し、次いで、トルイジン・ブルーで染色して培養細胞を組織学的に研究することによって示すことができる。例えば、下顎骨になる予定のラットの間葉細胞は、段階１１でその上の上皮細胞から分離し、例えば、ＤＭＥＭ（Dulbeccoの修正イーグル培地）６７％、Ｆ−１２培地２２％、ｐＨ７の１０ｍＭＨｅｐｅｓ、２ｍＭのグルタミン、トランスフェリン５０ｍｇ／ｍｌ、インシュリン２５ｍｇ／ｍｌ、微量元素、オレイン酸に結合させたウシ血清アルブミン２ｍｇ／ｍｌ、およびＨＡＴ（０．１ｍＭヒポキサンチン、１０ｍＭアミノプテリン、１２ｍＭのチミジン）を含む無血清既知組成培地中において、標準的な組織培養条件下でｉｎｖｉｔｒｏで培養すると、分化が継続しないことが知られている。しかし、これらの同じ細胞を、その上の内胚葉と接触したままもう１日おいて、段階１２の細胞とした場合には、これらの細胞は、ｉｎｖｉｔｒｏで独自に分化を継続し、軟骨細胞を形成する。骨芽細胞への分化、および最終的な下顎骨への分化には、適当な局所的環境、例えば血管新生環境を必要とする。天然ＯＰ−１の場合と同様に、例えば、１０〜１００ｎｇ／ｍｌのＯＰ−１モルホゲン類似体（突然変異タンパク質）の存在下でｉｎｖｉｔｒｏで培養された段階１１の間葉細胞は、その上の内胚葉細胞から回収した細胞生成物とともに培養した場合に、ｉｎｖｉｔｒｏで分化を継続するのと同じくｉｎｖｉｔｒｏで分化を継続し軟骨細胞を形成することが予想される。この実験を、別の間葉細胞で実施して、異なる組織におけるＯＰ−１モホルゲン類似体の細胞分化能力を示すこともできる。モホルゲン誘導性細胞分化の他の例として、骨芽細胞一次培養株または骨芽細胞様細胞株を使用し、例えば、アルカリホスファターゼ活性、副甲状腺ホルモンによって媒介されるサイクリックＡＭＰ（ｃＡＭＰ）の生成、オステオカルシン合成、および鉱化速度の増強などの分化した骨芽細胞の表現型の特異的な標識であるさまざまな骨細胞標識を検定することによって、ＯＰ−１モルホゲン類似体の骨芽細胞の分化を誘導する能力を、ｉｎｖｉｔｒｏで示すことができる。（２）骨芽細胞内でのアルカリホスファターゼ活性の誘導無血清培地中で培養した骨芽細胞を、例えば、０．１、１．０、１０．０、４０．０、または８０．０ｎｇ／ｍｌ培地の濃度のＯＰ−１モルホゲン類似体、または同様の濃度を有する天然のＯＰ−１またはＴＧＦ−βとともに培養する。７２時間培養したのち、細胞層を、０．５ｍｌの１％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００で抽出する。得られた細胞抽出物を遠心分離し、１００ｍｌの抽出物を、９０ｍｌのパラ−ニトロソ−フェニルフォスフェート（ＰＮＰＰ）／グリセリン混合物に加え、３７℃水浴中で３０分間培養し、１００ｍｌのＮａＯＨで反応を止める。次いでこの試料を、プレート・リーダ（例えば、ＤｙｎａｔｅｃｈＭＲ７００プレート・リーダ。ｐ−ニトロフェノールを標準として使用して４００ｎｍの吸光度を測定する）に通して、アルカリフォスフェート活性の存在および量を測定する。タンパク質濃度はＢｉｏＲａｄ法で測定する。アルカリホスファターゼ活性は、単位／ｍｇタンパク質に換算する。ただし、１単位は、３０分３７℃で遊離したｐ−ニトロフェノール１ｎｍｏｌに相当する。ＯＰ−１モルホゲン類似体は天然ＯＰ−１と同様に、骨芽細胞内でのアルカリホスファターゼの生成を剌激し、これによって骨芽細胞の分化表現型の増殖および発現を促進すると考えられる。ラットの骨芽細胞によるアルカリホスファターゼの生成に対するＯＰ−１モルホゲン類似体の長期的な効果も以下のようにして示すことができる。ラットの骨芽細胞を調製し、前述のとおりにマルチウェル・プレートで培養する。この例では、ウェルあたり５０，０００個のラット骨芽細胞を有する６セットの２４ウェル・プレートを平板培養する。前述のとおりに調製した各プレートのウェルを３つのグループに分割する。すなわち、（１）ＯＰ−１モルホゲン類似体を、例えば培地１ｍｌあたり１ｎｇ入れたグループ、（２）ＯＰ−１モルホゲン類似体を培地１ｍｌあたり４０ｎｇ入れたグループ、および（３）ＯＰ−１モルホゲン類似体を培地１ｍｌあたり８０ｎｇ入れたグループである。次いで各プレートを、時間を変えて培養する。培養時間は、０時間（対照）、２４時間、４８時間、９６時間、１２０時間および１４４時間とする。それぞれの培養期間が経過したのち、細胞層を、０．５ｍｌの１％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００で抽出する。得られた細胞抽出物を遠心分離し、パラ−ニトロソ−フェニルフォスフェート（ＰＮＰＰ）を使用してアルカリフォスファターゼ活性を前述のとおりに測定する。ＯＰ−１モルホゲン類似体は天然ＯＰ−１と同様に、骨芽細胞内でのアルカリホスファターゼの生成を投与量に依存した方法で剌激し、ＯＰ−１モルホゲン類似体の投与量を増やすとアルカリホスファターゼ生成のレベルがさらに上がると考えられる。さらに、ＯＰ−１モルホゲン類似体の剌激による、処理した骨芽細胞中のアルカリホスファターゼ生成レベルの上昇は、長時間持続すると考えられる。（３）ＰＴＨによって媒介されたｃＡＭＰの誘導この実験は、ラット骨芽細胞内での、副甲状腺ホルモンによって媒介されたｉｎｖｉｔｒｏのｃＡＭＰ生成に対するＯＰ−１モルホゲン類似体の効果を検査するために設計された。以下に簡潔に説明する。ラットの骨芽細胞を調製し、前述のとおりにマルチウェルプレートで培養する。次いで培養細胞を４つのグループに分割する。これらはすなわち、（１）ＯＰ−１モルホゲン類似体を、例えば培地１ｍｌあたり１．０、１０．０、および４０．０ｎｇ入れたウェル、（２）例えば、同じ濃度範囲の天然ＯＰ−１を入れたウェル、（３）例えば、同じ濃度範囲のＴＧＦ−βを入れたウェル、および（４）増殖因子を入れないコントロール・グループである。ついでこのプレートをさらに７２時間培養する。７２時間経過後、細胞を、０．５％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）および１ｍＭの３−イソブチル−１−メチルキサンチンを含む培地で２０分間処理し、次いで、ヒトの組換え型副甲状腺ホルモン（ｈＰＴＨ。セントルイスのＳｉｇｍａ社製）を２００ｎｇ／ｍｌの濃度で半数のウェルに加え、１０分間処理する。次いで細胞層を、０．５ｍｌの１％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００でそれぞれのウェルから抽出する。次いで、ｃＡＭＰの濃度を放射免疫測定キット（例えば、米国イリノイ州アーリントンハイツのＡｍｅｒｓｈａｍｎ社製キット）を使用して測定する。ＯＰ− １モルホゲン類似体はＯＰ−１と同様に、単独で、ＰＴＨによって媒介されたｃＡＭＰ応答の増大を剌激し、これによって骨芽細胞の分化表現型の増殖および発現を促進すると考えられる。（４）オステオカルシン生成の誘導オステオカルシンは、骨芽細胞によって合成された骨特異的タンパク質であり、ｉｎｖｉｖｏでの骨鉱化速度に対して不可欠な役割を果たす。血清中のオステオカルシン濃度の変動は、ｉｎｖｉｖｏでの骨芽細胞活性および骨形成の標識として使用される。濃縮骨芽細胞培養でのオステオカルシン合成の誘導は、ｉｎｖｉｔｒｏでのＯＰ−１モルホゲン類似体の有効性を示すのに使用される。ラットの骨芽細胞を調製し、前述のマルチウェル・プレートで培養する。この実験では、培地に１０％ＦＢＳを補い、２日目に、１０ｍＭの新鮮なβ−グリセロリン酸（Ｓｉｇｍａ社製）を補った新鮮な培地を細胞に与える。５日目から以後週に２回、細胞に、先に述べた全ての成分および新鮮なＬ（＋）−アスコルビン酸塩を含む完全鉱化培地を最終的な濃度が５０ｍｇ／ｍｌ培地になるように与える。次いで、ＯＰ−１モルホゲン類似体を、例えば、０．１％トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）を含む５０％アセトニトリル（または５０％エタノール）に溶解して、モルホゲン類似体として５ｍｌ／ｍｌ培地以下の濃度でウェルに直接に加える、対照のウェルには溶媒賦形剤のみを与える。次いで細胞に再び栄養補給し、この調整培地を、標準プロテアーゼ・インヒビタを含む標準放射免疫測定バッファで１：１に希釈し、オステオカルシンの検定まで−２０℃で保存する。オステオカルシン合成は、市販のオステオカルシン特異的抗体を使用した標準放射免疫測定法によって測定する。鉱化作用は、固定細胞層に対する修正ｖｏｎＫｏｓｓａ染色法を使用して長期間培養株（１３日）に対して判定する。０．９％冷ＮａＣｌで洗浄後、細胞を、新鮮な４％パラホルムアルデヒド中で２３℃１０分間固定する。次いで、固定した細胞の内因性アルカリホスファターゼを、市販のキット（Ｓｉｇｍａ社製）を使用してｐＨ９．５で１０分間染色する。次いで、紫に染色された細胞を、メタノールで脱水し、風乾する。３％ＡｇＮＯ₃中で３０分間暗所培養した後、水洗した試料を、２５４ｎｍの紫外線光で３０秒間露光し、黒銀に染色されたリン酸塩粒を発現させる。個別の鉱化焦点（少なくとも２０ｍｍの大きさ）を解剖顕微鏡下で計数し、粒数／培養株に換算する。ＯＰ−１モルホゲン類似体は、天然ＯＰ−１と同様に、骨芽細胞培養株中でのオステオカルシン合成を剌激すると考えられる。さらに、ＯＰ−１モルホゲン類似体に反応して増大するオステオカルシン合成は、投与量依存であり、そのため、１３日間培養後の基底レベルをはるかに超えて増大すると考えられる。オステオカルシン合成の増強は、ラット・オステオカルシン特異的プローブを使用した高いオステオカルシンｍＲＮＡメッセージ（２０倍の増大）の検出によっても確認することができる。さらに、オステオカルシン合成の増大は、鉱質粒の出現によって判定される骨芽細胞長期培養株中の鉱化作用の増大と相関する。ＯＰ−１モルホゲン類似体は、天然ＯＰ−１と同様に、無処理の培養株に比べ、初期鉱化速度をかなり増大させる。（５）モルホゲン誘導性ＣＡＭ発現ＢＭＰ／ＯＰファミリ（第６図参照）の構成要素は、それらの形態形成誘導の一部として、ＣＡＭ、特にＮ−ＣＡＭの発現を誘導する（同時係属中の米国特許出願第９２２８１３号を参照のこと）。ＣＡＭは、組織発達の必須の段階として全ての組織で同定される形態調節分子である。Ｎ−ＣＡＭは、少なくとも３つのアイソフォーム（Ｎ−ＣＡＭ−１８０、Ｎ−ＣＡＭ−１４０およびＮ−ＣＡＭ−１２０であり、「１８０」、「ｌ４０」、および「１２０」は、ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動によって測定したアイソフォームの見かけの分子量を表す）を含み、発達中の組織では少なくとも一時的に、神経組織では永続的に発現される。Ｎ−ＣＡＭ−１８０およびＮ−ＣＡＭ−１４０アイソフォームは、発達中および成体の両方の組織で発現される。Ｎ−ＣＡＭ−１２０アイソフォームは、成体の組織にのみ見られる。他の神経ＣＡＭにはＬ１がある。ＯＰ−１ベースのモルホゲン類似体のＣＡＭ発現を剌激する能力は、ＮＧ１０８−１５細胞を使用した以下の実験計画を使用して示すことができる。ＮＧ１０８−１５は、形質転換させたハイブリッド細胞株（神経芽細胞腫×神経膠腫。米国メリーランド州ロックビルのAmerica Type Culture Collection（ＡＴＣＣ））であり、形質転換された胚のニューロンの形態特性を示す。後述する実施例Ｄで述べるように、無処理のＮＧ１０８−１５細胞は、線維芽細胞の形態、またはわずかに分化した形態を呈し、通常は発達中の細胞に関係したＮ−ＣＡＭの１８０および１４０アイソフォームのみを発現する。ｖｇ／ｄｐｐサブグループの構成要素で処理すると、これらの細胞は、成体のニューロンの形態特性を示し、３つの全てのＮ−ＣＡＭアイソフォームの発現レベルが増強される。この例では、ＮＧ１０８−１５細胞を、濃度を段階的に増大させたＯＰ−１モルホゲン類似体または天然ＯＰ−１の存在下で標準的な培養手順を使用して４日間培養し、標準的なウエスタン・ブロット分析を細胞抽出物全体について実施する。Ｎ−ＣＡＭアイソフォームは、３つの全てのアイソフォームと交差反応する抗体ｍＡｂＨ２８．１２３（セントルイスのＳｉｇｍａＣｈｅｍｉｃａｌ社製）を用いて検出される。異なるアイソフォームは、電気泳動ゲル上での移動性の違いによって識別可能である。対照ＮＧ１０８−１５細胞（無処理）は、１４０ｋＤａアイソフォームおよび１８０ｋＤａアイソフォームの両方を発現するが、１２０ｋＤａアイソフォームは発現しない。これらは、最高１００ｍｇのタンパク質を使用したウエスタン・ブロット分析によって判定される。ＮＧ１０８−１５細胞をＯＰ−１モルホゲン類似体で処理すると、天然ＯＰ−１で処理した場合と同様に、１８０ｋＤａおよび１４０ｋＤａアイソフォームの発現、および１２０ｋＤａアイソフォームの誘導が、投与量に依存して増大すると考えられる。さらに、ＯＰ−１モルホゲン類似体によって誘導されたＣＡＭの発現は、天然ＯＰ−１によって誘導されるものと同様に、組織学的に判定される細胞凝集と相関する。（Ｄ）ＯＰ−１モルホゲン類似体誘導性の形質転換表現型の再分化ＯＰ−１モルホゲン類似体は、天然ＯＰ−１と同様に、非形質転換細胞の形態特性への形質転換細胞の再分化も誘導する。以下に提供する実施例で、モルホゲンによって誘導されたニューロン起源のヒト形質転換細胞株（ＮＧ１０８−１５）、マウス神経芽細胞腫細胞（ＮＩＥ−１１５）、およびヒト胚癌細胞の非形質転換細胞の形態特性への再分化を詳しく述べる。前述のとおり、ＮＧ１０８−１５は、神経芽細胞腫×神経膠腫細胞の融合によって形質転換させたハイブリッド細胞株（米国メリーランド州ロックビルのＡＴＣＣより入手）であり、例えば、線維芽細胞の形態を有するなど形質転換された胚ニューロンの形態特性を示す。特に、この細胞は、多角形の細胞体、短いスパイク状の突起を有し、隣接した細胞との接触はわずかでしかない。無血清既知組成培地中で培養したＮＧ１０８−１５細胞を、０．１〜３００ｎｇ／ｍｌのモルホゲン類似体または天然ＯＰ−１とともに４時間培養すると、細胞形態変化が投与量に依存して規則正しく誘導される。例えば、ＮＧ１０８−１５細胞を、ポリ−Ｌ−リジンでコーティングされた６枚のウェル・プレート上で継代培養する。各ウェルは、２．５ｍｌの既知組成培地中に４０〜５０，０００個の細胞を含む。３日目に、０．０２５％のトリフルオロ酢酸を含む６０％エタノールに溶解したＯＰ−１モルホゲン類似体または天然ＯＰ−１を２．５ｍｌ、各ウェルに加える。培地は毎日、新しいモルホゲンのアリコートと交換する。ＯＰ−１モルホゲン類似体は、ＯＰ−１と同様に、細胞体の球状化、相輝度の増大、短い神経突起の伸張、および細胞の超微細構造の大幅な変更を含む投与量に依存した形質転換細胞の再分化を誘導すると考えられる。数日後、処理細胞は、上皮様のシートを形成し始め、次いで、顕微鏡検査によって視覚的に判定できる高密度の多層細胞凝集となると考えられる。さらに、再分化は、これに関連したＤＮＡ合成、細胞分裂、または細胞の生存率の変化を生じることなく起こり、この形態変化が、細胞分化のための二次的なもの、またはモルホゲンの毒的効果によって起きるものではないと考えられる。さらに、モルホゲン類似体によって誘導される再分化は、類似の実験において形質転換細胞の分化を剌激することが示されたブチラート、ＤＭＳＯ、レチノイン酸、Ｆｏｒｓｋｏｌｉｎなどの他の分子とは違い、³Ｈ−チミジンの取込みによって判定される細胞分裂を抑制しないと考えられる。したがって、ＯＰ−１モルホゲン類似体は、天然ＯＰ −１と同様に、再分化誘導後も細胞安定性および生存率を維持すると考えられる。したがって本明細書に記載したモルホゲンは、神経系の新形成および腫瘍性の病変の治療、特に網膜芽細胞腫および神経膠腫を含む神経芽細胞腫の治療に有用な治療薬を提供するであろう。（Ｅ）表現型の維持ＯＰ−１モルホゲン類似体はさらに、天然ＯＰ−１と同様、細胞の分化表現型の維持に使用することができる。この適用は、特に、老化または休止した細胞における表現型の持続した発現を誘導するのに有用である。（１）ｉｎｖｉｔｒｏ表現型維持モデルモルホゲンの表現型維持能力の判定は容易である。当技術分野で十分な記載のある標準的な組織培養条件下でｉｎｖｉｔｒｏの継代を繰り返すと、いくつかの分化細胞は、老化または休止した細胞となる（例えば、Culture of Animal Ce lls: A Manual of Basic Techniques，C．R．Freshney，ed.，Wiley，1987 を参照されたい）。しかしこれらの細胞を、ＯＰ−１などのモルホゲンともにｉｎｖｉｔｒｏで培養すると、細胞は剌激されて、何回もの継代を通してそれらの表現型の発現を維持する。例えば、培養骨肉腫細胞および頭蓋冠細胞などの培養骨芽細胞のアルカリホスファターゼ活性は、ｉｎｖｉｔｒｏでの継代を繰り返すと大幅に低下する。しかし、細胞がＯＰ−１の存在下で培養された場合には、アルカリホスファターゼ活性が長期間にわたって維持される。同様に、筋細胞の表現型発現もモルホゲンの存在下で維持される。この実験では、実施例Ａに記載したとおりに骨芽細胞を培養する。細胞を、グループに分割し、濃度を変えた（例えば０〜３００ｎｇ／ｍｌ）ＯＰ−１モルホゲン類似体または天然ＯＰ−１で培養し、標準的な手法を使用して複数回（例えば３〜５回）継代させる。次いで、継代させた細胞のアルカリホスファターゼ活性を、分化細胞の代謝機能の指標として例Ｃで説明した方法で検査する。ＯＰ−１モルホゲン類似体が存在しない条件で培養された骨芽細胞は、ＯＰ−１モルホゲン類似体または天然ＯＰ−１で処理した細胞と比べると、低いアルカリホスファターゼ活性を示すと考えられる。（２）ｉｎｖｉｖｏ表現型維持モデル標準的なラットの骨粗鬆症モデルを使用して、表現型の維持能力をｉｎｖｉｖｏでも示すことができる。雌のロング・エバンス・ラット（米国マサチューセッツ州ウィルミントンのCharles River Laboratories社）に、標準的な外科手法を使用して、偽手術（対照動物）、または卵巣摘出手術を実施し、エストロゲン生成の低下に起因する骨粗鬆症条件を作り出す。卵巣摘出手術から例えば２００日経過後、ラットに、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）またはモルホゲン（例えば、１〜１００ｍｇのＯＰ−１モルホゲン類似体または天然ＯＰ−１）を（例えば毎日の尾静脈注射によって）２１日間、全身投与する。次いでラットを死亡させ、標準手法を使用して文献および前述のとおりに、血清アルカリホスファターゼ濃度、血清カルシウム濃度、および血清オステオカルシン濃度を測定する。ＯＰ−１モルホゲン類似体で処理したラットは、ＯＰ−１で処理したラットと同様に、高いオステオカルシンおよびアルカリホスファターゼ活性レベルを示すと考えられる。骨幹脛骨の組織形態計測分析によれば、ＯＰ−１モルホゲン類似体で処理した動物の骨の質量は、無処理卵巣摘出ラットに比べて改善されると考えられる。Ｆ．前駆細胞集団の増殖前駆細胞を剌激して、ｉｎｖｉｖｏまたはｅｘｖｉｖｏで増殖させることができる。ＯＰ−１モルホゲン類似体を含む無菌製剤を注射またはその他の方法で個体に提供することによって、ｉｎｖｉｖｏで細胞を剌激することができると考えられる。例えば、適当な濃度のＯＰ−１モルホゲン類似体を注射またはその他の方法で個体の骨髄に提供することによって、個体の造血多分化能性幹細胞集団を剌激して増殖させることができる。増強すべき集団の前駆細胞に、形態形成的に活性なＯＰ−１モルホゲン類似体を、細胞の増殖を剌激するのに十分な濃度で十分な時間、無菌条件下で接触させることによって前駆細胞をｅｘｖｉｖｏで剌激することができる。適当な濃度および剌激時間は、前記の実施例Ａで説明した手順に本質的に従って経験的に決定することができる。ＯＰ−１モルホゲン類似体の濃度を約０．１〜１００ｎｇ／ｍｌ剌激時間を約１０分〜約７２時間、より一般的には約２４時間とすれば、約１０⁴〜１０⁶個の細胞の細胞集団を剌激するのには一般に十分であると考えられる。次いで剌激した細胞を、例えば細胞の適当なｉｎｖｉｖｏ位置に注射することによって個体に提供する。適当な生物適合性の前駆細胞は、当技術分野で周知の方法、または前述の方法によって得ることができる。Ｇ．損傷を受けた、または病気状態にある組織の再生ＯＰ−１モルホゲン類似体を使用して、病気状態にある、または損傷を受けた哺乳動物の組織を修復することができると考えられる。修復すべき組織をまず評価し、必要に応じて、過剰な壊死または妨害瘢痕組織を、例えば、切除、あるいは医療分野で周知の外科的、化学的、またはその他の方法によって除去することが好ましい。次いで外科移植または注射によってＯＰ−１モルホゲン類似体を、生物適合性の無菌組成物の一部として組織位置に直接提供する。モルホゲン類似体は、経口または非経口投与によって全身に提供してもよい。代わりに、形態形成的に活性なＯＰ−１モルホゲン類似体によって剌激された前駆細胞を含む生物適合性の無菌組成物を組織位置に提供してもよい。その位置に存在する病気状態にあるか、または損傷を受けた組織は、前駆細胞の増殖および組織特異的分化を可能とする適当な基質を提供する。さらに、損傷を受けたか、または病気状態にある組織位置、特に、外科手段によってさらに損傷を受けた組織位置は、形態形成的に許容の環境を提供する。ある適用（例えば、骨粗鬆症の治療およびその他の骨再造形サイクルの異常）に対しては、ＯＰ−１モルホゲン類似体の全身提供で十分であることがある。いくつかの状況、特に組織の損傷が広範囲にわたる状況では、組織が、細胞の流入および増殖に十分な基質を提供することができない。これらの状況では、ＯＰ−１モルホゲン類似体によって剌激された前駆細胞を、後述のいずれかの手段によって調製され、製剤された生物適合性の適当な基質とともに組織位置に提供することが必要になる。この基質は、ｉｎｖｉｖｏにおいて生分解性であることが好ましい。この基質は、組織特異的であること、および／または７０〜８５０μｍ、最も好ましくは１５０〜４２０μｍの大きさの多孔質粒子を含むことができる。ＯＰ−１モルホゲン類似体を使用して、免疫／炎症反応によって媒介された組織損傷、および損傷後の瘢痕組織形成を防止、または実質的に抑制することもできる。ＯＰ−１モルホゲン類似体を、新しく損傷を受けた組織位置に提供して、その位置で組織形態形成を誘導し、移動性の線維芽細胞の非分化結合組織への凝集を防ぐことができる。ＯＰ−１モルホゲン類似体は、損傷から５時間以内に組織位置に無菌製剤として注射されることが好ましい。免疫性／炎症性の反応が、例えば外科またはその他の攻撃的な臨床治療の一部として不可避的に、または故意に誘導される場合には、治療前または治療時に、ＯＰ−１モルホゲン類似体を予防的に患者に提供することが好ましい。ＯＰ−１モルホゲン類似体が骨の組織形態形成を誘導するか否か示すための実験計画を以下に説明する。（１）ＯＰ−１モルホゲン類似体誘導性の骨形態形成モルホゲン類似体の形態形成活性を示し、これを評価するのに特に有用な哺乳類組織のモデル系は、当技術分野では周知で、例えば、参照により本明細書に組み込む米国特許第４９６８５９０号に記載されている軟骨内骨組織の形態形成モデルである。軟骨内骨形成を誘導する能力には、前駆細胞の増殖、および軟骨芽細胞および骨芽細胞への分化を誘導する能力、軟骨基質形成、軟骨石灰化および骨再造形を誘導する能力、および適当な血管の形成および造血骨髄の分化をを誘導する能力が含まれる。形態形成物質が置かれる局所環境は組織形態形成にとって重要である。本明細書で使用する「局所環境」という用語は、組織の構造基質および組織を取り巻く環境を含むものと理解されたい。例えば、モルホゲンによって剌激された細胞は、それらの増殖のために適当な固定下層を必要とすることに加えて、それらの分化の組織特異性を導くシグナルを必要とする。これらのシグナルは組織ごとに異なり、これに細胞表面マーカを含めることができる。さらに、新しい組織の血管新生には血管新生を支援する局所環境が必要となる。以下に、ＯＰ−１モルホゲン類似体、およびＯＰ−１モルホゲン類似体を含む組成物のｉｎｖｉｖｏ形態形成の有用性を評価するさまざまな手順を説明する。組成物は、当技術分野で周知の手順に従って、哺乳類に注射するかまたは外科的に移植することができる。例えば、外科的な移植生物検定を、Sampath 等（19 83年）Proc．Natl．Acad．Sci．USA 80:6591-6595、および米国特許第４９６８５９０号の手順に本質的に従って実施することができる。ｉｎｖｉｖｏでの形態形成の程度、特に組織修復手順におけるそれを判定するのには組織学的な切片化および染色が好ましい。切除された移植片をボーインズ溶液で固定し、パラフィンに埋め込み、６〜８μｍの切片に切断する。トルイジン・ブルーまたはヘモトキシリン／コシンによる染色は、新しい組織の最終的な発達を明確に示す。移植が、新しく誘導された組織を含むか否かを判定するには、通常１２日間の移植で十分である。良好な移植は、誘導された組織の発達段階を通じて制御された経過を示すので、発生した組織特異的な事象を同定し、これをたどることができる。例えば、軟骨内骨形成には以下の段階が含まれる。（１）１日目、白血球、（２）２日目および３日目、間葉細胞の移動および増殖、（３）５日目および６日目、軟骨細胞出現、（４）７日目、軟骨基質の形成、（５）８日目、軟骨石灰化、（６）９日目および１０日目、血管の侵入、骨芽細胞の出現、および新しい骨の形成、（７）１２〜１８日目、破骨細胞の出現、ならびに骨再造形および移植基質溶解の開始、（８）２１日目、生じた小骨内における造血骨髄の分化。組織学的評価に加えて、生物学的標識を組織形態形成の標識として使用することができる。有用な標識には、移植が均質化した後に（例えば分光測光法などで）その活性を検定することができる組織特異的酵素が含まれる。これらの検定は、計量、および移植片を動物から除去したあと組織形成の評価をすばやく得るのに有用である。例えば、アルカリホスファターゼ活性を骨形成の標識として使用することができる。標識タンパク質（例えば放射標識されたタンパク質）を使用して、新しい組織内での局在を判定するか、および／または標準的な標識実験計画およびパルス標識追跡手順を使用して循環系からのそれらの消失を監視することによって、全身に提供されたＯＰ−１モルホゲン類似体の取込みを追跡することができる。ＯＰ−１モルホゲン類似体を、その取込みを監視し、ＯＰ−１モルホゲン類似体の濃度と相関させることができる組織特異的分子タグと共に提供してもよい。一例をあげると、雌のラットの卵巣を除去すると、骨のアルカリホスファターゼ活性が低下し、このラットは、（実施例Ｅに記載したように）骨粗鬆症にかかりやすくなる。次に、ＯＰ−１モルホゲン類似体をこの雌のラットに与えた場合には、全身のカルシウム濃度の低下が見られることがある。これは、与えたＯＰ−１モルホゲン類似体の存在と相関したものであり、アルカリホスファターゼ活性の増大と符合したものであると予想される。実施例２．ｈＯＰ−１二量体の可溶性の増強セクションＶ．Ａ（ｉｉ）で述べたように、溶媒が接触できるｈＯＰ−１二量体の表面に位置する疎水性のアミノ酸残基を、より極性の強い、すなわち親水性のアミノ酸残基で置き換えることによって、ｈＯＰ−１二量体の可溶性を増強することができると考えられる。この実施例ではこのような方法について説明する。前掲の¹zkaynak等（1990年）に記載されているヒトＯＰ−１ｃＤＮＡのＳｍａＩ−ＢａｍＨＩフラグメントをベクトルにクローニングして、国際出願ＰＣＴ／ＵＳ９４／１２０６３においてｐＷ２４と呼ばれるプラスミドと同様のプラスミドを生成させる。この出願の開示は、参照により本明細書に組み込む。ｐＷ２４プラスミドは、ＣＭＶ（サイトメガロウィルス）のＩＥ（immediate early ）プロモータの転写調節下でＯＰ− １ｃＤＮＡを含む。ｐＷ２４上の選択マーカは、細胞増殖抑制剤Ｇ４１８に対する耐性を与えるネオマイシン遺伝子である。ｐＷ２４プラスミドはさらにＳＶ４０の複製起点（ｏｒｉ領域）を使用する。初期ＳＶ４０プロモータを使用して、ネオマイシン標識遺伝子の転写を駆動する。次いで位置６３のアラニンを、例えば、合成オリゴヌクレオチド、およびＰＣＲ法または部位特異的突然変異誘発法を使用した部位特異的突然変異誘発によってセリンに変異させる。例えば、Kunkel等（1985年）Proc．Natl．Acad．Sci.US A 822:488、Kunkel等（1985年）Meth．Enzymol．154:367、および米国特許第４８７３１９２号を参照のこと。得られた変異は二重脱酸素シーケンスによって確立される。ＯＰ−１の発現を増強するための三重トランスフェクション手順にｐＷ２４とともに使用する２つの追加のベクトルが開発されている。１つのベクトルは、ＤＨＦＲ遺伝子の翻訳剌激としてＶＡ１遺伝子の下でアデノウイルスＥ１Ａ遺伝子を使用する。もう一方のベクトルは、チミジンキナーゼプロモータの制御の下でアデノウイルスＥ１Ａ遺伝子をトランス作用転写アクチベータとして使用する。ｐＨ１１３０およびｐＨ１１７６として知られる両方の追加ベクトル、ならびに好ましいトランスフェクションおよびスクリーニング法は、国際出願ＰＣＴ／ＵＳ９４／１２０６３に記載されている。これを簡潔に説明する。三重トランスフェクションは、リン酸カルシウム共沈手順を使用して実施される。ＣＨＯ細胞を、５％または１０％のウシ胎児血清（ＦＢＳ）、可欠アミノ酸、グルタミン、および抗生物質（ペニシリンおよびストレプトマイシン）を含むαＭＥＭ培地中で培養する。安定細胞株のトランスフェクションは、１〜２×１０⁶個の細胞を９ｃｍペトリ皿に接種することによって実施する。最長で２４時間の培養期間の後、リン酸カルシウム共沈後に、標準的な手法を使用したグリセロール・ショックを与えることによって、各ペトリ皿を、１０〜３０μｇの等モルのトータルベクトルＤＮＡでトランスフェクトさせる。細胞を、増殖培地中で３７℃で２４時間培養し、次いで選択培地に移す。全ての培養には、週に１度または２度、新鮮な選択培地を補給する。１０〜２１日後、耐性コロニーをピックアップし、タンパク質生産の検定を実施する。約３０の個別のクローンを選択して、２４ウェルのペトリ皿に移し、血清を含む培地中で増殖させ、集密させる。生き残った全てのクローンの調整培地について、標準的なＥＬＩＳＡ（enzyme-linked immunosorbent assay）またはウエスタン・ブロット分析を使用してタンパク質生産のスクリーニングを実施する。これらの検定の実験計画法、およびこれらの検定に使用する抗体の生成法は、当技術分野で十分な記載がある（例えば前掲Ａｕｓｕｂｅｌを参照されたい）。このような条件下で、ＶＡｌおよびＥ１Ａ遺伝子は一般に、共力作用で、トランスフェクトされた非増幅のＣＨＯ細胞におけるＯＰ−１の発現を増強するように働く。次いで、スクリーニング実験計画によって同定された候補細胞株を、１００ｍｍペトリ皿１０個に、プレートあたり５０または１００細胞の密度で接種し、薬物濃度をより高くする（例えば１．０μｍ）。１０〜２１日間の増殖の後、このクローンを、クローニング・シリンダおよび標準的な手順を使用して分離し、２４ウェルのプレートで培養する。次いで、クローンのＯＰ−１発現を、標準手順を使用したウェスタン・イムノブロット法によってスクリーニングし、ＯＰ−１発現レベルを親株と比較する。親細胞株よりも高いタンパク質生産を示す候補細胞をさらに平板培養し、さらに高い薬物濃度で（例えば５〜２０μｍ）増殖させる。一般に、これらの「増幅」クローニング段階を２〜３回繰り返すだけで、高いタンパク質生産力を有する細胞株を得ることができる。生産力の高い有用細胞株はさらにサブクローニングし、細胞株の均質性および生成物の安定性を向上させる。タンパク質を大規模に、例えば少なくとも２リットルの規模で生産するのに現時点で好ましい方法は、宿主ＣＨＯ細胞の浮遊培養によるものである。ＣＨＯ細胞は付着を好むが、浮遊モードの培養で増殖するように適合させることもできる。細胞は、トリプシン処理して培養皿から取り出し、１０％ＦＢＳを含む増殖培地に導入して完全に浮遊させ、単個細胞浮遊液を得る。この単個細胞浮遊液をスピナー・フラスコに導入し、９５％空気／５％ＣＯ₂、３７℃の加湿培養器中に放置する。この細胞を、血清濃度を段階的に低くした培地中である期間、継代培養する。適応させた細胞を特に、約２×１０⁵細胞／ｍｌの初期生存可能細胞密度で３Ｌスピナー・フラスコに導入する。好ましい培地は、２％ＦＢＳを補ったＤＭＥＭ／Ｆ−１２（１：１）（米ニューヨークのＧＩＢＣＯ社製）であり、好ましい撹拌は、パドル・インペラで約５０〜６０ｒｐｍである。７日後、培地を回収し、１５００ｒｐｍで遠心分離し、澄んだ調整培地を４℃で保存する。組換え形態形成タンパク質を精製する代表的な精製方法は、３段階のクロマトグラフィ（Ｓ−セファロース、フェニル−セファロースおよびＣ−１８ＨＰＬＣ）を含む。この方法は、国際出願ＰＣＴ／ＵＳ９４／１２０６３に記載されている。培地を含むモルホゲン類似体を、６Ｍ尿素、０．０５ＭＮａＣｌｐＨ７．０の１３ｍＭＨＥＰＥＳに希釈し、これを、強い陽イオン交換体の働きをするＳ−セファロース・カラムに充填する。続いてこのカラムを、２段階の塩溶離で展開させる。第１の溶離には、０．１ＭのＮａＣｌを含む溶液を使用し、第２の溶離には、６Ｍ尿素、０．３ＭＮａＣｌ、ｐＨ７．０の２０ｍＭＨＥＰＥＳを含むバッファを使用する。硫酸アンモニウムを、０．３ＭＮａＣｌ画分に加え、６Ｍ尿素、１Ｍ（ＮＨ₄）₂Ｓ０₄、０．３ＭＮａＣｌ、ｐＨ７．０の２０ｍＭＨＥＰＥＳを含む溶液を得る。次いでこの試料を、１Ｍ（ＮＨ₄）₂ＳＯ₄の存在下でフェニル−セファロースカラムに充填する。次いでこのカラムを、硫酸アンモニウムの濃度を順に低下させた２段階の溶離で展開させる。第１の溶離には０．６Ｍ（ＮＨ₄）₂ ＳＯ₄を使用し、第２の溶離には、６Ｍ尿素、０．３ＭＮａＣｌ、ｐＨ７．０の２０ｍＭＨＥＰＥＳバッファを使用する。第２の溶離から回収した物質を水、続いて３０％アセトニトリル（０．１％ＴＦＡ）で透析し、次いでこれを、Ｃ−１８逆相ＨＰＬＣカラムに適用する。精製されたモルホゲン類似体をＨＰＬＣカラムから回収する。Ａｌａ６３→Ｓｅｒ６３突然変異タンパク質の分配係数を野生型ｈＯＰ−１二量体のそれと比較することによって、得られたモルホゲン類似体の増強された可溶性を測定する。Ａｌａ６３→Ｓｅｒ６３突然変異タンパク質は天然ｈＯＰ−１よりも高い溶解度を有すると考えられる。疎水性から親水性への複数の置換を有するこれ以外の追加の突然変異タンパク質を生成し、これを、この実施例で説明した実験計画を使用して特性づけすることができると考えられる。得られたモルホゲン類似体の生物活性は、実施例１で述べた１つまたは複数のＯＰ−１活性検定を使用して測定することができる。実施例３．フィンガ１、フィンガ２およびヒールペプチドの生物活性この実施例で述べるｈＯＰ−１ベースのペプチドは、ｈＯＰ−１の三次元構造の決定に先だって生成され、特性づけられたものである。これらのペプチドは、ｈＯＰ−１の生物活性の作動物質または拮抗物質の働きをする。ｈＯＰ−１結晶構造に基づいたさらなる改良、例えば、ｈＯＰ−１の対応する領域の形状をより厳密に模倣したコンホメーションにペプチドを拘束するペプチドの環化に、より適した部位を選択することによって、このようなｈＯＰ−１ベースのペプチドの作動または拮抗特性を増強することができる。以下の実験では使用する全てのペプチド、およびこれらと成熟ｈＯＰ−１のアミノ酸配列との関係を第１２図に示す。フィンガ１ベースのペプチドをＦ１−２で示し、ヒールベースのペプチドをＨ−１、Ｈ−ｎ２およびＨ−ｃ２、フィンガ２ベースのペプチドをＦ２−２およびＦ２−３で示す。ペプチド内の潜在的なジスルフィド結合がそれぞれのペプチドについて示されている。全てのペプチドは、標準的なペプチド合成機で、メーカの指示に従って合成した。ペプチドは使用前に、デプロテクトし、酸化反応によって環化させ、樹脂から切断した。第１の実験では、濃度を段階的に高めたペプチドＦ２−２（第１３Ａ図）、Ｆ２−３（第１３Ｂ図）、Ｈｎ−２（第１３Ｃ図）およびＨｃ−２（第１３Ｄ図）を、単独で（白棒部分）、または４０ｎｇ／ｍｌの可溶性ＯＰ−１とともに（黒棒部分）ＲＯＳ細胞に加え、アルカリホスファターゼ活性に対するこれらの効果を測定した。可溶性ＯＰ−１は、プロドメインがＯＰ−１の成熟部分に取り付いている形態のＯＰ−１である（Ｗ０９４／０３６００参照のこと）。直線で示した基底のアルカリホスファターゼ活性は、可溶性ＯＰ−１およびペプチドがともに存在しない条件で培養した細胞のアルカリホスファターゼ活性を表す。第１３Ａ図において、約６０μＭの濃度のペプチドＦ２−２は、基底アルカリホスファターゼレベルを２倍にすることを示しており、可溶性ＯＰ−１の存在下では、可溶性ＯＰ−１単独の場合に比べて、アルカリホスファターゼ活性を約２０％高める。第１３Ｂ図では、約０．０１μＭの濃度のペプチドＦ２−３が、基底アルカリホスファターゼレベルを高めることを示しており、可溶性ＯＰ−１の存在下では、可溶性ＯＰ−１単独の場合に比べて、アルカリホスファターゼ活性を約２０％高める。したがって、このアルカリホスファターゼ検定においてペプチドＦ２−２およびＦ２−３はともに、弱いＯＰ−１作動物質として働くことを示した。第１３Ｃ図において、ぺプチドＨ−ｎ２は、単独でも、可溶性ＯＰ−１との組合せにおいても、アルカリホスファターゼ活性に対する効果を全く示さないかまたは少ししか示していない。第１３Ｄ図では、約５μＭを超える濃度のペプチドＨ−ｃ２が、可溶性ＯＰ−１の活性に拮抗的に働くことを示している。第２の実験では、無標識の可溶性ＯＰ−１および無標識のペプチドＦ１−２、Ｆ２−２、Ｆ２−３、Ｈ−ｎ２およびＨ−ｃ２が、¹²⁵Ｉで標識したＲＯＳ細胞膜由来の可溶性ＯＰ−１を置換する能力を測定した。可溶性ＯＰ−１に対する相対的なペプチドＦ２−２、Ｆ２−３の活性を第１４Ａ図に、可溶性ＯＰ−１に対する相対的なペプチドＦ１−２、Ｈ−ｎ２およびＨ−ｃ２の活性を第１４Ｂ図に示す。ＯＰ−１受容体を富化したＲＯＳ細胞の原形質膜を、¹²⁵Ｉで標識した可溶性ＯＰ−１および無標識のペプチドとともに、４℃で２０時間培養した。３９５００×ｇの遠心分離によって、受容体を結合した物質を結合していない物質から分離した。生じた沈殿を回収し、これを、５ｍＭＭｇＣｌ₂および１ｍＭＣａＣｌ₂を含むｐＨ７．４の５０ｍＭＨＥＰＥＳバッファで洗浄した。沈殿中の残留放射能をガンマ・カウンタによって測定した。第１４Ａ図において、可溶性ペプチドＦ２−２（黒丸）は有効投与量₅₀（ＥＤ₅₀ ）約１μＭでは、可溶性ＯＰ−１と競合するが、完全に可溶性ＯＰ−１を置換することはできない。ＥＤ₅₀は、標識可溶性ＯＰ−１の最大置換の半分の置換を生じるペプチドの濃度である。ペプチドＦ２−３（黒三角）は、可溶性ＯＰ−１と競合し、これを完全に置換することできる。ＥＤ₅₀は約５μＭである。第１４Ｂ図において、ペプチドＦ１−２（黒箱）、ペプチドＨ−ｎ２（白ダイヤモンド）、およびペプチドＨ−ｃ２（白丸）は全て、ＲＯＳ細胞膜由来のヨウ素化可溶性ＯＰ−１を置換する能力を全く示さないか、わずかにしか示さない。このペプチド実験がその有効性を示しているとおり、ｈＯＰ−１構造を解明することによって、当業者が、ヒトＯＰ−１の受容体結合ドメインをより厳密に模倣し、ｈＯＰ−１によって媒介される生物学的効果のより有効な作動物質または拮抗物質として働く拘束されたペプチドを設計することができるようになると考えられる。実施例４．ＯＰ−１表面の結合部位の除去血清中のタンパク質に結合し、これらを腎臓に送って体内から除去させることが知られているタンパク質分解酵素除去タンパク質であるα−２マクログロブリンはＯＰ−１と結合する。本明細書にも記載したように、ＯＰ−１タンパク質上のα−２の相互作用部位はマップされている。したがって、本明細書に提供したデータベースおよび構造情報を使用して、１つまたは複数のα−２マクログロブリン相互作用部位を除去したＯＰ−１類似体を設計し、体内での生物学的利用能力を増強した類似体を提供することができる。この同じ戦略を、他の結合タンパク質のＯＰ−１表面の相互作用部位の同定および／または排除に適用することもできる。Ａ．α−２マクログロブリン結合部位の同定市販の固定α−２マクログロブリン、ならびに標識および無標識のＯＰ−１タンパク質を使用した標準的な競合結合検定において、ＯＰ−１が、α−２マクログロブリンと特異的に相互作用することを確認した。最初の２２個のアミノ酸を標準的なトリプシン消化で成熟ＯＰ−１から切断した成熟ＯＰ−１では、 α−２との結合親和性は１０分の１未満であり、成熟タンパク質のＮ末端が結合にあずかることが示された。結晶構造の一部ではないこのタンパク質のＮ末端部分は、正に帯電し、溶液中ではおそらく非常にフレキシブルである。この配列を除去してもＯＰ−１活性は妨げられない。ヒール領域の一部または全体の２つの環化ペプチドであるＨ−ｎ２およびＨ１（Ｃｙｓ₇₁−Ｐｒｏ₁₀₂。ただし、２つのシステイン間のジスルフィド結合を可能とするためにＰｒｏ₁₀₂はシステインに変更されている）も結合をめぐって競合する。フィンガ領域のペプチド（Ｆ２ −２、Ｆ２−３）は競合しない。 α−２マクログロブリンが、アルカリホスファターゼ活性を剌激するＯＰ−１の能力を妨害しないことがＲＯＳ細胞検定で確認された。したがって、α−２マクログロブリンの結合が、ＯＰ−１受容体結合を立体構造的に抑制するとは思われない。Ｂ．修正ＯＰ−１類似体の設計次に、ＯＰ−１上の正確なα−２マクログロブリンの相互作用部位をマップし、本明細書に提供した構造情報を使用して類似体を設計する。例えば、「アラニン・スキャン」突然変異誘発プログラムに関連したＨ−Ｎ２および／またはＨ１のようなモデル・ペプチドを生み出すことによって、正確な接触残基を同定することができる。このプログラムは、各残基を個別にアラニンに変更し、次いで、この構造体の結合競合能力を検査するものである。接触残基のマップが終わると、ヒール領域の全体構造を変更するこがなく接触残基を除去した類似体を設計することができる。特に、その領域のテンプレートを、データベースからコンピュータ上に呼び出し、候補置換残基を検査することができる。第８表の情報から、溶媒に接触可能で、ヒール領域に特に有用な候補残基が同定される。これらはおそらく、エピトープとしては有効ではなく、修正のためのよい候補となる。等価本発明の趣旨または不可欠の特徴から逸脱することなく、本発明を、他の特定の形態で実施することができる。したがって、以上の実施形態は、本明細書に記載された発明に限定するためのものではなく、あらゆる意味において例示的なものと考えるべきである。したがって本発明の範囲は、以上の説明によって指示されるのではなく、添付の請求の範囲によって指示されるものであり、請求の範囲と等価の意味および範囲に含まれる全ての変更は本発明に含まれるものである。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ｇ０６Ｆ 17/50 Ｇ０６Ｆ 15/40 ３７０Ｆ // Ｃ０７Ｂ 61/00 15/60 ６３８ (72)発明者ケック，ピーターアメリカ合衆国マサチューセッツ 01527 ミルバリー，ドゥランロード 50 (72)発明者グリフィス，ダイアナエル. アメリカ合衆国マサチューセッツ 02193 ウェストン，ウッドリッジサークル 15 (72)発明者カールソン，ウィリアムデイアメリカ合衆国マサチューセッツ 02193 ウェストン，ブラックオークロード 40 (72)発明者ルーガー，デビッドシー. アメリカ合衆国マサチューセッツ 01748 ホプキントン，ドゥーニィーストリート 19 (72)発明者サンパス，クーバーテイ. アメリカ合衆国マサチューセッツ 02053 メドウェイ，スプリングストリート６

Claims

【特許請求の範囲】１．（ａ）ヒトＯＰ−１の少なくとも一部分を規定した原子Ｘ線結晶学的座標を内部に配置したメモリと、（ｂ）メモリと電気的に連絡し、ヒトＯＰ−１の少なくとも一部分を表す三次元形状を有する分子モデルを生成するプロセスを含むプロセッサとを含む、コンピュータ・システム。２．プロセッサがさらに、ヒトＯＰ−１の少なくとも一部分を表し、溶媒接触可能表面を有する分子モデルを生成するプロセスを含む請求の範囲第１項に記載のシステム。３．前記座標が、コンピュータ可読ディスケットに格納される、請求の範囲第１項に記載のシステム。４．分子モデルが、ヒトＯＰ−１のフィンガ１領域の少なくとも一部分を表す、請求の範囲第１項に記載のシステム。５．分子モデルが、ヒトＯＰ−１のヒール領域の少なくとも一部分を表す、請求の範囲第１項または第４項に記載のシステム。６．分子モデルが、ヒトＯＰ−１のフィンガ２領域の少なくとも一部分を表す、請求の範囲第１項または第４項に記載のシステム。７．分子モデルが、ヒトＯＰ−１のヒール領域の少なくとも一部分を表す、請求の範囲第６項に記載のシステム。８．プロセッサがさらに、ヒトＯＰ−１の三次元形状および溶媒接触可能表面の少なくとも一部分に対応した、三次元形状および溶媒接触可能表面を有する形態形成類似体を同定する、請求の範囲第１項に記載のシステム。９．プロセッサがさらに、修飾後に、ヒトＯＰ−１の水に対する溶解度または安定性を増強する、座標によって規定された少なくとも１つの候補アミノ酸を同定する、請求の範囲第１項に記載のシステム。１０．骨形成タンパク質−１（ＯＰ−１）様生物活性を有する形態形成類似体の製法において、（ａ）ヒトＯＰ−１の少なくとも一部分を表す三次元形状を規定する分子モデルを提供する段階と、（ｂ）ヒトＯＰ−１の少なくとも一部分を表す三次元形状に対応した三次元形状を有する候補類似体を同定する段階と、（ｃ）段階（ｂ）で同定した候補類似体を生成する段階とを含む方法。１１．段階（ｃ）で生成した化合物が、ＯＰ−１様生物活性を有するか否かを判定する段階をさらに含む、請求の範囲第１０項に記載の方法。１２．段階（ａ）で提供される分子モデルが、ヒトＯＰ−１のフィンガ１領域の少なくとも一部分を表す、請求の範囲第１０項に記載の方法。１３．段階（ａ）で提供される分子モデルが、ヒトＯＰ−１のヒール領域の少なくとも一部分を表すこ、請求の範囲第１０項または第１２項に記載の方法。１４．段階（ａ）で提供される分子モデルが、ヒトＯＰ−１のフィンガ２領域の少なくとも一部分を表す、請求の範囲第１０項または第１２項に記載の方法。１５．段階（ａ）で提供される分子モデルが、ヒトＯＰ−１のヒール領域の少なくとも一部分を表す、請求の範囲第１４項に記載の方法。１６．類似体が、類似体の溶媒接触可能表面の周りに間隔をあけて、ヒトＯＰ− １の溶媒接触可能表面の一部分の周りに間隔をあけて配置された帯電部分に対応した間隔関係に配置された複数の帯電部分を含む、請求の範囲第１０項に記載の方法。１７．段階（ａ）および（ｂ）が電子式プロセッサによって実行される、請求の範囲第１０項に記載の方法。１８．段階（ａ）が、ヒトＯＰ−１の原子座標の少なくとも一部分の表現をコンピュータ・メモリに格納する段階を含む、請求の範囲第１７項に記載の方法。１９．骨形成タンパク質−１（ＯＰ−１）によって媒介される生物的効果をモジュレートするモルホゲン類似体の製法において、（ａ）ヒトＯＰ−１の少なくとも一部分を規定した原子Ｘ線結晶学的座標をコンピュータ・メモリに提供する段階と、（ｂ）ヒトＯＰ−１の少なくとも一部分を表す三次元形状および溶媒接触可能表面を有する分子モデルを、プロセッサを用いて生成する段階と、（ｃ）さらに、ヒトＯＰ−１の少なくとも一部分の三次元形状および溶媒接触可能表面に対応した、三次元形状および溶媒接触可能表面を有する候補モルホゲン類似体を同定する段階と、（ｄ）段階（ｃ）で同定された候補モルホゲン類似体を生成する段階と、（ｅ）段階（ｄ）で生成された候補モルホゲン類似体が、ＯＰ−１によって媒介される生物的効果をモジュレートするか否かを判定する段階とを含む方法。２０．商業的に有用な量の化合物を生成する段階をさらに含む、請求の範囲第１１項または第１９項に記載の方法。２１．前記化合物がペプチドである、請求の範囲第１１項または第１９項に記載の方法。２２．ＯＰ−１によって媒介される生物的効果をモジュレートする化合物であって、請求の範囲第１１項または第１９項に記載の方法によって生成された化合物。２３．前記化合物が、ヒトＯＰ−１の生物活性の作動剤として機能する、請求の範囲第２２項に記載の化合物。