JP2000055916A - インスリン依存性糖尿病の診断と治療 - Google Patents
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Abstract
提供することを目的とする。 【解決手段】 患者の血液又は尿を検査して、hHSP65
に対する抗体と免疫学的に反応性のある蛋白の有無、又
はhHSP65と免疫学的に反応性のある抗体又はT細胞の
有無を調べることよりなる、患者のインスリン依存性糖
尿病(IDDM)の存在又はその発生段階(incipienc
e)を検出することができる。
Description
尿病(IDDM)の存在、IDDMになり易い性向、又
はIDDMになる過程の開始を検出する方法に関し、さ
らに詳しくは本発明は65キロダルトンの熱ショック蛋
白(hsp 65)(又はこれと免疫学的に交差反応をする
分子)、又はこのような蛋白に反応性の抗体やT細胞に
関する。
的に関連する蛋白又は断片を投与するか、又はこのよう
な蛋白又は断片に活性化されたT細胞(このようなT細
胞は処理してその免疫原性を減弱化されている)又はこ
のようなT細胞や処理されたT細胞の断片を、その免疫
学的寛容を引き起こすように投与することによる、ID
DMを防止したり発生中のIDDMを治療する方法に関
する。
発生率は、多くの国でこの数十年間に数倍増加し、現在
生きているヒトの1%は70才になるまでにIDDMに
なるだろうと予想されている。IDDMはインスリン産
生ベータ細胞を破壊する自己免疫学的反応により引き起
こされる。糖尿病の臨床症状はベータ細胞の大部分(お
そらく90%)が再生できないほど破壊された後に初め
て現れ、患者の生存はインスリンの外的供給に依存する
ことになる。即ち臨床診断ができる時期にはこの自己免
疫反応は不可逆的な損傷を与えており、しかもその多く
は顕著な症状を示さない。糖尿病に関与する自己免疫反
応の治療を成功させるためには、患者の症状が明らかに
なる前に治療を開始することと、インスリンを産生する
能力をなくした患者へのインスリン補充が必要である。
自己免疫反応を停止させることにより糖尿病が直り外因
性インスリンが不要になるのは、患者がまだ充分量の内
因性インスリンを与えることができる充分な数のベータ
細胞を有しているうちに、病気の進行をとめることがで
きた場合のみである。従ってIDDMの症状が明らかに
なる前にそして外因性インスリンが必要になる前に危険
のある患者が同定できたら、いかなる療法ももっと有効
となるであろう。IDDMの新しい患者の約90%は、
患者歴のある家族以外から発生している。従って疾患を
止めることが不可能な段階になる前に疾患を検出するた
めに、マススクリーニングに適した測定法が緊急に必要
とされている。
ODマウスのように多くの動物モデルがある(例えばロ
ッシーニ(Rossini)ら、アニュアル・レビュー・イムノ
ロジー(Ann. Rev. Immunol.) 第3巻、289−320
頁(1985年)を参照)。この動物の多くは自然にIDD
Mを発症し、ヒトのIDDMの多くの特徴を示す。熱シ
ョック蛋白(hsp's)は、高温条件又は他のストレスをか
けた時に細胞から産生される蛋白群の1員である。熱シ
ョック蛋白には種々の分子量のものがある(例えば20
キロダルトン、65−68キロダルトン、70キロダル
トン、90キロダルトン、110キロダルトンなど)。
熱ショック蛋白は自然界に普遍的に存在しており、細
菌、酵母、植物、昆虫、及びヒトを含む高等動物により
産生される。この蛋白は高度に保存されており、これら
の多様な生物のすべてで著しい相同性を示している。長
い進化の時間にわたって極端に保存されているため、熱
ショック蛋白は重要な機能を果たすと考えられる。細胞
をストレス(例えば熱、ある種の金属、薬剤、又はアミ
ノ酸類似体)で刺激すると、普通これらの蛋白の合成が
増加する。しかしこれらの蛋白の特殊な機能は今のとこ
ろ不明である。
E)の患者は90キロダルトンの熱ションク蛋白に対す
る抗体を有することが観察されている(ミノタ(Minot
a) ら、ジャーナル・オブ・クリニカルインベスティゲ
ーション(J. Clin. Invest.) 第81巻、106−10
9頁(1988年))。 hsp90に対する抗体の機能は不明
である。HSP 65はラットのアジュバント関節炎に関与
していることが知られている(バンエデン(van Eden)
ら、ネーチャー(Nature) 第331巻、171−173
頁(1988年)参照)。アジュバント関節炎はある株のラ
ットをマイコバクテリウムテューバーキュローシス(Myc
obacterium tubeculosis, MT) に対して免疫することに
より発症する自己免疫関節炎である。この疾患はMTの
hsp65の9個のアミノ酸ペプチド配列(180−18
8)に対して反応性のTリンパ球のクローンにより、放
射線照射を受けた免疫学的に無防備の(naive) ラットに
移すことができることが見いだされた。従ってアジュバ
ント関節炎は抗 hsp65Tリンパ球により引き起こされ
る自己免疫疾患のようである。関節に対するこの自己免
疫攻撃は、180−185 hsp65ペプチドと軟骨プ
ロテオグリカンの結合蛋白の一部との部分配列の相同性
に起因していた(コーエン(Cohen)、サイエンティフィ
ックアメリカン(Scinetific American)第256巻、5
2−60頁(1988年)を参照)。またリウマチ関節炎の
患者の滑液のTリンパ球はMTの hsp65に対して応答
した(レス(Res)ら、ランセット(Lancet)第II巻、4
78−480頁(1988年)参照)。アジュバント関節炎
の誘導の前にラットに hsp65を投与すると、後に関節
炎が発症するのを防ぐことができることがわかった。従
って hsp65に対する免疫応答の存在はラット及びヒト
の両方の関節炎に関連しており、 hsp65の投与により
関節炎に対する耐性が与えられた。
は、自己免疫関節炎や類似の自己免疫疾患の緩和、治
療、そして診断に有用なポリペプチドを開示している。
ヒトのP1蛋白の完全な一次構造(ヌクレオチド配列と
推定アミノ酸配列を含む)が、最近エス・ジンダイ(Jind
ai, S.)ら、「バクテリアや植物シャペロニン及び65
キロダルトンのマイコバクテリア抗原に類似のヒトミト
コンドリア蛋白の一次構造」("Primary Structure of a
Human MitochondrialProtein Homologous to the Bact
erial and Plant Chapero-nins and to the 65-Kilodal
ton Mycobacterial Antigen") 、モレキュラーアンドセ
リュラーバイオロジー(Molecularand Cellular Biolog
y) 第9巻、5、2279-2283 頁(1989年) に最近発表さ
れた。分子量が約63キロダルトンであると開示されて
いるこの蛋白は、本明細書でhHSP65蛋白として記載され
ているヒト熱ショック蛋白である。前記文献の内容のす
べては参考のため本明細書に引用されている。図3に復
元されているこの蛋白の構造は、ジンダイが開示してい
るものと同じである。
免疫疾患の治療に自己免疫疾患に特異的な活性化T細胞
の使用を開示している。このT細胞は好ましくはまず圧
力で処理し、次に化学的架橋剤及び/又は細胞骨格(cy
toskeletal) 破壊剤で処理して免疫原性を改良する。完
全に処理した細胞又はその画分は、T細胞が特異的な自
己免疫疾患に対するワクチンとして使用することができ
る。自己免疫性T細胞を阻止するための公知の方法で
は、特定の自己免疫特異性を有する減弱化した又は無毒
性のT細胞の試料、又はその断片又は画分で対象を免疫
する。対象は少なくとも2つのタイプの制御T細胞を活
性化して応答する(T細胞活性化マーカーを認識する抗
エルゴタイプ(anti-ergo-typic)T細胞と、病原性内因
性自己免疫T細胞上に存在する自己抗原リセプターを認
識するらしい抗イディオタイプT細胞)。実験動物での
T細胞ワクチン接種は、疾患の予防とともに、確立した
疾患の永久的緩解を誘導するのに有効である。ハウウェ
ル(Howell) ら、サイエンス(Science)第246巻、6
68−670頁(1989年)、及びバンデンバーク(Vande
n-bark) ら、ネーチャー(Nature) 第341巻、541
−544頁(1989年)は、実験的自己免疫性脳脊髄炎に
対するラットのワクチン接種にT細胞リセプターのβ鎖
のペプチド配列の使用を開示しており、従って自己免疫
T細胞リセプター自身が制御T細胞の標的エピトープを
供給することができるという結論を支持している。自己
免疫疾患一般に関してT細胞又は断片をこのように使用
することは公知であるが、IDDMに特異的な特定の抗
原はこれまで知られていなかった。即ちIDDMに対す
るワクチン接種のための活性化T細胞は、本発明以前に
は得られていなかった。
スリン依存性糖尿病(IDDM)の早期診断の方法を与
えることである。本発明の別の目的はIDDMの早期診
断に使用されるキットを与えることである。本発明のさ
らに別の目的は、IDDMを予防する方法を与えること
である。本発明のさらに別の目的は、発生段階でIDD
Mを治療する方法を与えることである。本発明のさらに
別の目的は、IDDMの予防又は治療のための免疫学的
寛容誘導性組成物を与えることである。本発明のさらに
別の目的はIDDMの予防又は治療のための新規ポリペ
プチドを与えることである。本発明のさらに別の目的
は、IDDMの予防又は発生段階でのIDDMの治療に
有効なT細胞又は断片を与えることである。本発明のさ
らに別の目的は、本発明のIDDM特異抗原を使用して
これに特異的なT細胞を単離した後、このようなT細胞
のリセプター領域のペプチド配列を性状解析し、IDD
Mの予防又は治療にこのようなリセプターペプチドを使
用することである。
の研究の過程で、動物は hsp65分子又はこれと交差反
応する分子を発現し、これが動物の血液や尿中に出現す
ることが発見された。またこれらの動物はこのような分
子に特異的な抗体やT細胞を発現する。即ち hsp65
(又はこれと交差反応する分子)、又はこれらに特異的
な抗体又はT細胞の血液又は尿中での存在は、β細胞が
完全に破壊され患者が一生涯糖尿病が続くようになる前
にIDDMを検出するための測定法に役立つ。ある患者
におけるIDDMの存在又はその発生段階は、 hsp65
(又はこれと交差反応する分子)、又はこれらに特異的
な抗体又はT細胞の存在を試験することにより診断する
ことができる。本発明はまたこのような測定を実施する
方法、及びこのような測定を実施するためのキットを与
える。発生段階の糖尿病を検出することにより、自己免
疫反応を終結させるための方法を開始することができ
る。例えばIDDMに関与する自己免疫反応に対する耐
性を誘導するのに、 hsp65、又はその活性なエピトー
プ又はこれと交差反応をする別の分子(抗原)の投与が
効果的である。このような抗原(減弱化されているか無
毒性の型、又は処理して抗原性を改良した後のもの) 、
又はその断片又は活性画分に特異的なT細胞の投与は、
IDDMに関与する自己免疫反応に対する耐性を誘導す
るのに有効であろう。
に関する。適当なアジュバント中でhsp65、又はその
活性エピトープ又はこれと免疫学的に交差反応する別の
分子(抗原)に対して免疫することによりIDDMが誘
導されることが発見された。しかし有効なアジュバント
は用いないで、好ましくは寛容誘導性担体とともに、こ
のような抗原をワクチン接種すると、該抗原に対する特
異的寛容を作り出すことができる。これによりIDDM
に対する自己免疫反応に対する耐性を作り出すことがで
きる。このような抗原(減弱化されているか無毒性の
型、又は処理して抗原性を改良した後のもの)、又はそ
の断片又は活性画分に特異的なT細胞によるワクチン接
種の場合も同じことが言える。もし患者がIDDMの前
臨床的な発生段階にあれば、このような抗原又はT細胞
(又は画分)を注射することにより、この抗原に対する
寛容を作り出すことができ、重症の永久的な障害が与え
られる前に自己免疫過程を阻止することができる。
体的な態様と本発明に関連する実験を示す。これらは例
示のために示すのみであり、非限定的に記載されてい
る。
e-rium tuberculosis)の hsp分子を標準的方法で大腸菌
(E.coli)にトランスフェクションし、バン・エデン(va
n Eden) ら、ネーチャー (Nature) 第331巻、171
−173頁(1988年)に記載の方法により精製した。こ
のように遺伝子操作した大腸菌細胞は大量のMT hsp65
分子を産生するであろう。種々の供給源からの hspは密
接な相同性があるため、遺伝子工学又は細胞からの単離
により産生される場合、哺乳類又はヒト由来の hsp65
でも有効である。
生 標準的な実験室種のウサギ(ニュージーランドホワイ
ト)の背中に、05mlの無機油中に乳化させた05mlの
生理食塩水(不完全アジュバント)中の、実施例1に従
い産生させたMT hsp65の100μgを皮下注射した。
1月後10ml生理食塩水中の100μgのMT hsp65分
子でウサギを追加免疫し、2週間後にウサギから血液を
とり血清を採取した。2月後同様にしてウサギに追加免
疫をして、もう一度血液を取った。この血清抗体を使用
して、試験動物及びヒトの血液及び尿中の hsp65を検
出した。
の存在を検出した。やわらかいPVCマイクロタイター
プレートを100μlの試験血清又は尿で4℃で18時
間被覆し、リン酸緩衝化生理食塩水(PBS)で洗浄し
た。次に対照ウサギ血清又は抗 hsp65血清(実施例2
に従い産生した)を、PBS+01%ウシ血清アルブミ
ン(BSA)で1:100希釈し、各ウェルに50μl
添加し、37℃で2−3時間インキュベートした。次に
ウェルをPBSで3回洗浄した。125I−ヤギ抗ウサギ
免疫グロブリンを100,000CPM/ウェルで添加し、ウェル
を37℃で2時間維持した。次にプレートをPBSで4
回洗浄し、乾燥させ、ウェルをガンマカウンター中で計
測した。抗 hsp65血清で得られた値で、標準ウサギ血
清で得られた平均値CPM+2S. D. を越えるもの
を、 hsp65の存在について陽性とした。
に結合した抗原は血清又は尿ではなく、実施例1に従い
産生した精製MT hsp65の5μm /ウェルである。抗 h
sp65抗体について試験すべき血清は1:50に希釈さ
れる。尿は希釈しない。 hsp65を含むウェルに血清又
は尿を添加し、マウスの試料については放射標識ヤギ抗
マウス免疫グロブリンを使用し、ヒトの試料については
ヤギ抗ヒト免疫グロブリンを使用して、 hsp65に結合
している抗体の存在を検出した。残りの測定は実施例3
に記載したように実施する。健康なマウス、ラット又は
ヒトの対照血清で得られた平均CPM+2S. D. より
大きいCPMを陽性と定義した。
IDDMの進行を発症前に検出するNODマウス 14匹の雌のNODマウスから、生後21日目から一定
の間隔で約200日間採血し、IDDMの進行について
点数をつけた。 hsp65、抗 hsp65、抗インスリン抗
体、そしてDMイディオタイプに対す抗イディオタイプ
抗体について、血清を試験した。実施例3の測定法を使
用して hsp65を試験した。抗 hsp65の存在は実施例
4に記載の方法に従い測定した。抗インスリン抗体は、
インスリンのリセプター結合部位を認識するイディオタ
イプ抗体であり、時にDM−イディオタイプ抗体と称す
る。本明細書の譲受人の所有する米国特許出願第07/29
5,401 号では、患者の血清又は尿中にDM−イディオタ
イプ抗体又は抗DM−イディオタイプ抗体が存在するこ
とは発生段階IDDM又は活性なIDDMが陽性である
兆候であることが開示されている。このような抗体は、
健常患者の血清又は尿中には存在しない。抗インスリン
抗体及び抗イディオタイプ抗体の測定に使用した方法
は、上記出願第07/295,401 号に記載されているもので
あり、その内容は参考のため本明細書に引用されてい
る。
症し、4匹はIDDMにならなかった。図1は、IDD
Mを発症しなかった1匹のマウスの血清を試験した結果
であり、図2は、IDDMを発症したマウスの1匹の血
清を試験した結果を示す。ここからIDDMのないマウ
スに比較して、IDDMを発症したマウスは85日目か
ら始まって生後185日目に著しく高濃度の hsp65を
示していることがわかる。実際にIDDMが発症してか
らは hsp65濃度は減少した。抗 hsp65抗体は hsp6
5出現の数週間後に現れた。抗インスリン及び抗イディ
オタイプ (DM) 抗体はそれよりさらに後に現れた。従
って hsp65と抗 hsp65は臨床的IDDMより先行し
ており、発症前の疾患の進行の早期指標として有用であ
った。表1は、14匹の各マウスのデータを累積したも
のである。
1505日であった。 hsp65血清試験の平均はIDD
Mの725日前に陽性であり、抗 hsp65試験の平均は
IDDMの44日前に陽性であった。抗インスリンと抗
イディオタイプ抗体は、平均してIDDMのわずか29
日と19日前に陽性であった。従って、 hsp65と抗hs
p65は最終的にIDDMになるか否かの比較的早期の
指標である。約100日例のNODマウスの hsp65の
存在について尿を試験した。表2はIDDMを発症した
マウスでは、試験したマウスの尿は陽性であったことを
示している。
は尿に hsp65又は抗hsp65が出現しなかったことを
示す。IDDMが発症(90−100日目)したラット
は、IDDMの発症の10から20日前に試験したと
き、陽性であった。測定は実施例3と4に開示された方
法で実施した。
清を入手した。これらのヒトは既知のIDDM患者の第
1親等の親類であり、IDDMを発症する危険があると
考えられたので、IDDMの発症の1/2から2年前に
血清を採取した。これらの人以外に新たにIDDMと診
断された4人の患者の血清又は尿について hsp65を調
べた。対照血清及び尿は、10人の活動性多発性硬化症
患者と、IDDMに関係のない種々の病気で一般病院に
いる35人の小児から得た。その結果を表4に示す。測
定は実施例3と4に記載の方法に従い実施した。
M患者のうち4人のうち2人は、hHSP65と抗hHSP65
測定で陽性であることが上の表からわかる。対照で陽性
のものはいない。従ってMTの hsp65に対するウサギ
の抗 hsp65は、IDDMの発症に関連するヒトの血清
又は尿中のhHSP65を検出することができる。さらにM
Tの hsp65はヒト抗体を検出できる。前述したよう
に、ヒト又は他の供給源から得られた hsp65と同様
に、ヒト又は他の供給源の hsp65に対して作成された
抗体もまた、これらの測定に使用できる。生物の進化の
過程で hsp65は高い保存性を有しているため、これが
可能なのである。
が陽性ではなかったことは、図2に記載したようにID
DMの実際の発症時又はその近辺の時期には、hHSP65
と抗hHSP65の濃度は減少しがちであるという事実から
説明できる。従ってこれらの陰性の患者は、IDDMの
発症の時期に近い時に試験されたために、陽性が消失し
ているのかも知れない。上記より、ヒト患者ではIDD
Mの発症の少し前にhHSP65(又はこれと交差反応する
分子)又は抗hHSP65は陽性になることが明らかであ
る。従ってhHSP65又は抗hHSP65の測定は、IDDM
が進行しているかも知れない人たちをスクリーニングす
るのに有効である。
に現れるhHSP65はいくつかの起源に由来するであろ
う。その起源は、健常なベータ細胞に普通に発現され、
このベータ細胞がウイルス感染や毒性の攻撃を受けた時
免疫学的また破壊の前兆として放出されるhHSP65かも
知れないし、又は免疫学的破壊のストレスによりベータ
細胞から放出されるのかも知れない。hHSP65はまたベ
ータ細胞に対する長期の活性のある時期に、免疫系の細
胞により発現されるかも知れない。この系におけるhHSP
65の起源は現在明らかではないが、いったんhHSP65
が放出されると、その人は刺激されてhHSP65分子に対
する抗体を作り出す。
する抗体は、バエケスコフ(Baekeskov)ら、ネーチャー
(Nature) 第298巻、167−168頁(1982年)に
より、数人の新たに診断されたIDDM患者に記載され
ている。しかしこの64キロダルトンの抗原が hspであ
るか否かは不明である。さらに34キロダルトン抗原
は、IDDMの発症の前に血液又は尿に現れることは知
られていない。この規定されていない64キロダルトン
ベータ細胞抗原に対して、 hsp65はアミノ酸配列が公
知の規定された蛋白である(トーレ(Thole)ら、インフ
ェクション・アンド・イミュニティー (Infection and
Immunity) 第55巻、1466−1475頁(1987
年))。同様に、hHSP65のアミノ酸配列は、図3に示
されている。
研究 40mg/kg/日の投与量のベータ細胞毒ストレプトゾト
シン(streptozotocin) を5日間連続で接種すると、C5
7BL/ksj マウスは約2週間後にIDDMを発症する。こ
の実験では、10匹の雄のC57BL/ksj マウス(3月齢)
の群に、IDDMを誘発する(約14日目)ために低投
与量のストレプトゾトシン注射(40mg/kg/日×5)
をしたか又はしなかった。そしてIDDMの発症(25
0mg%より高い血中グルコース)と血中の hsp65と抗
hsp65の出現について調べた。表5に示すように、1
0日目(IDDMの臨床症状の現れる前)までに hsp6
5が出現し、次に抗 hsp65が出現した。
5に交差反応性のある多種の齧歯類の分子 マイコバクテリウムの hsp65に認識される哺乳類の分
子を同定するために、上記のウサギの抗 hsp65抗血清
と、TB78と命名されたモノクローナル抗体を使用し
た。この抗体は、エム・アール・シー結核ユニット(MR
C TuberculosisUnit) 、ハマースミス病院 (Hammersmit
h Hospital) 、ロンドン、のジェイ・イバニイ(J. Iva
nyi)博士に開発され、供給されたものである。この抗体
はマイコバクテリウムテューバーキュローシス (M. tub
eculosis) の hsp65分子に対して特異的である。これ
らの抗体の結合に対して3種類の調製物を測定した:
クローン化したマイコバクテリウムテューバーキュロー
シス(M. tubeculosis) のhsp65;IDDMを発症し
ているNODマウスと健常な対照の血清;そして熱ショ
ックで処理したラットの繊維芽細胞溶解物と対照の繊維
芽細胞溶解物。
た。ラットの胎児繊維芽細胞を標準的方法を使用して培
養した。熱ショック蛋白を誘導するために、繊維芽細胞
の培養物を425℃で2時間インキュベートし、次に3
7℃で1/2時間インキュベートした。熱ショック繊維
芽細胞と対照繊維芽細胞を37℃で培養し、プロテアー
ゼインヒビターとともに01%SDSと1%トリトンよ
りなる溶解緩衝液を用いて、約5×106個の細胞を溶
解した。ブラッドフォード(Brad ford)定量法により蛋
白濃度を2mg/mlに調製した。この物質を標準的電気泳
動法で還元条件(2%の2−メルカプトエタノール)下
で1レーンにつき100μgで10%ポリアクリルアミ
ドゲルに流した。健常な対照マウスとIDDMを発症し
ているNODマウスからの血清を2mg/mlに希釈した。
これらの血清の調製物を上記したようにポリアクリルア
ミドゲル電気泳動で分離した。次に標準的方法により、
分離した蛋白をニトロセルロースペーパー上に移した。
次にペーパーを1%ヘモグロビン(ブロッキング用)と
ともに室温で1時間インキュベートした後、1:100
希釈の正常ウサギ血清又は抗 hsp65で、又は1:10
0希釈のTB78又は対照モノクローナル抗体で室温で
2時間インキュベートした。125I放射標識ヤギ抗ウサ
ギ免疫グロブリン又はヤギ抗マウス免疫グロブリンでイ
ンキュベートして洗浄し、オートラジオグラフィーで現
像して、分離したバンドへの抗体の結合を検出した。分
子量標準物質も含めた。
されることが見いだされた。マイコバクテリウム hsp6
5はウサギ抗血清とモノクローナル抗体TB68の両方
により検出された。これらの抗体はまた、熱ショック後
に発現が増強された齧歯類の繊維芽細胞中の65キロダ
ルトンのバンドを認識した。加熱した繊維芽細胞溶解物
では、30キロダルトンと47キロダルトンに陽性のバ
ンドがあった。IDDMを発症しているNODマウスの
血清中に約25キロダルトンに追加のバンドが検出され
た。従って哺乳類の65キロダルトン、47キロダルト
ン、30キロダルトン、25キロダルトンの分子はマイ
コバクテリウムの hsp65と交差反応性がある。
ンス島で発現される IDDMの進行には血液や尿中の hsp65の発現の上昇
が伴うため、ランゲルハンス島のベータ細胞が hsp65
の供給源かも知れないと考えられた。この理論を試験す
るために、抗 hsp65がランゲルハンス島細胞に結合す
るか否かを調べるために試験した。標準的方法を使用し
てラットの膵臓の凍結切片(厚さ6−8μ)を作成し
た。切片に1:50希釈した正常ウサギ血清又は抗 hsp
65抗血清(非特異的抗体を除去するために肝臓粉末で
吸収されている)を重層し、室温で30分間インキュベ
ートし、PBSで完全に洗浄し、次に5%正常ヤギ血清
で5分間インキュベートした後、フルオレセイン標識ヤ
ギ抗ウサギ免疫グロブリンで室温で30分間インキュベ
ートし、PBSで洗浄し、螢光顕微鏡で調べた。ランゲ
ルハンス島は抗hsp65抗血清で明るく染色されていた
が、対照ウサギ血清は染色されなかった。従ってランゲ
ルハンス島は hsp65を発現する。
を誘発する ランゲルハンス島は hsp65を発現することがわかった
ため、抗 hsp免疫応答はベータ細胞に障害を与え従って
IDDMを誘発するかも知れないと仮定された。雄のC5
7BL/ksj マウス(8週齢)又は雌のNODマウス(45
週齢)の腹腔内に、50μgの hsp65を注射し、ID
DMを発症するか否かを試験した(250mg%より多い
血中グルコースで証明される)。45週齢でNODマウ
スは自然発生IDDMより少なくとも3カ月早かった。
C57BL/ksj マウスは自然発生IDDMはなかった。 hsp
65を油又はPBSで乳化して投与した。油に乳化した
ウシ血清アルブミン(BSA)を対照として使用した。
その結果を表6に示す。油中の hsp65はIDDMを誘
発するがPBS中の hsp65はIDDMを誘発しないこ
とがわかった。従っておそらくベータ細胞は hsp65と
交差反応する抗原を発現するため、 hsp65に対する免
疫応答はIDDM発症の引金となる。
ODマウスのようにIDDMを自然発症せず、C57BL/ks
j のように低投与量ストレプトゾトシン投与後でもID
DMを発症しない)に、50μgの抗原、不完全フロイ
ントアジュバント(油)で乳化した hsp65又はウシ血
清アルブミン(BSA)を腹腔内投与した。19日後の
朝にマウスから採血し、血中グルコースを測定した。2
00mg%を越えるグルコース濃度によりIDDMを診断
した。その結果を表7に示す。 hsp65による免疫は、
特に適当な投与量で投与した場合、一見正常な系統のマ
ウスでもIDDMを誘発することができる。これは、hs
p 65又は hsp65と免疫学的に交差反応する分子はI
DDMの標的抗原であるという結論を支持している。
に対する耐性を誘導できる 有効なアジュバントなしで、又は免疫学的寛容誘導性担
体を用いて抗原を投与すると、免疫学的非応答性(即ち
抗原に対する特異的寛容)を誘導することができること
は充分確立されている。従ってPBS中の hsp65を注
射したマウスが、油中の hsp65により誘導されたID
DMに対する耐性を獲得したか否かを調べるため試験し
た。PBS中の hsp65を受けた後1月後に、C57BL/ks
j マウスに油中 hsp65を投与したが、どのマウスも3
週間後にIDDMは発症しなかった(血中グルコース濃
度が250mg%を越えることにより判定した)。これに
対してPBS中の hsp65を受けた10匹の対照マウス
のうち8匹が、油中 hsp65を受けた後にIDDMを発
症した。別の実験で30週齢の雌のNODマウスにPB
S中の hsp65を腹腔内投与した後、IDDMを誘発す
るために15日後に50μgの油中 hsp65を投与し
た。IDDMの存在は投与後35日目の血中グルコース
が200mg%を越えることにより測定した。マウスが5
月齢になったときもう一度IDDMの存在を測定した。
この年齢ではすべての未処理の雌のNODマウスのうち
50%でIDDMが検出されることがわかっている。結
果を表8に示す。
寛容を誘導するために使用できることがわかる。この寛
容は hsp65の免疫学的な攻撃に対して有効なだけでな
く、NODマウスでの自然発生IDDMの自然の進行に
対する治療法としても有効である。
のIDDMの治療 図10に示すように hsp65はIDDMの自己免疫反応
に対する耐性を誘導するのに使用される。これは、外因
性 hsp65に対する接触を通してベータ細胞のhHSP65
に対する免疫学的寛容の機構により引き起こされるよう
である。即ちhsp 65はIDDMが臨床的に明らかにな
る前に治療に使用することができ、重症の永久的障害が
与えられる前に自己免疫反応を阻止することができる。
この実験の結果は表8にまとめられており、NODマウ
スにおける自然発生IDDMの自然の進行は有意に阻止
することができ、 hsp65(特にhHSP65)は治療的に
使用することができる。NODマウスでは自己免疫反応
は非常に早く始まる。1月齢ですでにインスリン炎が検
出される。この系統の雌のマウスでは50%は5月目に
IDDMが臨床的に明瞭になる。30日齢のマウスに h
sp65を投与すると、この自然の進行を阻止する。これ
はランゲルハンス島に対する自己免疫が始まった後でも
治療が有効であることを示している。
応答は糖尿病の進行に関連している 図3に示されているヒト hsp65は通常の方法で発現の
ためにクローン化し、そこから実質的に純粋な組換えヒ
ト hsp65が得られた。本実験は、自然発生的にベータ
細胞を破壊しているマウスはヒト hsp65に対して反応
性のT細胞を明示していることを確証している。種々の
年齢の雌のNOD/Ltマウスの5から7匹の群から得られた
脾臓細胞懸濁液について、基本的にサイクグロブリンに
対するT細胞応答について記載された方法(アール・マ
ロン(Maron, R) ら、ジャーナルオブイミュノロジー
(J. Immunology)第131巻、2316−2322頁 1
983 年))に従い、T細胞の増殖について測定した。簡
単に説明すると、1×106細胞/mlの細胞を、5μg
/mlの以下の抗原の存在下又は欠如下で、マイクロタイ
ターウェル中の0.2mlの培養液の中で3重測定で72
時間インキュベートした: ヒト hsp65、MThsp6
5、又は MThsp70。最後の12時間のインキュベート
の間のDNAへの[3H]チミジンの取り込みにより増
殖を測定した。結果はΔCPMとして示す: 試験抗原
を含むウェルの平均CPM−抗原を加えないで培養した
対照ウェルの平均CPM±標準誤差(SE)。対照CP
Mは9,000 から10,500まで変化した。マウスの約50%
でIDDMの発症は4から5月齢の間であり、図4で
「IDDM」として示してある。
s reactivity) の程度を種々の抗原に対して年齢の関数
として示しているこの実験の結果は、図4でグラフで示
してある。NOD/Ltマウスがインスリン炎をほとんど示さ
ないか又は全く示さない1月齢の時期は、どの抗原に対
してもT細胞の反応性は検出されなかった。しかし2か
ら3月齢の時期はインスリン炎の上昇とともに、ヒト h
sp65に対しては強く上昇傾向の反応性が認められた
が、 MThsp65に対する反応性は比較的小さくMThsp7
0に対する反応性は全くなかった。ヒト hsp65とMT h
sp65に対する反応性は45月にIDDMの発症ととも
に低下し、IDDMの臨床症状の出現した後の6月目で
もさらに低下した。従ってヒト hsp65に対するT細胞
の応答は、明瞭なIDDMに先行するベータ細胞の障害
の増加に関連しているようであった。IDDMの発症に
伴うT細胞の反応性の低下は、ベータ細胞とそれらの抗
原が失われることによる免疫刺激の低下により説明する
ことができる。
細胞は糖尿病を引き起こす NOD/Lt、C57BL/6 、又はC57BL/KS株の35月齢の雌の5
匹のマウス群から、脾臓細胞の懸濁液を得た。1群のNO
D/Ltマウス(第2群)はあらかじめ油中の50μg/ ml
のMT hsp65の腹腔内投与によりプライム(prime)して
おいた。いくつかの脾臓細胞(第4、6、8群)は、1
25μg/mlの ConAで48時間インキュベートして活性
化した。 ConA後の細胞を ConAを含まない増殖培地に
移し、さらに5日間培養した。実施例12に記載したよ
うに、組換えヒト hsp65、組換え MThsp65又は対照
大腸菌抗原に対する、活性化一週間後の脾臓細胞の増殖
性応答について試験した。対照大腸菌は、hsp 65遺伝
子を含まない pEX2プラスミッドでトランスフェクショ
ンした。抗原は5μgの濃度で使用した。増殖性応答は
3重測定で行い、刺激指数(SI)として示してある:
試験抗原でインキュベートした脾臓細胞に取り込まれた
3H−チミジンの、抗原無添加の対照培養物に取り込ま
れた3H−チミジンに対する比率。対照培養物の平均C
PMは5,000 − 7,000であり、平均CPMからの標準偏
差はいつも平均の10%より小さかった。
て活性化することにより、糖尿病を引き起こす細胞の能
力について試験した。前糖尿病性(prediabetic)の、1
月齢の雌のマウスの群の腹腔内に、25×106個の何
も添加していない脾臓細胞、又は MThsp65で刺激して
おいた、又は刺激していないマウスの ConAで活性化し
た脾臓細胞を投与した。21日後に高血糖症(血中グル
コース>200mg/dl)と組織学的インスリン炎として
現れた急性糖尿病の出現について、マウスに点数をつけ
た。大体午前9時頃に各マウスの尾静脈から血液を取
り、ジスカングルコースメーター (Discan Glucose Me
ter) と試験紙(ベーリンガーベルケ (Behringwerk
e)、西ドイツ)を使用して血中グルコース濃度を測定し
た。インスリン炎は組織的証拠により判定した(ワイズ
マンインスティテュート(Weizmann Institute) の組織
学実験室でヘマトキシリン染色とライトグリーン染色を
行った)。試験スライドがどのマウスに由来するかは明
らかにしていない人間によりインスリン炎のグレード分
類を行った。その結果を表9に示す。ヒト hsp65に対
するNOD/Ltマウス脾臓細胞の応答と、 MThsp65に対す
るNOD/Ltマウス脾臓細胞の応答の間の差(1−4群)
は、対照大腸菌抗原に対するNOD/Lt脾臓細胞の応答、又
は hsp65に対する他の株の応答(5−7群)よりも有
意に大きかった(P<0.01)(スチュデントのT検定を
使用: ND、測定されなかった)。
する35月齢のNOD/LtマウスのT細胞応答は、マウスを
NThsp65に対して免疫することにより(2群)、又は
T細胞マイトジェンであるコンカナバリンA(ConA;4
群)でT細胞集団を活性化することにより増強させるこ
とができることを示している。Con Aは、in vivo で動
物内に存在する活性化された自己免疫性T細胞を優先的
に刺激することが証明されている。従ってin vivo で M
Thsp65に対する免疫をしたか、又は in vitro で Con
Aで活性化したNOD/LtT細胞は、ヒト hsp65に対する
本質的な応答を示す。
ない; IDDMを自然発症しない株 (C57BL/6(5群と
6群)又はC57BL/KS(7群と8群))の成体マウスは C
onA刺激によるT細胞反応性を示さない。最後に表9
は、in vitroでの ConAによる抗ヒト hsp65T細胞集
団の活性化は、1月齢の前糖尿病性のNOD/Ltマウス(2
群と4群)に急性糖尿病を移すことができることを示し
ている。
性の関連性は表10に示されている。表10のデータを
出した実験では、マロン (Maron)の記載する方法(前
述)に従い、 MThsp65( 5μg/ml)で脾臓細胞を繰
り返し刺激することにより、T細胞株が得られた。クロ
ーンは株細胞の限界希釈法により単離した。基本的に表
9に関して説明した方法に従い、T細胞クローンの、急
性糖尿病を移すことができる能力について試験した。た
だし5×106個の ConA活性化細胞を腹腔内に移し
た。表9について説明したよう、抗原に対するクローン
の増殖性応答はSIとして測定した。対照培養物のCP
Mは4,500-6,500 CPM であり、平均CPMからの標準偏
差はいつも10%未満であった。
対照に対するよりもヒト hsp65に対してより激しく応
答することがわかった。さらに、クローン27、C7、
そしてC9はヒト hsp65に対して強く応答し糖尿病誘
発性であったが、ヒト hsp65に対して比較的弱く応答
したクローン21は糖尿病を移すことができなかった。
クローン化T細胞はただ1つの特異性を有する抗原リセ
プターを発現するため、ヒト hsp65上のエピトープ(M
Thsp65上のエピトープにある程度交差反応性のエピト
ープ)を認識するT細胞により、急性糖尿病は前糖尿病
性NOD/Ltマウスに移されると結論される。
自然発生IDDMに対してワクチン予防をする 5−7匹の2月齢の雌のNOD/Ltマウスの群を、50μg
の油中抗原の腹腔内投与によりプライムしたか、あるい
はしなかった。マウスの脾臓細胞を、実施例13の表9
に関して説明したように抗原(5μg/ml)又は ConA
(125μg/ml)でインキュベートしたか、あるいは
しなかった。次に1月齢の前糖尿病性マウスの群の腹腔
内に細胞を移した(25×106個)。実施例13に記
載した方法で3週間後に急性糖尿病(高血糖症;血中グ
ルコース>200mg/dl)についてマウスを調べた。8
月齢に高血糖症とインスリン炎により自然発生IDDM
について検査した。この実験の結果を表11に示す。対
照(1群)との差は有意であった。(*P<001)。
数字は2−3回の実験の累積の結果である。
群)は7週齢で高血糖症ではなく、8月齢では81%に
ついて自然発生IDDMが見られた。これに対して、脾
臓細胞をin vitroでMThs65(2具)又は ConA(3
群)で活性化してあった場合は前糖尿病性マウスの脾臓
細胞を用いて急性糖尿病(血中グルコースが200mg/
dlを越える)を移すことができた。in vivo で MThsp6
5、BSA、 MThsp70でプライムしてあったマウスか
ら得られた脾臓細胞を、in vitroで各抗原で活性化の後
投与した。抗 MThsp65細胞(6群)により急性糖尿病
は誘発されたが、抗BSA又は抗 MThsp70細胞では活
性化されなかった(4群と5群)。ヒト hsp65に対し
て強く応答した ConA及び MThsp65活性化細胞に対し
て(表8と表9)、BSA又は MThsp70反応性細胞の
増殖定量では、 MThsp65又はヒト hsp65に対する反
応性は検出されなかった(図には示していない)。従っ
て急性糖尿病の転移は、ヒト hsp65に応答するT細胞
を含有する細胞集団に特異的であった。
目に発生する自然発生IDDMの発生率は有意に低下す
ることを示している。マウスを抗BSA又は抗 MThsp6
5脾臓細胞でインキュベートしても、急性糖尿病も自然
発生IDDMも誘導されなかった(4群と5群)。急性
の採用的に転移された(adoptively transferred) 糖尿
病が自然発生IDDMを防ぐ能力も、上記(表9) の抗
hsp 65T細胞で行った実験で見られた。31匹のマウ
スに毒性のクローン27、C7、C9を注射すると、す
べてが1−2週間で急性糖尿病になった。2週間以内に
これらはすべて高血糖症から自然に回復し、自然発生I
DDMを発症した31匹のうち2匹のみが8月齢で自然
発生IDDMを発症した。これに対して、無毒性クロー
ン21を注射された13匹のマウスは急性糖尿病を発症
せず、これらのマウスのうち6匹は6月目までに自然発
生糖尿病になった(P<001)。従って抗ヒト hsp6
5T細胞の採用的転移(adoptive trans fer)による糖尿
病は一過性である。しかしこれらのマウスは急性糖尿病
から回復しただけでなく、後の自然発生IDDMの進行
に対して耐性を獲得した。従って前糖尿病性マウスを無
毒性T細胞に接触させるとIDDMの発症を加速した
り、症状を悪化させたりすることはなく、むしろ糖尿病
反応に対して耐性を獲得させることになる。
自己免疫をワクチン予防しIDDMを阻止する 実施例13の表8に関して記載した方法により、T細胞
をConA又はMThsp65でインキュベートした後、ライダ
ー(Leider)ら、プロシーディングズオブナショナルアカ
デミーオブサイエンシーズオブユーエスエー(Proc. Na
tl. Acad. Sci.U.S.A.)第84巻、4577頁(1987
年)に記載の方法に従い、活性化細胞をγ線照射(1500
R)又はグルタルアルデヒド(03%、15分)で減弱化
することにより、3月齢の前糖尿病性NOD/Ltマウスの脾
臓細胞からT細胞ワクチンを作成した。5週齢の雌の前
糖尿病性NOD/Ltマウスの15又は25匹の群の腹腔内に
10 7個の処理した脾臓細胞をワクチン接種したか、又
はしなかった。6月齢の時、各群の5匹のマウスについ
て、ヒト hsp65に対する脾臓のT細胞の増殖応答を試
験した(刺激指数(SI)で表示してある)。抗原を添
加しない場合の対照CPMはワクチン接種をしなかった
ものは2,465±235であり、ワクチン接種したもの
は2,246±185であった。残りのマウスから採血
し、標準的固相ラジオイムノアッセイ(シェクター(Sc
hecter) ら、ジャーナルオブバイオロジカルケミストリ
ー(J. Biol. Chem.)第259巻、6411−6419頁
(1984年))により、ヒト hsp65に対する抗体を測定
した。血清抗体を検出するためにマイクロタイタープレ
ートを、 hsp65(抗 hsp65用)、インスリン(抗イ
ンスリン用)又はDMイディオタイプ陽性モルモット抗
インスリン(イディオタイプ抗体用)でインキュベート
(50μg/ml)することにより被覆した。
釈)でインキュベートし、125I標識ヤギ抗マウス免疫
グロブリン(アマーシャム社 (Amersham) 、英国;
10 5CPM/ウェル)を反応させて、これらの抗原に対す
る抗体の存在を検出した。 hsp65抗原(又はこれと交
差反応する抗原)を検出するためにウェルを1:5希釈
した試験血清15μlでインキュベートし、ウサギ抗 h
sp65免疫グロブリン(1:100希釈)で重層した。
125I標識ヤギ抗ウサギ免疫グロブリン(アマーシャム
社(Amersham) を使用して結合を測定した。相対的抗体
価は、1:100希釈血清のヒト hsp65に対する結合
のCPMを意味する。糖尿病ではない1月齢のNOD/Ltマ
ウスから得られた血清抗ヒト hsp65の平均CPMは1,
450±194であった。前記の固相ラジオイムノアッ
セイにより hsp65又は交差反応性抗原の存在について
マウスの血清を試験した。その結果を表12に示す。ワ
クチン接種したマウスはワクチン接種しなかったマウス
とは有意に差があった。(*p<001)。
MThsp65活性T細胞は、γ線照射(1,500R) 又はグル
タルアルデヒド(03%)処理で減弱化することがで
き、自然発生IDDMに対してワクチン予防することが
できることを証明している。他の実験的疾患で証明され
たように、照射処理又はグルタルアルデヒド処理自己免
疫T細胞は毒性がなく、急性糖尿病を引き起こさなかっ
た(データは示していない)。IDDMの予防は、ヒト
hsp65にに対するワクチン接種マウスの自然発生性の
T細胞と後退の反応性の著しい低下に関連していた。前
の例で説明したように、NOD/Ltマウスのランゲルハンス
島に対する障害は、血清中に抗 hsp65抗体に認識され
る蛋白が出現することで示される。この血清抗体はおそ
らく障害されたベータ細胞に由来するため、その量に対
するT細胞ワクチン接種の影響をみるのは興味深いこと
である。T細胞ワクチンの投与は、6月齢で血清中に現
れる hsp65又は交差反応性抗原の量を著しく低下させ
ることがわかる(表12)。この低下は組織学的観察で
インスリン炎が検出されないことと関連していた(デー
タは示されていない)。
た抗ヒトhsp65T細胞は、減弱化され自然発生IDD
Mの進行に対してNOD/Ltマウスをワクチン予防するのに
使用できる。ワクチン化状態はIDDM過程の免疫学的
兆候が減少したことで特徴づけられた: 抗ヒト hsp6
5T細胞と抗体。同時に hsp65又はhHSP65に交差反
応性の血清抗原が減少していた(インスリン炎の停止に
より説明できる)。
の誘発性糖尿病に対する耐性を作り出す 実施例9において、インスリン炎と高血糖症に特徴づけ
られる急性糖尿病は、油中 MThsp65で前糖尿病性NOD/
Ltマウスを免疫することにより誘発することができるこ
とが証明された。またこの型の糖尿病は一過性であり、
実際には後の自然発生IDDMにつながることも示され
た。本実験は急性誘発性糖尿病に対する、ヒト hsp65
に対する免疫の効果とT細胞ワクチン接種の影響を試験
する。実施例15の表12に関して記載したように10
7個のCon A活性化、グルタルアルデヒド処理した脾臓
細胞で、4週齢の雌のNOD/Ltマウスの群をワクチン接種
したか、又はしなかった。2週間後に急性糖尿病を誘発
するために、マウスにMThsp65又はヒト hsp65 (油
中50μg) で刺激(challenge)した。次に8月齢で自
然発生IDDMの進行を見るために、実施例13に記載
したように高血糖症とインスリン炎を測定して、マウス
を調べた。その結果を表13に示す。有意差は*p<0
01であった。
65又は MThsp65に対して応答し、急性、一過性糖尿
病を発症したことがわかる。この後に自然発生IDDM
に対する耐性が起きた。これに対してT細胞処理マウス
は、抗原誘発急性糖尿病に対して耐性であった。これら
も自然発生IDDMに対しては防御性であった。即ちT
細胞ワクチン接種は、人工免疫により誘発された急性糖
尿病と後の自然発生IDDMに対して、有効に耐性を作
り出している。
65配列と完全ではないが部分的相同性を有するアミノ
酸配列であると推定された。完全な相同性を有するもの
はそれほど作用が強くないため、対応するエピトープは
おそらく少し異なるのであろう。ヒト hsp65配列のカ
ルボキシル基末端で始まる一連のペプチドを合成し、マ
イコバクテリウムとヒトの配列でわずかに違いがある配
列を選んだ。このようなペプチドのひとつは、図3に示
すヒト hsp65分子のアミノ酸配列437−460を有
している、即ちH-Val-Leu-Gly-Gly-Gly-Cys-Ala-Leu-Le
u-Arg-Cys-Ile-Pro-Ala-Leu-Asp-Ser-Leu-Thr-Pro-Ala-
Asn-Glu-Asp-OH。このペプチドはp277と命名した。
対照ペプチドp278は、3個のアミノ酸分だけp27
7と重複し、次の配列を有する: H-Asn-Glu-Asp-Gln-L
ys-Ile-Gly-Ile-Glu-Ile-Ile-Lys-Arg-Thr-Leu-Lys-Ile
-OH 。これは図3のアミノ酸配列458−474に相当
する。
おけるp277に対する免疫応答 実施例12に記載した方法に従いp277に対する増殖
性応答について、前糖尿病性の3月齢の雌のNOD/Ltマウ
スからの脾臓細胞の懸濁液を試験し、その結果を表5に
示した。これらのマウスはさらに1−3月の間明瞭なI
DDMを発現しないが、それらの脾臓T細胞はp277
に対して強い応答を示すが、p278に対しては応答し
ない。本実験及び他のinvitro 実験で、ペプチドの最適
濃度は5μg/mlである。
277と hsp65変種に対して応答する 急性糖尿病を若い前糖尿病性NOD/Ltマウスに移すことが
できるC7とC9T細胞クローン(前記の表10参照)
は、p277に対して応答する。このクローンはp27
7と全マイコバクテリウム hsp65に対して応答する
が、 hsp65遺伝子を含まないプラスミッドの対照調製
物には応答しないことがわかる。従って病原性T細胞が
p277を認識するため、p277ペプチドは病原性エ
ピトープを有すると結論することができる。C7とC9
もマイコバクテリウム hsp65分子に対して応答するた
め、p277エピトープはマイコバクテリウム hsp65
分子上にも存在するようである。従ってp277配列に
相同性のマイコバクテリウム hsp65配列は免疫学的に
機能性である。マイコバクテリウムの配列は以下のよう
であり、p277のヒトの配列から下線の部分が置換を
受けている:H-Val-Ala-Gly-Gly-Gly-Val-Thr-Leu-Leu-
Gln-Ala-Ala-Pro-Thr-Leu-Asp-Glu-Leu-Lys- - - -Leu-
Glu-Gly-Asp-OH 。24個のアミノ酸のうち13個が置
換されていることがわかる。従ってp277の免疫学的
な性質は、その配列の約60%の変化を許容できると結
論することができる。最小エピトープは24個でなく1
0個のアミノ酸であったとしても、マイコバクテリウム
の配列から少なくとも4から6個のアミノ酸だけ異なら
ないp277の10個のアミノ酸の配列はない。
に対する処理として使用できる 非免疫原性型の全 hsp65分子は、アジュバント中の免
疫原性 hsp65に対する免疫により誘発されたNOD/Ltマ
ウスの急性糖尿病に対して、耐性を誘発することができ
ることが実施例10で証明された。図7は、ペプチドp
277は誘発糖尿病に対する耐性を得るのに使用するこ
とができる(しかしp278は異なる)ことを示してい
る。7匹の5週齢の雌の前糖尿病性NOD/Ltマウスの群
を、不完全フロイントアジュバント中の50μgのp2
77又はp278で処理した。2週間後、急性糖尿病を
誘発するためにマウスを不完全フロイントアジュバント
中の50μgの免疫原性 hsp65で免疫した。3週間
後、血中グルコースを測定した。p277で処理したマ
ウスはいずれも高血糖症(血中グルコースが200mg/
dl以上)にはならなかったことがわかる。これに対して
ペプチドp278で処理した7匹のマウスのうち5匹は
糖尿病になった。p277による処理はまた、これらの
7匹のマウスのすべてで自然発生糖尿病の発症を防止し
たが、種々の抗原(例えばウシ血清アルブミン又は hsp
70)で処理された対照マウスの80%は7月齢までに
糖尿病を発症した。即ち、p277による処理は、誘発
性糖尿病及び自然発生糖尿病の両方に対して耐性を与え
た。従って特異抗原は、非免疫原性型で投与された全 h
sp65分子で見られる治療効果を生み出すことができ
る。
尿病に関するものであるが、全 hsp65分子又はこれと
免疫学的に交差反応性の他の分子と同様にこのペプチド
は、ヒトにおける診断と治療に使用できることは明白で
ある。これはNODマウスの糖尿病はヒトIDDMの忠
実なモデルとして認識されているからである。さらにN
ODマウスは、ヒトIDDMに関連したDQβの主要組
織適合性抗原複合体(MHC)のクラスII分子に類似の
分子(IA)を有することが、トッド(Todd) ら、
ネーチャー(Nature) 第329巻、599頁(1987年)
により発表されている。従ってヒトとNOD糖尿病誘発
性T細胞は両方とも、DQβ鎖の57位のアスパラギン
酸の欠如したMHCクラスII分子により提示される同じ
ペプチド配列を認識するはずである。もし糖尿病を発症
しているヒトとNODマウスが同じ抗原(例えばp27
7)を見ているなら、このようなペプチドはヒト及びN
ODマウスのIDDMの診断と治療に使用することがで
きる。
ーカーとして役立つIDDMの進行中にヒトの体で産生
される特定の蛋白は、約65キロダルトンのヒト熱ショ
ック蛋白(又はこれと交差反応性の抗原)である。65
キロダルトンのヒト熱ショック蛋白のヌクレオチドと推
定されるアミノ酸配列を図3に示す。以下この蛋白をhH
SP65と呼ぶ。65キロダルトン蛋白に結合する同じ抗
体と交差反応する他の蛋白もin vivo で産生される。例
えばマイコバクテリウムテューバーキュローシス(M. tu
beculosis)の hsp65分子に対して特異的なモノクロー
ナル抗体と交差反応する47キロダルトン、30キロダ
ルトンそして25キロダルトン分子が、マウスとラット
中に見いだされた。このような抗体と交差反応する47
キロダルトン分子もラット繊維芽細胞中に見いだされて
いる。種間の熱ショック蛋白の保存性を考慮すると、こ
れらはヒトにも存在するであろうことは充分予想され
る。さらにIDDMの進行中に血液又は尿中に放出され
る蛋白は、hHSP65ではなくhHSP65と交差反応性の分
子であるかも知れない。それはベータ細胞上の表面蛋
白、又はhHSP65上に存在するエピトープを保持してい
る蛋白の断片かも知れない。
存在を測定される、IDDMの存在又はその発生段階の
診断マーカーとして役立つ分子は、hHSP65に対するポ
リクローナル抗体、そして好ましくはhHSP65のp27
7配列に対するモノクローナル抗体又はポリクローナル
抗体と免疫学的に反応するものである。本明細書と請求
の範囲の目的において、「hHSP65」という用語は65
キロダルトンのヒト熱ショック蛋白のみでなく、任意の
種の65キロダルトンの熱ショック蛋白に対するヒト血
清中に見いだされる他の関連分子も含むものと意図され
る。この定義は具体的には、すでに見いだされ本明細書
中で議論されている65キロダルトン、25キロダルト
ン及び47キロダルトン蛋白を含むが、これらに限定さ
れるものではない。
ため、本明細書に開示した診断マーカーの存在は、具体
的に任意の生物の熱ショック蛋白に対するポリクローナ
ル抗体又はモノクローナル抗体によって検出することが
できる。例えばマイコバクテリウムテューバーキュロー
シス(M. tubeculosis、 MT)の熱ショック蛋白は、遺伝
子工学的方法により容易に大量に産生することができ
る。この蛋白はウサギやマウスにおいて抗体の産生に使
用することができる。本発明に従ってウサギ抗MThsp6
5ポリクローナル抗体は、hHSP65の存在を測定するた
めに使用することができる。同様に MThsp65に対して
免疫したマウスの脾臓から得られた MThsp65と反応す
るモノクローナル抗体が選択される。このような抗体は
またhHSP65と交差反応するであろう。p277は病原
的に活性のエピトープを含むことが証明されているた
め、好適なモノクローナル抗体はp277蛋白に対して
作成されたものである。本明細書の実施例で使用される
特定のモノクローナル抗体は例示のためのみである。あ
る抗原と特異的に反応する性質に関して特異的に産生さ
れたこのような任意のモノクローナル抗体が、本発明の
目的のために他のどれよりも優れていると考えられる理
由はない。
と交差反応性の分子)は診断マーカーとして使用できる
のみでなく、hHSP65に対する抗体も使用することがで
きる。ヒトの患者においてhHSP65又は関連蛋白が放出
されたとき自然発生的に形成される抗体が測定される。
hHSP65又は関連蛋白の測定がこの目的に役立つのと同
程度に、このような抗体の陽性の結果は、IDDMが迫
っていることの指標として有用である。任意の hsp65
蛋白との反応性を捜して、抗 hsp65抗体は測定され
る。即ち MThsp65蛋白は抗hHSP65抗体と交差反応す
る。もちろん抗hHSP65抗体の存在の測定のための使用
に好適な蛋白はhHSP65蛋白であり、さらに好ましくは
そのp277配列である。しかし通常の技術を有する当
業者は過度に実験をしなくても、ある蛋白又は蛋白断片
が抗hHSP65抗体と交差反応するかどうかを、経験的に
決めることができる。このような蛋白又は他の分子が抗
hHSP65抗体と免疫反応するか否かを求めるために、簡
単なin vitro試験が使用される。もし交差反応する場合
は、本発明の方法において使用され、それも本発明に包
含されると考えられる。
載したNOD/Ltマウス、ヒトhHSP65に誘発されそのT細
胞はヒト hsp65に対して応答する他の株のマウス、C5
7BL/6 、上の病原性エピトープに対応することが証明さ
れているが、そのT細胞はp277に対して応答しな
い。従ってこれはhHSP65上の唯一の病原性エピトープ
でないことは明らかである。実際に前糖尿病性ヒト患者
の血液又は尿中に見いだされる診断マーカーは、約62
キロダルトンの分子量を有すると性状解析されている。
従って主要組織適合性複合体(MHC)で提示される特
定のエピトープ(ヒト白血球抗原、HLA)は個人毎に
異なるであろうと予想される。従って現在p277配列
が好適であると提示されているが、通常の技術を有する
当業者は、hHSP65蛋白中の抗原性配列はp277と同
じ又は関連した配列を有するものが見つかるであろうこ
とを理解できるであろう。本発明はすべてこのような配
列を包含すると意図される。
してそれに特異的な抗体が、発生段階の糖尿病の診断マ
ーカーとして使用できるのみでなく、このような蛋白に
特異的なT細胞も使用できることを示している。実際に
このような特異的なT細胞は抗体の出現に先行するよう
である。実際にベータ細胞を攻撃するのは抗体ではなく
T細胞である。通常の技術を有する当業者は、特定の抗
原に対するT細胞活性の多くの測定法があることを理解
できるであろう。例えば試験対象者からリンパ球を得
て、hHSP65又は交差反応性抗原に接触させ、活性化に
対して起きる種々の効果(例えば増殖、サイトカイン産
生又はリンホカイン産生、酵素産生、カルシウムフラッ
クスなど)を測定する。このような測定法は当該分野の
技術の範囲内にある。
バント関節炎やヒトのリウマチ関節炎に関連しているこ
とが知られている。IDDM過程と異なり関節炎の過程
はその顕著な症候や症状により明白に表現されているた
め、IDDMを発症している人と関節炎の人との鑑別に
おいて、 hsp65又は抗 hsp65の測定に関する不確定
性はないであろう。従って関節炎の症候や症状がないの
に hsp65又は抗 hsp65が検出される場合は、全臨床
的ベータ細胞の破壊と発生段階のIDDMの可能性に注
意を向けさせるのに役立つであろう。ベータ細胞に対す
る自己免疫の診断を確定するのに、追加の検査(例えば
ベータ細胞に対する抗体)が利用されるであろう。ID
DM過程が臨床的には無症状であるのに対し、全身性エ
リテマトーデス(SLE)は明白な症候と症状で特徴づ
けられるため、全身性エリテマトーデスとhsp90との
関連は、IDDM過程と混乱されることはないであろ
う。
DDMの診断に使用され、ここで hsp65又は他の免疫
学的に交差反応性分子は患者に皮下注射され、皮膚反応
の有無が観察される。またはhHSP65又は関連分子を患
者の血液又は血液成分と接触させ、患者の血液中に任意
の公知の免疫学的方法により検出される抗hHSP65との
免疫学的反応の有無(即ち hsp65と交差反応する抗
体)について観察される。このような公知の免疫学的方
法にはラジオイムノアッセイ、蛍光免疫定量法、ELISA
(酵素免疫測定法)、ケミルミネセンス測定法などがあ
る。
(例えば投与後24から72時間後)に注射部位での皮
膚反応が測定される。膨大化及び/又は発赤は遅延化過
敏症に起因する。in vitroの血清学的検査では、患者の
血清をhHSP65又は関連蛋白と接触させる。血清が hsp
65の抗原決定基に対する抗体を含有する場合は、免疫
反応が起こり、これを標準的方法(例えばELISA 、凝集
など)により検出し定量する。hHSP65、抗hHSP65又
はhHSP65特異的T細胞の存在を検出するのに公知の免
疫測定技術が使用される。例えば hsp65を使用する測
定法により、ある人の血清中の抗hHSP65抗体の存在が
陽性であると測定された場合はIDDMが発生段階であ
るか又は存在することを意味するという事実を通常の技
術を有する当業者が知れば、このような当業者は使用で
きる免疫測定技術のタイプは充分認識しているであろ
う。ラジオイムノアッセイ(固相又は液相)以外に、任
意の従来の免疫測定法(例えば酵素結合免疫吸着定量法
(ELISA)、酵素やラジオアイソトープ以外の標識物を用
いる不均一免疫測定法(競合法及び非競合法)、蛍光消
光法及び酵素チャネリング法に基づく均一免疫測定法、
免疫沈降法(放射免疫拡散法を含む)、そして肉眼の半
定量的検出法と定量的濁度的検出法に基づく凝集測定法
など)が使用できる。
ッチ測定技術を使用することができる。同様に本発明を
達成するための種々の測定を実施するために、キットを
調製してもよい。このようなキットは単一の測定又は決
まった数の測定を実施するのに必要なすべての材料を含
むであろう。例えば抗hHSP65抗体の存在を測定するた
めのキットは、固相に固定された hsp65と、検出すべ
き抗hHSP65抗体の非可変領域を認識することができる
標識した抗体(例えば標識抗ヒトFab)を含む。hHSP65
の存在を測定するためのキットは、固相に固定された抗
体(これはhHSP65と反応するか又は交差反応する)、
そして固定抗体が認識するエピトープとは異なるhHSP6
5のエピトープと反応することができる標識抗体を含
む。キットはまた、 hsp65と抗hHSP65抗体の免疫複
合体を沈降させることができる試薬と、キットの使用法
を記載する説明書とキットの材料を入れるための容器を
含む。任意の従来の標識物(例えばラジオアイソトー
プ、酵素、発色団、又は発蛍光団)を使用することがで
きる。典型的なラジオアイソトープはヨード−125又
はイオウ−35である。本目的のための典型的な酵素に
は、西洋ワサビペルオキシダーゼ(horseradish peroxi
dase) 、α−ガラクトシダーゼ及びアルカリ性ホスファ
ターゼがある。本発明の診断用組成物は、 hsp65に適
当なアジュバントや付属成分を組合せることにより調製
される。
ハンス島細胞と熱ショック繊維芽細胞はマイコバクテリ
ウム hsp65と交差反応する分子を放出する。マイコバ
クテリウム hsp65の免疫はIDDMを引き起こすとい
う事実は、マイコバクテリウム hsp65と交差反応する
抗原に対する免疫攻撃はベータ細胞に障害を与えること
を示している。このような免疫応答は、交差反応性 hsp
65又は侵入する微生物により偶然免疫された後に起き
る最初の出来事である。hHSP65又は関連蛋白の放出
も、ウイルス又は毒素(toxin)によるベータ細胞の障害
の後に起きるであろう。即ち血液又は尿中の hsp65陽
性分子の出現がなぜIDDMの進行の初期の兆候である
かというと、それはこれらの分子はベータ細胞の障害の
進行に伴って放出されるからである。同様にhHSP65に
対する免疫応答それ自身がIDDMを引き起こすため、
抗hHSP65抗体はIDDMが迫っていることの信頼でき
る兆候である。
あっても、又はウイルスや毒素によるベータ細胞の障害
の後のhHSP65の放出によるものであっても、ベータ細
胞中に含まれるhHSP65が攻撃されるため、抗hHSP65
抗体又は抗hHSP65T細胞の産生は、ベータ細胞破壊の
過程を増強し永続させる。毒性抗 hsp65T細胞により
移されたか又は hsp65に対する能動的免疫により誘発
された急性糖尿病から回復した後は、自然発生IDDM
を防ぐことができるとうい事実は重要である。これは自
己免疫応答の動力学と規模がそれ自身の調節につながる
ということを示唆している。潜行性で慢性の過程は自己
免疫疾患に対する自然の防御に対し「こそこそ逃げてし
まう」ようであるが、明かな自己免疫刺激は制御を増強
するようである。疾患の急性発症による自己免疫疾患に
対する耐性の獲得は、実験的自己免疫脳脊髄炎(EA
E)のラットモデルで普通に見られる。ミエリン塩基性
蛋白( myelin basic protein)に対する能動的免疫又は
活性T細胞の受動的転移により誘発された急性EAEか
らの自然回復の後は、ラットはEAEをさらに誘発させ
ようとする試みに対して耐性を示す。EAEの発現は、
ミエリン塩基性蛋白に応答する毒性T細胞を調節するこ
とができる機構(おそらく抗イディオタイプ抑制)を活
性化することが見いだされた。減弱化した自己免疫T細
胞を使用してT細胞ワクチン接種をすることが、急性疾
患を引き起こさずに制御機構を活性化させる1つの方法
のようである。EAEに対するワクチン接種で示された
種類の抗イディオタイプ及び抗エルゴタイプ(anti-erg
otypic)T細胞は、自己免疫性抗 hsp65T細胞を鎮
め、IDDMの臨床症状の発現を防止する。
寛容又は抑制の誘導は、どのようにして糖尿病過程が開
始した後でもこれを防止し治療することができるかを説
明するのに役立つ。即ちhsp65、hsp65と交差反応す
る低分子量分子(25、30又は47キロダルトン)、
又は断片、修飾されたペプチド配列、合成ペプチド、又
は融合蛋白の計画に基づく又は hsp65の物理化学的要
求を満足するように計画された有機分子でさえも、hHSP
65に対するポリクローナル抗体と交差反応するか又は
hHSP65と交差反応する抗体の産生を引き起こすことが
できる限りは、IDDM過程を防止又は治療するのに使
用することができる。この目的のためには hsp65のp
277配列が好適な物質である。さらにhHSP65又は関
連抗原に対して特異的な減弱化T細胞は、その断片又は
活性部分とともに、このような免疫の誘発又はこのよう
な免疫応答の抑制に使用することができる。
りだしてベータ細胞の自己破壊を停止させることによ
り、IDDMの進行の持続に対して効果的な治療用組成
物として有用であることが証明されている。発生段階の
IDDMのこのような治療に使用される活性成分は、hH
SP65と免疫学的に交差反応する任意の物質である(即
ちそれはhHSP65に対するポリクローナル抗体と交差反
応するか、又はhHSP65と交差反応する抗体を誘導す
る)。このような物質はペプチドであろうと蛋白、炭水
化物又は他の物質であろうと、寛容を誘導する方法で投
与された場合は、この交差反応性によりhHSP65に対す
る寛容を誘導するのに役立つ。この物質が hsp65蛋白
の場合は、任意の種のものが使用できる。hHSP65と免
疫学的に交差反応するために、この物質は完全な蛋白で
ある必要はなく、蛋白自身の抗原活性を保持する蛋白の
断片(例えばp277)でもよい。ある物質がhHSP65
と交差反応するか否かはルーチンの実験により測定する
ことができる。その物質がhHSP65に対するポリクロー
ナル抗体と交差反応するか、又はhHSP65と交差反応す
る抗体の産生を誘導する場合、それは発生段階のIDD
Mの治療法に関する限り、本発明の範囲に含まれると考
えられる。このような物質がヒトの治療に使用できると
いう追加の証明は、実施例10に記載したようにマウス
の試験で寛容の誘導を試験することである。このような
実験はルーチン的であり、過度な実験は必要ない。
65である。ヒト熱ショック蛋白のアミノ酸配列は図3
に記載されている。この目的のためにこの蛋白を使用す
ることができる。そのp277配列はこの目的のための
もう一つの好適な分子である。ここに記載した hsp65
蛋白以外に、 hsp65と交差反応する能力を有するその
塩、官能性誘導体、前駆体及び活性画分も使用すること
ができる。図3の配列又はバンエデン(vanEden)ら(前
述)の記載する配列(1つ又はそれ以上のアミノ酸が欠
失しているか付加されている、又は他のアミノ酸で置換
されている)も、それらがhHSP65と免疫学的に交差反
応する能力を有している限り、本発明に包含される。
白分子のカルボキシル基の塩とアミノ基の酸付加塩の両
方を意味する。カルボキシル基の塩は当業者に公知の方
法で作成され、例えばナトリウム塩、カリウム塩、カル
シウム塩、アンモニウム塩、第二鉄塩、又は亜鉛塩など
の無機塩、そして例えばアミン(例えばトリエタノール
アミン、アルギニン又はリジン、ピペリジン、プロカイ
ンなど)との有機塩基の塩を含む。酸付加塩としては、
例えば無機酸(例えば塩酸又は硫酸)との塩、そして有
機酸(例えば酢酸又はシュウ酸)との塩を含む。本明細
書で使用される「官能性誘導体」という用語は、残基又
はN−又はC−末端基上の側鎖として存在する官能基か
ら当業者に公知の方法で調製される誘導体を意味してお
り、薬剤として許容される限り(即ち蛋白の活性を破壊
せず、それを含む組成物に有害な性質を与えず、その抗
原性に悪影響を与えない限り)本発明に包含される。
シル基の脂肪族エステル、アンモニウム又は一級又は二
級アミンとの反応によるカルボキシル基のアミド、アシ
ル部分(例えばアルカノイル、カルボサイクリックアロ
イル基)と作成されるアミノ酸残基の遊離アミノ基のN
−アシル誘導体、又はアシル部分と作成される遊離ヒド
ロキシ基(例えばセリン残基又はスレオニン残基のヒド
ロキシ基)のO−アシル誘導体がある。「前駆体」と
は、動物又はヒトの体内で hsp65の前に形成され hsp
65に変換される化合物である。
画分」としては、hHSP65と交差反応する能力を有する
限り、 hsp65蛋白分子単独又は関連する分子と一緒で
あるか又はそこに結合している残基(糖又はリン酸残
基)と一緒である hsp65蛋白のポリペプチド鎖の断片
又は前駆体、又は蛋白分子又は糖残基自身の凝集体を含
む。このような活性画分の例としては、hHSP65のp2
77配列がある。
るより寛容を誘導するような方法で投与することが、非
常に重要である。即ちそれは油又は他の免疫原性アジュ
バント中で投与されるべきである。活性成分が寛容を誘
導するのに好適な投与方法は、抗原−担体複合体が投与
された時抗原に対する寛容の誘導を促進する担体ととも
に投与することである。このような担体は寛容誘導性担
体(tolerogenic)として知られている。公知の寛容誘導
性担体としては、D−アミノ酸の重合体、ポリエチレン
グリコール、糖分子の重合体、自己IgG分子、自己脾
臓細胞、及び脂肪酸分子がある。寛容を誘導するため
に、抗原はモノマーとして非常に可溶性の形で投与され
る。抗原に対する寛容を誘導する他の公知の方法は、寛
容誘導性特徴により具体的に選択された担体さえなしで
経口的に投与する方法である。寛容を誘導するための具
体的な投与方法は、通常の知識を有する当業者に公知で
あり、このような方法は本発明において使用される。こ
のような方法自体は本発明には含まれない。
胞調製物は、前記のIDDM特異的抗原に対する特異性
を獲得したT細胞(即ちhHSP65、又はこれと交差反応
性の抗原、例えばp277に特異的)から得られる。こ
れらの特異的細胞は、このような抗原の存在下でインキ
ュベートするか、又はT細胞による免疫応答を誘導する
ことができるマイトジェン(例えばコンカナバリンA)
でインキュベートして活性化されていることが必要であ
る。このような活性化IDDM特異的T細胞は、好まし
くは例えば放射線照射により減弱化される。好適な減弱
化の方法(これはT細胞の免疫原性を増加させる好まし
い効果もある)は、充分な圧力と時間の水圧で処理し
て、膜蛋白の実質的な損失を伴うことなくT細胞の免疫
原性を増強させることによる、圧力処理である。又はそ
の圧力は、細胞から細胞表面蛋白が剥がれるような強さ
と時間であってもよい。低速遠心分離により細胞を除去
した後、高速遠心分離をしてその断片を、上澄液中に残
存している可溶性蛋白のように、ワクチンとして使用す
る。これらの方法のすべては本特許の譲受人のヨーロッ
パ特許第 261,648号に記載されており、その内容は参考
のため本明細書中に引用されている。IDDM特異的、
活性化T細胞はまた、化学的架橋剤(例えばホルムアル
デヒド、グルタルアルデヒド、又は8−メトキシソラレ
ンのような光活性化ソラレン架橋剤(本特許の譲受人の
ヨーロッパ特許 333,606号に記載されており、その内容
は参考のため本明細書中に引用されている))で処理し
てもよい。このようなT細胞はまた細胞骨格破壊剤(例
えばサイトカルシン(cytochalsin)又はコルヒチン(co
chicine))で処理してもよい。圧力処理、化学的架橋剤
処理及び細胞骨格破壊剤処理のどれを組合せてもよい。
さらにこの様に処理した細胞は、溶解し、固定された細
胞膜のみ回収し、使用することができる。これらの方法
のすべては、ヨーロッパ特許第261,648 号に詳細に記載
されている。
れと交差反応性の抗原)に特異的なT細胞リセプターの
可変領域、及び好ましくはそのVDJ領域を単離し、自
己免疫脳脊髄炎T細胞リセプターに対する、ハウウェル
(Howell)(前述)とバンデンバーク(Vandenbark)
(前述)の記載した方法で、本発明のT細胞ワクチン調
製物として使用することができる。本明細書に記載した
ようにIDDM抗原がいったん明らかになれば、IDD
Mに関してこれらすべての公知の方法を使用することが
できる。いったん抗原が公知になれば、通常の技術を有
する当業者は、過度の実験をすることなくこれらのすべ
ての技術を実施することができる。従って本発明はこの
ような方法のすべてを含むものと意図される。これらの
すべては、本発明の抗原を使用する追加の方法である。
このような寛容誘導性組成物は、例えばIDDMの進行
に関して遺伝的な危険性のあるIDDM患者の家族で、
IDDMの進行を防止するためのワクチンとして投与さ
れる。しかし好ましくは、血液又は尿中にhHSP65が検
出される人で、好ましくはhHSP65に対する免疫応答が
発現する前に、IDDMの持続的進行を防止するために
使用される。寛容誘導性は免疫応答を防止し、従って調
節不可能な抗hHSP65応答により引き起こされる障害
(IDDM)を防止する。しかし抗hHSP65抗体が出現
した後に本発明の組成物を治療に使用しても遅すぎるこ
とはない。表8と表13に示した実験の結果は、本発明
はランゲルハンス島に対する自己免疫が始まった後でも
免疫応答を停止するのに役立つことを示している。ヒト
の自己免疫過程の進行は何年もかかるため、応答のダウ
ン調節(down regulation)でさえ有効であろう。
Mの診断のための診断組成物における抗原とともに、特
にIDDMの緩解と治療のためのワクチンとして、薬剤
組成物における免疫原として使用することができる。当
業者に公知の方法で調製される、これらの薬剤組成物及
び診断用組成物は、また本発明の一部を構成する。
しての効果を改良するための別の方法は、公知の遺伝子
工学的方法で hsp65をそのまま又は融合蛋白の一部と
して又はその多分子体(multimer)として発現する微生物
を作成することである。これらの微生物自身は、その微
生物に対する抗体の産生を刺激するのみでなく、IDD
Mの緩解と治療に有用な生きたワクチンの調製に使用す
ることができる。これらの遺伝子工学的に作成された微
生物、及びそれらを含む薬剤組成物もまた、本発明の一
部を構成する。適切な遺伝子工学的に作成された微生物
の例としては、バクシニア(Vaccinia) やサルモネラ(S
almonella)の株がある。本発明の組成物は、経口的に又
は非経口的(例えば皮下、筋肉内、静脈内、鼻腔内、肛
門内)に投与される。寛容誘導性薬剤組成物は当業者に
公知の方法で調製される。前記の具体的な態様は、現在
の知識を応用することにより本発明の概念から逸脱する
ことなく、本発明の具体的な態様を他人が容易に修飾又
は適用することができるように、充分記載されており、
従ってその様な改良や応用は開示された態様内に包含さ
れるものと考えられる。本明細書で使用された用語は説
明のためのみであり、限定するものではない。
スの血清中の hsp65、抗 hsp65、抗インスリン抗
体、そして抗イディオタイプ抗体の量を示す。
疾患の進行が明瞭になる前に hsp65と抗 hsp65が顕
著に増加していることを示すグラフである。
ある)のヌクレオチドと、推定されるアミノ酸配列を示
す。
定されるアミノ酸配列を示す。
T-hsp 65及び MT-hsp 70に対するNOD/LtT細胞の自
然の反応性の程度を示すグラフである。
7とp278に対するT細胞の増殖応答を示すグラフで
ある。
ミッドコントロールに応答しての、若い前糖尿病性NOD/
Ltマウスに急性糖尿病を移すことができるC7とC9T
細胞の増殖を示す棒グラフである。
る、ペプチドp277とp278に対する免疫の結果を
示す。
Claims (7)
- 【請求項1】 患者の血液又は尿を検査して、hHSP65
に対する抗体と免疫学的に反応性のある蛋白の有無、又
はhHSP65と免疫学的に反応性のある抗体又はT細胞の
有無を調べることよりなる、患者のインスリン依存性糖
尿病(IDDM)の存在又はその発生段階(incipienc
e)を検出する方法。 - 【請求項2】 関節炎の激しい症状もしくはサインを示
さない患者のIDDMの存在又はその発生段階を検出す
る方法であって、 患者に対して、hHSP65蛋白、抗−hHSP65抗体、hHSP
65と免疫反応するT細胞、又は、hHSP65に対する抗
体と免疫反応するいずれかの蛋白と免疫反応するT細胞
もしくは抗体の存在を調べて、 hHSP65蛋白、抗−hHSP65抗体、hHSP65と免疫反応
するT細胞、又は、hHSP65に対する抗体と免疫反応す
るいずれかの蛋白と免疫反応するT細胞もしくは抗体の
存在陽性を示す結果によってIDDMの存在又は発生段
階の高い可能性を示す、 ことを含む請求項1の方法。 - 【請求項3】 抗−hHSP65抗体の存在、又は、hHSP6
5に対する抗体と免疫反応するいずれかの蛋白と免疫反
応する抗体の存在について患者を調べる請求項1又は2
の方法。 - 【請求項4】 抗−hHSP65抗体の存在、又はhHSP65
に対する抗体と免疫反応するいずれかの蛋白と免疫反応
する抗体の存在を検出するために用いる抗原が、 (a) hHSP65、 及び(b) Val-Leu-Gly-Gly-Gly-Cys-Ala-Leu-Leu-Arg-
Cys-Ile-Pro-Ala-Leu-Asp-Ser-Leu-Thr-Pro-Ala-Asn-Gl
u-Asp の配列を含むポリペプチド、又はそのいずれかの
修飾物であってそれと免疫学的に交差反応をするが完全
な熱ショック蛋白ではない修飾物、 からなる群より選ばれる請求項3の方法。 - 【請求項5】 hHSP65と免疫反応するT細胞の存在、
又はhHSP65に対する抗体と免疫反応するいずれかの蛋
白と免疫反応するT細胞の存在を、患者について調べる
請求項1の方法。 - 【請求項6】 T細胞増殖テストであって、 (i) 患者から得た血液サンプルのT細胞を含む単核細
胞フラクションを調製し; (ii) 該単核細胞フラクションに、(a)hHSP 65;及
び(b)Val-Leu-Gly-Gly-Gly-Cys-Ala-Leu-Leu-Arg-Cys-I
le-Pro-Ala-Leu-Asp-Ser-Leu-Thr-Pro-Ala-Asn-Glu-Asp
の配列を含むポリペプチド、又はそのいずれかの修飾
物であってそれと免疫学的に交差反応をするが完全な熱
ショック蛋白ではない修飾物;からなる群より選ばれる
抗原を添加し; (iii) 該単核細胞フラクションを該抗原の存在下で、
適当な培養条件で適当な期間インキュベートし; (iv) インキュベーション期間が終る前の適当な時期
に(iii) のインキュベートした細胞培養物にラベル化ヌ
クレオチドを加えて、増殖するT細胞のDNAにラベル
化ヌクレオチドが取り込まれるようにし; (v) 該T細胞へ取り込まれたラベル化ヌクレオチドの
量を分析して増殖するT細胞の量を決定する、 ことを含む上記T細胞増殖テストからなる、請求項5の
方法。 - 【請求項7】 IDDMを診断するための、(a)hHSP 6
5;及び(b)Val-Leu-Gly-Gly-Gly-Cys-Ala-Leu-Leu-Arg
-Cys-Ile-Pro-Ala-Leu-Asp-Ser-Leu-Thr-Pro-Ala-Asn-G
lu-Aspの配列を含むポリペプチド、又はそのいずれかの
修飾物であってそれと免疫学的に交差反応をするが完全
な熱ショック蛋白ではない修飾物;からなる群より選ば
れる抗原。
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