HU224694B1 - Immunological binding molecules inhibiting the syncytial fusion of trophoblast cells - Google Patents

Immunological binding molecules inhibiting the syncytial fusion of trophoblast cells Download PDF

Info

Publication number
HU224694B1
HU224694B1 HU0400839A HUP0400839A HU224694B1 HU 224694 B1 HU224694 B1 HU 224694B1 HU 0400839 A HU0400839 A HU 0400839A HU P0400839 A HUP0400839 A HU P0400839A HU 224694 B1 HU224694 B1 HU 224694B1
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
deletion
protein
amino acids
fusion
sequence
Prior art date
Application number
HU0400839A
Other languages
English (en)
Inventor
Hans-Georg Frank
Peter Kaufmann
Ulrike Schmitz
Original Assignee
Aplagen Gmbh
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Aplagen Gmbh filed Critical Aplagen Gmbh
Publication of HUP0400839A2 publication Critical patent/HUP0400839A2/hu
Publication of HU224694B1 publication Critical patent/HU224694B1/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P15/00Drugs for genital or sexual disorders; Contraceptives
    • A61P15/18Feminine contraceptives
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/28Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/505Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising antibodies
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2317/00Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/60Immunoglobulins specific features characterized by non-natural combinations of immunoglobulin fragments
    • C07K2317/62Immunoglobulins specific features characterized by non-natural combinations of immunoglobulin fragments comprising only variable region components
    • C07K2317/622Single chain antibody (scFv)

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Gynecology & Obstetrics (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Reproductive Health (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

A jelen találmány tárgyát képezik azok a fehérjék, amelyek gátolják a trofoblaszt sejtek szincíciális fúzióját, valamint az ezen fehérjéket tartalmazó gyógyszerek, és ezek alkalmazása emlősökben fogamzásgátlás céljára.
A szincíciális fúzió meggátolása egy olyan elv, amely a fogamzásgátlásban alkalmazható. A jelen leírásban a „fogamzásgátlás” kifejezést klinikai gyakorlati szempontból oly módon értelmezzük, hogy a nemi közösülés megtörténte ellenére a havi menstruáció bekövetkezik és nem indul meg terhesség. Ez az általános definíció alkalmazható a manapság használatos fogamzásgátlók jó részére. Humán és egyéb emlősalanyok esetében a fogamzásgátlás számos különféle elv és anyag alkalmazásával megoldható. A közismert eljárások úgy érik el a céljukat, hogy mechanikus vagy kémiai módszerrel meggátolják a petesejtek és az ondósejtek fúzióját. Az ondósejt inaktiválható, vagy megtermékenyülése megakadályozható például óvszer, méhen belüli implantátum vagy spermicid anyagok használatával. Továbbá fel lehet tartóztatni a petesejt anyapetesejten belüli érését hormonális módszerek segítségével. Ezen módszerek mind ismeretesek a képzett szakemberek előtt.
A manapság használatos fogamzásgátlók közül számosán („a tabletták”) a méhnyálkahártyára (az endometriumra) fejtik ki hatásukat oly módon, hogy lehetetlenné teszik a blasztociszta nidációját, mivel megszüntetik az endometrium befogadóképességét. A fogamzásgátlás ilyen típusú, endokrinmódszerei azzal a nehézséggel járnak, hogy a kívánt hatás eléréséhez biztosítani kell a hormonok bevételének pontos időpontját és adagolását. Mivel a hormonok maguk igen rövid, órákban vagy legfeljebb napokban mérhető felezési idővel rendelkeznek, az ilyen módszerrel való fogamzásgátlás csak abban az esetben lehet sikeres, ha biztosítjuk a napi bevételt, vagy retard készítményeket alkalmazunk. Ezek a megoldások mind felvetik azt a problémát, hogy befolyásolják vagy megakadályozzák a női szervezet ciklikus endokrin-homeosztázisát. Mivel az endometrium az anyai szervezet részét képezi, az anya szervezete egyúttal a nemkívánatos mellékhatások preferált előfordulási helyévé is válik.
Ezért tehát kívánatosak olyan eljárások és anyagok, amelyek:
a) a beágyazódott blasztocisztán fejtik ki hatásukat, és ily módon képesek minimalizálni az anyai szervezetre háruló mellékhatásokat;
b) nem befolyásolják a női szervezet endokrin önszabályozását.
Az 1. ábra egy, a fúzióvizsgálat keretében lefolytatott flow-citometriás analízist mutat be. Az A mezőben a Dil (önmagában) fluoreszcenciáját, míg a C mezőben a DiO (önmagában) fluoreszcenciáját mutatjuk be. A B mezőben olyan sejtek láthatók, amelyek a fúzió által okozott dupla fluoreszcenciát mutatnak.
Az 1A. és B. ábra olyan kontrollokat ábrázol, amelyekben a sejteket csak egy-egy fluoreszkáló festékkel festettük meg, és a vizsgálatnak megfelelő körülmények között inkubáltuk. Az 1A. ábrán a festést csak Dil-vel, a B. ábrán pedig csak DiO-val végeztük. A Dil-re mért értékek a DiO-specifikus mérőcsatornában nullának felelnek meg, ezért az ábrázolási pontok az X tengelyre esnek.
Az 1C. és D. ábra a PHSK04 klón fúzióvizsgálatait mutatja. Az 1C. ábra a sejtek kontrolikörülmények melletti (egy nemspecifikus, ugyanabban az expressziórendszerben expresszált és tisztított fehérje jelenlétében történő) fúziójának sebességét, míg a D. ábra a 100 nM PHSK04 fehérje jelenlétében történő fúzió sebességét mutatja be.
A 2. ábra a fúzióvizsgálatban részt vevő kiónok gátlásának a kontrolihoz (ugyanabban az expressziórendszerben expresszált és tisztított kalmodulin) hasonlított relatív mértékét mutatja be. Háromszor ismételt vizsgálat átlageredményét adjuk meg.
A 3. ábra a találmány szerint előnyös SEQ ID 1-10. számú fehérjék konszenzusszekvenciáját mutatja be. Az itt pédaképpen bemutatott megvalósulási formában az összekötő szekvencia QSSRSS. A VL és VH konszenzusszekvenciáit egybetűs kódokkal jelezzük a kiónok egyéni szekvenciái (szürke színezés) alatt. Maga a konszenzusszekvencia vízszintesen olvasható le, míg az előnyös aminosavak minden egybetűs kód pozíciójában függőlegesen láthatók. Ha ezen a helyen kötőjel látható, az azt jelenti, hogy az annak megfelelő pozíció hiányzik a konszenzusszekvenciával való összevetésben. Ha X látható, az azt jelenti, hogy a VL vagy VH konszenzusszekvenciájának semelyik része nincs jelen ebben a pozícióban.
A PHSK04 fehérje jelenlétében a fúzió lelassul.
A találmány tárgyának megvalósításához szükséges egy olyan fehérje, amely legalább 80%-ban homológ a csirke-VL-lel vagy -VH-val, és gátolja a szincíciális fúziót, valamint olyan fragmentumok, amelyek a csirke VL vagy VH szekvenciájának legalább 12 összefüggő aminosavát tartalmazzák. Előnyös, ha a találmány szerinti fehérje legalább 85%-ban vagy legalább 90%ban homológ a csirke-VL-lel vagy -VH-val. Előnyös, ha a találmány szerinti fragmentumok a csirke VL vagy VH szekvenciájának legalább 20 vagy 30 összefüggő aminosavát tartalmazzák.
A találmány szerinti VL előnyösen a következő aminosavszekvenciával rendelkezik: X°ALTQPSSVSANX1GX2TVX3X4TCSG X5 X6 X7 X8 X9 X10 YG WX11 QQ KX12 P G S X13 P X14 Τ X15 I Y X16 X17 X18 X19 R P S X20 I P S R F S G
HU 224 694 Β1
S X21 S G S X22 X23 T L T I T G F Q A X24 D Ε A V Y X25 C G X26 X27 X28 X29 X30 X31 X32 X33 X34 X35 X36 X37 X38 F G A G T T L T V L G X39 ahol
X°= egy helyettesítetlen, egyszeresen vagy kétszeresen helyettesített aminocsoport, vagy egy vagy több aminosav;
X1= P vagy L vagy deléció;
X2= G vagy E vagy deléció;
X3= K vagy E vagy deléció;
X4= I vagy L vagy deléció;
X5= G vagy S vagy deléció;
X6= S vagy G vagy deléció;
X7= G vagy R vagy Y vagy deléció;
X8= S vagy R vagy Y vagy deléció;
X9= W vagy S vagy deléció;
X10= S vagy K vagy Y vagy deléció;
X11= Y vagy F vagy deléció;
X12= S vagy A vagy deléció;
X13= A vagy T vagy deléció;
X14= V vagy D vagy deléció;
χΊ5- v vagy l vagy deléció;
X16= N vagy V vagy S vagy D vagy E vagy deléció; X17= N vagy S vagy deléció;
X18= N vagy T vagy D vagy K vagy deléció;
X19= K vagy N vagy deléció; χ20= □ vagy N vagy deléció;
X21= K vagy V vagy deléció;
X22= T vagy A vagy deléció;
X23= A vagy H vagy N vagy deléció;
X24= D vagy E vagy deléció;
X25= Y vagy F vagy deléció;
X26= N vagy S vagy G vagy deléció;
X27= R vagy Y vagy G vagy deléció; χ28= d vagy deléció;
X29= W vagy deléció;
X30= D vagy K vagy A vagy deléció;
X31= S vagy T vagy D vagy deléció;
X32= S vagy A vagy G vagy deléció;
X33= A vagy G vagy deléció;
X34= G vagy R vagy deléció;
X35= Y vagy N vagy deléció;
X36= V vagy A vagy T vagy deléció;
X37= G vagy A vagy N vagy deléció;
X38= I vagy A vagy M vagy deléció és
X39= karboxilcsoport, karboxilszármazék, vagy egy vagy több aminosav;
és ahol megengedett az aminosavak kölcsönös konzervatív cseréje, amennyiben ez nem befolyásolja a szincíciális fúzió gátlását.
A találmány szerinti fehérje egy további előnyös megjelenési formája az, amely a következő VH szekvenciával rendelkezik:
X°X1VTLDESGGGLQTPGX2X3LSLVCK X4 S G F X5 X6 X7 X8 Y X9 Μ X10 W X11 R Q A P G K G L Ε X12 V X13 X14 X15 X16 X17 X18 X19 X20 X21 X22 T X23 Y X24 X25 A V X26 G X27 X28 X29 X30 X31 X32 X33 X34 X35 X36 X37 X38 X39 X40 X41 X42 X43 X44 X45 X46 X47 X48 X49 X50 X51 X52 X53 X54 X55 X56 X57 X58 X59 ahol
X°= egy helyettesítetlen, egyszeresen vagy kétszeresen helyettesített aminocsoport, vagy egy vagy több aminosav;
X1= A vagy S vagy T vagy deléció;
X2= G vagy R vagy deléció;
X3= G vagy A vagy T vagy deléció;
X4= A vagy G vagy deléció;
X5= S vagy T vagy D vagy deléció;
X6= F vagy M vagy deléció;
X7= S vagy T vagy deléció;
X8= S vagy D vagy N vagy deléció;
X9= G vagy Q vagy A vagy T vagy deléció; χΐθ= n vagy A vagy Q vagy G vagy deléció;
X11= I vagy V vagy deléció;
X12= F vagy W vagy Y vagy deléció;
X13= A vagy G vagy deléció;
X14= G vagy A vagy R vagy deléció;
X15= I vagy M vagy deléció;
X16= S vagy N vagy G vagy deléció;
X17= S vagy R vagy N vagy deléció;
X18= G vagy deléció;
X19= F vagy T vagy S vagy N vagy deléció; χ2θ= g vagy s vagy A vagy deléció;
X21= N vagy S vagy R vagy deléció;
X22= R vagy S vagy Y vagy deléció;
X23= G vagy A vagy N vagy Y vagy deléció;
X24= G vagy A vagy deléció;
X25= S vagy A vagy P vagy deléció;
X26= K vagy Q vagy deléció;
X27= R vagy L vagy deléció;
X28= A vagy C vagy deléció;
X29= T vagy H vagy deléció;
Χ= I vagy H vagy deléció;
X31= S vagy L vagy deléció;
X32= R vagy E vagy deléció;
X33— D vagy G vagy deléció;
X34= N vagy Q vagy R vagy D vagy K vagy deléció; X35= G vagy R vagy W vagy deléció;
X36= q vagy /χ vagy deléció;
X37= S vagy E vagy deléció;
X38= T vagy H vagy deléció;
X39= v vagy S vagy deléció;
X4°= r vagy E vagy deléció;
X41= L vagy A vagy deléció;
X42= Q vagy A vagy deléció;
X43= L vagy A vagy deléció;
X44= N vagy E vagy S vagy deléció;
X45= N vagy Q vagy deléció;
X46= L vagy P vagy deléció;
X47= R vagy Q vagy deléció;
X48= A vagy G vagy deléció;
X49= E vagy G vagy deléció; χ5θ= d vagy H vagy deléció;
X51= T vagy R vagy L vagy deléció;
X52= G vagy P vagy deléció;
X53= T vagy P vagy deléció;
X54= Y vagy T vagy deléció; χ55= γ vagy s vagy deléció;
X56= C vagy A vagy deléció;
HU 224 694 Β1
X57= A vagy P vagy deléció;
X58= K vagy deléció;
χ59= karboxilcsoport, karboxilszármazék, vagy egy vagy több aminosav;
és ahol megengedett az aminosavak kölcsönös konzervatív cseréje, amennyiben ez nem befolyásolja a szincíciális fúzió gátlását.
A jelen találmány szerint a „konzervatív csere” kifejezésen pontosabban olyan cserét értünk, amely poláris, nem poláris, aromás, töltéssel rendelkező aminosavcsoportokon belüli aminosavak között történik. Például glicin cseréje alaninnal vagy vallnnal stb., arginin vagy lizin cseréje hisztidinnel stb., fenil-alanin cseréje tirozlnnal stb.
A jelen találmány szerint a találmányban szereplő fehérjék összeköthetők egy linkerrel. A linker előnyösen egy minimum öt aminosavból álló peptidlánc. Előnyösek az olyan aminosavak, amelyek nem vagy csak jelentéktelen mértékben lépnek interakcióba a VL vagy VH lánccal. A peptidlánc helyett a linker állhat olyan szerves vegyületekből, amelyek lényegében egy szénatomláncból állnak, amely tartalmazhat heteroatomokat is. Ebben az esetben a linker hossza előnyösen legalább kilenc angström.
Előnyös lehet a D-aminosavak jelenléte a találmány szerinti fehérje szekvenciájában, mivel ez a degradáció lelassulásához vezethet.
Különösen előnyösek azok a találmány szerinti fehérjék, amelyek a SEQ ID 1-10. aminosavszekvenciákat tartalmazzák.
Ezen fehérjéket a SEQ ID 11. számú szekvenciával rendelkező konszenzusszekvencia írja le, amely ugyancsak a jelen találmány oltalmi körébe tartozik.
A jelen találmány tárgyát képezik továbbá azon nukleinsavak, különösen DNS vagy RNS, amelyek egy, a jelen találmány szerinti fehérjét kódolnak, valamint az ilyen nukleinsavakat kódoló plazmidok vagy vektorok.
A jelen találmány tárgyát képezik továbbá azon gyógyszerek, amelyek a találmány szerinti fehérjék vagy nukleinsavak közül legalább egyet tartalmaznak.
A jelen találmány szerint a találmány oltalmi körébe tartozik legalább egy, a találmány szerinti fehérje vagy nukleinsav felhasználása fogamzásgátló gyógyszer előállításában. A találmány szerinti gyógyszert általában 100 ng/testtömeg-kg és 1000 pg/testtömeg-kg közötti adagban adjuk be. A beadás előnyösen parenterális úton, infúzió vagy intramuszkuláris vagy szubkután injekció útján történik. További lehetséges beadási módok a nazális spray, kúp, vaginális, például tamponnal történő beadás, vagy más megfelelő beadási formák, amelyek természetesen mind ismeretesek a gyógyszer-technológiában képzett szakemberek előtt, vagy egyszerű kísérleteken keresztül kialakíthatók.
A blasztociszta sikeres beültetése az endometriumba nem csupán az endometrium befogadóképességén múlik. Az implantáció csak abban az esetben lehetséges, ha a blasztociszta külső rétegében található sejtek, az úgynevezett trofoblaszt sejtek fuzionálnak, és így szincíciumot alkotnak. A szincícium kialakulása olyan folyamat, amely az emberi testben csak kevés helyen megy végbe. Többek között ismeretes ezen folyamat lefolyása a csontvázi izomszövetben, valamint az oszteoklasztok kialakulásánál.
A mioblasztok szincíciális fúziójánál vagy az oszteoklasztok kialakulásánál az ADAM („a disintegrin and a metalloproteinase”, azaz egy diszintegrin és egy metalloproteináz; lásd Huppertz és munkatársai, 2001.) csoport molekulái játszanak különösen fontos szerepet, míg a humán trofoblaszt egy endogén retrovírus, nevezetesen a szincitin (Mi és munkatársai, 2000.) egyik fehérjéjét használja fel. Létezik tehát egy kiindulópont a trofoblaszt sejtek fúziójának gátlásával történő fogamzásgátlás megvalósításában. A trofoblasztfúzió folyamata a trofoblasztokra nézve specifikus, és így ezen fúzió gátlása alkalmazható a szelektív trofoblasztspecifikus fogamzásgátlásban.
Funkcionális szempontból a találmány szerinti fehérjéket a trofoblaszt sejtek szincíciális fúziójának meggátlására irányuló képességük jellemzi. Ezen fehérjék alkalmazhatók nőnemű emlősöknél, elsősorban rágcsálóknál, háziállatoknál, például kutyáknál és macskáknál, valamint humán pácienseknél fogamzásgátló hatás elérésére. Ezért tehát a jelen találmányt lényegében a következő komponensek jellemzik: fehérjék, előnyösen immunológiai kötőmolekulák formájában, amelyek
a) homológia-összehasonlítással nem emlős, elsősorban csirkeantitestek származékaiként osztályozhatók; pontosabban materiálisán leírhatók egy aminosav-konszenzusszekvencia megnevezésével;
b) funkcionális szempontból pedig az a tulajdonság jellemzi őket, hogy gátolják az emlős-trofoblasztsejtek szincíciális fúzióját.
Az immunológiailag kötődő molekulák építőelemei Egy előnyös megjelenési formában a találmány szerinti fehérjék előfordulhatnak immunológiailag kötődő molekulák formájában. Az itt megadott példa szerint az immunológiailag kötődő molekulák rekombináns molekulák. A példákban előforduló immunológiailag kötődő molekulák az „egyláncú változó fragmentum antitest (scFv) típusba esnek. Egy ilyen típusú antitestmolekula az antitestmolekula könnyű (VL) és nehéz (VH) láncainak csupán a változó régióit tartalmazza, amelyeket egy rekombináns technológiával beillesztett rövid szekvencia (linker) köt össze. Ilyen értelemben egy scFv az immunológiailag kötődő molekula minimális megvalósulásának tekinthető. A kritikus kötési információ megtalálható a VL és VH egyéni változó régiókban, de az összekapcsolódásuk típusa nem tartalmazza ezt az információt. A jelen találmány további megvalósulási formái közé tartozik még az úgynevezett Fab (antigénkötő fragmentum) antitest és bármely más konstrukciónak megfelelő antitest, esetleg nem rekombináns természetes antitestmolekula, amely a szekvenciájának változó régiói közül legalább egyet tartalmaz. Az scFv-megvalósulásban, amelyet ugyancsak bemutatunk a példákban, a következő modulszekvenciák lehetségesek:
VL-linker-VH
VH-linker-VL
HU 224 694 Β1
A további hordozókonstrukciókra is igaz, hogy a VL és VH relatív sorrendje a konstrukción belül nincs előre meghatározva, és hogy a szerkezet maga nem befolyásolja kritikusan a kötési tulajdonságokat. A jelen leírásban a „hordozókonstrukció” kifejezést olyan molekulákra értjük, amelyekre az scFv antitestek vagy ezen antitestek részei felvihetők abból a célból, hogy optimális módon legyenek képesek a kötési partnereiket megtalálni.
Tehát, a jelen találmány tárgyát képezi különösen minden olyan immunológiailag kötődő molekula és ezek származékai, amelyeknek specifikusan kötődő régiói megfelelnek az alább a VH és VL leírásánál megadottaknak, vagy szekvenciájuk a VL vagy VH konszenzusszekvenciájával legalább 80%-ban megegyezik, és képesek a trofoblaszt sejtek fúziójának meggátlására. Továbbá a jelen találmány szempontjából lényegtelen, hogy az immunológiailag kötődő molekulák rekombináns expressziójában technikai okokból alkalmazásra kerülnek-e úgynevezett epitóp-tagek (például a tisztítást elősegítő HIS tag, vagy az immunológiai vizsgálatokban másodlagos antitestek esetében használatos myc tag). Ezek a tagek pusztán technológiai jelentőségűek, és nem képezik részét az itt levédett szekvenciáknak.
Az itt leírt immunológiailag kötődő molekulák előállíthatók oly módon, hogy csirkék immunkészletét megfelelő formában molekuláris-biológiai könyvtárakba transzferáljuk. A megfelelő technikák megtalálhatók többek között a következő leírásban: Barbas CF, Burton DR, Scott JK, Silverman GJ; Phage display: A laboratory manual, CSHL Press, New York. Ha az ilyen könyvtárak hozzáférhetőek, akkor a kívánt molekulákat dúsíthatjuk azáltal, hogy ismert módszerrel (például a Barbas és munkatársai, lásd fent, leírása szerint) izoláljuk azokat az antitesteket, amelyek a fúzióra kész trofoblaszt sejtek felületéhez kötődnek. Ezután az antitesteket izolációval klónozzuk a DNS-szinten, majd szekvenáljuk a DNS-szinten. Ezt követően, a fúziógátló hatás ellenőrzése céljából, minden antitestet meg kell vizsgálni és jellemezni egy fúzióvizsgálat segítségével. Az ilyen, sztochasztikus könyvtárakból izolált, fúziógátló antitestek nagy valószínűséggel tartalmazzák az itt megadott konszenzusszekvenciát.
Egy másik módszer szerint egy ismert szekvencia DNS-antiteste előállítható oly módon, hogy csirkeantitesteket klónozunk fág display segítségével, a fent leírt módszer szerint, majd önkényesen kiválasztjuk és szekvenáljuk az egyes kiónokat. A csirkeantitestek keretszekvenciái nagymértékben homológok, és csak kismértékben térnek el az itt megadott VH és VL keretszekvenciáktól. A kötés specificitását a „komplementaritásmeghatározó régiók” (CDR) biztosítják, amelyek nagymértékben különböznek az egyes antitestek között. Ha az egyes szegmenseket, elsősorban a CDR régiókat, szelektíven cseréljük közismert molekuláris-biológiai módszerek segítségével, a kívánt szekvenciával rendelkező antitestek előállíthatók ilyen módszerrel is, a klónozott csirkeszekvenciák módosításával.
Példák
Antitestmolekulák
A példában leírt scFv antitestek a pAC vektorban, DNS-ben vannak kódolva. Ez a vektor egy, az E. coli számára megfelelő expressziós vektor, amely egy f1-ből, egy arabinózkontrollált pBAD promoterből és egy ampicillinrezisztenciát biztosító génből áll. Az immunológiai kötőmolekulákat kódoló DNS-szekvenciák oly módon illeszkednek a vektorba, hogy az expressziójukat a pBAD promoter kontrollálja. Egy, a vektorban levő szignálpeptid az expresszált fehérjéket az E. coli periplazmájába irányítja, és az expresszálandó szekvenciához egy Q*HIS tag kapcsolódik, amely lehetővé teszi a fém-affinitáskromatográfiával történő tisztítást. Expresszió előtt az összes klón jelenlétéről szekvenálással megbizonyosodunk, és így kétséget kizáróan megállapítjuk, hogy az alkalmazott DNS-szekvenciák helyesen épültek be a vektorba.
A szekvenciákat fehérje formájában szintetizálhatjuk bármilyen, fehérjék expressziójára megfelelő expressziós rendszerben, például E. coli-ban vagy Saccharomyces cerevisiae-ban, a szükséges klónozás után. A megfelelő eljárásokat számos molekuláris-biológiai és biotechnológiai szakkönyvben megtalálhatjuk, és elvben ezek mindegyike alkalmazható a jelen szekvenciákra. Ezek az eljárások ismertek a szakmában. A továbbiakban leírjuk a pAC vektoron keresztüli, E. coli-ban (Top Ten törzs, Invitrogen, Groníngen, Hollandia) történő expressziót, valamint az expresszált fehérjék tisztítását és karakterizálását.
Az expresszálandó szekvenciákat tartalmazó pACszármazékokat először elektroporációval E. coli Top Tenbe transzformáljuk, majd a transzformációs elegyeket agarlemezekre visszük (LB médium, 50 pg/ml ampicillin), és egy éjszakán keresztül 30 °C-on inkubáljuk.
A következő napon az egyes tenyészetekből kapott baktériumokkal beoltunk 5 ml LB médiumot (az összetételt lásd a Sambrook és munkatársai, 1989. leírásában; 50 pg/ml ampicillint tartalmaz). Ezt a sejtkultúrát egy éjszakán át 37 °C-on rázóinkubátorban 300 rpm fordulatszámon inkubáljuk. A következő napon az oltóanyagból az expressziókultúrát 1:100 arányban hígítjuk, és egy Fernbach-lombikban 300 rpm-en 37 °C-on inkubáljuk, amíg el nem éri a 0,5 optikai sűrűséget (600 nm-en mérve: OD600). Ez szabályszerűen 2,5 óra elteltével következik be. Amikor elérte a kívánt OD600-at, az expressziót L-arabinóz hozzáadásával indukáljuk (maximumkoncentráció 0,02%; az optimális koncentrációt minden egyes klón esetében előzetes kísérletekkel kell meghatározni). Az expressziót ezek után 26 °C-on, 300 rpm-en, 4-6 órán keresztül végezzük. A baktérium növekedési viselkedését mintavétellel és OD600-méréssel dokumentáljuk. Az expressziós fázis után a sejteket 4 °C-on, 4000*g-n, 20 percig centrifugáljuk, majd a pelletekből 2 ml TES-pufferben (0,2 M Tris-HCI, pH 8,0; 0,5 M EDTA; 0,5 M szacharóz) szuszpenziót képzünk. Majd a szuszpenzióhoz lassan hozzáadunk 3 ml 1/5 TES-puffert (1 térfogategység TESpuffer és 4 egység desztillált víz), majd elkeverjük és
HU 224 694 Β1 jégen 30 percig inkubáljuk. Ezután a mintát 1,5 ml-es reakcióedényekbe osztjuk szét, és 4 °C-on, 10 000*g-n, 10 percig centrifugáljuk. A szupernatáns tartalmazza a periplazmatikus fehérjét, tehát a kívánt végterméket is.
További feldolgozás céljából a szupernatánst egy éjszakán át 4 °C-on fiziológiás sóoldatos foszfátpufferrel (pH 7,4, 10 mM imidazolt tartalmaz) szemben dializáljuk. A nikkel-affinitáskromatográfiához szükséges, kereskedelemben beszerezhető készletek (például Qiagen GmbH, Hilden, Németország) segítségével megtisztítjuk a kívánt fehérjét. A tisztítást gélelektroforézissel kontrolláljuk, majd meghatározzuk a fehérjekoncentrációt (Harlow és Lane, 1988). A moláris koncentráció értékét a koncentrációmérés eredménye és a szekvencia alapján meghatározott molekulatömeg segítségével számítottuk ki.
A tisztított és mennyiségileg analizált fehérjéket ezután ekvimoláris körülmények között fúzióvizsgálatnak vetjük alá, annak meghatározására, hogy valóban gátolják-e a humán trofoblaszt sejtek fúzióját.
A továbbiakban a példában expresszált és analizált kiónokat listázzuk, és a DNS-szekvenciákból lefordított aminosavszekvenciákat egymás alá rendezve ábrázoljuk.
Fúzióvizsgálat, eljárás és eredmények
A fúziógátló hatás bizonyítékát a spontán fuzionáló AC-1M17 humán trofoblaszt sejtvonal alkalmazásával kapjuk meg. Ezen vonal sejtjeinek kezdeti fúziósebessége 20-30%-os azonnal, ahogy egy új sejtkultúrába oltjuk őket.
Ezen vonal sejtjeit először a megfelelő számúra szaporítjuk, majd két populációra osztjuk, amelyeket különböző, kereskedelemben hozzáférhető fluoreszkáló festékkel festünk meg (Dil és DiO, a megfestést a forgalmazó Molecular Probes BV, Leiden, Hollandia előírásának megfelelően végezzük).
A sejteket alaposan átmossuk (5*10 perc), és így eltávolítjuk a sejtfalba nem integrálódott festékmaradékokat, majd a két sejtpopulációt elkeverjük, és szokásos módon, alacsony sejtsűrűség mellett, 24 órán át, standard feltételek mellett (5% szén-dioxid, 38 °C, 90% feletti páratartalom), Ham’s F12-ben (10% borjúmagzatiszérum és antibiotikumok) inkubáljuk. Ez után a tenyésztési fázis után a sejteket a lombik aljáról tripszinnel leválasztjuk, szuszpenziót képzünk, és a flow-citométerben megállapítjuk, hány sejt tett szert dupla fluoreszcenciára fúzió által. Az 1. ábra a fúzióvizsgálat ilyen módon történő kiértékelését mutatja be. A 2. ábra összefoglalja a példában leírt egyes scFv kiónok trofoblasztsejtfúzió-gátlásának mértékét. Az ábra ezenfelül bemutatja, hogy hogyan függ a különböző klónoknál a fúziógátlás mértéke a koncentrációtól.
Hivatkozások
Harlow E., Lane D. (1988) Antibodies: A laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY
Huppertz B., Tews D. S., Kaufmann P. (2001) Apoptosis and szincícialis fusion in humán placenta trophoblast and skeletal muscle. Int. Rév. Cytol. 205:215-253
Mi S., Lee X., Li X., Veldman G. M., Finnerty H., Racie L., LaVallie E., Tang X-Y, Edouard P., Howes S., Keith J. C., McCoy J. M. (2000) Syncytin is a captive retroviral envelope protein involved in humán placenta morphogenesis. Natúré 403:785-789
Sambrook J., Fritsch E. F., Maniatis T. (1989) Molecular cloning: a laboratory manual, 2nd ed. edn. Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N. Y.

Claims (9)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Fehérje, amely a csirke-VL-lel vagy -VH-val legalább 80%-ban homológ, és amely gátolja az emlőstrofoblasztok szincíciális fúzióját, ahol a VL a következő szekvenciával rendelkezik:
    X°ALTQPSSVSANX1GX2TVX3X4TCSG X5 X6 X7 X8 X9 X10 Y G W X11 Q Q K X12 P G S X13 Ρ X14 T X15 IΥ X16 X17 X18 X19 R P S X20 I P S R F S G S X21 S G S X22 X23 T L T I T G F Q A X24 D E A V Y X25 C G X26 X27 X28 X29 X30 X31 X32 X33 X34 X35 X36 X37 X38 F G A G T T L T V L G X39 ahol
    X°= egy helyettesítetlen, egyszeresen vagy kétszeresen helyettesített aminocsoport, vagy egy vagy több aminosav;
    X1= P vagy L;
    X2= G vagy E;
    X3= K vagy E;
    X4= I vagy L;
    X5= G vagy S;
    X6= S vagy G;
    X7= G vagy R vagy Y;
    X8= S vagy R vagy Y vagy deléció;
    X9= W vagy S vagy deléció;
    X10= S vagy K vagy Y vagy deléció;
    X11= Yvagy F;
    X12= S vagy A vagy deléció;
    X13= A vagy T vagy deléció;
    X14= V vagy D;
    X15= V vagy L;
    X16= N vagy V vagy S vagy D vagy E;
    X17= N vagy S;
    χ18- N vagy y vagy 0 yggy
    X19= K vagy N;
    X2°= d vagy N;
    X21= K vagy V;
    X22= T vagy A;
    X23= A vagy H vagy N;
    X24= D vagy E;
    X25= Y vagy F;
    χ26- n vagy S vagy G;
    χ27- r vagy Y vagy G vagy deléció;
    X28= Q vagy deléció;
    X29= w vagy deléció;
    χ30= 0 vagy K vagy A vagy deléció;
    X31= S vagy T vagy D;
    HU 224 694 Β1 χ32= s vagy A vagy G;
    X33= A vagy G vagy deléció;
    X34= G vagy R vagy deléció;
    X35= Y vagy N vagy deléció;
    X36= v vagy A vagy T;
    X37= G vagy A vagy N;
    X38= I vagy A vagy M;
    és
    X39= karboxilcsoport, karboxilszármazék, vagy egy vagy több aminosav;
    és ahol megengedett az aminosavak kölcsönös konzervatív cseréje, amennyiben ez nem befolyásolja a szincíciális fúzió gátlását;
    ahol a VH a következő szekvenciával rendelkezik: X°X1VTLDESGGGLQTPGX2X3LSLVCK X4 S G F X5 X6 X7 X8 Y X9 Μ X10 W X11 R Q A P G K G L Ε X12 V X13 X14 X15 X16 X17 X18 X19 X20 X21 X22 T X23 Y X24 X25 A V X26 G X27 X28 X29 X30 X31 X32 X33 χ34 χ35 χ36 χ37 χ38 χ39 χ40 χ41 χ42 χ43 χ44 χ45 χ46 χ47 χ48 χ49 χ50 χ51 χ52 χ53 χ54 χ55 χ56 χ57 χ58 χ59 ahol
    Χθ= egy helyettesítetlen, egyszeresen vagy kétszeresen helyettesített aminocsoport, vagy egy vagy több aminosav;
    X1= A vagy S vagy T;
    X2= G vagy R;
    X3= G vagy A vagy T;
    X4= A vagy G;
    X5= S vagy T vagy D;
    X6= F vagy M;
    X7= S vagy T;
    X8= S vagy D vagy N vagy deléció;
    X9= G vagy Q vagy A vagy T;
    χίο- n vagy a vagy Q vagy G;
    X11= I vagy V;
    X12= F vagy W vagy Y;
    X13= A vagy G;
    X14= G vagy A vagy R;
    X15= I vagy M;
    X16= S vagy N vagy G;
    X17= S vagy R vagy N;
    X18= G vagy deléció;
    X19= F vagy T vagy S vagy N;
    X29= G vagy S vagy A;
    X21= N vagy S vagy R;
    X22— R vagy S vagy Y;
    X23= G vagy A vagy N vagy Y;
    X24= G vagy A;
    X28— S vagy A vagy P;
    X26= K vagy Q;
    X27= R vagy L;
    X28= A vagy C;
    X29= T vagy H;
    χ30= | vagy H;
    X31= S vagy L;
    X32= R vagy E;
    X33= D vagy G;
    X34= N vagy Q vagy R vagy D vagy K;
    X35= G vagy R vagy W;
    X36= Q vagy A;
    X37= S vagy E;
    X38= γ vagy H;
    X39= v vagy S;
    X40= R vagy E;
    X41= L vagy A;
    X42= Q vagy A;
    X43= L vagy A;
    X44= N vagy E vagy S;
    X45= N vagy Q;
    X46— L vagy P;
    X47= R vagy Q;
    X48= A vagy G;
    X49= E vagy G;
    χ50= q vagy H;
    χ5ΐ= y vagy R vagy L;
    X52= G vagy P vagy deléció;
    χ53- y vagy P vagy deléció;
    X54= Y vagy T vagy deléció;
    X55= Y vagy S vagy deléció;
    X56= C vagy A vagy deléció;
    X57= A vagy P vagy deléció;
    χ58= κ vagy deléció;
    X59= karboxilcsoport, karboxilszármazék, vagy egy vagy több aminosav;
    és ahol megengedett az aminosavak kölcsönös konzervatív cseréje, amennyiben ez nem befolyásolja a szincíciális fúzió gátlását;
    ahol a fenti VL és VH szekvenciákkal rendelkező fehérjéket egy linker köti össze.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti fehérje, ahol a linker egy, minimum öt tetszés szerinti aminosavból álló peptidlánc.
  3. 3. Az 1-2. igénypontok bármelyike szerinti fehérje, ahol a szekvencia D-aminosavakat tartalmaz.
  4. 4. Az 1-3. igénypontok legalább egyike szerinti fehérje, amely a SEQ ID 1-10. számú aminosavszekvenciák valamelyikével rendelkezik.
  5. 5. A SEQ ED 11. számú szekvenciával (konszenzusszekvencia) rendelkező fehérje.
  6. 6. Nukleinsav, különösen DNS vagy RNS, amely az 1-5. igénypontok bármelyike szerinti fehérjét kódolja.
  7. 7. Plazmid vagy vektor, amely egy, a 6. igénypont szerinti nukleinsavat tartalmaz.
  8. 8. Gyógyszer, amely legalább egy, az 1-5. igénypontok valamelyike szerinti fehérjét, vagy legalább egy, a 6. igénypont szerinti nukleinsavat tartalmaz.
  9. 9. Legalább egy, az 1-5. igénypontok valamelyike szerinti fehérje, vagy legalább egy, a 6. igénypont szerinti nukleinsav felhasználása emlős-fogamzásgátlásra alkalmas gyógyszer előállításában.
HU0400839A 2001-07-04 2002-07-03 Immunological binding molecules inhibiting the syncytial fusion of trophoblast cells HU224694B1 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP01116199 2001-07-04
PCT/EP2002/007359 WO2003004533A1 (de) 2001-07-04 2002-07-03 Immunologische bindungsmoleküle, die die synzytiale fusion von trophoblastzellen hemmen

Publications (2)

Publication Number Publication Date
HUP0400839A2 HUP0400839A2 (en) 2004-07-28
HU224694B1 true HU224694B1 (en) 2006-01-30

Family

ID=8177934

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU0400839A HU224694B1 (en) 2001-07-04 2002-07-03 Immunological binding molecules inhibiting the syncytial fusion of trophoblast cells

Country Status (18)

Country Link
US (1) US20050048628A1 (hu)
EP (1) EP1401871B1 (hu)
JP (1) JP2005504525A (hu)
CN (1) CN1656120A (hu)
AT (1) ATE291589T1 (hu)
BR (1) BR0210831A (hu)
CA (1) CA2453042A1 (hu)
DE (1) DE50202554D1 (hu)
DK (1) DK1401871T3 (hu)
ES (1) ES2237703T3 (hu)
HU (1) HU224694B1 (hu)
IL (1) IL159384A0 (hu)
MX (1) MXPA03011812A (hu)
PT (1) PT1401871E (hu)
RU (1) RU2004103078A (hu)
SI (1) SI1401871T1 (hu)
WO (1) WO2003004533A1 (hu)
ZA (1) ZA200400054B (hu)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102526433B (zh) * 2012-01-31 2013-06-05 赵海霞 一种治疗关节挛缩的药物
WO2021202013A1 (en) * 2020-03-30 2021-10-07 Crystal Bioscience Inc. Anti-gipr antibody and methods of use thereof

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1993006857A1 (en) * 1991-09-30 1993-04-15 Flinders Technologies Pty. Ltd. Preparation and use of human trophoblast membrane expressed protein in an anti-fertility vaccine
AU781486B2 (en) * 1999-12-30 2005-05-26 Aplagen Gmbh Method for identifying substances which mimic mammal epitopes

Also Published As

Publication number Publication date
SI1401871T1 (hu) 2005-08-31
MXPA03011812A (es) 2005-03-07
EP1401871B1 (de) 2005-03-23
DE50202554D1 (de) 2005-04-28
CN1656120A (zh) 2005-08-17
ATE291589T1 (de) 2005-04-15
BR0210831A (pt) 2004-06-22
PT1401871E (pt) 2005-05-31
RU2004103078A (ru) 2005-07-10
HUP0400839A2 (en) 2004-07-28
DK1401871T3 (da) 2005-08-01
ES2237703T3 (es) 2005-08-01
JP2005504525A (ja) 2005-02-17
EP1401871A1 (de) 2004-03-31
IL159384A0 (en) 2004-06-01
CA2453042A1 (en) 2003-01-16
US20050048628A1 (en) 2005-03-03
WO2003004533A1 (de) 2003-01-16
ZA200400054B (en) 2004-10-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US20230027709A1 (en) Compositions and methods for regulating sas1r
JP4794789B2 (ja) ゲノムdna断片またはestによってコードされる(ポリ)ペプチドに対する特異的結合パートナーの作成
Chen et al. Studies of the cloned 37-kDa subunit of activator 1 (replication factor C) of HeLa cells.
Neilson et al. cDNA cloning and characterization of a human sperm antigen (SPAG6) with homology to the product of the Chlamydomonas PF16 locus
KR20040018316A (ko) 스캐폴드 구조의 c-타입 렉틴 유사 도메인을 가지는단백질의 조합 라이브러리
JP7195826B2 (ja) 生物学上のメスの避妊薬
Gururajan et al. An3 mRNA encodes an RNA helicase that colocalizes with nucleoli in Xenopus oocytes in a stage-specific manner.
NZ276672A (en) Antagonists (abs) to chaperonin 10 (cpn 10) protein
Chen et al. Tektin B1 from ciliary microtubules: primary structure as deduced from the cDNA sequence and comparison with tektin A1
KR102453605B1 (ko) 신규 펩타이드 태그, 이에 결합하는 항체 및 이들의 용도
HU224694B1 (en) Immunological binding molecules inhibiting the syncytial fusion of trophoblast cells
Hovemann et al. The protein Hrb57A of Drosophila melanogaster closely related to hnRNP K from vertebrates is present at sites active in transcription and coprecipitates with four RNA-binding proteins
KR100884085B1 (ko) 돼지 유행성설사병 바이러스를 중화하는 특이 단클론 항체단쇄가변분절 유전자 및 이를 발현한 재조합단백질
US20060003422A1 (en) Method for the identification of substances mimicking mammal epitopes
WO2010054187A2 (en) Compositions and methods for regulating sas1r
WO2001007083A1 (en) Recombinant antibody directed against human sperm antigen
JP3537471B2 (ja) 新規蛋白質sp38および避妊ワクチン
ERG et al. Protein-nucleic acid interactions
JP2001218585A (ja) ヒト核蛋白質とこれをコードするcDNA

Legal Events

Date Code Title Description
HFG4 Patent granted, date of granting

Effective date: 20051121

MM4A Lapse of definitive patent protection due to non-payment of fees