ES2237703T3 - Moleculas de union inmunologicas que inhiben la fusion sincitial de trofoblastos. - Google Patents
Moleculas de union inmunologicas que inhiben la fusion sincitial de trofoblastos.Info
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Abstract
Proteína que es homóloga en al menos 80% con la Vl o Vh del pollo, y que inhibe la fusión sincitial de los trofoblastos de mamíferos, en intercambios conservadores de cualquier aminoácido, con la condición de que se conserve la inhibición de la fusión sincitial, en donde las proteínas con las secuencias Vl y Vh están unidas entre sí a través de un enlazador.
Description
Moléculas de unión inmunológicas que inhiben
sincital de trofoblastos.
Objetos de la presente invención son proteínas
que inhiben la fusión sincitial de células trofoblásticas humanas,
medicamentos que contienen estas proteínas, así como su uso para la
preparación de un medicamento para la contracepción en
mamíferos.
La inhibición de la fusión sincitial representa
un principio activo que se puede utilizar para la contracepción. El
concepto de contracepción, en la presente memoria, se define desde
puntos de vista clínico-prácticos como que, a pesar
de un contacto sexual existente, se produce una hemorragia menstrual
mensual correcta y no se produce embarazo. Esta definición general
es válida también para la mayoría de los contraceptivos utilizados
clínicamente en la actualidad. La contracepción en el ser humano y
otros mamíferos se puede lograr mediante el empleo de una serie de
principios o sustancias. En los procedimientos conocidos, se impide
la fusión del ovocito y del espermatozoide por medios mecánicos o
químicos. Los espermatozoides se pueden inactivar o se puede evitar
que participen en la fecundación, por ejemplo, mediante el uso de
preservativos, implantes intrauterinos o sustancias espermicidas.
Adicionalmente, existe la posibilidad de impedir la maduración del
ovocito en el ovario materno, lo que se puede lograr por métodos
hormonales. El experto en la técnica conoce estos
procedimientos.
Un numeroso grupo de anticonceptivos hormonales
actualmente utilizados ("píldora") actúa sobre la mucosa del
útero (el endometrio), de modo que imposibilita la anidación de los
blastocitos, porque se anula la receptividad del endometrio. Estos
procedimientos endocrinos de contracepción están lastrados con el
problema de que es preciso garantizar la ingesta exacta, tanto en el
tiempo como en la dosis, de las hormonas para alcanzar el efecto
deseado. Dado que las propias hormonas exhiben una semivida medida
breve, que va desde horas hasta días como máximo, la contracepción
eficaz con este método sólo resulta posible con la ingesta diaria o
mediante la administración de preparados con efecto depot. Todas
estas soluciones presentan el inconveniente de alterar o inhibir la
homeostasia endocrina cíclica del organismo femenino. Debido a que
el endometrio forma parte del organismo materno, éste también es un
lugar preferido para la aparición de efectos secundarios
indeseados.
Por consiguiente, son deseables procedimientos y
sustancias que
- a)
- tengan su lugar de efecto en los blastocitos que se implantan y puedan minimizar, adicionalmente, los efectos secundarios en el organismo materno.
- b)
- No interfieran con la autorregulación endocrina del organismo femenino.
La Figura 1 muestra un ejemplo de un análisis
flujo-citométrico en el marco de un ensayo de
fusión. En el cuadrante A se representa la fluorescencia de DiI
(sola), en tanto que en el cuadrante C se muestra la fluorescencia
de DiO (sola). En el cuadrante B se visualizan células que exhiben
una doble fluorescencia condicionada por la fusión.
Las Figuras 1A, B muestran controles en los que
las células están teñidas, respectivamente, con un único pigmento de
fluorescencia y que se han incubado bajo las condiciones del ensayo.
En la Figura 1A la tinción se efectuó sólo con DiI, y en la Figura
1B, sólo con DiO. Los valores de medición para DiI son iguales a
cero en el canal de medición específica de DiO; Por este motivo, los
puntos se encuentran sobre el eje X.
Las Figuras 1C, D muestran el ensayo de fusión
del clon PHSK04. La Figura 1C muestra el índice de fusión de las
células bajo condiciones de control (en presencia de una proteína
inespecífica, expresada y purificada en el mismo sistema de
expresión), y la Figura 1D muestra el índice de fusión en presencia
de la proteína PHSK04 100 nM.
La Figura 2 muestra los índices de inhibición
relativa del clon de ejemplo en el ensayo de fusión, en comparación
con un control (calmodulina, expresada y purificada en el mismo
sistema de expresión). Se representan los valores medios de tres
determinaciones.
La Figura 3 muestra la secuencia de consenso para
las proteínas preferidas según la invención, con las secuencias Seq
ID nº 1 hasta 10. En la realización de ejemplo representada en este
caso aparece, a la izquierda, la secuencia QSSRSS. Las secuencias de
consenso para VI y Vh están indicadas en gris debajo de las
secuencias individuales de los clones en un código de una letra. La
propia secuencia de consenso, en este caso, se debe leer de forma
horizontal, en tanto que se mencionan para cada posición, de manera
vertical, los aminoácidos alternativos preferidos, también en el
código de una letra. Un guión en este punto significa que la
correspondiente posición también puede estar ausente en comparación
con la secuencia de consenso. Una X significa que en este punto no
se encuentra presente parte alguna de las secuencias de consenso
para VI o, respectivamente, Vh.
En presencia de la proteína PHSK04, el índice de
fusión está reducido.
El problema fundamental de la invención se
resuelve por medio de una proteína que es homóloga en al menos 80%
con la VI o Vh del pollo, y que inhibe una fusión sincitial, así
como fragmentos con al menos 12 aminoácidos relacionados de la
secuencia de VI o VH del pollo. En formas de realización preferidas,
la proteína según la invención es homóloga en al menos 85 o al menos
90% con la VI o Vh del pollo. En formas de realización preferidas,
los fragmentos según la invención tienen al menos 20 ó 30
aminoácidos relacionados, de la secuencia de VI o Vh del pollo.
Preferentemente, la proteína VI según la
invención posee la siguiente secuencia de aminoácidos:
en
donde
X^{0} = significa un grupo amino no sustituido,
mono o disustituido, o uno o múltiples aminoácidos,
X^{1} = P o L, o una deleción,
X^{2} = G o E, o una deleción,
X^{3} = K o E, o una deleción,
X^{4} = I o L, o una deleción,
X^{5} = G o S, o una deleción,
X^{6} = S o G, o una deleción,
X^{7} = G o R o Y, o una deleción,
X^{8} = S o R o Y, o una deleción,
X^{9} = W o S, o una deleción,
X^{10} = S o K o Y, o una deleción,
X^{11} = Y o F, o una deleción,
X^{12} = S o A, o una deleción,
X^{13} = A o T, o una deleción,
X^{14} = V o D, o una deleción,
X^{15} = V o L, o una deleción,
X^{16} = N o V o S o D o E, o una deleción,
X^{17} = N o S, o una deleción,
X^{18} = N o T o D o K, o una deleción,
X^{19} = K o N, o una deleción,
X^{20} = D o N, o una deleción,
X^{21} = K o V, o una deleción,
X^{22} = T o A, o una deleción,
X^{23} = A o H o N, o una deleción,
X^{24} = D o E, o una deleción,
X^{25} = Y o F, o una deleción,
X^{26} = N o S o G, o una deleción,
X^{27}= R o Y o G, o una deleción,
X^{28} = D, o una deleción,
X^{29} = W, o una deleción,
X^{30} = D o K o A, o una deleción,
X^{31} = S o T o D, o una deleción,
X^{32} = S o A o G, o una deleción,
X^{33} = A o G, o una deleción,
X^{34} = G o R, o una deleción,
X^{35} = Y o N, o una deleción,
X^{36} = V o A o T, o una deleción,
X^{37}= G o A o N, o una deleción,
X^{38} = I o A o M, o una deleción, y
X^{39} = significa un grupo carboxilo, un
derivado carboxílico o uno o múltiples aminoácidos
y en donde están permitidos
intercambios conservadores de cualquier aminoácido, con la condición
de que se conserve la inhibición de la función
sincitial.
En una forma de realización preferida adicional,
la proteína según la invención en Vh exhibe la siguiente
secuencia:
en
donde
X^{0} = significa un grupo amino no sustituido,
mono o disustituido, o uno o múltiples aminoácidos,
X^{1} = A o S o T, o una deleción,
X^{2} = G o R, o una deleción,
X^{3} = G o A o T, o una deleción,
X^{4} = A o G, o una deleción,
X^{5} = S o T o D, o una deleción,
X^{6} = F o M, o una deleción,
X^{7} = S o T, o una deleción,
X^{8} = S o D o N, o una deleción,
X^{9} = G o Q o A o T, o una deleción,
X^{10} = N o A o Q o G, o una deleción,
X^{11} = I o V, o una deleción,
X^{12} = F o W o Y, o una deleción,
X^{13} = A o G, o una deleción,
X^{14} = G o A o R, o una deleción,
X^{15} = I o M, o una deleción,
X^{16} = S o N o G, o una deleción,
X^{17} = S o R o N, o una deleción,
X^{18} = G, o una deleción,
X^{19} = F o T o S o N, o una deleción,
X^{20} = G o S o A, o una deleción,
X^{21} = N o S o R, o una deleción,
X^{22} = R o S o Y, o una deleción,
X^{23} = G o A o N o Y, o una deleción,
X^{24} = G o A, o una deleción,
X^{25} = S o A o P, o una deleción,
X^{26} = K o Q, o una deleción,
X^{27} = R o L, o una deleción,
X^{28} = A o C, o una deleción,
X^{29} = T o H, o una deleción,
X^{30} = I o H, o una deleción,
X^{31} = S o L, o una deleción,
X^{32} = R o E, o una deleción,
X^{33} = D o G, o una deleción,
X^{34} = N o Q o R o D o K, o una deleción,
X^{35} = G o R o W, o una deleción,
X^{36} = Q o A, o una deleción,
X^{37} = S o E, o una deleción,
X^{38} = T o H, o una deleción,
X^{39} = V o S, o una deleción,
X^{40} = R o E, o una deleción,
X^{41} = L o A, o una deleción,
X^{42} = Q o A, o una deleción,
X^{43} = L o A, o una deleción,
X^{44} = N o E o S, o una deleción,
X^{45} = N o Q, o una deleción,
X^{46} = L o P, o una deleción,
X^{47} = R o Q, o una deleción,
X^{48} = A o G, o una deleción,
X^{49} = E o G, o una deleción,
X^{50} = D o H, o una deleción,
X^{51} = T o R o L, o una deleción,
X^{52} = G o P, o una deleción,
X^{53} = T o P, o una deleción,
X^{54} = Y o T, o una deleción,
X^{55} = Y o S, o una deleción,
X^{56} = C o A, o una deleción,
X^{57} = A o P, o una deleción,
X^{58} = K, o una deleción,
X^{59} = significa un grupo carboxilo, un
derivado carboxílico o uno o múltiples aminoácidos,
y en donde se permiten intercambios
conservadores de cualquier aminoácido, con la condición de que se
conserve la inhibición de la fusión
sincitial.
De acuerdo con la invención, se entiende por
intercambios conservadores especialmente aquellos que intercambian
los aminoácidos dentro del grupo de los aminoácidos polares,
apolares, aromáticos, cargados. Por ejemplo, glicina contra alanina
o valina, etc., arginina o lisina contra histidina, etc.,
fenilalanina contra tirosina, etc.
De acuerdo con la invención, las proteínas según
la invención pueden estar unidas entre sí a través de un enlazador.
El enlazador es, preferentemente, una cadena peptídica de al menos
cinco aminoácidos cualesquiera. Se prefieren, en este caso, los
aminoácidos que no interactúan o sólo generan interacciones no
considerables con la cadena VI o Vh. En lugar de la cadena
peptídica, el enlazador puede estar formado también por compuestos
orgánicos que, de manera esencial, están compuestos por una cadena
de átomos de carbono, que puede exhibir también heteroátomos. La
longitud del enlazador asciende entonces, preferentemente, a al
menos nueve Ángstrom.
La presencia de D-aminoácidos en
la secuencia de la proteína según la invención puede ser
conveniente, dado que puede dar lugar a un enlentecimiento de la
degradación.
De manera especial, se prefieren las proteínas
según la invención con las secuencias de aminoácidos Seq ID nº 1 a
10.
Estas proteínas se describen por la secuencia de
consenso con la secuencia Seq ID nº 11, que es también objeto de la
presente invención.
Objetos de la invención son también ácidos
nucleicos, en particular ADN o ARN, que codifican una proteína según
la invención, así como un plasmidio o vector que contiene uno de
tales ácidos nucleicos.
Objetos de la invención son también medicamentos
que contienen al menos una de las proteínas o ácidos nucleicos según
la invención.
De acuerdo con la invención, se reivindica
también el uso de al menos una de las proteínas o ácidos nucleicos
según la invención para la preparación de un medicamento para la
contracepción en mamíferos. Típicamente, el medicamento según la
invención se administra en cantidades de 100 ng/kg hasta 1000
\mug/kg de peso corporal. La formulación se efectúa,
preferentemente, por vía parenteral, por infusión mediante inyección
intramuscular o subcutánea. Adicionalmente, formas de administración
posibles son un nebulizador nasal, supositorios, una aplicación
vaginal, por ejemplo, a través de un tampón, u otras formas de
administración apropiadas, que son en sí conocidas por el
especialista en el campo de la galénica, o que se pueden determinar
mediante ensayos sencillos.
La implantación exitosa de los blastocitos en el
endometrio no depende únicamente de la receptividad del endometrio.
La implantación sólo es posible cuando las células en los límites
exteriores de los blastocitos, las llamadas células trofoblásticas,
se funden entre sí y forman, de este modo, un sincitio. La formación
de un sincitio es un proceso que, en la biología del organismo
humano, sólo se presenta en pocos lugares. De esta manera, es
conocido en la creación de fibras de músculo esquelético y en la
formación de osteoclastos.
En la fusión sincitial de mioblastos, o en la
formación de osteoclastos, las moléculas del grupo de ADAM
( a disintegrin and a
metalloproteinase [una desintegrina y una
metaloproteinasa]; véase (Huppertz et al., 2001)) son de
especial importancia, en tanto que el trofoblasto humano utiliza una
proteína de un retrovirus endógeno, la sincitina (Mi et al.,
2000). De esta forma, se ofrece el punto de partida para lograr una
acción contraceptiva por inhibición de la fusión de células
trofoblásticas. El proceso de la fusión de trofoblastos es
específico para los trofoblastos y, por lo tanto, su inhibición se
puede aprovechar para una contracepción selectiva, específica para
trofoblastos.
Desde el punto de vista funcional, las proteínas
según la invención se distinguen por su propiedad de hacer posible
la inhibición de la fusión sincitial de las células trofoblásticas.
Son utilizables para lograr una acción anticonceptiva en mamíferos
de sexo femenino, en especial roedores, animales domésticos tales
como perro y gato, así como en la mujer. La invención comprende
esencialmente, por consiguiente, los siguientes componentes:
proteínas que, preferentemente, pueden estar presentes como
moléculas de unión inmunológica, que
- a)
- se pueden clasificar, por la comparación de homologías, como derivados del anticuerpo de un animal no mamífero, en especial, del pollo. De forma especial, se caracterizan como material por la mención de una secuencia de consenso de aminoácidos;
- b)
- funcionalmente, se caracterizan por la propiedad de inhibir la fusión sincitial de las células trofoblásticas de animales mamíferos
Las proteínas según la invención pueden estar
presentes, en una forma de realización preferida, como moléculas de
unión inmunológicas. Las moléculas de unión inmunológicas son, en el
ejemplo de realización descrito en este documento, moléculas
recombinantes. Las moléculas de unión inmunológicas mencionadas en
los ejemplos son del tipo del anticuerpo "single chain variable
Fragment" ("Fragmento variable de cadena única") (scFv). Una
molécula de anticuerpo de este tipo está compuesta sólo por las
regiones variables de las cadenas ligeras (Vl) y cadenas pesadas
(Vh) de una molécula de anticuerpo, unidas entre sí a través de una
secuencia recombinante corta, incluida (enlazador). Por lo tanto, se
debe entender que un scFv es una forma de expresión mínima de una
molécula de unión inmunológica. La información de unión decisiva
está contenida en las regiones variables individuales Vl y Vh, pero
no en su tipo de enlace. Tipos de realización adicionales de la
presente invención comprenden los llamados anticuerpos Fab
(fragmento fijador de antígeno) u otras moléculas de anticuerpos,
construidas de cualquier forma y, eventualmente, también moléculas
de anticuerpos naturales no recombinantes que tienen al menos una de
las regiones variables participantes en su secuencia. En el tipo de
realización del scFv también representado en los ejemplos, son
concebibles las siguientes series de módulos participantes:
Vl - enlazador - Vh
Vh - enlazador - Vl
Para otras construcciones portadoras es válido
también que el orden de Vl y Vh en las construcciones no esté
establecido, y que la propia construcción no intervenga de manera
decisiva en las propiedades de unión. Por construcciones portadoras
se entienden, en el presente documento, aquellas moléculas que se
pueden ensamblar sobre el anticuerpo scFv o partes de estos
anticuerpos, para permitirles encontrar de manera óptima su pareja
de unión.
La presente invención se refiere, por
consiguiente, en especial a todas las moléculas de unión
inmunológicas y sus derivados, cuyas regiones de unión específicas
poseen las secuencias de consenso para Vh y Vl mencionadas más
adelante, o cuyas secuencias son idénticas en al menos 80% a las
secuencias de consenso para Vl o Vh, respectivamente, y que son
capaces de inhibir la fusión de células trofoblásticas. Del mismo
modo, no es esencial para la presente invención si en la expresión
recombinante de las moléculas de unión inmunológicas se han
incorporado, por razones técnicas, la llamada etiqueta de epitopo
(por ejemplo, la etiqueta HIS para una mejor purificación o la
etiqueta myc para la introducción de anticuerpos secundarios en
procedimientos de detección inmunológicos, etc.). Estas etiquetas
(TAG) son de naturaleza puramente técnica y no forman parte de las
secuencias protegidas por este documento.
Moléculas de unión inmunológicas como las que se
describen en este documento se pueden obtener a partir de pollos,
transfiriendo el repertorio inmunológico del pollo de manera
adecuada en bibliotecas de biología molecular. Se describen técnicas
adecuadas, por ejemplo, en Barbas CF, Burton DR, Scott JK,
Silvermann GJ; Phage Display: A laboratory manual. CSHL
Press, Nueva York. Si estas bibliotecas se encuentran disponibles,
las moléculas deseadas se pueden concentrar aislando, mediante
técnicas conocidas (descritas, por ejemplo, en Barbas et al.,
véase antes), aquellos anticuerpos que se unen a la superficie de
las células trofoblásticas preparadas para la fusión. A
continuación, estos anticuerpos se clonan en el plano del ADN por
separación y se secuencian en el plano del ADN. Para los controles
de su acción inhibitoria de la fusión, se deben analizar, entonces,
todos los anticuerpos en un ensayo de fusión, y se les debe
caracterizar. Las secuencias de aquellos anticuerpos inhibidores de
la fusión, aislados de bibliotecas estocásticas, están incluidas con
una alta probabilidad en la secuencia de consenso indicada en este
documento.
De forma alternativa, se puede preparar una
secuencia conocida de ADN de anticuerpo clonando, según el
procedimiento anteriormente mencionado en Phage Display, anticuerpos
de pollo y seleccionando y secuenciando de manera casual clones
individuales (Andris-Widhopf et al). Las
secuencias marco de los anticuerpos de pollo
("Framework-sequences") son altamente homólogas
y se apartan poco de las secuencias marco Vh o Vl secuenciadas en
este documento. La especificidad de unión se garantiza mediante
"Complementarity-determining regions" (CDR)
("regiones para determinar la complementariedad"), que son muy
diferentes de un anticuerpo a otro. A través del intercambio
dirigido de secciones individuales, sobre todo, de las regiones CDR,
con ayuda de técnicas de biología molecular conocidas, se pueden
preparar también anticuerpos de una secuencia deseada por
modificación de las secuencias de pollo clonadas.
Los anticuerpos scFv mencionados en el Ejemplo se
encuentran presentes, codificados en el ADN, en el vector pAC. Este
vector es un vector de expresión adecuado para E. coli que,
formado con un origen f1, un promotor pBAD controlado por arabinosa,
así como un gen, media la resistencia a la ampicilina. Las
secuencias de ADN que codifican las moléculas de unión inmunológicas
se incorporan en el vector de manera que su expresión está
controlada por el promotor pBAD. Un péptido de señal que se
encuentra en el vector dirige la proteína expresada en el periplasma
de E. coli y se agrega una etiqueta 6xHIS a la secuencia
expresada para permitir la purificación mediante cromatografía de
afinidad de metal. Todos los clones están verificados por
secuenciación antes de la expresión, de manera que se establece, sin
duda alguna, que las secuencias de ADN están correctamente
incorporadas en el vector.
Las secuencias se pueden sintetizar y purificar
en cualquier sistema de expresión adecuado para la expresión de
proteínas, tanto en E. coli como en Saccharomyces cerevisiae,
tras su correspondiente clonación posterior como proteína. Los
correspondientes procedimientos aparecen extensamente descritos en
los manuales de biología molecular y biotecnología, siendo todos
ellos aplicables, en principio, a las presentes secuencias. El
experto conoce estas técnicas. A continuación, se presenta la
expresión a través del vector pAC en E. coli (cepa Top Ten,
Cía. Invitrogen, Groningen, Holanda), así como la purificación de
las proteínas expresadas.
Los derivados pAC, que contienen las secuencias a
expresar, se transforman, inicialmente, por electroporación, en
E. coli Top Ten y las mezclas de transformación se siembran
sobre placas de agar (Medio LB, 50 \mug/ml de ampicilina),
incubándolas durante la noche a 30ºC.
Al día siguiente, se inoculan sendos 5 ml de
medio LB (composición, véase (Sambrook et al, 1989); que
contiene: 50 \mug/ml de ampicilina) con bacterias, extraídas de
una única colonia. Este cultivo se incuba en un agitador de
incubación a 300 revoluciones por minuto (rpm) y a 37ºC durante la
noche. En el cultivo siguiente, se inocula el cultivo de expresión
de este cultivo previo realizado durante la noche, con una dilución
de 1:100 y se incuba en un matraz Fernbach a 300 rpm y 37ºC hasta
alcanzar una densidad óptica (medida a 600 nm: OD600) de 0,5.
Normalmente, esto se consigue después de aproximadamente 2,5 horas.
Después de alcanzar la OD600 deseada, se induce la expresión
mediante la adición de L-arabinosa (hasta una
concentración máxima de 0,02%; la concentración óptima se debe
calcular de manera individual para cada clon en ensayos previos). La
expresión se lleva a cabo entonces a 26ºC, 300 rpm y durante
4-6 h. El comportamiento de crecimiento de las
bacterias se documenta por medio de la toma de muestras y medición
de la OD600. A continuación de esta fase de expresión, se centrifuga
el cultivo durante 20 min a 4000 g y 4ºC y se resuspende el
granulado en 2 ml de Tampón TES (Tris-HCl 0,2 M, pH
8,0; EDTA 0,5 mM; sacarosa 0,5 M). A esta suspensión se agregan
lentamente 3 ml de tampón TES 1/5 (1 parte de volumen de tampón TES
más 4 partes en volumen de agua bidestilada), se mezcla y se incuba
durante 30 min sobre hielo. Seguidamente, la muestra se distribuye
en partes alícuotas en matraces de reacción de 1,5 ml y se
centrífuga a 10000 g durante 10 min a 4ºC. El sobrenadante contiene
entonces las proteínas periplasmáticas y, con ellas, también el
producto de expresión deseado.
Para un procesamiento adicional, se dializa el
sobrenadante durante la noche a 4ºC contra solución de cloruro
sódico isotónica, tamponada con fosfato (pH 7,4, que contiene:
imidazol 10 mM). Mediante kits disponibles en el comercio para
cromatografía de afinidad sobre níquel (por ejemplo, Qiagen GmbH,
Hilden, Alemania) es posible purificar adicionalmente la proteína
deseada. La purificación se controla por electroforesis sobre gel y
se determina la concentración de proteína (Harlow y Lane, 1988). Las
concentraciones molares se determinaron a partir del cálculo de
concentración y de la masa de formulación derivada de la
secuencia.
Las proteínas purificadas y analizadas
cuantitativamente se comprueban, a continuación, en un ensayo de
fusión, bajo condiciones equimolares, para determinar si pueden
inhibir la fusión de células trofoblásticas humanas.
A continuación, se enumeran los clones expresados
y analizados en el Ejemplo, representando de manera alineada las
secuencias de aminoácidos traducidas de las secuencias de ADN.
La determinación de la acción inhibitoria de la
fusión se lleva a cabo con ayuda de la línea de células
trofoblásticas humanas de fusión espontánea AC-1M17.
Las células de esta línea celular muestran, inmediatamente después
de su siembra en un nuevo frasco de cultivo, un índice de fusión de
20-30%.
Las células de esta línea celular se multiplican,
en primer lugar, hasta un número suficiente y, entonces, se dividen
en dos poblaciones que se tiñen con diferentes tinciones de
fluorescencia disponibles en el comercio (DiI y DiO, tinción según
los datos del proveedor, Molecular Probes BV, Leiden, Holanda).
Después de lavar exhaustivamente las células (5 x
10 minutos), para separar restos de tinción eventualmente presentes
que no están integrados en la membrana celular, se mezclan las dos
poblaciones celulares y se incuban conjuntamente, con una baja
densidad celular, durante 24 horas bajo condiciones convencionales
de cultivo (dióxido de carbono al 5%, 38ºC, humedad relativa del
aire mayor que 90%) en F12 de Ham (suero bovino fetal al 10% y
antibióticos). Después de esta fase de cultivo, se separan las
células del fondo del frasco de cultivo con ayuda de tripsina, se
suspenden y se determina en un flujocitómetro cuántas células han
llegado por fusión a una doble fluorescencia. La Figura 2 resume los
índices de inhibición de la fusión de estas células trofoblásticas
medidos para los clones scFv individuales citados en el Ejemplo. La
Figura muestra, igualmente, la dependencia de la concentración del
efecto inhibidor de la fusión en los diversos clones.
Harlow E, Lane D (1988),
Antibodies: A laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory,
Cold Spring Harbor, NY.
Huppertz B, Tews DS,
Kaufmann P (2001). Apoptosis and syncitial fusion in
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<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> Descripción de secuencia artificial:
secuencia híbrida
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<223> Descripción de secuencia artificial
Secuencia de consenso
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<213> Secuencia artificial
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secuencia híbrida
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<223> Descripción de secuencia artificial:
Secuencia de consenso
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<400> 11
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Claims (9)
1. Proteína que es homóloga en al menos 80% con
la Vl o Vh del pollo, y que inhibe la fusión sincitial de los
trofoblastos de mamíferos,
en donde Vl tiene la siguiente secuencia
en
donde
X^{0} = significa un grupo amino no sustituido,
mono o disustituido, o uno o múltiples aminoácidos,
X^{1} = P o L,
X^{2} = G o E,
X^{3} = K o E,
X^{4} = I o L,
X^{5} = G o S,
X^{6} = S o G,
X^{7} = G o R o Y,
X^{8} = S o R o Y, o una deleción,
X^{9} = W o S, o una deleción,
X^{10} = S o K o Y, o una deleción,
X^{11} = Y o F,
X^{12} = S o A, o una deleción,
X^{13} = A o T, o una deleción,
X^{14} = V o D,
X^{15} = V o L,
X^{16} = N o V o S o D o E,
X^{17} = N o S,
X^{18} = N o T o D o K,
X^{19} = K o N,
X^{20} = D o N,
X^{21} = K o V,
X^{22} = T o A,
X^{23} = A o H o N,
X^{24} = D o E,
X^{25} = Y o F,
X^{26} = N o S o G,
X^{27}= R o Y o G, o una deleción,
X^{28} = D, o una deleción,
X^{29} = W, o una deleción,
X^{30} = D o K o A, o una deleción,
X^{31} = S o T o D,
X^{32} = S o A o G,
X^{33} = A o G, o una deleción,
X^{34} = G o R, o una deleción,
X^{35} = Y o N, o una deleción,
X^{36} = V o A o T,
X^{37}= G o A o N,
X^{38} = I o A o M, y
X^{39} = significa un grupo carboxilo, un
derivado carboxílico o uno o múltiples aminoácidos
y en donde están permitidos
intercambios conservadores de cualquier aminoácido entre sí, con la
condición de que se conserve la inhibición de la función
sincitial,
en
donde
Vh tiene la siguiente secuencia:
en
donde
X^{0} = significa un grupo amino no sustituido,
mono o disustituido, o uno o múltiples aminoácidos,
X^{1} = A o S o T,
X^{2} = G o R,
X^{3} = G o A o T,
X^{4} = A o G,
X^{5} = S o T o D,
X^{6} = F o M,
X^{7} = S o T,
X^{8} = S o D o N, o una deleción,
X^{9} = G o Q o A o T,
X^{10} = N o A o Q o G,
X^{11} = I o V,
X^{12} = F o W o Y,
X^{13} = A o G,
X^{14} = G o A o R,
X^{15} = I o M,
X^{16} = S o N o G,
X^{17} = S o R o N,
X^{18} = G, o una deleción,
X^{19} = F o T o S o N,
X^{20} = G o S o A,
X^{21} = N o S o R,
X^{22} = R o S o Y,
X^{23} = G o A o N o Y,
X^{24} = G o A,
X^{25} = S o A o P,
X^{26} = K o Q,
X^{27} = R o L,
X^{28} = A o C,
X^{29} = T o H,
X^{30} = I o H,
X^{31} = S o L,
X^{32} = R o E,
X^{33} = D o G,
X^{34} = N o Q o R o D o K,
X^{35} = G o R o W,
X^{36} = Q o A,
X^{37} = S o E,
X^{38} = T o H,
X^{39} = V o S,
X^{40} = R o E,
X^{41} = L o A,
X^{42} = Q o A,
X^{43} = L o A,
X^{44} = N o E o S,
X^{45} = N o Q,
X^{46} = L o P,
X^{47} = R o Q,
X^{48} = A o G,
X^{49} = E o G,
X^{50} = D o H,
X^{51} = T o R o L,
X^{52} = G o P, o una deleción,
X^{53} = T o P, o una deleción,
X^{54} = Y o T, o una deleción,
X^{55} = Y o S, o una deleción,
X^{56} = C o A, o una deleción,
X^{57} = A o P, o una deleción,
X^{58} = K, o una deleción,
X^{59} = significa un grupo carboxilo, un
derivado carboxílico o uno o múltiples aminoácidos,
y en donde se permiten intercambios
conservadores de cualquier aminoácido, con la condición de que se
conserve la inhibición de la fusión
sincitial,
en donde las proteínas con las
secuencias Vl y Vh están unidas entre sí a través de un
enlazador.
2. Proteína según la reivindicación 1, en la que
el enlazador es una cadena peptídica de al menos 5 aminoácidos
cualesquiera.
3. Proteína según una de las reivindicaciones 1 ó
2, en la que la secuencia contiene
D-aminoácidos.
4. Proteína según al menos una de las
reivindicaciones 1 a 3, con la secuencia de aminoácidos Seq ID nº 1
hasta 10.
5. Proteína con la secuencia Seq ID nº 11
(secuencia de consenso).
6. Ácido nucleico, en especial ADN o ARN, que
codifica una proteína según una de las reivindicaciones 1 a 5.
7. Plasmidio o vector que contiene un ácido
nucleico según la reivindicación 6.
8. Medicamento que contiene al menos una de las
proteínas según una de las reivindicaciones 1 a 5, o al menos un
ácido nucleico según la reivindicación 6.
9. Uso de al menos una de las proteínas según una
de las reivindicaciones 1 a 5, o de al menos un ácido nucleico según
la reivindicación 6, para la fabricación de un medicamento para la
contracepción en mamíferos.
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