HU219352B - High pressure process for producing liposome-dispersion - Google Patents
High pressure process for producing liposome-dispersion Download PDFInfo
- Publication number
- HU219352B HU219352B HU9400827A HU9400827A HU219352B HU 219352 B HU219352 B HU 219352B HU 9400827 A HU9400827 A HU 9400827A HU 9400827 A HU9400827 A HU 9400827A HU 219352 B HU219352 B HU 219352B
- Authority
- HU
- Hungary
- Prior art keywords
- water
- substances
- liposome
- soluble
- alkyl
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/10—Dispersions; Emulsions
- A61K9/127—Liposomes
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/10—Dispersions; Emulsions
- A61K9/127—Liposomes
- A61K9/1277—Processes for preparing; Proliposomes
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/48—Preparations in capsules, e.g. of gelatin, of chocolate
- A61K9/50—Microcapsules having a gas, liquid or semi-solid filling; Solid microparticles or pellets surrounded by a distinct coating layer, e.g. coated microspheres, coated drug crystals
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Dispersion Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
- Manufacturing Of Micro-Capsules (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
A találmány tárgya eljárás liposzómadiszperzió előállítására, ahol aliposzómadiszperzió tartalmaz a) liposzómába kapszulázandó, vízoldhatóvagy hidrofil tulajdonságú anyagot vagy anyagkeveréket; b) legalábbegy (I) általános képlet szerinti foszfolipidet, ahol R1 jelentése10–20 szénatomos alkil-karbonil-csoport, R2 jelentése hidrogénatomvagy 10–20 szénatomos alkil- karbonil-csoport, R3 jelentésehidrogénatom, 2-(trimetil-amino)-1-etil-, 2-amino-1-etil-, 1–4szénatomos alkil-, karboxicsoporttal helyettesített 1–5 szénatomosalkil-, hidroxicsoporttal helyettesített 2–5 szénatomos alkil-,karboxi- és hidroxicsoporttal helyettesített 2–5 szénatomos alkil-,illetve karboxi- vagy aminocsoporttal helyettesített 2–5 szénatomosalkilcsoport vagy ezen vegyületek sói; c) az alkalmazáshoz szükségestisztaságú vizet és adott esetben d) az alkalmazásnál szokásossegédanyagokat. A találmány szerinti eljárást az jellemzi, hogylegalább egy fenti b) foszfolipidet és adott esetben az alkalmazásnálszokásos fenti d) lipofil segédanyagot, szén-dioxidot és polárosszerves oldószert (modifikátort) tartalmazó mobil hordozófázisttartalmazó keveréket a tiszta szén-dioxid-fázis kritikus nyomásánál éskritikus hőmérsékleténél magasabb nyomáson és magasabb hőmérsékletentartják, a kapott összenyomott keverékfázist normálnyomáson kiengedik,és fenti a) liposzómába kapszulázandó, vízoldható vagy hidrofiltulajdonságú anyagot vagy anyagkeveréket és adott esetben azalkalmazásnál szokásos fenti d) segédanyagokat tartalmazó vizesfázisba viszik át, majd szükség esetén a szerves oldószerteltávolítják és/vagy egy meghatározott átmérőjű tartományba esőliposzómafrakciót leválasztanak, és/vagy a liposzómadiszperziót azalkalmazásnak megfelelően formulázzák. ŕ
Description
A találmány tárgya új és előnyös eljárás liposzómadiszperzió előállítására.
A különböző zárványvegyületeket és foszfolipideket, mint például lecitint tartalmazó liposzómadiszperziókat már számos publikációban ismertették és klinikailag is kipróbálták. A technika állásának bemutatására az EP-A 178 624 számú szabadalmi leírást említjük, amelyben egy foszfolipidként szintetikus, tisztított nátrium-1,2-di(9-cisz-oktadecenoil)-3-sn-foszfatidil-Sszerint és l-n-hexadekanoil-2-(9-cisz-oktadecenoil)-3sn-foszfatidil-kolint és kapszulázott hatóanyagként lipofil N-acetil-D-muramil-L-alanil-D-izoglutaminil-Lalanin-2-/l,2-dipalmitoil-sn-glicero-3-(hidroxi-foszforil-oxi)/-etil-amidot vagy hidrofil doxorubicint tartalmazó liposzómadiszperziót ismertetnek. Ezek a diszperziók egyebek között intravénásán is alkalmazhatók.
Ismertek továbbá egyéb, különös gyógyászati hatás nélküli liposzómadiszperziók is, mint például cink-ftalocianin, radioaktív jelölővegyületek vagy fluoreszkáló vegyületek. Példaként az EP-A 451 103 számú szabadalmi leírást említjük, amelyben cink-ftalocianint tartalmazó liposzómadiszperziót írnak le, amely intravénás alkalmazás után nyalábolt lézerrel besugározva fotodinamikus kemoterápiára alkalmas.
Az irodalomból számos eljárást ismert liposzómadiszperzió előállítására, például vizes foszfolipid-diszperzió ultrahangos kezelése; foszfolipidek és tenzidek diszpergálása vizes fázisban és a tenzidek eltávolítása dialízissel; foszfolipidek feloldása szerves oldószerben, az oldószer eltávolítása liofilizálással és a vizes fázisú maradék diszpergálása; infúziós eljárások vagy reverz fázisú bepárlás.
Sok ismert eljárás hátrányos, mivel a felhasznált foszfolipid-mennyiségnek csak egy töredéke képez liposzómát, és ezen a liposzómáknak csak egy kis hányada tartalmaz zárványvegyületeket. Ezenkívül még keverékmicellák, gélstruktúrák és definiálatlan méretű kettős rétegű aggregátumok képződhetnek. Ismertek ezenkívül a stabilitási problémák, a liposzómák erősen változó méreteloszlása, az eljárások reprodukálhatóságának hiánya, a szerves oldószermaradékok nagy mennyisége, maradék tenzidek stb.
Az összes ismert előállítási eljárás közös hátránya továbbá, hogy a kapszulázandó anyagnak vagy anyagkeveréknek csak egy kis hányada kapszulázódik ténylegesen a kettős rétegű membránban vagy a liposzómák belső terében. Lipofíl anyag vagy anyagkeverék alkalmazásával a kapszulázott hatóanyag-mennyiség növelhető. Ha azonban vízoldható vagy hidrofil anyagokat akarunk kapszulázni, akkor a kapszulázott anyagmennyiség aránya az össztömeghez képest mindig alacsony marad. A vízoldható vagy hidrofil anyagok nemigen hajlamosak arra, hogy a vizes fázisból lipidfázisba átmenve feldúsuljanak. Ezenkívül a lipidmembránok stabilitása csekély. A membrán szétesésekor a liposzómák belső terének vizes tartalma a liposzómákat körülvevő vizes fázissal kicserélődik, ezért a vízoldható hatóanyag dúsulási foka csökken a liposzómákban.
A találmány feladata olyan új, javított eljárás megadása vízoldható vagy hidrofil anyagok bezárására alkalmas liposzómák előállítására, amely az ismert eljárásokhoz képest a ténylegesen bezárt anyag vagy anyagkeverék arányának meglepő növekedését eredményezi és gyógyászati alkalmazás esetén steril munkakörülményeket biztosít.
Ezt a feladatot a jelen találmány szerinti, lipszómadiszperzió előállítására vonatkozó új és előnyös eljárás megoldja. A liposzómadiszperzió tartalmaz
a) liposzómába kapszulázandó, vízoldható vagy hidrofil tulajdonságú anyagot vagy anyagkeveréket;
b) legalább egy (I) általános képlet szerinti foszfolipidet, ahol
Rj jelentése 10-20 szénatomos alkil-karbonil-csoport, R2 jelentése hidrogénatom vagy 10-20 szénatomos alkil-karbonil-csoport, R3 jelentése hidrogénatom, 2(trimetil-amino)-l-etil-, 2-amino-l-etil-, 1-4 szénatomos alkil-, karboxilcsoporttal helyettesített 1-5 szénatomos alkil-, hidroxilcsoporttal helyettesített 2-5 szénatomos alkil-, karboxil- és hidroxilcsoporttal helyettesített 2-5 szénatomos alkil-, illetve karboxil- vagy aminocsoporttal helyettesített 2-5 szénatomos alkilcsoport vagy ezen vegyületek sói;
c) az alkalmazáshoz szükséges tisztaságú vizet és adott esetben
d) az alkalmazásnál szokásos segédanyagokat.
A találmány szerinti eljárásra az jellemző, hogy legalább egy fenti b) foszfolipidet és adott esetben az alkalmazásnál szokásos fenti d) lipofíl segédanyagot, széndioxidot és poláros szerves oldószert (modifikátort) tartalmazó mobil hordozófázist tartalmazó keveréket a tiszta szén-dioxid-fázis kritikus nyomásánál és kritikus hőmérsékleténél magasabb nyomáson és magasabb hőmérsékleten tartjuk, a kapott összenyomott keverékfázist normálnyomáson kiengedjük, és a fenti a) liposzómába kapszulázandó, vízoldható vagy hidrofil tulajdonságú anyagot vagy anyagkeveréket és adott esetben az alkalmazásnál szokásos fenti d) segédanyagokat tartalmazó vizes fázisba visszük át, majd szükség esetén a szerves oldószert eltávolítjuk és/vagy egy meghatározott átmérőjű tartományba eső liposzómafrakciót leválasztunk, és/vagy a liposzómadiszperziót az alkalmazásnak megfelelően formulázzuk.
Egy különösen előnyös eljárási változatnál a foszfolipidet, azaz az l-n-hexadekanoil-2-(9-cisz-oktadecenoil)-3-sn-foszfatidil-kolint (POPC) egy modifikátorként 5-7% etanolt tartalmazó szén-dioxid mobil hordozófázisban levő lipofíl koleszterin segédanyaggal együtt a tiszta szén-dioxid-fázisra vonatkozó kritikus nyomásánál és kritikus hőmérsékleténél magasabb nyomáson és magasabb hőmérsékleten (>72 bar>32 °C) tartjuk. Ezt az összenyomott keverékfázist normálnyomáson kiengedjük, majd vízoldható hatóanyagot, mint például EDATREXATE (lO-EDAM)-ot tartalmazó vizes keverékkel elegyítjük. Eközben spontán képződnek olyan liposzómák, amelyek jelentős hányadban tartalmaznak ilyen vízoldható zárványvegyületeket.
A korábban és a későbbiekben említett fogalmakat a következők szerint definiáljuk.
A fogalom: liposzómába kapszulázandó, vízoldható vagy hidrofil tulajdonságú anyag vagy anyagkeverék
HU 219 352 Β
- a technika állása szerint ismert olyan hidrofil vagy vízoldható tulajdonságú anyagot vagy anyagkeveréket jelent, amelynek ismert jellemzője, hogy foszfolipidek kettős rétegébe bezárható.
A liposzómák az irodalomban számos kiadványban le vannak írva. Felépítésük és alkalmazásuk számos kutatás tárgya. Megkülönböztetünk egylamellás liposzómákat egyetlen kettős réteggel és soklamellás liposzómákat több foszfolipidet tartalmazó kettős réteggel (héjjal), amelyek hagymahéjszerűen helyezkednek el. A liposzómák mérete 1,0 χ 108 és 1,0 χ 10 5 m között változik.
A liposzómák, különösen a lipofil gyógyászati hatóanyagok hordozókénti gyógyászati alkalmazása ismert. Ezenkívül javasolták a liposzómák alkalmazását más biológiai hatású lipofil anyagok, mint például proteinek, antitestek vagy enzimek, hormonok, vitaminok vagy gének hordozójaként, illetve analitikai célra jelzett vegyületek hordozójaként.
A liposzómák és előállításuk leírása megtalálható Gregoriadis G. (kiadó) Liposome Technology, Vol. II, Incorporation of Drugs, Proteins and Genetic Matériái, CRC Press 1984, összefoglaló munkájában.
A liposzómába kapszulázandó anyagnál vagy anyagkeveréknél megkülönböztetjük a hidrofil vagy vízoldható tulajdonságot. Egy anyag vagy anyagkeverék hidrofil tulajdonságán azt a tenzideknél is ismert hajlamot értjük, hogy a víz fázis-határfelületén feldúsulnak. Ez feltételezi az adott anyag vagy anyagkeverék molekulaszerkezetében az úgynevezett hidrofil csoportok jelenlétét, amelyek a vízzel vonzási (vonzó) kölcsönhatásba lépnek.
Vízoldhatónak nevezünk egy anyagot vagy anyagkeveréket, ha bemért mennyiségének részleges vagy teljes oldási folyamata a vizes fázisban megtörtént, és az anyag vagy anyagkeverék egy részmennyisége vagy teljes mennyisége a víz oldószerben molekuladiszperz eloszlásban van jelen. Gyógyászati célra elegendő, ha a hatóanyag hatékonysághoz szükséges legkisebb koncentrációja van jelen a vízben, adott esetben kolloid diszperz eloszlásban, ahol nem következhet be az anyagok ülepedése.
A nehezen oldódó hatóanyagokat vízoldható, gyógyászatilag elfogadható sókká, például hidrobromiddá, hidrokloriddá, meziláttá, acetáttá, szukcináttá, laktáttá, tartaráttá, fiunaráttá, szulfáttá, maleáttá vagy hasonlókká lehet alakítani és az eljáráshoz alkalmassá lehet tenni. Ezenkívül a nehezen oldódó hatóanyagokat vízoldható származékokká lehet alakítani vagy a későbbiekben részletezett oldékonyságnöveló adalékokkal (szolubizátorokkal) vízoldhatóvá lehet tenni.
Ilyen gyógyászatilag alkalmas, vízoldható formára hozott hatóanyagok, például vízoldható sók formájában előállított vagy oldékonyságnöveló adalékokkal vízoldhatóvá tett gyógyszerek ismertek például mint gyulladásgátló szerek, mint például dexamethason, nátrium-dexamethason-szulfát, hydrocortison vagy prednisolon, koronáriatágítók, mint például nifedipin, isosorbit-dinitrát, nitroglicerin, dilthiazem, trapidil, dipyridamol vagy dilazep, prosztaglandinok, mint például prosztaglandin-El, -E2 vagy -F2a, perifériás értágítók, mint például ifendropil, cinepazet-maleát, cyclandelat, cinnarizin vagy pentoxyphyllin, antibiotikumok, mint például ampicillin, amoxycillin, cephalexin, cefradin, cefroxadin, cefaclor, erythromycin, bacampicillin, minocyclin vagy chloramphenicol, görcsoldó szerek, mint például propanthelin, atropin vagy scopolamin, köhögéscsillapítók és asztma elleni gyógyszerek, mint például theophyllin, aminophyllin, methylephedrin, procatechol, trimethoquinol, codein, clofedanolol vagy dextromethorphan, vízhajtók, mint például furosemid vagy acetazolamid, izomlazítók, mint például chloiphenesincarbamat, tolperison, eperison vagy baclofen, gyenge nyugtatok, mint például oxazolam, diazepam, clotiazepam, medazepam, temazepam vagy fludiazepam, erős nyugtatok, mint például sulpirid, clocapramin vagy zotepin, béta-blokkolók, mint például pindolol, propranolol, carteolol, oxprenolol, metoprolol vagy labetalol, szívritmus-szabályozók, mint például procainamid, disopyramid, ajimalin vagy quinidin, köszvényellenes szerek, mint például allopurinol, véralvadásgátlók, mint például ticlopidin, epilepsziaellenes szerek, mint például phenytoin vagy valproat, hisztamingátlók, mint például cholpheniramin, clemastin, mequitazin, alimemazin, cyproheptadin, rosszullét és szédülés elleni szerek, mint például diphenidol, methochlopromid, domperidon vagy bethahistin, vérnyomáscsökkentők, mint például reserpin, rescinnamin, metildopa, prazosin, clonidin vagy budralazin, szimpatomimetikumok, mint például dihydroergotamin, isoproterenol vagy etil-efrin, köptetők, mint például bromhexin, karbocisztein, -etil-cisztein vagy L-metil-cisztein, szájon keresztül szedhető diabetikumok, mint például glibencamid vagy tolbutamid, kardiovaszkuláris szerek, mint például ubidecarenon vagy adenosin.
Előnyösek az immunoszuppresszánsok, mint például ciclosporin, a citosztatikumok, mint például EDATREXATE (10-EDAM), doxorubicin, cytarabin, trifosamid, cyclophosphamid, fluoro-uracil vagy methotrexat, valamint a phthalocyanin vízoldható szulfoszármazékai, mint például tartasulfophtalocyanin, amelyek a fotodinamikus kemoterápiában alkalmazhatók.
A liposzómadiszperzió gyógyászati hatóanyag vagy -hatóanyag-kombináció helyett más kapszulázandó anyagokat, például radioaktív jelzővegyületeket vagy fluoreszkáló vegyületeket is tartalmazhat.
Az (I) általános képletű foszfolipidek nevezéktana és a szénatomok számozása az IUPAC-IUB Commission on Biochemical Nomenclature (CBN, biokémiai származéktan bizottsága) által az Eur. J. of Biochem. 79, 11-21 (1977) „Nomenclature of Lipids” (lipidek nevezéktana) című ajánlásainak (sn-származék-tan, sztereospecifíkus számozás) felel meg.
A 10-20 szénatomos alkil-karbonil-csoport jelentésű Rj és R2 szubsztituensek előnyösen egyenes láncú, 10-20 szénatomos alkanoilcsoportok páros számú szénatomokkal, és 10-20 szénatomos alkenoilcsoportok kettős kötéssel és páros számú szénatommal.
A 10-20 szénatomos alkanoilcsoportot tartalmazó, páros számú szénatomos Rj és R2 például n-dodeka3
HU 219 352 Β noil, n-tetradekanoil, n-hexadekanoil vagy n-oktadekanoil lehet.
Az R, és R2 helyén egyenes láncú, 10-20 szénatomos alkenoilcsoportot tartalmazó szubsztituens kettős kötést és páros számú szénatomot tartalmaz, ami például 6-cisz-, 6-transz-, 9-cisz- vagy 9-transz-dodecenoil-, -tetradecenoil-, -oktadecenoil- vagy ikozenoil-, különösen 9-cisz-oktadecenoil-csoport (oleoilcsoport) lehet.
Az (I) általános képletű foszfolipid, ahol R2 2-(trimetil-amino)-l-etil-csoportot jelent, triviális neve lecitin, és az (I) általános képletű foszfolipid, ahol R3 2amino-1-etil-csoportot jelent, triviális neve kefalin. Alkalmasak például a természetben előforduló kefalin és lecitin, például a szójababból vagy tyúktojásból kinyert, különböző vagy azonos R, és R2 alkil-karbonilcsoportot vagy azok keverékét tartalmazó kefalin vagy lecitin.
Előnyösek a szintetikus, lényegében tiszta (I) általános képletű, különböző vagy azonos Rj és R2 alkilkarbonil-csoportot tartalmazó foszfolipidek.
A „szintetikus”, (I) általános képletű foszfolipid alatt olyan foszfolipideket értünk, amelyeknél Rj és R2 összetétele egységes. Ilyen szintetikus foszfolipidek a korábban definiált lecitinek és kefalinok, amelyek Rj és R2 alkil-karbonil-csoportjai definiált struktúrával rendelkeznek, és körülbelül 95%-nál magasabb tisztaságú definiált zsírsavból vannak származtatva. Rj és R2 azonos vagy különböző, és telítetlen vagy telített lehet. R, előnyösen telített, például η-hexadekanoil-, és R2 előnyösen telítetlen, például 9-cisz-oktadekanoil-csoport (=oleoilcsoport).
A „természetben előforduló”, (I) általános képletű foszfolipid alatt olyan foszfolipideket értünk, amelyeknél Rj és R2 összetétele nem egységes. Az ilyen foszfolipidek ugyancsak lecitinek és kefalinok, amelyeknél viszont az Rj és R2 alkil-karbonil-csoportok szerkezete nem definiálható, és amelyek a természetesen előforduló zsírsavkeverékekből származtathatók.
A „lényegében tiszta” foszfolipid megszorítás az (I) általános képletű foszfolipid 95 tömeg% fölötti tisztaságát úja elő, ami megfelelő meghatározási eljárásokkal, mint például papirkromatográfiásan kimutatható.
Különösen előnyösek a szintetikus, lényegében tiszta, (I) általános képletű foszfolipidek, amelyeknél Rj egyenes láncú 10-20 szénatomos alkanoilcsoportot jelent páros számú szénatomokkal, R2 pedig 10-20 szénatomos alkenoilcsoportot jelent egy kettős kötéssel és páros számú szénatomokkal.
Különösen előnyösek továbbá az olyan (I) általános képletű foszfolipidek, amelyeknél Rj jelentése n-dodekanoil-, η-tetradekanoil-, n-hexadekanoil- vagy n-oktadekanoil-csoport és R2 jelentése 9-cisz-dodecenoil-, 9cisz-tetradecenoil-, 9-cisz-hexadecenoil-, 9-cisz-oktadecenoil- vagy 9-cisz-ikozenoil-csoport.
Az (I) általános képletű foszfolipideknél R3 jelentése 1-4 szénatomos alkilcsoport, például metil- vagy etilcsoport.
Ha R3 jelentése karboxicsoporttal helyettesített 1-5 szénatomos alkilcsoport, hidroxicsoporttal helyettesített 2-5 szénatomos alkilcsoport, illetve karboxivagy hidroxicsoporttal helyettesített 2-5 szénatomos alkilcsoport, akkor az például 2-hidroxi-etil-, 2,3-dihidroxi-n-propil-, karboxi-metil-, 1- vagy 2-karboxi-etil-, dikarboxi-metil-, 2-karboxi-2-hidroxi-etil- vagy 3-karboxi-2,3-dihidroxi-n-propil-csoport lehet.
Karboxi- és aminocsoporttal helyettesített 2-5 szénatomos alkilcsoportot jelentő R3 például a 3-amino-3karboxi-n-propil- vagy 2-amino-2-karboxi-n-propil-csoport, előnyösen a 2-amino-2-karboxi-etil-csoport. Az ilyen csoportokat tartalmazó (I) általános képletű foszfolipidek sók, például nátrium- és káliumsók formájában fordulhatnak elő.
Egy különösen előnyös (I) általános képletű foszfolipid a 95%-nál nagyobb tisztaságú szintetikus 1-nhexadekanoil-2-(9-cisz-oktadecenoil)-3-sn-foszfatidilkolin (POPC).
Az (I) általános képletű foszfolipidek acilmaradékaira a zárójelben megadott elnevezések a szokásosak: 9-cisz-dodecenoil (lauroleoil), 9-cisz-tetradecenoil (mirisztoleoil), 9-cisz-hexadecenoil (palmitoleoil), 6-ciszoktadecenoil (petroseloil), 6-transz-oktadecenoil (petroselaidoil), 9-cisz-oktadecenoil (oleoil), 9-transz-oktadecenoil (elaidoil), 11-cisz-oktadecenoil (vaccenoil), 9cisz-ikozenoil (gadoleoil), n-dodekanoil (lauroil), n-tetradekanoil (myristoil), n-hexadekanoil (palmitoil), noktadekanoil (stearoil), n-ikozanoil (arachidoil).
Az (I) általános képletű foszfolipidek sói előnyösen gyógyászatilag alkalmas sók. A sókat az R3 szubsztituensben előforduló sóképző csoportok, valamint a foszfornál a szabad hidroxicsoport határozza meg. Lehetséges továbbá belső sók képzése is. Előnyösek az alkálifémsók, különösen a nátriumsók.
Az alkalmazáshoz szükséges tisztaságú fenti c) víz összetevőt a liposzómadiszperzió tartalmazza, amely például a nemzeti gyógyszerkönyvek előírásai szerint csíra- és pirogénmentesítve van. Például befecskendezési célra alkalmas víz vagy befecskendezési célra alkalmas sterilizált víz alkalmazható.
A liposzómadiszperzióban ezenkívül további fenti
d) segédanyagok lehetnek, amelyek például az izotóniás feltételek biztosításához szükségesek, például ionos adalékok, úgymint konyhasó vagy nemionos adalékok (sűrítőanyagok), úgymint szorbit, mannit vagy glukóz, vagy vízoldható stabilizátorok a liposzóma diszpergálásához, úgymint laktóz, fruktóz vagy szukróz. Ezeket az adalékokat, például a konyhasót vagy a mannitot, előnyösen az előírt, az izotóniás feltételek biztosításához szükséges mennyiségben adagoljuk. A találmány szerinti eljárás egy különösen előnyös változatánál a liposzómadiszperziót lipofil segédanyagként koleszterinnel állítjuk elő. Ezt a segédanyagot a fent említett foszfolipiddel a szén-dioxidból és modifikátorból álló mobil hordozófázishoz adjuk hozzá. Ezt a vizes fázisban lévő keverékfázist normálnyomáson kiengedjük, miközben liposzómák képződnek, ahol a koleszterin segédanyag a foszfolipidekből álló kettős rétegben van beágyazva. A kettős rétegben koleszterint tartalmazó liposzómák nagyobb stabilitást mutatnak.
A vízoldható segédanyagokon kívül a liposzómadiszperzióban folyékony gyógyászati formulázó segéd4
HU 219 352 Β anyagok is előfordulhatnak, amelyek az említett anyagok vízoldhatóságát növelik. Ilyenek például az emulgátorok, nedvesítőszerek vagy tenzidek, különösen emulgátorok, mint például olaj sav, zsírsav-polihidroxialkohol-észter típusú nemionos tenzidek, úgymint szorbitán-monolaurát, -oleát, -sztearát vagy -palmitát, szorbitán-trisztearát vagy -trioleát, zsírsav-poli(hidroxi-alkohol)-észterek, úgymint poli(oxi-etilén-szorbitán)-monolaurát, -oleát, -sztearát vagy -palmitát, -trisztearát vagy -trioleát poli(oxi-etilén)-adduktumai, polietilénglikol-zsírsav-észter, úgymint poli(oxi-etil)-sztearát, polietilénglikol-400-sztearát, polietilénglikol-2000-sztearát, különösen Pluronic (R) (Wyandotte Chem. Corp.) vagy Synperonic (R) (ICI) típusú etilén-oxid-propilénoxid tömbpolimerek.
A találmány szerinti eljárás előnye, hogy alkalmas nagy mennyiségű vízoldható hatóanyag, különösen gyógyászatilag alkalmazható hatóanyag, mint például EDATREXATE (10-EDAM), Doxorubicin, Cytarabin vagy Trofosamid, liposzómákba kapszulázására. A vízoldható hatóanyagok kapszulázására eddig ismert eljárások hátrányosak, mivel ezeknél csak kis mennyiség kapszulázható a liposzómába, miközben a nagyobb mennyiség továbbra is a vizes fázisban van feloldva.
Foszfolipidként célszerűen a korábban definiált természetes vagy szintetikus, lényegében tiszta lecitinszármazékokat, különösen l-n-hexadekanoil-2-(9-cisz-oktadecenoil)-3-sn-foszfatidil-kolint (POPC) alkalmazzuk. Szokásos lipofil segédanyagként előnyösen koleszterint alkalmazunk. Ennek a segédanyagnak a beépülésével, amely a stabil, természetes membránokban is megtalálható, különösen stabil liposzómaszerkezetekhez jutunk, amelyek több hónapos raktározás esetén is stabilak maradnak.
A szén-dioxidot és poláros szerves oldószert (modifikátort) tartalmazó mobil hordozófázis olyan keverékfázist jelent, amely szén-dioxidot és poláros szerves oldószert tartalmaz, a keverékfázis kritikus pontjához közeli vagy a fölötti nyomáson és hőmérsékleten. Az alkalmazandó nyomás és hőmérséklet a tiszta szén-dioxid-fázis kritikus nyomása és hőmérséklete (72 bar és 32 °C) fölött van. Poláros szerves oldószerként (modifikátorként) célszerűen etanolt vagy akár metanolt, tercbutanolt, izopropanolt, n-propanolt, metil-izobutil-ketont, acetont stb. alkalmazunk.
A szén-dioxidot és modifikátort, célszerűen etanolt tartalmazó mobil hordozófázis nyomását zárt rendszerben (1. ábra) legalább 72 bar-ra növeljük. Célszerű a tiszta szén-dioxid-fázis kritikus nyomása fölötti értékeket választani 1000 bar-ig, előnyösen 400 bar-ig, különösen 200 és 300 bar között. Munkahőmérsékletként célszerű a szobahőmérséklet fölötti hőmérsékletet választani 100 °C-ig, különösen 50 és 60 °C között. A tiszta szén-dioxid-fázis kritikus pontjához tartozó minimális értékek 72 bar és 32 °C (a kissé eltérő fiziokémiai táblázati értékek a különböző mérési eljárásokból adódnak).
Az összenyomott keverékfázis a kritikus nyomás és hőmérsékleti értékek fölött vagy azok közelében tartott, mobil hordozófázist, fenti b) foszfolipidet és adott esetben az alkalmazásnál szokásos fenti lipofil d) segédanyagot, különösen koleszterint tartalmazó homogén keveréket jelent.
A létrehozott liposzómák mérete a vizes fázisban különböző keretfeltételektől függ, például a mobil hordozófázis összetételétől, a hatóanyag és a lipidkomponensek mennyiségétől és azok keverési arányától és koncentrációjától a vizes diszperzióban, a nyomás és hőmérséklet megválasztásától, az átfolyási sebességtől, a keverőtípus vagy a kapillárisgeometria változtatásától, például a kiengedő kapilláris hosszától és keresztmetszetétől az eljáráshoz alkalmazott berendezésben.
A gyógyászati alkalmazáshoz adott esetben szükséges szerves oldószer (modifikátor) eltávolítására többféle eljárás is megfelel, például elpárologtatás, dialízis vagy gélfiltráció/gélkromatográfia. Az etanol gélfiltrációval [Sephadex (R) G 50] eltávolítható a vizes oldatból. Az etanolt előnyösen szén-dioxiddal az ellenáramoltatás elve szerint távolítjuk el a kritikus nyomás és hőmérséklet feletti értékeken az US 4,492,808 számú szabadalmi leírásban megadott eljárásnak megfelelően.
A savasan reagáló vizes diszperziókat pH 7,0-7,8re, előnyösen pH 7,2-7,4-re pufferoljuk. Ehhez célszerűen gyógyászatilag alkalmas pufferoldatok használhatók, amelyek előállítása a különböző nemzeti gyógyszerkönyvekben, például az európai, amerikai, német vagy angol gyógyszerkönyvben van leírva. A diszperziót gyógyászatilag alkalmas, hígított vizes bázis, például hígított vizes nátrium-hidroxid hozzáadásával is lehet semlegesíteni. A semlegesítést szokásosan egyidejű pH-ellenőrzés mellett végezzük. Szükség esetén steril, csíramentes és pirogénmentes vizet töltünk rá.
A liposzómadiszperzió utókezelésével, például ultrahangos besugárzásával vagy páros pórusú szűrőn [például Nucleopore (R)] átvezetéssel a liposzómák különösen egyenletes méreteloszlása érhető el.
Nagyméretű liposzómák frakciójának leválasztása a kisméretű liposzómák frakciójáról, amennyiben egyáltalán szükséges, szintén hagyományos leválasztást módszerekkel történik, például gélfiltrációval vagy ultrafiltrációval hordozóként Sepharose (R) 4B vagy Sephacryl (R) (Pharmacia SE) alkalmazásával, liposzómák útépítésével ultracentrifugában, például 160 000xg nehézségi gyorsulás mellett. Ebben a nehézségi erőtérben többórás, például háromórás centrifugálás után a nagyméretű liposzómák kiülepednek, míg a kisméretű liposzómák diszpergálva maradnak és dekantálhatók. Többszörös centrifugálással elérhető a nagy- és a kisméretű liposzómák teljes szétválasztása.
Különösen gélfiltrációval az összes vizes fázisban lévő, 6,0 χ 108 m átmérőjű liposzómát és a nem kapszulázott komponenseket és maradékokat, a nagymolekulás aggregátumban előforduló diszpergált lipideket le lehet választani és ezáltal viszonylag egységes méretű liposzómaffakciót tartalmazó vizes diszperziót állíthatunk elő.
A liposzómák képződése és a liposzómák méreteloszlása a vizes fázisban ismert módon különböző fizikai mérési eljárásokkal kimutatható, például fagyasztva lebontott (freeze fracture) mintákkal és vékony rétegű
HU 219 352 Β mintákkal elektronmikroszkóp alatt vagy röntgendiffrakcióval, vagy dinamikus fényszóródással, analitikus ultracentrifugában a filtrátum tömegmeghatározásával és mindenekelőtt spektroszkópiásan, például magrezonancia-spektrumban (*H, 13C és 31P).
A liposzómadiszperzió a szerves oldószerek eltávolítása után közvetlenül alkalmazható vagy fagyasztva szárítással liofilizátummá alakítható, amelyet közvetlenül a felhasználás előtt az injekciós térfogatnak megfelelő térfogatú víz hozzáadásával lehet visszahí- 10 gítani.
Az eljárást egy zárt berendezésben hajtjuk végre, amely az 1. ábrán látható, amelyen a jelölések jelentése a következő:
1 CO2-tartály | tiszta (99,9%) CO2-tartályból merülőcsővel (Carbagas CH-Basel) | 15 |
2 CO2-szivattyú | Gilson 306 (Synmedic AG, CH-Zürich) MGW Lauda RM6, IG hűtőaggregáttal | 20 |
3 szivattyúnyomásbiztosíték 4 nyomáshullám- | Gilson 8055 (Synmedic) | |
csillapító | csökkenti a szivattyúlöketeket 2 m 1/8 kapillárisátmérőben (Supelco SA, CH-Gland) | 25 |
5 hulladéktartály | oldószermaradékok számára | |
6 modifikátortartály | etanolmodifikátor | |
7 modifíkátorszivattyú 8 szivattyúnyomás- | Gilson 305 (Synmedic) | 30 |
vezérlő | Gilson 305-be beépítve | |
9 statikus keverő | Lee Visco Mixer, Lee TCMA2520 113T 648430, 2 darab, Lee hidraulikus minikomponensek, D-Frankfurt | 35 |
10 dinamikus keverő | Gilson 81 IB (Synmedic) | |
11 szűrő | SSI 05-0150 (Supelco) | |
12 injektor | Gilson 231 és Gilson Dilutor 401 (Synmedic) | 40 |
13 visszacsapó szelep | Spectra-Physics Checkvalve hüvellyel (Ciba-Geigy, CH-Basel) (Spectra Physics, CH-Allschwiíl) | |
14 biztonsági | 45 | |
nyomószelep | No. 20631 25, 2500-25 000 Psig (Haskel Inc. Burbank Ca., USA) | |
15 keresztcső | Valco (Supelco SA, körülbelül 0,5 mm átmérőre felfurva) | 50 |
16 manométer | 0-600 bar (IKA, D-Staufen) az I. visszakeringtető rendszerhez | |
17 visszakeringtető | ||
szivattyú | Gilson 303 (Synmedic) fűtőcső (Ciba-Geigy) | 55 |
18 UV-detektor | lineáris UVIS 200 SFC cellával és fütőcsővel, 1,4 μΐ cellatér, 2 mm úthossz (Henngeler, CH-Riehen) | 60 |
19 extrakciós cella | acélcső csavaros csatlakozással |
20 statikus keverő | 1-3 keverőelem (SMXE DN 3,2) (Sulzer Chemtech, CH-Winterthur) acélcső csavaros csatlakozással (Ciba-Geigy) |
21 nyomásérzékelő | PA-15 típusú, 15 sorozatú piezorezisztív (Keller AG, CH-Winterthur) csatlakozás minimális holttérfogattal (Ciba-Geigy) |
22 nyomásszabályozó | piezo-nyomásszabályozó piezokristállyal és fűtőelemmel (EP-A-0 427 671) |
23 piezomeghajtó | P-864 és PZT-control E-808 (Polyscience AG, CH-Cham) |
24 T idom | SSI 01-0165 (Supelco) 24b előnyösen 0,5 mm-re felfurva |
25 statikus keverő | 1 rúd 5 darabra (SMV-2 DN 10) (Sulzer Chemtech, CH-Winterthur) acélcső csavarkötéssel (Ciba-Geigy) |
26 gyűjtőedény | háromnyakú kördugattyú (50 ml) |
27 visszakeringtető | |
szivattyú | tömlőprésszivattyú (Kontron Inst. AG, CH-Zürich) Kontron Analytic LC-Pump fűtőaggregáttal |
28 vízfürdő | |
29 T idom | mint 24 |
30a/30b visszacsapó | |
szelep | mint 13, 30b előnyösen |
31a/31b adagoló- | |
szivattyú | vízoldható anyaghoz mint 7, 31b előnyösen |
32a/32b edény | vízoldhatóanyag-tartály, 32b |
előnyösen | |
33 statikus keverő | mint 20 |
A, C, D, F, G, I, J, L, N | háromutas szelep SSI 02-0124 (Supelco) |
Β, Ε, Η, K, Μ, O | kétutas szelep SSI 02-0120 (Supelco) |
A 2 CO2-szivattyú és 7 modifíkátorszivattyú az 1 CO2-tartályból és a 6 modifikátortartályból szállítja a szén-dioxidot és a modifikátort a berendezésbe. A 2 CO2-szivattyút előnyösen -10 °C-ra hűtjük, ahol a CO2 sűrűsége körülbelül 1 g/ml, és így jól szivattyúzható. A 2 CO2-szivattyú és a 7 modifíkátorszivattyú nyomását 3 szivattyúnyomás-biztosíték jelzi. A szivattyúknál a dugattyú visszahúzódásakor fellépő nyomásimpulzusokat 4 nyomáshullám-csillapító csillapítja. A 2 CO2 szivattyú és 7 modifíkátorszivattyú átfolyását és fáziskeverési arányát 8 szivattyúnyomás-vezérlő biztosítja. A 9, 20, 25 és 33 statikus keverőknek nincs mozgó alkatrésze. A keveredés az acélcsőben való áramlás hatására következik be, amit több beépített keverőelem
HU 219 352 Β (áramlástörők) biztosít, amelyek az áramlási vonalakat megbontják és újraegyesítik. A 10 dinamikus keverőnek van mozgó alkatrésze. A mozgás hatására turbulens áramlás jön létre, ami a bevitt fázisokat összekeveri. A beépített 11 szűrő a szén-dioxidot és modifikátort tartalmazó mobil hordozófázis nemkívánatos idegentestrészecskéit visszatartja. A 12 injektor további modifikátorok hozzáadását szolgálja. A 13 visszacsapó szelep a mobil hordozófázist csak A-> B irányban engedi át. Ha a nyomás a B oldalon leesik, és kisebb, mint az A oldalon, akkor az összenyomott fázis utántöltődik egészen addig, amíg egyenlő nagyságú stabil nyomás ki nem alakul. A beállítható 14 biztonsági nyomószelep a nemkívánatos túlnyomás hatására nyit. A 15 keresztcső minden irányban nyitott. Aló manométer jelzi az I recirkulációs körben uralkodó nyomást. Ezt a kört a C-D-1920-F-G-18-17-15-C vagy előnyösen a C-15-17-18-G-F20-D-C elemek határozzák meg. Az I recirkulációs körben található az összenyomott, homogén körülmények közötti homogén keverékfázis. A 17 visszakeringtető szivattyú szállítja a szén-dioxidot és modifikátort tartalmazó mobil hordozófázist a 19 extrakciós cellán és a 20 statikus keverőn keresztül az I recirkulációs körben. Eközben a 19 extrakciós cellában található lipofíl alkotórészek (foszfolipid és adott esetben koleszterin) feloldódnak. A 18 UV-detektor jelzi ki a 19 extrakciós cellában lévő lipofíl alkotórészeket tartalmazó összenyomott, lipidtartalmú keverékfázis homogenizálási fokát. A detektor kimenőjelét írómű rögzíti. A 19 extrakciós cella csavaros kötéssel rögzíthető nyomásálló acélcső, amelynek a bemeneti és kimeneti oldalán szűrő van. Erre a célra kiürített kromatográfiás cellák is felhasználhatók. A 21 nyomásérzékelő méri a nyomást az I recirkulációs kör után. A 22 nyomásszabályozóban piezokristály van, amelyet a 23 piezomeghajtó vezérel, és ezzel biztosítja a szükséges nyomás beállítását. A 23 piezomeghajtó automatikusan beállítja a kívánt üzemi nyomást, függetlenül az áramlási viszonyoktól. A 24a, b T idomból 30a, b visszacsapó szelepből, 31a, b adagolószivattyúból és 32a, b edényből álló elrendezésben gyűjthető össze a vízoldható vagy hidrofil anyag, amelyet a liposzómába kell kapszulázni. A kiengedési szakaszon lévő, 24b T idomból, 30b visszacsapó szelepből, 31b adagolószivattyúból és 32b edényből álló elrendezés előnyös, de a nagynyomású szakaszon lévő 24a T idomból, 30a viszszacsapó szelepből, 31a adagolószivattyúból és 32a edényből álló elrendezés is választható. A 25 statikus keverő gondoskodik a liposzómaképződésnél a homogenizálásról. A 27 visszakeringtető szivattyú a vizes fázist a 26 gyűjtőedényből a 33 statikus keverőn keresztül a II recirkulációs körbe szállítja viszsza. Ezt a kört a 29-3426-27-29 elemek határozzák meg. Az ellenőrizetlen habképződést a keverékfázis kiengedésénél ezek az elemek megakadályozzák és biztosítják a kiengedett keverékfázis homogenitását. A 28 vízfürdő biztosítja az I recirkulációs körben, a 17 visszakeringtető szivattyú szivatytyúfejében és a 18 UV-detektorban az állandó hőmérsékletet. Az A, C, D, F, G, I, J, L, N háromutas szelepek átvezetik az összenyomott fázist (egy kimenet állandóan nyitott) vagy két irányban elosztják azt (két kimenet nyitott). A Β, Ε, Η, K, Μ, O kétutas szelepek vagy átvezetik, vagy lezárják az áramlást.
Az 1. ábra szerinti zárt berendezésben végrehajtható eljárás és az anyagáramok egy reprezentatív foszfolipid és egy reprezentatív lipofíl segédanyag (koleszterin) alkalmazásával és egy vízoldható anyag hozzáadásával a következő eljárási részlépésekkel adható meg.
i) A korábban az 1. ábra alapján ismertetett berendezésbe CO2/etanol (=mobil hordozófázis) keverékfázist adagolunk (nyomásszabályozó: 250 bar, hőmérsékletnyomás szabályozó: 90 °C, vízfürdő hőmérséklete: 54 °C, beállítás a 21 és 28 pozícióknál). A D, F, J, L és N szelepek zárva vannak. Az A,B, C, E, G, Η, I, K, M és O szelepek nyitva vannak. A mobil hordozófázis a berendezésben az A, B, C, D, E, F, G, Η, I, 21, G, 18, 17, 15, C úton vagy az A, B, C, D, 15, 17, 18, G, Η, I, 21 úton és az A, I kerülő úton, de a 19 extrakciós cellán nem áramlik keresztül. A nyomást a 22 nyomásszabályozóval 250 bar értékűre állítjuk be. A 31b adagolószivattyú átfolyási sebessége a lipidek koncentrációjától függ a keverékfázis nyomáskiengedésénél.
ii) A foszfolipidet, például POPC-t és a koleszterint extrakciós cellában bemérjük (mólarány 7:3). Az extrakciós cellát beépítjük a 19-es pozícióba, és az A utáni és 21 előtti pozíciók mindegyikét 60 °C-os állandó hőmérsékleten tartjuk. A szelepek az i) eljárási lépéssel azonos helyzetben vannak beállítva.
iii) A mobil hordozófázis homogenitását a 18 UVdetektomál mérjük. Az UV-abszorpciós görbét íróművel rögzítjük.
iv) A D és F szelepet nyitjuk, az E és H szelepet zárjuk. Az összes többi szelep az a) eljárási lépéssel azonos helyzetben marad. Ezáltal a C, D, 19, 20, F, G, 18, 17, 15, C pozíciókkal meghatározott I recirkulációs kör, illetve a C, 15,17,18, G, F, 20,19, D, C pozíciókkal meghatározott II recirkulációs kör záródik. A 13 visszacsapó szelep (fakultatív) állandó értéken tartja a nyomást az I recirkulációs körben. A nyomáskiegyenlítést 2 CO2-szivattyú, 7 modifikátorszivattyú, A-I kerülő utas elemek és a 22 nyomásszabályozó biztosítja.
v) A 19 extrakciós cellában bemért foszfolipid- és koleszterin-egyensúlyi állapot beálltáig oldódik összenyomott keverékfázisban.
vi) Stabil egyensúlynál (18 UV-detektor stabil UVabszorpciót jelez) az A, I, D és F szelepeket zárjuk, és a 31b adagolószivattyút bekapcsoljuk. Az E és H szelepet nyitjuk. A többi szelepet az eljárási lépéssel azonos helyzetbe állítjuk be.
vii) A foszfolipidet és koleszterint tartalmazó összenyomott keverékfázist az I recirkulációs körből 22 nyomásszabályozóval kiengedjük, és a 24 T idomnál vizes fázissal hozzuk érintkezésbe. Eközben liposzómák képződnek spontán módon.
viii) A 29-34-26-27-29 pozíciókból álló II recirkulációs körben a vizes liposzómadiszperziót hígítjuk és homogenizáljuk.
ix) Ha az UV-abszorpció a mobil hordozófázis eredeti szintjét elérte (nincs kimutatható abszorpció a foszfolipideknél) és az abszorpció az iii) eljárási lépésnél megfelelő, akkor a kísérletet befejezzük, és a liposzó7
HU 219 352 Β madiszperziót HPLC útján minőségi és mennyiségi analízisnek vetjük alá. A szuszpenzió egy részét fénymikroszkóppal tekintjük meg.
1. Példa 5
Placebokísérlet l-n-hexadekanoil-2-(9-cisz-oktadecenoil)-3-sn-foszfatidil-kolin (POPC) foszfolipiddel és koleszterinnel. Az eljárást az 1. ábra szerinti berendezésben hajtjuk végre az i)—ix) eljárási lépéseknek megfelelően a II recirkulációs kör alkalmazása és vízoldható 10 anyag hozzáadása nélkül. A megadott pozíciók megfelelnek az 1. ábra korábban ismertetett hivatkozási jeleinek.
Bemérés: | 52,86 mg POPC 8,97 mg koleszterin | |
Mobil hordozófázis: | CO2 és etanol (96 térfogat%) | 15 |
Detektálás: | UV-abszorpció 210 nm-en | |
CO2-átáramlás: | 0,465 ml/perc a 2 szivattyún | |
Modifikátorátáramlás: | 0,035 ml/perc a 7 szivattyún | |
Nyomás: | az extrakciós cella előtt a 8 és 16 pozíciónál: körülbelül 300 bar, az extrakciós cella után a | 20 |
22 pozíciónál: körülbelül 250 bar, 17 visszakeringtető szivattyú alkalmazásával körülbelül 10 bar nyomásingadozás lép fel (a dugattyú visszahúzódásakor) | 25 | |
Hőmérséklet: | 28 vízfürdő: 54 °C 18 UV-detektor: körülbelül 54 °C, 17 visszakeringtető szivattyúfej: körülbelül 54 °C, nyomásszabályozó: 90 °C | 30 |
Extrakciós cella: | Valco típusú (előoszlopos), 350 μΐ térfogatú | 35 |
A HPCL-analízis nem mutatott ki lebontási termékeket a liposzómadiszperzióban. A POPC és a koleszterin a liposzómák képződése közben nem bomlik le. Az előállított liposzómadiszperzióban a következő anyag- 40 mennyiségeket találtuk:
POPC 29,5 mg (55,8% kinyerés) koleszterin 6,2 mg (69,4% kinyerés)
2. példa Bemérés:
CO2-átáramlás: Modifikátorátáramlás: Áramlási sebesség 0,00-5,59 perc 6,00-10,59 perc 11,00-17,00 perc
12,20 mg koleszterin USP XX 59,40 mg POPC POPC koleszterin mólarány 2,5:1 0,425 mg/ml cink-ftalo-cianin-tetraszulfonát [ZnPc(SO3H)4] desztillált vízben
1,86 ml/perc a 2 szivattyún 0,14 ml/perc a 7 szivattyún a 31 adagolószivattyún 12,0 μΐ/perc
4.5 μΐ/perc
1.5 μΐ/perc
Az eljárást az 1. példánál megadott feltételekkel analóg módon hajtottuk végre. A HPCL-analízis nem mutatott ki lebontási termékeket a liposzómadiszperzióban. A POPC, a koleszterin és a cink-ftalocianin-tetraszulfonát a liposzómák képződése közben nem bomlik le. Az előállított liposzómadiszperzióban a következő anyagmennyiségeket találtuk a gélszűrés előtt:
POPC koleszterin POPC: koleszterin mólarány
45,7 mg (bemérés 77%-a) 8,14 mg (bemérés 67%-a)
3:1
1,0 ml liposzómadiszperziót (1,03 mg koleszterint és 5,78 mg POPC-t) átszűrünk, hogy a nem bezárt ZnPc(SO3H)4-et eltávolítsuk. A liposzómafrakciókban a következő mennyiségeket találtuk:
POPC: koleszterin: ZnPc(SO3H)4
4,84 mg (bemérés 84%-a)
0,90 mg (bemérés 87%-a)
3,6 pg, ebből 2,6 pg a liposzómákban
72% hatóanyag bezárva mintegy 0,7 1/mol lipidzárvány-térfogattal
Claims (14)
- SZABADALMI IGÉNYPONTOK1. Eljárás liposzómadiszperzió előállítására, ahol a liposzómadiszperzió tartalmaza) liposzómába kapszulázandó, vízoldható vagy hidrofil tulajdonságú anyagot vagy anyagkeveréket;b) legalább egy (I) általános képlet szerinti foszfolipidet, aholRj jelentése 10-20 szénatomos alkil-karbonil-csoport, R2 jelentése hidrogénatom vagy 10-20 szénatomos alkil-karbonil-csoport, R3 jelentése hidrogénatom, 2(trimetil-amino)-l-etil-, 2-amino-l-etil-, 1-4 szénatomos alkil-, karboxicsoporttal helyettesített 1-5 szénatomos alkil-, hidroxicsoporttal helyettesített 2-5 szénatomos alkil-, karboxi- és hidroxicsoporttal helyettesített 2-5 szénatomos alkil-, illetve karboxi- vagy aminocsoporttal helyettesített 2-5 szénatomos alkilcsoport vagy ezen vegyületek sói;c) az alkalmazáshoz szükséges tisztaságú vizet és adott esetbend) az alkalmazásnál szokásos segédanyagokat, azzal jellemezve, hogy legalább egy fenti b) foszfolipidet és adott esetben az alkalmazásnál szokásos fenti d) lipofil segédanyagot, szén-dioxidot és poláros szerves oldószert (modifikátort) tartalmazó mobil hordozófázist tartalmazó keveréket a tiszta szén-dioxid-fázis kritikus nyomásánál és kritikus hőmérsékleténél magasabb nyomáson és magasabb hőmérsékleten tartjuk, a kapott összenyomott keverékfázist normálnyomáson kiengedjük, és fenti a) liposzómába kapszulázandó, vízoldható vagy hidrofil tulajdonságú anyagot vagy anyagkeveréket és adott esetben az alkalmazásnál szokásos fenti d) segédanyagokat tartalmazó vizes fázisba visszük át, majd szükség esetén a szerves oldószert eltávolítjuk és/vagy egy meghatározott átmérőjű tartományba eső liposzómafrakciót leválasztunk, és/vagy aHU 219 352 Β liposzómadiszperziót az alkalmazásnak megfelelően formulázzuk.
- 2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a) kapszulázandó anyagként vagy anyagkeverékként radioaktív jelzővegyületeket vagy fluoreszkáló ve- 5 gyületeket, gyógyászati hatóanyagokat vagy hatóanyagkombinációkat alkalmazunk.
- 3. A 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a) kapszulázandó anyagként vagy anyagkeverékként hidrofil vagy vízoldható tulajdonságú gyógyászati hatóanyagokat alkalmazunk.
- 4. A 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a) kapszulázandó anyagként vagy anyagkeverékként cink-ftalocianin-tetraszulfonátot [ZnPc(SO3H)4] alkalmazunk.
- 5. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy b) foszfolipidként szintetikus, lényegében tiszta l-n-hexadekanoil-2-(9-cisz-oktadecenoil)-3-sn-foszfatidil-kolint alkalmazunk.
- 6. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, 20 hogy c) komponensként injekció céljára alkalmas steril vizet alkalmazunk.
- 7. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy lipofil d) segédanyagként koleszterint alkalmazunk.
- 8. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy d) segédanyagként az izotóniás feltételek megteremtéséhez szükséges vízoldható segédanyagokat alkalmazunk.
- 9. Az 1-8. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a mobil hordozófázis szén-dioxidot és etanolt tartalmaz.
- 10. Az 1-9. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy 72 és 400 bar közötti nyo10 mástartományt alkalmazunk.
- 11. A 10. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy 200 és 300 bar közötti nyomástartományt alkalmazunk.
- 12. Az 1-11. igénypontok bármelyike szerinti eljá15 rás, azzal jellemezve, hogy körülbelül 32-100 °C-os növelt hőmérsékletet alkalmazunk.
- 13. A 12, igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy körülbelül 50-60 °C-os növelt hőmérsékletet alkalmazunk.
- 14. Az 1-13. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az előállított liposzómadiszperziót intravénás alkalmazáshoz megfelelően formulázzuk.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CH89193 | 1993-03-24 |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
HU9400827D0 HU9400827D0 (en) | 1994-06-28 |
HUT67384A HUT67384A (en) | 1995-04-28 |
HU219352B true HU219352B (en) | 2001-03-28 |
Family
ID=4197591
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
HU9400827A HU219352B (en) | 1993-03-24 | 1994-03-22 | High pressure process for producing liposome-dispersion |
Country Status (15)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5700482A (hu) |
EP (1) | EP0616801B1 (hu) |
JP (1) | JPH06315624A (hu) |
KR (1) | KR940021050A (hu) |
AT (1) | ATE166573T1 (hu) |
AU (1) | AU676257B2 (hu) |
CA (1) | CA2119610C (hu) |
DE (1) | DE59406065D1 (hu) |
FI (1) | FI111687B (hu) |
HU (1) | HU219352B (hu) |
IL (1) | IL109070A (hu) |
NO (1) | NO306846B1 (hu) |
NZ (1) | NZ260154A (hu) |
PH (1) | PH30470A (hu) |
ZA (1) | ZA942037B (hu) |
Families Citing this family (49)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0706821A1 (en) * | 1994-10-06 | 1996-04-17 | Centre De Microencapsulation | Method of coating particles |
WO1996015774A1 (en) * | 1994-11-18 | 1996-05-30 | Aphios Corporation | Methods and apparatus for making liposomes containing hydrophobic drugs |
DE4445341A1 (de) * | 1994-12-19 | 1996-06-20 | Basf Ag | Verfahren und Vorrichtung zur Herstellung wirkstoffhaltiger Dispersionen |
US6375930B2 (en) | 1996-06-04 | 2002-04-23 | Board Of Regents, The University Of Texas System | Membrane incorporation of texaphyrins |
DE19639811A1 (de) * | 1996-09-27 | 1998-04-02 | Artur Herzog Dr Mesmer | Verwendung einer Liposomenlösung zur Verstärkung der Wirksamkeit und/oder Verminderung der Toxizität von Arzneimitteln |
DE19711393C1 (de) * | 1997-03-19 | 1998-08-13 | Fraunhofer Ges Forschung | Verfahren zum Mikroverkapseln von Partikeln |
CA2304096C (en) | 1997-09-18 | 2003-09-09 | Skyepharma Inc. | Sustained-release liposomal anesthetic compositions |
NZ504188A (en) | 1997-11-14 | 2001-10-26 | Skyepharma Inc | Emulsification process for preparing multivesicular liposomes |
US6537813B1 (en) * | 1998-02-13 | 2003-03-25 | Selective Genetics, Inc. | Concurrent flow mixing methods and apparatuses for the preparation of gene therapy vectors and compositions prepared thereby |
US6706280B2 (en) * | 1998-08-19 | 2004-03-16 | Bracco Research S.A. | Carboxylated phosphatidic acid esters |
US6855296B1 (en) | 1998-11-13 | 2005-02-15 | Optime Therapeutics, Inc. | Method and apparatus for liposome production |
CA2350430C (en) * | 1998-11-13 | 2008-06-03 | Optime Therapeutics, Inc. | Method and apparatus for liposome production |
FR2803539B1 (fr) * | 2000-01-07 | 2002-07-12 | Separex Sa | Procede de captage et d'encapsulation de fines particules |
EP1334765B1 (en) * | 2000-10-13 | 2010-06-30 | National Institute of Advanced Industrial Science and Technology | Process for producing liposome |
US7048943B2 (en) * | 2001-02-13 | 2006-05-23 | Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem | Carotenoid-loaded liposomes |
WO2002089851A1 (fr) * | 2001-03-06 | 2002-11-14 | Separex (Societe Anonyme) | Procede de fabrication de complexes hote-client |
FR2830760B1 (fr) * | 2001-10-12 | 2004-06-04 | Pf Medicament | Procede de preparation d'un compose d'interaction de substances actives avec un support poreux par fluide supercritique |
FR2854079B1 (fr) * | 2003-04-25 | 2007-11-30 | Pf Medicament | Procede de preparation de complexes moleculaires |
JP4595319B2 (ja) * | 2003-12-03 | 2010-12-08 | コニカミノルタエムジー株式会社 | リポソーム用脂質、リポソームおよびそれらの製造方法 |
ES2410587T3 (es) | 2004-01-22 | 2013-07-02 | University Of Miami | Formulaciones tópicas de coenzima Q10 y métodos de uso |
JP4649841B2 (ja) * | 2004-02-18 | 2011-03-16 | コニカミノルタエムジー株式会社 | リポソーム含有製剤の製造方法、およびリポソーム含有製剤 |
JPWO2006009022A1 (ja) * | 2004-07-21 | 2008-05-01 | コニカミノルタエムジー株式会社 | リポソーム含有x線造影剤およびその製造方法 |
EP1776948B1 (en) | 2004-08-11 | 2015-12-09 | Konica Minolta Medical & Graphic, Inc. | Method of producing liposome-containing preparation |
JP2006056807A (ja) * | 2004-08-18 | 2006-03-02 | Konica Minolta Medical & Graphic Inc | 光線力学療法製剤 |
JP4715133B2 (ja) * | 2004-08-26 | 2011-07-06 | コニカミノルタエムジー株式会社 | 抗腫瘍リポソーム製剤およびその製造方法 |
JP2006069929A (ja) * | 2004-08-31 | 2006-03-16 | Konica Minolta Medical & Graphic Inc | 真菌症治療製剤およびその製造方法 |
WO2006071659A1 (en) * | 2004-12-29 | 2006-07-06 | Trustees Of Boston University | Delivery of h2 antagonists |
TW200726858A (en) * | 2005-04-15 | 2007-07-16 | Advanced Tech Materials | Apparatus and method for supercritical fluid removal or deposition processes |
JP2006298838A (ja) * | 2005-04-21 | 2006-11-02 | Konica Minolta Medical & Graphic Inc | リポソーム含有x線造影剤 |
FR2889665B1 (fr) * | 2005-08-12 | 2007-11-09 | Pic Solution Soc Par Actions S | Procede et installation pour la regulation du taux de modificateur dans une chromatographie ou extraction supercritique avec recyclage |
JP2007217369A (ja) * | 2006-02-17 | 2007-08-30 | Trendy:Kk | 除毛剤、除毛剤の製造方法、および除毛方法 |
EP2136787B1 (en) | 2007-03-22 | 2019-08-21 | Berg LLC | Topical formulations having enhanced bioavailability |
CN103462896A (zh) | 2008-04-11 | 2013-12-25 | 细胞研究有限公司 | 诱导癌细胞凋亡的方法和应用 |
US9445975B2 (en) | 2008-10-03 | 2016-09-20 | Access Business Group International, Llc | Composition and method for preparing stable unilamellar liposomal suspension |
WO2010132479A2 (en) | 2009-05-11 | 2010-11-18 | Cytotech Labs, Llc | Methods for the diagnosis of metabolic disorders using epimetabolic shifters, multidimensional intracellular molecules, or environmental influencers |
SG10202010355PA (en) * | 2010-03-12 | 2020-11-27 | Berg Llc | Intravenous formulations of coenzyme q10 (coq10) and methods of use thereof |
CA2832324C (en) | 2011-04-04 | 2022-03-15 | Berg Llc | Methods of treating central nervous system tumors |
EA201490047A1 (ru) | 2011-06-17 | 2014-08-29 | Берг Ллк | Ингаляционные фармацевтические композиции |
CA2857604A1 (en) | 2011-12-22 | 2013-06-27 | Nuvo Research Gmbh | Liposomal chlorite or chlorate compositions |
KR102279451B1 (ko) | 2013-04-08 | 2021-07-19 | 버그 엘엘씨 | 코엔자임 q10 병용 요법을 이용한 암 치료 |
KR102370843B1 (ko) | 2013-09-04 | 2022-03-04 | 버그 엘엘씨 | 코엔자임 q10의 연속주입에 의한 암치료 방법 |
JP6316182B2 (ja) * | 2014-12-19 | 2018-04-25 | 富士フイルム株式会社 | リポソームの製造方法及びリポソーム製造装置 |
WO2019088193A1 (ja) * | 2017-11-01 | 2019-05-09 | 国立大学法人大阪大学 | 所望の粒径を有する脂質粒子を製造するための方法および装置の開発 |
EP3773505A4 (en) | 2018-03-30 | 2021-12-22 | Insmed Incorporated | PROCESS FOR THE CONTINUOUS MANUFACTURING OF LIPOSOMAL MEDICINAL PRODUCTS |
US11357727B1 (en) | 2021-01-22 | 2022-06-14 | Pacira Pharmaceuticals, Inc. | Manufacturing of bupivacaine multivesicular liposomes |
US11033495B1 (en) | 2021-01-22 | 2021-06-15 | Pacira Pharmaceuticals, Inc. | Manufacturing of bupivacaine multivesicular liposomes |
US11278494B1 (en) | 2021-01-22 | 2022-03-22 | Pacira Pharmaceuticals, Inc. | Manufacturing of bupivacaine multivesicular liposomes |
CN114469733B (zh) * | 2021-10-13 | 2023-06-09 | 成都科建生物医药有限公司 | 一种阿霉素脂质体的制备装置与制备方法 |
CN114469734B (zh) * | 2021-10-13 | 2023-08-04 | 成都科建生物医药有限公司 | 一种蒽环类药物脂质体的制备装置与制备方法 |
Family Cites Families (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB8322178D0 (en) * | 1983-08-17 | 1983-09-21 | Sterwin Ag | Preparing aerosol compositions |
CA1260393A (en) * | 1984-10-16 | 1989-09-26 | Lajos Tarcsay | Liposomes of synthetic lipids |
US4752425A (en) * | 1986-09-18 | 1988-06-21 | Liposome Technology, Inc. | High-encapsulation liposome processing method |
EP0285638A4 (en) * | 1986-09-18 | 1989-06-14 | Liposome Technology Inc | METHOD FOR PRODUCING A HIGH DENSITY LIPOSOME. |
DE3812816A1 (de) * | 1988-04-16 | 1989-11-02 | Lawaczeck Ruediger Dipl Phys P | Verfahren zur solubilisierung von liposomen und/oder biologischer membranen sowie deren verwendung |
US5123414A (en) * | 1989-12-22 | 1992-06-23 | Unger Evan C | Liposomes as contrast agents for ultrasonic imaging and methods for preparing the same |
US5270053A (en) * | 1990-04-03 | 1993-12-14 | Ciba-Geigy Corp. | Parenterally administerable liposome formulation comprising synthetic lipid |
-
1994
- 1994-03-15 AT AT94810161T patent/ATE166573T1/de active
- 1994-03-15 DE DE59406065T patent/DE59406065D1/de not_active Expired - Fee Related
- 1994-03-15 EP EP94810161A patent/EP0616801B1/de not_active Expired - Lifetime
- 1994-03-17 AU AU57888/94A patent/AU676257B2/en not_active Ceased
- 1994-03-21 FI FI941317A patent/FI111687B/fi not_active IP Right Cessation
- 1994-03-22 CA CA002119610A patent/CA2119610C/en not_active Expired - Fee Related
- 1994-03-22 NZ NZ260154A patent/NZ260154A/en unknown
- 1994-03-22 HU HU9400827A patent/HU219352B/hu not_active IP Right Cessation
- 1994-03-22 PH PH47968A patent/PH30470A/en unknown
- 1994-03-22 IL IL109070A patent/IL109070A/en active IP Right Grant
- 1994-03-23 NO NO941054A patent/NO306846B1/no not_active IP Right Cessation
- 1994-03-23 KR KR1019940005835A patent/KR940021050A/ko not_active Application Discontinuation
- 1994-03-23 ZA ZA942037A patent/ZA942037B/xx unknown
- 1994-03-24 JP JP6053376A patent/JPH06315624A/ja active Pending
-
1995
- 1995-06-07 US US08/483,912 patent/US5700482A/en not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH06315624A (ja) | 1994-11-15 |
EP0616801B1 (de) | 1998-05-27 |
DE59406065D1 (de) | 1998-07-02 |
US5700482A (en) | 1997-12-23 |
HU9400827D0 (en) | 1994-06-28 |
IL109070A0 (en) | 1994-06-24 |
NZ260154A (en) | 1995-08-28 |
FI941317A0 (fi) | 1994-03-21 |
ZA942037B (en) | 1994-09-26 |
AU676257B2 (en) | 1997-03-06 |
NO306846B1 (no) | 2000-01-03 |
NO941054L (no) | 1994-09-26 |
NO941054D0 (no) | 1994-03-23 |
CA2119610A1 (en) | 1994-09-25 |
PH30470A (en) | 1997-05-28 |
AU5788894A (en) | 1994-09-29 |
ATE166573T1 (de) | 1998-06-15 |
HUT67384A (en) | 1995-04-28 |
FI941317A (fi) | 1994-09-25 |
IL109070A (en) | 1998-04-05 |
FI111687B (fi) | 2003-09-15 |
EP0616801A1 (de) | 1994-09-28 |
CA2119610C (en) | 2003-07-08 |
KR940021050A (ko) | 1994-10-17 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
HU219352B (en) | High pressure process for producing liposome-dispersion | |
EP0260811B1 (en) | Phospholipid particles encapsulating polyene antibiotics for the treatment of systemic fungal infections | |
US5077057A (en) | Preparation of liposome and lipid complex compositions | |
FI86142B (fi) | Foerfarande foer framstaellning av en homogeniserad farmaceutisk emulsion. | |
AU2002312777B2 (en) | Method and composition for solubilising a biologically active compound with low water solubility | |
HUE027467T2 (hu) | Az irinotekán liposzómái vagy hidrokloridjai és elõkészítési módszerük | |
NZ286206A (en) | Intravenous dispersion of staurosporin with a polyoxyethylene/polyoxypropylene block copolymer | |
CA2162342A1 (en) | Intravenous solutions for a derivative of staurosporine | |
EA014752B1 (ru) | Способ и композиция для лечения ринита | |
JP2798302B2 (ja) | リポソームおよび脂質複合体組成物の調製 | |
US6623753B1 (en) | Allylamine-containing liposomes | |
CA2495913A1 (en) | Non-vesicular cationic lipid formulations | |
El-Sayed et al. | Solubilization and stabilization of an investigational antineoplastic drug (NSC no. 278214) in an intravenous formulation using an emulsion vehicle | |
EP0598116B1 (en) | Fat emulsion | |
CN115429756B (zh) | 一种阿苯达唑脂质复合物及其制备方法和应用 | |
EP0558750A1 (en) | Dispersion preparation | |
MX2012012855A (es) | Emulsion inyectable de un agente hipnotico sedante. | |
RU2275899C2 (ru) | Структурированная эмульсия амфотерицина b с низкой токсичностью для парентерального введения и способ ее получения | |
AU639812B2 (en) | Process for the production of an injectable liposome dispersion | |
US20040029934A1 (en) | Pharmaceutical emulsion preparation | |
CA2066698A1 (en) | Liposomal compositions | |
CN116098869A (zh) | 一种脑靶向淫羊藿次苷ⅱ长循环脂质体及其制备方法和应用 | |
KR930000044B1 (ko) | 의약유제 | |
KR101198201B1 (ko) | 비염 치료를 위한 방법 및 조성물 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
DGB9 | Succession in title of applicant |
Owner name: NOVARTIS AG., CH |
|
HMM4 | Cancellation of final prot. due to non-payment of fee |