HU210851B - Method for the preparation of vaccine against haemophilus paragallinarum - Google Patents

Method for the preparation of vaccine against haemophilus paragallinarum Download PDF

Info

Publication number
HU210851B
HU210851B HU912864A HU286491A HU210851B HU 210851 B HU210851 B HU 210851B HU 912864 A HU912864 A HU 912864A HU 286491 A HU286491 A HU 286491A HU 210851 B HU210851 B HU 210851B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
vaccine
paragallinarum
cells
membrane
haemophilus paragallinarum
Prior art date
Application number
HU912864A
Other languages
English (en)
Other versions
HUT61488A (en
HU912864D0 (en
Inventor
Antonius Arnoldus Chris Jacobs
Original Assignee
Akzo Nv
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Akzo Nv filed Critical Akzo Nv
Publication of HU912864D0 publication Critical patent/HU912864D0/hu
Publication of HUT61488A publication Critical patent/HUT61488A/hu
Publication of HU210851B publication Critical patent/HU210851B/hu

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/285Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Pasteurellaceae (F), e.g. Haemophilus influenza
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/12Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria
    • C07K16/1203Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria
    • C07K16/1242Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria from Pasteurellaceae (F), e.g. Haemophilus influenza
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S424/00Drug, bio-affecting and body treating compositions
    • Y10S424/826Bacterial vaccine for avian species, e.g. poultry or other birds

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Pulmonology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

A találmány tárgya eljárás baromfiak Haemophilus paragallinarum fertőzése elleni védelmére szolgáló vakcina, Haemophilus paragallinarum antigén anyag, ez elleni antitest és antiszérum előállítására.
A Haemophilus paragallinarum (H. paragallinarum) a felső légúti traktus fertőzését okozza csirkéknél, a betegséget fertőző roncsoló orrhurutnak is nevezik (IC). A betegség legjellemzőbb tünetei az onjáratok és melléküregek savós-nyálkás orrváladékkal való borítottsága, arcödéma és kötőhártyagyulladás. Az alsó légúti traktus, például a légzsákok és a tüdők fertőzése szintén bekövetkezhet. Bár a morbiditás nagy, a természetes mortalitás viszonylag alacsony. Az IC gyakran okozza a selejtszám emelkedését, satnya növekedést és a tojáshozam csökkenését, mindezek jelentős gazdasági veszteséget eredményeznek. Ezenfelül ha az IC más kórokozókkal, pl. madárhimlővel, Mycoplasma gallisepticummal, fertőző bronchitisszel, Pasteurellával vagy fertőző légcsőhuruttal társul, súlyosabb és elhúzódóbb betegséget okoz, ami általában magasabb mortalitást is eredményez. Az IC-ből kigyógyult madarak gyakran a fertőzés hordozói maradnak, és hozzájárulnak ahhoz, hogy a fertőzés fennmaradjon az állományban.
Jelenleg az IC elleni vakcinálást teljes baktériumból készült vakcinákkal végzik. Ezek a vakcinák élő, előnyösen legyengített törzsekből vagy inaktivált virulens törzsekből készülnek. A legyengített élő vakcinák használatakor azonban mindig fennáll annak a veszélye, hogy az állatokat nem kellő mértékben legyengített patogén baktériumokkal oltjuk be, ami azután az oltott állatok megbetegedését és a betegség esetleges elterjedését okozza az állományban. Ezenkívül a legyengített baktériumok visszaalakulhatnak virulens állapotba.
Az inaktivált vakcináknak is van egy sor hátránya, pl. olyan mellékhatások megjelenése, amelyek a teljes baktériumok beadása után fordulhatnak elő annak következtében, hogy a sejtfal anyagai, pl. lipopoliszacharidok (LPS) jelen vannak.
A H. paragallinarumnak három jól elkülönült szerotípusát lehet megkülönböztetni, azaz az A, B és C szerotípust. A különböző H. paragallinarum törzsek között az egyes szerotípusokon belül rokonságon alapuló kereszt-védelem létezik. Ha azonban egy madarat egy adott szerotípushoz tartozó H. paragallinarum törzzsel vakcináinak, nem lesz védve olyan H. paragallinarum törzsek fertőzése ellen, amelyek más szerotípusokhoz tartoznak, vagyis az immunitás típus-fajlagos. Ezért az IC elleni megfelelő védelem érdekében a madarakat olyan vakcinával kell immunizálni, amely többféle H. paragallinarium szerotípusból származó immunogén anyagot tartalmaz.
A teljes baktériumon alapuló H. paragallinarum vakcinák említett hátrányai mellett az ilyen vakcináknak további hátránya az, hogy a B vagy C szerotípusú teljes baktériumokat tartalmazó vakcina csak részben védi a vakcináit madarakat a B vagy C szerotípusú virulens törzsekkel való későbbi fertőzés ellen.
Az A szerotípusú H. paragallinarum egyik rostos hemagglutininjét Iritani és munkatársai izolálták és jellemezték [Am. J, Vet. Rés. 47,2114 (1980) és DE-OS2906996]. Ennek a rostos hemagglutininnek védőhatása van az A szerotípusú H. paragallinarum fertőzés ellen.
Iritani eljárása azonban az A szerotípusú H. paragallinarum védő komponensének izolálására, amelynek során a védő aktivitást a sejtből tripszin alkalmazásával, majd a védő aktivitás hordozójának izolálásával juttatják ki, nem alkalmazható a C szerotípus esetén, mivel az ilyen szerotípusú H. paragallinarum törzsekből ezzel az izolálási munkamenettel védő hatású komponens nem lenne izolálható.
Kísérleteink során egy új eljárást dolgoztunk ki a H. paragallinarum védő frakciójának az izolálására, ami a H. paragallinarium összes szerotípusa, azaz A, R és C szerotípus esetén alkalmazható.
Ezzel az új eljárással a H. paragallinarum sejtekből egy új, tisztított membrán-frakciót kapunk, amely egy 38+3 kD-s fehérjét tartalmaz (SDS-PAGE-val, vagyis nátrium-dodecil-szulfát-poliakrilamid gélelektroforézissel mérve), és amely nagy mértékben védő hatású a H. paragallinarum fertőzés ellen a baromfiakra nézve, és amely lényegében véve sejtektől és rostos anyagoktól mentes.
A találmány értelmében egy alegység vakcinát állítunk elő, vagyis olyan vakcinát, amely csak a védelem szempontjából szükséges és fontos komponenseket tartalmazza, amelyek a H. paragallinarum sejtek membrán frakciójából származnak, amely a mintegy 38 kD-s fehérjét tartalmazza (38 kD-s fehérjében dúsított membrán-frakció, lásd az 1. példát). Az ilyen vakcinával immunizált csirkék a virulens H. paragallinarum törzsekkel való homológ fertőzés ellen jól védettek.
Még teljesebb védelem érhető el, ha a csirkéknek olyan vakcinát adagolunk, amely a 38 kD-s külső membrán proteinben (OMP) dúsított, H. paragallinarum sejtek külső membrán frakciójából áll (38 kD-s OMP készítmény, lásd az 1. példát).
Ez a tisztított 38 kD-os OMP készítmény lényegében véve sejtektől és rostos anyagoktól mentes.
A találmány szerinti vakcinára jellemző továbbá, hogy a védő aktivitás
- hőre érzékeny,
- tripszines kezelésre érzékeny és
- K-proteináz kezelésre érzékeny.
A találmány szerinti vakcina tartalmazhatja az említett 38 kD-s OMP olyan fragmentumát is, amelynek még vannak immunizáló tulajdonságai, vagyis immunológiai ekvivalens.
A 38 kD-s fehérjében dúsított membrán frakciót úgy állítjuk elő, hogy H. paragallinarum baktériumokat alkalmas tápközegben olyan körülmények között tenyésztünk, amelyek elősegítik a 38 kD-s OMP kifejeződését, majd a H. paragallinarum sejteket feltárjuk, pl. enzimes vagy mechanikus feltárással (például ultrahangos kezeléssel, őrléssel vagy francia prés segítségével), a sejtmembrán frakciót ülepítjük, és ezután a 38 kD-s fehérjében dúsított membrán frakciót elválasztjuk, pl. centrifugálással.
A 38 kD-s OMP készítményt úgy izolálhatjuk, hogy
HU 210 851 Β a fentebb említett membrán frakciót további, belső és külső membrán frakcióra választjuk szét, pl. sűrűség gradiens ülepítéssel, vagy a belső membrán detergenssel, pl. Triton Χ-100-zal vagy szarkozinnal történő eltérő szolubilizálódása alapján, amit centrifugálás követ.
Az említett frakció vagy preparátum izolálására eljárhatunk úgy is, hogy a 38 kD-s OMP-re fajlagos antiszérumot (pl. monoklonális antitestet) használunk. A H. paragallinarum membrán-extraktumát egy olyan oszlop-töltetre vihetjük fel, amely az említett 38 kD-s OMP-re fajlagos antiszérumot tartalmazza, az extraktum adszorbeálódott frakcióját elválasztjuk a nem adszorbeálódott anyagtól, majd az adszorbeált frakciót az oszlop-töltetről leoldjuk.
Kívánt esetben a 38 k D-os OMP-t homogenitásig tisztíthatjuk a szakterületen ismert eljárásokkal, így pl. a 38 kD-s OMP-t szolubilizáljuk az említett 38 kD-s OMP készítményből egy vagy több detergenssel végzett extrahálással, majd tovább tisztítjuk pl. ioncserélővagy molekulaszűró-kromatográfiával olyan körülmények között, amelyek nincsenek káros hatással a 38 kD-s OMP védő tulajdonságaira.
A tisztított, 38 kD-s fehérjében dúsított frakciókat a H. paragallinarum ismert szerotípusaitól, például az A, B, C és a megfelelő, a technika állása szerint ismert szerotípusoktól megfelelően elválaszthatjuk.
A találmány szerinti vakcinában alkalmazandó 38 kD-s OMP-t H. paragallinarum sejtekből végzett tisztítással vagy rekombináns technikákkal állíthatjuk elő.
Az utóbbi esetben a fehérjét vagy fragmentumait kódoló nukleinsav-szekvenciákat pl. olyan módon azonosíthatjuk, hogy egy genomiális H. paragallinarum DNS bankot olyan egyedi kiónokra nézve vizsgálunk át, amelyek az említett szekvenciákat tartalmazzák, ehhez pl. a 38 k D-s OMP ellen képződött poliklonális vagy monoklonális antitestekkel való fajlagos reakciót használjuk ki. A nukleinsav-szekvenciákat különböző, kifejezésre ható DNS szekvenciákkal ligálhatjuk, így úgynevezett rekombináns nukleinsav molekulát kapunk, amellyel megfelelő gazdaszervezetet transzformálhatunk. Byen hibrid DNS molekulák pl. vírusokban jelen levő nukleinsavakból vagy plazmidokból származhatnak. Gazdasejtként prokarióta eredetű, pl. baktérium vagy eukarióta eredetű, pl. emlős sejteket alkalmazhatunk. A transzformált gazdasejteket felhasználhatjuk a 38 kD-s OMP termelésére, ezután pedig az említett fehérjét vagy a 38 kD-s OMP-t tartalmazó anyagot izolálhatjuk, majd a találmány értelmében vakcina előállítására alkalmazhatjuk.
Egy másik kiviteli mód szerint élő vektor vakcinát készíthetünk, amely valamely nem-patogén mikroorganizmust, pl. vírust vagy baktériumot tartalmaz, ahol a mikroorganizmusba klónozva megtalálható a 38 kD-s OMP-t vagy fragmentumát kódoló nukleinsav-szekvencia.
A találmány szerinti vakcinák legalább egy szerotípusú H. paragallinarum 38 kD-s fehérjében dúsított membrán-frakcióját vagy 38 kD-s OMP készítményét tartalmazzák, azaz az olyan vakcinák, amelyek ilyen frakciót vagy OMP készítményt tartalmaznak, vagy ezek immunológiai ekvivalensét tartalmazzák, a találmány oltalmi körébe tartoznak.
A találmány szerinti vakcina ezenkívül rekombináns DNS vakcina formájában is lehet, amint ezt fentebb körvonalaztuk. A találmány szerinti vakcina előnyösen egynél több, különböző szerotípusú H. paragallinarum törzsből származó, 38 kD-s fehérjében dúsított membrán-frakciót vagy 38 kD-s OMP készítményt tartalmaz. A H. paragallinarum ellen a legteljesebb védelmet úgy érhetjük el, ha olyan vakcinát adunk a madaraknak, amely tartalmaz mind A, mind B, mind C szerotípusú H. paragallinarum törzsből származó membrán-frakciót vagy készítményt. Az ilyen háromértékű (trivalens) vakcina a találmány szerinti megoldás egy előnyös megvalósítási módja. A találmány szerinti háromértékű vakcinával végzett vakcinálás teljes mértékben megóvja a madarakat a H. paragallinarum fertőzésekkel szemben, ellentétben az eddig alkalmazott, teljes baktériumokon alapuló vakcinákkal.
A védő aktivitást hordozó H. paragallinarum anyagon kívül a találmány szerinti vakcina tartalmazhat valamely vizes közeget vagy vizet tartalmazó szuszpenziós közeget, gyakran más alkotórészekkel keverve, például abból a célból, hogy megnöveljük az aktivitást és/vagy az eltarthatóságot. Ezek az alkotórészek lehetnek sók, pH pufferek, stabilizálószerek (pl. sovány tej vagy kazein hidrolizátum), emulgeálószerek, adjuvánsok az immunválasz fokozására (pl. ásványolajok, muramil-dipeptid, alumínium-hidroxid, szaponin, polianionok és amfipatikus vegyületek) és tartósítószerek, pl. timerozál.
A találmány szerinti vakcina tartalmazhat továbbá más baromfiakra nézve fertőző baktériumokból vagy vírusokból származó immunogén anyagot is, pl. Mycoplasma, Newcastle-betegség vírus vagy fertőző bronchitis vírus anyagot. A vakcinát előnyösen parenterálisan, pl. szubkután vagy intramuszkulárisan adagoljuk. A vakcinát ilyen módon mind a vakcináit madarak aktív immunizálása céljából, mind a tojó madarak utódainak passzív immunizálása céljából adagolhatjuk. Az immunizált tojó madarakban a bennük kialakult antitestek természetesen bejutnak tojásaik sárgájába, és így a kikelt csirkékbe is.
Mind a vakcina összetétele, mind a vakcinálási rendszer változtatható a védendő állat típusától, az állat korától és testtömegétől, a védelem kívánt időtartamától és az adagolás módjától függően, valamint attól függően, hogy aktív immunizálást vagy az anyai antitestek révén passzív immunizálást kívánunk-e elérni. Az aktív komponens optimálisan hatékony mennyisége a vakcinában baromfiak parenterális, például intramuszkuláris vagy szubkután vakcinálásához dózisonként mintegy 0,1-100 pg.
H. paragallinarum ellen az említett aktív immunizálást elsősorban védő kezelésként alkalmazzuk egészséges madarak esetén. Nyilvánvaló, hogy a H. paragallinarummal már fertőződött madarakat a találmány szerinti membrán-frakció vagy készítmény elleni antitestekkel kezelhetjük.
HU 210 851 Β
A találmány szerinti membrán-frakció elleni antiszérumot úgy állítjuk elő, hogy madarakat immunizálunk az említett frakció hatásos mennyiségével, előnyösen valamely adjuváns jelenlétében. Kívánt esetben az állatoknak egy második vakcinálással emlékeztető oltást adunk a megfelelő immunválasz kialakítása céljából. Ezután az állatokat elvéreztetjük és a vérből antiszérumot állítunk elő.
Az antiszérumot vagy antitesteket gyógyászatilag elfogadható hordozókkal keverhetjük.
Egy adott szerotípusú H. paragallinarum törzsből származó membrán-frakcióra fajlagos poliklonális antiszérumot úgy állíthatunk elő, hogy az említett membrán-frakció elleni antiszérumot más szerotípusú H. paragallinarum törzsek membrán-frakcióinak keverékével együtt inkubáljuk. Azok az antitestek, amelyek nem fajlagosak az említett H. paragallinarum membránfrakcióra, adszorbeálódnak a hozzáadott H. paragallinarum frakcióban, és így elkülöníthető az inkubálási keverékből, így olyan antiszérum készítményt kapunk, amely egy bizonyos szerotípusú H. paragallinarum membrán-frakcióra fajlagos.
A találmány szerinti membrán-frakció vagy készítmény elleni monoklonális antitesteket alkalmazhatjuk H. paragallinarummal fertőzött madarak passzív immunizálására is. Az említett monoklonális antitesteket ismert módon állíthatjuk elő, például úgy, hogy egereket immunizálunk a találmány szerinti membrán-frakcióval, az egér lépsejteket immortalizáljuk, és az alkalmas antitesteket termelő hibridómákat kiválasztjuk.
Az antiszérumok és monoklonális antitestek alkalmazhatók a H. paragallinarum baktériumokkal fertőzött madarak immunológiai diagnosztizálásához is.
A találmány szerinti megoldást a következő példákkal szemléltetjük, a korlátozás szándéka nélkül.
7. példa
H. paragallinarum membrán-frakciók tisztítása és csirkék immunizálása
Baktérium törzseket szélesztünk csokoládé-agaron, és 24 órán át 37 ’C hőmérsékleten olyan atmoszférában inkubáljuk, amelyben egy gyertyát hagytunk kiégni, majd 0,01% NADH-val kiegészített TPB-ben tenyésztjük.
230 ml koncentrált H-18 (C szerotípusú) sejtszuszpenziót (amely 4 · 10 sejtet tartalmaz ml-enként 40 mmól/l-es, 0,01% timerozált tartalmazó PBS-ben (foszfáttal pufferolt fiziológiás konyhasóoldat)] ultrahanggal kezelünk 6 percen át 4 °C hőmérsékleten 100 wattal, Branson B12 Sonifier készülék segítségével (váltakozva 30 másodperces ultrahangos kezelés és 30 másodperces hűtés). Ezt követően az össze nem zúzott sejteket centrifugálással eltávolítjuk (10 perc, 5000 g), és 20 ml felülúszót ásványolaj víz-az-olajban (W/0) adjuvánssal emulgeálunk. Ezt a vakcinát SUP-USO (C)-nek nevezzük, A további 210 ml felülúszót 1 órán át ultracentrifugában 167 000 g-vel centrifugáljuk, így a teljes membrán-frakciót megtisztítjuk az oldható frakciótól.
A membrán-üledéket (barnás színű) újra szuszpendáljuk 60 ml 50 mmól/literes trisz.HCl pufferben (pH = 8,0). Ebből a szuszpenzióból 10 ml-t ugyanazzal a pufferrel háromszorosára hígítunk, és W/0 adjuvánssal emulgeáljuk. Ezt a vakcinát 38 kD-s fehérjében dús (C) membrán-frakciónak nevezzük. A megmaradt 50 ml szuszpenziót 1:1 arányban összekeverjük 50 mmól/1 trisz.H Cl-t (pH = 8,0) és 2 % nátrium-N-lauroil-szarkozint tartalmazó pufferral, és 2 órán át szobahőmérsékleten inkubáljuk, igy a belső membránokat szolubilizáljuk. Ezt követően a keveréket 1 órán át 167 000 g-vel ismét centrifugáljuk, így a szolubilizált belső membránokat elválasztjuk a külső membránoktól.
Az üledéket újra szuszpendáljuk 50 ml 50 mmól/literes trisz.HCl-ben (pH = 8,0). Ennek a szuszpenziónak egy részét azután ugyanolyan pufferrel háromszorosára hígítjuk, és W/0 adjuvánssal emulgeáljuk. Ezt a vakcinát (C) 38 kD-s OMP készítménynek nevezzük.
A különböző tisztított, W/0 adjuvánssal emulgeált frakciók védelmi képességét az 1. táblázatban mutatjuk be.
Kereskedelmi forgalomban kapható Isabrown csirkéket 10 hetes korukban egyszer vakcinálunk különböző vakcinák 0,5 ml-ével, és egyforma fertőzésnek vetjük alá négy héttel később H-18 (C szerotípusú) H. paragallinarum törzzsel. Az egyes vakcinákhoz 6 csirkét alkalmazunk.
7. TÁBLÁZAT
Csirkék védelme H. paragallinarum fertőzés ellen tisztított frakciókkal végzett immunizálással
vakcina klinikai jelzések újra izolálás
pontszám3 % védelem a pozitív csirkék számab % védelem
Kontroll 17 0 6 0
SUP-USO (C) 12 29 4 33
38 kD-s fehérjében dús membránfrakció (C) 1 94 1 83
38 kD-s OMP készítmény (C) 0 100 0 100
3 A pontszám az orrváladékkal bíró csirkék teljes számát képviseli 3 megfigyelésből: 24 órával, 48 órával és 5 nappal a fertőzés után bÚjra izolálás az infraorbitális üregből 5 nappal a fertőzés után (szatellit növekedés)
Amint az 1. táblázatból látható, a H. paragallinarium tisztított membrán-frakciója, és különösen a tisztított 38 kD-s OMP (C) készítmény nagy mértékben védő hatásúnak tűnik, valószínűleg az említett frakció által kiváltott optimális immunválasz következtében.
Monovalens 38 kD-s OMP (A) készítmény előállítása érdekében 083 (A) törzset szélesztünk csokoládé4
HU 210 851 Β agaron, és 24 órán át inkubáljuk 37 °C hőmérsékleten olyan atmoszférában, amelyben egy gyertyát hagytunk kiégni, majd 0,01 % NADH-val kiegészített TPB-ben tenyésztjük. 37 °C hőmérsékleten 24 órán át végzett inkubálás után a sejteket centrifugáljuk, és a tisztított 38 kD-s külső membrán fehérje (A) készítményt ugyanúgy izoláljuk, ahogyan a 38 kD-s OMP (C) készítménynél leírtuk.
Az izolált OMP (A)-t W/0 adjuvánssal emulgeáljuk, így olyan vakcinákat kapunk, amelyek 10 pg/0,5 ml, illetve 1 pg/0,5 ml hatóanyagot tartalmaznak. Ezen vakcinák vizsgálatához kereskedelmi forgalomban kapható 10 hetes Isabrown csirkéket intramuszkulárisan (mellbe) vakcinálunk egyszeri 0,5 ml-es dózissal. A vakcinálás napján és 4 héttel a vakcinálás után vérmintákat veszünk, és a szérumokat ismert módszerekkel, antitestek alapján hemagglutináció gátlására (Hl) (amely antitestek a védelem jelzői) megvizsgáljuk.
2. TÁBLÁZAT
Hl-A antitest-titerek csirkékben 38 kD-s OMP(A) készítménnyel végzett vakcinálás után
Vakcina dózis HI-A titer3
10 Pg 7 5 S 7 10
Ipg 5 5 8 7 8
kontroll 0 0 0 0 0
02lóg titer, 4 héttel a vakcinálás után mérve, csoportonként 5 csirkével
Az eredményekből (2. táblázat) arra a következtetésre juthatunk, hogy a 10 pg illetve 1 pg dózissal vakcináit csirkék 100%-a védelemben részesült (HI-A>2°).
Monovalens 38 kD-s OMP(B) készítményt állítunk elő pontosan ugyanúgy, ahogyan fentebb leírtuk, azzal a különbséggel hogy Spross(B) törzset tenyésztünk és használunk fel kiindulási anyagként a 38 kD-s OMP készítmény izolálásához.
2. példa
Trivalens vakcinával immunizált csirkék védelme
Ebben a kísérletben trivalens alegység-vakcinát (W/0 adjuvánsban) készítünk, és megvizsgáljuk a védelmet az A, B vagy C szerotípusú törzsekkel végzett fertőzés ellen.
Ezenkívül megvizsgálunk egy monovalens H-l8 (C) vakcinát is 083 (A) törzzsel és Spross (B) törzzsel végzett heterológ fertőzés ellen. A 083 (A) törzs, Spross (B) törzs és a H-l 8 (C) törzs 38 kD-s OMP készítményeit, amelyeket a trivalens alegység vakcina készítéséhez alkalmazunk, ugyanúgy tisztítjuk, ahogyan az 1. példában leírtuk. A trivalens vakcina az egyes fehérjékből 100 pg-ot tartalmaz 0,5 ml-es dózisonként. A monovalens H-l8 (C) vakcina azonos a 38 kD-s OMP készítmény vakcinával, amelyet az 1. példában alkalmaztunk.
Kereskedelmi forgalomban kapható 10 hetes Isabrown csirkéket vakcinálunk egy alkalommal 0,5 ml vakcinával, és 4 héttel később fertőzzük őket. Az egyes fertőzési csoportokhoz 7-7 csirkét alkalmazunk.
3. TÁBLÁZAT
Trivalens alegység vakcina és egy monovalens (C típusú) alegység vakcina védő hatása
fertőző törzs (szerotí- pus)c vakcina klinikai jelzések újra izolálás
pontszá- ma % védelem a pozitív csirkék száma*’ % védelem
083 (A) Kontroll 18 0 7 0
083 (A) trivalens 0 100 0 100
1645 (A) Kontroll 18 0 7 0
1645 (A) trivalens 0 100 0 100
Spross (B) Kontroll 19 0 7 0
Spross (B) trivalens 0 100 0 100
H-l 8(C) Kontroll 20 0 7 0
H-l 8(0 trivalens 0 100 1 86
Modesto (O Kontroll 20 0 7 0
Modesto (O trivalens 21 100 1 86
083 (A) monova- lens 21 0 7 0
Spross (B) monova- lens 19 0 7 0
a A pontszám az orrváladékkal bíró csirkék teljes számát képviseli 3 megfigyelésből: 24 órával, 48 órával és 5 nappal a fertőzés után b Újra izolálás az infraorbitális üregből 5 nappal a fertőzés után (szatellit növekedés) c Az említett fertőző törzsek ismertetése a következő helyeken található
083: Page, L.A.; Am. J. Vet. Rés. 85-94 (1962)
1645 : Hinz, K. H.; Avian Pathol. 4,213-226 (1975) Spross: Rimler és munkatársai; Am. J. Vet. Rés. 38,
1587-1589 (1977) H18: Kume és munkatársai; Jap. J. Vet. Sci. 40, 65-73 (1978)
Modesto: Rimler, R. B.; Ge. Microbiol. 92,405-409 (1976)
Rimler és munkatársai; Am. J. Vet. Rés. 38,15871589(1977)
A 3. táblázatból kitűnik, hogy a monovalens H-l 8 (C) vakcinával végzett vakcinálás után csak homológ védelem indukálódik. A trivalens vakcina teljes mértékben véd az összes vizsgált törzzsel végzett fertőzés ellen.
3. példa
A 38 kD-sfehétjében dús membrán-frakciók jellemzése
A 38 kD-s fehérjében dús membrán-frakciók és az A, B és C szerotípusú H. paragallinarum törzsekből (083 törzs, Spross törzs, illetve H-l8 törzs) származó
HU 210 851 B kD-s OMP készítmények tisztítását az 1. példa szerinti módon végezzük.
A tisztított készítményeket SDS-PAGE-val futtatjuk Laemmli eljárása szerint [Natúré 227, 680-685 (1970)].
A tisztított készítmények SDS-PAGE vizsgálata CBB festéssel együtt az OMP készítményekben domináns fehérjeként egy mintegy 38 kD-s csíkot mutat ki (1. ábra). Az 1. ábra a különböző készítmények, vagyis a 083 (A) törzsből (A-B vonalak), Spross (B) törzsből (D-E vonalak) és a H-18(C) törzsből (G-H vonalak) származó SUP-USO, illetve 38 kD-s OMP készítmények SDS-gélelektroforézis profiljait mutatja. A C, F és I vonalakban az alábbi molekulatömeg markerek találhatók:
Citokróm C, ló-eredetű 12,3 kD
Mioglobin, ló-eredetű 17,2 kD
Szénsav-anhidráz, szarvasmarha-eredetű 30,0 kD
Ovalbumin, tyúktojásból 43,0 kD
Albumin, szarvasmarha szérumból 66,3 kD
Ovotranszferrin, tyúktojásból 78,0 kD
A 38 kD-s OMP készítmények védő aktivitásának további jellemzőinek a meghatározásához a készítményeket az 1. példa szerinti módon 083 (A), Spross (B) és H-18 (C) törzsekből tisztítjuk, és hőkezelésnek, valamint enzimes emésztésnek (tripszinnel és K-proteinázzal) vetjük alá.
A tripszin a fehérjéket a pozitívan töltött aminosavmaradékaik (vagyis lizin, arginin) után hasítja. A K-pro5 teináz erős enzim, és a legtöbb fehérjét kis peptidekké hasítja. A 100 °C-ig végzett hőkezelés az aminosavláncot épen hagyja, de a legtöbb fehérje harmadlagos és negyedleges szerkezetét (a legtöbbször irreverzíbilisen) elroncsolja. Az enzimes emésztéshez 2 mg fehérjét inkubá10 lünk 200 g enzimmel 1 ml 40 mmól/l-es PBS-ben 1,5 órán át 37 °C hőmérsékleten. A kontroll készítményeket ugyanilyen módon kezeljük, azzal a különbséggel, hogy az enzimet elhagyjuk. Hővel denaturált fehérjék előállítására 2 mg fehérjét melegítünk 1 ml 40 mmól/l-es PBS15 ben 100 °C hőmérsékleten 10 percen át.
Vakcina kompozíciókat állítunk elő, amelyben 0/W emulzióban 50 pg fehérje található 0,5 ml-es dózisban, és ezt vizsgáljuk homológ fertőzés ellen. Kereskedelmi forgalomban kapható 10 hetes Isabrown csirkéket vak20 cinálunk egy alkalommal, és 4 héttel később fertőzzük őket. Az egyes fertőzési csoportokban 6-6 csirkét alkalmazunk (4. táblázat).
A kísérletekből arra a következtetésre juthatunk, hogy a védő aktivitás érzékeny a h- és enzimes keze25 lésre, mivel az ilyen kezelések a védő kapacitás erős csökkenését eredményezik mindhárom szerotípusnál.
4. táblázat
Az enzimes- és hókezelés hatása a 38 kD-s OMP készítmények védő hatására
Vakcina A típusú fertőzés B típusú fertőzés C típusú fertőzés
klinikai jelzések3 újra izolálásb klinikai jelzések3 újra izolálásb klinikai jelzések3 újra izolálásb
OMP- kezelés pont- szám % védelem pozitív csirkék száma % védelem pont- szám % védelem pozitív csirkék száma % védelem pont- szám % védelem pozitív csirkék száma % védelem
Kontroll 18 0 6 0 17 0 6 0 18 0 6 0
1,5 h 37 °C 0 100 0 100 9 47 4 33 0 100 0 100
1,5 h 37 °C tripszin 15 17 6 0 12 29 5 17 12 33 5 17
1,5 h 37 °C KProteináz 17 6 6 0 16 6 6 0 9 50 3 50
10 perc 100 °C 10 44 5 17 17 0 6 0 17 6 6 0
3 A pontszám az orrváladékkal bíró csirkék teljes számát képviseli 3 megfigyelésből: 24 órával, 48 órával és 5 nappal a fertőzés után b Újra izolálás az infraorbitális üregből 5 nappal a fertőzés után (szatellit növekedés)

Claims (9)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Eljárás baromfiak Haemophilus paragallinarum fertőzés elleni védelmére szolgáló vakcina előállítására, azzal jellemezve, hogy a Haemophilus paragallinarum baktériumokat alkalmas tápközegen tenyésztünk, majd a sejtek membránfrakcióját, amely egy mintegy 38 kD molekulatömegű fehérjét vagy annak immunológiai ekvivalensét tartalmazza továbbá sejtektől és rostos anyagtól mentes, alkalmas farmakológiailag elfogadható hordozóanyaggal keverve vakcinává alakítjuk.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy membránfrakcióként külső membrán készítményt
    60 alkalmazunk, amely fő fehérjekomponensként a 38 kD
    HU 210 851 Β molekulatömegű fehérjét vagy annak immunológiai ekvivalensét tartalmazza.
  3. 3. Az. 1. vagy 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a membránfrakciót legalább két különböző szerotípusú Haemophilus paragallinarum sejtekből állítjuk elő.
  4. 4. A 3. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a membránfrakciót A, B és C szerotípusú Haemophilus paragallinarum sejtekből állítjuk elő.
  5. 5. Az 1-4. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a vakcinához legalább egy további, baromfiakra nézve fertőző mikroorganizmust vagy annak immunológiai anyagát is hozzákeverjük.
  6. 6. Az 1-5. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve hogy a vakcinához adjuvánst is keverünk.
  7. 7. Eljárás Haemophilus paragallinarum antigén anyag előállítására azzal jellemezve, hogy Haemophilus paragallinarum baktériumokat alkalmas tápközegen tenyésztünk, és azok sejtektől és rostos anyagoktól mentes membránanyagát, amely egy38 kD molekulatömegű fehérjét mintegy tartalmaz, vagy annak immunológiai ekvivalensét a sejtek enzimatikus ultrahangos vagy francia préssel végzett kezelésével vagy zúzásával, majd centrifugálással kinyerjük.
  8. 8. A 7. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a membránanyagból további tisztítással egy külső membrán készítményt állítunk elő, amely fő fehérjekomponensként a 38 kD molekulatömegű fehérjét vagy annak immunológiai ekvivalensét tartalmazza.
  9. 9. Eljárás Haemophilus paragallinarum membránfrakciója elleni antitestek vagy antiszérum előállítására, azzal jellemezve, hogy egy alkalmas állatnak valamely a 7. vagy 8. igénypont szerinti antigén anyag hatékony mennyiségét adagoljuk, majd az állatból antitesteket vagy antiszérumot választunk el.
HU912864A 1990-09-05 1991-09-04 Method for the preparation of vaccine against haemophilus paragallinarum HU210851B (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP90202358 1990-09-05

Publications (3)

Publication Number Publication Date
HU912864D0 HU912864D0 (en) 1992-01-28
HUT61488A HUT61488A (en) 1993-01-28
HU210851B true HU210851B (en) 1995-08-28

Family

ID=8205111

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU912864A HU210851B (en) 1990-09-05 1991-09-04 Method for the preparation of vaccine against haemophilus paragallinarum
HU95P/P00562P HU211829A9 (en) 1990-09-05 1995-06-29 Haemophilus paragallinarum vaccine

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU95P/P00562P HU211829A9 (en) 1990-09-05 1995-06-29 Haemophilus paragallinarum vaccine

Country Status (13)

Country Link
US (1) US5240705A (hu)
EP (1) EP0475478B1 (hu)
JP (1) JPH0592929A (hu)
KR (1) KR920006004A (hu)
CN (1) CN1059471A (hu)
AU (1) AU640516B2 (hu)
CA (1) CA2049129A1 (hu)
DE (1) DE69110997T2 (hu)
HU (2) HU210851B (hu)
IL (1) IL99097A0 (hu)
MX (1) MX9100654A (hu)
NZ (1) NZ239654A (hu)
ZA (1) ZA916237B (hu)

Families Citing this family (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1994005783A1 (en) * 1992-09-07 1994-03-17 Bioproperties (Australia) Pty. Limited Novel haemophilus organism and vaccines containing the same
HU219311B (en) * 1992-10-14 2001-03-28 Akzo Nobel Nv New bacterium causing poultry disease and vaccine derived thereof
GB9521568D0 (en) * 1995-10-20 1995-12-20 Lynxvale Ltd Delivery of biologically active polypeptides
JPH1084969A (ja) * 1996-09-19 1998-04-07 Chemo Sero Therapeut Res Inst ヘモフィルス・パラガリナルム由来新規ポリペプチド及びその製法
US7780961B2 (en) * 2001-05-03 2010-08-24 Actogenix N.V. Self-containing Lactococcus strain
ATE389415T1 (de) * 2002-06-19 2008-04-15 Actogenix Nv Verfahren und mittel zur erhöhung der darmabsorption
EP1560935A2 (en) * 2002-11-15 2005-08-10 VIB vzw Self-containing lactobacillus strain
WO2007063075A1 (en) 2005-11-29 2007-06-07 Actogenix Nv Induction of mucosal tolerance to antigens
CA2675297C (en) 2007-01-25 2019-05-07 Actogenix Nv Treatment of immune disease by mucosal delivery of antigens
WO2010074126A1 (ja) * 2008-12-25 2010-07-01 財団法人化学及血清療法研究所 組換え鶏伝染性コリーザワクチン及びその製造方法
CN104212736A (zh) * 2013-09-30 2014-12-17 郑州后羿制药有限公司 一种副鸡嗜血杆菌、灭活疫苗及其制备方法
CN107354114A (zh) * 2017-09-02 2017-11-17 河南省农业科学院畜牧兽医研究所 一株副鸡嗜血杆菌及其应用
CN111471619A (zh) * 2020-04-15 2020-07-31 北京家禽育种有限公司 一种用于副鸡禽杆菌实验室分离培养的培养基及其制备方法和应用
RU2752315C1 (ru) * 2020-07-31 2021-07-26 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук" (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН) Вакцина против гемофилеза птиц инактивированная в форме суспензии "гемовак"

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS4823893B1 (hu) * 1970-12-29 1973-07-17
US3876763A (en) * 1970-12-29 1975-04-08 Shionogi & Co Infectious coryza infectious bronchitis and newcastle disease vaccines and production thereof
JPS6047650B2 (ja) * 1976-06-22 1985-10-23 ソニー株式会社 磁気記録媒体とその製法
JPS54113422A (en) * 1978-02-22 1979-09-05 Shionogi & Co Ltd Hemagglutinin of haemophilus gallinarum

Also Published As

Publication number Publication date
US5240705A (en) 1993-08-31
KR920006004A (ko) 1992-04-27
CA2049129A1 (en) 1992-03-06
DE69110997T2 (de) 1995-12-07
IL99097A0 (en) 1992-07-15
AU8347491A (en) 1992-03-12
NZ239654A (en) 1993-01-27
JPH0592929A (ja) 1993-04-16
CN1059471A (zh) 1992-03-18
AU640516B2 (en) 1993-08-26
EP0475478B1 (en) 1995-07-05
HUT61488A (en) 1993-01-28
ZA916237B (en) 1992-05-27
HU211829A9 (en) 1995-12-28
HU912864D0 (en) 1992-01-28
DE69110997D1 (de) 1995-08-10
EP0475478A1 (en) 1992-03-18
MX9100654A (es) 1992-06-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US7722884B2 (en) Vaccines and methods to treat canine influenza
AU635062B2 (en) Escherichia coli vaccine
US10174084B2 (en) Fusion polypeptides and vaccines
HU210851B (en) Method for the preparation of vaccine against haemophilus paragallinarum
CA1109393A (en) Vaccine and its preparation
NO175735B (no) Fremgangsmåte ved fremstilling av Pasteurella-vaksine
US5593679A (en) Poultry vaccine against E. coli air sac inflammation and septicaemia
KR0127116B1 (ko) 전염성 점액낭 질병의 예방을 위한 왁찐
US10190099B2 (en) IBV strains and uses thereof
CN115243715A (zh) 保护以对抗血清型9、序列型16的猪链球菌的疫苗
WO2021105167A1 (en) Triple vaccine against avibacterium paragallinarum and avian encephalomyelitis virus and fowl pox virus
CN114573708A (zh) 副鸡禽杆菌ha融合蛋白及其三聚体、制备的疫苗组合物、制备方法和应用
US8628947B2 (en) Potomac horse fever isolates
KR20210120898A (ko) 신규한 돼지 유행성 설사병 바이러스 및 이의 용도
SEYFIABAD et al. Vaccination of Chicks with an Experimental Oil-emulsion Vaccine against Infectious Bursal Disease Virus
Goh Molecular and biochemical analysis of a 105 kDa Mycoplasma gallisepticum cytadhesin protein (MGP1)

Legal Events

Date Code Title Description
HMM4 Cancellation of final prot. due to non-payment of fee