HU211829A9 - Haemophilus paragallinarum vaccine - Google Patents
Haemophilus paragallinarum vaccine Download PDFInfo
- Publication number
- HU211829A9 HU211829A9 HU95P/P00562P HU9500562P HU211829A9 HU 211829 A9 HU211829 A9 HU 211829A9 HU 9500562 P HU9500562 P HU 9500562P HU 211829 A9 HU211829 A9 HU 211829A9
- Authority
- HU
- Hungary
- Prior art keywords
- vaccine
- omp
- protein
- trivalent
- paragallinarum
- Prior art date
Links
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 title claims description 52
- 241000606767 Avibacterium paragallinarum Species 0.000 title claims description 51
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims description 40
- 101710116435 Outer membrane protein Proteins 0.000 claims description 30
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 claims description 28
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 28
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 claims description 28
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims description 28
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 28
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 claims description 20
- 235000013330 chicken meat Nutrition 0.000 claims description 20
- 230000001681 protective effect Effects 0.000 claims description 18
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims description 14
- 238000009472 formulation Methods 0.000 claims description 14
- 230000003053 immunization Effects 0.000 claims description 11
- 238000002255 vaccination Methods 0.000 claims description 10
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims description 9
- 239000002671 adjuvant Substances 0.000 claims description 8
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 8
- 238000002955 isolation Methods 0.000 claims description 7
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 7
- 244000144977 poultry Species 0.000 claims description 6
- 235000013594 poultry meat Nutrition 0.000 claims description 6
- 238000002415 sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis Methods 0.000 claims description 5
- 229940031626 subunit vaccine Drugs 0.000 claims description 5
- 229940031418 trivalent vaccine Drugs 0.000 claims description 5
- 230000002163 immunogen Effects 0.000 claims description 4
- 230000002458 infectious effect Effects 0.000 claims description 4
- 239000000427 antigen Substances 0.000 claims description 3
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 claims description 3
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 claims description 3
- 230000028993 immune response Effects 0.000 claims description 3
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 claims description 2
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 claims description 2
- 239000008280 blood Substances 0.000 claims description 2
- 239000007330 chocolate agar Substances 0.000 claims description 2
- 238000012258 culturing Methods 0.000 claims description 2
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 claims description 2
- 239000002657 fibrous material Substances 0.000 claims description 2
- 230000001900 immune effect Effects 0.000 claims description 2
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims description 2
- 244000005700 microbiome Species 0.000 claims description 2
- 229930027945 nicotinamide-adenine dinucleotide Natural products 0.000 claims description 2
- BOPGDPNILDQYTO-NNYOXOHSSA-N nicotinamide-adenine dinucleotide Chemical compound C1=CCC(C(=O)N)=CN1[C@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](COP(O)(=O)OP(O)(=O)OC[C@@H]2[C@H]([C@@H](O)[C@@H](O2)N2C3=NC=NC(N)=C3N=C2)O)O1 BOPGDPNILDQYTO-NNYOXOHSSA-N 0.000 claims description 2
- 230000035931 haemagglutination Effects 0.000 claims 2
- 235000004252 protein component Nutrition 0.000 claims 2
- 210000003771 C cell Anatomy 0.000 claims 1
- 101710145505 Fiber protein Proteins 0.000 claims 1
- 239000004480 active ingredient Substances 0.000 claims 1
- 210000003719 b-lymphocyte Anatomy 0.000 claims 1
- 210000000481 breast Anatomy 0.000 claims 1
- 238000012512 characterization method Methods 0.000 claims 1
- 102000034240 fibrous proteins Human genes 0.000 claims 1
- 108091005899 fibrous proteins Proteins 0.000 claims 1
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims 1
- 239000008194 pharmaceutical composition Substances 0.000 claims 1
- 230000003389 potentiating effect Effects 0.000 claims 1
- 239000007858 starting material Substances 0.000 claims 1
- 210000004379 membrane Anatomy 0.000 description 31
- 241000271566 Aves Species 0.000 description 13
- 238000002649 immunization Methods 0.000 description 7
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 6
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 6
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 5
- 150000007523 nucleic acids Chemical group 0.000 description 5
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 description 4
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 description 4
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 4
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 description 4
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 4
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 description 4
- QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol;hydron;chloride Chemical compound Cl.OCC(N)(CO)CO QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 3
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 3
- 230000002238 attenuated effect Effects 0.000 description 3
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 3
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 3
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 3
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 3
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 3
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 description 2
- 101710154606 Hemagglutinin Proteins 0.000 description 2
- 108091028043 Nucleic acid sequence Proteins 0.000 description 2
- 101710093908 Outer capsid protein VP4 Proteins 0.000 description 2
- 101710135467 Outer capsid protein sigma-1 Proteins 0.000 description 2
- 101710176177 Protein A56 Proteins 0.000 description 2
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 2
- 229960001212 bacterial vaccine Drugs 0.000 description 2
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 2
- 239000003599 detergent Substances 0.000 description 2
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 2
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 2
- 239000002158 endotoxin Substances 0.000 description 2
- 230000006862 enzymatic digestion Effects 0.000 description 2
- 238000005194 fractionation Methods 0.000 description 2
- 239000000185 hemagglutinin Substances 0.000 description 2
- 244000144980 herd Species 0.000 description 2
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 2
- 229920006008 lipopolysaccharide Polymers 0.000 description 2
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 2
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 2
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 description 2
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 description 2
- 239000003921 oil Substances 0.000 description 2
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 2
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 2
- 210000002345 respiratory system Anatomy 0.000 description 2
- FSYKKLYZXJSNPZ-UHFFFAOYSA-N sarcosine Chemical compound C[NH2+]CC([O-])=O FSYKKLYZXJSNPZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 2
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 2
- 238000009210 therapy by ultrasound Methods 0.000 description 2
- RTKIYNMVFMVABJ-UHFFFAOYSA-L thimerosal Chemical compound [Na+].CC[Hg]SC1=CC=CC=C1C([O-])=O RTKIYNMVFMVABJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 229940033663 thimerosal Drugs 0.000 description 2
- 108010042708 Acetylmuramyl-Alanyl-Isoglutamine Proteins 0.000 description 1
- 239000004475 Arginine Substances 0.000 description 1
- 241000711404 Avian avulavirus 1 Species 0.000 description 1
- 208000035143 Bacterial infection Diseases 0.000 description 1
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 1
- 102000003846 Carbonic anhydrases Human genes 0.000 description 1
- 108090000209 Carbonic anhydrases Proteins 0.000 description 1
- 108010026206 Conalbumin Proteins 0.000 description 1
- 206010010741 Conjunctivitis Diseases 0.000 description 1
- 102000018832 Cytochromes Human genes 0.000 description 1
- 108010052832 Cytochromes Proteins 0.000 description 1
- 108010041986 DNA Vaccines Proteins 0.000 description 1
- 241000711450 Infectious bronchitis virus Species 0.000 description 1
- KDXKERNSBIXSRK-UHFFFAOYSA-N Lysine Natural products NCCCCC(N)C(O)=O KDXKERNSBIXSRK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004472 Lysine Substances 0.000 description 1
- 241000699666 Mus <mouse, genus> Species 0.000 description 1
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 1
- 241000204031 Mycoplasma Species 0.000 description 1
- 241000204022 Mycoplasma gallisepticum Species 0.000 description 1
- 102000036675 Myoglobin Human genes 0.000 description 1
- 108010062374 Myoglobin Proteins 0.000 description 1
- FLVIGYVXZHLUHP-UHFFFAOYSA-N N,N'-diethylthiourea Chemical compound CCNC(=S)NCC FLVIGYVXZHLUHP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108010058846 Ovalbumin Proteins 0.000 description 1
- 241000606860 Pasteurella Species 0.000 description 1
- 102000035195 Peptidases Human genes 0.000 description 1
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 description 1
- 206010039101 Rhinorrhoea Diseases 0.000 description 1
- 108010077895 Sarcosine Proteins 0.000 description 1
- DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M Sodium laurylsulphate Chemical compound [Na+].CCCCCCCCCCCCOS([O-])(=O)=O DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 208000036142 Viral infection Diseases 0.000 description 1
- 125000003275 alpha amino acid group Chemical group 0.000 description 1
- WNROFYMDJYEPJX-UHFFFAOYSA-K aluminium hydroxide Chemical compound [OH-].[OH-].[OH-].[Al+3] WNROFYMDJYEPJX-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 125000000539 amino acid group Chemical group 0.000 description 1
- 239000012736 aqueous medium Substances 0.000 description 1
- ODKSFYDXXFIFQN-UHFFFAOYSA-N arginine Natural products OC(=O)C(N)CCCNC(N)=N ODKSFYDXXFIFQN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000022362 bacterial infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 244000052616 bacterial pathogen Species 0.000 description 1
- 239000012888 bovine serum Substances 0.000 description 1
- 206010006451 bronchitis Diseases 0.000 description 1
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 1
- 239000005018 casein Substances 0.000 description 1
- BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N casein, tech. Chemical compound NCCCCC(C(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CC(C)C)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(C(C)O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(COP(O)(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(N)CC1=CC=CC=C1 BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000021240 caseins Nutrition 0.000 description 1
- 210000000170 cell membrane Anatomy 0.000 description 1
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 1
- 210000002421 cell wall Anatomy 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 1
- 239000003937 drug carrier Substances 0.000 description 1
- 210000002969 egg yolk Anatomy 0.000 description 1
- 239000003995 emulsifying agent Substances 0.000 description 1
- 239000000839 emulsion Substances 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 208000011318 facial edema Diseases 0.000 description 1
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 1
- 238000001502 gel electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 210000004408 hybridoma Anatomy 0.000 description 1
- 230000036039 immunity Effects 0.000 description 1
- 229940031551 inactivated vaccine Drugs 0.000 description 1
- 238000007918 intramuscular administration Methods 0.000 description 1
- 238000005342 ion exchange Methods 0.000 description 1
- 229940124590 live attenuated vaccine Drugs 0.000 description 1
- 229940023832 live vector-vaccine Drugs 0.000 description 1
- 229940023012 live-attenuated vaccine Drugs 0.000 description 1
- 210000004072 lung Anatomy 0.000 description 1
- 210000004962 mammalian cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000008774 maternal effect Effects 0.000 description 1
- 244000000010 microbial pathogen Species 0.000 description 1
- 238000003801 milling Methods 0.000 description 1
- 239000002480 mineral oil Substances 0.000 description 1
- 239000002808 molecular sieve Substances 0.000 description 1
- 210000004400 mucous membrane Anatomy 0.000 description 1
- BSOQXXWZTUDTEL-ZUYCGGNHSA-N muramyl dipeptide Chemical compound OC(=O)CC[C@H](C(N)=O)NC(=O)[C@H](C)NC(=O)[C@@H](C)O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H](O)[C@@H]1NC(C)=O BSOQXXWZTUDTEL-ZUYCGGNHSA-N 0.000 description 1
- 208000010753 nasal discharge Diseases 0.000 description 1
- 229940092253 ovalbumin Drugs 0.000 description 1
- 239000006174 pH buffer Substances 0.000 description 1
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 1
- 239000003208 petroleum Substances 0.000 description 1
- 239000013612 plasmid Substances 0.000 description 1
- 229920000447 polyanionic polymer Polymers 0.000 description 1
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 1
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 1
- 230000002035 prolonged effect Effects 0.000 description 1
- 235000019833 protease Nutrition 0.000 description 1
- 239000001397 quillaja saponaria molina bark Substances 0.000 description 1
- 238000010188 recombinant method Methods 0.000 description 1
- 206010039083 rhinitis Diseases 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 229930182490 saponin Natural products 0.000 description 1
- 150000007949 saponins Chemical class 0.000 description 1
- 229940043230 sarcosine Drugs 0.000 description 1
- 238000012216 screening Methods 0.000 description 1
- 238000004062 sedimentation Methods 0.000 description 1
- 210000002151 serous membrane Anatomy 0.000 description 1
- 235000020183 skimmed milk Nutrition 0.000 description 1
- URGAHOPLAPQHLN-UHFFFAOYSA-N sodium aluminosilicate Chemical compound [Na+].[Al+3].[O-][Si]([O-])=O.[O-][Si]([O-])=O URGAHOPLAPQHLN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- KSAVQLQVUXSOCR-UHFFFAOYSA-M sodium lauroyl sarcosinate Chemical compound [Na+].CCCCCCCCCCCC(=O)N(C)CC([O-])=O KSAVQLQVUXSOCR-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 235000019333 sodium laurylsulphate Nutrition 0.000 description 1
- 238000005063 solubilization Methods 0.000 description 1
- 230000007928 solubilization Effects 0.000 description 1
- 210000004989 spleen cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000003381 stabilizer Substances 0.000 description 1
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 1
- 238000007920 subcutaneous administration Methods 0.000 description 1
- 208000024891 symptom Diseases 0.000 description 1
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 1
- 210000003437 trachea Anatomy 0.000 description 1
- GPRLSGONYQIRFK-MNYXATJNSA-N triton Chemical compound [3H+] GPRLSGONYQIRFK-MNYXATJNSA-N 0.000 description 1
- 230000009385 viral infection Effects 0.000 description 1
- 230000001018 virulence Effects 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/02—Bacterial antigens
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/195—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
- C07K14/285—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Pasteurellaceae (F), e.g. Haemophilus influenza
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
- C07K16/12—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria
- C07K16/1203—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria
- C07K16/1242—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria from Pasteurellaceae (F), e.g. Haemophilus influenza
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S424/00—Drug, bio-affecting and body treating compositions
- Y10S424/826—Bacterial vaccine for avian species, e.g. poultry or other birds
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Communicable Diseases (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Pulmonology (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Oncology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
A találmány tárgya baromfiak Haemophilus paragallinarum fertőzése elleni védelmére szolgáló vakcina, Haemophilus paragallinarum antigén anyag, ez elleni antitest és antiszérum, valamint eljárás a Haemophilus paragallinarum vakcina előállításba.
A Haemophilus paragallinarum (H. paragallinarum) a felső légúti traktus fertőzését okozza csirkéknél, melyet fertőző náthának neveznek (IC). A legjellemzőbb tünetek az onjáratok és melléküregek savós-nyálkás orrváladékkal való borítottsága, arc-ödéma és kötőhártya-gyulladás. Az alsó légúti traktus, például a légzsákok és a tüdők fertőzése szintén bekövetkezhet. Bár a morbiditás nagy, a természetes mortalitás viszonylag alacsony. Az IC gyakran okozza a selejtszám emelkedését, satnya növekedést és a lojáshozam csökkenését, mindezek jelentős gazdasági veszteséget okoznak. Ezenfelül ha az IC más kórokozókkal, pl. madárhimlővel, Mycoplasma gallisepticummal, fertőző bronchitisszel, Pasteurellával vagy fertőző légcsőhuruttal társul, súlyosabb és elhúzódóbb betegség lép fel, ami általában magasabb mortalitást is okoz. Az IC-ből kigyógyult madarak gyakran a fertőzés hordozói maradnak. és hozzájárulnak ahhoz, hogy a fertőzés fennmaradjon az állományban.
Jelenleg az IC elleni vakcinálást teljes baktériumból készült vakcinákkal végzik. Ezek a vakcinák élő, előnyösen legyengített törzsekből vagy inaktivált virulens törzsekből készülnek. A legyengített élő vakcinák használatakor azonban mindig fennáll annak a veszélye, hogy az állatokat nem kellő mértékben legyengített patogén baktériumokkal oltjuk be, ami azután az oltott állatok megbetegedését és a betegség esetleges elterjedését okozza az állományban. Ezenkívül a legyengített baktériumok visszaalakulhatnak virulens állapotba.
Az inaktivált vakcináknak is van egy sor hátránya, pl. olyan mellékhatások megjelenése, amelyek a teljes baktériumok beadása után fordulhatnak elő annak következtében. hogy a sejtfal anyagai, pl. lipopoliszacharidok (LPS) jelen vannak.
A H. paragallinarumnak három jól elkülönült szerotípusát lehet megkülönböztetni, azaz az A, B és C szerotípust. A különböző H. paragallinarum törzsek között az egyes szerotípusokon belül rokonságon alapuló kereszt-védelem létezik. Ha azonban egy madarat egy adott szerotípushoz tartozó H. paragallinarum törzzsel vakcináinak, nincs védve olyan H. paragallinarum törzsek fertőzése ellen, amelyek más szerotípusokhoz tartoznak, vagyis az immunitás típus-fajlagos. Ezért az IC elleni megfelelő védelem érdekében a madarakat olyan vakcinával kell immunizálni, amely többféle H. paragallinarium szerotípusból származó immunogén anyagot tartalmaz.
A teljes baktériumon alapuló H. paragallinarum vakcinák említett hátrányai mellett az ilyen vakcináknak további hátránya az, hogy a B vagy C szerotípusú teljes baktériumokat tartalmazó vakcina csak részben védi a vakcináit madarakat a B vagy C szerotípusú virulens törzsekkel való későbbi fertőzés ellen.
Az A szerotípusú H. paragallinarum egyik rostos hemagglutininjét Iritani és munkatársai izolálták és jellemezték [Am. J. Vet. Rés. 41, 2114 (1980) és DEA2 906 996 (Shionogi & Co. LTD.)]. Ennek a rostos hemagglutininnek védőhatása van az A szerotípusú H. paragallinarum fertőzés ellen.
Iritani eljárása azonban az A szerotípusú H. paragallinarum védő komponensének izolálására, amelynek során a védő aktivitást a sejtből tripszin alkalmazásával, majd a védő aktivitás hordozójának izolálásával juttatják ki, nem alkalmazható a C szerotípus esetén, mivel az ilyen szerotípusú H. paragallinarum törzsekből ezzel az izolálási munkamenettel védő hatású komponens nem lenne izolálható.
Új eljárást dolgoztunk ki a H. paragallinarum védő frakciójának az izolálására, ami a H. paragallinarium összes szerotípusa esetén alkalmazható.
Ezzel az új eljárással a H. paragallinarum sejtekből egy új, tisztított membrán-frakciót kapunk, amely egy 38±3 kD-s fehérjét tartalmaz (SDS-PAGE-val, vagyis nátrium-dodecil-szul fát-poliakrilamid gélelektroforézissel mérve, amint a későbbiekben ismertetjük), és amely nagy mértékben védő hatású a H. paragallinarum fertőzés ellen a baromfiakra nézve, és amely lényegében véve sejtektől és rostos anyagoktól mentes.
A találmány értelmében egy alegység vakcinát állítunk elő, vagyis olyan vakcinát, amely csak a védelem szempontjából szükséges és fontos komponenseket tartalmazza, amelyek a H. paragallinarum sejtek membránfrakciójából származnak, amely a mintegy 38 kD-s fehérjét tartalmazza (38 kD-s fehéijében dúsított membrán-frakció). Az ilyen vakcinával immunizált csirkék a virulens H. paragallinarum törzsekkel való homológ fertőzés ellen jól védettek.
Még teljesebb védelem érhető el, ha a csirkéknek olyan vakcinát adagolunk, amely a 38 kD-s külső membrán proteinben (OMP) dúsított, H. paragallinarum sejtek külső membrán frakciójából áll (38 kD-s OMP készítmény).
Ez a tisztított 38 kD-os OMP készítmény lényegében véve sejtektől és rostos anyagoktól mentes.
A találmány szerinti vakcinára jellemző továbbá, hogy a védő aktivitás
- hőre érzékeny,
- tripszines kezelésre érzékeny és
- K-proteináz kezelésre érzékeny.
A találmány szerinti vakcina tartalmazhatja az említett 38 kD-s OMP olyan fragmentumát is, amelynek még vannak immunizáló tulajdonságai, vagyis immunológiai ekvivalens.
A 38 kD-s fehérjében dúsított membrán frakciót úgy állítjuk elő, hogy H. paragallinarum baktériumokat alkalmas tápközegben olyan körülmények között tenyésztünk, amelyek elősegítik a 38 kD-s OMP kifejeződését, majd a H. paragallinarum sejteket feltárjuk, pl. enzimes vagy mechanikus feltárással (például ultrahangos kezeléssel, őrléssel vagy francia prés segítségével), a sejtmembrán frakciót ülepítjük, és ezután a 38 kD-s fehérjében dúsított membrán frakciót elválasztjuk, pl. centrifugálással.
A 38 kD-s OMP készítményt úgy izolálhatjuk,
HU 211 829 A9 hogy a fentebb említett membrán frakciót további, belső és külső membrán frakcióra választjuk szét, pl. sűrűség gradiens ülepftéssel, vagy a belső membrán detergenssel, pl. Triton Χ-100-zal vagy szarkozinnal történő eltérő szolubilizálódása alapján, amit centrifugálás követ.
Az említett frakció vagy preparátum izolálására eljárhatunk úgy is, hogy a 38 kD-s OMP-re fajlagos antiszérumot (pl. monoklonális antitestet) használunk. A H. paragallinarum membrán-extraktumát egy olyan oszlop-töltetre vihetjük fel, amely az említett 38 kD-s OMP-re fajlagos antiszérumot tartalmazza, az extraktum adszorbeálódott frakcióját elválasztjuk a nem adszorbeálódott anyagtól, majd az adszorbeált frakciót az oszlop-töltetről leoldjuk.
Kívánt esetben a 38 kD-os OMP-t homogenitásig tisztíthatjuk a szakterületen ismert eljárásokkal, így pl. a 38 kD-s OMP-t szolubilizáljuk az említett 38 kD-s OMP készítményből egy vagy több detergenssel végzett extrahálással, majd tovább tisztítjuk pl. ioncserélővagy molekulaszűrő-kromatográfiával olyan körülmények között, amelyek nem befolyásolják a 38 kD-s OMP védő tulajdonságait.
A tisztított, 38 kD-s fehérjében dúsított frakciókat a H. paragallinarum ismert szerotípusaitól, például az A, B, C és a megfelelő, a technika állása szerint ismert szerotípusoktól megfelelően elválaszthatjuk.
A találmány szerinti vakcinában alkalmazandó 38 kD-s OMP-t kémiai szintézissel, H. paragallinarum sejtekből végzett tisztítással vagy rekombináns technikákkal állíthatjuk elő.
Az utóbbi esetben az említett fehérjét vagy fragmentumait kódoló nukleinsav-szekvenciákat pl. olyan módon azonosíthatjuk, hogy egy genomiális H. paragallinarum DNS bankot olyan egyedi kiónokra nézve vizsgálunk át, amelyek az említett szekvenciákat tartalmazzák, ehhez pl. a 38 kD-s OMP ellen képződött poliklonális vagy monoklonális antitestekkel való fajlagos reakciót használjuk ki. A nukleinsav-szekvenciákat különböző, kifejezésre ható DNS szekvenciákkal ligálhatjuk, így úgynevezett rekombináns nukleinsav molekulát kapunk, amellyel megfelelő gazdaszervezetet transzformálhatunk. Ilyen hibrid DNS molekulák pl. plazmidokból vagy vírusokban jelen levő nukleinsavakból származhatnak. Gazdasejtként prokarióta eredetű, pl. baktérium vagy eukarióta eredetű, pl. emlős sejteket alkalmazhatunk. A transzformált gazdasejteket felhasználhatjuk a 38 kD-s OMP termelésére, ezután pedig az említett fehérjét vagy a 38 kD-s OMP-t tartalmazó anyagot izolálhatjuk, majd a találmány értelmében vakcina előállítására alkalmazhatjuk.
Egy másik kiviteli mód szerint élő vektor vakcinát készíthetünk, amely valamely nem-patogén mikroorganizmust, pl, vírust vagy baktériumot tartalmaz, ahol a mikroorganizmusba klónozva megtalálható a 38 kD-s OMP-t vagy fragmentumát kódoló nukleinsav-szekvencia.
A találmány szerinti vakcinák legalább egy szerotípusú H. paragallinarum 38 kD-s fehérjében dúsított membrán-frakcióját vagy 38 kD-s OMP készítményét tartalmazzák, azaz az olyan vakcinák, amelyek ilyen frakciót vagy készítményt tartalmaznak, vagy az olyan vakcinák, amelyek a 38 kD-s OMP immunológiai ekvivalensét tartalmazzák, a találmány oltalmi körébe tartoznak.
A találmány szerinti vakcina ezenkívül rekombináns DNS vakcina formájában is lehet, amint ezt fentebb körvonalaztuk.
A találmány szerinti vakcina előnyösen egynél több, különböző szerotípusú H. paragallinarum törzsből származó, 38 kD-s fehérjében dúsított membránfrakciót vagy 38 kD-s OMP készítményt tartalmaz. A H. paragallinarum ellen a legteljesebb védelmet úgy érhetjük el, ha olyan vakcinát adunk a madaraknak, amely tartalmaz mind A, mind B, mind C szerotípusú H. paragallinarum törzsből származó membrán-frakciót vagy készítményt. Az ilyen háromértékű (trivalens) vakcina a találmány szerinti megoldás egy előnyös megvalósítási módja. A találmány szerinti háromértékű vakcinával végzett vakcinálás teljes mértékben megóvja a madarakat a H. paragallinarum fertőzésekkel szemben, ellentétben az eddig alkalmazott, teljes baktériumokon alapuló vakcinákkal.
A védő aktivitást hordozó H. paragallinarum anyagon kívül a találmány szerinti vakcina tartalmazhat valamely vizes közeget vagy vizet tartalmazó szuszpenziós közeget, gyakran más alkotórészekkel keverve, például abból a célból, hogy megnöveljük az aktivitást és/vagy az eltarthatóságot. Ezek az alkotórészek lehetnek sók, pH pufferek, stabilizálószerek (pl. sovány tej vagy kazein hidrolizátum), emulgeálószerek, adjuvánsok az immunválasz fokozására (pl. ásványolajok, muramil-dipeptid, alumínium-hidroxid, szaponin, polianionok és amfipatikus vegyületek) és tartósítószerek, pl. timerozál.
A találmány szerinti vakcina tartalmazhat továbbá más, baromfiakra nézve fertőző baktériumokból vagy vírusokból származó immunogén anyagot is, pl. Mycoplasma, Newcastle-betegség vírus vagy fertőző bronchitis vírus immunogén anyagát.
A vakcinát előnyösen parenterálisan, pl. szubkután vagy intramuszkulárisan adagoljuk. A vakcinát ilyen módon mind a vakcináit madarak aktív immunizálása céljából, mind a tojó madarak utódainak passzív immunizálása céljából adagolhatjuk. Az immunizált tojó madarakban a bennük kialakult antitestek természetesen bejutnak tojásaik sárgájába, és így a kikelt csirkékbe is.
Mind a vakcina összetétele, mind a vakcinálási rendszer változtatható a védendő állat típusától, az állat korától és testtömegétől, a védelem kívánt időtartamától és az adagolás módjától függően, valamint attól függően, hogy aktív immunizálást vagy az anyai antitestek révén passzív immunizálást kívánunk-e elérni. Az aktív komponens optimálisan hatékony mennyisége a vakcinában - baromfiak parenterális, például intramuszkuláris vagy szubkután vakcinálásához - dózisonként mintegy 0,1-100 pg, legelőnyösebben 0,3-1,0 pg protein.
H. paragallinarum ellen az említett aktív immunizá3
HU 211 829 A9 lást elsősorban védő kezelésként alkalmazzuk egészséges madarak esetén. Nyilvánvaló, hogy a H. paragallinarummal már fertőződött madarakat a találmány szerinti membrán-frakció vagy készítmény elleni antitestekkel kezelhetjük.
A találmány szerinti membrán-frakció elleni antiszérumot úgy állítjuk elő, hogy madarakat immunizálunk az említett frakció hatásos mennyiségével, előnyösen valamely adjuváns jelenlétében. Kívánt esetben az állatoknak egy második vakcinálással emlékeztető oltást adunk a megfelelő immunválasz kialakítása céljából. Ezután az állatokat elvéreztetjük és a vérből antiszérumot állítunk elő.
Az antiszérumot vagy antitesteket gyógyászatilag elfogadható hordozókkal keverhetjük.
Egy adott szerotípusú H. paragallinarum törzsből származó membrán-frakcióra fajlagos poliklonális antiszérumot úgy állíthatunk elő, hogy az említett membrán-frakció elleni antiszérumot más szerotípusú H. paragallinarum törzsek membrán-frakcióinak keverékével együtt inkubáljuk. Azok az antitestek, amelyek nem fajlagosak az említett H. paragallinarum membránfrakcióra, adszorbeálódnak a hozzáadott H. paragallinarum frakciókhoz, és így elkülöníthetők az inkubálási keverékből, így olyan antiszérum készítményt kapunk, amely egy bizonyos szerotípusú H. paragallinarum membrán-frakcióra fajlagos.
A találmány szerinti membrán-frakció vagy készítmény elleni monoklonális antitesteket alkalmazhatjuk H. paragallinarummal fertőzött madarak passzív immunizálására is. Az említett monoklonális antitesteket ismert módon állíthatjuk elő, például úgy, hogy egereket immunizálunk a találmány szerinti membrán-frakcióval, az egér lépsejteket immortalizáljuk, és az alkalmas antitesteket termelő hibridómákat kiválasztjuk.
Az antiszérumok és monoklonális antitestek alkalmazhatók a H. paragallinarum baktériumokkal fertőzött madarak immunológiai diagnosztizálásához is.
1. példa
H. paragallinarum membrán-frakciók tisztítása és csirkék immunizlása
Baktérium törzseket szélesztünk csokoládé-agaron, és 24 órán át 37 °C hőmérsékleten olyan atmoszférában inkubáljuk, amelyben egy gyertyát hagytunk kiégni, majd 0,01% NADH-val kiegészített TPB-ben tenyésztjük.
230 ml koncentrált H-l 8 (C szerotípusú) sejlszuszpenziót [amely 4xlO10 sejtet tartalmaz ml-enként 40 mmól/l-es, 0,01% timerozált tartalmazó PBS-ben ultrahanggal kezelünk 6 percen át 4 ”C-on 100 wattal, Branson B12 Sonifier készülék segítségével (váltakozva 30 másodperces ultrahangos kezelés és 30 másodperces hűtés). Ezt követően az össze nem zúzott sejteket centrífugálással eltávolítjuk (10 perc, 5000 g), és 20 ml felülúszót ásványolaj víz-az-olajban (W/0) adjuvánssal emulgeálunk. Ezt a vakcinát SUP-USO (C)-nek nevezzük. A további 210 ml felülúszót 1 órán át ultracentrifugában 167 000 g-vel centrifugáljuk, így a teljes membrán-frakciót megtisztítjuk az oldható frakciótól.
A membrán-üledéket (barnás színű) újra szuszpendáljuk 60 ml 50 mmól/literes trisz.HCl pufferben (pH = 8,0). Ebből a szuszpenzióból 10 ml-t ugyanazzal a pufferrel háromszorosára hígítunk, és W/0 adjuvánssal emulgeáljuk. Ezt a vakcinát 38 kD-s fehérjében dús (C) membrán-frakciónak nevezzük. A megmaradt 50 ml szuszpenziót 1:1 arányban összekeverjük 50 mmól/1 trisz.HCl-t (pH = 8,0) és 2% nátrium-N-lauroil-szarkozinl tartalmazó pufferral, és 2 órán át szobahőmérsékleten inkubáljuk, így a belső membránokat szolubilizálása érdekében. Ezt követően a keveréket 1 órán át 167 000 g-vel ismét centrifugáljuk, így a szolubilizált belső membránokat elválasztjuk a külső membránoktól.
Az üledéket újra szuszpendáljuk 50 ml 50 mmól/literes trisz.HCl-ben (pH = 8,0). Ennek a szuszpenziónak egy részét azután ugyanolyan pufferrel háromszorosára hígítjuk, és W/O adjuvánssal emulgeáljuk. Ezt a vakcinát (C) 38 kD-s OMP készítménynek nevezzük.
A különböző tisztított, W/O adjuvánssal emulgeált frakciók védelmi képességét az 1. táblázatban mutatjuk be,
Kereskedelmi forgalomban kapható Isabrown csirkéket 10 hetes korukban egyszer vakcináltunk különböző vakcinák 0,5 ml-ével, és egyforma fertőzésnek vetettük alá négy héttel később H-l 8 (C szerotípusú) H. paragallinarum törzzsel. Az egyes vakcinákhoz 6 csirkét alkalmaztunk.
I. táblázat
Csirkék védelme H. paragallinaru fertőzés ellen tisztított frakciókkal végzett imunizálással
3 A pontszám az orrváladékkal bíró csirkék teljes számál képviseli 3 megfigyelésből: 24 órával, 48 órával és 5 nappal a fertőzés után 6 Újraizolálás az infraorbitális üregből 5 nappal a fertőzés után (szatellit növekedés)
Amint az 1. táblázatból látható, a H. paragallinarium tisztított membrán-frakciója, és különösen a tisztított 38 kD-s OMP (C) készítmény nagy mértékben vé1
HU 211 829 A9 tűk Laemmli eljárása szerint [Natúré 227, 680-685 (1970)].
A tisztított készítmények SDS-PAGE vizsgálata CBB festéssel együtt az OMP készítményekben domináns fehérjeként egy mintegy 38 kD-s csíkot mutatott ki (1. ábra). Az 1. ábra a különböző készítmények, vagyis a 083 (A) törzsből (A-B vonalak), Spross (B) törzsből (D-E vonalak) és a H-18(C) törzsből (G-H vonalak) származó SUP-U50, illetve 38 kD-s OMP készítmények SDS-gélelektroforézis profiljait mutatja. A C, F és I vonalakban az alábbi molekulatömeg-mar-
vábbi jellemzőinek a meghatározásához a készítményeket az 1. példa szerinti módon 083 (A), Spross (B) és H-18 (C) törzsekből tisztítottuk, és hőkezelésnek, valamint enzimes emésztésnek (tripszinnel és K-proteinázzal) vetettük alá.
A tripszin a fehérjéket a pozitívan töltött aminosavmaradékok (vagyis lizin, arginin) után hasítja. A K-proteináz erős enzim, és a legtöbb fehérjét kis peptidekké hasítja. A 100 °C-ig végzett hőkezelés az aminosavlán5 col épen hagyja, de a legtöbb fehérje harmadlagos és negyedleges szerkezetét (a legtöbbször irreverzíbilisen) elroncsolja. Az enzimes emésztéshez 2 mg fehérjét inkubáltunk 200 pg enzimmel 1 ml 40 mmól/1-es PBS-ben 1,5 órán át 37 °C hőmérsékleten. A kontroll 10 készítményeket ugyanilyen módon kezeltük, azzal a különbséggel, hogy az enzimet elhagytuk. Hővel denaturált fehérjék előállítására 2 mg fehérjét melegítettünk 1 ml 40 mmól/1-es PBS-ben 100 °C hőmérsékleten 10 percen át.
Vakcina kompozíciókat állítottunk elő, amelyekben 0/W emulzióban 50 pg fehérje található 0,5 ml-es dózisban, és ezt vizsgáltuk homológ fertőzés ellen. Kereskedelmi forgalomban kapható 10 hetes Isabrown csirkéket vakcináltunk egy alkalommal, és 4 héttel később fertőztük őket. Az egyes fertőzési csoportokban 6-6 csirkét alkalmaztunk (4. táblázat).
A kísérletekből arra a következtetésre juthatunk, hogy a védő aktivitás érzékeny a hő- és enzimes kezelésre, mivel az ilyen kezelések a védő kapacitás erős 25 csökkenését eredményezték mindhárom szerotípusnál.
4. táblázat
Az enzimes- és hőkezelés hatása a 38 kD-s OMP készítmények védő hatására.
Vakcina A típusú fertőzés B típusú fertőzés C típusú fertőzés klinikai jelek3 újraizoláiás6 klinikai jelek3 újraizoláiás6 klinikai jelek3 újraizoláiás6 OMP- kezelés pont- szám % véde-The present invention relates to a vaccine for the protection of poultry against infection by Haemophilus paragallinarum, an antigenic substance, anti-Haemophilus paragallinarum antigen, an antibody and antiserum thereof, and to a process for the preparation of a Haemophilus paragallinarum vaccine.
Haemophilus paragallinarum (H. paragallinarum) causes infection of the upper respiratory tract in chickens known as infectious rhinitis (IC). The most common symptoms are serous and mucous membrane of the sinuses and sinuses, facial edema and conjunctivitis. Infections of the lower respiratory tract, such as airbags and lungs, can also occur. Although morbidity is high, natural mortality is relatively low. ICs often cause an increase in cull numbers, stubborn growth and a decline in egg production, all of which result in significant economic losses. In addition, if the IC with other pathogens, e.g. pox, Mycoplasma gallisepticum, infectious bronchitis, Pasteurella, or infectious trachea, a more serious and prolonged disease that usually results in higher mortality. Birds recovered from IC often remain carriers of infection. and contribute to keeping the infection in the herd.
At present, vaccination against IC is carried out using whole bacterial vaccines. These vaccines are prepared from live strains, preferably attenuated strains or inactivated virulent strains. However, when using live attenuated vaccines, there is always a risk that the animals will be vaccinated with inadequately attenuated pathogenic bacteria, which will then cause the vaccinated animals to become ill and possibly spread the disease to the herd. In addition, the attenuated bacteria may return to virulence.
Inactivated vaccines also have a number of disadvantages, e.g. the appearance of side effects that may occur as a result of the administration of complete bacteria. that the materials of the cell wall, e.g. lipopolysaccharides (LPS) are present.
There are three distinct serotypes of H. paragallinarum, namely serotypes A, B and C. There is cross-protection between different strains of H. paragallinarum within each serotype. However, when a bird is vaccinated with a strain of H. paragallinarum belonging to a particular serotype, it is not protected against infection by strains of H. paragallinarum that belong to other serotypes, i.e. the immunity is type specific. Therefore, in order to provide adequate protection against IC, the birds should be immunized with a vaccine containing immunogenic material from several H. paragallinarium serotypes.
In addition to the said disadvantages of H. bacterialis vaccines based on whole bacteria, a further disadvantage of such vaccines is that a vaccine containing whole bacteria of serotype B or C only partially protects vaccinated birds against subsequent infection with serotype B or C virulent strains.
A fibrous hemagglutinin of H. paragallinarum serotype A was isolated and characterized by Iritani et al., Am. J. Vet. Gap. 41, 2114 (1980) and DEA2 906 996 (Shionogi & Co. LTD.)]. This fibrous hemagglutinin has a protective effect against H. paragallinarum serotype A infection.
However, the lithologic method for isolating the protective component of H. paragallinarum serotype A, wherein the protective activity is delivered from the cell using trypsin and isolating the carrier of protective activity, is not applicable to serotype C, since this isolate from H. paragallinarum strains a protective component would not be isolated during the session.
We have developed a new procedure for the isolation of the protective fraction of H. paragallinarum which is applicable to all H. paragallinarium serotypes.
This novel method yields a new purified membrane fraction from H. paragallinarum cells containing a 38 ± 3 kD protein (as measured by SDS-PAGE, i.e., sodium dodecylsulfate polyacrylamide gel electrophoresis as described below). which is highly protective against H. paragallinarum infection in poultry and is substantially free of cells and fibrous material.
In accordance with the present invention, a subunit vaccine is prepared, i.e., a vaccine containing only the protective and important components derived from the membrane fraction of H. paragallinarum cells, which contains the approximately 38 kD protein (38 kD protein enriched membrane). oil fractions). Chickens immunized with such vaccines are well protected against homologous infection with virulent strains of H. paragallinarum.
Even more complete protection can be achieved by administering to chickens a vaccine consisting of the outer membrane fraction of H. paragallinarum cells enriched in 38 kD outer membrane protein (OMP) (38 kD OMP formulation).
This purified 38 kD OMP formulation is essentially free of cells and fiber.
The vaccine according to the invention is further characterized by its protective activity
- heat sensitive,
sensitive to trypsin treatment and
- Sensitive to K-proteinase treatment.
The vaccine of the invention may also contain a fragment of said 38 kD OMP which still has immunizing properties, i.e., immunologically equivalent.
The membrane fraction enriched in the 38 kD protein is prepared by culturing H. paragallinarum bacteria in a suitable medium under conditions which promote expression of the 38 kD OMP, and then digesting the H. paragallinarum cells, e.g. by enzymatic or mechanical digestion (e.g., ultrasonic treatment, milling or French press), the cell membrane fraction is pelleted and the membrane fraction enriched in the 38 kD protein is separated, e.g. centrifugation.
The 38 kD OMP formulation can be isolated by
A9 to separate the above-mentioned membrane fraction into a further internal and external membrane fraction, e.g. density gradient with sedimentation or an internal membrane detergent, e.g. Based on differential solubilization of Triton with Χ-100 or sarcosine followed by centrifugation.
Alternatively, isolation of said fraction or preparation may be accomplished by the use of antiserum specific for 38 kD OMP (e.g., monoclonal antibody). The membrane extract of H. paragallinarum can be loaded onto a column pack containing antiserum specific for said 38 kD OMP, the adsorbed fraction of the extract is separated from the non-adsorbed material, and the adsorbed fraction is dissolved from the column pack.
If desired, the 38 kD OMP can be purified to homogeneity by methods known in the art, e.g. 38 kD OMP is solubilized by extraction from said 38 kD OMP composition with one or more detergents and further purified e.g. ion exchange or molecular sieve chromatography under conditions that do not affect the protective properties of the 38 kD OMP.
Purified fractions enriched in the 38 kD protein can be appropriately separated from known H. paragallinarum serotypes such as A, B, C and corresponding serotypes known in the art.
The 38 kD OMP to be used in the vaccine of the present invention can be prepared by chemical synthesis, purification from H. paragallinarum cells, or recombinant techniques.
In the latter case, nucleic acid sequences encoding said protein or fragments thereof are, e.g. may be identified by screening a genomic DNA library of H. paragallinarum for individual clones containing said sequences, e.g. specific reaction with polyclonal or monoclonal antibodies raised against 38 kD OMP. Nucleic acid sequences can be ligated to various expressing DNA sequences to give a so-called recombinant nucleic acid molecule with which to transform a suitable host. Such hybrid DNA molecules are e.g. plasmids or nucleic acids present in viruses. As a host cell, it is of prokaryotic origin, e.g. of bacterial or eukaryotic origin, e.g. mammalian cells. The transformed host cells can be used to produce 38 kD OMP, and then the material containing said protein or 38 kD OMP can be isolated and used in the present invention to produce a vaccine.
In another embodiment, a live vector vaccine may be prepared comprising a non-pathogenic microorganism, such as a virus or bacterium, wherein the nucleic acid sequence encoding the 38 kD OMP or fragment thereof is cloned into the microorganism.
The vaccines of the present invention comprise a membrane fraction enriched in 38 kD protein or a 38 kD OMP formulation of at least one serotype of H. paragallinarum, i.e., vaccines comprising such fraction or formulation, or vaccines comprising the 38 kD protein. s containing an immunological equivalent of OMP are included within the scope of the invention.
The vaccine of the present invention may also be in the form of a recombinant DNA vaccine, as outlined above.
Preferably, the vaccine of the present invention comprises more than one 38 kD protein enriched membrane fraction or 38 kD OMP composition from H. paragallinarum strains of different serotypes. The most complete protection against H. paragallinarum is achieved by administering to the birds a vaccine containing a membrane fraction or composition derived from H. paragallinarum serotype A, B and C strains. Such a trivalent vaccine is a preferred embodiment of the present invention. Vaccination with the trivalent vaccine of the present invention fully protects birds against H. paragallinarum infections, in contrast to the full bacterial vaccines used hitherto.
In addition to the H. paragallinarum protective carrier, the vaccine of the invention may contain an aqueous medium or a suspension medium containing water, often in admixture with other ingredients, for example to increase activity and / or shelf life. These ingredients may include salts, pH buffers, stabilizers (e.g., skim milk or casein hydrolyzate), emulsifiers, adjuvants to enhance the immune response (e.g., mineral oils, muramyl dipeptide, aluminum hydroxide, saponin, polyanions, and amphipathic compounds). . thimerosal.
The vaccine of the invention may also contain other immunogenic material derived from bacterial or viral infections in poultry, e.g. Mycoplasma, an immunogenic substance of Newcastle disease virus or infectious bronchitis virus.
The vaccine is preferably administered parenterally, e.g. administered subcutaneously or intramuscularly. The vaccine can thus be administered both for the active immunization of vaccinated birds and for the passive immunization of the offspring of laying birds. Of course, in immunized laying birds, the antibodies they produce enter the yolk of their eggs, and thus the hatched chickens.
Both the composition of the vaccine and the vaccination system may be varied depending upon the type of animal to be protected, the age and weight of the animal, the desired duration of protection and the route of administration, and whether active immunization or passive immunization by maternal antibodies is desired. The optimum effective amount of the active component in the vaccine for parenteral, for example, intramuscular or subcutaneous vaccination of poultry, is about 0.1 to 100 pg, most preferably 0.3 to 1.0 pg of protein per dose.
Said active immunization against H. paragallinarum
EN 211 829 A9 is used primarily as a protective treatment for healthy birds. It will be appreciated that birds already infected with H. paragallinarum may be treated with antibodies against the membrane fraction or composition of the invention.
Antiserum against the membrane fraction of the present invention is prepared by immunizing birds with an effective amount of said fraction, preferably in the presence of an adjuvant. If desired, the animals are vaccinated with a second vaccination to induce an appropriate immune response. The animals are then bled and antiserum is prepared from the blood.
The antiserum or antibodies may be mixed with pharmaceutically acceptable carriers.
A polyclonal antiserum specific for a membrane fraction from a strain of H. paragallinarum of a particular serotype may be prepared by incubating the antiserum against said membrane fraction with a mixture of membrane fractions of another strain of H. paragallinarum serotype. Antibodies that are not specific to the said H. paragallinarum membrane fraction are adsorbed to the added H. paragallinarum fractions and can be separated from the incubation mixture to give an antiserum composition specific for a membrane fraction of a particular H. paragallinarum serotype.
Monoclonal antibodies to the membrane fraction or composition of the invention may also be used to passively immunize birds infected with H. paragallinarum. Said monoclonal antibodies can be prepared in a known manner, for example, by immunizing mice with the membrane fraction of the invention, immortalizing mouse spleen cells, and selecting hybridomas that produce suitable antibodies.
Antisera and monoclonal antibodies can also be used to immunologically diagnose birds infected with H. paragallinarum bacteria.
Example 1
Purification of H. paragallinarum membrane fractions and immunization of chickens
Bacterial strains were plated on chocolate agar and incubated for 24 hours at 37 ° C in an atmosphere in which a candle was left to burn and cultured in TPB supplemented with 0.01% NADH.
230 ml of concentrated cell suspension of HI 18 (serotype C) [containing 4x10 10 cells / ml in PBS containing 40 mM PBS containing 0.01% thimerosal was sonicated for 6 minutes at 4 ° C with 100 W, Branson B12 Sonifier device (alternately 30 seconds ultrasonic treatment and 30 seconds cooling). Subsequently, uncomminuted cells were removed by centrifugation (10 min, 5000 g) and 20 mL of supernatant was emulsified in petroleum water-in-oil (W / 0) adjuvant. This vaccine is called SUP-USO (C). The remaining 210 ml of supernatant was centrifuged in an ultracentrifuge at 167,000 g for 1 hour to purify the total membrane fraction from the soluble fraction.
The membrane pellet (brownish) was resuspended in 60 ml of 50 mM Tris.HCl buffer, pH 8.0. 10 ml of this suspension was diluted three times with the same buffer and emulsified with W / 0 adjuvant. This vaccine is referred to as the membrane fraction (C) rich in 38 kD protein. The remaining 50 ml of the suspension was mixed with a buffer containing 50 mM Tris.HCl (pH 8.0) and 2% sodium N-lauroyl sarcosine in a 1: 1 ratio and incubated for 2 hours at room temperature to give the inner membranes. to solubilize. Subsequently, the mixture was centrifuged again at 167,000 g for 1 hour to separate the solubilized inner membranes from the outer membranes.
The pellet was resuspended in 50 mL of 50 mM Tris.HCl, pH 8.0. A portion of this suspension is then diluted three times with the same buffer and emulsified with W / O adjuvant. This vaccine (C) is called a 38 kD OMP formulation.
The protective capacity of the various purified W / O adjuvanted fractions is shown in Table 1,
Commercial Isabrown chickens were vaccinated once with 10 ml of various vaccines at the age of 10 weeks and challenged four weeks later with H. paragallinarum strain H18 (serotype C). Six chickens were used for each vaccine.
Table I
Protection of chickens by immunization with purified fractions against H. paragallinaru infection
3 The score represents the total number of chickens with nasal discharge from 3 observations: 24 hours, 48 hours and 5 days after infection 6 Re-isolation from infraorbital cavity 5 days after infection (satellite growth)
As shown in Table 1, the purified membrane fraction of H. paragallinarium, and in particular the purified 38 kD OMP (C) formulation,
A9 needles according to Laemmli (Naturre 227: 680-685 (1970)).
SDS-PAGE of the purified formulations together with CBB staining revealed a band of approximately 38 kD as the dominant protein in OMP formulations (Fig. 1). Figure 1 shows the SUP-U50 and 38 kD of the different formulations, i.e. strain 083 (A) (AB lines), Spross (B) strain (DE lines) and H-18 (C) strain (GH lines). shows SDS gel electrophoresis profiles of OMP preparations. In lines C, F and I, the molecular weight
To determine its further characteristics, the compositions were purified as described in Example 1 from strains 083 (A), Spross (B) and H-18 (C) and subjected to heat treatment and enzymatic digestion (trypsin and K proteinase).
Trypsin cleaves proteins after positively charged amino acid residues (i.e., lysine, arginine). K-proteinase is a strong enzyme and cuts most proteins into small peptides. Heat treatment to 100 ° C leaves the amino acid chain at 5 inches intact, but destroys the tertiary and quaternary structure of most proteins (mostly irreversibly). For enzymatic digestion, 2 mg of protein was incubated with 200 pg of enzyme in 1 ml of 40 mM PBS for 1.5 hours at 37 ° C. Control preparations were treated in the same manner except that the enzyme was omitted. For the production of heat denatured proteins, 2 mg of protein was heated in 1 ml 40 mM PBS at 100 ° C for 10 minutes.
Vaccine compositions containing 50 µg of protein in a 0.5 ml dose of 0 / W emulsion were prepared and tested for homologous infection. Commercially available 10-week-old Isabrown chickens were vaccinated once and infected 4 weeks later. 6-6 chickens were used in each infection group (Table 4).
From the experiments it can be concluded that protective activity is sensitive to heat and enzymatic treatment since such treatments resulted in a strong decrease in protective capacity in all three serotypes.
Table 4
Effect of enzymatic and heat treatment on the protective effect of 38 kD OMP preparations.
Vaccine Type A Infection Type B Infection Type C Clinical Signs 3 Re-Isolation 6 Clinical Signs 3 Re-Isolation 6 Clinical Signs 3 Re-Isolation 6 OMP Treatment Score%Claims (11)
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
EP90202358 | 1990-09-05 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
HU211829A9 true HU211829A9 (en) | 1995-12-28 |
Family
ID=8205111
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
HU912864A HU210851B (en) | 1990-09-05 | 1991-09-04 | Method for the preparation of vaccine against haemophilus paragallinarum |
HU95P/P00562P HU211829A9 (en) | 1990-09-05 | 1995-06-29 | Haemophilus paragallinarum vaccine |
Family Applications Before (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
HU912864A HU210851B (en) | 1990-09-05 | 1991-09-04 | Method for the preparation of vaccine against haemophilus paragallinarum |
Country Status (13)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5240705A (en) |
EP (1) | EP0475478B1 (en) |
JP (1) | JPH0592929A (en) |
KR (1) | KR920006004A (en) |
CN (1) | CN1059471A (en) |
AU (1) | AU640516B2 (en) |
CA (1) | CA2049129A1 (en) |
DE (1) | DE69110997T2 (en) |
HU (2) | HU210851B (en) |
IL (1) | IL99097A0 (en) |
MX (1) | MX9100654A (en) |
NZ (1) | NZ239654A (en) |
ZA (1) | ZA916237B (en) |
Families Citing this family (14)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1994005783A1 (en) * | 1992-09-07 | 1994-03-17 | Bioproperties (Australia) Pty. Limited | Novel haemophilus organism and vaccines containing the same |
DE10399019I2 (en) * | 1992-10-14 | 2005-07-21 | Akzo Nobel Nv | Poultry disease-causing new bacterium and vaccine derived from it. |
GB9521568D0 (en) * | 1995-10-20 | 1995-12-20 | Lynxvale Ltd | Delivery of biologically active polypeptides |
JPH1084969A (en) * | 1996-09-19 | 1998-04-07 | Chemo Sero Therapeut Res Inst | New polypeptide derived from haemophilus paragallinarum and its production |
US7780961B2 (en) * | 2001-05-03 | 2010-08-24 | Actogenix N.V. | Self-containing Lactococcus strain |
WO2004001020A2 (en) * | 2002-06-19 | 2003-12-31 | Vlaams Interuniversitair Instituut Voor Biotechnologie Vzw | Methods and means to promote gut absorption |
CA2506031A1 (en) * | 2002-11-15 | 2004-06-03 | Vib Vzw | Self-containing lactobacillus strain comprising a thya mutation and therapeutic applications thereof |
JP5410759B2 (en) | 2005-11-29 | 2014-02-05 | アクトジェニックス・エヌブイ | Induction of mucosal tolerance to antigens |
EP2774621B1 (en) | 2007-01-25 | 2018-01-24 | Intrexon Actobiotics NV | Treatment of immune disease by mucosal delivery of antigens |
MX2011006903A (en) * | 2008-12-25 | 2011-09-15 | Chemo Sero Therapeut Res Inst | Recombinant avian-infectious coryza vaccine and method for producing same. |
CN104212736A (en) * | 2013-09-30 | 2014-12-17 | 郑州后羿制药有限公司 | Haemophilus paragallinarum, inactivated vaccine and preparation method of inactivated vaccine |
CN107354114A (en) * | 2017-09-02 | 2017-11-17 | 河南省农业科学院畜牧兽医研究所 | One plant of haemophilus paragallinarum and its application |
CN111471619A (en) * | 2020-04-15 | 2020-07-31 | 北京家禽育种有限公司 | Culture medium for isolated culture of avibacterium paragallinarum in laboratory and preparation method and application thereof |
RU2752315C1 (en) * | 2020-07-31 | 2021-07-26 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук" (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН) | Avian glasser's disease vaccine inactivated in the form of “hemovac” suspension |
Family Cites Families (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS4823893B1 (en) * | 1970-12-29 | 1973-07-17 | ||
US3876763A (en) * | 1970-12-29 | 1975-04-08 | Shionogi & Co | Infectious coryza infectious bronchitis and newcastle disease vaccines and production thereof |
JPS6047650B2 (en) * | 1976-06-22 | 1985-10-23 | ソニー株式会社 | Magnetic recording media and their manufacturing method |
JPS54113422A (en) * | 1978-02-22 | 1979-09-05 | Shionogi & Co Ltd | Hemagglutinin of haemophilus gallinarum |
-
1991
- 1991-08-06 IL IL99097A patent/IL99097A0/en unknown
- 1991-08-07 ZA ZA916237A patent/ZA916237B/en unknown
- 1991-08-08 DE DE69110997T patent/DE69110997T2/en not_active Expired - Fee Related
- 1991-08-08 EP EP91202039A patent/EP0475478B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1991-08-13 CA CA002049129A patent/CA2049129A1/en not_active Abandoned
- 1991-08-14 MX MX9100654A patent/MX9100654A/en not_active IP Right Cessation
- 1991-08-28 AU AU83474/91A patent/AU640516B2/en not_active Ceased
- 1991-08-29 US US07/751,492 patent/US5240705A/en not_active Expired - Fee Related
- 1991-09-03 NZ NZ239654A patent/NZ239654A/en unknown
- 1991-09-04 HU HU912864A patent/HU210851B/en not_active IP Right Cessation
- 1991-09-04 CN CN91108663A patent/CN1059471A/en active Pending
- 1991-09-04 JP JP3224128A patent/JPH0592929A/en active Pending
- 1991-09-04 KR KR1019910015409A patent/KR920006004A/en not_active Application Discontinuation
-
1995
- 1995-06-29 HU HU95P/P00562P patent/HU211829A9/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0592929A (en) | 1993-04-16 |
CN1059471A (en) | 1992-03-18 |
MX9100654A (en) | 1992-06-05 |
DE69110997T2 (en) | 1995-12-07 |
HU210851B (en) | 1995-08-28 |
AU640516B2 (en) | 1993-08-26 |
EP0475478B1 (en) | 1995-07-05 |
US5240705A (en) | 1993-08-31 |
HUT61488A (en) | 1993-01-28 |
IL99097A0 (en) | 1992-07-15 |
EP0475478A1 (en) | 1992-03-18 |
NZ239654A (en) | 1993-01-27 |
CA2049129A1 (en) | 1992-03-06 |
HU912864D0 (en) | 1992-01-28 |
KR920006004A (en) | 1992-04-27 |
ZA916237B (en) | 1992-05-27 |
AU8347491A (en) | 1992-03-12 |
DE69110997D1 (en) | 1995-08-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Verstreate et al. | Outer membrane proteins of Brucella abortus: isolation and characterization | |
US8703468B2 (en) | Porcine circovirus type 2B isolate and uses thereof | |
EP0413378B1 (en) | Escherichia coli vaccine | |
HU211829A9 (en) | Haemophilus paragallinarum vaccine | |
WO2006106424A2 (en) | Formulations and process for production of bordetella bronchiseptica p68 antigen and vaccines | |
US20080286303A1 (en) | Multi-component vaccine comprising at least two antigens from haemophilus influenzae to protect against disease | |
NO175735B (en) | Method of Preparation of Pasteurella Vaccine | |
US5593679A (en) | Poultry vaccine against E. coli air sac inflammation and septicaemia | |
MX2010010614A (en) | Compositions, methods and kits. | |
EP0259324A1 (en) | Mastitis vaccine. | |
CN111447946A (en) | Vaccine for protection against streptococcus suis | |
WO1993010815A1 (en) | Non-capsulated mutants of bacteria useful as vaccines | |
CN115243715A (en) | Vaccine for protection against serotype 9, serotype 16 streptococcus suis | |
ES2211866T3 (en) | PASTEURELLA HAEMOLYTICA BACTERINE TOXOID VACCINE TYPE A-1. | |
EP4065163A1 (en) | Triple vaccine against avibacterium paragallinarum and avian encephalomyelitis virus and fowl pox virus | |
Cho et al. | Safety and efficacy testing of a novel multivalent bovine bacterial respiratory vaccine composed of five bacterins and two immunogens | |
JP2002538169A (en) | Multicomponent vaccine containing at least three antigens for protecting against diseases caused by Haemophilus influenzae | |
JPH02501732A (en) | swine dysentery vaccine | |
WO2023011812A1 (en) | A vaccine for protection against streptococcus suis of various serotypes | |
WO2023011810A1 (en) | A vaccine for protection against streptococcus suis of various serotypes | |
TW202214294A (en) | Novel pasteurella multocida strains and vaccines having hyac and nanp deletions | |
KR20210120898A (en) | Novel porcine epidemic diarrhea virus isolate and use thereof | |
CN114573708A (en) | Avibacterium paragallinarum HA fusion protein and tripolymer thereof, vaccine composition prepared from avibacterium paragallinarum HA fusion protein, preparation method and application of vaccine composition | |
CN113354742A (en) | Brucella gene engineering subunit vaccine and preparation method and application thereof | |
SEYFIABAD et al. | Vaccination of Chicks with an Experimental Oil-emulsion Vaccine against Infectious Bursal Disease Virus |