FR3044017A1 - Procede de transfection transitoire pour la production retrovirale - Google Patents

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Abstract

L'invention concerne des chromosomes artificiels bactériens (BAC) comprenant des séquences d'acide nucléique rétroviral codant pour : les protéines gag et pol et une protéine env ou un substitut fonctionnel de celle-ci, dans lesquels chacune des séquences d'acide nucléique rétroviral sont disposées sous la forme d'hybrides d'expression individuels à l'intérieur du BAC. L'invention concerne aussi des utilisations et des procédés de transfection transitoire utilisant lesdits BAC.

Description

DOMAINE DE L'INVENTION L'invention concerne des vecteurs d'acide nucléique, en particulier des chromosomes artificiels bactériens, comprenant des gènes nécessaires à la production rétrovirale et leurs utilisations. L'invention concerne également des procédés de production de particules de vecteur rétroviral défectif en réplication comprenant les vecteurs d'acide nucléique selon l'invention.
ARRIERE PLAN DE L'INVENTION
En thérapie génique, du matériel génétique est administré à des cellules endogènes chez un sujet ayant besoin d'un traitement. Le matériel génétique peut introduire de nouveaux gènes chez le sujet ou bien introduire des copies supplémentaires de gènes préexistants, ou bien introduire différentes allèles ou variantes des gènes qui sont présents chez le sujet. Les systèmes de vecteurs viraux sont proposés comme procédé d'administration efficace de gènes pour une utilisation en thérapie génique (Verma et Somia (1997) Nature 389 : 239- 242) .
En particulier, ces vecteurs viraux sont à base de membres de la famille des rétrovirus du fait de leur capacité à intégrer leur héritage génétique dans le génome de l'hôte. Les vecteurs rétroviraux sont conçus pour garder les protéines essentielles nécessaires à l'emballage et à la distribution du génome rétroviral, mais toute protéine accessoire non essentielle, y compris celle responsable de leur profil pathogène, est éliminée. Les exemples de vecteurs rétroviraux comprennent les vecteurs lentiviraux, comme ceux à base du virus de l'immunodéficience humaine de type 1 (VIH-1), qui sont largement utilisés car ils sont capables de s'intégrer dans des cellules non prolifératives.
Actuellement, la majorité des vecteurs viraux sont produits par co-transfection transitoire de gènes viraux dans une lignée cellulaire hôte. Les gènes viraux sont introduits en utilisant des plasmides bactériens qui existent dans la cellule hôte seulement pendant un laps de temps limité car les gènes viraux restent sur les plasmides et ne sont pas intégrés dans le génome. En tant que tel, le matériel génétique transfecté transitoirement n'est pas transmis aux générations suivantes au cours de la division cellulaire.
Cependant, il existe de nombreux problèmes associés aux procédés de transfection transitoire actuellement utilisés, comme la variabilité d'un lot à un autre, le coût élevé des réactifs de transfection et la difficulté de maintenir le contrôle qualité (voir Segura et al. (2013) Expert Opin. Biol. Ther. 13(7) : 987-1011). Le procédé de transfection lui-même nécessite également beaucoup d'opérations et son passage à l'échelle supérieure constitue un défi. Il s'avère également difficile d'éliminer les impuretés plasmidiques qui sont charriées au cours de la préparation du vecteur (voir Pichlmair et al. (2007) J. Virol. 81(2) : 539-47).
Un objet de la présente invention vise par conséquent à proposer un procédé amélioré de transfection transitoire qui permet de surmonter un ou plusieurs des inconvénients associés aux procédés existants.
RESUME DE L'INVENTION
Les présents inventeurs ont développé un nouveau mode de production de vecteurs rétroviraux qui implique l'utilisation de vecteurs d'acide nucléique comprenant une origine de réplication non mammifère et ont la capacité de contenir au moins 25 kilobases (kb) d'ADN, comme les chromosomes artificielles bactériens, comprenant la totalité des gènes rétroviraux essentiels pour la production d'un vecteur rétroviral. Les procédés actuels de transfection transitoire nécessitent l'utilisation de 3 à 4 plasmides séparés porteurs des différents composants requis pour la production du rétrovirus à introduire dans la cellule hôte, ce qui prend énormément de temps et cause des problèmes liés à la pression de la sélection. Le procédé proposé par les présents inventeurs incorpore la totalité des gènes rétroviraux essentiels sur un unique hybride qui peut être ensuite introduit dans une cellule hôte, ce qui réduit la quantité de matériel nécessaire pour transduire la cellule hôte aux fins de la production du vecteur viral. Par conséquent, cela réduit le coût de matières car un unique vecteur seulement est utilisé, à l'inverse des procédés antérieurs qui utilisent de multiples vecteurs plasmidiques. L'utilisation d'un vecteur d'acide nucléique comprenant une origine de réplication non mammifère et possédant la capacité de contenir au moins 25 kilobases (kb) d'ADN (c'est-à-dire un gros ADN hybride) présente plusieurs avantages. En premier lieu, les vecteurs peuvent être d'abord manipulés dans des cellules non mammifères (par exemple cellules microbiennes, comme les cellules bactériennes) à l'inverse des cellules mammifères hôtes, ce qui les rend plus faciles à utiliser (par exemple des chromosomes artificiels bactériens peuvent être d'abord manipulés dans E. coli) . Une fois que le vecteur d'acide nucléique a été préparé, il peut être introduit dans une cellule hôte, comme une cellule hôte mammifère, pour la production d'un vecteur rétroviral. L'utilisation des vecteurs d'acide nucléique de la présente invention apporte par conséquent des avantages en termes de génération de vecteurs rétroviraux.
Par conséquent, selon un premier aspect de l'invention, on propose un chromosome artificiel bactérien (BAC) caractérisé en ce que ledit BAC comprend des séquences d'acide nucléique rétroviral codant pour : les protéines gag et pol, et une protéine env ou un substitut fonctionnel de celle-ci dans lequel chacune des séquences d'acide nucléique rétroviral est disposée sous la forme d'hybrides d'expression individuels à l'intérieur du BAC.
Selon un autre aspect de l'invention, on propose le BAC tel que défini dans le présent fascicule pour une utilisation dans un procédé de production de particules de vecteur rétroviral.
Selon encore un autre aspect de l'invention, on propose un procédé de production d'une particule de vecteur rétroviral défectif en réplication, comprenant : (a) l'introduction du BAC tel que défini dans le présent document dans une culture de cellules hôtes mammifères ; et (b) la culture des cellules hôtes mammifères dans des conditions permettant de produire la particule de vecteur rétroviral défectif en réplication.
Selon encore un autre aspect de l'invention, on propose une particule de vecteur rétroviral défectif en réplication obtenue par le procédé tel que défini dans le présent fascicule.
BREVE DESCRIPTION DES FIGURES FIGURE 1 : Guide étape par étape pour la construction de BACpack-WTGP-277delU5 et de BACpack-SYNGP-277delU5. FIGURE 2 : Comparaison des titres viraux obtenus dans 1 'exemple 2. 106 cellules HEK293T ont été ensemencées dans une plaque à 6 puits. Le jour suivant, les cellules ayant adhéré ont été transfectées en utilisant la PEI selon les instructions des fabricants. Les puits ont été transfectés soit avec un total de 4 pg d'hybrides d'emballage de lentivirus de type sauvage (WT) constitué de pMDL.gp (GagPol), pMD.G (VSVg), pK-Rev (Rev) et pCCL.277 (vecteur de transfert GFP) soit avec 2 pg de BACpack (un unique hybride BAC contenant GagPol, VSVg et Rev) plus 2 pg du vecteur de transfert eGFP sur un plasmide séparé. 48 heures après la transfection, le surnageant a été récolté, filtré à travers un filtre de 0,22 pm et stocké à -80°C pendant un minimum de 4 heures. Les cellules HEK293T ont été ensemencées pour la transduction à 105 cellules par puits dans une plaque à 24 puits. Le jour suivant, le surnageant viral a été appliqué sur les cellules dans des dilutions en série avec Polybrene à une concentration finale de 8 pg/ml. 3 jours après la transduction, les cellules ont été récoltées par traitement à la trypsine et analysées au niveau de la GFP par FACS. Le titre viral a été calculé en unités de transduction (TU)/ml, calculées selon l'équation suivante : (cellules GFP positives/lOO) x facteur de dilution x nombre de cellules transduites.
Les titres viraux ont été comparés sur le diagramme en bâtons. Toutes les incubations ont été réalisées à 37°C et à 5 % de C02. Les milieux utilisés ont été du DMEM supplémenté avec du FBS à 10 % et 1 /ig/ml de doxycycline dans l'échantillon BACpack + transfert. FIGURE 3 : Transfection transitoire de BACpack dans des cellules HEK293T adhérentes.
Des cellules HEK293T ont été transfectées transitoirement avec BACpackWTGP-277delU5, BACpackSYN-277delU5 ou le système à 4 plasmides standard en utilisant le procédé au phosphate de calcium. 16 heures après la transfection, les conditions +Dox ont été induites pendant 24 heures avec 1 μg/ml de doxycycline. Le surnageant viral a été récolté 48 heures après la transfection, filtré à travers un filtre de 0,22 μτα et titré par transduction des cellules HEK293T. Les cellules transduites GFP positives ont été utilisées pour calculer les unités de transduction/ml (TU/ml).
DESCRIPTION DETAILLEE DE L'INVENTION DEFINITIONS
Sauf stipulation contraire, tous les termes techniques et scientifiques utilisés dans le présent fascicule ont la même signification que celle communément admise par l'homme du métier dont fait partie la présente invention.
Le terme « comprenant » englobe « y compris » ou « constitué », par exemple une composition « comprenant » X peut se composer exclusivement de X ou peut inclure quelque chose de plus, par exemple X + Y.
Le terme « constitué essentiellement de » limite 1'étendue de la caractéristique aux matières ou étapes spécifiées et à celles qui n'affectent pas matériellement les caractéristiques basiques de la caractéristique revendiquée.
Le terme « constitué de » exclut la présence de tout composant additionnel.
Le terme « environ » en relation avec une valeur numérique x signifie par exemple x + 1Q %, 5 %, 2 % ou 1 %.
Le terme « vecteur » ou « vecteur d'acide nucléique » désigne un véhicule qui est capable de porter artificiellement un matériel génétique étranger (à savoir exogène) dans une autre cellule, où il peut être répliqué et/ou exprimé. Les exemples de vecteurs comprennent les vecteurs d'acide nucléique non mammifère, comme les chromosomes artificiels bactériens (BAC), les chromosomes artificiels de levure (YAC), les chromosomes artificiels dérivés de PI (PAC), les cosmides ou les fosmides. Lés autres exemples de vecteurs comprennent les vecteurs viraux comme les vecteurs rétroviraux et lentiviraux, qui sont d'un intérêt particulier dans la présente demande. Les vecteurs lentiviraux, comme ceux à base du virus de l'immunodéficience humaine de type 1 (VIH-l), sont largement utilisés puisqu'ils sont capables de s'intégrer dans des cellules non prolifératives. Les vecteurs viraux peuvent être rendus défectifs en réplication en cassant leur génome viral en parties séparées, par exemple en le plaçant sur des plasmides séparés. Par exemple, ce que l'on appelle la première génération de vecteurs lentiviraux, développée par le Salk Instituée for Biological Studies, a été construite sous la forme d'un système d'expression à trois plasmides constitué d'une cassette d'expression d'emballage, de la cassette d'expression d'enveloppe et de la cassette d'expression du vecteur. Le « plasmide d'emballage » contient la totalité des séquences gag-pol, les séquences régulatrices (tat et rev) et accessoires (vif, vpr, vpu, nef) . Le « plasmide d'enveloppe » contient la glycoprotéine du virus de la stomatite vésiculaire (VSVg) en substitution de la protéine d'enveloppe du VIH-1 native, sous le contrôle d'un promoteur du cytomégalovirus (CMV). Le troisième plasmide (le « plasmide de transfert ») porte les répétitions terminales longues (LTR), la séquence d'encapsulation (ψ) , la séquence élément de réponse Rev (RRE) et le promoteur CMV afin d'exprimer le transgène à l'intérieur de la cellule hôte.
La deuxième génération de vecteurs lentiviraux a été caractérisée par la délétion des séquences de virulence vpr, vif, vpu et nef. Le vecteur d'emballage a été réduit aux gènes gag, pol, tat et rev, accroissant par conséquent la sûreté du système.
Pour améliorer le système lentiviral, les vecteurs de troisième génération ont été conçus en éliminant le gène tat de l'hybride d'emballage et en inactivant les LTR de la cassette du vecteur, ce qui a donc réduit les problèmes relatifs aux effets de la mutagenèse insertionnelle.
Les différentes générations de lentivirus sont décrites dans les références suivantes : Première génération : Naldini et al. (1996) Science 272(5259) : 263-7 ; Deuxième génération : Zufferey et al. (1997) .Nat. Biotechnol. 15(9) : 871-5 ; Troisième génération : Dull et al. (1998) J. Vixol, 72(11) : 8463-7. Un récapitulatif du développement des vecteurs lentiviraux se trouve dans Sakuma et al. (2012) Biochem. «J. 443(3) : 603-18 et Picanço-Câstro et al. (2008) Exp. Opin. Therap. Patents 18 (5) :525-539.
Le terme « origine de réplication non mammifère » désigne une séquence d'acide nucléique où la réplication est initiée et qui est dérivée d'une source non mammifère. Cela permet aux vecteurs d'acide nucléique de l'invention de se répliquer de manière stable et de se ségréger aux côtés des chromosomes endogènes dans une cellule hôte appropriée (par exemple une cellule microbienne, comme une cellule bactérienne ou de levure) de manière à être transmis s ibl es à la descendance de la cellule hôte, sauf si la cellule hôte est une cellule hôte mammifère. Dans les cellules hôtes mammifères, les vecteurs d'acide nucléique ayant des origines de réplication non mammifères seront soit intégrés dans les chromosomes endogènes de la cellule hôte mammifère, soit perdus lors de la réplication de la cellule hôte mammifère. Par exemple, les vecteurs d'acide nucléique ayant des origines de réplication non mammifères comme les chromosomes artificiels bactériens (BAC), le chromosome artificiel dérivé de PI (PAC) , les cosmides ou fosmides, sont capables de se répliquer de manière stable et de se ségréger aux côtés des chromosomes endogènes dans des cellules bactériennes (comme E. coli), mais s'ils sont introduits dans des cellules hôtes mammifères, le BAC, PAC, cosmide ou fosmide sera soit intégré, soit perdu lors de la réplication de la cellule hôte mammifère. Les chromosomes artificiels de levure (YAC) sont capables de se répliquer de manière stable et de se ségréger aux côtés des chromosomes endogènes dans des cellules de levure, mais s'ils sont introduits dans des cellules hôtes mammifères, les YAC seront soit intégrés, soit perdus lors de la réplication de la cellule hôte mammifère. Par conséquent, dans ce contexte, les vecteurs d'acide nucléique de l'invention font office de réservoirs d'ADN (c'est-à-dire pour les gènes essentiels à la production rétrovirale) qui peuvent être facilement transférés dans des cellules de mammifères afin de générer des particules de vecteurs rétroviraux. Les exemples d'origines de réplication non mammifères comprennent : les origines de réplications bactériennes, comme oriC, oriV ou oriS ; les origines de réplication virales, comme l'origine de réplication SV40 ; ou les origines de réplication de la levure connues sous le nom de séquences de réplication autonome (éléments ARS).
Les vecteurs d'acide nucléique de la présente invention comprennent une origine de réplication non mammifère et sont capables de contenir au moins 25 kilobases (kb) d'ADN. Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique possède la capacité de contenir au moins 30, 35, 40, 45, 50, 55, 60, 65, 70, 75, 80, 85, 90, 95, 100, 110, 120, 130, 140, 150, 160, 170, 180, 190, 200, 210, 220, 230, 240, 250, 260, 270, 280, 290, 300, 310, 320, 330, 340 ou 350 kb d'ADN. Il est bien entendu que les références à la « capacité de contenir » ont leur sens usuel et impliquent que la limite supérieure pour la taille de l'insert pour le vecteur d'acide nucléique n'est pas inférieure à la taille revendiquée (c'est-à-dire n'est pas inférieure à 25 kb d'ADN).
Le but de la présente invention est d'inclure les gènes essentiels à l'emballage rétroviral dans un unique hybride (c'est-à-dire le vecteur d'acide nucléique). Par conséquent, les vecteurs d'acide nucléique de l'invention doivent être capable de contenir de gros inserts d'ADN. Pour éviter tout doute, il est bien entendu que les références à des « vecteurs d'acide nucléique » ou « chromosomes artificiels » ne se rapportent pas à des plasmides bactériens naturels (par exemple comme les plasmides actuellement utilisés dans les procédés de transfection transitoire) car ils ne sont pas capables de contenir au moins 25 kb d'ADN. L'insert de taille maximale qu'un plasmide peut contenir est environ 15 kb. Ces vecteurs d'acide nucléique ne désignent également pas des bactériophages, lesquels ne contiennent en général que des inserts maximaux de 5 à 11 kb. Par conséquent, dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique de l'invention n'est pas un plasmide, ni un bactériophage, ni un épisome.
Le terme « chromosomes endogènes » désigne des chromosomes génomiques se trouvant dans la cellule hôte avant la génération ou l'introduction d'un vecteur d'acide nucléique exogène, comme un chromosome artificiel bactérien.
Les termes « transfection », « transformation » et « transduction », tels qu'utilisés dans le présent fascicule, peuvent être utilisés pour décrire l'insertion du vecteur non mammifère ou viral dans une cellule cible. L'insertion d'un vecteur est usuellement appelée transformation pour les cellules bactériennes et transfection pour les cellules eucaryotes, bien que l'insertion d'un vecteur viral puisse aussi être nommée transduction. L'homme du métier connaîtra les différents procédés de transfection non virale communément utilisés, qui comprennent mais sans y être limités 1''utilisation de procédés physiques (par exemple électroporation, compression cellulaire, sonoporation, transfection optique, fusion de protoplaste, impaléfection, magnétofection, pistolet à gène ou bombardement de particules), de réactifs chimiques (par exemple phosphate de calcium, composés organiques fortement ramifiés ou polymères cationiques) ou lipides cationiques (par exemple lipofection). Plusieurs procédés de transfection nécessitent le contact de solutions d'ADN de plasmide avec les cellules qui sont ensuite cultivées.
Le terme « promoteur » désigne une séquence qui entraîne l'expression génique. Afin d'entraîner un haut niveau d'expression, il peut être bénéfique d'utiliser un promoteur fortement efficace, comme un promoteur non rétroviral fortement efficace. Les exemples de promoteurs appropriés peuvent comprendre un promoteur tel que le promoteur précoce immédiat du cytomégalovirus (CMV) humain, le promoteur SFFV (spleen focus-forming virus), le promoteur du virus du sarcome de Rous (RSV) ou le promoteur du facteur 1-alpha d'élongation humain (pEF).
Le terme « signal polyA » désigne une séquence signal de polyadénylation, par exemple en place 3' d'un transgène, qui permet à des facteurs hôtes d'ajouter une queue polyadénosine (polyA) à la fin de l'ARNm naissant lors de la transcription. La queue polyA est un étirement allant jusqu'à 300 ribonucléotides d'adénosine qui protège l'ARNm de la dégradation enzymatique et facilite également la traduction. Par conséquent, les vecteurs d'acide nucléique de la présente invention peuvent inclure une séquence signal polyA comme les signaux polyA de la bêta globine humaine ou de la bêta globine du lapin, les signaux polyA précoces ou tardifs du virus simien 40 (SV40), le signal polyA de l'insuline humaine, ou le signal polyA de l'hormone de croissance bovine. Dans un mode de réalisation, la séquence signal polyA est le signal polyA de bêta globine humaine.
Le terme « séquence d'intron » désigne une séquence de nucléotide qui est retirée du produit génique final par épissage de l'ARN. L'utilisation d'un intron en aval de la région de 1'activateur/du promoteur et en amont de l'insert d'ADNc s'est révélée accroître le taux d'expression du gène. La hausse de l'expression dépend en particulier de l'insert d'ADNc. Par conséquent, le vecteur d'acide nucléique de la présente invention peut comprendre des introns comme 1'intron de la bêta globine humaine, 1'intron II de la bêta globine du lapin, ou un intron de bêta globine humaine-immunoglobine chimérique. Dans un mode de réalisation, 1'intron est un intron de la bêta globine humaine et/ou un intron II de la bêta globine du lapin.
Le terme « lignée cellulaire d'emballage » désigne une lignée cellulaire qui est capable d'exprimer la protéine gag et pol et des gènes de la glycoprotéine d'enveloppe. En variante, le terme « lignée cellulaire productrice » désigne une lignée cellulaire d'emballage qui est aussi capable d'exprimer un vecteur de transfert contenant un transgène d'intérêt.
Le terme « transfecté transitoirement » désigne des cellules transfectées où les acides nucléiques cibles (c'est-à-dire les gènes rétroviraux) ne sont pas incorporés de manière permanente dans le génome cellulaire. Par conséquent, les effets des acides nucléiques à l'intérieur de la cellule ne durent qu'un laps de temps court.
VECTEURS D'ACIDE NUCLEIQUE
Selon un aspect de l'invention, on propose un vecteur d'acide nucléique comprenant une origine de réplication non mammifère et ayant la capacité de contenir au moins 25 kilobases (kb) d'ADN, caractérisé en ce que ledit vecteur d'acide nucléique comprend des séquences d'acide nucléique rétroviral codant pour : les protéines gag et pol, et une protéine env ou un substitut fonctionnel de celle- ci .
En particulier, chacune des séquences d'acide nucléique rétroviral peut être disposée sous la forme d'hybrides d'expression individuels à l'intérieur du vecteur d'acide nucléique.
Les présents inventeurs ont découvert que les vecteurs d'acide nucléique décrits dans le présent document pouvaient être utilisés pour produire des particules de vecteur rétroviral qui éliminent les difficultés antérieures liées aux procédés de production des vecteurs rétroviraux. Par exemple, en incluant la totalité des gènes rétroviraux essentiels dans le vecteur d'acide nucléique, les gènes rétroviraux peuvent être ensuite introduits dans une cellule hôte de mammifère en une seule étape. Par conséquent, l'utilisation d'un vecteur d'acide nucléique, telle que proposée dans le présent document, permet une production de vecteurs plus rapide et réduit la quantité de matériel requise pour la production des vecteurs rétroviraux.
Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend, en plus, des séquences d'acide nucléique qui codent pour l'ARN génomique d'une particule de vecteur rétroviral. Il est bien entendu que 1'ARN génomique de la particule de vecteur rétroviral est usuellement inclus sur le « vecteur de transfert » utilisé dans les procédés de transfection transitoire. Le plasmide du vecteur de transfert contient un promoteur (comme CMV) , la LTR 3' (qui peut être ou ne pas être une LTR 3' à autoinactivation (c'est-à-dire SIN), la LTR 5' (qui peut contenir ou ne pas contenir la région U5) , la séquence d'encapsidation (ψ) et potentiellement, le transgène lié à un promoteur.
Dans un mode de réalisation, des copies multiples de l'ARN génomique de la particule de vecteur rétroviral (c'est-à-dire le vecteur de transfert) sont incluses dans le vecteur d'acide nucléique. On s'attend à ce que de multiples copies du vecteur de transfert produisent un titre de vecteur viral plus élevé. Par exemple, le vecteur d'acide nucléique peut comprendre deux copies ou plus, comme trois, quatre, cinq, six, sept, huit, neuf ou dix copies ou plus de l'ARN génomique de la particule de vecteur rétroviral (c'est-à-dire du vecteur de transfert).
Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique contient un site ou une pluralité de sites de recombinaison. L'enzyme recombinase catalyse la réaction de recombinaison entre deux sites de recombinaison.
Plusieurs types des systèmes de recombinaison spécifique à un site sont connus dans l'art et tout système de recombinaison approprié peut être utilisé dans la présente invention. Par exemple, dans un mode de réalisation, le ou les sites de recombinaison sont choisis ou dérivés du système int/att du phage lambda, du système Cre/lox du bactériophage PI, du système FLP/FRT de la levure, du système recombinase Gin/gix du phage Mu, du système recombinase Cin, du système recombinase Pin de E. coli et du système R/RS du plasmide pSRl, ou de toute combinaison de ceux-ci. Dans un autre mode de réalisation, le site de recombinaison est un site att (par exemple provenant du phage lambda) , où le site att permet une intégration orientée en présence d'une intégrase lambda. Il est bien entendu que la référence à l'intégrase lambda comprend les références aux intégrases mutantes qui sont toujours compatibles avec le système int/att, par exemple les intégrases lambda modifiées, décrites dans le document WO 2002/097059.
Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique est choisi parmi : un chromosome artificiel bactérien (BAC), un chromosome artificiel de levure (YAC), un chromosome artificiel dérivé de PI (PAC), un fosmide ou un cosmide. Dans un mode de réalisation préféré, le vecteur d'acide nucléique est un chromosome artificiel bactérien (BAC).
Chromosomes artificiels bactériens
Selon un aspect de l'invention, on propose un chromosome artificiel bactérien (BAC), caractérisé en ce que ledit BAC comprend des séquences d'acide nucléique rétroviral codant pour : les protéines gag et pol, et une protéine env ou un substitut fonctionnel de celle-ci dans lequel chacune des séquences d'acide nucléique rétroviral est disposée sous la forme d'hybrides d'expression individuels à l'intérieur du BAC.
Le terme « chromosome artificiel bactérien » ou « BAC » désigne un ADN hybride dérivé de plasmides bactériens qui est capable de contenir un gros insert d'ADN exogène. Ils peuvent en général contenir un insert d'ADN maximal d'environ 350 kb. Les BAC ont été développés à partir du plasmide de la fertilité fonctionnelle bactérienne bien caractérisé (plasmide F) qui contient des gènes de répartition qui favorisent la distribution régulière des plasmides après la division cellulaire bactérienne. Cela permet aux BAC d'être répliqués de manière stable et de subir une ségrégation aux côtés des génomes bactériens endogènes (comme E. coli). Le BAC contient usuellement au moins une copie d'une origine de réplication (comme le gène oriS ou oriV) , le gène repE (pour la réplication du plasmide et la régulation du nombre de copies) et des gènes de répartition (comme sopA, sopB, parA, parB et/ou parC), ce qui garantit le maintien stable du BAC dans les cellules bactériennes. Les BAC sont naturellement circulaires et super-enroulés, ce qui les rend plus faciles à récupérer que les chromosomes artificiels linéaires comme les YAC. Ils peuvent être aussi introduits dans des cellules hôtes bactériennes relativement facilement, en utilisant des procédés simples tels que 1'électroporation.
Dans un mode de réalisation, le chromosome artificiel bactérien comprend un gène oriS. Dans un mode de réalisation, le chromosome artificiel bactérien comprend un gène repE. Dans un mode de réalisation, le chromosome artificiel bactérien comprend des gènes de répartition. Dans un autre mode de réalisation, les gènes de répartition sont choisis parmi sopA, sopB, parA, parB et/ou parC. Dans encore un autre mode de réalisation, le chromosome artificiel bactérien comprend un gène sopA et sopB.
Le BAC pour une utilisation dans la présente invention peut être obtenu auprès de sources commerciales, par exemple le BAC pSMART de LUCIGEN™ (voir n° d'entrée du Génome EU101022.1 pour la séquence squelette complète). Ce BAC contient le système « copie-plus » du L-arabinose qui contient également l'origine de réplication de copie du milieu oriV, qui est active seulement en présence de la protéine de réplication TrfA. Le gène pour TrfA peut être incorporé dans le génome des cellules hôtes bactériennes sous le contrôle du promoteur inductible du L-arabinose araC-PBAD (voir Wild et al. (2002) Genome Res. 12(9) : 1434- 1444). L'addition du L-arabinose induit l'expression de TrfA, qui active oriV, ce qui provoque une réplication du plasmide pouvant aller jusqu'à 50 copies par cellule.
Chromosomes artificiels de la levure
Le terme « chromosome artificiel de la levure » ou « YAC » désigne des chromosomes dans lesquels l'ADN de la levure est incorporé dans des plasmides bactériens. Ils contiennent une séquence de réplication autonome (ARS) (c'est-à-dire une origine de réplication), un centromère et des télomères. Au contraire des BAC, le YAC est linéaire et contient donc des télomères de levure à chaque extrémité du chromosome afin de protéger ses extrémités de la dégradation puisqu'il se transmet à la descendance de la cellule hôte. Les YAC peuvent contenir une gamme de tailles d'insert ADN, à peu près de 100 à 2000 kb.
Chromosomes artificiels dérivés de Pl
Le terme « chromosome artificiel dérivé de Pl » ou « PAC » désigne des ADN hybrides dérivés de l'ADN du bactériophage Pl et du plasmide F bactérien. Ils peuvent contenir usuellement un insert d'ADN maximal d'environ 100 à 300 kb et sont utilisés comme vecteurs de clonage dans E. coli. Les PAC présentent des avantages similaires aux BAC, comme celui de se purifier facilement et de pouvoir s'introduire dans des cellules hôtes bactériennes.
Cosmides et fosmides
Le terme « cosmide » désigne des ADN hybrides dérivés de plasmides bactériens qui contiennent, en plus, des sites cos dérivés du bactériophage lambda. Les cosmides contiennent en général une origine de réplication bactérienne (comme oriV) , un marqueur de sélection, un site de clonage et au moins un site cos. Les cosmides peuvent usuellement accepter un insert d'ADN maximal de 40 à 45 kb. Les cosmides se sont avérés être plus efficaces dans l'infection des cellules de E. coli que les plasmides bactériens standards. Le terme « fosmides » désigne des vecteurs d'acide nucléique non mammifère qui sont similaires aux cosmides sauf qu'ils sont à base du plasmide F bactérien. En particulier, ils utilisent l'origine de réplication du plasmide F et des mécanismes de répartition qui permettent le clonage de gros fragments d'ADN. Les fosmides peuvent usuellement accepter un insert d'ADN maximal de 40 kb.
RETROVIRUS
Les rétrovirus sont une famille de virus qui contiennent un ARN génomique simple brin pseudo-diploïde. Ils codent pour une transcriptase inverse qui produit de l'ADN à partir de l'ARN génomique, qui peut être ensuite inséré dans 1'ADN de la cellule hôte. L'invention décrite dans le présent document peut être utilisée pour produire des particules de vecteur rétroviral défectif en réplication. La particule de vecteur rétroviral de la présente invention peut être choisie parmi ou dérivée de tout rétrovirus approprié.
Dans un mode de réalisation, la particule de vecteur rétroviral est dérivée ou choisie parmi un lentivirus, un alpha-rétrovirus, un gamma-rétrovirus ou un rétrovirus mousseux, comme un lentivirus ou un gamma-rétrovirus, en particulier un lentivirus. Dans un autre mode de réalisation, la particule de vecteur rétroviral est un lentivirus choisi dans le groupe constitué du VIH-1, VIH-2, VIS, VIF, VAIE et Visna. Les lentivirus sont capables d'infecter des cellules qui ne se divisent pas (c'est-à-dire quiescentes), ce qui en fait des vecteurs rétroviraux intéressants pour la thérapie génique. Dans encore un autre mode de réalisation, la particule de vecteur rétroviral est le VIH-1 ou est dérivée du VIH-1. La structure génomique de certains rétrovirus peut se trouver dans l'art. Par exemple, des détails sur le VIH-1 peuvent se trouver auprès de la GenBank NCBI (n° d'entrée du Génome n° AF033819) . Le VIH-1 est l'un des rétrovirus les mieux compris et est par conséquent souvent utilisé comme vecteur rétroviral. Gènes rétroviraux
Les séquences d'acide nucléique communes à tous les rétrovirus peuvent être expliquées plus en détail comme suit : Répétitions terminales longues (LTR) : la structure basique d'un génome de rétrovirus comprend une LTR 5' et une LTR 3' entre ou à l'intérieur desquelles sont situés les gènes nécessaires à la production rétrovirale. Les LTR sont nécessaires pour l'intégration et la transcription rétrovirales. Elles peuvent aussi faire office de séquences promoteurs pour réguler l'expression des gènes rétroviraux (ce qui veut dire que ce sont des gènes à action cis) . Les LTR sont composées de trois sous-régions nommées U3, R, U5 : U3 est dérivée de la séquence unique à l'extrémité 3' de l'ARN, R est dérivée d'une séquence répétée aux deux extrémités de l'ARN ; et U5 est dérivée de la séquence unique à l'extrémité 5' de l'ARN. Par conséquent, dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend en plus une LTR 5' et 3'. Dans un autre mode de réalisation, la région U5 de la LTR 5' peut être délétée et remplacée par une queue polyA non VIH-1 (voir Hanawa et al. (2002) Mol. Ther. 5(3) : 242-51).
Afin de régler les problèmes de sécurité concernant la génération de virus compétents en réplication, un vecteur à auto-inactivation (SIN) a été développé par délétion d'une section dans la région U3 de la LTR 3', qui comprend la boîte TATA et des sites de liaison pour les facteurs de transcription Spl et NF-κΒ (voir Miyoshi et al. (1998) J. Virol. 72(10) :8150-7). La délétion est transférée à la LTR 5' après transcription inverse et intégration dans des cellules infectées, ce qui aboutit à l'inactivation transcriptionnelle de la LTR. Ceci est connu comme étant un système de vecteur à base de lentivirus à auto-inactivation qui peut être inclus dans la présente invention. Ψ : L 'encapsidation des ARN rétroviraux se produit en vertu d'une séquence ψ (psi) située au niveau de l'extrémité 5' du génome rétroviral. Il est aussi bien connu dans l'art que les séquences en aval de la séquence psi et s'étendant dans la région codante gag sont impliquées dans la production efficace de vecteurs rétroviraux (voir Cui et al. (1999) J. Virol. 73(7) : 6171- 6176). Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend en plus une séquence ψ (psi).
Site de liaison à l'amorce (PBS) : Le génome rétroviral contient un PBS qui est présent après la région U5 de la LTR 5'. Ce site se lie à l'amorce d'ARNt nécessaire pour l'initiation de la transcription inverse. Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend en plus une séquence PBS. PPT : Les génomes rétroviraux contiennent de courts étirements de purines, appelés tractus de polypurine (PPT) près de l'extrémité 3' du génome rétroviral. Ces PPT font office d'amorces d'ARN pour la synthèse de l'ADN à plus de brins au cours de la transcription inverse. Les rétrovirus complexes (tels que le VIH-1) contiennent un deuxième PPT localisé plus au centre (c'est-à-dire un tractus polypurine central (cPPT)) qui fournit un deuxième site pour l'initiation de la synthèse de l'ADN. Les vecteurs rétroviraux codant pour un cPPT se sont avérés avoir une transduction et une expression du transgène améliorées (voir Barry et al. (2001) Hum. Gene Ther. 12(9) :1103-8). Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend en plus une séquence PPT en 3' et/ou une séquence cPPT.
La structure génomique des régions non codantes décrites ci-dessus est bien connue de l'homme du métier. Par exemple, des détails sur la structure génomique des régions non codantes dans le VIH-1 peuvent se trouver dans la base de données GenBank NCBI, au n° d'entrée du Génome AF033819, ou pour HXB2 du VIH-1 (une souche de référence du VIH-1 communément utilisée) au n° d'entrée du Génome K03455. Dans un mode de réalisation, les régions non codantes sont dérivées des séquences disponibles sous le n° d'entrée du Génome K03455, par exemple à partir des paires de bases 454-1126 (pour R-U5-PBS-Gag), 7622-8479 (pour RRE) ou 7769-8146 (pour RRE), 4781-4898 (pour cPPT), 9015-9120 & 9521-9719 (pour dNEF-PPT-sinU3-R-U5).
Gag/pol : L'expression des gènes gag et pol est basée sur un décalage de traduction du cadre de lecture entre gag et gagpol. Les deux sont des polyprotéines qui sont clivées au cours de la maturation. Les protéines structurelles majeures de matrice, capside et nucléocapside du vecteur rétroviral, sont codées par gag. Le gène pol code pour les enzymes rétrovirales : i) transcriptase inverse, essentielle pour la transcription inverse de l'ARN génomique rétroviral en un ADN double brin, ii) intégrase, qui permet l'intégration de l'ADN génomique rétroviral dans un chromosome de la cellule hôte, et iii) protéase qui clive la polyprotéine synthétisée afin de produire les protéines matures et fonctionnelles du rétrovirus. Dans un mode de réalisation, la séquence d'acide nucléique rétroviral codant les protéines gag et pol est dérivée de la séquence HXB2 du VIH-1, qui est disponible au n° d'entrée du Génome K03455, par exemple à partir des paires de bases 790-5105.
Env : Le gène env (« enveloppe ») code pour la surface et les composants transmembranaires de l'enveloppe rétrovirale (par exemple glycoprotéines gpl20 et gp41 du VIH-1) et est impliqué dans la fusion membranaire de la cellule rétrovirale. Afin d'élargir le tropisme des tissus du vecteur rétroviral, les vecteurs rétroviraux décrits ici peuvent être pseudotypés avec une protéine d'enveloppe provenant d'un autre virus. Le pseudotypage désigne le procédé par lequel la gamme des cellules hôtes des vecteurs rétroviraux, y compris des vecteurs lentiviraux, peut être étendue ou modifiée en changeant les glycoprotéines (GP) sur les particules de vecteur rétroviral (par exemple en utilisant les GP obtenues ou dérivées d'autres virus à enveloppe ou en utilisant des GP synthétiques/artificielles). La glycoprotéine la plus communément utilisée pour le pseudotypage des vecteurs rétroviraux est la GP du virus de la stomatite vésiculaire (VSVg) , du fait de son large tropisme et de la haute stabilité de ses particules de vecteur. Cependant/ il est bien compris par 1'homme du métier que d'autres glycoprotéines peuvent être utilisées pour le pseudotypage (voir Cronin et al. (2005) Curr. Gene Ther. 5 (4) :387-398). Le choix du virus utilisé pour le pseudotypage peut aussi dépendre du type de cellule et/ou d'organe à cibler car certains pseudotypes se sont révélés avoir des préférences pour un type de tissus.
Dans un mode de réalisation, la protéine env ou un substitut fonctionnel de celle-ci est obtenue ou dérivée d'un virus choisi parmi un vésiculovirus (par exemple virus de la stomatite vésiculaire), un lyssavirus (par exemple virus de la rage, virus Mokola), un arénavirus (par exemple virus de la chorioméningite lymphocytaire (LCMV) ) , un alphavirus (par exemple virus de la Ross River (RRV), virus Sindbis, virus de la forêt de Semliki (SFV), virus de 1'encéphalite équine vénézuélienne), un filovirus (par exemple le virus Ebola de Reston, le virus Ebola du Zaïre, le virus de Lassa) , un alpharétrovirus (par exemple le virus de la leucose aviaire (ALV) ) , un bétarétrovirus (par exemple le rétrovirus du mouton de Jaagsiekte (JSRV)), un gammarétrovirus (par exemple le virus de la leucémie murine de Moloney (MLV) , le virus de la leucémie du singe Gibbon (GALV), le rétrovirus endogène félin (RD114)), un deltarétrovirus (par exemple un virus T-lymphotrophe humain 1 (HTLV-1)), un spumavirus (par exemple virus mousseux humain), un lentivirus (par exemple virus de Maedi-visna (MVV)), un coronavirus (par exemple SARS-coV), un respirovirus (par exemple virus de Sendai, virus syncytial respiratoire (RSV)), un hépacivirus (par exemple le virus de l'hépatite C (VHC)), un virus de la grippe (par exemple virus de la grippe A) et un nucléopolyhédrovirus (par exemple, le nucléopolyhédrovirus multiple Autographa californica (AcMNPV)). Dans un autre mode de réalisation, la protéine env ou un substitut fonctionnel de celle-ci est obtenue ou dérivée du virus de la stomatite vésiculaire. Dans ce mode de réalisation, la protéine de glycoprotéine du virus de la stomatite vésiculaire (VSVg) peut être utilisée, laquelle permet aux particules rétrovirales d'infecter une gamme de cellules hôtes plus large et d'éliminer les chances de recombinaison afin de produire des protéines d'enveloppe de type sauvage. Dans un autre mode de réalisation, la séquence d'acide nucléique codant la protéine env ou un substitut fonctionnel de celle-ci est dérivée de la séquence disponible au n° d'entrée du Génome n° J02428.1, par exemple à partir des paires de bases 3071 à 4720.
Les gènes structurels décrits dans le présent document sont communs à tous les rétrovirus. D'autres gènes auxiliaires peuvent être trouvés dans différents types de rétrovirus. Par exemple, les lentivirus, comme le VIH-1, contiennent six autres gènes auxiliaires connus sous le nom de rev, vif, vpu, vpr, nef et tat. D'autres rétrovirus peuvent avoir des gènes auxiliaires qui sont analogues aux gènes décrits dans le présent document, mais ils peuvent ne pas être toujours indiqués sous le même nom que dans la littérature. Des références telles que Tomonaga et Mikami (1996) J. Gen. Virol. 77 (Pt 8) : 1611-1621 décrivent divers gènes auxiliaires de rétrovirus.
Rev : Le gène auxiliaire rev (« régulateur de virion ») code pour une protéine accessoire qui se lie à l'élément de réponse Rev (RRE) et facilite l'exportation des transcrits rétroviraux. Le produit protéique du gène permet aux fragments d'ARNm rétroviral contenant l'élément de réponse Rev (RRE) d'être exportés depuis le noyau dans le cytoplasme. La séquence RRE est prédite former une structure pliée complexe. Ce rôle particulier de rev reflète un couplage serré des étapes d'épissage et d'exportation nucléaire. Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend une séquence RRE. Dans un autre mode de réalisation, la séquence RRE est dérivée de la séquence HXB2 du VIH-1 qui est disponible au n° d'entrée du Génome n° K03455, par exemple à partir des paires de bases 7622 à 8479 ou 7769 à 8146, en particulier des paires de bases 7622 à 8479.
Rev se lie à RRE et facilite l'exportation des transcrits viraux mono-épissés (env, vif, vpr et vpu) ou non épissés (gag, pol et ARN génomique) , provoquant ainsi des évènements en aval comme la traduction et l'emballage des gènes (voir Suhasini and Reddy (2009) Curr. HIV Res. 7(1) : 91-100). Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend en plus le gène auxiliaire rev ou un gène analogue à celui-ci (c'est-à-dire provenant d'autres rétrovirus ou un système analogue fonctionnellement). L'inclusion du gène rev garantit l'exportation efficace des transcrits d'ARN du génome de vecteur rétroviral depuis le noyau jusque dans le cytoplasme, en particulier si un élément RRE est aussi inclus dans le transcrit à transporter. Dans un autre mode de réalisation, le gène rev comprend une identité de séquence d'au moins 60 %, comme d'au moins 70 %, avec les paires de bases 970 à 1320 du n° d'entrée du Génome M11840 (c'est-à-dire l'ADNc du clone 12 du VIH-1, le locus HIVPCV12). Dans un mode de réalisation alternatif, le gène rev comprend une identité de séquence d'au moins 60 %, comme d'au moins 70 %, 80 %, 90 % ou 100 % avec les paires de bases 5970 à 6040 et 8379 à 8653 du n° d'entrée du Génome K03455.1 (c'est-à-dire du virus de l'immunodéficience humaine de type 1, HXB2).
On pense que les gènes auxiliaires jouent un rôle dans la réplication rétrovirale et la pathogenèse, par conséquent, plusieurs systèmes de production de vecteurs viraux actuels ne comprennent pas certains de ces gènes. L'exception est rev qui est usuellement présent ou un système analogue au système rev/RRE est potentiellement utilisé. Par conséquent, dans un mode de réalisation, les séquences d'acide nucléique codant pour un ou plusieurs gènes auxiliaires vpr, vif, vpu, tat et nef, ou gènes auxiliaires analogues sont interrompues de sorte que lesdits gènes auxiliaires soient retirés de l'ARN génomique de la particule de vecteur rétroviral ou soient incapables de coder des protéines auxiliaires fonctionnelles. Dans un autre mode de réalisation, au moins deux gènes auxiliaires ou plus, trois ou plus, quatre ou plus, ou la totalité des gènes auxiliaires vpr, vif, vpu, tat et nef, ou gènes auxiliaires analogues sont interrompus de sorte que lesdits gènes auxiliaires soient retirés de l'ARN génomique de la particule de vecteur rétroviral ou soient incapables de coder des protéines auxiliaires fonctionnelles. Le retrait du gène auxiliaire fonctionnel peut ne pas nécessiter le retrait du gène entier, le retrait d'une partie du gène ou l'interruption du gène sera suffisant.
Il est bien entendu que les séquences d'acide nucléique codant la particule de vecteur rétroviral défectif en réplication peuvent être les mêmes que les gènes de type sauvage du rétrovirus sur lequel est basée la particule de vecteur rétroviral, ou en être dérivées, ce qui veut dire que les séquences peuvent être des versions de séquences génétiquement modifiées ou modifiées par un autre biais, présentes dans le virus de type sauvage. Par conséquent, les gènes rétroviraux incorporés dans les vecteurs d'acide nucléique ou génomes de la cellule hôte peuvent aussi se désigner des versions des gènes de type sauvage optimisées au niveau du codon.
COMPOSANTS ADDITIONNELS
Les vecteurs d'acide nucléique de l'invention peuvent comprendre plusieurs composants additionnels. Ces caractéristiques additionnelles peuvent être utilisées pour aider par exemple à stabiliser les transcrits pour la traduction, augmenter le taux d'expression des gènes et mettre en marche/arrêter la transcription des gènes.
Les particules de vecteur rétroviral produites par l'invention peuvent être utilisées dans des procédés de thérapie génique. Par conséquent, dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend un ou plusieurs transgènes. Ce transgène peut être un gène thérapeutiquement actif qui code pour un produit génique qui peut être utilisé pour traiter ou améliorer une maladie cible. Le transgène peut coder par exemple un ARN antisens, un ribozyme, une protéine (par exemple une protéine suppresseur de tumeur), une toxine, un antigène (qui peut être utilisé pour induire des anticorps ou des lymphocytes T assistants ou des lymphocytes T cytotoxiques) ou un anticorps (comme un anticorps monocaténaire) . Dans un mode de réalisation le transgène code pour la bêta globine.
On s'attend à ce que de multiples copies du vecteur de transfert contenant le transgène permettent une hausse du titre du vecteur rétroviral, donc, dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend de multiples copies du transgène, comme deux copies du transgène ou plus, en particulier trois ou plus. Dans certains cas, plus d'un produit génique est nécessaire pour traiter une maladie, par conséquent, dans un autre mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend, en plus, deux transgènes différents ou plus, comme trois ou plus, ou quatre ou plus.
Les références présentes à un « transgène » désignent l'ADN hétérologue ou étranger qui n'est pas présent ou pas suffisamment exprimé dans la cellule hôte d'un mammifère dans laquelle il est introduit. Cela peut inclure, par exemple, le cas où un gène cible n'est pas exprimé correctement dans la cellule hôte mammifère, par conséquent une version corrigée du gène cible est introduite comme transgène. Par conséquent, le transgène peut être un gène d'intérêt thérapeutique potentiel. Le transgène peut avoir été obtenu à partir d'un autre type cellulaire, ou d'une autre espèce, ou préparé par synthèse. En variante, le transgène peut avoir été obtenu à partir d'une cellule hôte, mais lié de manière fonctionnelle à des régions régulatrices qui sont différentes de celles présentes dans le gène natif. En variante, le transgène peut avoir une allèle différente ou un variant différent d'un gène présent dans la cellule hôte.
Le but de la thérapie génique est de modifier le matériel génétique des cellules vivantes à des fins thérapeutiques, et cela implique l'insertion d'un gène fonctionnel dans une cellule afin d'obtenir un effet thérapeutique. Le vecteur rétroviral produit en utilisant les vecteurs d'acides nucléiques et les cellules hôtes décrits dans le présent document peut être utilisé pour transfecter des cellules cibles et induire l'expression du gène d'intérêt thérapeutique potentiel. Le vecteur rétroviral peut par conséquent être utilisé pour le traitement d'un sujet mammifère, comme un sujet humain, atteint d'une maladie comprenant, mais sans y être limitée, les pathologies héréditaires, le cancer, et certaines infections virales.
Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend en plus un élément de régulation de la transcription. Par exemple, l'un quelconque des éléments décrits dans le présent document peut être lié de manière fonctionnelle à un promoteur de manière à pouvoir contrôler l'expression. Les promoteurs désignés ici peuvent inclure des promoteurs connus, en tout ou en partie, qui peuvent être constitutivement actifs ou inductibles, par exemple en présence d'une protéine régulatrice. Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend en plus un promoteur de haute efficacité comme un promoteur CMV. Ce promoteur présente l'avantage de favoriser un haut niveau d'expression des éléments codés sur le vecteur d'acide nucléique non mammifère. Dans un autre mode de réalisation, le promoteur CMV comprend une séquence dérivée de la souche du cytomégalovirus humain AD169. Cette séquence est disponible sous le n° d'entrée du Génome X17403, par exemple à partir des paires de bases 173731 à 174404.
Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend en plus un isolant, comme un isolant chromatine. Le terme « isolant » désigne une séquence génétique qui bloque l'interaction entre les promoteurs et les activateurs. Dans un autre mode de réalisation, l'isolant (comme un isolant chromatine) est présent entre chacune des séquences d'acide nucléique rétroviral. Cela aide à prévenir l'interférence du promoteur (c'est-à-dire quand le promoteur d'une unité de transcription influence l'expression d'une unité de transcription adjacente) entre les séquences d'acide nucléique rétroviral adjacentes. On comprendra que si les isolants sont présents dans le vecteur d'acide nucléique entre chacune des séquences d'acide nucléique rétroviral, alors ceux-ci peuvent être disposés sous la forme d'hybrides d'expression individuels à l'intérieur du vecteur d'acide nucléique. Par exemple, chaque séquence codant pour les séquences d'acide nucléique rétroviral possède son propre promoteur et/ou un intron et/ou un signal polyA. Dans un mode de réalisation l'isolant chromatine a une identité de séquence d'au moins 90 %, par exemple d'au moins 95 %, avec la séquence de l'isolant HS4 du poulet (Gallus gallus) (par exemple voir n° d'entrée du Génome U78775.2, paires de bases 1 to 1205) .
Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend en plus un signal polyA. L'utilisation d'un signal polyA présente l'avantage de protéger l'ARNm de la dégradation enzymatique et de faciliter la traduction. Dans un mode de réalisation, le signal polyA est obtenu ou dérivé du SV40, de l'hormone de croissance bovine et/ou de la bêta globine humaine. Dans un mode de réalisation, le signal polyA est dérivé du signal polyA précoce du SV40 (par exemple voir n° d'entrée du Génome EF579804.1, paires de bases 2668 à 2538 à partir du brin moins). Dans un mode de réalisation, le signal polyA est dérivé du signal polyA de la bêta globine humaine (par exemple voir n° d'entrée du Génome GU324922.1, paires de bases 3394 à 4162).
Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend en plus une séquence d'intron. L'utilisation d'un intron en aval de la région de 1'activateur/du promoteur et en amont de l'insert d'ADNc (c'est-à-dire du transgène) est connue pour accroître le taux d'expression de l'insert. Dans un autre mode de réalisation, la séquence d'intron est une séquence d'intron de la bêta globine humaine ou d'intron II de la bêta globine du lapin. Dans un mode de réalisation, l'intron de la bêta globine humaine est dérivé de la séquence disponible sous le n° d'entrée du Génome KM504957.1 (par exemple à partir des paires de bases 476 à 1393) . Dans un mode de réalisation, l'intron II de la bêta globine du lapin est dérivé de la séquence disponible sous le n° d'entrée du Génome V00882.1 (par exemple à partir des paires de bases 718 à 1290) .
Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend en plus un élément régulateur de posttranscription du virus de l'hépatite de la marmotte (WPRE). La présence du WPRE s'est révélée renforcer l'expression et, en tant que telle, est susceptible d'être bénéfique dans l'obtention de hauts niveaux d'expression. Dans un autre mode de réalisation, le WPRE est dérivé de la séquence disponible au n° d'entrée du Génome J04514.1 (par exemple à partir des paires de bases 1093 à 1684).
Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend en plus un site d'entrée dans le ribosome interne (IRES) . Un IRES est un élément d'ARN structuré qui se trouve usuellement dans la région non traduite 5' en amont de la coiffe 5' (qui est nécessaire pour l'assemblage du complexe d'initiation). L'IRES est reconnu par des facteurs d'initiation de la traduction et permet la traduction indépendante de la coiffe. Dans un autre mode de réalisation, l'IRES est dérivé du génome du virus de 1'encéphalomyocardite (EMCV) (par exemple voir le n° d'entrée du Génome KF836387.1, paires de bases 151 à 724) .
Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend en plus un site de clonage multiple (MCS) . Un MCS est un segment court d'ADN à l'intérieur du vecteur d'acide nucléique qui contient de multiples sites de restriction (par exemple 10, 15 ou 20 sites). Ces sites sont usuellement présents seulement une fois à l'intérieur du vecteur d'acide nucléique pour garantir que l'endonucléase ne clive qu'au niveau d'un site. Cela permet aux gènes rétroviraux d'être facilement insérés en utilisant les endonucléases appropriées (c'est-à-dire des enzymes de restriction). L'homme du métier comprendra que les hybrides peuvent être disposés dans un ordre quelconque à l'intérieur du vecteur d'acide nucléique. Dans un exemple de mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend l'insert suivant : une séquence d'acide nucléique rétroviral codant pour les protéines gag et pol, une séquence d'acide nucléique rétroviral codant pour la protéine env ou un substitut fonctionnel de celle-ci (comme VSVg) et une séquence d'acide nucléique rétroviral codant pour le gène auxiliaire rev (comme une séquence rev à codon optimisé) ou une gène analogue à celui-ci ou un système fonctionnellement analogue (c'est-à-dire une séquence BAC conservant GagPol-Env-Rev (« squelette BAC ») ; comme : GagPol-(type sauvage)VSVg-(à codon optimisé) Rev-pSMARTBAC). Dans un autre mode de réalisation, un isolant (comme un isolant chromatine) est présent entre chacune des séquences gagpol, env et rev. Dans un autre mode de réalisation, un promoteur est présent entre chacune des séquences gagpol, env et rev. Dans encore un autre mode de réalisation, au moins une copie de la séquence du vecteur de transfert (c'est-à-dire comprenant les séquences d'acide nucléique qui codent pour l'ARN génomique d'une particule de vecteur rétroviral) est présente avant la séquence gagpol.
Dans un mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique comprend l'insert suivant : un isolant (comme un isolant chromatine), un promoteur (comme un promoteur CMV), un intron (comme un intron de bêta globuline humaine), une séquence d'acide nucléique rétroviral codant pour les protéines gag et pol, un acide nucléique rétroviral codant RRE, un signal polyA (comme un signal polyA de bêta globuline humaine), un isolant (comme un isolant chromatine), un promoteur (comme un promoteur CMV), un intron (comme un intron de bêta globuline humaine), une séquence d'acide nucléique rétroviral codant pour la protéine env ou un substitut fonctionnel de celle-ci (comme VSVg), un signal polyA (comme un signal polyA de bêta globuline humaine), un isolant (comme un isolant chromatine), un promoteur (comme un promoteur CMV), une séquence d'acide nucléique rétroviral codant pour le gène auxiliaire rev ou un gène analogue à celui-ci ou un système fonctionnellement analogue, un signal polyA (comme un signal polyA de bêta globuline humaine), un isolant (comme un isolant chromatine), un promoteur (comme un promoteur CMV) , un intron (comme un intron de bêta globuline de lapin), un signal polyA et un site de clonage multiple. On comprendra que d'autres séquences peuvent être incluses avec et/ou à l'intérieur de cet insert.
Les séquences d'acide nucléique peuvent être introduites dans le vecteur d'acide nucléique séquentiellement. Cela permet une sélection après chaque intégration afin de garantir que la totalité des séquences d'acide nucléique nécessaires sont intégrées avec succès dans le vecteur d'acide nucléique. En variante, au moins deux séquences d'acide nucléique ou plus sont introduites dans le vecteur d'acide nucléique simultanément.
On comprendra que les gènes additionnels décrits dans le présent document peuvent être introduits dans le vecteur d'acide nucléique par des techniques de clonage moléculaire standards connues dans l'art, par exemple en utilisant les endonucléases de restriction et les techniques de ligation. En outre, le vecteur d'acide nucléique, en particulier les BAC, PAC, fosmides et/ou cosmides, peut être introduit dans des cellules hôtes bactériennes (comme les cellules de E. coli, en particulier la souche DH10B de E. coli) par des techniques standards, comme 1'électroporation.
UTILISATIONS
Selon un autre aspect de l'invention, on propose le vecteur d'acide nucléique tel que défini dans le présent fascicule pour une utilisation dans un procédé de production de particules de vecteur rétroviral. Telle que décrite dans le présent document, la présente invention apporte de multiples avantages pour l'utilisation des vecteurs d'acide nucléique décrits dans les procédés de transfection transitoire, principalement en réduisant le système de transfection à 4 plasmides à un unique vecteur d'acide nucléique, ce qui permet de réduire la quantité de matériel utilisé.
PROCEDES
Selon un autre aspect de l'invention, on propose un procédé de production d'une particule de vecteur rétroviral défectif en réplication, comprenant : (a) l'introduction du BAC tel que défini dans le présent document dans une culture de cellules hôtes mammifères ; et (b) la culture des cellules hôtes mammifères dans des conditions permettant de produire la particule de vecteur rétroviral défectif en réplication. L'avantage qu'apporte l'inclusion de la totalité des gènes rétroviraux sur un gros vecteur d'acide nucléique est qu'ils peuvent être préparés dans des cellules microbiennes (comme des cellules bactériennes ou de levure) d'abord, lesquelles sont bien plus faciles à utiliser et à manipuler, avant de les introduire dans des cellules mammifères dans une unique étape.
Dans un mode de réalisation, la cellule hôte est une cellule mammifère. Dans un autre mode de réalisation, la cellule mammifère est choisie parmi une cellule HEK 293, une cellule HEK 6E, une cellule CHO, une cellule de Jurkat, une cellule KS62, une cellule PerC6, une cellule HeLa, une cellule HOS, une cellule H9, ou un dérivé ou un équivalent fonctionnel de celles-ci. Dans encore un autre mode de réalisation, la cellule hôte mammifère est une cellule HEK 293 ou dérivée d'une cellule HEK 293. Ces lignées cellulaires pourraient être des lignées cellulaires adhérentes (c'est-à-dire qu'elles croissent en une monocouche fixée à une surface) ou des lignées cellulaires adaptées/non adhérentes en suspension (c'est-à-dire qu'elles croissent en suspension dans un milieu de culture). Dans encore un autre mode de réalisation, la cellule HEK 293 est une cellule HEK 293T ou une cellule HEK 6E. Le terme « cellule HEK 293 » désigne la lignée cellulaire 293 du rein embryonnaire humain qui est communément utilisée en biotechnologie. En particulier, les cellules HEK 293T sont communément utilisées pour la production de divers vecteurs rétroviraux. D'autres exemples de lignées cellulaires appropriées disponibles dans le commerce comprennent les lignées cellulaires T REX™ (Life Technologies).
Les cellules hôtes transduites en utilisant les procédés définis dans le présent document peuvent être utilisées pour produire un titre élevé de vecteur rétroviral.
Les références présentes ici au terme « titre élevé » désigne une quantité efficace d'un vecteur rétroviral ou d'une particule qui est capable de transduire une cellule cible, comme une cellule d'un patient. Dans un mode de réalisation, un titre élevé est un titre excédant 106 TU/ml sans concentration (TU = unités de transduction). L'homme du métier saura que l'introduction du vecteur d'acide nucléique dans la cellule hôte peut être réalisée en utilisant des procédés appropriés connus dans l'art, par exemple, la transfection induite par des lipides (lipofection, la micro-injection, la fusion cellulaire (comme micro-cellulaire), 1 ' électroporation, les procédés de transfection à base chimique ou le bombardement de microprojectiles. On comprendra que le choix du procédé à utiliser pour l'introduction du vecteur d'acide nucléique puisse dépendre du type de cellule hôte mammifère utilisé. Dans un mode de réalisation, l'étape d'introduction (a) est réalisée en utilisant la lipofection, 1'électroporation ou un procédé de transfection à base chimique. Dans un autre mode de réalisation, le vecteur d'acide nucléique est introduit dans la cellule hôte par lipofection. Dans un mode de réalisation alternatif, le vecteur d'acide nucléique est introduit dans la cellule hôte par un procédé de transfection à base chimique, comme le traitement au phosphate de calcium. Les traitements au phosphate de calcium sont disponibles dans le commerce par exemple chez Promega. L'homme du métier comprendra que les conditions utilisées dans le procédé décrit dans le présent document soient dépendantes de la cellule hôte utilisée. Les conditions typiques, par exemple le milieu de culture ou la température à utiliser, sont bien connues dans l'art (voir Kutner et al. (2009) Nature Protocols 4(4) ; 495-505). Dans un mode de réalisation, l'étape de culture (b) est réalisée en incubant la cellule hôte de mammifère dans des conditions humidifiées. Dans un autre mode de réalisation, les conditions humidifiées comprennent l'incubation des cellules transfectées à 37°C à 5 % de C02. Dans un mode de réalisation, l'étape de culture (b) est réalisée en utilisant un milieu de culture choisi parmi le milieu d'Eagle modifié par Dubelcco (DMEM) contenant 10 % (vol/vol) de sérum fœtal de bovin (FBS) ou un milieu UltraCULTURE™ sans sérum (Lonza, n° cat. 12-725F) ou le milieu d'expression FreeStyle™ (Thermo fisher, n° cat. 12338 018).
Dans un mode de réalisation, le procédé comprend en plus l'isolation de la particule de vecteur rétroviral défectif en réplication. Par exemple, dans un mode de réalisation, l'isolation est réalisée en utilisant un filtre. Dans un autre mode de réalisation, le filtre est une membrane de faible liaison aux protéines (par exemple une membrane de faible liaison aux protéines de 0,22 μπι ou une membrane de faible liaison aux protéines de 0,45 μπι) , comme les membranes artificielles de fluorure de polyvinylidène (PVDF) ou de polyéthersulfone (PES).
Dans un mode de réalisation, les particules de vecteur rétroviral défectif en réplication sont isolées moins de 72 heures après l'étape d'introduction (a). Dans un autre mode de réalisation, les particules de rétrovirus défectif en réplication sont isolées entre 48 et 72 heures après l'étape d'introduction (a), par exemple au bout de 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 69, 70, 71 ou 72 heures.
Une fois isolées, les particules de vecteur rétroviral peuvent être concentrées pour des applications in vivo. Les procédés de concentration comprennent par exemple l'ultracentrifugation, la précipitation ou la chromatographie d'échange anionique. L'ultracentrifugation est utile comme procédé rapide pour la concentration du vecteur rétroviral à petite échelle. En variante, la chromatographie d'échange anionique (utilisant par exemple des cartouches de membrane d'échange anionique Mustang Q) ou la précipitation (par exemple utilisant PEG 6000) sont particulièrement utiles pour la transformation de gros volumes de surnageants de vecteurs lentiviraux.
Selon un autre aspect de l'invention, on propose une particule de vecteur rétroviral défectif en réplication obtenue par le procédé tel que défini dans le présent fascicule. L'invention va à présent être décrite plus en détails à l'aide des exemples non limitatifs suivants.
EXEMPLES EXEMPLE 1 : Guide de construction d'hybrides
La Figure 1 montre un guide étape par étape pour la construction de BACpack-WTGP-277delU5 et BACpack-SYNGP-277delU5. Grâce aux extrémités compatibles d'un produit de digestion de Xbal et Nhel, les gènes d'emballage lentiviraux ont été progressivement chargés dans le vecteur pSmart BAC. Au moment de l'addition de GagPol, 2 hybrides ont été fabriqués, lesquels contiennent soit GagPol de type sauvage (WTGP) soit GagPol à codon optimisé (SYNGP). La nomenclature de BACpack-WTGP et de BACpack-SYNGP leur a été respectivement donnée. La cassette de transfert a été ensuite chargée sur ces deux hybrides, générant ainsi BACpackWTGP-277delU5 et BACpackSYNGP-277delU5.
EXEMPLE 2 : Expérience de la preuve de principe en utilisant l'hybride BAC 106 cellules HEK293T ont été ensemencées dans une plaque à 6 puits. Le jour suivant, les cellules ayant adhéré ont été transfectées en utilisant la PEI selon les instructions du fabricant. Les cellules ont été ensuite transfectées soit avec un total de 4 pg des hybrides d'emballage lentiviraux de type sauvage (WT) constitué de pMDL.gp (GagPol), pMD.G (VSVg), pK-Rev (Rev) et pCCL.277 (vecteur de transfert GFP) soit 2 pg de BACpack (un unique hybride BAC contenant GagPol, VSVg et Rev) plus 2 pg du vecteur de transfert eGFP sur un plasmide séparé. 48 heures après la transfection, le surnageant a été récolté, filtré à travers un filtre de 0,22 pm et stocké à -80°C pendant un minimum de 4 heures. Les cellules HEK293T ont été ensemencées pour la transduction à 105 cellules par puits dans une plaque à 24 puits. Le jour suivant, le surnageant viral a été appliqué aux cellules dans des dilutions en série avec Polybrene à une concentration finale de 8 pg/ml. 3 jours après la transduction, les cellules ont été récoltées par traitement à la trypsine et analysées au niveau de la GFP par FACS. Le titre viral a été calculé en unités de transduction (TU)/ml, calculées selon l'équation suivante : (cellules GFP positives/100) χ facteur de dilution χ nombre de cellules transduites.
Les titres viraux ont été comparés sur le diagramme en bâtons (Figure 2). Toutes les incubations ont été réalisées à 37°C et à 5 % de CO2. Les milieux utilisés ont été du DMEM supplémenté avec du FBS à 10 % et 1 pg/ml de doxycycline dans l'échantillon BACpak + transfert.
Observations :
Dans cet exemple, la capacité de l'hybride BACpack, constitué des cassettes d'expression GagPol, VSVg et Rev, a été comparée au système d'emballage à 3 plasmides standards où GagPol, VSVg et Rev sont distribués séparément. Dans les deux cas, le vecteur de transfert a été délivré conjointement dans un plasmide séparé afin de compléter les composants essentiels pour le vecteur viral.
Dans cet exemple, le BACpack plus vecteur de transfert a été capable d'atteindre un titre viral du surnageant non concentré de 2,2 χ 107 TU/ml, par rapport à un titre de 5 χ 107 TU/ml quand on utilise un système de lentivirus à 4 plasmides séparés. Bien qu'un titre plus faible ait été observé en utilisant le BACpack, cette analyse a permis une pré-optimisation et un titre plus élevé peut être obtenu post-optimisation. A partir de cette analyse de preuve de principe, on peut conclure que le BACpack est capable d'emballer le vecteur de transfert à un niveau de titre viral comparable à celui du système de plasmide d'emballage séparé dans une transfection transitoire. EXEMPLE 3 : Transfection transitoire de BACpack dans des cellules HEK293T adhérentes.
Afin de confirmer la capacité des deux hybrides BACpack-277delU5 à produire le vecteur lentiviral dans un système de transfection transitoire, la lignée cellulaire adhérente, HEK293T, utilisée de manière routinière pour produire un vecteur lentiviral par transfection transitoire, ont été transfectées avec soit le système à 4 plasmides d'emballage actuel, soit BACpackWTGP-277delU5 soit BACpackSYNGP-277delU5. Les deux hybrides BACpack-277delU5 ont été soit induits pour évaluer si l'expression génique pouvait résulter dans la production du vecteur lentiviral soit laissés non induits pour tester l'efficacité du système répresseur Tet.
Les résultats sur la figure 3 montrent le titre en unités de transduction/ml (TU)/ml du surnageant de vecteur lentiviral récolté à partir de chaque condition de transfection. On peut voir à partir des résultats de titration que les cellules transfectées soit avec BACpackWTGP-277 de1U5 soit avec BACpackSYNGP-277delU5 et induites avec 1 jug/ml de doxycycline (+Dox) ont produit des concentrations de vecteur lentiviral comparables au système à 4 plasmides actuel. En plus, les conditions non induites ont démontré une capacité grandement réduite à produire le vecteur lentiviral par rapport à celles induites, et bien que cette production ait été supérieure à l'arrière plan témoin non transfecté, cela ne peut être considéré comme un inconvénient dans un système transitoire.
Ces résultats suggèrent que le vecteur BAC unique contenant la totalité des gènes d'emballage nécessaires à. la production lentivirale pourrait remplacer le système à 4 plasmides actuel.
On comprendra que les modes de réalisation décrits ici peuvent être appliqués à tous les aspects de 1'invention.

Claims (26)

  1. REVENDICATIONS
    1. Chromosome artificiel bactérien (BAC), caractérisé en ce que ledit BAC comprend des séquences d'acide nucléique rétroviral codant pour : les protéines gag et pol, et une protéine env dans lequel chacune des séquences d' acide nucléique rétroviral est disposée sous la forme d'hybrides d'expression individuels à l'intérieur du BAC.
  2. 2. Chromosome artificiel bactérien selon la revendication 1, qui comprend en outre des séquences d'acide nucléique qui codent pour l'ARN génomique d'une particule de vecteur rétroviral.
  3. 3. Chromosome artificiel bactérien selon la revendication 1 ou la revendication 2, qui comprend en outre le gène auxiliaire rev.
  4. 4. Chromosome artificiel bactérien selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, dans lequel les séquences d'acide nucléique rétroviral sont dérivées d'un rétrovirus choisi parmi les lentivirus, les alpha-rétrovirus, les gamma-rétrovirus ou les rétrovirus mousseux.
  5. 5. CShromosome artificiel bactérien selon la revendication 4, dans lequel les séquences d'acide nucléique rétroviral sont dérivées d'un lentivirus choisi dans le groupe constitué du VIH-1, VIH-2, VIS, VIF, VAIE et Visna.
  6. 6. Chromosome artificiel bactérien selon la revendication 5, dans lequel les séquences d'acide nucléique rétroviral sont dérivées du VIH-1.
  7. 7. Chromosome artificiel bactérien selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, dans lequel la protéine env ou un substitut fonctionnel de celle-ci est dérivée du virus de la stomatite vésiculaire.
  8. 8. Chromosome artificiel bactérien selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, qui comprend en outre un élément régulateur de transcription.
  9. 9. Chromosome artificiel bactérien selon la revendication 8, dans lequel l'élément régulateur de transcription est un promoteur CMV.
  10. 10. Chromosome artificiel bactérien selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, qui comprend en outre un isolant.
  11. 11. Chromosome artificiel bactérien selon la revendication 10, dans lequel un isolant est présent entre chacune des séquences d'acide nucléique rétroviral.
  12. 12. Chromosome artificiel bactérien selon l'une quelconque des revendications 1 à 11, qui comprend en outre un ou plusieurs transgênes.
  13. 13. Chromosome artificiel bactérien selon l'une quelconque des revendications 1 à 12, qui comprend en outre un site d'entrée dans le ribosome interne (1RES).
  14. 14. Chromosome artificiel bactérien selon l'une quelconque des revendications 1 à 13, qui comprend en outre un signal polyA.
  15. 15. Chromosome artificiel bactérien selon l'une quelconque des revendications 1 à 14, qui comprend en outre une séquence d'intron.
  16. 16. Chromosome artificiel bactérien selon l'une quelconque des revendications 1 à 15, qui comprend en outre un site de clonage multiple (MCS).
  17. 17. Chromosome artificiel bactérien selon l'une quelconque des revendications 1 à 16 pour une utilisation dans un procédé de production de particules de vecteur rétroviral.
  18. 18. Procédé de production d'une particule de vecteur rétroviral défectif en réplication, comprenant : (a) l'introduction du chromosome artificiel bactérien selon l'une quelconque des revendications 1 à 16 dans une culture de cellules hôtes mammifères ; et (b) la culture des cellules hôtes mammifères dans des conditions permettant de produire la particule de vecteur rétroviral défectif en réplication.
  19. 19. Procédé selon la revendication 18, dans lequel la cellule hôte mammifère est une cellule HEK 293.
  20. 20. Procédé selon la revendication 18 ou la revendication 19, dans lequel l'étape d'introduction (a) est réalisée en utilisant la lipofection, 1'électroporation ou un ïdé de transfection à base chimique, comme le traitement au pnosphate de calcium.
  21. 21. Procédé selon l'une quelconque des revendications 18 à 20., dans lequel l'étape de culture (b) est réalisée par incubation de la cellule hôte mammifère dans des conditions humidifiées.
  22. 22. Procédé selon l'une quelconque des revendications 18 à 21, comprenant en outre l'isolation de la particule de vecteur rétroviral défectif en réplication.
  23. 23. Procédé selon la revendication 22, dans lequel l'isolation est réalisée en utilisant un filtre, comme une membrane de faible liaison aux protéines.
  24. 24. Procédé selon la revendication 22 ou la revendication 23, dans lequel les particules de vecteur rétroviral défectif en réplication sont isolées moins de 72 heures après l'étape d'introduction (a).
  25. 25. Procédé selon la revendication 24, dans lequel les particules de vecteur rétroviral défectif en réplication sont isolées entre 48 et 72 heures après l'étape d'introduction ( a) .
  26. 26. Particule de vecteur rétroviral défectif en réplication obtenue par le procédé selon l'une quelconque des revendications 18 à 25.
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Families Citing this family (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DK3294756T3 (da) * 2015-05-15 2021-02-22 Flash Therapeutics Retroviral partikel, omfattende mindst to forskellige indkapslede, ikke-virale RNA'er
ES2939617T3 (es) * 2015-11-24 2023-04-25 Glaxosmithkline Ip Dev Ltd Líneas celulares estables para producción retroviral
GB201706121D0 (en) 2017-04-18 2017-05-31 Glaxosmithkline Ip Dev Ltd Stable cell lines for retroviral production
GB201715052D0 (en) 2017-09-19 2017-11-01 Oxford Genetics Ltd Vectors
EP3696272A1 (fr) * 2017-12-22 2020-08-19 Oxford BioMedica (UK) Limited Vecteur rétroviral
GB201816919D0 (en) * 2018-10-17 2018-11-28 Glaxosmithkline Ip Dev Ltd Adeno-associated viral vector producer cell lines
CN110684804B (zh) * 2019-10-15 2023-04-18 上海本导基因技术有限公司 递送外源rnp的慢病毒载体及其制备方法
GB202004371D0 (en) 2020-03-26 2020-05-13 Glaxosmithkline Ip Dev Ltd CAR constructs
GB202005096D0 (en) 2020-04-07 2020-05-20 Glaxosmithkline Modified vectors for production of retrovirus
EP4308605A1 (fr) 2021-03-19 2024-01-24 GlaxoSmithKline Intellectual Property Development Limited Récepteurs antigéniques chimériques ciblant la claudine-3 et méthodes de traitement du cancer
CN113373266B (zh) * 2021-06-22 2022-07-01 内蒙古农业大学 一种用于检测绵羊肺腺瘤病毒的荧光rpa引物、试剂盒和检测方法

Family Cites Families (41)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5593972A (en) * 1993-01-26 1997-01-14 The Wistar Institute Genetic immunization
WO1995003400A1 (fr) * 1993-07-23 1995-02-02 Johns Hopkins University School Of Medicine Clonage cible par recombinaison dans les chromosomes artificiels de levure
CA2222559A1 (fr) * 1995-06-27 1997-01-16 Bavarian Nordic Research Institute A/S Cellules encapsulees produisant des particules virales
US5766945A (en) 1996-02-13 1998-06-16 Fred Hutchinson Cancer Research Center 10A1 Retroviral packaging cells and uses thereof
FR2751223B1 (fr) * 1996-07-19 1998-12-04 Rhone Merieux Formule de vaccin polynucleotidique felin
US6277621B1 (en) 1998-02-26 2001-08-21 Medigene, Inc. Artificial chromosome constructs containing foreign nucleic acid sequences
ES2299276T3 (es) 1998-12-31 2008-05-16 Novartis Vaccines And Diagnostics, Inc. Polipeptidos env del vih modificados.
US6677155B1 (en) 1999-04-22 2004-01-13 The General Hospital Corporation Triple hybrid amplicon vector systems to generate retroviral packaging lines
EP1179083A4 (fr) 1999-04-22 2003-04-23 Gen Hospital Corp Systeme de vecteurs d'amplicons hybrides triples pour la generation de lignees d'encapsidation
CA2371946A1 (fr) 1999-04-29 2000-11-09 Aarhus University Expression de genes heterologues, a partir d'une cassette de traduction ires, dans des vecteurs retroviraux
AU5597200A (en) 1999-06-07 2000-12-28 Cell Genesys, Inc. Hybrid yeast-bacteria cloning system and uses thereof
AU784910B2 (en) 1999-10-12 2006-07-27 Centre National De La Recherche Scientifique Lentiviral triplex DNA, and vectors and recombinant cells containing lentiviral triplex DNA
AU2001265187A1 (en) 2000-05-30 2001-12-11 Baylor College Of Medicine Chimeric viral vectors for gene therapy
AU2001292711A1 (en) 2000-09-18 2002-03-26 Genetic Therapy, Inc. Stress resistant retroviruses
US6586251B2 (en) * 2000-10-31 2003-07-01 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Methods of modifying eukaryotic cells
US7214515B2 (en) 2001-01-05 2007-05-08 The General Hospital Corporation Viral delivery system for infectious transfer of large genomic DNA inserts
DE10111433A1 (de) 2001-03-09 2002-09-19 Bundesrepublik Deutschland Let Replikationskompetente molekulare Klone von porcinem endogenem Retrovirus der Klasse A und Klasse B,abgeleitet von Schweine- und humanen Zellen
MXPA03010626A (es) 2001-05-30 2004-12-06 Chromos Molecular Systems Inc Plataformas a base de cromosomas.
US6835568B2 (en) 2001-10-30 2004-12-28 Virxsys Corporation Regulated nucleic acid expression system
PT1504108E (pt) 2002-02-01 2013-06-12 Oxford Biomedica Ltd Vetor lentiviral
WO2003087330A2 (fr) 2002-04-10 2003-10-23 The Government Of The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Systeme de vecteur navette vac-bac
US7300658B2 (en) * 2002-11-25 2007-11-27 Bavarian Nordic A/S Recombinant poxvirus comprising at least two compox ATI promoters
MXPA06012511A (es) * 2004-04-28 2006-12-15 Univ Pennsylvania Vectores virales polivalentes y un sistema para su produccion.
US20080226677A1 (en) 2004-05-06 2008-09-18 Yasuko Mori Recombinant virus vector for gene transfer into lymphoid cells
EP1652932A1 (fr) 2004-11-02 2006-05-03 GBF Gesellschaft für Biotechnologische Forschung mbH Méthode d'établissement de lignées cellulaires productrices de virus et lignées cellulaires
ES2357372T3 (es) * 2004-11-24 2011-04-25 Anaeropharma Science Inc. Nuevo vector lanzadera.
AU2005309485A1 (en) 2004-11-24 2006-06-01 Nanovector Limited Viral vectors
WO2008115199A2 (fr) 2006-08-18 2008-09-25 The University Of North Carolina At Chapel Hill Vaccins viraux chimériques
GB0702695D0 (en) * 2007-02-12 2007-03-21 Ark Therapeutics Ltd Production of vectors
US8440461B2 (en) 2007-03-23 2013-05-14 Wisconsin Alumni Research Foundation Reprogramming somatic cells using retroviral vectors comprising Oct-4 and Sox2 genes
US20110027313A1 (en) 2008-04-04 2011-02-03 University Of Miami Viral recombineering and uses thereof
PL2480678T3 (pl) * 2010-09-02 2014-08-29 Molmed Spa Stabilna produkcja wektorów lentiwirusowych
US9273324B2 (en) 2010-12-05 2016-03-01 Andrew S. Belmont Recombinant gene expression
WO2012170431A2 (fr) 2011-06-06 2012-12-13 Bluebird Bio, Inc. Systèmes perfectionnés de commutation génique
GB201202516D0 (en) 2012-02-13 2012-03-28 Ucl Business Plc Materials and methods relating to packaging cell lines
EP2895611A4 (fr) 2012-09-14 2016-04-27 Univ California Vecteur lentiviral pour thérapie génique par cellules souches de la drépanocytose
US10590433B2 (en) * 2014-03-14 2020-03-17 University Of Washington Genomic insulator elements and uses thereof
GB2538324A (en) 2015-05-15 2016-11-16 Glaxosmithkline Ip Dev Ltd Packaging cell line for retroviral production
GB2538321A (en) 2015-05-15 2016-11-16 Glaxosmithkline Ip Dev Ltd Artificial chromosome for retroviral production
KR102058113B1 (ko) * 2015-11-23 2019-12-23 주식회사 엘지화학 접착력이 개선된 리튬 이차전지용 전극 및 이의 제조방법
ES2939617T3 (es) 2015-11-24 2023-04-25 Glaxosmithkline Ip Dev Ltd Líneas celulares estables para producción retroviral

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