FR2834998A1 - Procede de controle de la presence de micro-organismes dans un milieu gazeux comprenant du peroxyde d'hydrogene - Google Patents
Procede de controle de la presence de micro-organismes dans un milieu gazeux comprenant du peroxyde d'hydrogene Download PDFInfo
- Publication number
- FR2834998A1 FR2834998A1 FR0200608A FR0200608A FR2834998A1 FR 2834998 A1 FR2834998 A1 FR 2834998A1 FR 0200608 A FR0200608 A FR 0200608A FR 0200608 A FR0200608 A FR 0200608A FR 2834998 A1 FR2834998 A1 FR 2834998A1
- Authority
- FR
- France
- Prior art keywords
- microorganisms
- hydrogen peroxide
- medium
- culture medium
- colonies
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N Hydrogen peroxide Chemical compound OO MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N 0.000 title claims abstract description 74
- 244000005700 microbiome Species 0.000 title claims abstract description 42
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 20
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 title abstract 2
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims abstract description 42
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 claims abstract description 37
- 239000008272 agar Substances 0.000 claims abstract description 37
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims abstract description 31
- LCTONWCANYUPML-UHFFFAOYSA-N Pyruvic acid Chemical compound CC(=O)C(O)=O LCTONWCANYUPML-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 22
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 claims abstract description 14
- 229940107700 pyruvic acid Drugs 0.000 claims abstract description 11
- 238000011161 development Methods 0.000 claims abstract description 3
- DAEPDZWVDSPTHF-UHFFFAOYSA-M sodium pyruvate Chemical compound [Na+].CC(=O)C([O-])=O DAEPDZWVDSPTHF-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 20
- 239000003570 air Substances 0.000 claims description 16
- 229940054269 sodium pyruvate Drugs 0.000 claims description 10
- 239000012080 ambient air Substances 0.000 claims description 4
- 150000002978 peroxides Chemical class 0.000 claims description 4
- UFHFLCQGNIYNRP-UHFFFAOYSA-N Hydrogen Chemical compound [H][H] UFHFLCQGNIYNRP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- 239000001257 hydrogen Substances 0.000 claims description 3
- 229910052739 hydrogen Inorganic materials 0.000 claims description 3
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 17
- 102000016938 Catalase Human genes 0.000 description 15
- 108010053835 Catalase Proteins 0.000 description 15
- 239000006150 trypticase soy agar Substances 0.000 description 10
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 6
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 6
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 4
- DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M Ilexoside XXIX Chemical compound C[C@@H]1CC[C@@]2(CC[C@@]3(C(=CC[C@H]4[C@]3(CC[C@@H]5[C@@]4(CC[C@@H](C5(C)C)OS(=O)(=O)[O-])C)C)[C@@H]2[C@]1(C)O)C)C(=O)O[C@H]6[C@@H]([C@H]([C@@H]([C@H](O6)CO)O)O)O.[Na+] DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M 0.000 description 3
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 3
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 3
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 3
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 description 3
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 3
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 3
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 3
- 230000035882 stress Effects 0.000 description 3
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 241000191967 Staphylococcus aureus Species 0.000 description 2
- 238000005273 aeration Methods 0.000 description 2
- 239000007900 aqueous suspension Substances 0.000 description 2
- 238000004500 asepsis Methods 0.000 description 2
- 239000005018 casein Substances 0.000 description 2
- BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N casein, tech. Chemical compound NCCCCC(C(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CC(C)C)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(C(C)O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(COP(O)(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(N)CC1=CC=CC=C1 BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 235000021240 caseins Nutrition 0.000 description 2
- -1 catalases Chemical compound 0.000 description 2
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 2
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 2
- 235000013312 flour Nutrition 0.000 description 2
- 239000012212 insulator Substances 0.000 description 2
- 238000005070 sampling Methods 0.000 description 2
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- ODJQKYXPKWQWNK-UHFFFAOYSA-N 3,3'-Thiobispropanoic acid Chemical compound OC(=O)CCSCCC(O)=O ODJQKYXPKWQWNK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N Calcium Chemical compound [Ca] OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 240000006432 Carica papaya Species 0.000 description 1
- 235000009467 Carica papaya Nutrition 0.000 description 1
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 1
- FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N Magnesium Chemical compound [Mg] FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ZLMJMSJWJFRBEC-UHFFFAOYSA-N Potassium Chemical compound [K] ZLMJMSJWJFRBEC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- LCTONWCANYUPML-UHFFFAOYSA-M Pyruvate Chemical compound CC(=O)C([O-])=O LCTONWCANYUPML-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 1
- 102000019197 Superoxide Dismutase Human genes 0.000 description 1
- 108010012715 Superoxide dismutase Proteins 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- 229910052783 alkali metal Inorganic materials 0.000 description 1
- 150000001340 alkali metals Chemical class 0.000 description 1
- 229910052784 alkaline earth metal Inorganic materials 0.000 description 1
- 150000001342 alkaline earth metals Chemical class 0.000 description 1
- 229910052791 calcium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011575 calcium Substances 0.000 description 1
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 1
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 1
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 1
- 238000007791 dehumidification Methods 0.000 description 1
- 230000006862 enzymatic digestion Effects 0.000 description 1
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 1
- 230000005251 gamma ray Effects 0.000 description 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 1
- 230000036512 infertility Effects 0.000 description 1
- 230000005764 inhibitory process Effects 0.000 description 1
- 229910052749 magnesium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011777 magnesium Substances 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 239000013081 microcrystal Substances 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 229910052700 potassium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011591 potassium Substances 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 229940076788 pyruvate Drugs 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- 230000008646 thermal stress Effects 0.000 description 1
- 235000013311 vegetables Nutrition 0.000 description 1
- 238000012800 visualization Methods 0.000 description 1
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
- C12Q1/04—Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
- C12Q1/045—Culture media therefor
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
L'invention concerne un procédé de contrôle de la présence de micro-organismes dans un milieu gazeux comportant du peroxyde d'hydrogène, comprenant les étapes suivantes : (i) on met en contact le milieu gazeux comprenant du peroxyde d'hydrogène avec un milieu de culture gélosé, comprenant un sel de l'acide pyruvique; (ii) on dispose le milieu de culture dans un environnement favorisant le développement de colonies de micro-organismes; (iii) on détermine la présence de colonies de micro-organismes qui se sont éventuellement développées au cours de l'étape (ii). L'invention porte aussi sur une cassette contenant un milieu de culture gélosé comprenant un sel de l'acide pyruvique.
Description
revendication 9.
La présente invention a pour objet un procédé de contrôle de la présence de micro-organismes dans un milieu gazeux comprenant du peroxyde d'hydrogène, ainsi que des cassettes contenant un milieu de culture gélosé
pouvant être mises en _uvre dans ce procédé.
Il est bien connu que, pour la mise en _uvre de certains procèdés industriels, en particulier dans l'industrie pharmaceutique, des actes ou manipulations doivent être réalisés dans des zones de préparation confinées,
telles que des isolateurs, séparées du monde extérieur et rendues aseptiques.
Il est courant, pour contrôler l'asepsie du milieu gazeux, généralement de l'air, régnant dans ces zones confinées, de prélever un échantillon gazeux pouvant contenir des micro-organismes, des bactéries, levures ou moisissures, de les déposer sur une couche de gélose contenue dans un récipient ou cassette, pour ensuite mettre ce récipient à incuber à la température, pendant un temps prédéterminé, de sorte à ce que ces microorganismes forment des colonies visibles à l'_il nu. On peut ainsi visualiser, compter, et, le cas
échéant, identifier les colonies de micro-organismes présents dans l'air analysé.
Pour procéder à la stérilisation de ces zones confinées, on peut notamment utiliser du peroxyde d'hydrogène sous forme gazeuse. Le peroxyde d'hydrogène, introduit dans un milieu gazeux aux fins d'asepsie, sera dénommé,
dans la description qui suit, " peroxyde d'hydrogène exogène "
Ainsi, en particulier pour ce qui concerne la stérilisation des isolateurs, on procède généralement en trois étapes: À une étape de déshumidification destinée à sécher l'air ambiant de l'isolateur, pendant une période d'environ 15 à 20 minutes; une étape de gazage pour la mise en contact d'une certaine quantité de peroxyde d'hydrogène avec l'environnement interne de l'isolateur, et À une étape d'aération, qui permet d'éliminer le peroxyde d'hydrogène.
A l'issue de ce cycle de stérilisation, un contrôle du taux de micro-
organisme est réalisé par prélèvement d'air à l'intérieur de l'isolateur pour
s'assurer de sa stérilité.
Toutefois, malgré les précautions prises, notamment au cours de I'étape d'aération, la demanderesse a pu constater que ce milieu gazeux peut contenir des quantités résiduelles significatives de peroxyde d'hydrogène, pouvant fausser les résultats du contrôle du taux de micro-organismes et conduire alors à
des faux négatifs.
La demanderesse a alors cherché à mettre au point un procédé
pour résoudre le problème du contrôle de la présence eVou du taux de micro-
organismes dans une zone confinée, en présence d' une quantité sign ificative de
peroxyde d'hydrogène, pour éviter tout risque de faux négatifs.
Il est par ailleurs connu que des micro-organismes ayant subit un stress, peuvent entrer dans un état o ils sont toujours actifs, mais incapables de se multiplier sur un milieu de culture. En effet, ces micro-organismes perdent, en raison du stress, leur activité catalase et superoxide dismutase. Alors, quand ils sont placés sur un milieu nutritif riche, ils ne disposent plus des moyens pour éliminer les peroxydes, en particulier le peroxyde d'hydrogène, qu'ils produisent eux-mêmes quand ils sont mis en culture ou qui sont formés par réaction photochimique ou par autooxydation de certains composés présents dans le
milieu de culture. Dans la description qui suit, on appellera " peroxyde
d'hydrogène endogène ", un tel peroxyde d'hydrogène formé par les micro organismes eux-mêmes ou suite à des réactions impliquant les composés
constitutifs du milieu de culture.
Certains auteurs ont proposé d'ajouter aux milieux de culture des composés connus pour dégrader le peroxyde d'hydrogène endogène, comme les catalases, ou des composés non-enzymatiques comme l'acide acétoglutarique, I'acide 3,3'-thiodipropionique et le pyruvate de sodium, en vue d'identifier et/ou compter les micro-organismes présents dans un milieu, malgré tout phénomène
de stress.
Ainsi, R. M. Lee et al, in Joumal of Food Protection, Vol.52, Feb.
1989, pp 119-121, ont décrit l'ajout de teneur croissante de pyruvate de sodium à un milieu de culture gélosé, pour augmenter la récupération des coliformes
d' échanti llons de prod uits alimentaires et d 'eau.
J. P. Calabrese et al., in Can. J. MICROBIOL., Vol. 36, 1990, pp 544-550, ont montré que l'ajout de catalase, de pyruvate de sodium ou de leur combinaison, permettaient d'augmenter la récupération des coliformes stressées par des eaux acides. S. Czechowicz et al., in Infemational Joumal of Food Microbiology 33 (1996), pp 275-284, et Y. Mizunoe et al., in Arch Microb. (1999)
172: 63-67, ont utilisé des catalases, I'acide o-cétoglutarique, I'acide 3,3'-
thiodiproplonique et le pyruvate de sodium pour augmenter la récupération d'Escherichia coli dégradées soit par la privation de nourriture, soit par un stress thermique. En vue de résoudre le problème qu'elle s'était posé, tel que mentionné ci-dessus, la demanderesse a envisagé, dans un premier temps, de
mettre en oeuvre un milieu de culture gélosé, supplémenté en catalase.
Toutefois, elle a alors rencontré une diffculté, que les auteurs des articles précités ne semblent pas avoir connue, et qui para^'t être spécifique au problème du contrôle de la présence et du taux de microorganismes dans un milieu gazeux comprenant du peroxyde d'hydrogène exogène. Ainsi, à l'instar de certains des auteurs précités, la demanderesse a dans un premier temps ajouter une catalase au milieu de culture mis en _uvre. Mais, il s'est avéré que la dégradation du peroxyde d'hydrogène par la catalase conduisait à la formation de quantité importante de bulles d'oxygène en surface et dans la masse de la gélose du milieu de culture gélosé. Or, ces bulles rendaient très diffcile la visualisation des colonies de micro-organismes. Par ailleurs, la mise en _uvre de catalase en des teneurs allant jusqu'à 8000 Ul/plaque (c'est à dire par milieu de culture gélosé), n'a permis d'obtenir qu'un taux de recouvrement des microcrganismes, tel que défini ci-après, relativement faible, de l'ordre de 60%. Des teneurs plus importantes en catalase n'ont pas été envisagées par la demanderesse. En effet, il a été considéré que cela aurait entrané la formation de bulles d'oxygène en une quantité telle que la visualisation des colonies de microorganismes aurait été rendue plus difficile encore, voire impossible. En outre, les catalases sont des produits onéreux, de sorte que leur utilisation en des quantités trop importantes serait rédUibitoire d'un point de vue économique, sans garanti que cela puisse
améliorer le taux de recouvrement.
La demanderesse a poursuivi ses recherches et a pu résoudre le problème évoqué plus haut au moyen du procédé constituant un premier objet de cette invention. Ainsi, I'invention consiste en un procédé de contrôle de la présence de micro-organismes dans un milieu gazeux comprenant du peroxyde d'hydrogène, caractérisé en ce qu'on met en _uvre les étapes suivantes: (i) on met en contact le milieu gazeux comprenant du peroxyde d'hydrogène avec un milieu de culture gélosé, comprenant un sel de l'acide pyruvique; (ii) on dispose le milieu de culture dans un environnement favorisant le développement de colonies de micro-organismes; (iii) on détermine la présence de colonies de micro-organismes qui
se sont éventuellement développées au cours de l'étape (ii).
Le sel de l'acide pyruvique permet d'effectuer le contrôle de la présence de micro-organismes présents dans un milieu gazeux, sans risque de
faux négatif.
En outre, et contrairement à ce qui a pu être observé par la mise en _uvre de la catalase, le sel de l'acide pyruvique ne gêne pas la détermination des
colonies de micro-organismes et permet un taux de recouvrement élevé.
Ceci n'était pas attendu dans la mesure o, certains des auteurs
mentionnés plus haut, en vue de permettre la croissance des colonies de micro-
organismes en présence de peroxyde d' hyd rogène end ogène, uti lisent indifféremment un milieu de culture additivé avec une catalase ou du pyruvate de sodium. L' invention va à p résent être décrite en détai l au regard de la
description qui suit et des figures.
La figure 1 représente un histogramme montrant l'effet, sur le taux de recouvrement des micro-organismes, d'une concentration de 0,3 ppm de
peroxyde d'hydrogène.
La figure 2 représente un histogramme montrant l'effet, sur le taux de recouvrement des micro-organismes, de pyruvate de sodium en présence de 8
ppm de peroxyde d'hydrogène.
La figure 3 représente un histogramme montrant l'effet, sur le taux de recouvrement des micro-organismes, du pyruvate de sodium après stérilisation
par rayon gamma.
La figure 4 représente un histogramme montrant l'effet, sur le taux de recouvrement des micro-organismes, d'une catalase, en concentration
croissante, en présence de 3 ppm de peroxyde d'hydrogène.
Au sens de la présente invention, on entend par l'expression " taux de recouvrement des micro-organismes ", le rapport entre, d'une part, le nombre de colonies de micro-organismes formées (cfu) sur un milieu de culture gélosé préalablement exposé à un milieu gazeux déterminé, sur lequel on a appliqué une suspension aqueuse contenant un nombre connu de micro-organismes (cfu), et, d'autre part, le nombre de colonies de microorganismes formées (cfu) sur un milieu de culture gélosé après application d'une même suspension aqueuse de micro-organisme, le milieu de culture gélosé ayant été préalablement conservé sous atmosphère stérile et n'ayant pas été exposé audit milieu gazeux déterminé,
toute chose étant égale par ailleurs.
Habituellement, le milieu gazeux comprenant le peroxyde d' hyd rogène, est l'air amb iant, en particulier l' air ambiant présent dans u ne zone
confinée, telle un isolateur.
La teneur en peroxyde d'hydrogène dans le milieu gazeux peut être comprise entre 0,1 ppm (partie par million) et 20 ppm, plus généralement entre 0,2 ppm et 10 ppm. Un ppm de peroxyde d'hydrogène correspond à 1,4 mg de
peroxyde d'hydrogène /m3.
Le milieu de culture gélosé peut comprendre, outre de la gélose, un produit de digestion enzymatique d'une protéine, telle que la caséine, une farine
végétale ou des extraits de levure.
Le milieu de culture gélosé peut consister en un milieu TSA (Tryptic Soy Agar) comportant: * un produit de digestion pancréatique de la caséine 15 g * un produit de digestion par la papane de la farine de soja 5 g * chlorure de sodium 5 g * gélose 15 g * eau qs 1000 ml Un milieu de culture gélosé TSA pouvant convenir est
commercialisé par la société DIFCO sous la référence 236950.
Le milieu de culture gélosé peut comprendre de 0,1 à 3 % en poids,
de préférence de 0,5 % à 1,5 % en poids, d'au moins un sel d'acide pyruvique.
Le sel de l'acide pyruvique pouvant être mis en _uvre dans le cadre de la présente invention peut être un sel d'un métal alcalin, comme le sodium ou le potassium, un sel d'un métal alcalino-terreux, comme le calcium ou le magnésium ou un mélange de deux ou plusieurs de ces sels. De préférence, on
met en _uvre du pyruvate de sodium.
Le milieu de culture gélosé présente de préférence une épaisseur
comprise entre 1 et 20 mm, de préférence entre 5 et 8 mm.
Le milieu de culture peut être préparé de manière connue de
l'homme du métier, par simple mélange de ses constituants.
Selon le procédé de l'invention, on met avantageusement en contact la surface du milieu de culture gélosé avec un flux contrôlé dudit milieu gazeux comprenant du peroxyde d'hydrogène, ledit flux présentant un débit substantiellement constant. En mettant en contact un flux ainsi contrôlé pendant un laps de temps prédéterminé, on peut choisir le volume d'air, ou d'un autre milieu gazeux, que l'on veut appliquer à la surface du milieu de culture gélosé et
rend re ai nsi reprod uctible le procédé de l' invention.
Un tel flux contrôlé peut être réalisé au moyen d'un appareil de prélèvement comprenant des moyens d'aspiration d'air, comme une pompe, ainsi que des moyens pour maintenir une cassette dans laquelle on a coulé le milieu de culture gélosé, de sorte à permettre la mise en contact de l'air avec la surface de
la gélose.
Un tel dispositif est décrit dans les demandes de brevet français N 98 07299 et 98 05166, au nom de Millipore S.A., auxquelles il est fait référence
dans la présente description. Un tel dispositif est aussi commercialisé par la
société Millipore, sous la marque M Air T Isolator.
La mise en culture du milieu gélosé ayant été mis en contact avec le milieu gazeux peut être réalisée dans tout dispositif adapté, tel une étuve thermostatée. Généralement, à l'issue de l'étape (iii) du procédé de l' invention, on dénombre les colonies formées et/ou on identifie la nature des micro-organismes
qui composent ces colonies, par des moyens connus de l'homme du métier.
Pour faciliter le dénombrement des colonies, on peut mettre en
_uvre des cassettes quadrillées, que l'on remplit avec le milieu de culture gélosé.
Selon un autre aspect de l'invention, celle-ci consiste en une cassette munie de moyens de fixation à un appareil de prélèvement d'air ou d'un autre milieu gazeux, tel que décrit ci-dessus, et dans laquelle est coulé un milieu
de culture gélosé comprenant un sel de l'acide pyruvique.
Une telle cassette, comprenant un milieu de culture gélosé conventi onnel le, est co nnue en elle-même. Elle est commercialisée par la société Millipore sous la marque M air T. Une cassette conforme à l'invention peut être mise en _uvre dans
le procédé décrit plus haut.
Les exemples qui suivent ont pour but d'illustrer la présente invention. Exemple 1 (non conforme à l'invention) Afin de vérifier l'influence de traces de peroxyde d'hydrogène gazeux (vhp) sur la formation de colonies de différents micro-organismes, on a tout d'abord prélevé 1 m3 d'air dans une hotte à flux laminaire faisant office d'environnement stérile et dépourvu de peroxyde d'hydrogène. L'air ainsi prélevé a été impacté à la surface d'un milieu de culture gélosé TSA,
commercialisé par la société DiFCO sous la référence 236950.
On a étalé à la surface du milieu de culture, une suspension
aqueuse comprenant un nombre prédéterminé de micro-organismes.
On a placé ensuite les milieux de culture TSA dans une étuve
thermostatée pour permettre la croissance des colonies de microorganismes.
On a répété cet essai, mais en mettant en _uvre un milieu de culture gélosé TSA impacté par 1 m3 d'air comprenant 0,3 ppm de peroxyde d'hydrogène. Les résultats obtenus sont représentés à la figure 1, o l'axe des abscisses représente la nature des micro-organismes qui se sont développés à la surface du milieu de culture gélosé et l'axe des ordonnées représente le taux de recouvrement, à savoir le rapport entre le nombre de cfu déterminé en présence de peroxyde d'hydrogène et le nombre de cfu déterminé en
environnement stérile.
Les résultats obtenus montrent qu'une faible teneur de peroxyde d'hydrogène peut conduire à l'inhibition de la formation des colonies de micro
organismes et donc conduire à des faux négatifs.
Exemple 2
On a reproduit l'exemple 1 mais en utilisant 1 m3 d'air comprenant 8 ppm de peroxyde d'hydrogène (au lieu de 0,3 ppm) que l'on a impacté, dans un premier temps, sur le milieu de culture TSA, puis, dans un second temps,
sur le milieu TSA additivé par 1% en poids de pyrovate de sodium.
Les résultats obtenus sont représentés à la figure 2, o l'axe des abscisses rep résente la natu re des m icro-org an ismes et l' axe des o rdo n nées
représente le taux de recouvrement.
On constate que le pyruvate de sodium permet la formation et le dénombrement des colonies de micro-organismes alors que le milieu de culture
n'en comprenant pas, n'autorise pas la formation de colonies de micro-
organismes. On constate encore que le taux de recouvrement est très bon puisqu'il est toujours d'au moins 80%, ce quel que soit le microorganisme considéré.
Exemple 3
On a reproduit l'exemple 2 en prélevant 1 m3 d'air comprenant 8 ppm de peroxyde d'hydrogène que l'on a impacté, dans un premier temps, sur le même milieu de culture TSA additivé par 1% en poids de pyruvate de sodium, non stérilisé par l'action des rayons gamma. Puis, dans un second temps, on a répété le même essai mais, cette fois, sur le même milieu de
culture stérilisé par l'action des rayons gamma.
Les résultats obtenus sont représentés à la figure 3, o l'axe des abscisses rep résente la natu re des mi cro-o rg an ismes et l ' axe des ord on nées
représente le taux de recouvrement.
On constate que le pyruvate de sodium conserve son effet que le
milieu de culture gélosé soit stérilisé ou non par des rayons gamma.
Exemple 4 (non conforme à l'invention À On a reproduit l'exemple 1 mais en utilisant 1 m3 d'air comprenant 3 ppm de peroxyde d'hydrogène (au lieu de 0,3 ppm) que l'on a impacté cette fois sur des milieux de culture gélosé TSA additivé par des teneurs croissantes d'une catalase (de 0 à 8000 Ul/plaque). Le seul micro-organisme mis en
_uvre était Staphylococcus aureus.
Les résultats obtenus sont représentés à la figure 4, o l'axe des abscisses représente la teneur en catalase et l'axe des ordonnées représente
le taux de recouvrement.
On constate que la catalase, utilisé en des teneurs élevées (8000 Ul/plaque) permet un taux de recouvrement maximum de 60%, ce qui est bien inférieur aux résultats obtenus avec le procédé de l'invention, qui a conduit à un tsux de recouvremen1 de pros de 120 pour ce qui concerns Staphylococcus aureus. En outre, la catalase a provoqud +a formation de buues d'oxygAne
Hi on Ins Dada numb den mu.
Claims (9)
1. Un procédé de contrôle de la présence de micro-organismes dans un milieu gazeux comprenant du peroxyde d'hydrogène, caractérisé ce qu'on met en _uvre les étapes suivantes: (i) on met en contact le milieu gazeux comprenant du peroxyde d'hydrogène avec un milieu de culture gélosé, comprenant un sel de l'acide pyruvique; (ii) on dispose le milieu de culture dans un environnement favorisant le développement de colonies de micro-organismes; (iii) on détermine la présence de colonies de microorganismes qui
se sont éventuellement développées au cours de l'étape (ii).
2. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que le milieu
gazeux est l'air ambiant.
3. Procédé selon l'une des revendications 1 et 2, caractérisé en ce
que la teneur en peroxyde d'hydrogène dans le milieu gazeux est compris entre
0,1 ppm et 20 ppm, de préférence entre 0,2 ppm et 10 ppm.
4. Procédé selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce
que le milieu de culture gélosé comprend de 0,1 à 3 % en poids, de préférence de
0,5 % à 1,5 % en poids, d'au moins un sel d'acide pyruvique.
5. Procédé selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce
que le sel de l'acide pyruvique est le pyruvate de sodium.
6. Procédé selon l'une des revendications 1 à 5, caractérisé en ce
que le milieu de culture gélosé présente une épaisseur comprise entre 1 et 20
mm, de préférence entre 5 et 8 mm.
7. Procédé selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé en ce
qu'on met en contact la surface du milieu gélosé avec un flux dudit milieu gazeux comprenant du peroxyde d'hydrogène, ledit flux présentant un débit
substantiellement constant.
8. Procédé selon rune des revendications 1 à 7, caractérisé en ce
qu'à, I'issue de l'étape (iii), on dénombre les colonies formées et/ou on identifie la
nature des micro-organismes qui composent ces colonies.
9. Une cassette comprenant des moyens de fixation à un appareil de prélèvement d'air ou d'un autre milieu gazeux et dans laquelle est coulé un
Priority Applications (5)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
FR0200608A FR2834998B1 (fr) | 2002-01-18 | 2002-01-18 | Procede de controle de la presence de micro-organismes dans un milieu gazeux comprenant du peroxyde d'hydrogene |
EP02292921A EP1329515A1 (fr) | 2002-01-18 | 2002-11-26 | Procédé de contrôle de la présence de micro-organismes dans un milieu gazeux comprenant du peroxyde d'hydrogène |
US10/305,831 US7192734B2 (en) | 2002-01-18 | 2002-11-27 | Method of testing for the presence of microorganisms in a gaseous environment comprising hydrogen peroxide |
JP2002346986A JP4447833B2 (ja) | 2002-01-18 | 2002-11-29 | 過酸化水素を含有する気体環境中の微生物の存在の試験方法 |
JP2009275102A JP2010075206A (ja) | 2002-01-18 | 2009-12-03 | 過酸化水素を含有する気体環境中の微生物の存在の試験方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
FR0200608A FR2834998B1 (fr) | 2002-01-18 | 2002-01-18 | Procede de controle de la presence de micro-organismes dans un milieu gazeux comprenant du peroxyde d'hydrogene |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
FR2834998A1 true FR2834998A1 (fr) | 2003-07-25 |
FR2834998B1 FR2834998B1 (fr) | 2004-04-02 |
Family
ID=8871347
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
FR0200608A Expired - Fee Related FR2834998B1 (fr) | 2002-01-18 | 2002-01-18 | Procede de controle de la presence de micro-organismes dans un milieu gazeux comprenant du peroxyde d'hydrogene |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US7192734B2 (fr) |
EP (1) | EP1329515A1 (fr) |
JP (2) | JP4447833B2 (fr) |
FR (1) | FR2834998B1 (fr) |
Families Citing this family (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE10233346B4 (de) * | 2002-07-23 | 2006-01-12 | Biotest Ag | Gammasterilisierbares Kulturmedium auf der Basis von Caseinsojapeptonagar zum Nachweis von Mikroorganismen in wasserstoffperoxidhaltiger Luft oder wasserstoffperoxidhaltigen Oberflächen |
NO2262907T3 (fr) | 2008-04-04 | 2018-05-19 | ||
GB0820398D0 (en) * | 2008-11-07 | 2008-12-17 | Oxoid Ltd | Semi-opaque medium for culture of microorganisms |
DE102009013534A1 (de) * | 2009-03-19 | 2010-09-23 | Crinotec Gmbh | Verfahren und Vorrichtung zur Bestimmung eines Fremdstoffgehalts in einer Matrix |
RU2554470C2 (ru) | 2010-06-03 | 2015-06-27 | Басф Се | Обнаружение и подсчет микроорганизмов |
ITRM20130128U1 (it) | 2013-07-23 | 2015-01-24 | Particle Measuring Systems S R L | Dispositivo per il campionamento microbico dell'aria |
EP3881049A4 (fr) | 2018-11-16 | 2022-01-12 | Particle Measuring Systems, Inc. | Systèmes et procédés d'échantillonnage de particules destinés à des systèmes de barrière de fabrication commandés par robotique |
US11892462B2 (en) | 2020-01-21 | 2024-02-06 | Pharma Integration Srl | Robotic control for aseptic processing |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB1554193A (en) * | 1975-10-24 | 1979-10-17 | Boehringer Sohn Ingelheim | Nutrient media for microbiological testing |
US4528269A (en) * | 1980-04-14 | 1985-07-09 | The State Of Oregon By And Through The Oregon State Board Of Higher Education On Behalf Of Oregon State University | Method for producing single and/or mixed strain concentrates of bacteria |
WO1999002650A1 (fr) * | 1997-07-11 | 1999-01-21 | Oxoid Limited | Enrichissement selectif et detection de micro-organismes |
Family Cites Families (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3514278A (en) * | 1968-01-08 | 1970-05-26 | Betz Laboratories | Slime control agent and methods of application |
US4521375A (en) * | 1982-11-23 | 1985-06-04 | Coopervision, Inc. | Sterilizing treatment with hydrogen peroxide and neutralization of residual amounts thereof |
US5266096A (en) * | 1992-02-20 | 1993-11-30 | Jeru Ecology, Inc. | Microbial composition |
JP3163571B2 (ja) * | 1992-10-02 | 2001-05-08 | 株式会社クラレ | 薬剤耐性ブドウ球菌測定ユニット |
JP3431812B2 (ja) * | 1996-11-07 | 2003-07-28 | 株式会社エスアールエル | 菌検出器具 |
KR100211674B1 (ko) * | 1997-02-25 | 1999-08-02 | 윤종용 | 과산화수소에 저항성을 갖는 신규 미생물 |
JP3380956B2 (ja) * | 1997-06-24 | 2003-02-24 | 北海道 | 黄色ブドウ球菌の検出培地 |
FR2779822B1 (fr) * | 1998-06-10 | 2000-09-08 | Millipore Sa | Procede et appareil de prelevement pour l'analyse microbiologique de l'air |
JP2000125843A (ja) * | 1998-10-26 | 2000-05-09 | Midori Anzen Co Ltd | ポータブル型空中浮遊菌サンプラ |
-
2002
- 2002-01-18 FR FR0200608A patent/FR2834998B1/fr not_active Expired - Fee Related
- 2002-11-26 EP EP02292921A patent/EP1329515A1/fr not_active Withdrawn
- 2002-11-27 US US10/305,831 patent/US7192734B2/en not_active Expired - Fee Related
- 2002-11-29 JP JP2002346986A patent/JP4447833B2/ja not_active Expired - Fee Related
-
2009
- 2009-12-03 JP JP2009275102A patent/JP2010075206A/ja active Pending
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB1554193A (en) * | 1975-10-24 | 1979-10-17 | Boehringer Sohn Ingelheim | Nutrient media for microbiological testing |
US4528269A (en) * | 1980-04-14 | 1985-07-09 | The State Of Oregon By And Through The Oregon State Board Of Higher Education On Behalf Of Oregon State University | Method for producing single and/or mixed strain concentrates of bacteria |
WO1999002650A1 (fr) * | 1997-07-11 | 1999-01-21 | Oxoid Limited | Enrichissement selectif et detection de micro-organismes |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP2003222621A (ja) | 2003-08-08 |
FR2834998B1 (fr) | 2004-04-02 |
US7192734B2 (en) | 2007-03-20 |
JP2010075206A (ja) | 2010-04-08 |
US20030148415A1 (en) | 2003-08-07 |
EP1329515A1 (fr) | 2003-07-23 |
JP4447833B2 (ja) | 2010-04-07 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP0083267B1 (fr) | Procédé de préparation d'inoculums à faible activité de l'eau à resistance améliorée à la température et à la réhydratation | |
JP3597533B2 (ja) | 気体状殺菌薬のための生物指標に基づいたサーキュランス菌 | |
JP2010075206A (ja) | 過酸化水素を含有する気体環境中の微生物の存在の試験方法 | |
Balcavage et al. | Properties of Saccharomyces cerevisiae mitochondria prepared by a mechanical method | |
EP1025259A1 (fr) | Procede de regulation de la desinfection de liquides | |
EP3092297B1 (fr) | Procédé de détection, identification et énumération de micro-organismes dans un support poreux imprégné à sec par un milieu réactionnel déshydraté | |
Leonhardt et al. | The potential use of silicon compounds as oxygen carriers for free and immobilized cells containing L-amino acid oxidase: a model study using the bacteria Providencia sp. PCM 1298 | |
JPH09503128A (ja) | 滅菌の迅速な測定のための生物学的関連方法 | |
EP0830461B1 (fr) | Procede de biodegradation des polyorganosiloxanes par un champignon microscopique et methode de criblage | |
Lebeau et al. | Alginate-entrapped Haslea ostrearia as inoculum for the greening of oysters | |
Scott et al. | Oxygen uptake by κ-carrageenan entrapped Streptomyces clavuligerus | |
TW201710507A (zh) | 微生物檢測裝置之製造方法、微生物檢測方法、微生物檢測套組及裝置 | |
Gleason et al. | Comparative Physiology of Respiration in Aquatic Fungi: I. The Leptomitales | |
KNABEL et al. | Enumeration of Fluorescent Pseudomonads on Poultry by using the Hydrophobic‐Grid Membrane Filter Method | |
CA2352481A1 (fr) | Procede de detection de micro-organismes et support utilisable dans un tel procede | |
AU639372B2 (en) | Apparatus for measuring free and total sulfurous acid and method of measurement | |
FR3135730A1 (fr) | Procédé de fabrication d’un support microbien , produit associé et son utilisation | |
JPS61152571A (ja) | 物品の保存方法 | |
FR2576318A1 (fr) | Dispositif pour le dosage des effecteurs de la chaine d'oxydation cellulaire et procedes de dosage de ces effecteurs | |
CH636376A5 (en) | Process for the identification of bacteria and culture medium for its implementation | |
EP0434563A1 (fr) | Procédé de production de peroxydases MN-dépendantes | |
WO2004111263A1 (fr) | Milieu de culture pour la recherche des salmonelles | |
WO1986003773A1 (fr) | Procede permettant d'accroitre la solubilite des gaz dans un milieu aqueux et emulsion servant a appliquer ce procede | |
BE899103A (fr) | Procede de sterilisation au dioxyde de chlore gazeux et appareil utilise a cet effet. | |
BE517841A (fr) | Production d'ingrédients destinés aux matières alimentaires |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
CD | Change of name or company name |
Owner name: EMD MILLIPORE CORPORATION, US Effective date: 20120328 |
|
ST | Notification of lapse |
Effective date: 20130930 |