FR2757148A1 - Controle et elimination des parasites dans les bassins piscicoles - Google Patents
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- A01N37/16—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing organic compounds containing a carbon atom having three bonds to hetero atoms with at the most two bonds to halogen, e.g. carboxylic acids containing the group; Thio analogues thereof
Abstract
L'invention a pour objet un procédé de traitement des eaux de bassins destiné à contrôler le développement de parasites et/ou à éliminer lesdits parasites, caractérisé en ce que l'on ajoute de manière simultanée ou séparée dans le temps des quantités efficaces d'acide peracétique et de peroxyde d'hydrogène et une composition pour la mise en oeuvre d'une méthode de traitement thérapeutique des poissons.
Description
L'invention se rapporte au contrôle du développement des parasites et/ou à l'élimination desdits parasites dans les eaux de bassins.
Notamment dans les bassins d'élevage aquacole, la prolifération des parasites peut causer des dommages importants. On peut citer par exemple
Lepeophteirus salmonis K., appelé communément "pou de mer" qui est le responsable d'importantes pertes dans les élevages de saumons.
Lepeophteirus salmonis K., appelé communément "pou de mer" qui est le responsable d'importantes pertes dans les élevages de saumons.
Parmi les traitements décrits dans l'état de la technique, on peut citer notamment ceux dans lesquels le principe actif est le peroxyde d'hydrogène, comme dans la demande de brevet britannique GB 2 260 703 ou japonaise JP 010317346.
Cependant, ces traitements mettent en oeuvre des concentrations élevées de peroxyde d'hydrogène (autour de 1,5g/dm3) pendant des temps de contact souvent supérieurs à 20 minutes.
Or, la Demanderesse a remarqué que d'une part, certains genres d'animaux, notamment les poissons, ne supportent des concentrations élevées en peroxyde d'hydrogène que pendant des temps courts et que d'autre part, le peroxyde d'hydrogène n'a pas toujours un effet létal désiré sur le parasite.
L'invention a donc pour objet un procédé de traitement des eaux de bassins destiné à contrôler le développement de parasites et/ou à éliminer lesdits parasites, caractérisé en ce que l'on ajoute de manière simultanée ou séparée dans le temps des quantités efficaces d'acide peracétique et de peroxyde d'hydrogène.
L'invention a notamment pour objet le procédé tel que décrit précédemment mis en oeuvre pour traiter les eaux de bassins d'élevage piscicole.
Dans une variante préférée de la présente invention, le procédé tel que décrit précédemment est mis en oeuvre pour contrôler le développement des ectoparasites du poisson tels que Caligus Spinosus ou Fugus Rubriques ou celui des parasites des salmonidés tels que Lepéophteirus Salmonis et/ou pour éliminer lesdits parasites.
Dans une deuxième variante préférée de la présente invention, on ajoute dans l'eau du bassin, qui peut être de l'eau douce ou de l'eau de mer, la quantité nécessaire d'acide peracétique et de peroxyde d'hydrogène pour obtenir une concentration en acide peracétique comprise en 1 et 10 ppm et une concentration en peroxyde d'hydrogène comprise entre 200 et 350 ppm.
Dans une troisième variante du procédé objet de la présente demande de brevet, on ajoute dans l'eau du bassin, à la place du couple acide peracétique et peroxyde d'hydrogène, une formulation solide génératrice d'acide peracétique et de peroxyde d'hydrogène et notamment une formulation comportant en poids de 250 à 3000 parties de tétracétyléthylènedianine, de 500 à 5000 parties en poids de perborate de sodium ou de percarbonate de sodium et de 300 à 3000 parties d'acide citrique.
De telles formulations sont décrites plus en détail dans la demande internationale de brevet publiée sous le numéro WO 96/18297.
Dans une quatrième variante du procédé, objet de la présente demande de brevet, on ajoute à l'eau du bassin d'élevage une solution aqueuse comprenant de l'acide acétique, de l'acide peracétique et du peroxyde d'hydrogène
De telles solutions sont décrites dans les demandes de brevet européen publiées sous les numéros EP 0 024 219 ou EP 0 087 343, EP 0 193 416 ou EP 0 370 850.
De telles solutions sont décrites dans les demandes de brevet européen publiées sous les numéros EP 0 024 219 ou EP 0 087 343, EP 0 193 416 ou EP 0 370 850.
Dans une variante préférée du procédé tel que décrit précédemment l'eau du bassin d'élevage est de l'eau de mer à une température de 0 à 20au.
L'invention a aussi pour objet une composition pour la mise en oeuvre d'une méthode de traitement thérapeutique des poissons d'élevages piscicoles destinée à prévenir ou à soigner les dommages causés par des parasites et, de préférence, pour la mise en oeuvre d'une méthode de traitement thérapeutique du saumon ou de la truite notamment de truite fario (salmo trutta), caractérisée en ce qu'elle est génératrice par dilution dans l'eau de quantités efficaces d'acide peracétique et de peroxyde d'hydrogène.
La composition selon l'invention se présente notamment comme une formulation solide génératrice d'acide peracétique et de peroxyde d'hydrogène et notamment une formulation comportant en poids de 250 à 3000 parties de tétracétyléthylènedianine, de 500 à 5000 parties en poids de perborate de sodium ou de percarbonate de sodium et de 300 à 3000 parties d'acide citrique ou comme une solution aqueuse d'acide acétique, d'acide peracétique et de peroxyde d'hydrogène.
Les exemples suivants illustrent l'invention sans toutefois la limiter.
A) ESSAI NO 1
Essais In Vitro
I - Matériel et méthode
1.1 - Les copépodes
Les copépodes (Lepeophteirus salmonis) proviennent tous de l'estuaire du
Jaudy, dans les côtes d'Armor. Ils sont prélevés sur des truites Arc en Ciel (Onchorhyncus mykiss). Lors des prélèvements, la température de l'eau d'élevage varie entre 14"C et 160C, la salinité étant stable à 3 %.
Essais In Vitro
I - Matériel et méthode
1.1 - Les copépodes
Les copépodes (Lepeophteirus salmonis) proviennent tous de l'estuaire du
Jaudy, dans les côtes d'Armor. Ils sont prélevés sur des truites Arc en Ciel (Onchorhyncus mykiss). Lors des prélèvements, la température de l'eau d'élevage varie entre 14"C et 160C, la salinité étant stable à 3 %.
Les copépodes sont prélevés dans l'après-midi dans des seaux contenant l'eau du site et stockés dans ces mêmes seaux durant une nuit sous bullage d'air.
I.2. Protocole d'expérimentation
13 béchers de 1 litre sont remplis de 1 litre d'eau de mer, la température et la salinité sont relevées.
13 béchers de 1 litre sont remplis de 1 litre d'eau de mer, la température et la salinité sont relevées.
Les copépodes prélevés la veille sont répartis dans les 13 béchers, à raison de 12 par bécher, en prenant soin de choisir les plus vigoureux.
Une observation de l'état de vigueur des copépodes dans les béchers est effectuée pendant 5 minutes, les individus présentant des faiblesses sont remplacés.
Des quantités précises BACTIPALB qui est un produit commercial, sont introduites dans le bécher considéré afin d'atteindre les concentrations recherchées en peroxyde d'hydrogène et en acide peracétique. La solution test est homogénéisée par agitation avec une pipette Pasteur.
Un chronomètre est déclenché afin de définir les temps d'observation.
Il - Résultats
Les résultats représentés par le temps nécessaire pour obtenir 100 % de mortalité des copépodes sont consignés dans le tableau suivant
Les résultats représentés par le temps nécessaire pour obtenir 100 % de mortalité des copépodes sont consignés dans le tableau suivant
<tb> APA <SEP> (ppm) <SEP> 0,0 <SEP> 20,0 <SEP> 50,0 <SEP> 100,0 <SEP> 0,0 <SEP> 20,0
<tb> H202 <SEP> (ppm) <SEP> 700,0 <SEP> 700,0 <SEP> 700,0 <SEP> 700,0 <SEP> 500,0 <SEP> 500,0
<tb> temps <SEP> (minutes) <SEP> 20,0 <SEP> 10,0 <SEP> 10,0 <SEP> 10,0 <SEP> 60,0 <SEP> 20,0
<tb>
<tb> H202 <SEP> (ppm) <SEP> 700,0 <SEP> 700,0 <SEP> 700,0 <SEP> 700,0 <SEP> 500,0 <SEP> 500,0
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<tb>
<tb> APÀ <SEP> (ppm) <SEP> 20,0 <SEP> 50,0 <SEP> 0,0 <SEP> 37,5 <SEP> 75,0 <SEP> 100,0 <SEP> 200,0
<tb> H202 <SEP> (ppm) <SEP> 400,0 <SEP> 400,0 <SEP> 300,0 <SEP> 300,0 <SEP> 300,0 <SEP> 60,0 <SEP> 50,0
<tb> temps <SEP> (minutes) <SEP> 20,0 <SEP> 20,0 <SEP> 60,0 <SEP> 20,0 <SEP> 5,0 <SEP> 5,0 <SEP> 5,0
<tb>
Ils démontrent l'activité parasiticide intrinsèque de l'acide peracétique.
<tb> H202 <SEP> (ppm) <SEP> 400,0 <SEP> 400,0 <SEP> 300,0 <SEP> 300,0 <SEP> 300,0 <SEP> 60,0 <SEP> 50,0
<tb> temps <SEP> (minutes) <SEP> 20,0 <SEP> 20,0 <SEP> 60,0 <SEP> 20,0 <SEP> 5,0 <SEP> 5,0 <SEP> 5,0
<tb>
Ils démontrent l'activité parasiticide intrinsèque de l'acide peracétique.
B) ESSAI NO 2
L'activité in vitro de solutions d'acide peracétique et d'eau oxygénée sur lépéophteirus Salmonis à des concentrations non toxiques pour les poissons a été observée après 30 minutes et 90 minutes de contact , les résultats sont présentés dans le tableau suivant
L'activité in vitro de solutions d'acide peracétique et d'eau oxygénée sur lépéophteirus Salmonis à des concentrations non toxiques pour les poissons a été observée après 30 minutes et 90 minutes de contact , les résultats sont présentés dans le tableau suivant
<tb> Composition <SEP> nos <SEP> 6 <SEP> 2 <SEP> 3 <SEP> 4 <SEP> 5 <SEP> 6
<tb> APA(ppm) <SEP> I <SEP> 1 <SEP> 1 <SEP> 1 <SEP> S <SEP> 5
<tb> H202 <SEP> (ppm) <SEP> 250 <SEP> 200 <SEP> 150 <SEP> 100 <SEP> 250 <SEP> 200
<tb> % <SEP> mortalité <SEP> à <SEP> 30 <SEP> min <SEP> ~ <SEP> 40 <SEP> % <SEP> -20% <SEP> ~ <SEP> 5 <SEP> % <SEP> ~ <SEP> 15 <SEP> % <SEP> ~ <SEP> 60 <SEP> % <SEP> 15% <SEP>
<tb> % <SEP> mortalité <SEP> à <SEP> 90 <SEP> min <SEP> 95% <SEP> ~ <SEP> 40% <SEP> ~ <SEP> 10 <SEP> % <SEP> ~ <SEP> 20 <SEP> % <SEP> ~ <SEP> 90% <SEP> 25% <SEP>
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<tb>
<tb> Composition <SEP> 7 <SEP> 8 <SEP> 9 <SEP> 10 <SEP> il <SEP> <SEP> 12
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<tb> % <SEP> mortalité <SEP> à <SEP> 90 <SEP> min <SEP> 30 <SEP> % <SEP> - <SEP> 30% <SEP> 100 <SEP> % <SEP> 65 <SEP> % <SEP> 45 <SEP> % <SEP>
<tb>
Ces résultats obtenus notamment pour les compositions nos 1, 5, 9 et 10 démontrent leur activité à des concentrations non toxiques pour les poissons.
<tb> APA(ppm) <SEP> 5 <SEP> 5 <SEP> 10 <SEP> 10 <SEP> 10 <SEP> 10
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<tb>
Ces résultats obtenus notamment pour les compositions nos 1, 5, 9 et 10 démontrent leur activité à des concentrations non toxiques pour les poissons.
Essai in Vivo sur truites fario
Trois substances ont été testées dans des bacs PVC de 55 litres remplis d'eau de mer et dans lesquels se trouvaient 11 truites (100 à 150 g).
Trois substances ont été testées dans des bacs PVC de 55 litres remplis d'eau de mer et dans lesquels se trouvaient 11 truites (100 à 150 g).
L'eau de mer a une salinité stable de 320% et une température de 11,5"C.
Les 40 fario stockées en eau de mer, circuit ouvert, sont mises à jeun 48 heures avant l'expérience (11 par bac).
Le jour de l'expérience, l'arrivée d'eau est coupée, le volume ajusté à 50 1, le bullage d'air maintenu. Les substances sont introduites à l'aide de pilulier en verre.
Après l'addition, le brassage est effectué par une spatule en plus du mouvement des poissons.
Après un temps de contact défini pour chaque substance, la circulation d'eau est rétablie dans les bacs à raison de 2 renouvellements par heure.
<tb> <SEP> H202 <SEP> 200 <SEP> ppm <SEP> 250 <SEP> ppm <SEP> 300 <SEP> ppm
<tb> APA
<tb> 1 <SEP> ppm <SEP> dynamique <SEP> 1 <SEP> h
<tb> 2 <SEP> ppm <SEP> dynamique <SEP> 45 <SEP> min
<tb> 3 <SEP> ppm <SEP> dynamique <SEP> 30 <SEP> min
<tb>
Après 4 heures, aucune mortalité n'est constatée. Aucune plaie externe n'est observée.
<tb> APA
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<tb> 2 <SEP> ppm <SEP> dynamique <SEP> 45 <SEP> min
<tb> 3 <SEP> ppm <SEP> dynamique <SEP> 30 <SEP> min
<tb>
Après 4 heures, aucune mortalité n'est constatée. Aucune plaie externe n'est observée.
Ces résultats démontrent l'activité "in vivo" des compositions selon l'invention ainsi que leur inocuité vis-à-vis des poissons.
Claims (11)
1. Procédé de traitement des eaux de bassins destiné à contrôler le développement de parasites et/ou à éliminer lesdits parasites, caractérisé en ce que l'on ajoute de manière simultanée ou séparée dans le temps des quantités efficaces d'acide peracétique et de peroxyde d'hydrogène.
2. Procédé selon la revendication 1 destiné à contrôler le développement de parasites et/ou à éliminer lesdits parasites dans un bassin d'élevage piscicole.
3. Procédé selon l'une des revendications 1 ou 2, destiné à contrôler le développement des ectoparasites du poisson tel que Caligus Spinosus ou Fugus
Rubriques ou les parasites du saumon tels que Lépéophterius Salmonis, et/ou éliminer lesdits parasites.
4. Procédé selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que l'on ajoute dans l'eau du bassin la quantité nécessaire d'acide peracétique et de peroxyde d'hydrogène pour obtenir dans l'eau du bassin, une concentration en acide peracétique comprise en 1 et 10 ppm et une concentration en peroxyde d'hydrogène comprise entre 200 et 350 ppm.
5. Variante du procédé selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisée en ce que l'on ajoute à l'eau du bassin, à la place du couple acide peracétique et peroxyde d'hydrogène, une formulation solide génératrice d'acide peracétique et de peroxyde d'hydrogène et notamment une formulation comportant en poids de 250 à 3000 parties de tétracétyléthylènedianine, de 500 à 5000 parties en poids de perborate de sodium ou de percarbonate de sodium et de 300 à 3000 parties d'acide citrique.
6. Variante du procédé selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisée en ce que l'on ajoute à l'eau du bassin d'élevage une solution aqueuse d'acide acétique, d'acide peracétique et de peroxyde d'hydrogène.
7. Procédé selon l'une des revendications 1 à 6, dans lequel l'eau du bassin d'élevage est de l'eau de mer à une température de 0 à 20"C.
8. Composition pour la mise en oeuvre d'une méthode de traitement thérapeutique des poissons d'élevage piscicole, destinée à prévenir ou à soigner les dommages causés par des parasites, caractérisée en ce qu'elle est génératrice par dilution dans l'eau de quantités efficaces d'acide peracétique et de peroxyde d'hydrogène.
9. Composition selon la revendication 8 pour la mise en oeuvre d'une méthode de traitement thérapeutique du saumon ou de la truite notamment de la truite fario (salmo trutta).
10. Composition selon l'une des revendications 8 ou 9, se présentant comme une formulation solide génératrice d'acide peracétique et de peroxyde d'hydrogène et notamment une formulation comportant en poids de 250 à 3000 parties de tétracétyléthylènedianine, de 500 à 5000 parties en poids de perborate de sodium ou de percarbonate de sodium et de 300 à 3000 parties d'acide citrique.
11. Composition selon l'une des revendications 8 ou 9, se présentant comme une solution aqueuse comprenant de l'acide acétique, de l'acide peracétique et du peroxyde d'hydrogène.
Priority Applications (8)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
FR9615369A FR2757148B1 (fr) | 1996-12-13 | 1996-12-13 | Controle et elimination des parasites dans les bassins piscicoles |
EP97953936A EP0944305B1 (fr) | 1996-12-13 | 1997-12-05 | Utilisation d'acide peracetique en pisciculture |
CA002275287A CA2275287A1 (fr) | 1996-12-13 | 1997-12-05 | Utilisation d'acide peracetique en pisciculture |
JP52625498A JP2001506618A (ja) | 1996-12-13 | 1997-12-05 | 魚養殖における過酢酸の使用 |
PCT/EP1997/007338 WO1998025456A1 (fr) | 1996-12-13 | 1997-12-05 | Utilisation d'acide peracetique en pisciculture |
ES97953936T ES2191211T3 (es) | 1996-12-13 | 1997-12-05 | Uso de acido peracetico en piscicultura. |
US08/990,987 US6117457A (en) | 1996-12-13 | 1997-12-15 | Use of peracetic acid in fish farming |
NO19992818A NO320408B1 (no) | 1996-12-13 | 1999-06-10 | Anvendelse av pereddiksyre i fiskeoppdrett |
Applications Claiming Priority (1)
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FR9615369A Expired - Fee Related FR2757148B1 (fr) | 1996-12-13 | 1996-12-13 | Controle et elimination des parasites dans les bassins piscicoles |
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1996
- 1996-12-13 FR FR9615369A patent/FR2757148B1/fr not_active Expired - Fee Related
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DATABASE WPI Section Ch Week 9006, Derwent World Patents Index; Class B06, AN 90-040628, XP002039065 * |
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FR2757148B1 (fr) | 1999-01-08 |
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ST | Notification of lapse |
Effective date: 20081020 |