ES2353032T3 - Procedimiento para la obtención de proteínas y/o péptidos vegetales, proteínas y/o péptidos producidos con el mismo, y uso de los mismos. - Google Patents
Procedimiento para la obtención de proteínas y/o péptidos vegetales, proteínas y/o péptidos producidos con el mismo, y uso de los mismos. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2353032T3 ES2353032T3 ES08003155T ES08003155T ES2353032T3 ES 2353032 T3 ES2353032 T3 ES 2353032T3 ES 08003155 T ES08003155 T ES 08003155T ES 08003155 T ES08003155 T ES 08003155T ES 2353032 T3 ES2353032 T3 ES 2353032T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- proteins
- peptides
- membrane
- procedure
- exchange membrane
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 title claims abstract description 92
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 title claims abstract description 92
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 70
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 title claims abstract description 42
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 title claims abstract description 37
- 235000013311 vegetables Nutrition 0.000 title claims abstract description 11
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims abstract description 55
- 239000003480 eluent Substances 0.000 claims abstract description 15
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 claims abstract description 15
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 claims abstract description 10
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims abstract description 10
- 238000001035 drying Methods 0.000 claims abstract description 9
- 239000007858 starting material Substances 0.000 claims abstract description 8
- 239000003014 ion exchange membrane Substances 0.000 claims abstract description 7
- 239000012535 impurity Substances 0.000 claims abstract description 3
- 244000061456 Solanum tuberosum Species 0.000 claims description 32
- 235000002595 Solanum tuberosum Nutrition 0.000 claims description 32
- 235000012015 potatoes Nutrition 0.000 claims description 12
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 claims description 11
- 239000011148 porous material Substances 0.000 claims description 11
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 8
- 238000005341 cation exchange Methods 0.000 claims description 8
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims description 8
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 8
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 7
- 229920002472 Starch Polymers 0.000 claims description 6
- 238000005345 coagulation Methods 0.000 claims description 6
- 230000015271 coagulation Effects 0.000 claims description 6
- 230000036425 denaturation Effects 0.000 claims description 6
- 238000004925 denaturation Methods 0.000 claims description 6
- 238000001471 micro-filtration Methods 0.000 claims description 6
- 239000008107 starch Substances 0.000 claims description 6
- 235000019698 starch Nutrition 0.000 claims description 6
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 claims description 6
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 claims description 5
- NLXLAEXVIDQMFP-UHFFFAOYSA-N Ammonia chloride Chemical compound [NH4+].[Cl-] NLXLAEXVIDQMFP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- 238000005349 anion exchange Methods 0.000 claims description 4
- 239000003011 anion exchange membrane Substances 0.000 claims description 4
- 238000003795 desorption Methods 0.000 claims description 4
- 238000005342 ion exchange Methods 0.000 claims description 4
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims description 4
- 240000002791 Brassica napus Species 0.000 claims description 3
- 235000004977 Brassica sinapistrum Nutrition 0.000 claims description 3
- 235000010469 Glycine max Nutrition 0.000 claims description 3
- 239000000835 fiber Substances 0.000 claims description 3
- 235000021374 legumes Nutrition 0.000 claims description 3
- 238000001728 nano-filtration Methods 0.000 claims description 3
- 229920001059 synthetic polymer Polymers 0.000 claims description 3
- 244000068988 Glycine max Species 0.000 claims description 2
- 241000219745 Lupinus Species 0.000 claims description 2
- 235000019270 ammonium chloride Nutrition 0.000 claims description 2
- 238000005352 clarification Methods 0.000 claims description 2
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 claims description 2
- 238000009413 insulation Methods 0.000 claims description 2
- 238000005374 membrane filtration Methods 0.000 claims description 2
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 claims description 2
- 238000001694 spray drying Methods 0.000 claims description 2
- GNFTZDOKVXKIBK-UHFFFAOYSA-N 3-(2-methoxyethoxy)benzohydrazide Chemical compound COCCOC1=CC=CC(C(=O)NN)=C1 GNFTZDOKVXKIBK-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 244000046052 Phaseolus vulgaris Species 0.000 claims 1
- 235000010627 Phaseolus vulgaris Nutrition 0.000 claims 1
- 240000004713 Pisum sativum Species 0.000 claims 1
- 235000010582 Pisum sativum Nutrition 0.000 claims 1
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 claims 1
- 235000013312 flour Nutrition 0.000 claims 1
- 238000000227 grinding Methods 0.000 claims 1
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 claims 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 claims 1
- 230000008961 swelling Effects 0.000 claims 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 abstract description 12
- 108010082495 Dietary Plant Proteins Proteins 0.000 abstract description 5
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 abstract description 4
- 235000013305 food Nutrition 0.000 abstract description 4
- 238000002955 isolation Methods 0.000 abstract description 4
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 2
- 229940079593 drug Drugs 0.000 abstract description 2
- 238000011084 recovery Methods 0.000 abstract 1
- 239000011343 solid material Substances 0.000 abstract 1
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 77
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 15
- 235000011389 fruit/vegetable juice Nutrition 0.000 description 14
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 8
- 239000000047 product Substances 0.000 description 8
- 125000002091 cationic group Chemical group 0.000 description 7
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 7
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 description 7
- 230000008569 process Effects 0.000 description 7
- 125000000129 anionic group Chemical group 0.000 description 6
- 239000012466 permeate Substances 0.000 description 6
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 6
- 101710091688 Patatin Proteins 0.000 description 5
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 5
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 5
- 230000009471 action Effects 0.000 description 4
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 4
- 238000010828 elution Methods 0.000 description 4
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 4
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 description 4
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 description 4
- 108010088751 Albumins Proteins 0.000 description 3
- 102000009027 Albumins Human genes 0.000 description 3
- 101710180316 Protease 2 Proteins 0.000 description 3
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 239000011324 bead Substances 0.000 description 3
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 3
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 3
- 238000009792 diffusion process Methods 0.000 description 3
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 3
- 102000005367 Carboxypeptidases Human genes 0.000 description 2
- 108010006303 Carboxypeptidases Proteins 0.000 description 2
- 108010044091 Globulins Proteins 0.000 description 2
- 102000006395 Globulins Human genes 0.000 description 2
- 206010020751 Hypersensitivity Diseases 0.000 description 2
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 description 2
- 239000004365 Protease Substances 0.000 description 2
- 229940124158 Protease/peptidase inhibitor Drugs 0.000 description 2
- 102100037486 Reverse transcriptase/ribonuclease H Human genes 0.000 description 2
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 2
- 230000007815 allergy Effects 0.000 description 2
- 235000001014 amino acid Nutrition 0.000 description 2
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 description 2
- 235000021120 animal protein Nutrition 0.000 description 2
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 2
- 239000007853 buffer solution Substances 0.000 description 2
- 239000002775 capsule Substances 0.000 description 2
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 2
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 2
- 238000011026 diafiltration Methods 0.000 description 2
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 2
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 2
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 2
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 2
- 239000000137 peptide hydrolase inhibitor Substances 0.000 description 2
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 2
- 239000012460 protein solution Substances 0.000 description 2
- 230000017854 proteolysis Effects 0.000 description 2
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 2
- ADAKRBAJFHTIEW-UHFFFAOYSA-N 1-chloro-4-isocyanatobenzene Chemical compound ClC1=CC=C(N=C=O)C=C1 ADAKRBAJFHTIEW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 101710110426 Aspartyl protease inhibitor Proteins 0.000 description 1
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 1
- OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N Calcium Chemical compound [Ca] OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000030523 Catechol oxidase Human genes 0.000 description 1
- 108010031396 Catechol oxidase Proteins 0.000 description 1
- 101001033883 Cenchritis muricatus Protease inhibitor 2 Proteins 0.000 description 1
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 description 1
- 102000003886 Glycoproteins Human genes 0.000 description 1
- 108090000288 Glycoproteins Proteins 0.000 description 1
- 241000238631 Hexapoda Species 0.000 description 1
- 201000010538 Lactose Intolerance Diseases 0.000 description 1
- 108090001030 Lipoproteins Proteins 0.000 description 1
- 102000004895 Lipoproteins Human genes 0.000 description 1
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 description 1
- 102000014171 Milk Proteins Human genes 0.000 description 1
- 108010011756 Milk Proteins Proteins 0.000 description 1
- 102000009097 Phosphorylases Human genes 0.000 description 1
- 108010073135 Phosphorylases Proteins 0.000 description 1
- 108091000080 Phosphotransferase Proteins 0.000 description 1
- 229940122055 Serine protease inhibitor Drugs 0.000 description 1
- 101710102218 Serine protease inhibitor Proteins 0.000 description 1
- 108010073771 Soybean Proteins Proteins 0.000 description 1
- 239000005862 Whey Substances 0.000 description 1
- 102000007544 Whey Proteins Human genes 0.000 description 1
- 108010046377 Whey Proteins Proteins 0.000 description 1
- 241000607479 Yersinia pestis Species 0.000 description 1
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 description 1
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 1
- 150000001450 anions Chemical class 0.000 description 1
- 230000003217 anti-cancerogenic effect Effects 0.000 description 1
- 230000000433 anti-nutritional effect Effects 0.000 description 1
- 235000019789 appetite Nutrition 0.000 description 1
- 230000036528 appetite Effects 0.000 description 1
- 239000003696 aspartic proteinase inhibitor Substances 0.000 description 1
- 206010064097 avian influenza Diseases 0.000 description 1
- 230000000903 blocking effect Effects 0.000 description 1
- 229940098773 bovine serum albumin Drugs 0.000 description 1
- 239000000337 buffer salt Substances 0.000 description 1
- 239000011575 calcium Substances 0.000 description 1
- 229910001576 calcium mineral Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000005018 casein Substances 0.000 description 1
- BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N casein, tech. Chemical compound NCCCCC(C(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CC(C)C)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(C(C)O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(COP(O)(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(N)CC1=CC=CC=C1 BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000021240 caseins Nutrition 0.000 description 1
- 150000001768 cations Chemical class 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 1
- 230000001143 conditioned effect Effects 0.000 description 1
- 235000018417 cysteine Nutrition 0.000 description 1
- XUJNEKJLAYXESH-UHFFFAOYSA-N cysteine Natural products SCC(N)C(O)=O XUJNEKJLAYXESH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000007123 defense Effects 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 description 1
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 1
- 239000000539 dimer Substances 0.000 description 1
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 1
- 230000003670 easy-to-clean Effects 0.000 description 1
- 230000008030 elimination Effects 0.000 description 1
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 239000003925 fat Substances 0.000 description 1
- 238000011049 filling Methods 0.000 description 1
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 description 1
- 239000000796 flavoring agent Substances 0.000 description 1
- 235000019634 flavors Nutrition 0.000 description 1
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 1
- 238000005194 fractionation Methods 0.000 description 1
- 235000013376 functional food Nutrition 0.000 description 1
- 229930008677 glyco alkaloid Natural products 0.000 description 1
- 229930182470 glycoside Natural products 0.000 description 1
- 150000002338 glycosides Chemical class 0.000 description 1
- 230000009036 growth inhibition Effects 0.000 description 1
- 230000036541 health Effects 0.000 description 1
- 235000004280 healthy diet Nutrition 0.000 description 1
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 1
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000000968 intestinal effect Effects 0.000 description 1
- 229910001608 iron mineral Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000001788 irregular Effects 0.000 description 1
- 238000002386 leaching Methods 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 238000011068 loading method Methods 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 235000021239 milk protein Nutrition 0.000 description 1
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 1
- 229920005615 natural polymer Polymers 0.000 description 1
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 1
- 239000003921 oil Substances 0.000 description 1
- 150000007524 organic acids Chemical class 0.000 description 1
- 235000005985 organic acids Nutrition 0.000 description 1
- 239000006259 organic additive Substances 0.000 description 1
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 1
- 238000012856 packing Methods 0.000 description 1
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 description 1
- 102000020233 phosphotransferase Human genes 0.000 description 1
- 239000008057 potassium phosphate buffer Substances 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 230000002035 prolonged effect Effects 0.000 description 1
- 238000005086 pumping Methods 0.000 description 1
- 239000012508 resin bead Substances 0.000 description 1
- 238000001223 reverse osmosis Methods 0.000 description 1
- 230000002441 reversible effect Effects 0.000 description 1
- 239000013017 sartobind Substances 0.000 description 1
- 230000036186 satiety Effects 0.000 description 1
- 235000019627 satiety Nutrition 0.000 description 1
- 230000028327 secretion Effects 0.000 description 1
- 238000010187 selection method Methods 0.000 description 1
- 239000003001 serine protease inhibitor Substances 0.000 description 1
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 1
- 238000002415 sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 229940001941 soy protein Drugs 0.000 description 1
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 1
- 238000005507 spraying Methods 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
- -1 sulfomethyl groups Chemical group 0.000 description 1
- 239000008399 tap water Substances 0.000 description 1
- 235000020679 tap water Nutrition 0.000 description 1
- 239000003053 toxin Substances 0.000 description 1
- 231100000765 toxin Toxicity 0.000 description 1
- 108700012359 toxins Proteins 0.000 description 1
- 239000002753 trypsin inhibitor Substances 0.000 description 1
- 239000002351 wastewater Substances 0.000 description 1
- 230000036642 wellbeing Effects 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23K—FODDER
- A23K20/00—Accessory food factors for animal feeding-stuffs
- A23K20/10—Organic substances
- A23K20/142—Amino acids; Derivatives thereof
- A23K20/147—Polymeric derivatives, e.g. peptides or proteins
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23J—PROTEIN COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS; WORKING-UP PROTEINS FOR FOODSTUFFS; PHOSPHATIDE COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS
- A23J1/00—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites
- A23J1/006—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites from vegetable materials
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23J—PROTEIN COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS; WORKING-UP PROTEINS FOR FOODSTUFFS; PHOSPHATIDE COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS
- A23J1/00—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites
- A23J1/14—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites from leguminous or other vegetable seeds; from press-cake or oil-bearing seeds
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23L—FOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
- A23L33/00—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
- A23L33/10—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof using additives
- A23L33/17—Amino acids, peptides or proteins
- A23L33/185—Vegetable proteins
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23L—FOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
- A23L33/00—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
- A23L33/40—Complete food formulations for specific consumer groups or specific purposes, e.g. infant formula
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P3/00—Drugs for disorders of the metabolism
- A61P3/02—Nutrients, e.g. vitamins, minerals
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23V—INDEXING SCHEME RELATING TO FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES AND LACTIC OR PROPIONIC ACID BACTERIA USED IN FOODSTUFFS OR FOOD PREPARATION
- A23V2002/00—Food compositions, function of food ingredients or processes for food or foodstuffs
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23V—INDEXING SCHEME RELATING TO FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES AND LACTIC OR PROPIONIC ACID BACTERIA USED IN FOODSTUFFS OR FOOD PREPARATION
- A23V2300/00—Processes
- A23V2300/30—Ion-exchange
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Polymers & Plastics (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Nutrition Science (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Mycology (AREA)
- Pediatric Medicine (AREA)
- Animal Husbandry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Obesity (AREA)
- Hematology (AREA)
- Diabetes (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicines Containing Plant Substances (AREA)
Abstract
Procedimiento para la obtención de proteínas y/o péptidos vegetales que comprende las etapas: a) colocar previamente un material de partida vegetal que contiene proteínas y/o péptidos en una matriz acuosa; b) separar opcionalmente los componentes sólidos de la matriz acuosa y/o clarificar la matriz acuosa; c) aislar al menos una parte de las proteínas y/o péptidos a partir de la matriz acuosa mediante adsorción en al menos una membrana de intercambio iónico de polímero sintético; d) lavar opcionalmente la membrana de intercambio iónico para eliminar impurezas; e) desorber las proteínas y/o péptidos de la membrana de intercambio iónico con al menos un eluyente; f) aislar las proteínas y/o péptidos a partir del eluyente; y g) secar opcionalmente las proteínas y/o péptidos aislados, en el que la desorción de las proteínas y/o péptidos individuales o grupos de los mismos en la etapa e) tiene lugar de manera sucesiva y selectiva con el uso de varios eluyentes diferentes y, antes de la etapa c) se precipita y se separa una parte de las proteínas y/o péptidos a partir de la matriz acuosa mediante desnaturalización/coagulación.
Description
1
La presente invención se refiere a un procedimiento para la obtención de proteínas y/o péptidos vegetales, a proteínas, péptidos y mezclas de los mismos producidos con el mismo, así como a usos de los mismos.
Para el consumo humano se conocen proteínas tanto animales
como vegetales. Sin embargo, las proteínas animales, tales como
por ejemplo proteínas de pollo, proteínas de la leche, tales
como caseína o suero de la leche, pueden presentar problemas con
respecto a EEB, gripe aviar y otras enfermedades. Las proteínas
animales se relacionan también con frecuencia con el
desencadenamiento de alergias, incluso cuando éstas, tal como en
el caso de una intolerancia a la lactosa, no se basan en la
proteína en sí.
Las proteínas vegetales tienen problemas con los organismos
modificados genéticamente (OMG), su valor nutricional y asimismo
con el desencadenamiento de alergias. La proteína vegetal más
conocida es la proteína de soja. En el caso de las proteínas
vegetales además se presenta frecuentemente el problema del
sabor, por ejemplo en el caso de la soja, de modo que la
aplicabilidad en alimentos se ve fuertemente limitada. Hasta el
momento tampoco se ha impuesto la utilización de otras proteínas
vegetales, tales como por ejemplo de colza, altramuces o
patatas. En el caso de la colza y las leguminosas esto podría
deberse, sobre todo, a que el contenido en grasa de estos
materiales de partida genera ranciedad.
Desde el punto de vista químico, el porcentaje de proteína
de productos habituales en el mercado, que contienen además
muchas otras sustancias deseadas y no deseadas, consiste en
muchas moléculas de proteína y péptido individuales, que pueden
subdividirse en primer lugar a grosso modo de manera
fenomenológica en globulinas y albúminas. Las globulinas
presentan una forma esférica, por tanto son bastante compactas e
insolubles en agua o al menos escasamente solubles. Las
albúminas presentan una forma abierta, más irregular y, por
tanto, son solubles en agua. En general, las proteínas solubles
se engloban bajo albúminas . Además, la proteína habitual en el
mercado consiste naturalmente en moléculas de proteína y péptido
que presentan diferente peso molecular. Esto hace bastante
complicado su manipulación, por ejemplo desde el punto de vista
de la tecnología de los alimentos, y sólo puede llevarse a cabo
una valoración sanitaria basándose en el espectro de
aminoácidos.
Por consiguiente, las proteínas habituales en el mercado
tienen en común que consisten en una mezcla de distintas
moléculas de proteína y péptido, y además contienen componentes
ajenos a las proteínas, que proceden del material de partida
vegetal original. A éstos pertenecen por ejemplo glucósidos,
toxinas (glicoalcaloides, inhibidores de tripsina, etc.),
sustancias antinutritivas, tales como por ejemplo el ácido
fítico, que retira los minerales de calcio y hierro de la
digestión de seres humanos y animales, dado que éstos se
eliminan y no se reabsorben en el conducto intestinal. Asimismo
están incluidas grasas y aceites que en parte están químicamente
unidas a lipoproteínas, así como minerales.
Hasta el momento, existen pocas proteínas o péptidos puros,
por ejemplo para una alimentación sana o como fármacos de venta
libre, que sean suficientemente baratos, para una aplicación más
amplia. El motivo se basa especialmente en que se utilizan
procedimientos de tratamiento caros, procedentes de la industria
farmacéutica. Un motivo adicional para el elevado precio así
como una disponibilidad extremadamente limitada es el origen de
las moléculas de proteína, que se obtienen a partir de mamíferos
o de secreciones humanas, por ejemplo suero sanguíneo, que todas
contienen las proteínas de acción deseadas en concentración
reducida y se encuentran en sí disponibles también sólo en
cantidad limitada.
En los documentos US 2003113829, US 2003092151, US
2003092152, US 2003092150 y US 2003077265 se describe por
primera vez cómo pueden asilarse de manera relativamente pura
grupos de proteínas individuales, a partir de una mezcla de
proteínas de una materia prima vegetal, en este caso de la
patata.
En estos documentos se describen la elección de la materia
prima; el método para la eliminación de inhibidores de Kunitz y
de Bowman-Birk así como de carboxipeptidasa de proteína de
patata mediante calentamiento, enfriamiento, centrifugación y
filtración del jugo de patata; la ampliación del método mediante
la utilización de un agente de extracción ácido junto con una
pulverización del material vegetal en la disolución de
extracción, de modo que se obtiene el inhibidor de proteasa II;
el método para controlar el rendimiento y la pureza del
inhibidor de proteasa II durante la extracción mediante
lixiviación de pedazos de patata, calentamiento de la disolución
de extracción, control de la temperatura, el tiempo y la
concentración de sal, centrifugación y filtración con membrana;
aislamiento y purificación de los inhibidores de proteasa II en
una variante del procedimiento.
Sin embargo, en el caso de los procedimientos conocidos es
desventajoso que, aunque se preparen proteínas individuales o al
menos grupos de proteínas estrechamente definidos, estos
procedimientos son sin embargo extremadamente complicados,
laboriosos y caros. También ha de contemplarse como desventaja
una selección especial de las patatas. De esta manera no se
limita sólo la disponibilidad de la materia prima, sino que
mediante un control analítico necesario se requiere una etapa
intermedia adicional, complicada y cara. Además, la logística es
complicada, dado que las patatas deben tratarse frescas y no
pueden almacenarse. También, las proteínas pueden dañarse en los
procedimientos conocidos, dado que se necesitan grandes
cantidades de energía calorífica, dado que se trabaja en
disolución de extracción diluida y debe mantenerse una
temperatura elevada durante un largo periodo de tiempo, lo que
hace necesarios adicionalmente recipientes grandes. Asimismo, en
una etapa posterior se necesita energía adicional, dado que la
cantidad de sustancia que va a tratarse debe enfriarse hasta
aproximadamente temperatura ambiente para las demás etapas de
procedimiento. Para la extracción se necesitan ácidos orgánicos,
que cargan el medio ambiente de aguas residuales. Además, el
material vegetal se desmenuza de manera laboriosa en partículas
de desde aproximadamente 100 m hasta 1.500 m. Tras la extracción y adicionalmente tras el calentamiento se necesitan etapas para la separación de sólidos, para separar el material vegetal coagulado o no disuelto de la disolución de proteínas y poder realizar la última etapa de aislamiento de la ultrafiltración. Los procedimientos conocidos proporcionan finalmente sólo muy pocas proteínas, sobre todo aquéllas que tras una acción de calentamiento a 100ºC a lo largo de un tiempo de aproximadamente 3 horas no se han desnaturalizado todavía. Finalmente, a partir de los procedimientos conocidos sólo se obtienen principalmente aquellas proteínas que cumplen los criterios anteriormente mencionados, es decir, inhibidor de proteasa II e inhibidores de carboxipeptidasa.
La invención se basa en el objetivo de proporcionar un
procedimiento para la obtención de proteínas y/o péptidos
vegetales, con el que pueden superarse las desventajas del
estado de la técnica. Asimismo, se proporciona un procedimiento,
con el que es posible la obtención de proteínas y/o péptidos
vegetales en una base de materia prima más amplia, es decir, que
puede utilizarse no sólo para la obtención a partir de patatas,
sino a partir plantas que contienen proteínas en general.
Especialmente, el procedimiento podrá realizarse de manera
inofensiva para el medio ambiente, con ahorro de energía,
sencilla y económica, y a este respecto se obtendrá cualquier
proteína y péptido, puro o en mezclas, sin limitaciones
condicionadas por el procedimiento.
Otros objetivos consisten en proporcionar proteínas y/o
péptidos producidos según el procedimiento así como indicar
posibilidades de uso.
Estos objetivos se solucionan mediante un procedimiento
según la reivindicación 1, proteínas, péptidos o mezclas de los
mismos según la reivindicación 19 así como posibilidades de uso
según la reivindicación 20. Formas de realización preferidas se
desprenden de las reivindicaciones dependientes respectivas.
Sorprendentemente se determinó que el procedimiento según
la invención, al contrario que los procedimientos del estado de
la técnica puede llevarse a cabo completamente sin una
trituración adicional de las plantas, etapas de calentamiento y
enfriamiento así como una extracción con aditivos orgánicos.
Especialmente no se limita la elección de las proteínas y los
péptidos que se obtendrán. La elección dirigida de determinadas
proteínas y/o péptidos puede conseguirse mediante el control del
procedimiento de selección mediante el ajuste preciso de los
parámetros de procedimiento. Como resultado del procedimiento se
obtienen o bien proteínas puras sin porcentaje de proteínas
extrañas o bien cualquier mezcla extensa de proteínas que se
comportan de manera similar en el proceso de adsorción. Por
tanto, la pureza de las proteínas puede ajustarse a voluntad
según la invención mediante la etapa de desorción, por ejemplo
en forma de una diálisis. Esto puede ser ventajoso especialmente
cuando la calidad de un producto previo es suficiente para
aplicaciones médicas y sólo la confección final debe tener lugar
en condiciones de BPF estériles que el operario del
procedimiento dado el caso no puede o quiere cumplir.
En otras palabras, con el procedimiento según la invención
puede conseguirse el fraccionamiento de las proteínas y/o
péptidos del material de partida vegetal en proteínas o péptidos
individuales o pequeños grupos de proteínas similares con etapas
de procedimiento extraordinariamente suaves, pudiendo
proporcionarse todavía una gran multitud de productos y no
siendo necesaria ninguna etapa de procedimiento cara o
complicada.
Ha demostrado ser especialmente ventajoso que según la
invención tiene lugar una fijación de los grupos de intercambio
iónico sobre una membrana en lugar de sobre perlas poliméricas.
El uso de membranas de intercambio iónico conduce a una
velocidad de flujo elevada, de ninguna a pocas incrustaciones, a
una carga extraordinariamente rápida, dado que no se necesita
ninguna difusión, un consumo de productos químicos reducido para
disolución tampón y eluyentes, un manejo sencillo así como un
aumento de escala sencillo y la posibilidad de interconectar
intercambiadores de aniones y de cationes, dado que según la
invención éstos están unidos a membranas distintas.
Especialmente, con el procedimiento según la invención es
posible utilizar sólo una membrana de intercambio iónico, que
puede ser una membrana de intercambio catiónico o aniónico.
Naturalmente, también pueden utilizarse combinaciones de
membranas de intercambio aniónico y catiónico. Éstas pueden ser
en cada caso en cualquier combinación fuerte o débilmente ácidas
o alcalinas. Es concebible que puedan conectarse varias
membranas de intercambio catiónico y/o varias membranas de
intercambio aniónico de manera sucesiva o en paralelo. Asimismo
es concebible una conexión en serie de todas las membranas de
intercambio catiónico y de todas las membranas de intercambio
aniónico, estando conectados sin embargo estos dos grupos
después en paralelo. También puede concebirse el modo de
proceder inverso, estando conectadas las membranas de
intercambio catiónico y las membranas de intercambio aniónico en
sus grupos respectivos en paralelo, conectándose sin embargo los
dos grupos en serie. Por consiguiente son posibles todas las
variaciones concebibles y están incluidas dentro del alcance de
la invención.
Otras ventajas de la unión de los grupos de intercambio
iónico a una membrana son las siguientes:
-Una elevada densidad de carga permite el empaquetamiento
en volúmenes pequeños, que significan costes menores que,
por ejemplo, en la fijación sobre perlas poliméricas
porosas que se encuentran en un recipiente sobre una placa
perforada y de este modo experimentan un flujo a su
alrededor.
- No se necesita ninguna difusión capilar ni ninguna
difusión de Fick para que las moléculas que van a
adsorberse alcancen las moléculas de intercambio iónico,
tal como por ejemplo en el caso de perlas poliméricas
porosas de polímeros sintéticos o naturales. Únicamente
tiene lugar una convección, dado que la disolución
objetivo fluye directamente sobre la membrana con los
portadores de carga. De esta manera el procedimiento de
adsorción es claramente más rápido. En el funcionamiento
de circulación es posible pasar varias veces las membranas
y los poros con los portadores de carga, lo que acelera
claramente el procedimiento de adsorción y asimismo el
procedimiento de desorción. Las membranas de adsorción
pueden usarse de nuevo o varias veces y son fáciles de
limpiar.
-El ancho de poro de la membrana puede ajustarse a
cualquiera entre filtración normal, micro, ultra y
nanofiltración, según las propiedades del fluido y de las
sustancias que van a tratarse y adsorberse. Por tanto no
es posible un bloqueo u obstrucción tal como en el caso de
los poros de perlas poliméricas de resinas de intercambio
iónico.
-Existen los más diversos materiales de membrana sintéticos
en casi cualquier elección, que permiten extensas
combinaciones de parámetros de procedimiento de presión
(transmembrana), temperatura y valor de pH.
-El tipo de construcción de los módulos en los que están
confeccionadas las membranas y que determinan el tipo de
construcción técnico del procedimiento de membrana puede
adaptarse al procedimiento: módulos de placa, de flujo
transversal o enrollados. La elección puede tener lugar
entre otras cosas respecto a la viscosidad del sólido que
se retiene en las membranas. Si es reducida, se usa
preferiblemente un módulo del tipo de construcción
enrollado, en el que en un pequeño volumen puede
incorporarse una gran superficie de membrana y, por tanto,
es el tipo de construcción de módulo más económico.
-El funcionamiento del módulo es posible en funcionamiento
por lotes o de circulación. En el primer caso puede
introducirse mediante bombeo sólo tanta disolución
objetivo como permeado salga de la instalación. Si se
termina el flujo de permeado, debe retirarse de la
membrana el retenido, por ejemplo mediante lavado. En el
funcionamiento de circulación la disolución objetivo
circula entre el módulo y un recipiente de almacenamiento,
de modo que la disolución objetivo puede aplicarse varias
veces sobre la membrana. El sólido contenido en el
retenido se extrae de manera continua del recipiente de
muestra, de modo que en los módulos gobierna un estado
estacionario entre dos ciclos de purificación.
A continuación se describen las etapas de procedimiento
individuales del procedimiento según la invención con respecto a
una forma de realización preferida, sin desear limitar sin
embargo el objeto de la presente solicitud a la misma.
El procedimiento según la invención para la obtención de
proteínas y/o péptidos vegetales se describe mediante las
patatas como material de partida vegetal. De las de alrededor de
2.000 clases de patata a nivel mundial, aproximadamente 50
clases son adecuadas para la obtención de almidón, dado que
contienen una cantidad desproporcionadamente grande de almidón,
por regla general del 17 al 22% en peso. En cambio, en principio
todas las clases de patata son adecuadas para la obtención de
proteínas y péptidos según el procedimiento según la invención.
Tras la limpieza de las patatas, la primera etapa de
procedimiento para la obtención de almidón es que se trituran
las patatas dando una pulpa fina. A partir de esa pulpa se
separa a continuación el jugo de patata (zumo de patata), que
contiene la proteína y/o el péptido, de los sólidos, del almidón
y de las fibras. La separación del almidón y las fibras puede
tener lugar por ejemplo mediante centrifugación o hidrociclones.
El jugo de patata obtenido contiene aproximadamente 20 g/l de
proteína de patata, de las que aproximadamente el 40% es
patatina, una proteína de reserva principal que pertenece a las
glicoproteínas, aproximadamente el 50% son inhibidores de
proteasa (IP) así como el 10% son proteínas de alto peso
molecular, a las que pertenecen las polifenoloxidasas, cinasas y
fosforilasas. La patatina tiene un peso molecular de desde 40
hasta 44 kDa y consiste en 363 aminoácidos. A un valor de pH de
desde 7 hasta 9 se forma un dímero con un tamaño de desde 80
hasta 88 kDa. Los IP son una clase heterogénea con siete
subclases de distintas proteínas. Su función en la patata es la
degradación de proteínas, y por consiguiente desempeñan un papel
importante en la defensa del tubérculo contra insectos y plagas
microbianas. La prevención de la degradación de proteínas se
observó en el modelo animal como inhibición del crecimiento, se
discute una acción anticarcinógena y se promociona en parte
comercialmente la sensación de saciedad del IP II. Las clases
principales de los IP son IP I, IP II, inhibidor de cisteína
proteasa de patata (PCPI), inhibidor de proteasa de Kunitz
(PKPI), carboxipeptidasa (PCI), inhibidor de serina proteasa
(OSPI) e inhibidor de aspartil proteasa de patata (PAPI).
A continuación se separa una parte de las proteínas y/o
péptidos mediante desnaturalización/coagulación, parte que no se
desea o no es necesaria para una separación precisa. Una
desnaturalización/coagulación puede tener lugar por ejemplo
mediante desplazamiento del valor de pH, disolventes orgánicos o
mediante precipitación con sales.
El jugo de patata obtenido se clarifica a continuación en
un dispositivo de membrana de microfiltración. A este respecto
puede seleccionarse libremente el ancho de poro de la membrana y
puede adaptarse a los productos deseados que se obtendrán. Es
posible una clarificación del jugo de patata obtenido por
ejemplo mediante centrífugas de toda clase de tipos de
construcción, siempre que se obtenga un centrifugado claro con
componentes exclusivamente disueltos. Estas y todas las etapas
siguientes, a excepción del secado en la etapa g), tienen lugar
a una temperatura por debajo de la temperatura de coagulación o
temperatura de desnaturalización de las proteínas y/o péptidos,
preferiblemente a una temperatura inferior a 30ºC.
Una parte esencial del procedimiento según la invención es
el aislamiento de las proteínas y/o péptidos a partir de la
matriz acuosa, en este caso el jugo de patata, mediante
adsorción en al menos una membrana de intercambio iónico, que
está compuesta por un polímero sintético. Ejemplos de tales
membranas pueden adquirirse en el mercado con el nombre
Sartobind® de la empresa Sartorius.
Según la invención es posible que en la etapa c) se aísle
únicamente una parte de las proteínas y/o péptidos a partir de
la matriz acuosa mediante adsorción. Esto depende
considerablemente de las membranas de intercambio catiónico o
aniónico utilizadas.
Asimismo, es de importancia similar la desorción dirigida
de las proteínas y/o péptidos unidos a la membrana de
intercambio iónico mediante eluyentes especialmente adaptados,
después de que restos opcionales del jugo de patata se hayan
eliminado previamente mediante lavado de la membrana.
Para la fijación de proteínas aniónicas pueden utilizarse
membranas de intercambio iónico con grupos catiónicos, por
ejemplo con grupos trimetilo, mientras que para proteínas
catiónicas deben estar presentes en la membrana de intercambio
iónico grupos aniónicos, tales como grupos sulfometilo.
Para la protección mecánica de la membrana de adsorción,
pero también para prolongar su duración, se recomienda como
etapa previa una separación de los sólidos y las partículas
suspendidas o dispersas, tal como se mencionó anteriormente.
Esto puede tener lugar mediante una centrífuga o mediante una
filtración, la última en tamaños de poro habituales de hasta una
microfiltración. La utilización de una microfiltración de tamaño
de poro adecuado de 0,2 m tiene la ventaja de dejar pasar todas las proteínas, pero eliminar simultáneamente los microorganismos asimismo contenidos en la disolución que contiene proteína y por consiguiente hacer que el medio sea estéril. A continuación se adsorben las proteínas y/o péptidos sobre las membranas, bombeándose el filtrado, permeado o disolución de proteínas clarificada hacia el interior del módulo de adsorción de membrana. Con esto son posibles muchas variantes de procedimiento. A continuación pueden conectarse los módulos de membrana de intercambio catiónico y aniónico en paralelo o en serie. Las membranas de adsorción pueden confeccionarse en modos de construcción de módulo de placa, de flujo transversal o enrollado. La alimentación de la disolución objetivo que contiene proteína puede tener lugar en un procedimiento terminal
(Dead End) o en un procedimiento de circulación. El primero es
obligatoriamente un procedimiento por lotes, el último puede
tener lugar tanto por lotes como de manera continua. El ancho de
poro de la membrana de adsorción puede seleccionarse libremente,
pero es recomendable que no sea más pequeño que los poros de la
filtración previa, dado que en caso contrario se corre el
peligro de acumular en los adsorbedores material en forma de un
retenido que debe eliminarse adicionalmente a continuación en la
etapa de lavado, y, dado que consiste en un producto potencial,
significa también pérdidas de rendimiento. Si las membranas de
adsorción están completamente cargadas con moléculas de
proteína, lo que puede determinarse analíticamente de manera
sencilla por ejemplo mediante medición de la conductividad en el
efluente de las membranas o en el caso del funcionamiento
terminal en el permeado, se interrumpe el suministro de la
disolución objetivo, y la membrana puede lavarse opcionalmente
para eliminar impurezas. El lavado puede tener lugar mediante
agua o una disolución de lavado, pero ésta no debe
desnaturalizar las proteínas.
Los productos que se adhieren a las membranas pueden
desorberse tal como en el caso de un procedimiento de
cromatografía habitual de manera sucesiva y selectiva con varios
eluyentes. Esto se produce preferiblemente con una disolución
salina, cuya composición y concentración depende de las
proteínas y péptidos que van a eluirse. Normalmente se usan
disoluciones de cloruro de sodio y de cloruro de amonio, sin
embargo, en este caso la elección es casi ilimitada y viene
predeterminada por las propiedades de las proteínas. También es
posible la adición de sales tampón o disoluciones tampón, por
ejemplo tampón fosfato. Para que las proteínas eluidas no se
desnaturalicen deben encontrarse en el eluyente sólo en una
concentración reducida. Por tanto, antes del secado es ventajosa
una etapa de concentración. Además, mediante el lavado con agua
destilada o agua del grifo puede ajustarse a voluntad la pureza
de las proteínas aisladas de este modo. Si se toma para estas
dos etapas de procedimiento una membrana de ultrafiltración en
un modo de construcción de módulo de placa, de flujo transversal
- o enrollado, en funcionamiento de circulación, pueden realizarse en este caso la filtración y concentración simultáneamente, por ejemplo rellenando continuamente como máximo tanta agua de lavado en la muestra como permeado sale por los poros de la membrana de ultrafiltración. El control de la pureza puede controlarse de manera eficaz mediante la medición de la conductividad eléctrica en el permeado.
En la etapa de procedimiento siguiente tiene lugar un
aislamiento del producto a partir del eluyente, por ejemplo
mediante secado o mediante separación del eluyente y las
moléculas de proteína sobre una membrana con ancho de poro
adecuado, que preferiblemente se extiende en el intervalo de
desde ultra o nanofiltración hasta ósmosis inversa, se someten a
diafiltración y concentración o sólo se someten a concentración
- o sólo a diafiltración.
Como última etapa sigue opcionalmente un secado, pudiendo
utilizarse de manera ventajosa una liofilización moderada o un
secado por pulverización. Igualmente son posibles otros tipos de
secado, pero debe evitarse una acción de calor intensa que
podría conducir a daños en el producto.
Los ejemplos siguientes ilustran adicionalmente el
procedimiento según la invención en mayor detalle.
Ejemplo 1
Un módulo de intercambio aniónico con una superficie de 80
m2 con una capacidad de unión de 0,4 mg de proteína/cm2 puede
unir 320 g de proteína. El 50% de las proteínas en el jugo de
patata son IP, es decir aproximadamente 10 g/l. Tras aplicar 32
l de jugo de patata se agota entonces la capacidad. Esto dura a
una velocidad de flujo típica de 300 l/h aproximadamente 6,5
minutos. A continuación pueden eluirse las proteínas IP.
Ejemplo 2
Un módulo de intercambio catiónico con una superficie de 80
m2 con una capacidad de unión de 0,25 mg de proteína/cm2 puede
unir 200 g de proteína. El 40% de las proteínas en el jugo de
patata es patatina, es decir aproximadamente 8 g/l. Se necesitan
3,3 m2 de membrana para la unión completa de la patatina de 1 l
de jugo de patata. Por tanto, sobre 330 m2 puede adsorberse 1 kg
de patatina de 125 l de jugo. A continuación puede eluirse la
patatina.
Ejemplo 3
Una gran ventaja del procedimiento según la invención es el
uso múltiple tanto del adsorbedor de membrana como de la
disolución de lavado y de los eluyentes.
Se carga un módulo de intercambio catiónico con una
superficie de 15 cm2 con 1,5 ml una disolución de ASB (ASB =
albúmina de suero bovino) con una concentración de 10 mg/ml.
Esto se encuentra algo por debajo de la carga máxima de
aproximadamente 20 mg. El esquema para la identificación de la
estabilidad a largo plazo se realiza cargando, lavando, eluyendo
y lavando. El líquido de lavado es un tampón fosfato de potasio
50 mM a pH 7, el eluyente es una disolución de NaCl 1 M en el
mismo tampón. Un ciclo dura 21,5 minutos. Con el tiempo se
ensanchan según su naturaleza los picos de elución, y son
posibles hasta 65 ciclos, sin bloquear la membrana y sin que
tenga lugar una rotura. Si la etapa de lavado se prolonga 5
minutos son posibles más de 100 ciclos sin limpiar la membrana.
Se produce un bloqueo a partir del 108º ciclo. Tras limpiar con
hidróxido de sodio 0,5 M la membrana estaba libre de nuevo, de
modo que pudo comenzarse de nuevo con el procedimiento de
producción. De este modo son posibles varios miles de ciclos con
un módulo de adsorción, antes de que se desgaste.
Ejemplo 4
Una desventaja es el elevado consumo de agua y sal en el
lavado y la elución. Por tanto, el uso múltiple de las
disoluciones es muy ventajoso. Se utiliza el eluato tras un
ciclo y una carga con 0,4 mg de proteína/ml de nuevo para la
elución, y la carga ascendía ahora a 0,86 mg/ml. Tras la cuarta
elución la concentración aumentó hasta 1,2 mg/ml. Por
consiguiente, el ahorro de eluyente (agua, sal y tampón)
asciende al 75%.
La figura 1 adjunta muestra un SDS-PAGE basado en gel con
la representación de la proteína total en el jugo de patata
antes del tratamiento según la invención así como de las
proteínas y fracciones de proteínas unidas sobre las membranas
de adsorción de intercambio catiónico y aniónico y eluidas de
nuevo, que se obtienen según el procedimiento según la
invención.
Tal como puede deducirse a partir de la figura 1, a través
de la membrana de intercambio aniónico pudo aislarse patatina de
manera dirigida y a través de la membrana de intercambio
catiónico pudieron aislarse IP de manera dirigida y pudieron
separarse de manera esencialmente pura, lo que pone de relieve
una vez más espectacularmente las ventajas del procedimiento
según la invención.
Las proteínas y/o péptidos obtenidos según la invención
pueden utilizarse por ejemplo en alimentos funcionales, es
decir, alimentos con acción fisiológica positiva. Pueden usarse
también para la prevención y la lucha contra enfermedades así
como para mejorar el rendimiento y el bienestar. Un uso
preferido de las proteínas y péptidos producidos según la
invención podría estar en una forma farmacéutica, por ejemplo en
forma de cápsula. En este caso es de especial interés el
inhibidor de proteasa II, dado que se conoce su efecto inhibidor
del apetito y puede introducirse fácilmente por ejemplo en una
cápsula de gel dura.
Las características de la invención dadas a conocer en la
descripción anterior, en las reivindicaciones así como en el
dibujo pueden ser esenciales tanto individualmente como en
cualquier combinación para la puesta en práctica de la invención
en sus distintas formas de realización.
Claims (16)
1. Procedimiento para la obtención de proteínas y/o péptidos
vegetales que comprende las etapas:
a) colocar previamente un material de partida vegetal
que contiene proteínas y/o péptidos en una matriz
acuosa;
b) separar opcionalmente los componentes sólidos de la
matriz acuosa y/o clarificar la matriz acuosa;
c) aislar al menos una parte de las proteínas y/o
péptidos a partir de la matriz acuosa mediante
adsorción en al menos una membrana de intercambio
iónico de polímero sintético;
d) lavar opcionalmente la membrana de intercambio iónico
para eliminar impurezas;
e) desorber las proteínas y/o péptidos de la membrana de
intercambio iónico con al menos un eluyente;
f) aislar las proteínas y/o péptidos a partir del
eluyente; y
g) secar opcionalmente las proteínas y/o péptidos
aislados,
en el que la desorción de las proteínas y/o péptidos
individuales o grupos de los mismos en la etapa e) tiene
lugar de manera sucesiva y selectiva con el uso de varios
eluyentes diferentes y, antes de la etapa c) se precipita y
se separa una parte de las proteínas y/o péptidos a partir
de la matriz acuosa mediante desnaturalización/coagulación.
- 2.
- Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado porque la matriz acuosa se obtiene triturando el material de partida vegetal para dar una pulpa o moliendo materiales de partida, especialmente secos, para dar una harina e hinchando en agua y separando los componentes sólidos.
- 3.
- Procedimiento según la reivindicación 2, caracterizado porque los componentes sólidos son almidón y fibras del material de partida vegetal.
- 4.
- Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque el material de partida vegetal se selecciona de plantas que contienen proteínas,
preferiblemente patatas, leguminosas, soja, colza y mezclas
de las mismas, de manera especialmente preferible patatas.
- 5.
- Procedimiento según la reivindicación 4, caracterizado porque las leguminosas se seleccionan de guisantes, judías, altramuces, soja y mezclas de los mismos.
- 6.
- Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque la clarificación en la etapa b) tiene lugar en un dispositivo de membrana de microfiltración.
- 7.
- Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque al menos las etapas a)-f) se realizan a una temperatura por debajo de la temperatura de coagulación o desnaturalización de las proteínas y/o péptidos, preferiblemente a una temperatura inferior a 30ºC.
- 8.
- Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque la etapa c) y/o e) se lleva o llevan a cabo en un procedimiento por lotes o de circulación.
- 9.
- Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque en la etapa c) se utilizan al menos una membrana de intercambio catiónico y al menos una membrana de intercambio aniónico.
- 10.
- Procedimiento según la reivindicación 9, caracterizado porque la membrana de intercambio catiónico y la membrana de intercambio aniónico se hacen funcionar en paralelo o en serie.
- 11.
- Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque cada membrana de intercambio iónico se encuentra en un módulo de absorción, preferiblemente un módulo de placa, de flujo transversal o enrollado.
- 12.
- Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque el ancho de poro de la membrana de intercambio iónico se ajusta para obtener micro, ultra o nanofiltración.
- 13.
- Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque el eluyente se selecciona de una disolución acuosa salina, preferiblemente una disolución de cloruro de sodio y cloruro de amonio.
- 14.
- Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque el aislamiento en la etapa f) tiene lugar a través de una filtración con membrana o un secado.
- 15.
- Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores,
5 caracterizado porque el secado en la etapa g) tiene lugar a través de un secado por pulverización o liofilización.
16. Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores,
caracterizado porque la desnaturalización/coagulación tiene
lugar mediante desplazamiento del valor de pH, disolventes
10 orgánicos o mediante precipitación con sales.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE102007012439 | 2007-03-15 | ||
DE102007012439A DE102007012439A1 (de) | 2007-03-15 | 2007-03-15 | Verfahren zur Gewinnung pflanzlicher Proteine und/oder Peptide, danach hergestellte Proteine und/oder Peptide und Verwendung derselben |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2353032T3 true ES2353032T3 (es) | 2011-02-24 |
Family
ID=39688135
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES08003155T Active ES2353032T3 (es) | 2007-03-15 | 2008-02-21 | Procedimiento para la obtención de proteínas y/o péptidos vegetales, proteínas y/o péptidos producidos con el mismo, y uso de los mismos. |
Country Status (11)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US20080226781A1 (es) |
EP (1) | EP1977653B1 (es) |
JP (1) | JP2008222716A (es) |
CN (1) | CN101367863A (es) |
AT (1) | ATE476103T1 (es) |
AU (1) | AU2008201235A1 (es) |
CA (1) | CA2624573A1 (es) |
DE (2) | DE102007012439A1 (es) |
DK (1) | DK1977653T3 (es) |
ES (1) | ES2353032T3 (es) |
PL (1) | PL1977653T3 (es) |
Families Citing this family (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EA030803B1 (ru) | 2014-01-29 | 2018-09-28 | Апфронт Кроматографи А/С | Способы разделения горохового белка |
MX2016015973A (es) * | 2014-06-03 | 2017-03-08 | Abbott Lab | Mezclas de proteinas basadas en papa y composiciones nutricionales con proteina de patata. |
US20200345032A1 (en) * | 2017-04-25 | 2020-11-05 | National Research Council Of Canada | Enzymatic-Based Process for the Extraction of Value Added Products from Raw Biomasses |
NL2023197B9 (en) * | 2019-05-24 | 2023-12-01 | Cooperatie Avebe U A | Diafiltration |
EP3975740A1 (en) * | 2019-05-24 | 2022-04-06 | Coöperatie Koninklijke Avebe U.A. | Stabilization of tuber protein |
EP3975747A4 (en) * | 2019-05-24 | 2023-05-31 | Parabel Nutrition, Inc. | MICROPLANT ELECTROLYTE BEVERAGE, DRIED BASE POWDER AND MILK, AND PROCESS FOR PRODUCTION THEREOF |
CN111944011B (zh) * | 2020-08-19 | 2023-03-07 | 兰州百源基因技术有限公司 | 一种山黧豆生物组分的多级分离方法 |
Family Cites Families (14)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB1520738A (en) * | 1974-09-23 | 1978-08-09 | Scholten Honig Nv | Production of porotein from non-diluted or diluted potato corm water |
GB1580051A (en) * | 1976-06-11 | 1980-11-26 | Unilever Ltd | Proteinaceous foodstuff |
JPH02104246A (ja) * | 1988-10-12 | 1990-04-17 | Morinaga Milk Ind Co Ltd | 高純度乳清蛋白質粉末の製造法 |
EP0595993A4 (en) * | 1991-07-25 | 1994-08-17 | Commw Scient Ind Res Org | Isolation of charged particles from fluids |
AU708761B2 (en) * | 1996-01-26 | 1999-08-12 | Massey University | Method of separating and recovering proteins from a protein solution |
PL202189B1 (pl) * | 2000-02-21 | 2009-06-30 | Fraunhofer Ges Forschung | Sposób otrzymywania preparatów białkowych o w daleko idącej mierze niezmiennych, użytkowo technicznych właściwościach funkcyjnych w szerokim zakresie-pH od około pH=3 do pH=10 |
WO2002083715A1 (en) * | 2001-04-10 | 2002-10-24 | Honiron Corporation | Method and apparatus for fractional separation of proteins from plant material |
EP1584242B1 (en) * | 2001-06-01 | 2010-01-20 | Upfront Chromatography A/S | Fractionation of protein containing mixtures |
US6767566B2 (en) | 2001-07-06 | 2004-07-27 | Kemin Consumer Care, L.C. | Method of enhancing the extraction of proteinase inhibitors |
US20030077265A1 (en) | 2001-07-06 | 2003-04-24 | Rod Ausich | Isolation and purification of proteinase inhibitor ll |
US6686456B2 (en) | 2001-07-06 | 2004-02-03 | Kemin Foods, L.C. | Method for the elimination of Kunitz and Bowman-Birk trypsin inhibitors and carboxypeptidase inhibitor from potato proteins |
US6872544B2 (en) | 2001-09-25 | 2005-03-29 | Kemin Consumer Care, L.C. | Raw material selection and analysis for the isolation of proteinase inhibitor II from whole potatoes |
FR2844515B1 (fr) * | 2002-09-18 | 2004-11-26 | Roquette Freres | Procede d'extraction des composants de la farine de pois |
CA2645739A1 (en) * | 2006-03-20 | 2007-09-27 | Medarex, Inc. | Protein purification |
-
2007
- 2007-03-15 DE DE102007012439A patent/DE102007012439A1/de not_active Withdrawn
-
2008
- 2008-02-21 EP EP08003155A patent/EP1977653B1/de not_active Revoked
- 2008-02-21 AT AT08003155T patent/ATE476103T1/de active
- 2008-02-21 DE DE502008001057T patent/DE502008001057D1/de active Active
- 2008-02-21 PL PL08003155T patent/PL1977653T3/pl unknown
- 2008-02-21 DK DK08003155.2T patent/DK1977653T3/da active
- 2008-02-21 ES ES08003155T patent/ES2353032T3/es active Active
- 2008-03-07 CA CA002624573A patent/CA2624573A1/en not_active Abandoned
- 2008-03-10 US US12/045,357 patent/US20080226781A1/en not_active Abandoned
- 2008-03-12 JP JP2008062990A patent/JP2008222716A/ja not_active Abandoned
- 2008-03-14 AU AU2008201235A patent/AU2008201235A1/en not_active Abandoned
- 2008-03-17 CN CNA2008100861433A patent/CN101367863A/zh active Pending
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DE502008001057D1 (de) | 2010-09-16 |
CN101367863A (zh) | 2009-02-18 |
EP1977653A1 (de) | 2008-10-08 |
EP1977653B1 (de) | 2010-08-04 |
PL1977653T3 (pl) | 2011-01-31 |
JP2008222716A (ja) | 2008-09-25 |
DK1977653T3 (da) | 2010-11-29 |
DE102007012439A1 (de) | 2008-09-18 |
AU2008201235A1 (en) | 2008-10-02 |
CA2624573A1 (en) | 2008-09-15 |
ATE476103T1 (de) | 2010-08-15 |
US20080226781A1 (en) | 2008-09-18 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2353032T3 (es) | Procedimiento para la obtención de proteínas y/o péptidos vegetales, proteínas y/o péptidos producidos con el mismo, y uso de los mismos. | |
Bansal et al. | Functional milk proteins: Production and utilization—whey-based ingredients | |
US8071152B2 (en) | Methods involving whey protein isolates | |
ES2954895T3 (es) | Procedimiento de elaboración de un producto a partir de material vegetal | |
ES2871528T3 (es) | Concentración por congelación de zumo de raíces o tubérculos | |
Wang et al. | Electrodialysis-based separation technologies in the food industry | |
WO2011152330A1 (ja) | 大豆蛋白質加水分解物含有抗酸化剤及びその利用 | |
EP2661180A1 (en) | Composition comprising heat labile milk proteins and process for preparing same | |
Jin et al. | Recovery of protease inhibitors from potato fruit water by expanded bed adsorption chromatography in pilot scale | |
KR20140044377A (ko) | 가공 스트림으로부터 분리된 대두 유청 단백질을 포함하는 유동 식품 조성물 | |
Aachary et al. | Canola/rapeseed proteins and peptides | |
ES2959670T3 (es) | Proceso de tratamiento del lactosuero dulce para obtener un material proteico adecuado para la fórmula hipoalergénica para bebés en edad lactante | |
JP3406367B2 (ja) | ミネラル吸収促進効果を有する大豆蛋白質の製造法 | |
CA2852109A1 (en) | Compositions comprising maltotriose and methods of using same to inhibit damage caused by dehydration processes | |
M I et al. | Utilization of milk protein hydrolysate in functional beverages | |
CA3095964C (en) | Oral/enteral nutritional compositions and process of manufacturing the same | |
Meesiri | Physico-Chemical and Functional Properties of Leaf Protein Concentrates Isolated Using Different Techniques | |
CN108430490A (zh) | 营养组合物 | |
ES2307554T3 (es) | Procedimiento para la obtencion de preparados de proteina con propiedades esencialemente constantes en cuanto a su solubilidad y su funcionalidad dentro de un intervalo ph amplio desde aproximadamente ph3 hasta ph10. | |
ES2959583T3 (es) | Proceso para tratar un material de suero de leche dulce que contiene GMPc y método relacionado para producir un material proteico que tiene una proporción objetivo de triptófano/treonina | |
Ebrahimi et al. | Glycomacropeptide: A comprehensive understanding of its major biological characteristics and purification methodologies | |
Miedzianka et al. | Effect of acetylation on quality attributes of potato protein preparations heated to various temperatures. | |
Tokuşoğlu | By-Products from Milk and Dairy Foods Bioactivity and Utilization | |
Alashi | Functional and bioactive properties of Australian canola meal protein isolate and hydrolysates | |
PL240850B1 (pl) | Sposób otrzymywania prozdrowotnego preparatu białkowego |