ES2348284T3 - Dispositivo y procedimiento para la electrofóresis preparativa. - Google Patents

Dispositivo y procedimiento para la electrofóresis preparativa. Download PDF

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Abstract

Procedimiento para la electroforesis de membrana de sustancias disueltas o dispersadas en solución que contiene electrolito con uso de una cámara de separación (7a), que presenta varios compartimentos para diluido (16a, 16b, ...), compartimentos para concentrado (17a, 17b, ...), así como un compartimento para el cátodo (18) y un compartimento para el ánodo (21) con electrodos como ánodo (19) y cátodo (20), en donde los compartimentos para diluido (16a, 16b, ...) y compartimentos para concentrado (17a, 17b, ...) están separados entre sí respectivamente con una membrana de separación porosa (15) y en donde el compartimento para el cátodo (18) y compartimento para el ánodo (21) están separados de los compartimentos para diluido (16a, 16b, ...) y compartimentos para concentrado (17a, 17b, ...), así como pares de compartimentos para diluido (16a, 16b, ...) y compartimentos para concentrado (17a, 17b, ...) sucesivamente, por membranas de restricción (14) porosas y los electrodos (19, 20) son lavados con la solución de lavado de electrodos y el diluido se conduce de forma continua por el compartimento de diluido (16), o el concentrado se conduce de forma continua por el compartimento de concentrado (17), caracterizado porque al menos una sustancia disuelta o dispersada en el diluido es transferida mediante un campo eléctrico dispuesto entre el ánodo (19) y el cátodo (20) electroforéticamente desde el compartimento del diluido (16) hasta el compartimento del concentrado (17), ajustándose entre el compartimento del diluido (16) y el compartimento del concentrado (17) una diferencia de presión de modo que se somete esencialmente una corriente de líquido a la membrana de separación (15) y al menos llega a 3 kPa y regulándose esta diferencia de presión mediante superposición de presión en los recipientes (1, 2).

Description

La invención se refiere a un procedimiento y un dispositivo para llevar a cabo la electroforesis de membrana mediante membranas de micro– o ultrafiltración. A este respecto se compensa el flujo electroosmótico, que se forma en los poros de le membrana, mediante superposición de la presión.
El uso de electroforesis como técnica de separación preparativa se investiga desde los años 50.
Con la electroforesis de flujo libre continua fluye una solución a una cámara de electroforesis y se separa entre dos electrodos en campo eléctrico. En la entrada desde el módulo de electroforesis se distribuye la corriente de líquido en una multiplicidad de fracciones que contienen las sustancias que se van a separar en distintas concentraciones. Si bien esta técnica conduce a buenas selectividades a escala de laboratorio sólo es posible un aumento de escala en estrechos límites. Como problema principal se encuentra el calentamiento de la solución en el campo eléctrico así como los fenómenos de dispersión resultantes como, por ejemplo, la convección térmica. Con equipos de electroforesis de flujo libre disponibles en el mercado se pueden obtener productividades de algunos gramos de producto por día.
En la electroforesis de membrana actúan membranas semipermeables como barreras de convección entre compartimentos contiguos, pudiendo migrar al menos un componente disuelto en el campo eléctrico de un compartimento a otro.
En las primeras publicaciones se usaron membranas macroporosas, por ejemplo, papel de filtro. Estos materiales presentan sin embargo una serie de desventajas: apenas presentan selectividad por las sustancias que se van a separar (documentos US–A–3989613, US–A– 4043895) y además presentan frecuentemente una pobre estabilidad mecánica y química. Además estas ya muestran con diferencias de presión de menos de 1 kPa flujos de transmembrana inducidos por presión nada despreciables. Por tanto diferencias de presión variables en el tiempo o en el lugar entre compartimentos individuales conducen a una remezcla y a una reducción de la capacidad de separación. Este flujo de permeado inducido por presión fue reducido por Gritzner mediante incorporación de tanques de equilibrado (documento US–A–4043895). Mediante niveles variables se regulan las presiones hidrostáticas en los dos canales de corriente independientemente al mismo valor.
Patentes posteriores proponen el uso de membranas de ultrafiltración, que presentan una selectividad para macromoléculas de distinto tamaño. La capacidad de separación se puede mejorar claramente en teoría mediante la combinación de criterios de selectividad de movilidad electroforética y retención con membrana. Otras publicaciones sin ejemplo de realización (documentos DE 3337669, DE 3626953 A1) dieron a conocer ensayos en
discontinuo a escala de mililitros (documentos US–A–6270672).
Sin embargo en la práctica se observa con uso de membranas de ultrafiltración una productividad muy baja. En los poros de membrana se forma una capa doble eléctrica, que conduce en campo eléctrico a la inducción de un flujo electroosmótico, que reduce drásticamente la capacidad de separación de proteínas cargadas negativamente (Galier y col.,
J. Membr. Sci. 194 [2001] 117–133).
Si una especie de proteína está cargada positivamente en condiciones de separación, entonces se puede llevar a cabo la separación con polaridad de electrodos invertida. En este caso el flujo electroosmótico se contrapone o se equilibra con el transporte de proteína por la membrana. En correspondencia se observa un aumento o una reducción del nivel de líquido en el recipiente de diluido. Mientras que en el primer caso tiene lugar una reducción de la productividad, el segundo caso tiene como consecuencia una reducción de la capacidad de separación, ya que las proteínas pueden transportarse por convección por la membrana con menor movilidad de lo que deberían en el diluido.
Mediante la compensación de la diferencia de presión hidrostática en el módulo, como se describe por ejemplo en el documento US–A–4–043895, tampoco se pueden compensar corrientes de líquido por las membranas de separación.
Una alternativa al uso de membranas de ultra– y microfiltración lo representa el uso de membranas de gel. Este material no poroso ofrece la ventaja de un flujo electroosmótico bajo. La selectividad de la membrana de gel para macromoléculas puede verse influenciado por el grado de reticulación transversal del polímero (véase el documento US–A–4243507).
Sin embargo las membranas de gel muestran también una serie de desventajas frente a las membranas porosas.
Estas poseen una gran resistencia en campo eléctrico. Esto conduce a un elevado consumo de energía y con ello a un fuerte desprendimiento de calor en el módulo.
Los geles como poliacrilamida poseen una mala estabilidad al pH y por tanto no se pueden purificar como las membranas de ultra– y microfiltración convencionales. De esto resultan costes muy elevados para el uso de módulos ya que la limpieza es esencial en el procesamiento de proteínas.
Por una parte el uso de membranas de ultra– y microfiltración para la electroforesis de membrana está limitado hasta ahora por el efecto electroosmótico. Por otra parte se pueden usar membranas de gel concretamente con las desventajas citadas a escala de laboratorio, sin embargo un aumento de escala conduce a costes de membrana y consumo de energía elevados.
La invención se basa en el objetivo de desarrollar un procedimiento de electroforesis de membrana mejorado con uso de membranas de ultra– y microfiltración, que no presenten las desventajas citadas en el presente documento.
En base al flujo electroosmótico que se forma en membranas porosas, no fue posible hasta ahora, por ejemplo, un uso a escala industrial (> 0,5 kg/h).
Se ha encontrado que el flujo electroosmótico en las membranas usadas y los cambios de volumen resultantes de este se pueden compensar con superposición de una presión hidrostática regulada.
Es objeto de la invención un procedimiento para la electroforesis de membrana de sustancias disueltas o dispersadas en solución que contiene electrolito según la reivindicación 1 con uso de una cámara de separación, que presenta compartimentos de diluido, compartimentos de concentrado, así como un compartimento de cátodo y un compartimento de ánodo con electrodos como ánodo y cátodo, en donde los compartimentos individuales están separados entre sí por membranas porosas, de forma particular membranas de ultra– o microfiltración y los electrodos de la solución de lavado de electrodos se lavan y se conduce el diluido de forma continua por el compartimento de diluido y el concentrado de forma continua por el compartimento de concentrado, caracterizado porque al menos una sustancia disuelta
o dispersada en el diluido se transfiere electroforéticamente mediante un campo eléctrico dispuesto entre ánodo y cátodo desde el compartimento de diluido al compartimento de concentrado, estableciéndose esencialmente entre el compartimento de diluido y el compartimento de concentrado una diferencia de presión de al menos 3 kPa, regulada de modo que el compartimento de concentrado y el compartimento de diluido separa una corriente de líquido con la membrana de separación.
El procedimiento se lleva a cabo en una cámara de separación que se compone respectivamente de varios compartimentos de diluido y compartimentos de concentrado, estando dispuestos los compartimentos de diluido y los compartimentos de concentrado entre el compartimento del ánodo y el compartimento del cátodo alternativamente, separándose mediante membranas de ultra– y/o microfiltración y operando en paralelo y/o en serie.
De forma ventajosa en una realización preferida el líquido de diluido, líquido de concentrado y solución de lavado de electrodos o alguna de estas soluciones se encuentran a temperatura controlada independientemente una de otra, preferiblemente refrigeradas.
Las membranas porosas presentan de forma particular un tamaño de poro de 1 a 1000 nm.
Preferiblemente las membranas se basan en uno o varios de los siguientes materiales:
Éster de celulosa, poliacrilonitrilo, poliamida, poliéter, polietersulfona, polipropileno,
polisulfona, alcohol polivinílico, fluoruro de polivinilideno u óxido de aluminio, óxido de silicio, óxido de titanio, óxido de circonio así como materiales cerámicos mixtos de los óxidos citados anteriormente.
Se prefiere especialmente un procedimiento en el que el compartimento del ánodo y compartimento del cátodo se laven independientemente uno de otro con solución de lavado de electrodos.
Los electrolitos usados para la solución de diluido, la solución de concentrado y la solución de lavado de electrodos contienen preferiblemente una combinación de ácidos débiles y bases débiles, ácidos débiles y bases fuertes o ácidos débiles y bases débiles.
Los electrolitos contienen con especial preferencia uno o varios de los siguientes compuestos: ácido bórico, ácido fosfórico, ácido N–2–(acetamido)–2–aminoetanosulfónico, ácido N–2–(acetamido)iminodiacético, alanina, 2–amino–2–metil–1,3–propanodiol, amoniaco, ácido N,N–bis(2–hidroxietil)–2–aminoetanosulfónico, N,N–bis–(2–hidroxietil)glicina, 2,2–bis(hidroxietil)– iminatris(hidroximetil)metano, ácido 2–(ciclohexilamino)etanosulfónico, ácido acético, glicina, glicilglicina, ácido 2–[4–(2–hidroxietil)–1–piperazinil]etanosulfónico (HEPES), ácido 3–[4–(2– hidroxietil)–1–piperazinil]propanosulfónico, histidina, imidazol, ácido láctico, ácido 2– morfolinoetanosulfónico (MES), ácido 2–morfolinopropanosulfónico, ácido piperazin–1,4–bis(2– etanosulfónico), ácido N–[tris(hidroximetil)–metil]–2–aminoetanosulfónico, N–[tris(hidroximetil)– metil]glicina, trietanolamina, tris(hidroximetil)aminometano, ácido cítrico.
La densidad de corriente referida a la superficie de membrana es preferiblemente de 10 a 1000 A/m2, de forma particular de 10 a 500 A/m2.
La conductividad eléctrica de la solución de diluido es preferiblemente de 0 mS/cm a 40 mS/cm, de forma particular de 0,1 a 10 mS/cm.
Se prefiere también un procedimiento en el que se reduzca la conductividad eléctrica de la solución de diluido durante la separación.
Es ventajoso además un procedimiento caracterizado porque la solución de diluido se concentre tras la separación, de forma particular mediante combinación con una permeación de líquido como, por ejemplo, microfiltración, ultrafiltración, nanofiltración u ósmosis inversa, y se realimenta al compartimento de diluido.
Son habituales en el procedimiento particularmente una o varias de las siguientes sustancias: proteínas, péptidos, ADN, ARN, oligonucleótidos, oligo– y polisacáridos, virus, componentes de virus, células, componentes de células, enantiómeros y diastereómeros.
Otro objeto de la invención es un dispositivo para la electroforesis de membrana según la reivindicación 13, que comprende al menos una cámara de separación, que presenta al menos compartimentos de diluido, compartimentos de concentrado así como un compartimento de cátodo y un compartimento de ánodo con electrodos como ánodo o cátodo, en donde los compartimentos individuales están separados entre sí mediante membranas porosas, particularmente mediante membranas de ultra– o microfiltración, conducciones y derivaciones para el diluido, conducciones y derivaciones para el concentrado, dado el caso conducciones y derivaciones para la solución de lavado de electrodos así como un dispositivo para la regulación de la presión, mediante el cual entre el compartimento de diluido y compartimento de concentrado se genera una diferencia de presión particularmente de al menos 3 kPa.
La cámara de separación se subdivide en varios compartimentos de diluido y compartimentos de concentrado.
Entre compartimento de ánodo y compartimento de cátodo están dispuestos preferiblemente de forma alternativa varios compartimentos de diluido y compartimentos de concentrado, que están separados entre sí mediante membranas de restricción o membranas de separación porosas y están configuradas preferiblemente en paralelo y/o en serie.
Se prefiere además un dispositivo en el que estén dispuestas conducciones y derivaciones para el diluido en un circuito de diluido, conducciones y derivaciones para el concentrado en un circuito de concentrado, dado el cado conducciones y derivaciones para la solución de lavado de electrodos en un circuito de lavado de electrodos.
Se prefiere igualmente un dispositivo que presente un circuito de diluido, circuito de concentrado y circuito de lavado de electrodos y presente especialmente intercambiadores de calor en alguno o todos estos circuitos.
El circuito de lavado de electrodos está configurado en una variante preferida por un circuito de lavado de ánodo y circuito de lavado de cátodo separado.
El flujo electroosmótico se compensa con la superposición de presión en recipientes a prueba de presión individuales. La diferencia de presión puede ser de unos 100 kPa.
El dispositivo es adecuado para la purificación de sustancias disueltas o dispersas en medio acuoso. Ejemplos de aplicación son la purificación de proteínas, péptidos, ADN, ARN, oligonucleótidos, virus, células así como moléculas quirales.
Es especialmente adecuado el procedimiento para la purificación de proteínas, péptidos, oligonucleótidos y artículos virales.
Por tanto es objeto de la invención también el uso del dispositivo de acuerdo con la invención para la limpieza de proteínas, péptidos, ADN, ARN, oligonucleótidos, virus, células o moléculas quirales.
La invención se puede aplicar tanto en funcionamiento en discontinuo como también en funcionamiento continuo.
La invención se aclara con mayor detalle a continuación en función de las figuras con los ejemplos, que no obstante no representan limitación alguna de la invención. Estas muestran:
La figura 1
el esquema de un dispositivo de electroforesis de membrana con dispositivo
para la superposición de presión
La figura 2
un esquema de un módulo de electroforesis con membrana (apilamiento
cuadruple).
Ejemplos
El equipo usado en los siguientes ejemplos descritos (figura 1) se compone de un recipiente a temperatura controlada para el diluido 1, concentrado 2 y tampón de electrodos 3. Las soluciones se recirculan mediante bombas 4, 5, 6 mediante conducciones de alimentación 22, 24, 26 y conducciones de retorno 23, 25, 27 y circulan por un módulo de separación por electroforesis 7. La superposición de presión en el compartimento de gas del recipiente de diluido y del recipiente de concentrado con nitrógeno de las conducciones 12, 13 se realiza mediante reguladores de presión 8, 9. Los reguladores de presión se regulan a su vez mediante sondas de nivel 10, 11.
El equipo de electroforesis por membrana comprende un módulo 7a (véase la figura 2) respectivamente con cuatro compartimentos de diluido en paralelo 16a–d y compartimentos de concentrado 17a–d. Los compartimentos de diluido 16 y de concentrado 17 se hacen circular en paralelo por los distribuidores de líquidos y por las membranas de restricción 14 y membranas de separación 15. Los compartimentos de diluido y concentrado en este documento no contienen rejillas o tejidos que funcionan como distanciadores entre las membranas y como deflectores de corriente. Los compartimentos de electrodos 18, 21 son recorridos en paralelo y limitados por membranas de restricción 14. En los electrodos 19, 20 se forma un campo eléctrico. El campo eléctrico se puede formar como se indica en la figura 2 o también de forma opuesta. Ejemplo 1:
El equipo mostrado en la figura 1 así como el módulo 7a esquematizado en la figura 2 se usaron para la separación de albúmina de suero humano (HSA) e inmunoglobulina G humana (IgG). El módulo 7a se trataba de un módulo de electrodiálisis modificado (módulo de electrodiálisis ED 136; FuMA–Tech GmbH) con una superficie de membrana efectiva de 36 cm2 por de membrana.
Se usó un tampón HEPES (ácido 2–[4–(2–hidroxietil)–1–piperazinil]etanosulfónico) / imidazol (HEPES aproximadamente 40 mM / imidazol 15 mM, pH 7). Los recipientes para la solución de concentrado 2 y solución de electrodos 3 se llenaron respectivamente con 1000 ml de solución tampón. El recipiente de diluido se llenó con 400 ml en HSA disuelto en tampón
con una concentración de 38 g/l así como IgG en una concentración de 4,5 g/l.
Se juntaron las membranas de restricción 14 con un límite de separación nominal de 10 kDa así como las membranas de separación 15 con un límite de separación nominal de 300 kDa con espaciadores convencionales (fabricante: FuMA–Tech GmbH) con un apilamiento múltiple. Las membranas usadas se trataban de membranas de ultrafiltración de PES de la compañía Sartorius AG.
El ensayo se llevó a cabo con una densidad de corriente de aproximadamente 45 A/m2, presentando el electrodo 20 que da al diluido un potencial negativo. Las corrientes volumétricas en el circuito de diluido y de concentrado fueron respectivamente de 320 ml/min, el flujo volumétrico en el circuito de electrodos fue de 700 ml/min. Las concentraciones de proteína se determinaron mediante analítica por HPLC (cromatografía líquida de alta resolución).
Se llevaron a cabo los siguientes ensayos:
1a) Electroforesis con compensación del flujo electroosmótico mediante regulación
del nivel del recipiente de diluido mediante aplicación de presión
1b) Electroforesis sin compensación del flujo electroosmótico. La tabla 1 comprende
parámetros de ensayo y progresiones de la concentración del ensayo 1a. La tabla 2 los
datos del ensayo 1b. El ensayo 1b debió interrumpirse después de 180 minutos, ya que
el recipiente de diluido se llenó.
La reducción de la concentración de albúmina en el diluido depende de la concentración y sigue una cinética de primer orden de la forma:
imagen1
con
c:
Concentración de albúmina en el diluido [g/l*]
t:
Tiempo [g]
V:
Volumen de diluido [l]
A:
Superficie efectiva de las membranas de separación [m2]
k:
Constante de velocidad [l/(h m2)]
imagen2
con
c/c0: proporción de residuo [–]
Se considera que el volumen de diluido no se mantiene incondicionalmente constante
de modo que se puede calcular mediante la consideración de las masas de proteína en lugar
imagen3
con
m:
masa de albúmina en el diluido [g]
m0:
masa de albúmina en el diluido al comienzo del ensayo [g]
m/m0:
proporción de residuo referida a la masa [–]
keff:
constante de velocidad efectiva [l/(hm2)]
Para el empobrecimiento de albúmina en suero resultan después de 180 minutos proporciones residuales referidas a la masa de 0,45 (ensayo 1a) o bien 0,64 (ensayo 1b). Si se usan estas en la fórmula descrita anteriormente resulta para el ejemplo 1a en comparación con el ejemplo 1b una constante de velocidad efectiva de 1,8 veces. Así el empobrecimiento se realiza con compensación de presión aproximadamente el doble de rápido.
La selectividad del empobrecimiento se calcula como sigue:
imagen1
con
ψ:
Selectividad [–]
m/m0 (HSA):
proporción de residuo referido a la masa
de HSA en el diluido
[–]
m/m0 (IgG):
proporción de residuo referido a la masa
de IgG en el diluido
[–]
Con el transcurso completo del ensayo 1a resulta una selectividad de 8,8, mientras que en el ensayo 1b solamente se pudo conseguir una selectividad de 3,8. Ejemplo 2:
El montaje mostrado en la figura 1 así como el módulo 7a esquematizado en la figura 2 se usaron para la separación de albúmina en suero humano y hemoglobina. El módulo 7a se trataba de un módulo de electrodiálisis modificado como en el ejemplo 1 con una superficie de membrana efectiva de 36 cm2 por membrana.
Se usó un tampón de MES/histidina 50 milimolar (aproximadamente MES 15 mM / histidina 35 mM, pH 6,5). Los recipientes para la solución de concentrado 2 y solución de lavado de electrodos 3 se rellenaron con 1 l o bien 800 ml de solución tampón. El recipiente de diluido 1 contenía las dos proteínas disueltas en el tampón con concentraciones en masa de
5
10
15
0
0
439 45 14,3 1,6
30
0 451 47 12,5 1,6
60
9 451 47 10,9 1,5
90
14 462 45 10,0 1,5
120
15 462 45 8,6 1,4
150
18 466 42 7,5 1,3
180
20 474 50 6,5 1,3
210
21 474 45 5,7 1,3
240
20 474 45 4,9 1,3
270
23 482 42 4,2 1,3
300
24 466 45 3,3 1,4
330
21 474 42 2,7 1,3
360
22 462 42 2,4 1,3
9
4,5 g/l de albúmina de suero humano y 0,85 g/l de hemoglobina. El volumen del líquido de diluido fue de 400 ml y se mantenía constante durante el ensayo mediante superposición de la presión.
Las membranas de restricción 14 se juntaron con un límite de separación nominal de 10 kDa así como membranas de separación 15 con un límite de separación nominal de 300 kDa con espaciadores convencionales como en el ejemplo 1 respecto a un apilamiento múltiple. Las membranas usadas se trataban de membranas de ultrafiltración de PES de la compañía Sartorius AG.
El ensayo se llevó a cabo con una densidad de corriente de 45 A/m2, disponiéndose en el electrodo 20 del lado del diluido un potencial negativo. Las corrientes volumétricas en el circuito de diluido y concentrado fueron respectivamente de 160 ml/minuto, la corriente volumétrica en el circuito de electrodos fue de 770 ml/minuto. Las concentraciones de proteína se determinaron mediante analítica por HPLC. Los niveles en los recipientes se mantuvieron constantes mediante una regulación de la presión en el lado del concentrado.
Después de 3 horas se obtuvo un empobrecimiento del 92% de la albúmina en suero humano en el diluido con 83% de rendimiento de hemoglobina en el diluido. El transcurso del ensayo se representa en la tabla 3.
Tabla 1: resultado de la separación de HSA/IgG (ejemplo 1a)
Tiempo
Presión de gas / Volumen / Densidad m (HSA) / g m (IgG) / g
/ min
kPa ml (diluido) de corriente (diluido) (diluido)
(compartimento
/ Am2
de diluido)
Tabla 2: resultado de la separación de HSA/IgG (ejemplo 1b)
Tiempo
Presión de gas / Volumen / Densidad m (HSA) / g m (IgG) / g
/ min
kPa ml (diluido) de corriente (diluido) (diluido)
(compartimento
/ Am2
de diluido)
0
0
423 45 13,8 1,8
30
0 470 42 12,9 1,6
60
0 520 45 11,5 1,3
90
0 602 40 10,2 1,5
120
0 684 42 9,3 1,2
150
0 750 42 9,7 1,7
180
0 820 42 8,8 1,6
Tabla 3: resultado de la separación de HSA/Hemoglobina (ejemplo 2)
Tiempo
Presión de gas / Volumen / Densidad m (HSA) / g m (Hem) / g
/ min
kPa ml (diluido) de corriente (diluido) (diluido)
(compartimento
/ Am2
de diluido)
0
0
420 45 1,85 0,35
30
4 420 45 1,29 0,34
60
6 420 47 0,79 0,32
90
3 420 45 0,48 0,31
120
5 420 45 0,30 0,30
150
3 420 45 0,20 0,29
180
7 420 42 0,14 0,29

Claims (18)

  1. REIVINDICACIONES
    1. Procedimiento para la electroforesis de membrana de sustancias disueltas o dispersadas en solución que contiene electrolito con uso de una cámara de separación (7a), que presenta varios compartimentos para diluido (16a, 16b, …), compartimentos para concentrado (17a, 17b, …), así como un compartimento para el cátodo (18) y un compartimento para el ánodo (21) con electrodos como ánodo (19) y cátodo (20), en donde los compartimentos para diluido (16a, 16b, …) y compartimentos para concentrado (17a, 17b, …) están separados entre sí respectivamente con una membrana de separación porosa (15) y en donde el compartimento para el cátodo (18) y compartimento para el ánodo (21) están separados de los compartimentos para diluido (16a, 16b, …) y compartimentos para concentrado (17a, 17b, …), así como pares de compartimentos para diluido (16a, 16b, …) y compartimentos para concentrado (17a, 17b, …) sucesivamente, por membranas de restricción
    (14) porosas y los electrodos (19, 20) son lavados con la solución de lavado de electrodos y el diluido se conduce de forma continua por el compartimento de diluido (16), o el concentrado se conduce de forma continua por el compartimento de concentrado (17), caracterizado porque al menos una sustancia disuelta o dispersada en el diluido es transferida mediante un campo eléctrico dispuesto entre el ánodo (19) y el cátodo (20) electroforéticamente desde el compartimento del diluido (16) hasta el compartimento del concentrado (17), ajustándose entre el compartimento del diluido (16) y el compartimento del concentrado (17) una diferencia de presión de modo que se somete esencialmente una corriente de líquido a la membrana de separación (15) y al menos llega a 3 kPa y regulándose esta diferencia de presión mediante superposición de presión en los recipientes (1, 2).
  2. 2.
    Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado porque los diversos compartimentos de diluido (16a, 16b, …) y compartimentos de concentrado (17a, 17b, …) son operados en paralelo y/o en serie.
  3. 3.
    Procedimiento según una de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque el líquido del diluido, líquido del concentrado y solución de lavado del electrodo o alguna o algunas de estas soluciones se encuentran a temperatura controlada, preferiblemente refrigeradas independientemente una de otra.
  4. 4.
    Procedimiento según una de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque las membranas presentan un tamaño de poro de 1 a 1000 nm.
  5. 5.
    Procedimiento según la reivindicación 4, caracterizado porque las membranas se basan en uno de los siguientes materiales: éster de celulosa, poliacrilonitrilo, poliamida, poliéter, polietersulfona, polipropileno, polisulfona, alcohol polivinílico, fluoruro de polivinilideno, u óxido de aluminio, óxido de silicio, óxido de titanio, óxido de circonio así como materiales cerámicos mixtos de los óxidos citados anteriormente.
  6. 6.
    Procedimiento según una de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque la solución de lavado de electrodos fluye a través del compartimento del ánodo (21) y del compartimento del cátodo (18) independientemente uno de otro.
  7. 7.
    Procedimiento según una de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque el electrolito usado para la solución de diluido, la solución de concentrado y la solución de lavado de electrodos contiene una combinación de ácidos débiles y bases débiles, ácidos fuertes y bases fuertes o ácidos fuertes y bases débiles.
  8. 8.
    Procedimiento según la reivindicación 7, caracterizado porque los electrolitos contienen uno o varios de los siguientes compuestos: ácido bórico, ácido fosfórico, ácido N–2– (acetamido)–2–aminoetanosulfónico, ácido N–2–(acetamido)iminodiacético, alanina, 2–amino–2– metil–1,3–propanodiol, amoniaco, ácido N,N–bis(2–hidroxietil)–2–aminoetanosulfónico, N,N–bis– (2–hidroxietil)glicina, 2,2–bis(hidroxietil)–iminatris(hidroximetil)metano, ácido 2– (ciclohexilamino)etanosulfónico, ácido acético, glicina, glicilglicina, ácido 2–[4–(2–hidroxietil)–1– piperazinil]etanosulfónico, ácido 3–[4–(2–hidroxietil)–1–piperazinil]propanosulfónico, histidina, imidazol, ácido láctico, ácido 2–morfolinoetanosulfónico, ácido 2–morfolinopropanosulfónico, ácido piperazin–1,4–bis(2–etanosulfónico), ácido N–[tris(hidroximetil)–metil]–2– aminoetanosulfónico, N–[tris(hidroximetil)–metil]glicina, trietanolamina, tris(hidroximetil)aminometano, ácido cítrico.
  9. 9.
    Procedimiento según una de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque la densidad de corriente referida a la superficie de membrana es de 10 a 1000 A/m2, preferiblemente de 10 a 500 A/m2.
  10. 10.
    Procedimiento según una de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque la conductividad eléctrica de la solución de diluido es de 0,1 mS/cm a 40 mS/cm, preferiblemente de 0,1 a 10 mS/cm.
  11. 11.
    Procedimiento según una de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque la solución de diluido se concentra a continuación del secado, de forma particular mediante combinación con una permeación del líquido como, por ejemplo, microfiltración, ultrafiltración, nanofiltración u ósmosis inversa y se añade de nuevo al compartimento del diluido (16).
  12. 12.
    Procedimiento según una de las reivindicaciones precedentes en el que se tratan una o varias de las siguientes sustancias: proteínas, péptidos, ADN, ARN, oligonucleótidos, oligo– y polisacáridos, virus, componentes de virus, células, componentes de células, enantiómeros y diastereómeros.
  13. 13.
    Dispositivo para la electroforesis de membrana que comprende al menos una cámara de separación (7a), que presenta varios compartimentos de diluido (16a, 16b, …) y compartimentos de concentrado (17a, 17b, …) así como un compartimento de cátodo (18) y un compartimento de ánodo (21) con electrodos como ánodo (19) o cátodo (20), en donde los compartimentos de diluido (16a, 16b, …) y compartimentos de concentrado (17a, 17b, …) están separados respectivamente por una membrana de separación (15) y en donde el compartimento del cátodo (18) y el compartimento del ánodo (21), están separados de los compartimentos de diluido (16a, 16b, …) y compartimentos de concentrado (17a, 17b, …), así como pares de compartimentos de diluido (16a, 16b, …) y compartimentos de concentrado (17a, 17b, …) entre sí, mediante membranas de restricción porosas (14), las conducciones de alimentación (22) y de retorno (23) para el diluido, las conducciones de alimentación (24) y de retorno (25) para el concentrado, dado el caso conducciones de alimentación (26) y de retorno
    (27) para la solución de lavado de electrodos así como un dispositivo (8; 10) o (9;11) para la regulación de presión, mediante el que se produce una diferencia de presión entre los compartimentos de diluido (16a, 16b, …) y compartimentos para concentrado (17a, 17b, …) de al menos 3 kPa y se puede regular de este modo que una corriente de líquido se pueda someter esencialmente mediante la membrana de separación (15) en donde como dispositivo para el ajuste de la presión están previstos recipientes (1, 2) resistentes a la presión con medios para la regulación de presión (12, 13).
  14. 14.
    Dispositivo según la reivindicación 13, caracterizado porque los diversos compartimentos de diluido (16a, 16b, …) y compartimentos de concentrado (17a, 17b, …) se conectan en paralelo y/o en serie.
  15. 15.
    Dispositivo según una de las reivindicaciones 13 ó 14, caracterizado porque los
    conductos de alimentación (22) y de retorno (23) para el diluido están dispuestos en un circuito de diluido (1; 4; 22; 23), los conductos de alimentación (24) y de retorno (25) para el concentrado están dispuestos en un circuito de concentrado (2; 5; 24; 25), dado el caso los conductos de alimentación (26) y de retorno (27) para la solución de lavado de electrodos
    5 están dispuestos en un circuito de lavado de electrodos (3; 6; 26; 27).
  16. 16. Dispositivo según una de las reivindicaciones 13 a 15, caracterizado porque presentan un circuito de diluido, circuito de concentrado y circuito de lavado de electrodos y presenta intercambiador de calor en algunos o todos estos circuitos.
    10
  17. 17. Dispositivo según una de las reivindicaciones 13 a16, caracterizado porque están presentes membranas porosas con un tamaño de poro de 1 a 1000 mm. Estas se preparan preferiblemente a partir de materiales orgánicos o inorgánicos o de una mezcla de ambos.
    15 18. Dispositivo según una de las reivindicaciones 13 a 17, caracterizado porque las membranas se basan en uno de los materiales seleccionados del grupo de: éster de celulosa, poliacrilonitrilo, poliamida, poliéter, polietersulfona, polipropileno, polisulfona, alcohol polivinílico, fluoruro de polivinilideno o de óxido de aluminio, óxido de silicio, óxido de titanio, óxido de circonio así como materiales cerámicos mixtos de los óxidos citados anteriormente.
    20
  18. 19. Dispositivo según una de las reivindicaciones 15 a 18, caracterizado porque el circuito de lavado de electrodos se forma mediante un circuito de lavado de ánodos y circuito de lavado de cátodos separados.
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Families Citing this family (28)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB0328124D0 (en) * 2003-12-04 2004-01-07 Daly James Membrane electrolyser with a two part end design
DE102005012594A1 (de) 2005-03-18 2006-09-21 Bayer Technology Services Gmbh Elektrofiltrationsverfahren
DE102005044994A1 (de) * 2005-09-21 2007-04-05 Gesellschaft zur Förderung der Analytischen Wissenschaften e.V. Vorrichtung zur Trennung eines Analytgemisches und zur Detektion der Analytsubstanzen mittels elektrophoretischer Trennung
CZ307051B6 (cs) * 2008-05-06 2017-12-20 Ăšstav analytickĂ© chemie AV ÄŚR, v. v. i. Zařízení pro kontinuální preparativní isoelektrickou fokusaci v porézním loži protékaném rozbíhavým tokem
JP2012041286A (ja) * 2010-08-17 2012-03-01 Confocal Science Inc 生体高分子精製装置
US9010361B2 (en) 2011-10-27 2015-04-21 Pentair Residential Filtration, Llc Control valve assembly
US9695070B2 (en) 2011-10-27 2017-07-04 Pentair Residential Filtration, Llc Regeneration of a capacitive deionization system
US8671985B2 (en) 2011-10-27 2014-03-18 Pentair Residential Filtration, Llc Control valve assembly
US8961770B2 (en) 2011-10-27 2015-02-24 Pentair Residential Filtration, Llc Controller and method of operation of a capacitive deionization system
US9637397B2 (en) 2011-10-27 2017-05-02 Pentair Residential Filtration, Llc Ion removal using a capacitive deionization system
CZ303688B6 (cs) * 2012-02-14 2013-03-13 Ústav analytické chemie AV CR, v.v.i. Zpusob separace a zkoncentrování amfolytu isoelektrickou fokusací a zarízení pro provádení tohoto zpusobu
US9321012B2 (en) * 2012-04-04 2016-04-26 Bio-Rad Laboratories, Inc. Electronic protein fractionation
CN103265132B (zh) * 2013-06-04 2014-12-24 大连理工大学 一种导电膜处理重金属废水的方法
KR101726286B1 (ko) * 2015-08-11 2017-04-12 한국과학기술연구원 세포외 소포체 포집 장치 및 그 사용 방법
IL265376B1 (en) 2016-09-20 2024-04-01 Aqua Membranes Llc Penetrating current patterns
KR102033982B1 (ko) 2016-11-19 2019-10-18 아쿠아 멤브레인스 엘엘씨 나선형 권취 요소를 위한 간섭 패턴
EP3366653A1 (en) * 2017-02-23 2018-08-29 Ibanez Botella, Juan Miguel System for water disinfection using electroporation
CN110461445B (zh) 2017-04-12 2022-10-21 阿夸曼布拉尼斯公司 用于卷绕式过滤元件的分级间隔件
CN110520210A (zh) 2017-04-20 2019-11-29 阿夸曼布拉尼斯公司 用于螺旋卷绕元件的不嵌套、不变形图案
US11745143B2 (en) 2017-04-20 2023-09-05 Aqua Membranes, Inc. Mixing-promoting spacer patterns for spiral-wound elements
JP7167140B2 (ja) 2017-10-13 2022-11-08 アクア メンブレインズ,インコーポレイテッド スパイラル型巻線要素用の橋梁支持及び低減した供給スペーサ
CN107754493B (zh) * 2017-11-01 2020-09-29 陕西科技大学 一种具有光催化性的透明pm2.5过滤膜及其制备方法
JP2023521977A (ja) 2020-04-07 2023-05-26 アクア メンブレインズ,インコーポレイテッド 独立したスペーサ及び方法
CN111560063B (zh) * 2020-05-12 2022-11-01 蚌埠医学院 一种动物胰脏来源胰岛素原料药纯化装置及使用方法
US11975277B2 (en) 2020-09-29 2024-05-07 Mitsubishi Kakoki Kaisha, Ltd. Filtration device, and filtration system
US20220305181A1 (en) * 2021-03-23 2022-09-29 Nephria Bio, Inc. Systems, devices, and methods for continuous ambulatory renal replacement therapy
WO2023079708A1 (ja) * 2021-11-05 2023-05-11 三菱化工機株式会社 ろ過装置及びろ過装置の運転方法
WO2023080199A1 (ja) * 2021-11-05 2023-05-11 三菱化工機株式会社 ろ過装置及びろ過システム

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3989613A (en) 1973-05-16 1976-11-02 The Dow Chemical Company Continuous balanced flow fixed boundary electrophoresis
US4043895A (en) * 1973-05-16 1977-08-23 The Dow Chemical Company Electrophoresis apparatus
US4043896A (en) * 1976-03-25 1977-08-23 Aqua-Chem, Inc. Ultrafiltration and electrodialysis apparatus
DE2861803D1 (en) 1977-06-15 1982-07-01 Nat Res Dev Electrophoresis membranes, their use in a separation method and separation apparatus
US4180451A (en) * 1978-04-19 1979-12-25 Ionics Inc. Apparatus for treating whey
DE3337669C2 (de) 1983-10-17 1989-09-21 Carl Schleicher & Schuell Gmbh & Co Kg, 3352 Einbeck Gerät zur Elektroelution elektrisch geladener Makromoleküle
FR2583300B1 (fr) * 1985-06-13 1987-08-28 Centre Nat Rech Scient Procede et dispositif de separation par electrofiltration de particules solides ou macromolecules, contenues dans une solution
DD245585A1 (de) 1985-09-03 1987-05-13 Univ Halle Wittenberg Verfahren und apparatur zur elektrokinetischen ultrafiltration
GB2225339A (en) 1988-11-15 1990-05-30 Aligena Ag Separating electrically charged macromolecular compounds by forced-flow membrane electrophoresis
US5336387A (en) 1990-09-11 1994-08-09 Bioseparations, Inc. Electrical separator apparatus and method of counterflow gradient focusing
US6270672B1 (en) 1999-08-06 2001-08-07 Baxter Aktiengesellschaft Devices and methods for removing pathogens from biological fluids
DE60142520D1 (de) * 2000-10-06 2010-08-19 Arturus Capital Ltd Multi-port-elektrophorese-trennvorrichtung und entsprechendes verfahren

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