ES2336428T3 - Preparacion de celulasa que contiene agentes tensioactivos no ionicos y procedimiento para tratar fibras. - Google Patents
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Abstract
Preparación de celulasa que comprende uno o más agentes tensioactivos no iónicos junto con la(s) proteína(s) (a) y/o (b) tal como se describe a continuación: a)una proteína que comprende una secuencia de aminoácidos tal como se muestra en cualquiera de las SEQ ID NOS: 1 a 6, y b)una proteína que comprende una secuencia de aminoácidos que tiene un 80% o más de homología con la secuencia de aminoácidos tal como se muestran en cualquiera de las SEQ ID NOS: 1 a 6, y que tiene actividad endoglucanasa, caracterizada porque el o los agentes tensioactivos no iónicos son los únicos agentes tensioactivos presentes.
Description
Preparación de celulasa que contiene agentes
tensioactivos no iónicos y procedimiento para tratar fibras.
La presente invención se refiere a una
preparación de celulasa que comprende uno o más agentes
tensioactivos no iónicos mediante los cuales se mejora la actividad
de la endoglucanasa, a un detergente que comprende la preparación
de celulasa, así como a un procedimiento para tratar tejidos donde
se emplea la preparación de celulasa.
La celulasa posee tres tipos de actividades
enzimáticas: la actividad de la celobiohidrolasa, que hidroliza las
regiones cristalinas sólidas de la celulosa a partir del extremo no
reducido de una forma exo para generar la celobiosa; la actividad
endoglucanasa, que hidroliza las regiones amorfas de la celulosa de
forma endo para convertir las moléculas de celulosa en moléculas de
bajo peso molecular y para generar diversos tipos de
celooligosacáridos; y la actividad
\beta-glucosidasa, que descompone la celobiosa o
el celooligosacárido en glucosa. De entre las enzimas, cuando la
endoglucanasa ejerce una gran actividad, la celulasa se utiliza
ventajosamente para tratar tejidos.
Para conferir ciertas propiedades deseadas a un
tejido que contiene celulosa, convencionalmente el tejido se trata
con celulasa. Por ejemplo, en la industria textil, se lleva a cabo
el tratamiento con celulasa para mejorar el tacto y el aspecto del
tejido que contiene celulosa o para conferir un aspecto de "lavado
a la piedra" al tejido de color que contiene celulosa,
proporcionando así al tejido una variación localizada de colores
(Patente EP Nº 307.564).
Es conocido que, debido al lavado repetido, en
los tejidos de color que contienen celulosa se forman pelusas y
esto difumina el color del tejido coloreado. Un detergente que
contiene celulosa elimina estas pelusas y hace que el color del
tejido sea nítido (clarificación del color) (Patente EP Nº 220.016)
y, por tanto, en el mercado, principalmente en Europa y Estados
Unidos, actualmente se pueden encontrar detergentes que contienen
celulasa.
En dicho procesamiento textil se utiliza
esencialmente celulasa procedente de hongos de la putrefacción de
la madera, tales como Trichoderma y Humicola. Tal
celulasa se utiliza en forma de una mezcla que comprende múltiples
componentes de celulasa y que se obtiene mediante el procesamiento
de un filtrado de un cultivo de microorganismos que tienen
actividad celulolítica. Recientemente, sin embargo, con el fin de
mejorar el coste, se ha utilizado una preparación de celulasa
obtenida mediante aislamiento de los componentes de la celulasa,
solamente la endoglucanasa que actúa en gran medida en el
tratamiento de los tejidos, y que la mejora genéticamente. Ejemplos
de dicha endoglucanasa de alta actividad incluyen: EGV (Publicación
de Patente JP (Traducción PCT) Nº 5-509223) y NCE4
(WO 98/03640), procedente de Humicola insolens, que actúa
rotundamente sobre los tejidos de algodón; RCE I, RCE II y RCE III
derivadas de Rhizopus oryzae, que actúa fuertemente sobre
los tejidos de lyocell; MCE I y MCE II procedentes de Mucor
circinelloides; y PCE I procedente de Phycomyces nitens
(WO 00/24879).
Con el fin de mejorar los efectos de la
celulasa, también se ha intentado utilizar de forma combinada
aditivos. Por ejemplo, la Publicación de Patente JP (Traducción
PCT) Nº 5-507615 describe un polímero soluble en
agua, tal como polivinilpirrolidona, alcohol polivinílico y
poliacrilamida, que intensifica los efectos de la celulasa
procedente de Humicola insolens y mejora su actividad de
eliminar pelusas en tejidos coloreados. Además, se sabe que la
actividad CMCasa en la solución de cultivo de Trichoderma
viride mejora con la adición de Tween 20 (Ooshima, H., y col.,
Biotechnology and Bioengineering).
Sin embargo, las celulasas utilizadas con los
propósitos descritos anteriormente son todas muy caras. Por tanto,
con el fin de lograr su aplicación en el ámbito industrial, se desea
otra mejora de la actividad endoglucanasa de modo que los efectos
anteriores de la celulasa puedan ejercerse de forma más eficaz.
Es por tanto el objeto de la presente invención
proporcionar una preparación de celulasa que tenga una actividad
mejorada de la endoglucanasa, que se pueda utilizar con el propósito
de poder llevar a cabo de manera eficaz y económica un tratamiento
de los tejidos para mejorar los tejidos que contienen celulosa, tal
como la eliminación de pelusas.
Como resultado de profundos estudios dirigidos
al objeto anteriormente mencionado, los presentes inventores han
descubierto que un agente tensioactivo no iónico intensifica los
efectos de las endoglucanasas derivadas de Zigomicetos tales como
RCE I, MCE I y PCE I, a velocidades mucho más altas que las
endoglucanasas derivadas de Trichoderma o Humicola,
llegando así a la presente invención.
Esto es, la presente invención se refiere a los
siguientes puntos (1) a (3):
- 1)
- Una preparación de celulasa tal como se define en la reivindicación 1, que comprende uno o más agentes tensioactivos no iónicos junto con endoglucanasa(s) procedentes de Zigomicetos,
- 2)
- Una composición detergente tal como se define en la reivindicación 8, que se puede obtener mezclando dicha preparación de celulasa con componentes detergentes.
- 3)
- Un procedimiento para tratar tejidos que comprende el tratamiento de tejidos que contienen celulosa con dicha preparación de celulasa para mejorar las propiedades de los tejidos.
La preparación de celulasa de la presente
invención comprende endoglucanasa(s) procedente(s) de
Zigomicetos y uno o más agentes tensioactivos no iónicos.
En la presente invención, se utiliza el término
"endoglucanasa" en el sentido de
endo-1,4-\beta-glucanasa
EC3.2.1.4, y ésta posee la actividad de hidrolizar los enlaces
\beta-1,4-glucopiranosil del
\beta-1,4-glucano.
Las endoglucanasas procedentes de Zigomicetos
utilizadas en la presente invención incluyen endoglucanasas
derivadas de Rhizopus sp., Phycomyces sp. o Mucor sp.,
específicamente proteínas RCE I, RCE II, RCE III, MCE I, MCE II y
PCE I que tienen las secuencias de aminoácidos tal como se muestran
en las SEQ ID NOS: 1 a 6, respectivamente, que se describen en la
WO 00/24879.
RCE I, II y III proceden de la cepa CP96001 de
Rhizopus oryzae depositada bajo los términos del Tratado de
Budapest con el Instituto Nacional de Ciencia y Tecnología
Industrial Avanzada, Institución Administrativa Independiente del
Ministerio de Economía, Comercio e Industria, en AIST Tsukuba
Central 6, Higashi 1-1-1, Tsukuba,
Ibaraki, Japón (código postal 305-8566) [antiguo
nombre: Instituto Nacional de Biociencia y Tecnología Humana,
Agencia de Ciencia y Tecnología Industrial, antigua dirección:
Higashi 1-1-3, Tsukuba, Ibaraki,
Japón], con el nº de acceso FERM BP-6889, 21 de
abril de 1997. MCE I y II proceden de la cepa CP99001 de Mucor
circinelloides, depositada con la misma autoridad depositaria
internacional, es decir el Instituto Nacional de Ciencia y
Tecnología Industrial Avanzada, Institución Administrativa
Independiente del Ministerio de Economía, Comercio e Industria, en
AIST Tsukuba Central 6, Higashi
1-1-1, Tsukuba, Ibaraki, Japón
(código postal 305-8566) [antiguo nombre: Instituto
Nacional de Biociencia y Tecnología Humana, Agencia de Ciencia y
Tecnología Industrial, antigua dirección: Higashi
1-1-3, Tsukuba, Ibaraki, Japón], con
el nº de acceso FERM BP-6890, 2 de julio de 1999.
Además, PCE I procede de la cepa CP99002 de Phycomyces
nitens, depositada con la misma autoridad depositaria
internacional, con el nº de acceso FERM BP-6891, 2
de julio de 1999.
En la presente invención, las proteínas RCE I,
RCE II, RCE III, MCE I, MCE II y PCE I indicadas anteriormente
incluyen proteínas modificadas y homólogos de las mismas. El término
"proteína modificada" utilizado aquí se refiere a una proteína
que contiene una secuencia de aminoácidos que comprende una adición,
inserción, deleción o sustitución de uno o más aminoácidos (por
ejemplo, de uno a varias decenas, específicamente de uno a
aproximadamente cincuenta, preferentemente de uno a aproximadamente
treinta y especialmente de uno a aproximadamente nueve aminoácidos)
con respecto a la secuencia de aminoácidos de cada una de las RCE I,
RCE II, RCE III, MCE I, MCE II y PCE I mencionadas anteriormente, y
que tienen actividad endogluconasa. El término "homólogos"
empleado aquí se refiere a una proteína que contiene una secuencia
de aminoácidos codificada por un gen (secuencia de nucleótidos)
complementario a un gen (secuencia de nucleótidos) que "se
hibridiza en condiciones rigurosas" con un gen (secuencia de
nucleótidos) que codifica la secuencia de aminoácidos de cada una
de las RCE I, RCE II, RCE III, MCE I, MCE II y PCE I mencionadas
anteriormente y que tiene actividad endoglucanasa. Aquí, el término
"en condiciones rigurosas" se refiere a aquellas condiciones
bajo las que una sonda que comprende una secuencia de nucleótidos
que codifica todas o parte de las secuencias de aminoácidos de RCE
I, RCE II, RCE III, MCE I, MCE II o PCE I, o las secuencias de
aminoácidos de las proteínas modificadas de las mismas, se
hibridizarían con un gen que codifica un homólogo, pero la misma
sonda no se hibridiza con un gen NCE4 de la endoglucanasa (SEQ ID
NO: 7) tal como se describe en la WO 98/03640 o el gen SCE 3 de la
endogluconasa (SEQ ID NO: 8) tal como se describe en la WO 98/54322
(se debe observar que la cantidad de ADN utilizado aquí es
equivalente a la cantidad de cada gen NCE 4, gen SCE 3 y un gen que
codifica el homólogo). De forma más específica, se refiere a
aquellas condiciones bajo las que, utilizando como sonda una
secuencia de ADN de longitud total que codifica la secuencia de
aminoácidos de RCE I etiquetada, se lleva a cabo una prehibridación
a 42ºC durante 1 hora de acuerdo con el método ECL directo de
detección y etiquetado de ADN/ARN (Amersham), después se añade la
sonda mencionada anteriormente y se continúa con la hibridación a
42ºC durante 15 horas y, a continuación, el producto resultante se
lava dos veces con una solución que contiene un 0,4% de SDS, urea
6M y 0,5 x SSC (SSC; 15 mM citrato trisódico, 150 mM cloruro sódico)
a 42ºC durante 20 minutos y finalmente se prosigue con el lavado
del producto dos veces con 5 x SSC a temperatura ambiente durante
10
minutos.
minutos.
Un ejemplo de dicha proteína modificada o su
homólogo incluye una proteína que comprende una secuencia de
aminoácidos que tiene preferentemente un 80% o más de homología, con
especial preferencia un 90% o más de homología, en particular un
95% o más de homología y específicamente un 98% o más de homología
con la secuencia de aminoácidos de RCE I, RCE II, RCE III, MCE I,
MCE II o PCE I. Los valores de homología indicados anteriormente se
pueden calcular mediante un programa de búsqueda de homologías bien
conocido por un especialista en la técnica, pero los valores se
calculan preferentemente por medio de un parámetro por defecto
(inicializado) de FASTA3 [Science, 227, 1435-1441
(1985); Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 85, 2444-2448
(1998);
http://www.dd-bj.nig.ac.jp/E-mail/homology-j.html].
\newpage
\global\parskip0.860000\baselineskip
El agente tensioactivo no iónico incluido en la
preparación de celulasa de la presente invención se refiere a un
agente tensioactivo cuyo grupo hidrofílico es un grupo no iónico.
Ejemplos de tales agentes tensioactivos no iónicos incluyen alquil
éteres de polioxietileno, alquilfenil éteres de polioxietileno,
polioxietilen ésteres de ácidos monograsos,
sorbitan-polioxietilen ésteres de ácidos monograsos,
sorbitano ésteres de ácidos monograsos, polietilenglicol, glicerol
ésteres de ácidos monograsos, pliglicerol ésteres de ácidos grasos,
alquilglicósidos, ésteres de alquilglicósidos polietoxilados, óxido
de alquil dimetil amina, dietanolamidas de ácidos grasos,
polioxietilen alquilamina, polímero de tetraetilenglicol con ácido
tereftálico, alquil polietilenglicol éter, nonilfenol
polietilenglicol éter y ésteres de ácidos grasos de sacarosa o
glucosa. Estos agentes tensioactivos no iónicos se pueden utilizar
solos o en combinación con otros agentes tensioactivos no
iónicos.
Además, la preparación de celulasa de la
presente invención puede comprender otros componentes contenidos
convencionalmente en preparaciones de celulasa, tales como
excipientes y conservantes. La forma de la preparación de celulasa
puede ser sólida o líquida y ejemplos específicos de la forma
incluyen polvo, particulado, gránulo, gránulo no pulverulento y
formulación líquida.
Un gránulo no pulverulento, que es una forma de
preparación de la celulasa, se puede producir de acuerdo con el
método habitual de granulación en seco. Es decir, la enzima celulasa
en polvo se mezcla con uno o varios tipos seleccionados de entre un
grupo que comprende sales inorgánicas tales como sulfato sódico y
cloruro sódico, que son neutras y no tienen ningún efecto sobre la
actividad endoglucanasa; minerales tales como bentonita y
montmorillonita, que no tienen ningún efecto sobre la actividad
endoglucanasa; y materias orgánicas neutras tales como almidón y
celulosa en polvo. A continuación, los polvos o la suspensión
finamente suspendida de uno o varios tipos de los agentes
tensioactivos no iónicos descritos anteriormente, que mejoran los
efectos de la endoglucanasa, se añaden a la mezcla y el producto
así obtenido se mezcla o amasa por completo. Dependiendo de la
situación, opcionalmente se añade a la mezcla un polímero sintético,
tal como polietilenglicol, y un polímero natural, como almidón, que
se une a los sólidos y después se amasa. A continuación, se lleva a
cabo la granulación por moldeo por extrusión, utilizando por
ejemplo un granulador de disco, y el material moldeado obtenido se
convierte entonces en una forma esférica mediante un marumerizador,
seguido de secado, de modo tal que se puedan producir gránulos no
pulverulentos. Naturalmente, también es posible recubrir la
superficie de los gránulos con un polímero o similar para controlar
la permeabilidad del oxígeno o del agua. En este caso, se añaden a
la preparación de celulasa anterior uno o más agentes tensioactivos
no iónicos que mejoran el efecto de la endoglucanasa, en una
relación de entre el 0,1 al 50% en peso, preferentemente del 0,1 al
30% en peso y en especial del 1 al 20% en peso.
Por otra parte, la preparación líquida se puede
obtener mediante mezcla de un estabilizador de endoglucanasa, tal
como un polímero sintético y natural, con una solución de celulasa y
adición de sales inorgánicas o de un conservante sintético, según
sea necesario. En este caso, se pueden añadir también uno o más
agentes tensioactivos no iónicos que mejoran el efecto de la
endoglucanasa. Como en el caso del gránulo no pulverulento, a la
preparación de celulasa anterior se añade uno o más agentes
tensioactivos no iónicos que mejoran el efecto de la endoglucanasa,
en una relación de entre el 0,01 al 50% en peso, preferentemente del
0,1 al 30% en peso y en especial del 1 al 20% en peso.
La preparación de celulasa de la presente
invención descrita anteriormente se mezcla con componentes
detergentes conocidos, tales como adyuvantes, blanqueadores,
activadores de blanqueo, inhibidores de la corrosión, agentes
secuestrantes, polímeros disociadores de tintes, agentes aromáticos,
otras enzimas, estabilizadores enzimáticos, asistentes de
formulación, agentes fluorescentes blanqueadores y activadores de
agentes espumantes, de modo que se pueda producir una composición
detergente.
La presente composición detergente se refiere a
eliminadores de suciedad granulares, clarificación del color,
eliminación de pelusas, eliminación de bolitas y reducción de la
rigidez, y éstos pueden mejorarse por la composición de la presente
invención.
El procedimiento para tratar tejidos de la
presente invención comprende el tratamiento de tejidos que contienen
celulosa con la preparación de celulasa anterior.
Las siguientes propiedades de tejidos que
contienen celulosa se pueden mejorar por medio del presente método
de tratamiento de tejidos:
- 1)
- Eliminación de pelusas (reducción de la velocidad de formación de pelusas y reducción de las pelusas);
- 2)
- Clarificación del color en tejidos coloreados que contienen celulosa;
- 3)
- Provisión de una variación localizada del color en tejidos coloreados que contienen celulosa, es decir proporciona un aspecto y textura de tipo lavado a la piedra a tejidos coloreados que contienen celulosa, típicamente vaqueros;
- 4)
- Mejora del tacto y del aspecto del tejido mediante la reducción del peso, y
- 5)
- Suaviza los tejidos (reducción de la rigidez).
\newpage
\global\parskip1.000000\baselineskip
El método para tratar tejidos mencionado
anteriormente se puede llevar a cabo típicamente durante el lavado,
pero también se puede realizar durante el remojo o enjuague.
Específicamente, el método para tratar tejidos de la presente
invención se puede llevar a cabo mediante la adición de la
preparación de celulasa de la presente invención al agua en la que
se remoja o remojará el tejido.
Condiciones tales como la temperatura de
contacto y la cantidad de endoglucanasa se pueden determinar
adecuadamente teniendo en cuenta varias otras condiciones. Por
ejemplo, en el caso de reducir la velocidad de formación de pelusas
o reducir la pelusa del tejido que contiene celulosa, se puede
tratar el tejido a una temperatura de aproximadamente 30ºC a 60ºC
utilizando de 10 a 10.000 mg/l de agentes tensioactivos no iónicos y
endoglucanasas en una concentración proteica de 0,05 a 20 mg/l.
En caso de proporcionar al tejido coloreado que
contiene celulosa variaciones de color localizadas, se puede tratar
el tejido a una temperatura de aproximadamente 30ºC a 60ºC
utilizando de 10 a 10.000 mg/l de agentes tensioactivos no iónicos
y endoglucanasas en una concentración proteica de 0,1 a 30 mg/l.
En un procesamiento de reducción del peso, cuyo
objetivo es mejorar el tacto y aspecto del tejido que contiene
celulosa, se puede tratar el tejido a una temperatura de
aproximadamente 30ºC a 60ºC utilizando de 10 a 10.000 mg/l de
agentes tensioactivos no iónicos y endoglucanasas en una
concentración proteica de 0,2 a 50 mg/l.
En cualquiera de los casos anteriores, el agente
tensioactivo no iónico se puede disolver o suspender en agua.
La concentración proteica de cada tipo de
endoglucanasa se mide por análisis HPLC utilizando gel TSK, columna
TMS-250 (4,6 mm D.I. x 75 cm) (TOSOH Corporation).
El análisis HPCL implica cargar acetonitrilo en TFA al 0,05% (ácido
trifluoroacético) con un gradiente de concentración lineal del 0% al
80% a un caudal de 1,0 ml/min para eluir cada tipo de endoglucanasa
y calcular la concentración proteica a partir del área del pico a
280 nm en UV. Se somete un NCE4 purificado, cuya concentración
proteica se determina previamente por medio de un Kit de Ensayo de
Proteínas (BioRad Laboratories), a análisis HPLC de la misma forma
que anteriormente, de modo tal que se utiliza como estándar. De
acuerdo con el método descrito en la Publicación Internacional Nº
WO 98/03640, el NCE4 purificado se obtiene mediante el cultivo de
Humicola insolens [Humicola insolens
MN200-1, depositada bajo el nº de acceso FERM
BP-5977 (nº de acceso original
FERM-15736, fecha de acceso original: 15 de julio
de 1996) con el Instituto Nacional de Ciencia y Tecnología
Industrial Avanzada, Institución Administrativa Independiente del
Ministerio de Economía, Comercio e Industria, en AIST Tsukuba
Central 6, Higashi 1-1-1, Tsukuba,
Ibaraki, Japón (código postal 305-8566), antiguo
nombre: Instituto Nacional de Biociencia y Tecnología Humana,
Agencia de Ciencia y Tecnología Industrial], y purificando el
cultivo obtenido. Como estándar para la determinación de una
concentración proteica en el Kit de Ensayo de Proteínas se utiliza
el Estándar de Albúmina (seroalbúmina bovina, fracción V,
PIERCE).
Esta especificación incluye el contenido tal
como se describe en la especificación de la Solicitud de Patente
Japonesa Nº 2000-343921, que es un documento de
prioridad de la presente solicitud.
La presente invención se describe además en los
siguientes ejemplos. Sin embargo, se proporcionan estos ejemplos
solamente a modo ilustrativo y no pretenden limitar el alcance de la
invención.
En lo que sigue, el término "actividad
endoglucanasa" significa actividad CMCasa. Además, con respecto a
la "actividad CMCasa", cuando una solución que comprende la
enzima celulasa y carboximetilcelulosa (CMC, Tokyo Kasei Kogyo Co.,
Ltd.) se incuba durante cierto período de tiempo y se mide la
cantidad de azúcar reductor liberada, la cantidad de enzima que
produce el azúcar reductor correspondiente a 1 \mumol de glucosa
por minuto se define como 1 unidad.
Ejemplo
1
Se llevaron a cabo el cultivo de Rhizopus
oryzae, Mucor circinelloides y Phycomyces nitens, así
como la purificación de las endoglucanasas RCE I, MCE I y PCE I a
partir de los cultivos por medio del método descrito en la
Publicación Internacional Nº WO 00/24879.
El cultivo de Humicola insolens
[Humicola insolens MN200-1 que se depositó
bajo el nº de acceso FERM BP-5977 (nº de acceso
original FERM P-15736, fecha de acceso original: 15
de julio de 1996) con el Instituto Nacional de Ciencia y Tecnología
Industrial Avanzada, Institución Administrativa Independiente del
Ministerio de Economía, Comercio e Industria, antiguo nombre:
Instituto Nacional de Biociencia y Tecnología Humana, Agencia de
Ciencia y Tecnología Industrial], así como la purificación de la
endogluconasa NCE4 a partir del cultivo se llevaron a cabo por
medio del método descrito en la Publicación Internacional WO
98/03640.
El cultivo de Trichoderma viride
[Trichoderma viride MC300-1 que se depositó
bajo el nº de acceso FERM BP-6047 (nº de acceso
original FERM P-15842, fecha de acceso original: 9
de septiembre de 1996) con el Instituto Nacional de Ciencia y
Tecnología Industrial Avanzada, Institución Administrativa
Independiente del Ministerio de Economía, Comercio e Industria,
AIST Tsukuba Central 6, Higashi
1-1-1, Tsukuba, Ibaraki, Japón
(código postal 305-8566), antiguo nombre: Instituto
Nacional de Biociencia y Tecnología Humana, Agencia de Ciencia y
Tecnología Industrial], se llevó a cabo por medio del método
descrito en la Publicación Internacional WO 98/54332.
El tratamiento de eliminación de pelusas de un
tejido de punto de algodón con pelusas formadas en una gran
lavadora (tejido de 6 cm x 8 cm de Cotton Smooth Knit No. 3900,
Nitto Boseki Co., Ltd., se tiñó de color marrón mediante un tinte
reactivo en Tsuyatomo-Senko) se llevó a cabo
utilizando el sobrenadante del cultivo obtenido y varias
endoglucanasas uniformemente purificadas en las siguientes
condiciones.
Máquina de ensayo: Lavadora Meter
L-20 (Daiei Kagaku Seiki MFG., Japón).
Temperatura: 40ºC
Tiempo: 120 minutos
Cantidad de solución de reacción: 40 ml
pH de reacción: se ajustó solamente el
sobrenadante del cultivo de Trichoderma viride a un pH de 4
(20 mM tampón de acetato), todas las demás soluciones enzimáticas
se ajustaron a un pH de 6 (5 mM tampón de fosfato) para la
reacción. Todos los tampones se prepararon con agua desionizada.
Tipo y cantidad de agente tensioactivo no
iónico: 100 \mug/ml de polioxietilen lauril éter (NOF Corporation,
nombre del producto: NissanNonion K-220, número de
unidades de oxietileno añadidas: 20, HLB: 16,2).
A la solución de tratamiento se añadieron cuatro
bolas de goma de aproximadamente 16 g junto con la solución
enzimática.
La cantidad de solución enzimática necesaria
para eliminar aproximadamente el 50% de las pelusas formadas en
base a la evaluación visual se determinó en cada uno de ambos casos,
con adición y no adición de agente tensioactivo no iónico. A
continuación, se obtuvo un valor dividiendo la cantidad de solución
enzimática necesaria para eliminar aproximadamente un 50% de pelusa
en el caso de no adición de agente tensioactivo no iónico entre la
cantidad en el caso de adición de agente tensioactivo no iónico, y
el valor obtenido se definió como coeficiente de mejora de la
actividad eliminadora de pelusa por la adición de agente
tensioactivo no iónico. Se muestran los resultados en la Tabla
1.
A partir de los resultados de la Tabla 1 se
deduce que la actividad eliminadora de pelusa de RCE I, MCE I y PCE
I, que son endoglucanasas procedentes de Zigomicetos, mejora
mediante la adición del agente tensioactivo no iónico a un nivel
mucho más alto que otras enzimas, incluida la celulasa procedente de
Humicola insolens o Trichoderma viride, que
representan los descubrimientos anteriores.
\newpage
\global\parskip0.960000\baselineskip
Ejemplo
2
La endoglucanasa RCE I se expresó en Humicola
insolens de acuerdo con el método descrito en los Ejemplos D3 y
4 de la Publicación Internacional WO 00/24879. El tratamiento de
eliminación de pelusa de un tejido de punto de algodón con pelusa
formada en una lavadora grande (un tejido de 6 cm x 8 cm de Cotton
Smooth Knit No. 3900, Nitto Boseki Co., Ltd., se tiñó de color
marrón mediante un tinte reactivo en
Tsuyatomo-Senko) se llevó a cabo utilizando el
sobrenadante de cultivo obtenido en las siguientes condiciones.
Máquina de ensato: Lavadora Meter
L-20 (Daiei Kagaku Seiki MFG., Japón).
Temperatura: 40ºC
Tiempo: 120 minutos
Cantidad de solución de reacción: 40 ml
pH de reacción: pH de 6 (5 mM tampón fosfato
preparado con agua desionizada). Cantidad de agentes tensioactivos
no iónicos: 100 \mug/ml.
Tipo de agentes tensioactivos no iónicos:
remitirse a la Tabla 2 tal como se describe a continuación.
A la solución de tratamiento se añadieron cuatro
bolas de goma de aproximadamente 16 g de junto con la solución
enzimática.
\newpage
\global\parskip1.000000\baselineskip
La cantidad de solución enzimática necesaria
para eliminar aproximadamente el 50% de la pelusa formada en base a
la evaluación visual se determinó en cada uno de ambos casos de
adición y no adición de cada agente tensioactivo no iónico. A
continuación, se obtuvo un valor dividiendo la cantidad de solución
enzimática necesaria para eliminar aproximadamente un 50% de la
pelusa en caso de no añadir el agente tensioactivo no iónico entre
la cantidad en caso de añadir el agente tensioactivo no iónico, y el
valor obtenido se definió como coeficiente de mejora de la
actividad eliminadora de pelusa mediante la adición del agente
tensioactivo no iónico. Se muestran los resultados en la
Tabla 3.
Tabla 3.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
A partir de los resultados de la Tabla 3 se
deduce que la actividad eliminadora de pelusa del sobrenadante del
cultivo obtenido mediante la expresión y secreción de RCE I en
Humicola insolens se mejoró mediante cualquiera de los
agentes tensioactivos no iónicos anteriores.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
3
La endoglucanasa RCE I se expresó en Humicola
insolens de acuerdo con el método descrito en los Ejemplos D3 y
4 de la Publicación Internacional WO 00/24879. El tratamiento de
eliminación de pelusa de un tejido de punto de algodón con pelusa
formada en una lavadora grande (un tejido de 6 cm x 8 cm de Cotton
Smooth Knit No. 3900, Nitto Boseki Co., Ltd., se tiñó de color
marrón mediante un tinte reactivo en
Tsuyatomo-Senko) se llevó a cabo utilizando el
sobrenadante de cultivo obtenido en las siguientes condiciones.
\vskip1.000000\baselineskip
Máquina de prueba: Lavcadora Meter
L-20 (Daiei Kagaku Seiki MFG., Japón).
Temperatura: 40ºC
Tiempo: 120 minutos
Cantidad de solución de reacción: 40 ml
pH de reacción: pH de 6 (5 mM tampón fosfato
preparado con agua desionizada).
Cantidad de agente tensioactivo no iónico: 10 a
10.000 \mug/ml.
Tipo de agente tensioactivo no iónico:
polioxietilen lauril éter (NOF Corporation, nombre del producto:
NissanNonion K-220, número de unidades de
oxietileno añadidas: 20, HLB: 16,2).
A la solución de tratamiento se añadieron cuatro
bolas de goma de aproximadamente 16 g de junto con la solución
enzimática.
La cantidad de solución enzimática necesaria
para eliminar aproximadamente el 50% de la pelusa formada en base a
la evaluación visual se determinó en el caso de adición del agente
tensioactivo no iónico en cada concentración. A continuación, se
obtuvo un valor dividiendo la cantidad de solución enzimática
necesaria para eliminar aproximadamente un 50% de la pelusa en el
caso de no añadir el agente tensioactivo no iónico entre la cantidad
en el caso de añadir el agente tensioactivo no iónico en cada
concentración, y el valor obtenido se definió como coeficiente de
mejora de la actividad eliminadora de pelusa mediante la adición del
agente tensioactivo no iónico en cada concentración. Se muestran
los resultados en la Tabla 4.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
A partir de los resultados de la Tabla 4 se
deduce que la actividad eliminadora de pelusa del sobrenadante de
cultivo obtenido mediante la expresión y secreción de RCE I en
Humicola insolens mejoró por la adición del agente
tensioactivo no iónico en un amplio rango de concentración de 10 a
10.000 \mug/ml.
\newpage
Ejemplo
4
Tras mezclar las siguientes materias primas, se
añadió a dicha mezcla la cantidad adecuada de agua y se amasó la
mezcla. El producto obtenido se sometió a un granulador de disco
para moldeo y el producto obtenido mediante moldeo por inyección se
convirtió en una forma particulada utilizando un marumerizador (Fuji
Paudal Co., Ltd.), seguidamente se secó y cribó el producto con el
fin de obtener un producto granulado.
El producto de celulasa RCE I en polvo se
preparó mediante concentración del sobrenadante de cultivo de RCE I
expresado en Humicola insolens utilizando ultrafiltración de
acuerdo con el método descrito en los Ejemplos D3 y 4 de la
Publicación Internacional WO 00/24879, seguido de secado por
aspersión.
La presente invención proporciona una
preparación de celulasa que posee una actividad endoglucanasa
procedente de Zigomicetos drásticamente mejorada mediante la
adición de un agente tensioactivo no iónico en la preparación.
Cuando la presente preparación de celulasa se utiliza en el
tratamiento de tejidos, tal como para reducir las pelusas del
tejido que contiene celulosa, la mejora del tacto y del aspecto, la
clarificación del color, la variación localizada de los colores, la
suavización, cada uno de los tratamientos mencionados anteriormente
se puede llevar a cabo con una cantidad menor de enzima, reduciendo
así notablemente el coste.
\global\parskip0.000000\baselineskip
<110> MEIJI SEIKA KAISHA, LTD.
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Preparaciones de celulasa que
contienen detergente no iónico y método para tratar tejidos
\vskip0.400000\baselineskip
<130>
PH-1442-PCT
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> JP 2000-343921
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
10-11-2000
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn Ver. 2.0
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 328
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Rhizopus oryzae CP96001
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> sig_péptido
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (-23)... (-1)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido maduro
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)... (315)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip0,8cm
\hskip0,8cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 366
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Rhizopus oryzae CP96001
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> sig_péptido
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (-23)... (-1)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido maduro
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)... (343)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip0,8cm
\hskip0,8cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 360
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Rhizopus oryzae CP96001
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> sig_péptido
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (-23)... (-1)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido maduro
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)... (337)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip0,8cm
\hskip0,8cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 338
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mucor circinelloides
CP99001
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> sig_péptido
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (-22)... (-1)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido maduro
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)... (316)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip0,8cm
\hskip0,8cm
\hskip0,5cm
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 387
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mucor circinelloides
CP99001
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> sig_péptido
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (-22)... (-1)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido maduro
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)... (365)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip0,8cm
\hskip0,8cm
\hskip0,8cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 346
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Phycomyces nitens CP99002
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> sig_péptido
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (-19)... (-1)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> péptido maduro
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)... (327)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip0,8cm
\hskip0,8cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1257
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humicola insolens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> intrón
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (453)... (509)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip0,8cm
\hskip0,6cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1720
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Trichoderma viride
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> intrón
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (500)... (682)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip0,8cm
Claims (16)
1. Preparación de celulasa que comprende uno o
más agentes tensioactivos no iónicos junto con la(s)
proteína(s) (a) y/o (b) tal como se describe a
continuación:
- a)
- una proteína que comprende una secuencia de aminoácidos tal como se muestra en cualquiera de las SEQ ID NOS: 1 a 6, y
- b)
- una proteína que comprende una secuencia de aminoácidos que tiene un 80% o más de homología con la secuencia de aminoácidos tal como se muestran en cualquiera de las SEQ ID NOS: 1 a 6, y que tiene actividad endoglucanasa,
caracterizada porque el o los agentes
tensioactivos no iónicos son los únicos agentes tensioactivos
presentes.
\vskip1.000000\baselineskip
2. Preparación de celulasa que comprende uno o
más agentes tensioactivos no iónicos junto con proteína(s)
codificada(s) por un gen que comprende el ADN (a) o (b) tal
como se describe a continuación:
- a)
- un ADN que codifica una secuencia de aminoácidos tal como se muestra en cualquiera de las SEQ ID NOS: 1 a 6, y
- b)
- un ADN complementario de un ADN que se hibridiza con un ADN que codifica una proteína que comprende una secuencia de aminoácidos tal como se muestra en cualquiera de las SEQ ID NOS: 1 a 6 en condiciones rigurosas, donde se lleva a cabo una prehibridación a 42ºC durante 1 hora de acuerdo con el método del sistema ECL directo de detección y etiquetado de ADN/ARN (Amersham), seguido de hibridación a 42ºC durante 15 horas y, a continuación, el producto resultante se lava dos veces con una solución que contiene un 0,4% de SDS, urea 6M y 0,5 x SSC (SSC; 15 mM citrato trisódico, 150 mM cloruro sódico) a 42ºC durante 20 minutos y finalmente se prosigue con el lavado del producto dos veces con 5 x SSC a temperatura ambiente durante 10 minutos, y que codifica una proteína que tiene actividad endoglucanasa.
caracterizada porque el o los agentes
tensioactivos no iónicos son los únicos agentes tensioactivos
presentes.
\vskip1.000000\baselineskip
3. Preparación de celulasa según la
reivindicación 1 que consiste en no o más agentes tensioactivos no
iónicos junto con la(s) proteína(s) (a) y/o (b) tal
como se describe a continuación:
- a)
- una proteína que comprende una secuencia de aminoácidos tal como se muestra en cualquiera de las SEQ ID NOS: 1 a 6, y
- b)
- una proteína que comprende una secuencia de aminoácidos que tiene un 80% o más de homología con la secuencia de aminoácidos tal como se muestra en cualquiera de las SEQ ID NOS: 1 a 6, y que posee actividad endogluconasa,
y opcionalmente excipiente(s) y/o
conservante(s).
\vskip1.000000\baselineskip
4. Preparación de celulasa según la
reivindicación 2 que consiste en agente(s)
tensioactivo(s) no iónico(s) junto con
proteína(s) codificadas por un gen que comprende el ADN (a) o
(b) tal como se describe a continuación:
- a)
- un ADN que codifica una secuencia de aminoácidos tal como se muestra en cualquiera de las SEQ ID NOS: 1 a 6, y
- b)
- un ADN complementario de un ADN que se hibridiza con un ADN que codifica una proteína que comprende una secuencia de aminoácidos tal como se muestra en cualquiera de las SEQ ID NOS: 1 a 6 en condiciones rigurosas, donde se lleva a cabo una prehibridación a 42ºC durante 1 hora de acuerdo con el método del sistema ECL directo de detección y etiquetado de ADN/ARN (Amersham), seguido de la hibridación a 42ºC durante 15 horas y, a continuación, el producto resultante se lava dos veces con una solución que contiene un 0,4% de SDS, urea 6M y 0,5 x SSC (SSC; 15 mM citrato trisódico, 150 mM cloruro sódico) a 42ºC durante 20 minutos y finalmente se prosigue con el lavado del producto dos veces con 5 x SSC a temperatura ambiente durante 10 minutos, y que codifica una proteína que tiene actividad endoglucanasa,
y opcionalmente excipiente(s) y/o
conservante(s).
\newpage
5. Preparación de celulasa según cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 4, caracterizada porque el agente
tensioactivo noiónico es alquil éter de polioxietileno, alquilfenil
éter de polioxietileno, polioxietilen éster de ácido monograso,
polioxietilensorbitan éster de ácido monograso, sorbitan éster de
ácido monograso, polietilenglicol, glicerol éster de ácido
monograso, poligicerol éster de ácido graso, alquilglicósido,
alquilglicósido ésteres polietoxilados, óxido de alquil dimetil
amina, dietanolamidas de ácidos grasos, polioxietilen alquilamina,
polímero de tetraetilenglicol con ácido tereftálico, alquil
polietilenglicol éter, nonilfenol polietilenglicol éter o éster de
ácidos grasos de sacarosa o glucosa.
6. Preparación de celulasa según cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 5 que comprende del 0,1 al 50% en peso de
agente(s) tensioactivo(s) no iónico(s).
7. Preparación de celulasa según cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 6, que es un gránulo no pulverulento o un
líquido estabilizado.
8. Composición detergente que comprende la
preparación de celulasa según cualquiera de las reivindicaciones 1
a 7 con componentes detergentes.
9. Procedimiento para tratar tejidos que
comprende el tratamiento de tejidos que contienen celulosa con la
preparación de celulasa o con la composición detergente según
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 8 para mejorar las
propiedades de los tejidos.
10. Procedimiento según la reivindicación 9,
caracterizado porque la mejora de las propiedades del tejido
es la clarificación del color.
11. Procedimiento según la reivindicación 9,
caracterizado porque la mejora de las propiedades del tejido
es la eliminación de pelusas.
12. Procedimiento según la reivindicación 9,
caracterizado porque la mejora de las propiedades del tejido
consiste en proporcionar un aspecto y una textura del tipo lavado a
la piedra.
13. Procedimiento según la reivindicación 9,
caracterizado porque la mejora de las propiedades del tejido
es la mejora del tacto y del aspecto.
14. Procedimiento según la reivindicación 9,
caracterizado porque la mejora de las propiedades del tejido
es la suavización del tejido.
15. Procedimiento según la reivindicación 9,
caracterizado porque el(los) agente(s)
tensioactivo(s) no iónico(s) está(n) presentes en una
concentración de 10 a 10.000 mg/l en un sistema de reacción.
16. Procedimiento según la reivindicación 9,
caracterizado porque se lleva a cabo por medio de una etapa
de remojo, lavado o enjuague del tejido.
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