ES2334977T3 - Composiciones de proteinas de la matriz para la regeneracion de dentina. - Google Patents
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Abstract
Uso de una preparación de una sustancia de esmalte activa para la preparación de una composición farmacéutica para la formación o regeneración de dentina después de procedimientos dentales que implican exposición de tejido de pulpa dental vital.
Description
Composiciones de proteínas de la matriz para la
regeneración de dentina.
La presente invención se refiere al uso de
matriz del esmalte, derivados de la matriz del esmalte y/o proteínas
de la matriz del esmalte para la regeneración de la dentina.
Las proteínas de la matriz del esmalte, tales
como las presentes en la matriz del esmalte, son muy conocidas como
precursores del esmalte dental. Las proteínas de la matriz del
esmalte y los derivados de la matriz del esmalte han sido
previamente descritos en la bibliografía para inducir la formación
de esmalte (documento US 4.672.032, Slavkin) o ligazón entre
diferentes tipos de tejido mineralizado tal como cemento y hueso
(documentos EP-B-0 337 967 y
EP-B-0 263 086). Además, las
proteínas y derivados de la matriz del esmalte han sido descritos
para fomentar la curación de heridas en tejidos blandos como piel y
mucosa (documento WO 99/43344). El uso de proteínas de la matriz
del esmalte o derivados de la matriz del esmalte para la
regeneración de la dentina no ha sido, hasta donde llega el
conocimiento de los inventores, comunicado previamente.
La exposición de la pulpa dental vital es una
complicación común, ya sea accidentalmente o por diseño, durante
los procedimientos restauradores y prostodóncicos dentales normales
y también después de las fracturas de la corona, trauma y caries.
Tradicionalmente, las exposiciones mínimas de la pulpa dental se
tratan ya sea aplicando una pasta de Ca(OH)_{2} o
un material de relleno (por ejemplo, materiales compuestos)
directamente sobre la pulpa para inducir la necrosis superficial a
veces seguida por la esclerotización y formación de dentina
reactiva profundamente en el tejido de la pulpa. Esta estrategia, no
obstante, rara vez restaura una barrera mineralizada entre la pulpa
y el (los) material(es) restaurador(es) y, en casos
frecuentes, la pulpa dental queda inflamada y tiene que ser tratada
mediante pulpectomía (eliminación de toda la pulpa) o pulpotomía
(eliminación de una gran porción de la pulpa) y posterior rellenado
endodóncico con materiales sintéticos (por ejemplo, gutapercha). En
los casos donde una gran parte de la pulpa está expuesta, el
tratamiento siempre incluye una pulpectomía y rellenado
endodóncico.
Los dientes tratados con endodoncia pierden su
aporte de sangre, innervación y capacidad para producir tejido duro
reactivo (dentina secundaria). Como resultado, estos dientes se
vuelven quebradizos y también son más propensos a trauma inducido
por la masticación y caries graves (debido a la falta de
sensibilidad, los pacientes no sienten dolor). Esto hace la vida de
los dientes tratados con endodoncia mucho más corta que la de
dientes vitales y, por lo tanto, menos útiles como pilares para
sustituciones del diente prostodóncicas.
Si se pudiera encontrar una vía para inducir la
formación de nueva dentina que pueda cubrir y sellar eficazmente la
pulpa dental expuesta, constituiría un progreso mayor en la
odontología conservadora.
La presente invención se basa en el sorprendente
hallazgo de que la matriz del esmalte, los derivados de la matriz
del esmalte o las proteínas de la matriz del esmalte (denominados
colectivamente "sustancia de esmalte activa" en lo sucesivo)
son capaces de inducir la formación de dentina en células de pulpa
dental.
Por consiguiente, la invención se refiere al uso
de una preparación de una sustancia de esmalte activa para la
preparación de una composición farmacéutica para la formación o
regeneración de dentina después de procedimientos dentales que
implican la exposición de tejido de pulpa dental vital.
En otro aspecto, la invención se refiere a un
método para fomentar la formación o regeneración de dentina después
de procedimientos dentales que implican la exposición de tejido de
pulpa dental vital, comprendiendo el método aplicar una cantidad
efectiva de una sustancia de esmalte activa sobre el tejido de pulpa
dental vital expuesto después de procedimientos dentales.
La observación de que las proteínas de la matriz
del esmalte son capaces de inducir la formación de dentina en el
tejido de pulpa vital se hizo primero en experimentos con dientes en
desarrollo donde células de pulpa fueron expuestas accidentalmente
a matriz del esmalte durante un procedimiento quirúrgico para
eliminar el órgano del esmalte de dientes en desarrollo en ratas.
Los hallazgos han sido confirmados más tarde por experimentos
repetidos tanto en ratas como en cerdos. Además, los inventores han
desarrollado un modelo de trauma dental en cerdos adultos que
confirma que el uso de una composición de proteína de la matriz del
esmalte es altamente eficiente para inducir la formación de tejido
duro en la pulpa dental expuesta. Que las proteínas del esmalte
fomentan la formación de dentina en tejido de pulpa desarrollado es
sorprendente puesto que estas proteínas están sólo presentes
naturalmente en dientes en desarrollo y nunca presentes en otros
tejidos o en tejidos dentales maduros (es decir, en adultos o
chicos de más de alrededor de 12 años de edad).
\newpage
Sin desear estar limitados a ninguna teoría
particular, se asume que debido a que la acción de estas moléculas
durante la formación del diente está asociada con el comienzo de la
mineralización tanto de la dentina como del esmalte, estas
proteínas es probable que sean parte de un mecanismo para la
formación de tejido dental duro. Basado en los presentes hallazgos,
parecería que aunque las proteínas de la matriz del esmalte estén
completamente eliminadas de del tejido dental tras el desarrollo del
diente, las células en la pulpa dental del adulto mantienen su
capacidad para responder a estas proteínas induciendo procedimientos
de desarrollo durmientes para la formación de dentina.
Parecería que el mecanismo por el cual las
proteínas de la matriz del esmalte inducen la formación de dentina
difiere significativamente del mecanismo que induce la formación de
cemento comunicada por L. Hammarström, J. Clin. Periodontol.
24, 1997, pp. 658-668, donde la aplicación de
proteínas de la matriz del esmalte a cavidades experimentales
taladradas en superficies de la raíz expuestas dio como resultado la
formación de cemento cuando los dientes experimentales fueron
replantados en contacto con ligamento periodontal. En el caso
comunicado por Hammarström, la formación de cemento se produjo
directamente sobre la superficie de tejido duro ya formado. Según
la presente invención, por otra parte, se forma dentina ectópica, es
decir, las proteínas de la matriz del esmalte son capaces de
estimular la formación de dentina en sitios donde no se encuentran
tejidos duros preexistentes.
La formación característica de nueva dentina
inducida en heridas en la pulpa por DME, como se muestra en la
presente invención, muestra que el DME mantiene el potencial para
ser usado también para el tapado directo de la pulpa en dientes
tanto traumatizados como cariados. Ya en el mercado y aprobado para
aplicaciones clínicas, el DME podría usarse rápidamente para
expandir las indicaciones clínicas para procedimientos exitosos de
tapado directo de la pulpa.
Los dientes están compuestos de tres tejidos
duros (mineralizados), a saber: esmalte, dentina y cemento, y
centralmente se sitúa el tejido blando, llamado pulpa dental. La
pulpa dental está compuesta principalmente de fibroblastos y
contiene vasos sanguíneos y nervios. La pulpa dental de un diente
completamente formado (diente maduro) está envuelta por dentina en
todas las caras excepto por un pequeño orificio en el extremo
apical de la raíz. La dentina es el principal tejido dental y está
formada por células específicas denominadas odontoblastos. Se han
distinguido diferentes tipos de dentina. La mayor parte de la
dentina se forma durante el desarrollo del diente y se denomina
dentina primaria. Después del periodo de desarrollo del diente,
continúa cierta formación de dentina pero a una velocidad
marcadamente más lenta. La dentina formada después del desarrollo
del diente se denomina dentina secundaria. Ciertos eventos, tales
como la aparición de caries dental, preparación de cavidad y trauma
pueden inducir una forma acelerada de dentina denominada reactiva,
reparadora o dentina terciaria.
Morfológicamente, la dentina primaria y
secundaria es un tejido dental no celular mineralizado que contiene
estrechos canales llamados túbulos dentinarios que se extienden
desde la pulpa hacia la periferia. Junto a la pulpa, hay una
delgada capa no mineralizada denominada predentina. La dentina
reparadora puede tener ocasionalmente una morfología más irregular
con distribución más irregular de los túbulos dentinarios.
Ocasionalmente, la dentina puede contener células encerradas en
cuyo caso se denomina osteodentina. Para una discusión adicional de
la morfología dental, se hace referencia a la obra de A. R. Ten
Cate, Oral Histology. Development, Structure and Function,
5ª ed. Mosby 1998, pp. 150-196.
Como se indica anteriormente, se ha encontrado
sorprendentemente que la sustancia de esmalte activa es capaz de
fomentar la formación de dentina reactiva en el tejido de pulpa
dental incluso en dientes maduros (es decir, dientes de adultos o
chicos de más de alrededor de 12 años de edad), que no estén
naturalmente expuestos a matriz del esmalte o proteínas presentes
en ella. En una realización particular, la invención se refiere por
lo tanto al uso de una sustancia de esmalte activa para la
regeneración de dentina secundaria en tejido de pulpa dental vital.
La regeneración de dentina secundaria es particularmente ventajosa
porque la dentina secundaria tiene una estructura que es se parece
fielmente a la de la dentina primaria, y la aplicación de sustancia
de esmalte activa por lo tanto participa en la restauración de la
pulpa dental con una organización estructural que le da propiedades
similares a la pulpa dental formada originalmente en el diente.
Por otra parte, no obstante, la sustancia de
esmalte activa también es útil en la formación de dentina reparadora
u osteodentina en el tejido de pulpa dental vital, asegurando por
ello un rápido proceso reparador en la pulpa dental, aunque esto
tiene como resultado la formación de dentina de una calidad algo
peor que la dentina primaria o secundaria puesto que la composición
y estructura no se parecen a la de la dentina primaria. El proceso
reparador se produce principalmente tras un trauma dental importante
que implica exposición de pulpa dental, o tras procedimientos
dentales importantes tales como pulpotomía o pulpectomía.
Como se indica anteriormente, el uso de la
sustancia de esmalte activa es particularmente útil para fomentar
la formación o regeneración de dentina en tejido de pulpa dental
vital en dientes salidos en los que las proteínas de la matriz del
esmalte no están presentes naturalmente en cantidades suficientes
para dar un efecto curativo después de procedimientos dentales.
Éste es el caso tanto para adultos como chicos cuyos dientes
permanentes se han desarrollado.
La capacidad de la sustancia de esmalte activa
para fomentar o inducir la formación de dentina también se puede
explotar junto con la preparación de la cavidad, especialmente
cavidades profundas donde es deseable aumentar el grosor de la
pared de dentina para evitar o reducir el riesgo de exposición de la
pulpa, para evitar o reducir la exposición de la pulpa a sustancias
tóxicas o irritantes, o para reducir o eliminar la
hipersensibilidad que aparece a menudo tras el tratamiento
dental.
Según el presente uso, la preparación de
sustancia de esmalte activa se aplica preferiblemente sobre la pulpa
dental antes de la aplicación de un material de relleno después de
procedimientos dentales que implican la exposición de tejido de
pulpa dental vital. Composiciones farmacéuticas apropiadas para tal
aplicación se discuten a continuación con más detalle.
La matriz del esmalte es un precursor para el
esmalte y se puede obtener de cualquier fuente natural relevante,
es decir, un mamífero en el que los dientes están bajo desarrollo.
Una fuente apropiada son los dientes en desarrollo de animales
sacrificados tales como, por ejemplo, terneras, cerdos o corderos.
Otra fuente es, por ejemplo, piel de pescado.
La matriz del esmalte se puede preparar a partir
de dientes en desarrollo como se describe previamente (documentos
EP-B-0 337 967 y
EP-B-0 263 086). La matriz del
esmalte se quita raspando y se preparan derivados de la matriz del
esmalte, por ejemplo, por extracción con solución acuosa tal como un
tampón, un ácido o base diluidos o una mezcla de agua/disolvente,
seguido por exclusión de tamaños, desalación u otras etapas de
purificación, seguido opcionalmente por secado por congelación. Las
enzimas se pueden desactivar por tratamiento con calor o
disolventes, en cuyo caso los derivados se pueden almacenar en forma
líquida sin secado por congelación.
En el presente contexto, los derivados de la
matriz del esmalte son derivados de la matriz del esmalte que
incluyen una o varias proteínas de la matriz del esmalte o partes de
tales proteínas, producidas naturalmente por empalme o
procesamiento alternos, o por rotura o enzimática o química de una
proteína de longitud natural o por síntesis de polipéptidos in
vitro o in vivo (métodos de ADN recombinante o cultivo de
células diploides). Los derivados de proteínas de la matriz del
esmalte también incluyen polipéptidos o proteínas relacionados con
la matriz del esmalte. Los polipéptidos o proteínas se pueden unir a
una molécula soporte biodegradable apropiada, tal como
poliaminoácidos o polisacáridos, o sus combinaciones. Además, la
expresión derivados de la matriz del esmalte también abarca
sustancias análogas sintéticas.
Las proteínas son macromoléculas biológicas
constituidas por residuos de aminoácidos unidos por enlaces de
péptido. Las proteínas, como polímeros lineales de aminoácidos,
también se llaman polipéptidos. Típicamente, las proteínas tienen
20-800 residuos de aminoácidos y por lo tanto tienen
pesos moleculares en el intervalo desde alrededor de 6.000 hasta
alrededor de varios cientos de miles de dáltones o más. Las
proteínas pequeñas (menores que alrededor de 20 aminoácidos) se
llaman normalmente péptidos u oligopéptidos.
Las proteínas de la matriz del esmalte son
proteínas que están presentes normalmente en la matriz del esmalte,
es decir, el precursor del esmalte (Ten Cate: Oral Histology,
1994; Robinson: Eur. J. Oral Science, Enero, 1998, 106 Supl.
1:282-91), o proteínas que se pueden obtener por
rotura de tales proteínas. En general, tales proteínas tienen un
peso molecular por debajo de 120.000 dáltones e incluyen
amelogeninas, no amelogeninas, no amelogeninas ricas en prolina,
amelinas (ameloblastina, proteína de la funda de esmalte (sheathlin,
en su nombre inglés)), tuftelinas, sialoproteína dentinaria (DSP) o
sialofosfoproteína dentinaria (DSPP).
Ejemplos de proteínas para uso según la
invención son amelogeninas, no amelogeninas ricas en prolina,
tuftelina, proteínas de los penachos, proteínas de suero, proteínas
salivales, amelina, ameloblastina, proteína de la funda de esmalte
(sheathlin), y sus derivados y sus mezclas. Una preparación que
contenga una sustancia de esmalte activa para uso según la
invención también puede contener al menos dos de las sustancias
proteináceas anteriormente mencionadas. Un producto comercial que
comprende amelogeninas está comercializado como EMDOGAIN® (Biora
AB) y comprende alrededor de 30 mg/ml de sustancia de esmalte activa
en alginato de propilenglicol (PGA).
En general, las principales proteínas de una
matriz del esmalte son conocidas como amelogeninas. Constituyen
alrededor del 90% p/p de las proteínas de la matriz. El 10% p/p
restante incluye no amelogeninas ricas en prolina, tuftelina,
proteínas de los penachos, proteínas de suero y al menos una
proteína salival; no obstante, también pueden estar presentes otras
proteínas tales como, por ejemplo, amelina (ameloblastina, proteína
de la funda de esmalte (sheathlin)) que han sido identificadas en
asociación con la matriz del esmalte. Además, las diversas
proteínas pueden ser sintetizadas y/o procesadas en diversos tamaños
diferentes (es decir, diferentes pesos moleculares). Así, se ha
encontrado que las proteínas dominantes en la matriz del esmalte,
amelogeninas, existen en diversos tamaños diferentes que juntas
forman agregados supramoleculares. Son sustancias marcadamente
higroscópicas que, bajo condiciones fisiológicas, forman agregados.
Pueden soportar o ser soportes para otras proteínas o péptidos.
También están contempladas otras sustancias
proteínicas por ser apropiadas para uso según la presente invención.
Los ejemplos incluyen proteínas tales como proteínas ricas en
prolina y poliprolina. Otros ejemplos de sustancias que están
contempladas por ser apropiadas para uso según la presente invención
son agregados de tales proteínas, de derivados de la matriz del
esmalte y/o de proteínas de la matriz del esmalte así como
metabolitos de la matriz del esmalte, derivados de la matriz del
esmalte y proteínas de la matriz del esmalte. Los metabolitos
pueden ser de cualquier tamaño que varíe desde el tamaño de las
proteínas hasta el de pequeños péptidos.
Como se menciona anteriormente, las proteínas,
polipéptidos o péptidos para uso según la invención tienen
típicamente un peso molecular de a lo sumo alrededor de 120 kDa, tal
como, por ejemplo, a lo sumo 100 kDa, 90 kDa, 80 kDa, 70 kDa o 60
kDa, según se determina por electroforesis en SDS Page.
Las proteínas para uso según la invención se
presentan normalmente en forma de una preparación en la que el
contenido de proteína de la sustancia de esmalte activa en la
preparación está en un intervalo desde alrededor de 0,05% p/p hasta
100% p/p tal como, por ejemplo, alrededor de 5-99%
p/p, alrededor de 10-95% p/p, alrededor de
15-90% p/p, alrededor de 20-90% p/p,
alrededor de 30-90% p/p, alrededor de
40-85% p/p, alrededor de 50-80%
p/p, alrededor de 60-70% p/p, alrededor de
70-90% p/p, o alrededor de 80-90%
p/p.
Una preparación de una sustancia de esmalte
activa para uso según la invención también puede contener una
mezcla de sustancias de esmalte activas con diferentes pesos
moleculares.
Las proteínas de una matriz del esmalte se
pueden dividir en una parte de peso molecular alto y una parte de
peso molecular bajo, y se ha encontrado que una fracción bien
definida de proteínas de la matriz del esmalte posee propiedades
valiosas con respecto al tratamiento de los defectos periodontales
(es decir, heridas periodontales). Esta fracción contiene proteínas
extraíbles con ácido acético denominadas generalmente como
amelogeninas y constituye la parte de peso molecular bajo de una
matriz del esmalte (cf. los documentos
EP-B-0 337 967 y
EP-B-0 263 086).
Como se discute anteriormente, la parte de peso
molecular bajo de una matriz del esmalte tiene una actividad
apropiada para inducir la unión entre tejidos duros y defectos
periodontales. En el presente contexto, no obstante, las proteínas
activas no están restringidas a la parte de bajo peso molecular de
una matriz del esmalte. Actualmente, las proteínas preferidas
incluyen proteínas de la matriz del esmalte tales como amelogenina,
amelina, tuftelina, DSP, etc. con pesos moleculares (como se miden
in vitro con SDS-PAGE) por debajo de
alrededor de 60.000 dáltones.
Por consiguiente, se contempla que la sustancia
de esmalte activa para uso según la invención tiene un peso
molecular de hasta alrededor de 40.000, tal como, por ejemplo, un
peso molecular de entre alrededor de 5.000 y alrededor de
25.000.
Dentro del alcance de la presente invención está
también el uso según la invención de péptidos como los descritos en
el documento WO 97/02730, es decir, péptidos que comprenden al menos
una secuencia de elementos seleccionados del grupo que consiste en
tetrapéptidos DGEA
(Asp-Gly-Glu-Ala),
VTKG
(Val-Thr-Lys-Gly),
ERGE
(Glu-Lys-Gly-Glu) y
DKGE
(Asp-Lys-Gly-Glu) y
que comprenden además una secuencia de aminoácidos de la cual una
cadena consecutiva de 20 aminoácidos es idéntica hasta un grado de
al menos 80% a una cadena de aminoácidos que tengan la misma
longitud seleccionados del grupo que consiste en la secuencia de
aminoácidos mostrada en la SEQ ID NO:1 y una secuencia que consiste
en los aminoácidos 1 hasta 103 de la SEQ ID NO:1 y aminoácidos 6
hasta 324 de la SEQ ID NO:2.
Con la expresión "identidad secuencial" se
quiere decir la identidad en la secuencia de aminoácidos en la
coincidencia con respecto a la identidad y posición de los
aminoácidos de los péptidos. Un espacio se cuenta como sin
identidad para uno o más aminoácidos según sea apropiado.
Tales péptidos pueden comprender desde 6 hasta
300 aminoácidos, por ejemplo, al menos 20 aminoácidos, al menos 30
aminoácidos, tal como al menos 60 aminoácidos, al menos 90
aminoácidos, al menos 120 aminoácidos, al menos 150 aminoácidos o
al menos 200 aminoácidos.
Un método para el aislamiento de las proteínas
de la matriz del esmalte implica la extracción de las proteínas y
la eliminación de los iones calcio y fosfato del hidroxiapatito
solubilizado mediante un método apropiado, por ejemplo, filtración
sobre gel, diálisis o ultrafiltración (véase, por ejemplo, el
trabajo de Janson, J-C y Rydén, L. (Eds.), Protein
purification, VCH Publishers 1989, y Harris, ELV y Angal, S.,
Protein purification methods-A practical approach,
IRL Press, Oxford 1990).
Una preparación de proteína liofilizada típica
puede contener principal o exclusivamente hasta
70-90% de amelogeninas con un peso molecular (MW)
entre 40.000 y 5.000 dáltones, estando completado el
10-30% de péptidos menores, sales y agua residual.
Las bandas de proteína principal son a 20 kDa, 12-14
kDa y alrededor de 5 kDa, como se determina por
SDS-PAGE.
Separando las proteínas, por ejemplo, por
precipitación, cromatografía de intercambio iónico, electroforesis
preparativa, cromatografía de penetración en gel, cromatografía de
fase inversa o cromatografía de afinidad, se pueden purificar las
amelogeninas de diferente peso molecular.
La combinación de amelogeninas de peso molecular
se puede variar, desde un compuesto dominante de 20 kDa hasta un
agregado de amelogeninas con muchos pesos moleculares diferentes
entre 40 y 5 kDa, y hasta un compuesto dominante de 5 kDa. Otras
proteínas de la matriz del esmalte, tales como amelina, tuftelina, o
enzimas proteolíticas encontradas normalmente en la matriz del
esmalte, se pueden añadir y llevar por el agregado de
amelogenina.
Como una fuente alternativa de derivados o
proteínas de la matriz del esmalte también se pueden usar vías
sintéticas generalmente aplicables muy conocidas para una persona
experta en la técnica o usar de células cultivadas de bacterias
modificadas mediante técnicas de ADN recombinante (véase, por
ejemplo, el trabajo de Sambrook, J., et al.: Molecular
Cloning, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989).
En general, la matriz del esmalte, los derivados
de la matriz del esmalte y las proteínas de la matriz del esmalte
son sustancias hidrófobas, es decir, poco solubles en agua,
especialmente a temperaturas aumentadas. En general, estas
proteínas son solubles a valores de pH no fisiológicos y a baja
temperatura, tal como alrededor de 4-20ºC, mientras
que se agregarán y precipitarán a temperatura corporal
(35-37ºC) y pH neutro.
La matriz del esmalte, los derivados de la
matriz del esmalte y/o las proteínas de la matriz del esmalte para
uso según la invención también incluyen una sustancia de esmalte
activa, en la que al menos una parte de la sustancia de esmalte
activa está en forma de agregados o después de la aplicación in
vivo es capaz de formar agregados. El tamaño de partículas de
los agregados está en un intervalo desde alrededor de 20 nm hasta
alrededor de 1 \mum.
También se ha observado (por los presentes
inventores) que la matriz del esmalte, los derivados de la matriz
del esmalte y las proteínas de la matriz del esmalte poseen
propiedades bioadhesivas, es decir, tienen capacidad para adherirse
firmemente a superficies de tejidos. Estas propiedades son las más
valiosas en relación con el tratamiento endodóncico no menor debido
a que aseguran un contacto rápido e íntimo entre las proteínas de
la matriz del esmalte y los odontoblastos que producen dentina para
facilitar el proceso de regeneración de la raíz dental.
La matriz del esmalte es un ejemplo de una
matriz de proteína extracelular que se adhiere a las superficies
minerales así como a superficies proteináceas. A pH y temperatura
fisiológicos, las amelogeninas presentes en la matriz del esmalte
forman un agregado supramolecular insoluble (Fincham et al.,
en J. Struct. Biol. 1994 marzo-abril;
112(2):103-9 y en J. Struct. Biol. 1995
julio-agosto; 115(1):50-9),
que se degrada gradualmente mediante las enzimas proteolíticas
(ocurre tanto in vivo como in vitro con tal que las
proteasas no hayan sido sometidas a inactivación).
La reciente observación de que la matriz del
esmalte se forma y está presente temporalmente durante la formación
de la raíz y del cemento de la raíz puede explicar cómo la
aplicación de matriz del esmalte, derivados de la matriz del
esmalte y/o proteínas de la matriz del esmalte fomenta la
regeneración del tejido periodontal. No obstante, la observación
que sostiene la presente invención de que la matriz del esmalte, los
derivados de la matriz del esmalte y/o las proteínas de la matriz
del esmalte también ejercen un efecto positivo sobre la formación o
regeneración del tejido endodóncico, es decir, el tejido de la pulpa
dental, es muy sorprendente.
En una realización de la presente invención, se
usa cemento de vidrio-ionómero para la restauración
de una cavidad después del procedimiento de tapado de la pulpa y no
el sistema de resina adhesiva. En ello se usa DME para inducir la
curación de la herida de la pulpa y la rápida formación de dentina,
significando que los dientes tratados con DME desarrollan
características de curación de heridas clásica, es decir, capa
superficial o postilla, que consiste en proteínas de matriz
extracelular y restos de células necróticas, cubriendo una zona de
infiltrado de células inflamatorias crónico. El DME en esta
realización fomenta además la formación de un puente de nueva
dentina, sellando la herida desde el tejido de la pulpa sana, en el
que el tejido de la pulpa subyacente a la nueva dentina está libre
de signos de inflamación. Además, se forma una capa intacta de
odontoblastos funcionales, que linda con la dentina
nuevamente
formada.
formada.
Estos hallazgos sugieren que el DME tiene el
potencial para inducir rápidamente la formación de nueva dentina
cuando se aplica sobre una herida de la pulpa de la corona sin
afectar a la parte más apical del tejido de la pulpa. El
aislamiento del tejido herido del tejido de la pulpa sana residual
se puede ver como una forma ideal de curación de la pulpa para uso
clínico. El efecto del DME se parece al efecto de una postilla
durante la curación de una herida dérmica, fomentando la cascada de
curación de una herida clásica y la subsiguiente regeneración o
reparación del tejido.
Se ha mostrado previamente en experimentos
clínicos que la capa de proteína formada por el DME se mantiene
sobre la superficie de la herida durante al menos una semana después
de la aplicación (Gestrelius, S., Anderson, C., Johansson, A.C.,
Persson, E., Brodin, A., Rydhag, L., Hammarstrom, L. (1997),
Formulation of enamel matrix derivative for surface coating.
Kinetics and cell colonization. J. Clin. Periodontol.:
678-684). Recientemente, también se ha comunicado
que el crecimiento de bacterias gram-negativas se
inhibe por la presencia de DME. Por lo tanto, los componentes de
DME pueden actuar no solamente como una señal para la diferenciación
y maduración de células mesenquimales en el tejido de la pulpa
herida, sino también formando una matriz extracelular estable que
actúa como una costra protectora que cubre la herida como una
postilla.
El (los) mecanismo(s) que
soporta(n) la inducción de formación de nueva dentina por DME
no se conoce(n) aún en detalle. No obstante, hallazgos de
laboratorio recientes sugieren que el DME induce una señal
intracelular de AMP-cíclico que pone en
funcionamiento la expresión de crecimiento de la autocrina a partir
de células de fibroblastos en una cascada bien orquestada
(Lyngstadaas, S.P., Lundberg, E., Ekdahl, H., Andersson, C. y
Gestrelius, S. (2000). Autocrine growth factors in human periodontal
ligament cells cultured on enamel matrix derivative. J. Clin.
Periodontol. (en prensa)). A continuación de la liberación de los
factores de crecimiento, las células expuestas a DME proliferan y
madurar entonces en células que segregan matriz extracelular.
Mecanismos similares también pueden estar en juego cuando la herida
de la pulpa se cura en presencia de DME.
En una realización de la presente invención, el
DME por lo tanto proporciona al menos un ambiente protector
favorable para la curación de las heridas de la pulpa. No obstante,
la gran cantidad de dentina que se forma rápidamente delineada por
nuevos odontoblastos funcionales sugiere que el DME actúa más
directamente induciendo la diferenciación de células mesenquimales
y/o la maduración de células precursoras de odontoblastos que
residen en la pulpa.
Una preparación de la sustancia de esmalte
activa se formula normalmente como una composición farmacéutica.
Tal composición puede consistir, por supuesto, en la preparación
proteinácea o puede comprender además un diluyente o excipiente
farmacéuticamente aceptable. El diluyente puede ser típicamente agua
en la que se disuelve la sustancia de esmalte activa antes de la
aplicación al tejido endodóncico.
En lo siguiente, se dan ejemplos de
composiciones apropiadas que contienen la sustancia de esmalte
activa.
Para la administración a un individuo (un animal
o un ser humano), la matriz del esmalte, derivados de la matriz del
esmalte y/o proteínas de la matriz del esmalte (en lo sucesivo
también denominados "sustancia de esmalte activa") y/o una
preparación de la misma se formulan preferiblemente en una
preparación farmacéutica que contiene la sustancia de esmalte
activa y, opcionalmente, uno o más excipientes farmacéuticamente
aceptables.
Las composiciones pueden estar en forma de, por
ejemplo, composiciones sólidas, semisólidas o líquidas tales como,
por ejemplo:
polvos, gránulos, granulados, cápsulas, perlas
de agarosa o quitosán, comprimidos, pelets, microcápsulas,
microesferas, nanopartículas o polvos, gránulos, granulados o pelets
secados por congelación,
geles, hidrogeles, pastas,
soluciones, dispersiones, suspensiones,
emulsiones, mezclas,
kits que contienen, por ejemplo, dos recipientes
separados, en los que el primero de los recipientes contiene la
sustancia de esmalte activa opcionalmente mezclada con
otra(s) sustancia(s) medicamento(s)
activa(s) y/o excipientes farmacéuticamente aceptables y
conteniendo el segundo recipiente un medio apropiado destinado a
ser añadido al primer recipiente antes del uso con el fin de obtener
una composición lista para el uso.
Las composiciones se pueden formular según la
práctica farmacéutica convencional, véase, por ejemplo,
"Remington's Pharmaceutical Sciences" y "Encyclopedia of
Pharmaceutical Technology", editada por Swarbrick, J.&J. C.
Boylan, Marcel Dekker, Inc., Nueva York, 1988.
Aparte de la sustancia de esmalte activa, una
composición farmacéutica para uso según la invención puede
comprender excipientes farmacéuticamente aceptables.
Un excipiente farmacéuticamente aceptable es una
sustancia que es sustancialmente inofensiva para el individuo al
cual se va a administrar la composición. Tal excipiente cumple
normalmente los requerimientos dados por las autoridades sanitarias
nacionales. Las farmacopeas oficiales, tales como, por ejemplo, la
farmacopea británica, la farmacopea de los Estados Unidos de
América y la Farmacopea europea establecen estándares para los
excipientes farmacéuticamente aceptables.
La elección de excipiente(s)
farmacéuticamente aceptable(s) en una composición para uso
según la invención y la óptima concentración de la misma no se
puede predecir generalmente y debe ser determinada sobre la base de
una evaluación experimental de la composición final. No obstante,
una persona experta en la técnica de la formulación farmacéutica
puede encontrar guía en, por ejemplo, "Remington's Pharmaceutical
Sciences", 18ª edición, Mack Publishing Company, Easton,
1990.
Los excipientes farmacéuticamente aceptables
pueden incluir disolventes, agentes de tamponamiento, conservantes,
agentes quelantes, antioxidantes, estabilizadores, agentes de
suspensión y agentes formadores de gel.
Ejemplos de disolventes son, por ejemplo, agua,
alcoholes u otros disolventes hidrófilos o etéreos tales como
ácidos débiles con un pH de alrededor de 5,5-6,0 que
faciliten la posterior aplicación de los materiales de relleno en
el diente.
Ejemplos de agentes de tamponamiento son, por
ejemplo, ácido cítrico, ácido acético, ácido tartárico, ácido
láctico, ácido hidrogenofosfórico, dietilamina, etc.
Ejemplos apropiados de conservantes para uso en
las composiciones son los parabenes, tales como
p-hidroxibenzoato de metilo, etilo, propilo,
butilparabén, isobutilparabén, isopropilparabén, sorbato potásico,
ácido sórbico, ácido benzoico, benzoato de metilo, fenoxietanol,
bronopol, bronidox, hidantoína MDM, butilcarbamato de yodopropinilo,
cloruro de benzalconio y alcohol bencílico, o mezclas de
conservantes.
Ejemplos de antioxidantes son hidroxianisol
butilado (BHA), ácido ascórbico y sus derivados, tocoferol y sus
derivados, cisteína, y sus mezclas.
Ejemplos de agentes de suspensión son, por
ejemplo, celulosas y derivados de celulosas tales como, por ejemplo,
carboximetilcelulosa, hidroxietilcelulosa, hidroxipropilcelulosa,
hidroxipropilmetilcelulosa, celulosa microcristalina (por ejemplo
Avicel® RC 591), carragenina, goma de acacia, goma arábiga,
tragacanto, y sus mezclas.
Ejemplos de bases de gel o agentes que
incrementan la viscosidad son parafina líquida, polietileno, aceites
grasos, sílice coloidal o jabones de aluminio y cinc, glicerina,
propilenglicol, tragacanto, polímeros de carbovinilo, silicatos de
magnesio-aluminio, Carbopol®, polímeros hidrófilos
tales como, por ejemplo, almidón o derivados de celulosa tales
como, por ejemplo, carboximetilcelulosa, hidroxietilcelulosa y otros
derivados de celulosa, hidrocoloides que se hinchan con agua,
carragenanos, hialuronatos, y alginatos incluyendo alginato de
propilenglicol.
Ejemplos de componentes del polvo son: alginato,
colágeno o lactosa. Normalmente, los polvos destinados para
aplicación sobre pulpas dentales deben ser estériles y las
partículas presentes deben estar micronizadas.
Ejemplos de otros excipientes son polímeros
tales como carmelosa, carmelosa sódica, hidroxipropilmetilcelulosa,
hidroxietilcelulosa, hidroxipropilcelulosa, pectina, goma de
xantano, goma de algarrobilla, goma de acacia, gelatina, carbómero,
emulsionantes como vitamina E, estearatos de glicerilo, glucósido de
cetanilo, colágeno, carragenina, hialuronatos y alginatos y
quitosanes.
Las composiciones apropiadas para uso según la
invención también se pueden presentar en forma de suspensiones,
emulsiones o dispersiones. Tales composiciones contienen la
sustancia de esmalte activa en mezcla con un agente dispersante o
humectante, agente de suspensión, y/o uno o más conservantes y otros
excipientes farmacéuticamente aceptables. Los agentes dispersantes
o humectantes apropiados son, por ejemplo, fosfatidas que se
presentan naturalmente, por ejemplo, lecitina o lecitina de soja;
productos de condensación de óxido de etileno con, por ejemplo, un
ácido graso, un alcohol alifático de cadena larga o un derivado de
éster parcial de ácidos grasos y un hexitol o un anhídrido de
hexitol, por ejemplo, estearato de polioxietileno, monooleato de
sorbitol y polioxietileno, monooleato de sorbitán y polioxietileno,
etc.
En una composición farmacéutica para uso según
la invención, una sustancia de esmalte activa está generalmente
presente en una concentración que varía desde alrededor de 0,01%
hasta alrededor de 99,9% p/p. La cantidad de composición aplicada
dará como resultado normalmente una cantidad de proteína total por
cm^{2} de área de pulpa dental que corresponde a desde alrededor
de 0,005 mg/mm^{2} hasta alrededor de 5 mg/mm^{2}, tal como
desde alrededor de 0,01 mg/mm^{2} hasta alrededor de 3
mg/mm^{2}.
En aquellos casos donde la sustancia de esmalte
activa se administra en forma de una composición líquida, la
concentración de la sustancia de esmalte activa en la composición
está en un intervalo que corresponde a desde alrededor de 0,01
hasta alrededor de 50 mg/ml, por ejemplo, desde alrededor de 0,1
hasta alrededor de 30 mg/ml. En algunos casos, son deseables
mayores concentraciones y también se pueden obtener, tal como una
concentración de al menos alrededor de 100 mg/ml. Las áreas
defectuosas en la pulpa dental en seres humanos típicamente tienen
un tamaño de alrededor de 5-10 x 2-4
x 5-10 mm que corresponden a alrededor de 200 \mul
y normalmente se aplica a lo sumo alrededor de
0,5-1 ml, tal como alrededor de
0,2-0,3 ml por diente de una composición que tiene
una concentración de alrededor de 1-40 mg de
proteína total/ml, tal como, se aplica, por ejemplo,
5-30 mg/ml. 0,2-0,3 mg/ml
corresponde a alrededor de 6 mg de proteína por
25-100 mm^{2} o alrededor de 0,1 mg/mm^{2} si
se calcula sólo sobre la superficie de la raíz. Normalmente, se
aplica un volumen excesivo para cubrir las superficies afectadas
adecuadamente. Incluso una multicapa sólo requeriría una pequeña
fracción de las cantidades anteriormente mencionadas.
La presente invención se describe adicionalmente
en los siguientes ejemplos que no están destinados en forma alguna
a limitar el alcance de la invención tal como se reivindica.
Figura
1
La Figura 1 muestra una micrografía que muestra
dientes premolares dos semanas después del tratamiento con DME.
La herida de la pulpa tiene características de
una herida activa clásica, es decir, una capa superficial necrótica
que cubre una zona estrecha de infiltrado de células inflamatorias
crónico. El tejido similar a nueva dentina (ND) se forma en el
borde entre el tejido herido y el tejido de la pulpa subyacente
sano. Secciones teñidas con H y E, la barra de escala es 1 mm.
Figura
2
Muestra una micrografía que muestra dientes
premolares dos semanas después del tratamiento con
Ca(OH)_{2}. Se puede observar tejido de pulpa que
parece normal sin células inflamatorias adyacente a la herida de la
pulpa, semejando una herida inactiva típica para una quemadura
química. No se observó nueva dentina u odontoblastos en o cerca de
la herida en estos dientes. Secciones teñidas con H y E, la barra de
escala es 1 mm.
Figura
3
Que muestra dientes premolares cuatro semanas
después del tratamiento con DME. La herida de la pulpa muestra
ahora características de una curación de una herida clásica, es
decir, una capa superficial o postilla, que consiste en proteínas
de matriz extracelular y restos de células, que cubren una zona de
infiltrado de células inflamatorias crónico. Subyacente a la herida
que se cura, se está formando un puente de nuevo tejido similar a
dentina (ND), sellando la herida desde la pulpa sana. Secciones
teñidas con H y E, la barra de escala es 0,5 mm.
Figura
4
Muestra una mayor ampliación de la Fig. 3, el
nuevo tejido duro está bordeado con células similares a
odontoblastos y el tejido subyacente al puente que se forma es sano
y libre de células inflamatorias. Secciones teñidas con H y E, la
barra de escala es 1 mm.
Figura
5
Que muestra dientes premolares cuatro semanas
después del tratamiento con Ca(OH)_{2}. Se puede
observar tejido de pulpa que parece normal sin células
inflamatorias adyacente a la herida de la pulpa inactiva. Se forma
una pequeña cantidad de nueva dentina a lo largo de las paredes de
la dentina preexistente adyacentes a la herida. C es la cavidad
experimental. D es dentina, ND es tejido similar a dentina
nuevamente formado y P es tejido de la pulpa. Secciones teñidas con
H y E, la barra de escala es 0,5 mm.
Figura
6
Que muestra dientes premolares cuatro semanas
después del tratamiento con Ca(OH)_{2}. Se puede
observar tejido de pulpa que parece normal sin células
inflamatorias adyacente a la herida de la pulpa inactiva. Se forma
una pequeña cantidad de nueva dentina a lo largo de las paredes de
la dentina preexistente adyacentes a la herida. C es la cavidad
experimental. D es dentina, ND es tejido similar a dentina
nuevamente formado y P es tejido de la pulpa. Secciones teñidas con
H Y E, la barra de escala es 0,5 mm.
Figura
7
Micrografías que muestran dientes premolares dos
semanas después del tratamiento con DME o
Ca(OH)_{2}.
La Figura 7a) muestra un diente tratado con DME.
La herida de la pulpa muestra características de una herida activa
clásica, es decir, una capa superficial necrótica que cubre una
estrecha zona de infiltrado de células inflamatorias crónico. La
nueva dentina (ND) se forma en el borde entre el tejido herido y el
tejido de pulpa subyacente sano.
La Figura 7b) muestra un diente tratado con
Ca(OH)_{2}. Se puede observar tejido de pulpa que
parece normal sin células inflamatorias adyacente a la herida de la
pulpa, pareciendo una herida inactiva típica para una quemadura
química. No se observaron nueva dentina u odontoblastos en o junto a
la herida en estos dientes. C es la cavidad experimental. D es
dentina, ND es dentina nuevamente formado y P es tejido de pulpa.
Secciones teñidas con H y E, la barra de escala es 1 mm.
Figura
8
Micrografías que muestran dientes premolares
cuatro semanas después del tratamiento con DME o
Ca(OH)_{2}.
La Figura 8a) muestra un diente tratado con DME.
La herida de la pulpa muestra ahora características de una curación
de herida clásica, es decir, una capa superficial o postilla, que
consiste en proteínas de matriz extracelular y restos de células,
que cubren una zona de infiltrado de células inflamatorias crónico.
Subyacente a la herida que se cura se está formando un puente de
nueva dentina (ND), sellando la herida desde el tejido de pulpa
sana.
La Figura 8b) muestra una mayor ampliación de la
8a), la nueva dentina está bordeada con odontoblastos que parecen
normales y el tejido subyacente al puente de dentina que se forma
está sano y libre de células inflama-
torias.
torias.
La figura 8c) muestra un diente tratado con
Ca(OH)_{2}. Se puede observar tejido de pulpa que
parece normal sin células inflamatorias adyacente a la herida de la
pulpa inactiva. Se forma una pequeña cantidad de nueva dentina a lo
largo de las paredes de la dentina adyacentes a la herida.
Ocasionalmente, se podrían observar pequeñas islas de dentina
irregular en el tejido de pulpa circundante a cierta distancia del
sitio de la herida. C es la cavidad experimental. D es dentina, ND
es dentina nuevamente formada y P es tejido de pulpa. Secciones
teñidas con H y E, la barra de escala es 1 mm (a y c) o 0,5 mm
(b).
Figura
9
Gráfico que expresa la cantidad total de nueva
dentina formada después de dos y cuatro semanas en dientes
experimentales después de la aplicación de DME o
Ca(OH)_{2} y sellado de la cavidad. La cantidad de
nueva dentina se presenta en mm^{2}, medida por histometría en
secciones en serie. En ambas etapas, la cantidad de nueva dentina
formada en los dientes tratados con DME fue significativamente mayor
que en los dientes tratados con Ca(OH)_{2}. n=11 en
todos los tiempos. Las barras de error dan \pm DE. p<0,001 para
ambas series.
Figura
10
Micrografías que muestran dientes incisivos 3, 4
y 8 semanas después del tratamiento con DME (Fig.
10-a, b, c) o Ca(OH)_{2} (Fig.
10-d,e,f).
a) Micrografía de pulpa amputada tratada con DME
después de 3 semanas. La herida de la pulpa tiene características
de una capa de "postilla" superficial necrótica que cubre una
zona de infiltrado moderado de células inflamatorias.
b) Micrografía de pulpa amputada tratada con DME
después de 4 semanas. Moderadas cantidades de nuevo tejido similar
a dentina forman puente en toda la anchura de la cavidad en la
interfaz entre el tejido de pulpa herido y el no dañado.
c) Micrografía de pulpa amputada tratada con DME
después de 8 semanas. Se puede observar la formación de puente de
dentina en la pulpa vital a cierta distancia del sitio amputado,
sellando el tejido de pulpa herida y postilla con células
inflamatorias (IC).
d) Micrografía de pulpa amputada tratada con
Ca(OH)_{2} después de 3 semanas. Hay necrosis por
licuefacción junto a la pasta de hidróxido cálcico (CA). Se observa
una zona de predentina nuevamente formada formándose sobre y a lo
largo de la pared de dentina circumpulpal subyacente al sitio de la
amputación.
e) Micrografía de pulpa amputada tratada con
Ca(OH)_{2} después de 4 semanas. Dentina secundaria
nuevamente formada se forma directamente sobre y a lo largo de las
paredes de dentina preexistente que lleva a un estrechamiento
significativo de la cámara de la pulpa.
f) Micrografía de pulpa amputada tratada con
Ca(OH)_{2} después de 8 semanas. El puente de
dentina resultante es una capa significativamente más delgada que
los puentes formados en los dientes tratados con DME.
D es dentina, P es tejido de pulpa, IC es
células inflamatorias y CA es pasta de hidróxido cálcico (Ampliación
del original x 20. Sección teñida con H y E, la barra de escala es
1 mm).
Figura
11
Mayor ampliación de la Fig. 10a y la Fig.
10d.
a) En los dientes tratados con DME es evidente
un marcado aumento en la angiogénesis en la parte más profunda del
tejido de la pulpa subyacente a los sitios de aplicación.
b) Nuevos vasos sanguíneos situados junto a los
odontoblastos preexistentes indican una actividad aumentada en
estas células.
D es dentina, P es tejido de pulpa, CA es pasta
de hidróxido cálcico (Ampliación del original x 40. Sección teñida
con H y E, la barra de escala es 0,5 mm).
Figura
12
Mayor ampliación de la Fig. 10b y la Fig.
10e.
a) En los dientes tratados con DME, una red de
islotes de nuevo tejido duro en íntimo contacto con células
similares a odontoblastos nuevamente formadas rodeaban el puente de
nueva dentina sobre la cara apical.
b) En los dientes de control, el nuevo tejido
duro parece dentina secundaria que se forma sólo sobre la pared del
canal de la raíz y no se observó formación de puente en esta
etapa.
D es dentina, P es tejido de pulpa y CA es pasta
de hidróxido cálcico (Ampliación del original x 40. Sección teñida
con H y E, la barra de escala es 0,5 mm).
\newpage
Figura
13
Mayor amplificación de la Fig. 10c y la Fig.
10f.
a) En los dientes tratados con DME, los puentes
de dentina están bordeados con células similares a odontoblastos y
el tejido subyacente al puente está sano y libre de células
inflamatorias.
b) En los dientes de control, el puente de
dentina formado es significativamente más fino que en los dientes
tratados con DME.
D es dentina, P es tejido de pulpa y CA es pasta
de hidróxido cálcico (Ampliación del original x 40. Sección teñida
con H y E, la barra de escala es 0,5 mm).
\vskip1.000000\baselineskip
Seis cerdos miniatura de Göttingen adultos (18
meses de edad o mayores) (disponibles de Mølleg\ring{a}rd
(Dinamarca) se anestesiaron con Dormicum (un anestésico general
disponible de Roche, Suiza) y también se anestesiaron localmente
mediante inyección de Xylocaína y adrenalina. Las pulpas de
premolares y molares maxilares permanentes (un total de 36 dientes)
se expusieron en cavidades bucales de clase V usando una fresa de
acero redonda (Nº 12) esterilizada con pulverización de solución
salina. La parte más coronal de la pulpa se extrajo después para
hacer una herida en la pulpa con un área mayor que 2 milímetros
cuadrados. La vitalidad de la pulpa se demostró por el abundante
sangrado que se controló usando pelets de algodón estériles. Después
de que se hubiera detenido el sangrado, se aplicaron directamente
sobre la pulpa expuesta un derivado de la matriz del esmalte (DME,
Emdogain®, disponible de Biora AB) o pasta de
Ca(OH)_{2} (Dycal Dentine, disponible de Dentsply De
Trey, Suiza) como control. Las cavidades se sellaron con un relleno
de vidrio-ionómero disponible comercialmente (GC
Fuji II, Fuji Co., Japón) en un procedimiento que imita las
situaciones clínicas ordinarias.
Después de dos o cuatro semanas, se sacrificaron
los animales y se extrajeron los dientes experimentales y se
metieron en parafina y las secciones histológicas se tiñeron con
hematoxilina y eosina. La microscopia de las secciones histológicas
reveló un grueso cierre similar a dentina de la cámara de la pulpa
adyacente al material de relleno después de cuatro semanas en el
lugar donde se había aplicado DME (Figs. 1-3). En
los controles sin DME no o sólo se observó formación de dentina
rudimentaria y ninguno de los dientes de control exhibieron cierres
completos de la cámara de la pulpa (Figs. 4-6).
\vskip1.000000\baselineskip
Tejido de pulpa coronal de premolares y molares
maxilares permanentes en cerdos miniatura se expuso mediante
cavidades bucales de clase V. La pulpa expuesta se tapó con DME. Se
usó pasta de hidróxido cálcico como material de cobertura en los
dientes de control contralaterales. Después del procedimiento, las
cavidades fueron selladas con cemento de
vidrio-ionómero. A 2 y 4 semanas tras la cirugía, se
prepararon secciones en serie y se tiñeron con hematoxilina y
eosina y se analizaron en ciego por histometría. En los dientes
tratados con DME, grandes cantidades de dentina nuevamente formada
con odontoblastos lindantes perfilaban la herida de la pulpa,
aislando el área de la cavidad del tejido de pulpa sano restante.
Células inflamatorias estaban presentes en la herida pero no
subyacentes a la dentina nuevamente formada en estos dientes. Los
dientes de control tratados con hidróxido cálcico mostraron sólo
formación de nueva dentina fragmentaria. La cantidad de nueva
dentina en los dientes tratados con DME era más del doble de la de
los controles (p<0,001).
En estos experimentos se usó un total de 22
dientes de 4 cerdos miniatura adultos. Los animales fueron
anestesiados con una inyección intramuscular de 10 ml de Ketalar® y
8 ml de pentobarbital i.v. Los sitios quirúrgicos se infiltraron
con Xylocain® (20 mg/ml) y adrenalina (12,5 \mug/ml). Cada pulpa
de diente se expuso por trepanación a través de una cavidad bucal
de clase V de 2 mm de diámetro usando fresas estériles y
pulverización de solución salina estéril. El sangrado se controló
con pelets de algodón estériles. El tejido de pulpa expuesto se tapó
después con EMDOGAIN® (BIORA AB, Malmö, Suecia) o hidróxido cálcico
(Dycal®: DENTSPLY, Konstanz, Alemania), y cada cavidad se rellenó
con cemento de vidrio-ionómero (GC Fuji II®: GC
Corporation, Tokio, Japón).
A 2 y 4 semanas después de la cirugía, los
animales fueron sacrificados mediante inyección de un bolo
intracardiaca de 50 ml de pentobarbital sódico en etanol. Después
de la eutanasia, todos los dientes experimentales y el hueso
alveolar adyacente fueron extraídos en bloque y fijados en
formaldehído tamponado neutro al 4% durante 24 horas. Las muestras
fueron después desmineralizadas en EDTA al 12,5% y posteriormente
metidas en parafina. Después del seccionamiento en serie (6
\mum), cada segunda sección se tiñó con hematoxilina y eosina.
Después, se analizaron series de secciones que contenían tejido de
pulpa coronal en un microscopio óptico equipado para histometría
(Olympus Microimage®).
La cantidad de nueva dentina formada adyacente a
la cavidad calibrada en cada diente experimental se evaluó en las
20 secciones más centrales de cada diente midiendo el área de nueva
dentina en cada segunda sección teñida. La distancia de corte
apical se fijó a 3 mm desde la parte inferior de la cavidad
experimental.
Dos semanas después de la cirugía, se observó
una capa necrótica cubriendo una zona de infiltrado de células
inflamatorias moderado a crónico adyacente a las cavidades
experimentales en los dientes tratados con DME. Nódulos de dentina
nuevamente formada perfilados por una capa de odontoblastos
distintos bordeaban la herida (Fig. 7a).
En los dientes tratados con
Ca(OH)_{2}, no había signos de inflamación a esta
edad, y se mostró tejido conjuntivo que parecía normal en íntimo
contacto con el material de cubrición. No obstante, no había
odontoblastos o nueva dentina presentes adyacentes a la cavidad
experimental en estos dientes (Fig. 7b).
Cuatro semanas después de la cirugía, se había
formado una gran cantidad de nueva dentina, formando puente en toda
la anchura de la cavidad, en la interfaz entre el tejido herido y el
tejido de pulpa vital en los dientes tratados con DME. En
consecuencia, se observó formación de puente de dentina en la pulpa
vital a cierta distancia de la parte más apical de la cavidad
experimental, sellando la parte traumatizada de la pulpa incluyendo
el tejido necrosado y las células inflamatorias (Figs. 8a y 8b). El
tejido de la pulpa subyacente al puente de dentina parecía normal y
libre de inflamación. Se pudo observar una capa distinta de
odontoblastos funcionales lindando con la dentina nuevamente
formada.
En los controles de hidróxido cálcico, sólo se
observó una pequeña cantidad de nueva dentina dispersa en asociación
con el sitio expuesto a cuatro semanas tras la cirugía,
principalmente adyacente a la vieja dentina. En alguno de estos
dientes, se pudieron demostrar pequeñas cantidades de un tejido
duro, reactivo e irregular en la herida de la pulpa. No había
signos de inflamación en los dientes tratados con
Ca(OH)_{2} (Fig. 8c).
Los análisis cuantitativos de la dentina
nuevamente formada calculada como la suma de áreas cubiertas por la
nueva dentina en las cinco secciones más centrales de cada cavidad
experimental revelaron un aumento significativo (p<0,001) en la
formación de dentina en los dientes tratados con DME cuando se
comparan con el tratamiento con Ca(OH)_{2} (Fig.
9). Después tanto de dos como de cuatro semanas, la cantidad de
dentina en los dientes tratados con DME era más del doble de la de
los controles.
\vskip1.000000\baselineskip
Este estudio se diseñó para examinar si el
derivado de la matriz del esmalte (DME) podría inducir la formación
de dentina reparadora sin provocar efectos secundarios adversos en
los dientes pulpotomizados. Para este fin, se llevaron a cabo
pulpotomías en 36 dientes incisivos inferiores de 11 cerdos
miniatura adultos. A continuación del procedimiento quirúrgico, se
trató el tejido de pulpa expuesto con DME o se cubrió con una
preparación de hidróxido cálcico. Después de un periodo de
observación de 2, 3, 4 y 8 semanas, los dientes experimentales se
extrajeron y examinaron histológicamente. Los resultados demostraron
que en los dientes tratados con DME, la formación de cantidades
sustanciales de tejido similar a dentina conducía consistentemente a
una completa formación de puente de tejido duro de los defectos. El
comienzo de la formación de tejido duro se pudo observar ya después
de dos semanas y se localizó sólo en la región herida de la pulpa.
La formación de dentina, aunque no en la misma extensión que la
observada en los dientes tratados con DME, también se observó en los
dientes tratados con hidróxido cálcico. No obstante, en estos
dientes control el nuevo tejido duro se formó a expensas de la
anchura de la cámara de la pulpa, produciendo estrechamiento del
canal de la raíz y subsiguiente estrangulación del tejido de pulpa.
La cantidad total del tejido mineralizado nuevamente formado en los
dientes tratados con DME, calculada como área total usando análisis
hitomorfométrico digital de las cinco secciones más centrales de
cada cavidad experimental, era significativamente mayor (p<0,005)
que en las muestras de control tratadas con hidróxido cálcico.
Conclusión: Estos resultados demuestran el
potencial del DME como agente de arreglo de la pulpa biológicamente
activo que induce específicamente la curación de heridas de la pulpa
y la formación de dentina un dientes pulpotomizados sin afectar a
la función normal de la pulpa restante.
Se usó un número total de 36 dientes incisivos
inferiores permanentes de 11 cerdos miniatura adultos con una edad
media de 3 años. Los animales fueron divididos en tres grupos. Los
tiempos de observación fueron tres semanas (n=4 dientes/tratados
con DME, n=4 dientes/tratados con Ca(OH)_{2}),
cuatro semanas (n=7 dientes/tratados con DME, n=7 dientes/tratados
con Ca(OH)_{2}), y ocho semanas (n=7
dientes/tratados con DME, n=7 dientes/tratados con
Ca(OH)_{2}), respectivamente. Los animales fueron
anestesiados con una inyección de 10 ml de Ketalar® i.m. y 8 ml de
pentobarbital i.v. Los sitios quirúrgicos se infiltraron con
anestésico local de Xylocain® (20 mg/ml) y adrenalina (12,5
\mug/ml). Con el fin de facilitar la preparación de la cavidad
durante la pulpotomía, se eliminaron las coronas de los incisivos
en las cervices gingivales. Posteriormente, se prepararon las
cavidades de acceso a través de la superficie oclusal con una fresa
de diamante usada en un taladro de alta velocidad. Finalmente, se
usó una fresa de acero redonda a baja velocidad para exponer la
pulpa y extraerla. Durante todas las etapas del procedimiento
operativo, el diente y los instrumentos de corte estuvieron
irrigados con pulverización de solución salina estéril. El sangrado
se controló con pelets de algodón estériles. El tejido de la pulpa
expuesto se cubrió después con DME (EMDOGAM® Gel; 30 mg/ml en
alginato de propilenglicol (PGA); BIORA AB, Malmö, Suecia) o
hidróxido cálcico (Dycal®: DENTSPLY, Konstanz, Alemania).
Posteriormente, cada cavidad se rellenó con cemento de
vidrio-ionómero (GC Fuji II®: GC Corporation, Tokio,
Japón) para asegurar el sellado de la cavidad y restaurar la
función dental.
A 3, 4 u 8 semanas después de la cirugía, los
animales fueron sacrificados mediante una inyección de un bolo
intracardiaca de 50 ml de pentobarbital sódico en etanol. Después de
la eutanasia, todos los dientes experimentales fueron extraídos y
fijados en formaldehído tamponado neutro al 4% durante 24 horas. Las
muestras fueron después desmineralizadas en EDTA al 12,5% y
posteriormente metidas en parafina. Después del seccionamiento en
serie longitudinal (6 \mum), cada segunda sección se tiñó con
hematoxilina y eosina. Después, se analizaron series de secciones
que contenían tejido de pulpa en un microscopio óptico equipado para
histometría.
La cantidad de nuevo tejido duro formado
adyacente a la cavidad fue evaluada en las secciones centrales (n=5)
de cada diente experimental. Las áreas cubiertas por tejido duro
nuevamente formado en estas secciones se midieron usando equipo de
histometría digital (Olympus Microimage®: Media Cybernetics,
Maryland, EE UU). El límite para el análisis histométrico se fijó
arbitrariamente a 2 mm apicalmente desde la parte inferior de la
preparación de las cavidades experimentales.
Tres semanas después de la aplicación de DME, se
observó un tejido acelular cubriendo una zona con un infiltrado de
células inflamatorias moderado en la herida de la pulpa en las
secciones histológicas. Un notable aumento de la angiogénesis fue
evidente en la parte más profunda del tejido de la pulpa debajo de
los sitios de aplicación (Figs. 10a, 11a) y en la mitad de los
dientes se observaron pequeñas islas que consistían en un tejido
similar a osteodentina formándose subyacente al sitio de
amputación. La representación histológica de los dientes tratados
con DME semejaba fielmente el de la curación de heridas normal
incluyendo la formación de una postilla, un infiltrado inflamatorio
moderado debajo de la herida y un aumento local en la angiogénesis y
proliferación celular. Ninguno de los dientes tratados con DME
mostró signos de daño a la pulpa irreversible, necrosis parcial o
infecciones. En esta etapa, los dientes de control tratados con
Ca(OH)_{2} exhibieron una necrosis por licuefacción
distinta del tejido próximo al material de cobertura. En la mayoría
de los dientes de control, se observó una zona de predentina
nuevamente formada formándose sobre y a lo largo de la pared de
dentina circumpulpal subyacente al sitio de amputación. En el borde
entre el tejido de pulpa vital y la capa superficial necrosada,
estaba presente cierta actividad angiogenética (Figs. 10d y 11b). La
situación en los dientes de control tratados con
Ca(OH)_{2} se parece más fielmente a la de una
quemadura química que exhibe un tejido necrótico superficial en el
sitio de la herida con sólo baja actividad celular en la región
subyacente.
En los dientes extraídos para seccionamiento
cuatro semanas después de la cirugía y aplicación de DME, cantidades
moderadas de nuevo tejido similar a dentina formaba puente en la
anchura total de las cavidades en la interfaz entre el tejido de la
pulpa herido y el no dañado. Una red de islotes de nuevo tejido duro
en íntimo contacto con células similares a odontoblastos nuevamente
formadas rodeaba el puente de dentina nuevamente formada en la cara
apical (Figs. 10b, 12a). En los dientes de control con hidróxido
cálcico extraídos a cuatro semanas después de la cirugía, nuevo
tejido duro que semeja dentina secundaria se formó sólo sobre la
pared del canal de la raíz y no se observó formación de puente en
estos dientes en este tiempo. Esta dentina secundaria nuevamente
formada se formó directamente sobre y a lo largo de las paredes de
dentina preexistente conduciendo a un estrechamiento significativo
de la cámara de la pulpa (Figs. 10e, 12b). Seis de cada siete
dientes extraídos ocho semanas después de la aplicación de DME
exhibieron extensa nueva formación de dentina en forma de puentes de
dentina completos que sellaron eficazmente la pulpa sana que
quedaba de los defectos experimentales incluyendo el tejido de la
postilla. El tejido de la pulpa subyacente a los puentes parecía
sano sin inflamación presente y sin resorciones internas (Figs.
10c, 13a). El último diente de este grupo mostró una extensa
cantidad de formación de dentina reparadora, aunque el defecto no
estaba aún completamente formado puente (Tabla 1). En comparación,
cinco de los siete dientes de control tratados con hidróxido cálcico
mostraban cierre completo de la herida de la pulpa. En dos de estos
cinco dientes, la formación de nueva dentina secundaria fue a
expensas de la cámara de pulpa de la raíz produciendo un severo
estrechamiento del canal de la raíz. En los dos casos restantes sin
cierre completo de la herida, uno exhibió un canal de la raíz
tortuoso, mientras que el último no mostró casi formación de nueva
dentina, sino más bien un infiltrado de inflamación moderado y
signos de resorciones internas (p<0,005, Tabla 1).
Cuando el grosor de los puentes de dentina
formados en los dientes de control y tratados con DME después de
ocho semanas se evaluó por histomorfometría, el grosor medio del
tejido similar a dentina que forma puente en los defectos fue
significativamente mayor en los dientes tratados con DME que en el
grupo de control (p<0,001) (Figs. 10f, 13b y Tabla 1). También,
la cantidad total de tejido mineralizado nuevamente formado en los
dientes tratados con DME, calculada como área total usando análisis
de histomorfometría digital de las cinco secciones más centrales de
cada cavidad experimental, fue significativamente mayor (p<0,005)
que en las muestras de control tratadas con hidróxido cálcico
(Tabla 1). De hecho, ocho semanas después de la cirugía, la cantidad
de tejido duro nuevamente formado en los dientes tratados con DME
fue más del doble de la de los controles.
L. Hammarström, J. Clin. Periodontol.
24, 1997, pp. 658-668
A. R. Ten Cate, Oral Histology.
Development, Structure and Function, 5ª ed., Mosby 1998,
pp. 150-196
Ten Cate: Oral Histology, 1994;
Robinson: Eur. J. Oral Science, Enero, 1998, 106 Supl.
1:282-91
Janson, J-C y Rydén, L. (Eds.),
Protein purification, VCH Publishers 1989, y Harris,
ELV y Angal, S., Protein purification methods-A
practical approach, IRL Press, Oxford 1990
Sambrook, J., et al.: Molecular
Cloning, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989
Fincham et al., en J. Struct.
Biol. 1994 marzo-abril;
112(2):103-9 y en J. Struct. Biol.
1995 julio-agosto;
115(1):50-9
Gestrelius, S., Anderson, C.,
Johansson, A.C., Persson, E., Brodin, A.,
Rydhag, L., Hammarstrom, L. (1997),
Formulation of enamel matrix derivative for surface coating.
Kinetics and cell colonization. J. Clin. Periodontol.:
678-684
Lyngstadaas, S.P., Lundberg, E.,
Ekdahl, H., Andersson, C. y Gestrelius, S.
(2001). Autocrine growth factors in human periodontal
ligament cells cultured on enamel matrix derivative. J. Clin.
Periodontol., Feb; 28(2):181-8
"Remington's Pharmaceutical Sciences" y
"Encyclopedia of Pharmaceutical Technology", editada por
Swarbrick, J.&J. C. Boylan, Marcel Dekker, Inc., Nueva
York, 1988
"Remington's Pharmaceutical Sciences", 18ª
edición, Mack Publishing Company, Easton, 1990.
Claims (21)
1. Uso de una preparación de una sustancia de
esmalte activa para la preparación de una composición farmacéutica
para la formación o regeneración de dentina después de
procedimientos dentales que implican exposición de tejido de pulpa
dental vital.
2. Uso según la reivindicación 1 para la
regeneración de dentina secundaria en tejido de pulpa dental
vital.
3. Uso según la reivindicación 1 para la
formación de dentina reparadora u osteodentina en tejido de pulpa
dental vital.
4. Uso según la reivindicación 1 para fomentar
la formación de dentina en tejido de pulpa dental vital en dientes
salidos.
5. Uso según la reivindicación 1, en el que la
preparación de sustancia de esmalte activa se aplica sobre pulpa
dental antes de la aplicación de un material de relleno después de
procedimientos dentales que implican la exposición de tejido de
pulpa dental vital.
6. Uso según cualquiera de las reivindicaciones
1-5, en el que la sustancia de esmalte activa es
matriz del esmalte, derivados de la matriz del esmalte y/o
proteínas de la matriz del esmalte.
7. Uso según la reivindicación 6, en el que la
sustancia de esmalte activa se selecciona del grupo que consiste en
enamelinas, amelogeninas, no amelogeninas, no amelogeninas ricas en
prolina, amelinas (ameloblastina, proteína de la funda del esmalte
(sheathlin, en su nombre inglés)), tuftelinas, DSP, DSPP, y sus
derivados y sus mezclas.
8. Uso según la reivindicación 6, en el que la
sustancia de esmalte activa tiene un peso molecular de a lo sumo
120 kDa, tal como, por ejemplo, a lo sumo 100 kDa, 90 kDa, 80 kDa,
70 kDa o 60 kDa, determinado por electroforesis de
SDS-PAGE.
9. Uso según cualquiera de las reivindicaciones
6-8, en el que la preparación de una sustancia de
esmalte activa contiene una mezcla de sustancias de esmalte activas
con diferentes pesos moleculares.
10. Uso según la reivindicación 9, en el que la
preparación de una sustancia de esmalte activa comprende al menos
dos sustancias seleccionadas del grupo que consiste en amelogeninas,
no amelogeninas ricas en prolina, enamelinas, tuftelina, proteínas
de los penachos, proteínas de suero, proteínas salivales, amelina,
amelobastina, proteína de la funda del esmalte (sheathlin), DSP,
DSPP, y sus derivados.
11. Uso según cualquiera de las reivindicaciones
6-10, en el que la sustancia de esmalte activa tiene
un peso molecular de hasta alrededor de 40.000.
12. Uso según la reivindicación 11, en el que la
sustancia de esmalte activa tiene un peso molecular de entre
alrededor de 5.000 y alrededor de 25.000.
13. Uso según la reivindicación 12, en el que la
mayor parte de la sustancia de esmalte activa tiene un peso
molecular de alrededor de 20 kDa.
14. Uso según cualquiera de las reivindicaciones
6-13, en el que al menos una parte de la sustancia
de esmalte activa está en forma de agregados o, después de la
aplicación in vivo, es capaz de formar agregados.
15. Uso según la reivindicación 14, en el que
los agregados tienen un tamaño de partículas desde alrededor de 20
nm hasta alrededor de 1 \mum.
16. Uso según cualquiera de las reivindicaciones
6-15, en el que el contenido de proteína de la
sustancia de esmalte activa en la preparación está en un intervalo
desde alrededor de 0,05% p/p hasta 100% p/p tal como, por ejemplo,
alrededor de 5-99% p/p, alrededor de
10-95% p/p, alrededor de 15-90% p/p,
alrededor de 20-90% p/p, alrededor de
30-90% p/p, alrededor de 40-85% p/p,
alrededor de 50-80% p/p, alrededor de
60-70% p/p, alrededor de 70-90%
p/p, o alrededor de 80-90% p/p.
17. Uso según cualquiera de las reivindicaciones
1-16, en el que la preparación de la sustancia de
esmalte activa está en forma secada por congelación.
18. Uso según cualquiera de las reivindicaciones
1-16, en el que la composición farmacéutica
comprende además un excipiente farmacéuticamente aceptable.
19. Uso según la reivindicación 18, en el que el
excipiente farmacéuticamente aceptable es alginato de
propilenglicol.
20. Uso según la reivindicación 18, en el que el
excipiente farmacéuticamente aceptable es ácido hialurónico o sus
sales o derivados.
21. Uso según cualquiera de las reivindicaciones
1-20, en el que la composición farmacéutica
comprende alrededor de 30 mg/ml de sustancia de esmalte activa en
alginato de propilenglicol (PGA).
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---|---|---|---|---|
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