ES2333794T3 - Oligonucleotidos que inhiben la expresion de hif-1. - Google Patents
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Abstract
Oligonucleótido que es la SEC ID nº 2, dirigido a una molécula de ácido nucleico que codifica HIF-1 humano, en el que dicho oligonucleótido inhibe la expresión del HIF-1 humano.
Description
Oligonucleótidos antisentido que inhiben la
expresión de HIF-1.
La presente invención se refiere a un compuesto
oligonucleótido antisentido, RX-0047,
que inhibe la expresión de una proteína humana, el
HIF-1, e induce asimismo citotoxicidad en diversas
líneas celulares cancerosas.
Los tumores no pueden crecer sin vasos
sanguíneos que suministren a las células cancerosas oxígeno y
nutrientes (Blagosklonny, International J. Oncol., 2001, 19:
257-262). El control de la respuesta hipóxica en
células de mamíferos mediante el factor de transcripción
HIF-1 es uno de los mayores reguladores del
crecimiento de células cancerosas. HIF hace que las células puedan
sobrevivir a la hipoxia y estimular el crecimiento endotelial, y se
regula al alza en un amplio espectro de cánceres (Zhong y otros,
Cancer Res. 1999 59: 5830-5835). Uno de los
ejemplos más sorprendentes del papel del HIF en la angiogénesis y la
progresión tumoral es la pérdida de función de la proteína VHL, que
es un gen supresor tumoral que está mutado en la mayoría de
carcinomas renales de célula clara esporádicos y en la enfermedad
de VHL. En consecuencia, la disrupción de la ruta del
HIF-1 inhibe el crecimiento tumoral, señalando el
HIF-1 como diana anticancerígena potencial. La
inhibición del HIF-1 es una estrategia
antiangiogénica basada en mecanismo porque es la respuesta mediada
por HIF-1 la que conduce la angiogénesis tumoral.
La patente US nº 6.222.018, concedida a Semenza, 24 de abril de
2001, se refiere a las secuencias de nucleótidos que codifican el
HIF-1. Los oligonucleótidos específicos dados a
conocer y reivindicados en la presente invención no fueron dados a
conocer en dicha patente. La publicación de patente WO 00/76497 da
a conocer un compuesto de HIF-1 antisentido de
longitud completa que inhibe el crecimiento tumoral.
Figura 1: RX-0047 y
RX-0149 inhiben la expresión de ARNm de
HIF-1 en diversas células cancerosas;
Figura 2: análisis por Western blot de la
inhibición de la expresión de proteína HIF-1
mediante RX-0047 y RX-0149.
La presente invención se refiere a un
oligonucleótido antisentido que se dirige a un ácido nucleico que
codifica HIF-1 (factor inducible por hipoxia tipo
1), y que modula la expresión de HIF-1. También se
da a conocer un procedimiento para inhibir la expresión de
HIF-1 en células que comprende poner en contacto
dichas células con el oligonucleótido según la presente invención.
Una ventaja del oligonucleótido descrito en la presente invención
consiste en que, además de inhibir la expresión de
HIF-1, presenta un efecto citotóxico sobre
diferentes líneas celulares cancerosas. Las ventajas de la presente
invención se pueden obtener poniendo en contacto células de
diversas líneas celulares cancerosas con un compuesto antisentido
que es específicamente hibridizable a un sitio sobre el gen de
HIF-1 que presenta la secuencia siguiente: 5'
ttggacactggtggctcatt 3' en el sitio 2.772 del gen de
HIF-1 (Genebank # NM001530) (SEC ID nº 1). El
compuesto antisentido es RX-0047, 5'
aatgagccaccagtgtccaa 3' (SEC ID nº 2). El contacto tiene lugar en
condiciones que permiten que el oligonucleótido se hibridice con el
gen que codifica el HIF-1. Tras la hibridización, se
inhibe la capacidad de las células de producir
HIF-1 y se reduce la viabilidad de las células
cancerosas.
El HIF (factor inducible por hipoxia) es un
factor de transcripción heterodimérico clave y se activa por
hipoxia. No únicamente media en respuestas homeostáticas que
incluyen eritropoyesis, angiogénesis y glicólisis a la hipoxia en
mamíferos, sino que también facilita la neovascularización y el
crecimiento tumorales. Se compone de 2 subunidades diferentes,
HIF-1\alpha y HIF-1\beta,
también conocido como ARNT (translocador nuclear del receptor
arilo). Estas 2 subunidades pertenecen a la familia bHLH
(hélice-bucle-hélice básico) y PAS
(Per, ARNT, Sim). El dominio bHLH de estos factores es responsable
de la dimerización a través de dos hélices y de que el ADN se
enlace a través de su dominio básico. Dos dominios separados dentro
de HIF-1\alpha y HIF-2\alpha
responden a rutas de señalización de hipoxia. El primero es la
degradación dependiente de oxígeno (ODD), que, en normoxia, está
sujeta a modificación de traducción por parte de una prolil
hidroxilasa dependiente de oxígeno (Jaakkola y otros, Science,
2001, 292: 468-472). La prolina hidroxilada
promociona la interacción del HIF con el complejo de ubiquitina
ligasa VHL (von Hippel-Lindau), iniciando una rápida
ubiquitinación y una subsiguiente destrucción de la proteína HIF a
través de proteasomas. Un informe reciente indicó que la
hidroxilación de asparagina del dominio de transactivación del
terminal COOH (CAD) también tiene un papel importante en la
degradación del HIF mediada por proteasa inhibiendo la interacción
con el coactivador p300/CBP, y reduce la actividad transcripcional
del HIF-1 durante la normoxia (Lando y otros,
Science, 2002, 295: 858-861). En consecuencia, en
conjunción con la prolil hidroxilasa, la asparagina hidroxilasa
actúa como un interruptor hipóxico regulado por el nivel de O_{2}
en la célula. Durante la hipoxia, la actividad de p42/p44 MAPK
induce la fosforilación post traducción del HIF-1 y
favorece la actividad transcripcional del HIF-1. Un
informe reciente mostró que, junto con la hidroxilación,
ubiquitinación y fosforilación, la acetilación tiene un papel
importante en la regulación de la estabilidad del
HIF-1 (Jeong y otros, Cell, 2002, 111:
709-720).
Bajo hipoxia, el HIF-1\alpha
no se hidroxila porque la hidroxilasa, que requiere dioxígeno para
su actividad, es inactiva y, de este modo, el
HIF-1\alpha no es reconocido por pVHL y se acumula
en la célula. A continuación, el HIF-1\alpha
transloca al núcleo y se dimeriza con la subunidad de
HIF-1\beta constitutivamente presente (Semenza,
Genes & Development, 1985, 14: 1983-1991). A
continuación, el dímero se enlaza al elemento de respuesta a la
hipoxia (HRE) en los genes diana, lo que resulta en la
transactivación de genes como eritropoyetina, VEGA (Forsythe y
otros, Mol. Cell. Biol., 1996, 16: 4604-4613),
factor \beta de crecimiento derivado de plaquetas
(PDGF-\beta), transportador de glucosa (GLUT1) y
óxido nitroso sintetasa (Neckers, J. Natl. Cancer Ins., 1999, 91:
106-107). Algunas hormonas y factores de crecimiento
también conducen a niveles más elevados de
HIF-1\alpha, así como mutaciones en determinados
oncogenes y genes supresores tumorales, por ejemplo VHL, que
resulta en un aumento del nivel de HIF-1\alpha
(Ivan y Kaelin, Current Opinion in Genetics & Development, 2001
11: 27-34). Resultará interesante determinar si la
hidroxilación o mecanismos alternativos están implicados en esta
activación del HIF independiente de la hipoxia.
Diversas estrategias actuales para las terapias
anticáncer que aprovechan el microentorno y la respuesta hipóxicos
son: 1) fármacos o vectores de terapia génica dependientes de
hipoxia, 2) inhibición de la estabilidad de HIF, 3) inhibición de
la transactivación por HIF, y 4) inhibidores de VEGA.
Dado el papel clave del factor de transcripción
HIF en el desarrollo de cánceres, sería deseable inhibir su
actividad durante la oncogénesis. Sin embargo, también sería
deseable, hasta donde sea posible, evitar la interrupción de los
papeles de la familia en otros aspectos del metabolismo celular. Un
enfoque puede consistir en identificar el gen que codifica un
factor de transcripción probable que es altamente expresado durante
la hipoxia, y diseñar un oligonucleótido antisentido que puede ser
utilizado para inhibir la actividad de dicho gen en el contexto
adecuado. En el contexto de la presente invención se han descubierto
que dos oligonucleótidos antisentido exhiben una capacidad
aumentada de inhibir la producción de proteína mediante el gen de
HIF-1, y además inducen citotoxicidad en una
variedad de líneas celulares cancerosas.
Un compuesto antisentido es una herramienta que
puede ser utilizada con el fin de introducir modificaciones en los
ácidos nucleicos que se encuentran en las células vivas. El término
"antisentido" se refiere al concepto de que los ácidos
nucleicos "codifican" proteínas. Es decir, la secuencia de
nucleótidos en contra de un determinado ácido nucleico determina,
entre otras cosas, qué proteína se producirá. Una secuencia
"sentido" para un gen completo dará lugar a una proteína
normal en la cantidad habitual, como respuesta a un determinado
estímulo. Un oligonucleótido "sentido" se hibridizará con una
secuencia génica normal, y no afectará a la cantidad o a las
propiedades de la proteína. Una secuencia "no sentido" no dará
lugar a un producto, o puede dar lugar a un producto no funcional.
Por ejemplo, si un codón u oligómero "no sentido" se inserta en
un gen, puede resultar una proteína truncada no funcional. Un
oligonucleótido "antisentido" se hibridizará con un gen normal,
pero dará lugar a una proteína alterada con respecto a su
estructura o a su cantidad. Se ha descubierto que los oligómeros
antisentido, es decir compuestos antisentido relativamente cortos,
se pueden insertar fácilmente en las células, en las que modifican
las funciones escénicas.
Los compuestos antisentido se utilizan
habitualmente como reactivos para investigación, para la exploración
de las funciones génicas, ya que son capaces de modificar la
expresión génica con una especificidad exquisita, y se pueden
utilizar para elucidar la función de genes particulares. Los
compuestos antisentido se pueden utilizar, por ejemplo, para
distinguir entre funciones de diversos miembros de una ruta
biológica.
Los oligonucleótidos antisentido se pueden
utilizar para bloquear selectivamente los genes causantes de
enfermedades, inhibiendo así la producción de proteínas asociadas a
enfermedades. Algunos oligonucleótidos antisentido han sido
administrados de forma segura y efectiva a humanos, y actualmente se
están llevando a cabo diversos ensayos clínicos. Resulta así
posible utilizar oligonucleótidos para tratar células, tejidos y
animales, especialmente humanos. En el contexto de la presente
invención, el término "oligonucleótido" se refiere a un
oligómero o polímero de ácido ribonucleico (ARN) o ácido
desoxirribonucleico (ADN), o a miméticos de los mismos. Este
término incluye oligonucleótidos compuestos por bases nucleicas de
procedencia natural, azúcares y enlaces internucleósidos covalentes
(esqueleto) con funciones de procedencia no natural que funcionan de
forma similar. A menudo, dichos oligonucleótidos modificados o
sustituidos resultan preferidos las formas nativas, ya que las
propiedades deseables, tales como, por ejemplo, una solución celular
aumentada, una afinidad aumentada por una diana de ácido nucleico y
una estabilidad aumentada en presencia de bases nucleicas. La
presente invención utiliza un compuesto nucleótido oligomérico,
particularmente un oligonucleótido antisentido, que se dirige a una
parte de un ácido nucleico que codifica el HIF-1, y
que modula la expresión del HIF-1. El compuesto
oligonucleótido se diseña de tal modo que se hibridice
específicamente con uno o más ácidos nucleicos que codifican el
HIF-1. Un oligonucleótido, el
RX-0047, se dirige a un sitio sobre el gen del
HIF-1 que presenta la siguiente secuencia: 5'
ttggacactggtggctcatt 3' del sitio 2.772 del gen del
HIF-1 (Genebank # NM001530) (SEC ID nº 1). La
secuencia del esqueleto de RX-0047 es complementaria
a este sitio. Los inventores han descubierto que los oligómeros que
comprenden 5 ó 10 nucleótidos corriente arriba y corriente abajo de
la secuencia en la que se derivó el 20-ímero de
RX-0047 mostraron una inhibición medible de la
expresión de ARNm de HIF-1. Los oligómeros que
comprenden 5 ó 10 nucleótidos corriente arriba y corriente abajo de
la secuencia en la que se derivó del 20-ímero de
RX-0047 demostró una inhibición de la proliferación
de las células cancerígenas. Las versiones truncadas del
RX-0047 que mostraban alguna inhibición de la
expresión de ARNm de HIF-1 también mostraron una
inhibición de la proliferación de células cancerosas.
Dirigir un compuesto antisentido a un gen
particular significa identificar la secuencia del ácido nucleico de
interés y seleccionar uno o más sitios dentro de la secuencia de
ácido nucleico que se pretende modificar. Una vez identificado el
sitio diana, se selecciona un oligonucleótido suficientemente
complementario al sitio diana, de tal modo que el mismo se
hibridizará específicamente al sitio, es decir, se hibridizará
suficientemente bien y con una especificidad suficiente con el fin
de dar lugar al efecto deseado.
Tal como se utiliza en la presente memoria, la
expresión "ácido nucleico que codifica HIF-1"
comprende ADN que codifica HIF-1, ARN (incluyendo
pre-ARNm) transcrito a partir de dicho ADN, y
también ADNc derivado de dicho ARN. La hibridización específica de
un compuesto oligomérico antisentido con su ácido nucleico diana
interfiere con la función normal del ácido nucleico. Las funciones
de ADN que se interfieren incluyen la replicación y la
transcripción. Las funciones de ARN con las que se interfieren
incluyen todas las funciones vitales, tales como, por ejemplo,
translocación del ARN al sitio de traducción de proteína, traducción
de la proteína a partir del ARN, splicing del ARN con el fin de
obtener una o más especies de ARNm y actividad catalítica que puede
estar incluida en el ARN o facilitada por el mismo. El efecto global
de dicha interferencia con la función del ácido nucleico diana es
la modulación de la expresión, o producción, de una proteína. En el
contexto de la presente invención, "modulación" significa un
incremento (estimulación) o una disminución (inhibición) en la
expresión de un gen. Para los objetivos de la presente invención, el
gen que codifica el HIF-1 se modula de tal modo que
se inhibe la expresión de HIF-1.
En el contexto de la presente invención,
"hibridizar" significa enlazar mediante puente de hidrógeno, lo
que puede tener lugar a través de enlaces de hidrógeno de
Watson-Crick, Hoogsteen o Hoogsteen inverso, entre
nucleótidos complementarios o bases de nucleótidos. Por ejemplo, la
adenina y la timina son bases nucleicas complementarias que se
aparean a través de la formación de enlaces de hidrógeno. Tal como
se utiliza en el presente documento, el término
"complementario" se refiere a la capacidad para el apareamiento
preciso entre dos nucleótidos. Por ejemplo, si un nucleótido en una
determinada posición de un oligonucleótido es capaz de unirse por
enlaces de hidrógeno a un nucleótido en la misma posición de una
molécula de ADN o ARN, entonces el oligonucleótido y el ADN o ARN
se consideran complementarios entre sí en esa posición. El
oligonucleótido y el ADN o ARN son complementarios entre sí cuando
un número suficiente de posiciones correspondientes en cada molécula
están ocupados por nucleótidos que se pueden unir mediante enlace
de hidrógeno entre sí. De este modo, "específicamente
hibridizable" y "complementario" son términos que se
utilizan para indicar un grado suficiente de complementariedad o
apareamiento preciso, de tal modo que se produce un enlazamiento
estable y específico entre el oligonucleótido y la diana de ADN o
ARN. Resulta evidente en la técnica que la secuencia de un compuesto
antisentido no tiene que ser 100% complementaria a la de su ácido
nucleico diana para ser específicamente hibridizable. Un compuesto
antisentido es específicamente hibridizable cuando el enlazamiento
del compuesto a la molécula de ADN o ARN interfiere con la función
normal del ADN o ARN diana, provocando una pérdida de utilidad, y
existe un grado suficiente de complementariedad para evitar el
enlazamiento no específico del compuesto antisentido a secuencias
no diana en condiciones en las que se desea un enlazamiento
específico, es decir, en condiciones fisiológicas en el caso de
ensayos in vivo o tratamiento terapéutico, y en el caso de
ensayos in vitro, en condiciones en las que se llevan a cabo
los ensayos.
El compuesto antisentido de acuerdo con la
presente invención comprende 20 bases nucleicas (es decir, 20
nucleósidos enlazados). Tal como se conoce en la técnica, un
nucleósido es una combinación de base nucleica y azúcar.
Habitualmente, la parte de base nucleica del nucleósido es una base
heterocíclica. Las dos clases más comunes de dichas bases
heterocíclicas son las purinas y las pirimidinas. Los nucleótidos
son nucleósidos que incluyen además un grupo fosfato enlazado
covalentemente a la parte de azúcar del nucleósido. Para los
nucleósidos que incluyen un azúcar pentofuranosilo, el grupo
fosfato puede estar enlazado al resto hidroxilo 2', 3' ó 5' del
azúcar. Al formar oligonucleótidos, los grupos fosfato enlazan
covalentemente nucleósidos adyacentes entre sí con el fin de formar
un compuesto polimérico lineal. A su vez, los extremos respectivos
de dicha estructura polimérica lineal se pueden unir adicionalmente
con el fin de formar una estructura circular; sin embargo, en
general, resultan preferidas las estructuras lineales abiertas.
Dentro de la estructura del oligonucleótido, habitualmente los
grupos fosfato se consideran formadores del esqueleto
internucleósido del oligonucleótido. El enlace o esqueleto normal
de ARN y ADN es un enlace fosfodiéster 3' a 5'.
Los ejemplos específicos de compuestos
antisentido preferidos, útiles en la presente invención, incluyen
oligonucleótidos que contienen esqueletos modificados o enlaces
internucleósido no naturales. Tal como se define en la presente
especificación, los oligonucleótidos que presentan esqueletos
modificados incluyen los que presentan un átomo de fósforo en el
esqueleto y aquellos que no presentan ningún átomo de fósforo en el
esqueleto. En el contexto de la presente memoria, y tal como se
refiere a veces en la técnica, los oligonucleótidos modificados que
no presentan ningún átomo de fósforo en su esqueleto internucleósido
también pueden ser considerados oligonucleósidos.
Los esqueletos de oligonucleótido modificados
preferidos incluyen, por ejemplo, fosforotioatos, fosforoditioatos,
fosforotriésteres, aminoalquilfosforotriésteres, fosfonatos de
metilo y otros alquilos, incluyendo fosfonatos de
3'-alquileno y fosfonatos quirales, fosfinatos,
fosforamidatos, incluyendo 3'-amino fosforamidato y
aminoalquilfosforamidatos, tionofosforamidatos,
tionoalquilfosfonatos, tionoalquilfosfotriésteres y boranofosfatos
con enlaces normales 3'-5', análogos de los mismos
enlazados 2'-5', y los que presentan polaridad
invertida, en los que los pares adyacentes de unidades de
nucleósido están enlazados 3'-5' a
5'-3' o 2'-5' a
5'-2'. También se incluyen diversas sales, sales
mixtas y formas de ácido libre.
Los esqueletos de oligonucleótido modificados
preferidos que no incluyen ningún átomo de fósforo presentan
esqueletos formados por enlaces internucleósido de alquilo o
cicloalquilo de cadena corta, enlaces internucleósido mixtos de
heteroátomo y alquilo o cicloalquilo, o uno o más enlaces
internucleósido heteroatómicos o heterocíclicos de cadena corta.
Los mismos incluyen los que presentan enlaces morfolino (formados en
parte a partir de la parte de azúcar de un nucleósido); esqueletos
de siloxano, esqueletos de sulfuro, sulfóxido y sulfona; esqueletos
de formacetilo y tioformacetilo; esqueletos que contienen alqueno;
esqueletos de sulfamato; esqueletos de metilenimino y
metilenhidrazino; esqueletos de sulfonato y sulfonamida; esqueletos
de amida; y otros que presentan componentes mixtos de N, O, S y
CH_{2}.
Las formas de realización más preferidas de la
presente invención son oligonucleótidos con esqueletos de
fosforotioato y oligonucleósidos con esqueletos heteroatómicos, y
en particular
-CH_{2}-NH-O-CH_{2}-,
-CH_{2}-N(CH_{3})-O-CH_{2}-
[conocido como metileno (metilimino) o esqueleto MMI],
-CH_{2}-O-N(CH_{3})-CH_{2}-,
-CH_{2}-N(CH_{3})-N(CH_{3})-CH_{2}-
y
-O-N(CH_{3})-CH_{2}-CH_{2}-
[en el que el esqueleto nativo de fosfodiéster se representa como
-O-P-O-CH_{2}-].
También resultan preferidos los oligonucleótidos con estructuras de
esqueletos de morfolino.
Los oligonucleótidos modificados también pueden
contener uno o más restos de azúcar sustituidos. Los
oligonucleótidos preferidos comprenden uno de los grupos siguientes
en la posición 2': OH; F; O-, S-, o N-alquilo; O-,
S-, o N-alquenilo; O-, S- o
N-alquinilo; o
O-alquilo-O-alquilo,
en los que el alquilo, alquenilo y alquinilo pueden ser alquilo
sustituido o no sustituido C_{1} a C_{10} o alquenilo y
alquinilo C_{2} a C_{10}. Son particularmente preferentes
O[(CH_{2})_{n}O]_{m}
CH_{3}, O(CH_{2})_{n}OCH_{3}, O(CH_{2})_{n}NH_{2}, O(CH_{2})_{n}CH_{3}, O (CH_{2})_{n}ONH_{2}, y O(CH_{2})_{n}ON[(CH_{2})_{n}CH_{3})]_{2}, en los que n y m están comprendidos entre 1 y aproximadamente 10. Otros oligonucleótidos preferidos comprenden uno de los grupos siguientes en la posición 2': alquilo inferior C_{1} a C_{10}, alquilo inferior substituido, alcarilo, aralquilo, O-alcarilo u O-aralquilo, SH, SCH_{3}, OCN, Cl, Br, CN, CF_{3}, OCF_{3}, SOCH_{3}, SO_{2}CH_{3}, ONO_{2}, NO_{2}, N_{3}, NH_{2}, heterocicloalquilo, heterocicloalcarilo, aminoalquilamino, polialquilamino, sililo substituido, un grupo separador de ARN, un grupo reportero, un intercalador, un grupo para mejorar las propiedades farmacocinéticas de un oligonucleótido, o un grupo para mejorar las propiedades farmacodinámicas de un oligonucleótido, y otros substituyentes con propiedades similares. Una modificación preferida incluye 2'-metoxietoxi (2'-O-CH_{2}CH_{2}OCH_{3}, también conocido como 2'-O-(2-metoxietil) o 2'-MOE) (Martin y otros, Helv. Chim. Acta, 1995, 78, 486-504), es decir, un grupo alcoxialcoxi. Otra modificación preferida incluye 2'-dimetilaminooxietoxi, es decir, un grupo O(CH_{2})_{2}ON(CH_{3})_{2}, también conocido como 2'-DMAOE, tal como se describe en los ejemplos siguientes. Otras modificaciones preferidas incluyen 2'-metoxi(2'-O-CH_{3}), 2'-aminopropoxi(2'-OCH_{2}CH_{2}CH_{2}NH_{2}) y 2'-fluoro (2'-F). También se pueden llevar a cabo modificaciones similares en otras posiciones sobre el oligonucleótido, particularmente la posición 3' del azúcar del nucleótido terminal 3' o en oligonucleótidos enlazados 2'-5' y la posición 5' del nucleótido terminal 5'. Los oligonucleótidos también pueden presentar miméticos de azúcar, tales como restos ciclobutilo en lugar del azúcar de pentofuranosilo. Los oligonucleótidos también pueden incluir modificaciones o sustituciones de bases nucleicas (frecuentemente designadas simplemente "bases" en la técnica). Tal como se utilizan en la presente memoria, las expresiones bases nucleicas "no modificadas" o "naturales" incluyen las bases de purina adenina (A) y guanina (G), y las bases de pirimidina timina (T), citocinas (C) y uracilo (U). Las bases nucleicas modificadas incluyen otras bases nucleicas sintéticas y naturales, tales como 5-metilcitosina (5-Me-C), 5-hidroximetilcitosina, xantina, hipoxantina, 2-aminoadenina, 6-metil y otros derivados alquílicos de adenina y guanina, 2-propil y otros derivados alquílicos de adenina y guanina, 2-tiouracilo, 2-tiotimina y 2-tiocitosina, 5-halouracilo y citosina, 5-propinil uracilo y citosina, 6-azo uracilo, citosina y timina, 5-uracilo (pseudouracilo), 4-tiouracilo, 8-halo, 8-amino, 8-tiol, 8-tioalquil, 8-hidroxil y otras adeninas y guaninas 8-sustituidas, 5-halo, particularmente 5-bromo, 5-trifluorometil y otros uracilos y citosinas 5-sustituidos, 7-metilguanina y 7-metiladenina, 8-azaguanina y 8-azaadenina, 7-deazaguanina y 7-deazaadenina y 3-deazaguanina y 3-deazaadenina. Determinadas bases nucleicas son particularmente útiles con el fin de aumentar la afinidad de enlace de los compuestos oligoméricos según la presente invención. Dichas bases nucleicas incluyen pirimidinas 5-sustituidas, 6-azapirimidinas y purinas N-2, N-6 y O-6 substituidas, incluyendo 2-aminopropiladenina, 5-propiniluracilo y 5-propinilcitosina. Se ha puesto de manifiesto que las sustituciones de 5-metilcitosina aumentan la estabilidad de duplex de ácido nucleico en 0,6-1,2ºC, y constituyen actualmente sustituciones de bases preferidas, aún más particularmente cuando se combinan con modificaciones de azúcar de 2'-O-metoxietilo.
CH_{3}, O(CH_{2})_{n}OCH_{3}, O(CH_{2})_{n}NH_{2}, O(CH_{2})_{n}CH_{3}, O (CH_{2})_{n}ONH_{2}, y O(CH_{2})_{n}ON[(CH_{2})_{n}CH_{3})]_{2}, en los que n y m están comprendidos entre 1 y aproximadamente 10. Otros oligonucleótidos preferidos comprenden uno de los grupos siguientes en la posición 2': alquilo inferior C_{1} a C_{10}, alquilo inferior substituido, alcarilo, aralquilo, O-alcarilo u O-aralquilo, SH, SCH_{3}, OCN, Cl, Br, CN, CF_{3}, OCF_{3}, SOCH_{3}, SO_{2}CH_{3}, ONO_{2}, NO_{2}, N_{3}, NH_{2}, heterocicloalquilo, heterocicloalcarilo, aminoalquilamino, polialquilamino, sililo substituido, un grupo separador de ARN, un grupo reportero, un intercalador, un grupo para mejorar las propiedades farmacocinéticas de un oligonucleótido, o un grupo para mejorar las propiedades farmacodinámicas de un oligonucleótido, y otros substituyentes con propiedades similares. Una modificación preferida incluye 2'-metoxietoxi (2'-O-CH_{2}CH_{2}OCH_{3}, también conocido como 2'-O-(2-metoxietil) o 2'-MOE) (Martin y otros, Helv. Chim. Acta, 1995, 78, 486-504), es decir, un grupo alcoxialcoxi. Otra modificación preferida incluye 2'-dimetilaminooxietoxi, es decir, un grupo O(CH_{2})_{2}ON(CH_{3})_{2}, también conocido como 2'-DMAOE, tal como se describe en los ejemplos siguientes. Otras modificaciones preferidas incluyen 2'-metoxi(2'-O-CH_{3}), 2'-aminopropoxi(2'-OCH_{2}CH_{2}CH_{2}NH_{2}) y 2'-fluoro (2'-F). También se pueden llevar a cabo modificaciones similares en otras posiciones sobre el oligonucleótido, particularmente la posición 3' del azúcar del nucleótido terminal 3' o en oligonucleótidos enlazados 2'-5' y la posición 5' del nucleótido terminal 5'. Los oligonucleótidos también pueden presentar miméticos de azúcar, tales como restos ciclobutilo en lugar del azúcar de pentofuranosilo. Los oligonucleótidos también pueden incluir modificaciones o sustituciones de bases nucleicas (frecuentemente designadas simplemente "bases" en la técnica). Tal como se utilizan en la presente memoria, las expresiones bases nucleicas "no modificadas" o "naturales" incluyen las bases de purina adenina (A) y guanina (G), y las bases de pirimidina timina (T), citocinas (C) y uracilo (U). Las bases nucleicas modificadas incluyen otras bases nucleicas sintéticas y naturales, tales como 5-metilcitosina (5-Me-C), 5-hidroximetilcitosina, xantina, hipoxantina, 2-aminoadenina, 6-metil y otros derivados alquílicos de adenina y guanina, 2-propil y otros derivados alquílicos de adenina y guanina, 2-tiouracilo, 2-tiotimina y 2-tiocitosina, 5-halouracilo y citosina, 5-propinil uracilo y citosina, 6-azo uracilo, citosina y timina, 5-uracilo (pseudouracilo), 4-tiouracilo, 8-halo, 8-amino, 8-tiol, 8-tioalquil, 8-hidroxil y otras adeninas y guaninas 8-sustituidas, 5-halo, particularmente 5-bromo, 5-trifluorometil y otros uracilos y citosinas 5-sustituidos, 7-metilguanina y 7-metiladenina, 8-azaguanina y 8-azaadenina, 7-deazaguanina y 7-deazaadenina y 3-deazaguanina y 3-deazaadenina. Determinadas bases nucleicas son particularmente útiles con el fin de aumentar la afinidad de enlace de los compuestos oligoméricos según la presente invención. Dichas bases nucleicas incluyen pirimidinas 5-sustituidas, 6-azapirimidinas y purinas N-2, N-6 y O-6 substituidas, incluyendo 2-aminopropiladenina, 5-propiniluracilo y 5-propinilcitosina. Se ha puesto de manifiesto que las sustituciones de 5-metilcitosina aumentan la estabilidad de duplex de ácido nucleico en 0,6-1,2ºC, y constituyen actualmente sustituciones de bases preferidas, aún más particularmente cuando se combinan con modificaciones de azúcar de 2'-O-metoxietilo.
Otra modificación de los oligonucleótidos según
la presente invención implica enlazar químicamente al
oligonucleótido uno o más restos o conjugados que mejoran la
actividad, la distribución celular o la absorción celular del
oligonucleótido. Dichos grupos incluyen, sin limitarse a los mismos,
restos lipídicos, tales como un resto colesterol, ácido cólico, un
tioéter, por ejemplo,
hexil-S-tritiltiol, un
tiocolesterol, una cadena alifática, por ejemplo, residuos
dodecandiol o undecilo, un fosfolípido, por ejemplo,
dihexadecil-rac-glicerol o
1,2-di-O-hexadecil-rac-glicero-3-H-fosfonato
de trietilamonio, una cadena de poliamina o polietilenglicol, o
ácido adamantanoacético, un resto palmitilo, o un resto
octadecilamina o
hexilamino-carboniloxicolesterol.
No es necesario que todas las posiciones de un
determinado compuesto estén modificadas uniformemente, y de hecho
más de una de las modificaciones mencionadas anteriormente se pueden
incorporar en un compuesto individual o incluso en un nucleósido
individual dentro de un oligonucleótido. También se describen en la
presente memoria compuestos antisentido que son oligonucleótidos
quiméricos o "quimeras", que contienen dos o más regiones
químicamente distintas, cada una de ellas constituida, por lo menos
por una unidad monomérica, es decir, un nucleótido en el caso de un
compuesto oligonucleótido. Típicamente, estos oligonucleótidos
contienen, por lo menos, una región en la que el oligonucleótido se
modifica de tal modo que confiere al oligonucleótido una mayor
resistencia a la degradación por nucleasa, una mayor absorción
celular y/o una mayor afinidad de enlace para el ácido nucleico
diana. Una región adicional del oligonucleótido puede servir como
substrato para enzimas capaces de escindir híbridos ARN:ADN o
ARN:ARN. A título de ejemplo, la RNasa H es una endonucleasa
celular que extiende la hebra de ARN de un duplex ARN:ADN. En
consecuencia, la activación de la RNasa H resulta en la escisión
del ARN diana, incrementándose así en gran medida la eficacia de la
inhibición de oligonucleótido de expresión génica. En consecuencia,
a menudo se pueden obtener resultados comparables con
oligonucleótidos más cortos cuando se utilizan oligonucleótidos
quiméricos, en comparación con desoxioligonucleótidos de
fosforotioato que hibridizan la misma región diana. La escisión del
ARN diana se puede detectar rutinariamente mediante electroforesis
en gel y, si es necesario, técnicas asociadas de hibridización de
ácidos nucleicos conocidas en la técnica.
Los oligonucleótidos antisentido quiméricos se
pueden formar como estructuras compuestas de dos o más
oligonucleótidos, oligonucleótidos modificados, oligonucleósidos
y/o miméticos de oligonucleótido, tal como se ha descrito
anteriormente. Dichos compuestos también se han designado en la
técnica híbridos o gapmer.
El compuesto antisentido utilizado de acuerdo
con la presente invención se puede preparar conveniente y
rutinariamente mediante la técnica bien conocida de síntesis en
fase sólida. El equipo necesario para dicha síntesis está
comercializado por diversos suministradores, por ejemplo Applied
Biosystems (Foster City, CA). Se puede utilizar adicional o
alternativamente cualquier otro medio conocido en la técnica para
dicha síntesis. Es bien conocido el hecho de utilizar técnicas
similares para preparar oligonucleótidos tales como fosforotioatos y
derivados alquilados.
El compuesto antisentido según la presente
invención se sintetiza in vitro y no incluye composiciones
antisentido de origen biológico, o constructos de vectores
genéticos diseñados para dirigir la síntesis in vivo de
moléculas antisentido. El compuesto según la presente invención
también se puede mezclar, encapsular, conjugar o asociar de
cualquier otro modo con otras moléculas, estructuras moleculares o
mezclas de compuestos, tales como, por ejemplo, liposomas,
moléculas dirigidas a receptores, formulaciones orales, rectales,
tópicas u otras, con el fin de facilitar la ingestión, distribución
y/o absorción.
El compuesto antisentido según la presente
invención incluye sales farmacéuticamente aceptables, ésteres o
sales de dichos ésteres, o cualquier otro compuesto que, tras la
administración a un animal, incluyendo un humano, es capaz de
proporcionar (directa o indirectamente) el metabolito biológicamente
activo o un residuo del mismo. Correspondientemente, por ejemplo,
la presente memoria se refiere también a profármacos y sales
farmacéuticamente aceptables de los compuestos según la presente
invención, sales farmacéuticamente aceptables de dichos profármacos
y otros bioequivalentes.
El término "profármaco" se refiere a un
agente terapéutico que se prepara en una forma inactiva que se
convierte en forma activa (es decir, en un fármaco) dentro del
cuerpo o las células por la acción de enzimas endógenas u otras
sustancias químicas y/o condiciones. Particularmente, se preparan
versiones profármaco de los oligonucleótidos según la presente
invención como derivados SATO
[(S-acetil-2-tioetil)fosfato].
El término "sales farmacéuticamente
aceptables" se refiere a sales fisiológica y farmacéuticamente
aceptables de los compuestos según la presente invención, es decir,
sales que mantienen la actividad biológica deseada del compuesto
matriz y no le confieren efectos tóxicos no deseados.
Para los oligonucleótidos, los ejemplos
preferidos de sales farmacéuticamente aceptables incluyen, sin
limitarse a los mismos, (a) sales formadas con cationes tales como
sodio, potasio, amonio, magnesio, calcio, poliaminas tales como
espermina y espermidina, etc.; (b) sales de adición ácida formadas
con ácidos inorgánicos, por ejemplo, ácido clorhídrico, ácido
bromhídrico, ácido sulfúrico, ácido fosfórico, ácido nítrico y
similares; (c) sales formadas con ácidos orgánicos tales como, por
ejemplo, ácido acético, ácido oxálico, ácido tartárico, ácido
succínico, ácido maleico, ácido fumárico, ácido glucónico, ácido
cítrico, ácido málico, ácido ascórbico, ácido benzoico, ácido
tánico, ácido palmítico, ácido algínico, ácido poliglutámico, ácido
naftalensulfónico, ácido metansulfónico, ácido
p-toluensulfónico, ácido poligalacturónico, ácido
naftalendisulfónico, y similares; y (d) sales formadas a partir de
aniones elementales, tales como cloruro, bromuro y yoduro.
Los compuestos según la presente invención se
pueden utilizar en composiciones farmacéuticas añadiendo una
cantidad efectiva de un compuesto antisentido a un diluyente o
portador farmacéuticamente aceptable adecuado. La utilización de
los compuestos antisentido y procedimientos según la presente
invención también pueden resultar útiles profilácticamente, por
ejemplo, con el fin de prevenir o retrasar una infección, una
inflamación o la formación de un tumor, por ejemplo.
El compuesto antisentido según la presente
invención resulta útil para investigación y diagnóstico, dado que
dicho compuesto se hibridiza con ácidos nucleicos que codifican
HIF-1, permitiendo un diseño fácil de ensayo de
sandwich y otros ensayos con el fin de aprovechar este hecho. La
hibridización del oligonucleótido antisentido según la presente
invención con un ácido nucleico que codifica HIF-1
se puede detectar mediante medios conocidos en la técnica. Dichos
medios incluyen la conjugación de una enzima al oligonucleótido, la
radiomarcación del oligonucleótido o cualquier otro medio de
detección adecuado. También se puede preparar kits que utilicen
dichos medios de detección con el fin de detectar el nivel de
HIF-1 en una muestra.
La presente invención también incluye
composiciones y formulaciones farmacéuticas que incluyen el
compuesto antisentido según la presente invención. Las
composiciones farmacéuticas según la presente invención se pueden
administrar por diversas vías, en función de si se desea un
tratamiento local o sistémico, y de la zona que se pretende tratar.
La administración puede ser tópica (incluyendo administración
oftálmica y a membranas mucosas, incluyendo administración vaginal
y rectal), pulmonar, por ejemplo por inhalación o insuflación de
polvos o aerosoles (incluyendo administración mediante nebulizador,
intratraqueal, intranasal, epidérmica y transdérmica), oral o
parenteral. La administración parenteral incluye inyección o
infusión intravenosa, intraarterial, subcutánea, intraperitoneal o
intramuscular; o intracraneal, por ejemplo, administración
intratecal o intraventricular. Se considera que los
oligonucleótidos con, por lo menos, una modificación
2'-O-metoxietilo son
particularmente útiles para la administración
oral.
oral.
Las composiciones y formulaciones farmacéuticas
para la administración tópica pueden incluir parches transdérmicos,
pomadas, lociones, cremas, geles, gotas, supositorios, aerosoles,
líquidos y polvos. Pueden ser necesarios o deseables portadores
farmacéuticos convencionales, bases acuosas, pulverulentas o
aceitosas, espesantes y similares.
Las composiciones y formulaciones para la
administración oral incluyen polvos o gránulos, suspensiones o
soluciones en agua o medios no acuosos, cápsulas, bolsitas o
comprimidos. Pueden resultar deseables espesantes, agentes
aromatizantes, diluyentes, emulsionantes, dispersantes o
aglutinantes.
Las composiciones y formulaciones para la
administración parenteral, intratecal o intraventricular pueden
incluir soluciones acuosas estériles que también pueden contener
tampones, diluyentes y otros aditivos adecuados, como por ejemplo,
aunque sin limitarse a los mismos, mejoradores de la penetración,
compuestos portadores y otros portadores o excipientes
farmacéuticamente aceptables.
Las composiciones farmacéuticas según la
presente invención incluyen, sin limitarse a las mismas, soluciones,
emulsiones y formulaciones que contienen liposomas. Dichas
composiciones se pueden generar a partir de una gran variedad de
componentes que incluyen, sin limitarse a los mismos, líquidos
preformados, sólidos autoemulsionantes y semisólidos
autoemulsionantes
\vskip1.000000\baselineskip
Los siguientes ejemplos ilustran la práctica de
diversos aspectos de la presente invención. Dichos ejemplos no
pretenden limitar la invención ni las reivindicaciones
siguientes.
\vskip1.000000\baselineskip
Se obtuvieron células cancerosas utilizadas para
determinar el efecto de compuestos oligonucleótidos a partir de las
siguientes fuentes: Ovcar-3 humano (ovario),
MCF-7 (pecho, dependiente de hormonas), HeLa
(cérvix), PC3 (próstata), HepG2 (hígado), y A549 (pulmón),
HT-29 (colon), PANC-1 (páncreas),
Caki-1 (riñón) a través de la American Type Culture
Collection (ATCC) (Manassas, VA); U251 (cerebro), a través del banco
Riken Cell (Japón); MKN-45 (estómago) a través de
la colección alemana de microorganismos y cultivos celulares (DSMZ)
(Alemania); UMRC2 (riñón) y Lox IMVI (melanoma) a través del
Instituto Nacional del Cáncer de los EE.UU. (Betesda, MD). Todas
las líneas celulares, excepto UMRC2, Caki-1 y
PANC-1, se cultivaron en medio RPMI1640 (Invitrogen,
Carlsbad, CA) suplementado con 10% de suero bovino fetal
("FBS"), 1 mM de piruvato de sodio, 10 mM de HEPES y 100 U/ml
de penicilina y 100 \mug/ml de estreptomicina
("P/S"). Las células UMRC2, Caki-1 y
PANC-1 se mantuvieron en medio Eagle modificado por
Dulbecco ("DMEM", Invitrogen) suplementado con 10% de FBS,
P/S, 10 mM de HEPES y 2 mM de L-glutamina. Todas las
células se incubaron a 37ºC bajo 5% de CO_{2} humidificado.
\vskip1.000000\baselineskip
Diversas secuencias de nucleótidos que se
encuentran en la región de codificación genética de
HIF-1\alpha humano conocida como marco abierto de
lectura ("ORF") y región 3' no traducida ("3' UTR") se
seleccionaron como dianas y se sintetizaron los correspondientes
oligonucleótidos complementarios. El esqueleto de cada
oligonucleótido se modificó durante la síntesis con el fin de
introducir enlaces fosforotioato entre nucleótidos, excepto en los
extremos 3' y 5', de tal modo que se obtuvo un oligonucleótido
antisentido.
Los oligonucleótidos localizados en la región de
codificación de HIF-1\alpha se sintetizaron
utilizando un sintetizador 8909 Expedito ADN de Applied Biosystems,
Foster City, CA ("ABI"). La síntesis de fosforotioatos se
llevó a cabo del mismo modo que para los correspondientes
oligonucleótidos fosfodiéster, excepto que el recipiente estándar
de oxidación se sustituyó por 0,2 M de
3H-1,2-benzoditiol-3-ona
1,1-dióxido en acetonitrilo para la tiación
escalonada de los enlaces fosfito. Tras la escisión de la columna de
vidrio de poro controlado y el desbloqueo en hidróxido de amonio
concentrado, el compuesto oligonucleótido se calentó en presencia de
hidróxido de amonio a 55ºC durante una noche. El sobrenadante se
transfirió a un tubo nuevo y el hidróxido de amonio se evaporó
mediante Speedvac plus y UVS400 Universal Vacuum System (Thermo
Savant, Holbrook, NY). El oligonucleótido se precipitó con 75 mM de
NaOAc, pH 7,2 y 2,5 volúmenes de alcohol etílico, y se lavó una vez
con alcohol etílico. El oligonucleótido se disolvió en agua y la
concentración de oligonucleótidos se midió mediante un
espectrofotómetro de UV.
\vskip1.000000\baselineskip
El día antes de la transfección, las células se
tripsinizaron, se contaron y se colocaron en una placa. En placas
de 6 pocillos, en cada pocillo se colocaron 2,5 x 10^{5} células
de tal modo que alcanzaran un 50-90% de confluencia
el día de la transfección. Todos los reactivos y medios utilizados
para el experimento de transfección se obtuvieron a través de
Invitrogen (Carlsbad, CA). Se prepararon las siguientes soluciones
en tubos estériles: Solución A: para cada transfección, se incubó
una mezcla de 2 \mul (0,5 \mug) de ADN, 100 \mul de medio
libre de suero ("Opti-MEM") y 3 \mul de
reactivo PLUS a temperatura ambiente durante 15 minutos. Solución
B: para cada transfección, una mezcla de 2,5 \mul de reactivo
Lipofectamina y 100 \mul de medio libre de suero
(Opti-MEM). Las soluciones A y B se combinaron e
incubaron a temperatura ambiente durante 15 minutos. Para la
transfección, las células se lavaron una vez con 2 ml de medio libre
de suero o PBS y se añadieron 800 \mul de medio libre de suero
(Opti-MEM) a cada pocillo. La solución combinada de
A y B se añadió a cada pocillo y se mezcló suavemente. A
continuación, las células se incubaron durante 3 horas a 37ºC, el
medio se sustituyó por medio normal y se incubó durante el tiempo
indicado. Para el protocolo estándar LIPOFECTAMINA 2000, que se
utilizó para RT-PCR y experimentos de citotoxicidad,
las células se colocaron en placas de 96 pocillos el día antes de
la transfección en 100 \mul de medio de cultivo. Para cada
pocillo, se diluyó una muestra de oligonucleótido en 25 \mul de
medio de suero reducido OPTI-MEM. Separadamente, se
diluyó el reactivo LIPOFECTAMINA 2000 (1:50) en 25 \mul de
OPTI-MEM durante 5 minutos a temperatura ambiente.
El oligonucleótido y el reactivo se mezclaron e incubaron a
temperatura ambiente durante 20 minutos con el fin de permitir la
formación de complejo, y a continuación dicho complejo se añadió
directamente a las células en su medio de cultivo, y se mezcló
suavemente. A continuación, las células se incubaron durante 4 horas
a 37ºC, el medio se sustituyó por medio normal y se incubó durante
el tiempo indicado.
\vskip1.000000\baselineskip
A continuación, se analizó la capacidad de los
oligonucleótidos antisentido de regular a la baja, o inhibir, la
expresión de ARNm que codifica HIF-1\alpha. El
nivel de expresión de ARNm de HIF-1\alpha en
células transfectadas con los oligonucleótidos antisentido se midió
por análisis RT-PCR. Las muestras se extrajeron 2
horas tras la transfección (cambio de medio), el ARN se aisló y se
sometió a análisis RT-PCR.
Las células UMRC2 (2,5 x 10^{5} células por
pocillo) en una placa de 6 pocillos se transfectaron con los
oligonucleótidos experimentales, y las células transfectadas se
utilizaron para aislar el ARN total. Se aisló el ARN total
utilizando un kit ARN-STAT
(TEL-TEST, Inc., Friendswood, TX), según el manual
del fabricante [véase también Chomczynski, P. y Sacchi, N en Anal.
Biochem. 162: 156-159 (1987)]. Brevemente, se
extrajeron los medios de las dos placas de 6 pocillos y se
añadieron 0,5 ml de solución ARN-START y se mezcló
pipeteando diversas veces, y se transfirió a un tubo Eppendorf. Se
añadieron 0,1 ml de cloroformo al tubo, y dicho tubo se agitó
enérgicamente durante 15 segundos, y a continuación se incubó
durante 3 minutos a temperatura ambiente antes de la centrifugación
a 14.000 rpm durante 15 minutos a 4ºC. La capa superior se
transfirió a un tubo nuevo y se añadieron 0,3 ml de isopropanol, y
se incubó durante 10 minutos a temperatura ambiente. A continuación,
el precipitado de ARN se centrifugó a 14.000 rpm durante 10
minutos. La lenteja resultante se lavó con etanol al 70%, se secó
brevemente y se reconstituyó con 20 \mul de agua. La concentración
de ARN se determinó mediante un espectrofotómetro. Se llevó a cabo
una reacción a temperatura ambiente utilizando un kit enzimático
M-MLV (Invitrogen). Se utilizaron 5 \mug de ARN
total para sintetizar ADNc en 20 \mul de reacción a temperatura
ambiente. Se sintetizó ADNc de primera hebra incubando ARN total,
mezcla de oligo dT (0,5 mg) y dNTP (0,5 mM) a 65ºC durante 5
minutos y enfriando rápidamente en hielo. Se añadieron tampón de
primera hebra, 7,4 mM de DTT y 1 \mul de M-MLV
transcriptasa inversa (200 unidades) a la mezcla de reacción
anterior y se incubó a 37ºC durante 50 minutos, y la inactivación
enzimática se prosiguió a 70ºC durante 15 minutos. El ADNc de
HIF-1 sintetizado por reacción a temperatura
ambiente se sintetizó por PCR utilizando mezcla Sapphire RCR
(SuperBio Inc., Seúl, Corea) con primers apropiados. Para la
detección de ARNm de HIF-1\alpha, los primers 5'
GCACAGGCCACATTCACG 3' (SEC ID nº 5) y 5' TGAAGATTCAACCGGTTTAAGGA 3'
(Seq. Id No. 6). Se utilizó beta-actina como
control PCR interno. Los primers para beta-actina
fueron 5' CCCATGCCATCCTGCGTCTG 3' (SEC ID nº 7) y 5'
ACGGAGTACTTGCGCTCAG 3' (SEC ID nº 8). Los productos PCR se
analizaron en 1,5% de gel de agarosa por electroforesis.
Inicialmente, se analizaron un total de 124
oligonucleótidos, y los resultados de los cuatro preferidos se
muestran en la siguiente tabla 1. Cada oligonucleótido se analizó de
nuevo con el fin de confirmar la regulación a la baja del nivel de
expresión de ARNm. Cada reacción se llevó a cabo por duplicado.
\vskip1.000000\baselineskip
RX-0047,
RX-0073, RX-0149 y
RX-0158 son nuevas secuencias diseñadas por los
inventores. Dichas secuencias fueron seleccionadas como
representativas de dos regiones que se encuentran en las regiones de
referencia, 3' UTR y ORF del gen HIF-1\alpha, que
exhiben ambas el mayor % de inhibición para esa región de acuerdo
con el ensayo utilizado en esa referencia. Todas las nuevas
secuencias exhibieron un % de inhibición mejorado con respecto a la
referencia, utilizando el ensayo descrito en el presente documento.
Sin embargo, se puso de manifiesto que el % de inhibición no se
correlacionaba con la citotoxicidad, tal como se describe en el
ejemplo 6. A continuación, dos oligonucleótidos que exhibieron un %
de inhibición de expresión de ARNm de HIF-1 y
citotoxicidad en células UMRC2 se seleccionaron para llevar a cabo
ensayos en otras 12 líneas celulares cancerosas. En la siguiente
tabla 2 se muestra una lista de los nucleótidos sometidos
ensayo.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
La figura 1 muestra la regulación a la baja del
nivel de ARNm de HIF-1 en 13 líneas celulares
cancerosas (UMRC2, OVCAR-3, MKN-45,
A549, PC3, U251, Lox IMVI, HeLa, HepG2, HT-29,
Caki-1, PANC-1 y
MCF-7) tras la transfección con 0,3 \muM de
RX-0047 y RX-0149. Se observó una
elevada regulación a la baja del nivel de HIF-1 en
las líneas celulares UMRC2, PANC-1,
OVCAR-3, MCF-7, Lox IMVI, A549 y
PC3, una regulación a la baja moderada del nivel en las células
HT-29 y Caki-1, y una baja
regulación a la baja del nivel en HeLa, HepG2,
MKN-45, y U251. Tal como se muestra en la figura 1,
el nivel de regulación a la baja de la expresión de ARNm de
HIF-1 por RX-0047 y
RX-0149 fue similar, excepto que las células
tratadas con RX-0047 mostraron un nivel ligeramente
más alto de regulación a la baja que las tratadas con
RX-0149 en algunas líneas celulares.
\vskip1.000000\baselineskip
Se transfectaron diversas líneas celulares
cancerosas tal como se ha descrito anteriormente en el ejemplo 3,
con los oligonucleótidos preferidos RX-0047 y
RX-0149 a una concentración de 0,3 \muM. Las
células se trataron con un quelante de hierro, deferroxiamina, a
100 \muM de concentración final, 6 horas antes de la
postransfección de 24 horas. Para la preparación de extracto
nuclear, se utilizó el siguiente procedimiento. Para un plato de 10
cm, las células se lavaron suavemente con PBS gélido que contenía
0,1 mM de NaVO_{4} (2 x 6 ml), se resuspendió con 1 ml de PBS
gélido con 0,1 mM de NaVO_{4} y se centrifugó a 2.000 rpm durante
5 minutos. La lenteja se resuspendió en 0,3-0,5 ml
de tampón CE, pH 7,6 (10 mM de HEPES, 60 mM de KCl, 1 mM de EDTA, 1
mM de DTT, 1 mM de PMSF, 1x cóctel inhibidor de proteasa y 0,1 mM de
NaVO_{4}) con 0,5% de NP40 y las células se dejaron hinchar sobre
hielo durante 5 minutos. La preparación se centrifugó a 2.000 rpm
durante 5 minutos. El extracto citoplásmico se extrajo a partir de
la lenteja y se transfirió a un tubo nuevo. Los núcleos se lavaron
suavemente con 0,5 ml de tampón CE sin NP40. Los núcleos se
centrifugaron, como anteriormente, a 2.000 rpm durante 5 minutos.
Se añadieron 50 \mul de tampón NE, pH 8,0 (20 mM de
Tris-HCl, 420 mM de NaCl, 1,5 mM de MgCl_{2}, 0,2
mM de EDTA, 1 mM de PMSF, 25% de glicerol, 0,1 mM de NaVO_{4}, y
1x cóctel inhibidor de proteasa) a la lenteja nuclear y se
homogeneizó por agitación con el fin de resuspender la lenteja. El
extracto se incubó en hielo durante 40 minutos con una
homogeneización por agitación periódica con el fin de resuspender
la lenteja y las fracciones CE y NE se centrifugaron a velocidad
máxima durante 15 minutos con el fin de convertir en lenteja todos
los núcleos. El sobrenadante se transfirió a un tubo nuevo (fracción
nuclear soluble) y se almacenó a -70ºC. Se utilizó reactivo de
ensayo proteínico BCA (Pierce Biotechnology, Rockford, IL) con el
fin de medir la concentración de proteína. Los extractos celulares
crudos se utilizaron para determinar la expresión de proteína
HIF-1 mediante SDS-PAGE y
subsiguiente análisis Western utilizando un anticuerpo
anti-HIF-1 (Transduction Labs,
Lexington, KY). Se utilizó anticuerpo
anti-beta-actina (Santa Cruz
Biotechnology) como control interno. Los resultados se muestran en
la figura 2. Rx-0047 y RX-0149
demostraron inhibición de la expresión de proteína
HIF-1 en un mayor o menor grado en todas las líneas
celulares.
\vskip1.000000\baselineskip
Se utilizaron líneas celulares cancerosas
humanas con el fin de analizar la citotoxicidad celular de
oligonucleótidos experimentales. Se utilizó el procedimiento de
sulforhodamina B ("SRB") [Skehan y otros, J. National Cancer
Institute, 82: 1107-1112 (1990)] para determinar la
supervivencia celular tras la transfección de oligonucleótidos
RX.
Las células se dispusieron en una placa de 96
pocillos y se transfectaron con los oligonucleótidos al día
siguiente. Tras un período de 72 horas de incubación, las células
supervivientes se tiñeron con sulforhodamina B y se midieron
utilizando un lector de microplaca. Brevemente,
1.000-10.000 células se colocaron en cada pocillo
en una placa de 96 pocillos y se transfectaron con oligómeros
experimentales utilizando reactivo lipofectamina 2000 (Invitrogen).
Tras 4 horas de incubación, se eliminó el agente de transfección y
se añadieron los medios frescos a cada pocillo. Tras 72 horas de
incubación, se extrajeron los medios. Las células se fijaron con
10% de ácido tricloroacético ("TCA"), se incubaron durante 1
hora a 4ºC y se lavaron 4 veces con agua corriente. A continuación,
las células se tiñeron con 0,4% de sulforhodamina B en 1% de ácido
acético durante 30 minutos, se lavaron 4 veces con 1% de ácido
acético y se secaron en aire de nuevo. Tras 5 minutos de agitación
en solución 10 mM Tris, se llevó a cabo una lectura de densidad
óptica de las muestras a 530 nm utilizando un lector Benchmark Plus
Microplate (Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA).
Los compuestos experimentales que mostraban
regulación a la baja de ARNm de HIF-1 se utilizaron
con el fin de analizar su efecto sobre la viabilidad celular de
UMRC2. Se utilizaron los siguientes compuestos oligo,
RX-0047, RX-0073,
RX-0149 y RX-0158, para el ensayo de
citotoxicidad. RX-0047 y RX-0149
mostraron el efecto citotóxico celular más potente en comparación
con los otros oligonucleótidos analizados. De forma interesante,
RX-0118 y RX-0121, nuevos
oligonucleótidos que habían exhibido un 74 y un 45% de inhibición de
ARN respectivamente, no mostraron tanta citotoxicidad como
RX-0047 y RX-0149. En consecuencia,
el ensayo para la inhibición de ARNm no se correlacionó con la
citotoxicidad.
Se analizó en los dos mejores candidatos a
partir de los estudios de inhibición de ARNm,
RX-0047 y RX-0149, la citotoxicidad
frente a diversas líneas celulares cancerosas.
RX-0047 redujo la viabilidad celular en las
siguientes líneas celulares cancerosas humanas: PC3 (próstata), U251
(cerebro), HeLa (cérvix), OVCAR-3 (ovario), Lox
IMVI (melanoma), HepG2 (hígado), MCF-7 (pecho),
UMRC2 (riñón), MKN-45 (estómago),
PANC-1 (páncreas), HT-29 (colon),
Caki-1 (riñón) y A549 (pulmón). La citotoxicidad
celular de RX-0047 aumentó con la concentración de
RX-0047 en diferentes líneas celulares analizadas.
0,1 \muM de RX-0047 provocó más del 50% de muerte
celular en las 13 líneas celulares analizadas. Se obtuvieron
resultados similares para RX-0149. Nuevamente, se
puso de manifiesto citotoxicidad de RX-0149 en todas
las líneas celulares, y la misma aumentó con la concentración en
diversos grados entre las diferentes líneas celulares.
0,1 \muM de RX-0149 en PC3, U251, HeLa,
OVCAR-3, Lox IMVI, MCF-7,
MKN-45, A549, Caki-1 y UMRC2
provocaron más del 50% de muerte celular. Pero más del 50% de
células en PANC-1, HT-29 y HepG2
sobrevivieron a 0,1 \muM.
\vskip1.000000\baselineskip
Se analizaron los oligonucleótidos
experimentales para la dosificación eficaz relativa. Se
transfectaron trece líneas celulares cancerosas diferentes con
RX-0047 ó RX-0149 a concentraciones
comprendidas entre 0,01 \muM y 1 \muM, y tras 72 horas
postransfección, las células se tiñeron con sulforhodamina B y el
número de células supervivientes se contó utilizando un lector de
microplaca Bio-Rad (Bio-Rad
Laboratories). El valor de IC_{50}, o la concentración de fármaco
necesaria para eliminar la mitad de las células, se calculó
utilizando el software KaleidaGraph (Synergy Software, Reading,
PA). Los resultados se indican en la siguiente tabla 3.
\vskip1.000000\baselineskip
A efectos comparativos, se indica que la
IC_{50} para UMRC2 es 8 nM para RX-0047 y 17 nM
RX-0149. Se observaron niveles similares de efecto
citotóxico en las líneas celulares U251, OVCAR-3, y
A549.
\vskip1.000000\baselineskip
Con el fin de determinar si el esqueleto
20-ímero completo de RX-0047 y
RX-0149 es necesario para regular a la baja la
expresión de ARNm de HIF-1, se sintetizaron
oligonucleótidos 18-, 16-, 14-, y 10-ímeros y se analizaron sus
efectos sobre la expresión de ARNm y su citotoxicidad. Los datos de
análisis RT-PCR indicaron que la versión 18-ímero
de RX-0047 mostraba cierta inhibición de la
expresión de ARNm de HIF-1. En cambio, las
versiones 16- y 14- y 10-ímero mostraron una inhibición menos fuerte
de la expresión de ARNm de HIF-1. Este hecho
sugiere que la truncación de secuencia de RX-0047
hasta 16-, 14- y 10-ímero tuvo cierto efecto sobre la inhibición
deseada de expresión de ARNm de HIF-1. Para
RX-0149, las versiones 18- y 16-ímero de
RX-0149 mostraron una inhibición similar de la
expresión de ARNm de HIF-1 a la versión 20-ímero de
RX-0149. Sin embargo, cuando la secuencia se truncó
a las versiones 14-, y 10-ímero de RX-0149, la
inhibición se volvió insignificante. Este hecho indica que para
RX-0047, las versiones 18- y 16-ímero funcionaban
también tan eficientemente como la versión 20-ímero. Para
RX-0149, se requiere la secuencia de 20-ímero de
longitud completa con el fin de alcanzar la máxima inhibición de la
expresión de ARNm de HIF-1.
De acuerdo con los datos anteriores, los
inventores hemos descubierto que los oligómeros que comprenden 5 ó
10 nucleótidos corriente arriba y corriente abajo de la secuencia en
la que se derivó el 20-ímero de RX-0047 mostraron
una inhibición medible de la expresión de ARNm de
HIF-1.
La citotoxicidad se analizó utilizando los
mismos oligómeros, que comprendían 5 ó 10 nucleótidos corriente
arriba y corriente abajo de la secuencia en la que se derivó el
20-ímero de RX-0047 en la línea celular UMRC2. Los
4 oligómeros modificados mostraron efectos citotóxicos comparables
al 20-ímero de RX-0047, hecho consistente con los
datos de RT-PCR. Las versiones truncadas de
RX-0047 y RX-0149 descritas
anteriormente también mostraron un patrón similar de inhibición de
proliferación de células cancerosas, tal como se observó en el
análisis RT-PCR.
\vskip1.000000\baselineskip
Con el fin de observar la iniciación del
crecimiento de tumores utilizando uno de los compuestos inventados
en la presente invención, el RX-0047, en modelos
animales, se llevó a cabo un estudio de xenotransplante ex
vivo de ratones inmunodeficientes. La línea celular de cáncer de
pulmón humana A549 se cultivó en una mezcla 4:1 de medio Eagle
modificado por Dulbecco y medio 199 suplementado con 10% de suero de
ternera cósmica (HyClona, Logan, UT). Las células se mantuvieron a
37ºC bajo 5% de CO_{2}.
Se introdujo un gen marcador, luciferasa, en las
células tumorales. Se utilizaron los siguientes procedimientos. Se
infectaron las células con luciferasa utilizando un vector
lentiviral que contenía el gen de luciferasa y un marcador de
selección G418/neo. Las células se incubaron durante 24 horas en
presencia de sobrenadante viral. El medio se cambió tras la
infección, y la selección G418 se inició 3-4 días
tras la infección. Las células positivas a luciferasa se
confirmaron utilizando un luminómetro.
Los ratones inmunodeficientes (Nu/Nu; Harlan
Sprague Dawley, Inc., Indianapolis, IN) se mantuvieron en
condiciones libres de patógenos dentro del centro de recursos
animales (ARC) del University of Texas Southwestern Medical Center
y se trataron de acuerdo con las directrices de ARC y IACUC.
Para el modelo de xenotransplante de cáncer de
pulmón A549, se inyectaron células (4 x 10^{6} células)
subcutáneamente en los dos costados de cada ratón. Se administraron
los artículos de ensayo durante 14 días a través de un sistema de
bomba Alzet. Se implantaron bombas microosmóticas Alzet (Alza, Palo
Alto, CA) subcutáneamente (sc) para ratones de 10 g y por vía
intraperitoneal (IP) para ratones de 20 g. La velocidad de bombeo se
mantuvo a 0,25 \mul/h (0,05 \mul/h) con infusión continua
durante 14 días. Se utilizó técnica estéril durante el rellenado y
el manejo de la bomba y la implantación quirúrgica.
Para modelo de metástasis de cáncer de pulmón
A549, los ratones se irradiaron y se introdujeron 1 x 10^{6}
células por vía intravenosa a través de la vena de la cola. Se
obtuvieron imágenes de los animales utilizando bioluminiscencia
basada en luciferasa semanalmente. Los ratones fueron sacrificados
sobre la base de resultados negativos (tras 3-4
meses) o se obtuvieron imágenes de los mismos semanalmente hasta que
la masa tumoral sobrepasaba el 10% del peso corporal normal del
animal huésped (1-2 cm de diámetro para un ratón
adulto) según directrices de ARC/IACUC.
La tabla 4 muestra la medición de
bioluminiscencia basada en luciferasa como indicador del crecimiento
tumoral en el control y en ratones inmunodeficientes implantados sc
atímicos tratados con RX-0047 con xenotrasplantes
de carcinoma de pulmón humano A549. Una semana después del
tratamiento con RX-0047, se observó una reducción
de un tercio en el tamaño del tumor en comparación con los animales
de control. Dos semanas después del tratamiento con
RX-0047, se observó una reducción de una mitad en el
tamaño del tumor. Este hecho indica que el RX-0047
es un potente agente antitumoral en el modelo de xenotransplante
tumoral.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
En el modelo de metástasis A549, los animales se
trataron con dosis diarias IP de RX-0047 (60
mg/kg/día durante 9 días seguido de 30 mg/kg/día durante 5 días
adicionales). La toma de imágenes del tumor metastásico se lleva a
cabo 2 y 3 semanas tras una administración IP de 14 días de
RX-0047. Tal como se muestra en la tabla 5, 2
semanas tras el tratamiento con RX-0047, la
metástasis pulmonar no se detectó, mientras que dicha metástasis
pulmonar en el grupo de control sí se observó. Tres semanas tras el
tratamiento con RX-0047, la metástasis pulmonar
decreció en un factor de 60 con respecto al grupo de control. Este
hecho indica que el RX-0047 es potencialmente un
fuerte inhibidor de la metástasis pulmonar.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
<110> Yoon, Heejeong
\hskip1cm Ahn, Chang Ho
\hskip1cm Lee, Young Bok
\hskip1cm Mao, Lingjun
\hskip1cm Jiang, Xiaoming
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> oligonucleótido antisentido que
inhibe la expresión de HTF-1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> REX 7034
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 130
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> Versión de patente en 3.1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipttggacactg gtggctcatt
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligonucleótido antisentido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipaatgagccac cagtgtccaa
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgacttggaga tgttagctcc
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligonucleótido antisentido
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipggagctaaca tctccaagtc
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgcacaggcca cattcacg
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgaagattca accggtttaa gga
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcccatgccat cctgcgtctg
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipacggagtact tgcgctcag
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Oligonucleótido antisentido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipattgtgcaat tgtggctacc
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
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<213> secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligonucleótido antisentido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgtgatgatgt ggcactagta
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
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<211> 20
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<210> 130
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<211> 20
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<212> ADN
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<213> secuencia artificial
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<220>
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<223> oligonucleótido antisentido
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<400> 130
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\hskip-.1em\dddseqskipaacttcacaa tcataactgg
\hfill20
Claims (11)
1. Oligonucleótido que es la SEC ID nº 2,
dirigido a una molécula de ácido nucleico que codifica
HIF-1 humano, en el que dicho oligonucleótido
inhibe la expresión del HIF-1 humano.
2. Oligonucleótido según la reivindicación 1, en
el que el oligonucleótido es un oligonucleótido antisentido.
3. Oligonucleótido antisentido según la
reivindicación 2, que presenta por lo menos un enlace
internucleósido modificado que es un enlace fosforotioato.
4. Procedimiento de tratamiento de células o
tejidos humanos in vitro, que comprende poner en contacto
dichas células o tejidos con el oligonucleótido según la
reivindicación 1.
5. Procedimiento según la reivindicación 4, en
el que se inhibe la expresión de HIF-1.
6. Procedimiento de tratamiento de una célula
cancerosa in vitro que comprende la etapa que consiste en
introducir en la célula un oligonucleótido que es la SEC ID nº 2,
que hibrida el HIF-1 humano.
7. Procedimiento según la reivindicación 6, en
el que se induce la citotoxicidad.
8. Oligonucleótido según la reivindicación 1,
para su utilización en un procedimiento de tratamiento médico de un
humano o un animal mediante terapia.
9. Utilización de un compuesto según la
reivindicación 1 en la preparación de una composición para su
utilización en un procedimiento de tratamiento médico de un animal
o un humano mediante terapia.
10. Utilización según la reivindicación 9, en la
que el procedimiento de tratamiento es el tratamiento del
cáncer.
11. Oligonucleótido según la reivindicación 1,
para su utilización en el tratamiento del cáncer.
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