ES2323253A1 - Nuevos polienos amidados, procedimiento para su obtencion y aplicaciones. - Google Patents
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Abstract
Nuevos polienos amidados, procedimiento para su obtención y aplicaciones. Los nuevos polienos amidados responden a la fórmula (I), donde R es NH{sub,2} y R{sub,1} es alquilo C1-C3, y tienen actividad biocida frente a organismos que poseen membranas celulares que contienen ergosterol, por ejemplo, hongos o parásitos. Estos compuestos pueden ser obtenidos mediante un procedimiento que comprende cultivar un microorganismo productor bajo condiciones que permitan su producción.
Description
Nuevos polienos amidados, procedimiento para su
obtención y aplicaciones.
La invención se relaciona con nuevos polienos
amidados, un procedimiento para su obtención y aplicaciones, por
ejemplo, terapéuticas, agrícolas y agroalimentarias. La invención
también se relaciona con microorganismos recombinantes productores
de polienos amidados así como con vectores útiles para obtener
dichos microorganismos.
Las infecciones fúngicas representaban en el
pasado un lugar poco relevante dentro del panorama de las
enfermedades infecciosas. Sin embargo, ese panorama ha cambiado
radicalmente en los últimos veinte años. El aumento de los pacientes
inmunodeprimidos, los transplantes de médula y de órganos sólidos,
el mayor número de pacientes cancerosos, los tratamientos
quimioterápicos, la utilización de agentes inmunosupresores así
como de agentes antimicrobianos de amplio espectro y de otros
fármacos que alteran los mecanismos naturales de defensa, y la
epidemia del SIDA, han sido responsables de este cambio. La
infección nosocomial por especies fúngicas tiene cada vez mayor
relevancia y son también más numerosas las especies fúngicas que se
asocian a micosis profundas.
A pesar de la necesidad de disponer de fármacos
antifúngicos, el número de estos productos farmacéuticos en el
mercado para tratar infecciones sistémicas es peligrosamente bajo.
La mayoría de ellos, tales como los azoles y los polienos, entre los
que se encuentra la anfotericina B, tienen como diana la integridad
estructural de las membranas fúngicas, si bien, en los últimos
años, se han desarrollado fármacos antifúngicos (equinocandinas)
que tienen como diana componentes específicos de la pared
celular.
Los polienos son un grupo de macrólidos
policetónicos muy interesantes debido a su actividad antifúngica.
Estos compuestos contienen un anillo de macrolactona con numerosos
dobles enlaces conjugados, formando cromóforos con un espectro
característico en la zona del ultravioleta/visible; estas
características son las responsables de sus propiedades físicas y
químicas (gran absorción de luz, fotolabilidad y escasa solubilidad
en agua). A pesar de la importancia de algunos ejemplos tales como
la anfotericina B como fármacos antifúngicos, su mecanismo de
acción preciso no se entiende bien todavía; no obstante, la
actividad antifúngica parece deberse a interacciones entre las
moléculas de polieno y las membranas que contienen esterol. Esta
interacción proporciona un canal de iones y las membranas se hacen
permeables causando la destrucción de gradientes electroquímicos y
la consecuente muerte celular. Estos compuestos muestran una
afinidad significativamente mayor a las membranas que contienen
ergosterol (el principal esterol presente en las membranas de hongos
y parásitos como Trypanosoma y Leishmania) que a las
membranas que contienen colesterol (células de mamíferos). Sin
embargo, la interacción entre los polienos y las membranas que
contienen colesterol no es insignificante y causa efectos
secundarios, lo que unido a la baja solubilidad, hace que el
compuesto no sea totalmente satisfactorio para tratar infecciones
sistémicas fúngicas. A pesar de estas propiedades indeseables y los
efectos secundarios tóxicos de la anfotericina B, este antiguo
fármaco ha sido empleado durante más de 40 años y sigue siendo el
agente antifúngico preferido para tratar la mayoría de las
infecciones sistémicas; de hecho, se admite que no hay mejores
alternativas disponibles para luchar contra las enfermedades
fúngicas emergentes. Algunos de los efectos indeseables pueden
minimizarse mediante la liberación del fármaco en una formulación
liposomal; ésto reduce la toxicidad de la anfotericina B y ha
permitido su aplicación sistémica como antifúngico (micosis) y como
antiparasitario (e.g., frente a leishmaniasis y trypanosomiasis,
entre otros parásitos), organismos cuyas membranas celulares
contienen ergosterol (Berman et al., 1992, Antimicrob. Agents
Chemother 36:1978-1980; Herwaldt, (1999), The
Lancet. 354:1191-1199; Yardley et al., 1999,
Am. J. Trop. Med. Hyg. 61:163-197).
Por esta razón, el descubrimiento de nuevos
fármacos antifúngicos o la mejora de las propiedades farmacológicas
de los ya existentes constituye un reto apasionante. Con este
objetivo, y empleando aproximaciones racionales de modelos
moleculares, se han generado y ensayado varios derivados
semi-sintéticos de anfotericina B como fármacos
antifúngicos eficaces. Para efectuar las modificaciones
estructurales se han considerado, entre otros, dos blancos
principales: el grupo carboxílico de la cadena lateral y el grupo
amino del azúcar. Aunque algunos de estos derivados
semi-sintéticos todavía mostraban la misma
toxicidad, otros presentaban características farmacológicas
mejoradas comparadas con la molécula de anfotericina B: mayor
actividad antifúngica, mayor solubilidad en agua, mayor
especificidad por membranas que contienen ergosterol y menor
actividad hemolítica, lo que sugería una mayor especificidad por las
membranas que contienen ergosterol. Aunque la mayor actividad
antifúngica le confiere alguna ventaja a estos compuestos,
sorprendentemente estas modificaciones estructurales no están
comúnmente representadas dentro de los polienos naturales aislados
procedentes de microorganismos. De hecho, todos los polienos
descritos hasta la fecha como fármacos mejorados son derivados
semi-sintéticos, generados por síntesis orgánica en
lugar de por biotransformaciones.
Aunque se dispone de diversos agentes
antifúngicos no poliénicos, el uso de estos fármacos favorece la
selección y desarrollo de cepas resistentes a ellos que pueden
comprometer en un futuro la eficacia de esos compuestos para el
tratamiento antifúngico. Existe, por tanto, un interés generalizado
en la búsqueda de nuevos fármacos antifúngicos y en la mejora de
las propiedades farmacológicas de los ya existentes.
Los inventores de la invención han encontrado
que mediante la manipulación genética de Streptomyces
diastaticus var. 108, una cepa productora de dos antibióticos
macrólidos poliénicos (rimocidina y CE-108)
(Pérez-Zúñiga et al., (2004), J. Antibiot.
(Tokio) 57:197-204), por transformación con vectores
derivados de SCP2* que portan el gen de resistencia a eritromicina
(ermE) (Uchiyama et al., (1985), Gene
38:103-110) se obtienen además de los dos polienos
nativos, dos nuevos macrólidos poliénicos en el caldo de
fermentación de la cepa recombinante que, una vez caracterizados
químicamente, resultaron ser las amidas de los ácidos carboxílicos
de los polienos de los que proceden. La actividad biológica y
algunos ensayos de toxicidad in vitro mostraron que la
modificación química presente en los nuevos compuestos (amida en
lugar de ácido carboxílico) confiere propiedades biológicas
mejoradas comparadas con las que presentan los productos de los que
proceden.
Por tanto, en un aspecto, la invención se
relaciona con dos polienos amidados identificados más adelante en
esta descripción como rimocidina B (Ia) y CE-108B
(Ib); su obtención y aplicaciones constituyen aspectos adicionales
de esta invención.
Dichos compuestos tienen actividad biocida, que,
en particular, es más selectiva frente a organismos que tienen
membranas celulares que contienen ergosterol, bien hongos o
parásitos. Composiciones biocidas, por ejemplo, composiciones
farmacéuticas y/o composiciones antifúngicas para uso agrícola o
agroalimentario que contengan dichas amidas, constituyen un aspecto
adicional de esta invención. El empleo de dichos polienos amidados
en composiciones farmacéuticas con fines sanitarios para uso humano
o animal y/o composiciones antifúngicas de uso agrícola o
agroalimentario constituye otro aspecto de esta invención.
La invención se relaciona, en otro aspecto, con
un procedimiento para la producción de dichos polienos amidados que
comprende cultivar un microorganismo recombinante productor de
dichos compuestos bajo condiciones que permitan la producción de
dichos polienos amidados, y, si se desea, aislar y purificar dichos
compuestos. Ejemplos ilustrativos de dichos microorganismos
recombinantes incluyen Streptomyces diastaticus var.
108/784, Streptomyces diastaticus var. 108/743B y
Streptomyces diastaticus var.
108::PM1-500/743B (invención), los cuales
constituyen un aspecto adicional de esta invención así como el
empleo de éstos o similares microorganismos recombinantes en la
obtención de dichos polienos amidados y, opcionalmente, en la
obtención de mezclas de éstos con polienos que contienen un grupo
carboxilo.
La Figura 1 muestra una representación
esquemática de los mapas físicos de los plásmidos
recombinantes
pSM743B (gen rimA introducido en pIJ922) [Figura 1A] y pSM784 (gen ermE introducido en pIJ941) [Figura 1B]. En dichas Figuras 1A y 1B, xysAp: promotor xysA; rimA: PKS Tipo I involucrada en la ruta biosintética de CE-108 y rimocidina; Ti: terminador del gen de resistencia de metilenomicina; ermE, tsr y hyg: genes de resistencia a eritromicina, tiostrepton e higromicina, respectivamente; rimI*: rimI truncado en su N-terminal. La Figura 1C muestra el perfil cromatográfico (HPLC) del caldo de fermentación de la cepa modificada genéticamente Streptomyces diastaticus var. 108/743B. En dicha Figura 1C, los números 1-4 representan 1: CE-108B (Ib); 2: CE-108 (IIb); 3: rimocidina B (Ia); y 4: rimocidina (IIa).
pSM743B (gen rimA introducido en pIJ922) [Figura 1A] y pSM784 (gen ermE introducido en pIJ941) [Figura 1B]. En dichas Figuras 1A y 1B, xysAp: promotor xysA; rimA: PKS Tipo I involucrada en la ruta biosintética de CE-108 y rimocidina; Ti: terminador del gen de resistencia de metilenomicina; ermE, tsr y hyg: genes de resistencia a eritromicina, tiostrepton e higromicina, respectivamente; rimI*: rimI truncado en su N-terminal. La Figura 1C muestra el perfil cromatográfico (HPLC) del caldo de fermentación de la cepa modificada genéticamente Streptomyces diastaticus var. 108/743B. En dicha Figura 1C, los números 1-4 representan 1: CE-108B (Ib); 2: CE-108 (IIb); 3: rimocidina B (Ia); y 4: rimocidina (IIa).
La Figura 2 muestra la actividad antifúngica de
los cuatro tetraenos producidos por S. diastaticus var.
108/743B. En dicha figura A: rimocidina (IIa), B: rimocidina B
(Ia), C: CE-108 (IIb), D: CE-108B
(Ib). Los números que aparecen sobre cada uno de los antibiogramas
hacen referencia a las cantidades aplicadas de cada uno de los
polienos expresadas en nanomoles. Los organismos diana fueron:
P. chrysogenum, C. krusei, A. niger, C. albicans y C.
neoformans (véase la Tabla 1).
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siguiente)
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En un aspecto, la invención se relaciona con un
compuesto de fórmula (I)
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en
donde
R es NH_{2}; y
R_{1} es alquilo
C_{1}-C_{3},
o un isómero, sal, profármaco o
solvato del
mismo.
Los compuestos de la presente invención
representados por la fórmula (I) anteriormente descrita pueden
incluir isómeros, dependiendo de la presencia de enlaces múltiples
(por ejemplo, Z, E), incluyendo isómeros ópticos o enantiómeros,
dependiendo de la presencia de centros quirales. Los isómeros,
enantiómeros o diastereoisómeros individuales y las mezclas de los
mismos caen dentro del alcance de la presente invención. Los
enantiómeros o diastereoisómeros individuales, así como sus mezclas,
pueden separarse mediante técnicas convencionales.
Tal como aquí se utiliza, el término "sal"
incluye tanto sales farmacéuticamente aceptables, es decir, sales
del compuesto de fórmula (I) que pueden ser utilizadas en la
elaboración de un medicamento, como sales farmacéuticamente no
aceptables ya que éstas pueden ser útiles en la preparación de
sales farmacéuticamente aceptables. La naturaleza de la sal
farmacéuticamente aceptable no es critica siempre y cuando sea
farmacéuticamente aceptable. Entre las sales farmacéuticamente
aceptables de los compuestos de fórmula (I) se encuentran las sales
de adición de ácido, las cuales pueden obtenerse a partir de
ácidos, orgánicos o inorgánicos, por métodos convencionales bien
conocidos por los técnicos en la materia haciendo reaccionar el
ácido apropiado con el compuesto de fórmula (I) en la cantidad
estequiométrica adecuada. Ejemplos ilustrativos, no limitativos, de
ácidos que pueden utilizarse para la obtención de dichas sales de
adición de ácido incluyen ácidos orgánicos, por ejemplo, ácido
acético, ácido ascórbico, ácido cítrico, ácido fumárico, ácido
maleico, ácido metanosulfónico, ácido oxálico, ácido succínico,
ácido tartárico, ácido p-toluensulfónico, etc., o
inorgánicos, por ejemplo, ácido bromhídrico, ácido clorhídrico,
ácido fosfórico, ácido nítrico, ácido sulfúrico, etc.
Asimismo, dentro del alcance de esta invención
se encuentran las profármacos de los compuestos de fórmula (I). El
término "profármaco" tal como aquí se utiliza incluye a
cualquier compuesto derivado de un compuesto de fórmula (I), por
ejemplo, ésteres, incluyendo ésteres de ácidos carboxílicos,
ésteres de aminoácidos, ésteres de fosfato, ésteres de sulfonato de
sales metálicas, etc., carbamatos, amidas, etc., que, cuando se
administra a un individuo es capaz de proporcionar, directa o
indirectamente, dicho compuesto de fórmula (I) en dicho individuo.
Ventajosamente, dicho derivado es un compuesto que aumenta la
biodisponibilidad del compuesto de fórmula (I) cuando se administra
a un individuo o que potencia la liberación del compuesto de fórmula
(I) en un compartimento biológico. La naturaleza de dicho derivado
no es critica siempre y cuando pueda ser administrado a un
individuo y proporcione el compuesto de fórmula (I) en un
compartimento biológico de un individuo. La preparación de dicho
profármaco puede llevarse a cabo mediante métodos convencionales
conocidos por los expertos en la materia.
Los compuestos de la invención pueden estar en
forma cristalina como compuestos libres o como solvatos y se
pretende que ambas formas están dentro del alcance de la presente
invención. En este sentido, el término "solvato", tal como aquí
se utiliza, incluye tanto solvatos farmacéuticamente aceptables, es
decir, solvatos del compuesto de fórmula (I) que pueden ser
utilizados en la elaboración de un medicamento, como solvatos
farmacéuticamente no aceptables, los cuales pueden ser útiles en la
preparación de solvatos o sales farmacéuticamente aceptables. La
naturaleza del solvato farmacéuticamente aceptable no es critica
siempre y cuando sea farmacéuticamente aceptable. En una
realización particular, el solvato es un hidrato. Los solvatos
pueden obtenerse por métodos convencionales de solvatación bien
conocidos por los técnicos en la materia.
Para su aplicación en terapia, los compuestos de
fórmula (I), sus isómeros, sales, profármacos o solvatos, se
encontrarán, preferentemente, en una forma farmacéuticamente
aceptable o sustancialmente pura, es decir, que tiene un nivel de
pureza farmacéuticamente aceptable excluyendo los aditivos
farmacéuticos normales tales como diluyentes y portadores, y no
incluyendo material considerado tóxico a niveles de dosificación
normales. Los niveles de pureza para el principio activo son
preferiblemente superiores al 50%, más preferiblemente superiores al
70%, más preferiblemente superiores al 90%. En una realización
preferida, son superiores al 95% del compuesto de fórmula (I), o de
sus sales, solvatos o profármacos.
A menos que se indique lo contrario, los
compuestos de la invención también incluyen compuestos que difieren
sólo en la presencia de uno o más átomos isotópicamente
enriquecidos. Por ejemplo, compuestos que tienen dicha estructura, a
excepción de la sustitución de un hidrógeno por un deuterio o por
tritio, o la sustitución de un carbono por un carbono enriquecido
en ^{13}C o ^{14}C o un nitrógeno enriquecido en ^{15}N,
están dentro del alcance de esta
invención.
invención.
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En una realización particular, dicho compuesto
de fórmula (I) se selecciona del grupo formado por los compuestos
identificados en esta descripción como "rimocidina B", de
fórmula (Ia), y "CE-108B", de fórmula (Ib):
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sus isómeros, sales, profármacos o
solvatos.
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Estos dos nuevos polienos amidados [rimocidina B
(Ia) y CE-108B (Ib)] han sido denominados así
porque son las amidas correspondientes de los compuestos naturales
rimocidina (IIa) y CE-108 (IIb)
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La estructura química de dichos compuestos ha
sido caracterizada mediante diversas técnicas al igual que su
actividad biológica (por ejemplo, espectrometría, RMN,
antibiogramas, actividad hemolítica, etc). La sustitución del grupo
carboxilo libre, presente en el anillo de macrolactona de la
rimocidina y CE-108, por un grupo amida parece
determinar una mayor afinidad hacia membranas con ergosterol (tales
como, la de hongos y, otros organismos como los parásitos
Trypanosoma y Leishmania) que hacia membranas con
colesterol (presente en las células animales). Esta modificación
química incrementa la toxicidad selectiva de estos polienos hacia
hongos lo que constituye una clara ventaja de cara a su aplicación
clínica. De hecho, los ensayos de actividad fungicida (Figura 2) y
toxicidad frente a células animales (eritrocitos) (Tabla 3), revelan
una mayor toxicidad selectiva hacia los hongos que los tetraenos
parentales rimocidina y CE-108. Semejante
especificidad es aplicable a otros organismos con ergosterol en sus
membranas, tales como los parásitos Leishmania y
Trypanosoma.
Los compuestos de fórmula (I) tienen, en
general, actividad biocida, y, en particular, actividad biocida
frente a organismos que poseen una membrana celular que contiene
ergosterol, por lo que son potencialmente útiles como biocidas. Tal
como se utiliza en esta descripción, un "biocida" es una
sustancia química que detiene el crecimiento o mata a distintos
tipos de seres vivos.
Asimismo, la expresión "organismos que poseen
una membrana celular que contiene ergosterol" incluye a
cualquier organismo provisto de una membrana celular que contiene
ergosterol, por ejemplo, hongos, parásitos, etc. Ejemplos
ilustrativos, no limitativos de dichos organismos incluyen los
parásitos Trypanosoma, Leishmania, etc., así como hongos
tales como Fusarium oxysporium, Botrytis cinerea
(fitopatógenos), Candida albicans, Candida krusei, Aspergillus
niger, Cryptococcus neoformans (patógenos humanos), entre
otros.
Por tanto, dichos compuestos de fórmula (I), en
particular, los compuestos rimocidina B (Ia) y
CE-108B (Ib) son potencialmente útiles como biocidas
frente a dichos organismos que poseen una membrana celular que
contiene ergosterol. En una realización particular, dichos
compuestos son más útiles como agentes antiparasitarios o como
agentes antifúngicos que los correspondientes polienos no amidados.
El término "antifúngico" incluye tanto fungicidas como
fungistáticos.
En consecuencia, en otro aspecto, la invención
se relaciona con una composición biocida que comprende un
compuesto de fórmula (I), junto con un vehículo inerte. En una
realización particular, dicho compuesto de fórmula (I) se selecciona
del grupo formado por rimocidina B (Ia), CE-108B
(Ib) y sus mezclas. Dicha composición biocida es particularmente
útil frente a organismos que poseen membranas celulares que
contienen ergosterol. En una realización particular, dicha
composición biocida es una composición antifúngica que comprende un
compuesto de fórmula (I), tal como un compuesto seleccionado entre
los compuestos rimocidina B (Ia), CE-108B (Ib) y sus
mezclas, junto con, opcionalmente, uno o más vehículos inertes.
Tal como se utiliza en esta descripción, el
término "inerte" significa que dicho vehículo no tiene una
actividad biocida significativa.
Si se desea, dicha composición biocida puede
contener, además, otros biocidas, naturales, recombinantes o
sintéticos, que, eventualmente, potencien la acción biocida de
dicho compuesto de fórmula (I), por ejemplo, de los compuestos
rimocidina B y/o CE-108B o bien que incrementen su
espectro de acción.
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Un campo importante donde encuentran aplicación
los compuestos de fórmula (I), en particular, los compuestos
rimocidina B y/o CE-108B, es en Sanidad humana y
animal. Por tanto, en una realización particular, la invención
proporciona una composición farmacéutica que comprende un
compuesto de fórmula (I), junto con, opcionalmente, uno o más
excipientes farmacéuticamente aceptables. En una realización
particular, dicho compuesto de fórmula (I) se selecciona entre los
compuestos rimocidina B (Ia), CE-108B (Ib) y sus
mezclas.
En el sentido utilizado en esta descripción, la
expresión "excipiente farmacéuticamente aceptable" se refiere
a aquellas sustancias, o combinación de sustancias, conocidas en el
sector farmacéutico, utilizadas en la elaboración de formas
farmacéuticas de administración e incluye adyuvantes, sólidos o
líquidos, disolventes, tensioactivos,
etc.
etc.
Si se desea, dicha composición farmacéutica
puede contener, además, uno o más agentes terapéuticos que,
eventualmente, potencien la acción terapéutica de dicho compuesto
de fórmula (I), por ejemplo, de los compuestos rimocidina B y/o
CE-108B, o bien que incrementen su espectro de
acción.
Dicha composición farmacéutica puede ser
utilizada para prevenir y/o tratar infecciones causadas por
organismos patógenos de humanos o animales que poseen membranas
celulares que contienen ergosterol, por ejemplo, parásitos y hongos
patógenos de humanos o animales.
Por tanto, en una realización concreta, dicha
composición farmacéutica es una composición antiparasitaria y puede
ser utilizada en la prevención y/o el tratamiento de infecciones
causadas por parásitos cuyas membranas celulares contienen
ergosterol, por ejemplo, Tiypanosoma, Leishmania, etc. Si se
desea, dicha composición antiparasitaria puede contener, además,
uno o más agentes antiparasitarios que, eventualmente, potencien la
acción terapéutica de dicho compuesto de fórmula (I), por ejemplo,
de los compuestos rimocidina B y/o CE-108B, o bien
que incrementen su espectro de acción.
En otra realización concreta, dicha composición
farmacéutica es una composición antifúngica y puede ser utilizada
en la prevención y/o el tratamiento de infecciones causadas por
hongos (cuyas membranas celulares contienen ergosterol). Si se
desea, dicha composición antifúngica puede contener, además, uno o
más agentes antifúngicos que, eventualmente, potencien la acción
antifúngica de dicho compuesto de fórmula (I), por ejemplo,
rimocidina B y/o CE-108B, o bien que incrementen su
espectro de acción. Ejemplos ilustrativos, no limitativos, de
dichos agentes antifúngicos incluyen polienos, tales como
anfotericina B, nistatina, AB-400, alilaminas (e.g.,
terbinafina, naftifina, etc.), amorolfia, tolnaftalato, etc.;
azoles, tales como clotrimazol, miconazol, ketoconazol, fluconazol,
itraconazol, etc.; benzofuranos, por ejemplo, griseofulvina, etc.;
pirimidinas, por ejemplo, fluocitosina, etc.
El compuesto de fórmula (I) estará presente en
la composición farmacéutica en una cantidad terapéuticamente
eficaz, es decir, en una cantidad apropiada para ejercer su efecto
terapéutico. En una realización particular, la composición
farmacéutica proporcionada por esta invención, contiene entre 0,01%
y 99,99% en peso de un compuesto de fórmula (I), tal como un
compuesto seleccionado entre los compuestos rimocidina B (Ia),
CE-108B (Ib) y sus mezclas, y puede presentarse en
cualquier forma farmacéutica de administración apropiada en función
de la vía de administración elegida, por ejemplo, oral, parenteral
o tópica. Una revisión de las distintas formas farmacéuticas de
administración de fármacos y de sus procedimientos de preparación
puede encontrarse, por ejemplo, en el Tratado de Farmacia Galénica,
C. Faulí i Trillo, 1ª edición, 1993, Luzán 5, S.A. de
Ediciones.
Por tanto, la invención también se relaciona con
el empleo de un compuesto de fórmula (I) en la elaboración de un
medicamento para la prevención y/o el tratamiento de la infección
causada por organismos patógenos de humanos o animales cuyas
membranas celulares contienen ergosterol, por ejemplo, parásitos de
humanos o animales o bien hongos patógenos de humanos o animales.
En una realización particular, dicho compuesto de fórmula (I) se
selecciona entre rimocidina B (Ia), CE-108B (Ib) y
sus mezclas.
Asimismo, en otro aspecto, la invención también
proporciona un método para prevenir y/o tratar infecciones causadas
por organismos patógenos de humanos o animales cuyas membranas
celulares contienen ergosterol, por ejemplo, parásitos de humanos o
animales o bien hongos patógenos de humanos o animales, que
comprende la etapa de administrar a un animal o a un ser humano, en
necesidad de tratamiento, una cantidad terapéuticamente eficaz de
una composición farmacéutica proporcionada por esta invención.
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Otro sector importante en el que encuentran
aplicación los compuestos de fórmula (I), en particular, los
compuestos rimocidina B (Ia) y/o CE-108B (Ib), es en
el sector agrícola. En este sentido, la invención proporciona una
composición antifúngica útil para controlar la infección causada
por hongos fitopatógenos (tales como Botrytis cinerea, Fusarium
oxysporum, Rhizoctonia solana, Rhizoctonia meloni, Ustilago
maydis, entre otros) cuyas membranas celulares contienen
ergosterol, que comprende un compuesto de fórmula (I), tal como un
compuesto seleccionado entre los compuestos rimocidina B (Ia),
CE-108B (Ib) y sus mezclas, junto con,
opcionalmente, uno o más vehículos inertes agrícolamente
aceptables. La aplicación se extiende a tratamiento,
fundamentalmente preventivo, para evitar o controlar infecciones
fúngicas en condiciones de almacenamiento de productos
agroalimentarios (infecciones post-cosecha),
causadas por diversos hongos cuyas membranas contienen
ergosterol.
Tal como aquí se utiliza, el término
"controlar" incluye la inhibición, reducción o paralización de
la germinación de las esporas y/o del crecimiento del micelio de
hongos que puede resultar en la eliminación de dichos hongos o en
la disminución de los daños causados por éstos.
La expresión "vehículo inerte agrícolamente
aceptable" tal como aquí se utiliza se refiere a aquellas
sustancias, o combinación de sustancias, conocidas en el sector
agrícola, utilizadas para vehiculizar compuestos de interés, e
incluye adyuvantes, sólidos o líquidos, diluyentes, disolventes,
tensioactivos, etc.
En una realización particular, dicha composición
antifúngica comprende, además de dicho compuesto de fórmula (I),
por ejemplo, un compuesto seleccionado entre rimocidina B,
CE-108B y sus mezclas, uno o más compuestos con
actividad antifúngica, por ejemplo, uno o más compuestos que
alteran la membrana celular de los hongos, o uno o más compuestos
que inhiben la síntesis de ergosterol, tales como los compuestos
mencionados previamente, o bien uno o más compuestos con actividades
enzimáticas requeridas para la modificación o degradación de
paredes celulares, por ejemplo, una o más enzimas líticas capaces
de modificar o degradar paredes celulares de hongos, tales como
enzimas con actividad celulolítica, mananolítica, quitinolítica o
proteolítica (e.g., celulasas,
\alpha-(1,3)-glucanasas,
\beta-(1,6)-glucanasas,
\beta-(1,3)-glucanasas, mananasas, endo- o exo-
quitinasas, quitosanasas, proteasas, \alpha- o
\beta-manosidasas, etc.
El compuesto de fórmula (I) estará presente en
dicha composición antifúngica en una cantidad antifúngica eficaz,
es decir, en una cantidad apropiada para controlar la infección
causada por hongos fitopatógenos. En una realización particular, la
composición antifúngica útil para controlar hongos fitopatógenos
proporcionada por esta invención, contiene entre 0,01% y 100% en
peso de dicho compuesto de fórmula (I), por ejemplo, de dichos
compuestos rimocidina B (Ia) y/o CE-108B (Ib). Dicha
composición puede prepararse por métodos convencionales y puede
presentarse en forma líquida o sólida, por ejemplo, en forma de un
granulado. Adicionalmente, dicha composición puede contener
aditivos, por ejemplo, conservantes y estabilizantes que prolonguen
la conservación y estabilidad de la
misma.
misma.
Dicha composición antifúngica puede ser usada,
por ejemplo, para controlar infecciones causadas por hongos
fitopatógenos en plantas y/o en frutos. Por tanto, la invención
proporciona un método para controlar la infección causada por un
hongo fitopatógeno en una planta, en particular, un hongo
fitopatógeno cuya membrana celular contiene ergosterol, que
comprende aplicar a dicha planta, o al medio que la rodea, dicha
composición para controlar dicho hongo fitopatógeno. En una
realización particular, dicho método comprende la aplicación de
dicha composición, en una cantidad adecuada, sobre las partes
aéreas de la planta con el fin de prevenir y/o tratar una infección
fúngica causada por un hongo fitopatógeno.
La invención también proporciona un método para
controlar la infección causada por hongos fitopatógenos en un
fruto, en particular, un hongo fitopatógeno cuya membrana celular
contiene ergosterol, que comprende aplicar a dicho fruto dicha
composición para controlar hongos fitopatógenos. En una realización
particular de dicho método, la aplicación de dicha composición, en
una cantidad eficaz, sobre el fruto se realiza antes de la recogida
del mismo (pre-cosecha) mientras que en otra
realización alternativa la aplicación de la composición se efectúa
sobre el fruto ya recogido (post-cosecha).
\vskip1.000000\baselineskip
Los compuestos de fórmula (I), en particular
rimocidina B (Ia) y/o CE-108B (Ib), tienen también
aplicación en el sector agroalimentario. En este sentido, la
invención proporciona una composición antifúngica útil para el
control de hongos que eventualmente puedan desarrollarse sobre
preparados alimentarios, por ejemplo, sobre la superficie de
preparados alimentarios, tales como derivados lácteos, por ejemplo,
quesos, etc., que comprende un compuesto de fórmula (I), tal como
un compuesto seleccionado entre los compuestos rimocidina B (Ia),
CE-108B (Ib) y sus mezclas, junto con,
opcionalmente, uno o más vehículos inertes aceptables desde el punto
de vista agroalimentario, tales como suspensiones liposómicas, en
agua, etc., entre otras.
El término "control" incluye la inhibición,
reducción o paralización de la germinación de esporas y/o el
crecimiento del micelio de hongos que puede resultar en una notable
disminución de los daños causados por éstos; de este modo se puede
prevenir o tratar el expolio de alimentos causado por el crecimiento
de hongos.
El término "vehículo inerte aceptable desde el
punto de vista agroalimentario" se refiere a aquellas
sustancias, o combinación de sustancias, conocidas en el sector
agroalimentario, utilizadas para vehiculizar compuestos de interés,
e incluye adyuvantes, sólidos o líquidos, diluyentes, disolventes,
tensioactivos, etc.
En una realización particular, dicha composición
antifúngica comprende, además de dicho compuesto de fórmula (I),
por ejemplo, un compuesto seleccionado entre rimocidina B,
CE-108B y sus mezclas, uno o más compuestos con
actividad antifúngica, por ejemplo, uno o más compuestos que
alteran la membrana celular de los hongos, o uno o más compuestos
que inhiben la síntesis de ergosterol, tales como los compuestos
mencionados previamente, o bien uno o más compuestos con actividades
enzimáticas requeridas para la modificación o degradación de
paredes celulares, por ejemplo, una o más enzimas líticas capaces
de modificar o degradar paredes celulares de hongos, tales como
enzimas con actividad celulolítica, mananolítica, quitinolítica o
proteolítica (e.g., celulasas,
\alpha-(1,3)-glucanasas,
\beta-(1,6)-glucanasas,
\beta-(1,3)-glucanasas, mananasas, endo- o exo-
quitinasas, quitosanasas, proteasas, \alpha- o
\beta-manosidasas, etc.
El compuesto de fórmula (I) estará presente en
dicha composición antifúngica en una cantidad antifúngica eficaz,
es decir, en una cantidad apropiada para controlar la infección
causada por hongos susceptibles de desarrollarse sobre preparados
alimentarios. En una realización particular, dicha composición
antifúngica útil para controlar hongos capaces de desarrollarse
sobre preparados alimentarios proporcionada por esta invención,
contiene entre 0,01% y 100% en peso de dicho compuesto de fórmula
(I), por ejemplo, de dichos compuestos rimocidina B (Ia) y/o
CE-108B (Ib). Dicha composición puede prepararse
por métodos convencionales y puede presentarse en forma líquida o
sólida, por ejemplo, en forma de un granulado. Adicionalmente, dicha
composición puede contener aditivos, por ejemplo, conservantes y
estabilizantes que prolonguen la conservación y estabilidad de la
misma.
Dicha composición antifúngica puede ser usada
para controlar infecciones causadas por hongos susceptibles de
desarrollarse en preparados alimentarios, por ejemplo, sobre la
superficie de preparados alimentarios. Por tanto, la invención
también proporciona un método para controlar la infección causada
por un hongo capaz de desarrollarse en un preparado alimentario, en
particular, un hongo susceptible de desarrollarse en un preparado
alimentario cuya membrana celular contiene ergosterol, que
comprende aplicar a dicho preparado alimentario, o al medio que fa
rodea, dicha composición antifúngica para controlar dicho hongo
capaz de desarrollarse en un preparado alimentario. En una
realización particular, dicho método comprende la aplicación de
dicha composición, en una cantidad adecuada, sobre la superficie del
preparado alimentario con el fin de prevenir y/o tratar el expolio
de alimentos debido al crecimiento fúngico. Dicha composición
antifúngica se aplica externamente sobre la superficie del
preparado
alimentario.
alimentario.
\vskip1.000000\baselineskip
Compuestos de fórmula (I), en particular, los
compuestos rimocidina B (Ia) y/o CE-108B (Ib) están
presentes en el caldo de fermentación de los microorganismos
recombinantes identificados en esta descripción como Streptomyces
diastaticus var. 108/743B y Streptomyces diastaticus
var. 108/784, obtenidos por transformación de Streptomyces
diastaticus var. 108 (Pérez-Zuñiga F.J., et
al., 2004, J. Antibiot. (Tokyo) 57:197-204) con
los plásmidos identificados en esta descripción como pSM743B y
pSM784, respectivamente, o del microorganismo recombinante
identificado como Streptomyces diastaticus var.
108::PM1-500/743B obtenido por transformación de
Streptomyces diastaticus var. 108/PM1-500
(Seco E.M., et al., 2004, Chem. Biol.
11:357-366) con el plásmido identificado como
pSM743B, tal como se describe en el Ejemplo que acompaña a esta
descripción y se recoge en la Tabla 1. Dichos compuestos pueden ser
obtenidos directamente a partir de dichos caldos de fermentación y
purificados con facilidad por procedimientos convencionales
relativamente sencillos, por ejemplo, mediante el empleo de
columnas de intercambio iónico y/o columnas de interacción
hidrofóbica o fase reversa.
El plásmido pSM743B (Tabla 1) (Figura 1A) deriva
del plásmido pIJ922 y comprende el gen rimA (fragmento de
ADN comprendido entre los nucleóticos 9336 a 14445 de la secuencia
depositada en Bancos de Genes de acceso público con el número de
acceso AY442225) y el gen de resistencia a eritromicina
(ermE). El plásmido pSM784 (Tabla 1) (Figura 1B) deriva del
plásmido pIJ941 y comprende el gen de resistencia a eritromicina
(ermE).
Dichos plásmidos pIJ922 y pIJ941 (Lydiate D.J.
et al., 1985, Gene 35:223-235) son vectores
derivados del replicón SCP2*, un plásmido de bajo número de copias
procedente de Streptomyces coelicolor.
Por tanto, en otro aspecto, la invención se
relaciona con un procedimiento para la producción de un compuesto
de fórmula (I), que comprende cultivar un microorganismo
seleccionado entre Streptomyces diastaticus var. 108/784,
Streptomyces diastaticus var. 108/743B, Streptomyces
diastaticus var. 108::PM1-500/743B y
combinaciones de los mismos, bajo condiciones que permitan la
producción de compuestos de fórmula (I), y, si se desea, aislar y
purificar dichos compuestos. En una realización particular, los
compuestos de fórmula (I) se seleccionan entre rimocidina B (Ia),
CE-108B (Ib) y sus mezclas.
\vskip1.000000\baselineskip
Los microorganismos recombinantes
Streptomyces diastaticus var. 108/784 (depositado en
Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH (DSMZ),
Braunschweig, Alemania, el 14 de marzo de 2005, correspondiéndole el
número de acceso DSM 17187), Streptomyces diastaticus var.
108/743B y Streptomyces diastaticus var.
108::PM1-500/743B (puede ser obtenido por técnicos
de laboratorio con habilidades medias en manipulaciones genéticas
rutinarias, por transformación del disruptante Streptomyces
diastaticus var. 108::PM1-500, E.M., Seco E.M.
et al., 2004, Chem. Biol. 11:357-366) con el
plásmido pSM743B, Tabla 1 y Figura 1A), forman parte de la presente
invención. Por tanto, en otro aspecto, la invención se relaciona con
un microorganismo seleccionado entre Streptomyces
diastaticus var. 108/743B, Streptomyces diastaticus var.
108/784 y Streptomyces diastaticus var.
108::PM1-500/743B, y proporciona un cultivo de un
microorganismo seleccionado entre Streptomyces diastaticus
var. 108/743B, Streptomyces diastaticus var. 108/784,
Streptomyces diastaticus var.
108::PM1-500/743B y combinaciones de los
mismos.
mismos.
Asimismo, la invención se relaciona con el
empleo de un microorganismo seleccionado entre Streptomyces
diastaticus var. 108/743B, Streptomyces diastaticus var.
108/784, Streptomyces diastaticus var.
108::PM1-500/743B y combinaciones de los mismos, o
de dicho cultivo de microorganismos seleccionados entre
Streptomyces diastaticus var. 108/743B, Streptomyces
diastaticus var. 108/784, Streptomyces diastaticus var.
108::PM1-500/743B y combinaciones de los mismos, en
la obtención de un compuesto de fórmula (I). En una realización
particular, el compuesto de fórmula (I) se selecciona entre
rimocidina B (Ia), CE-108B (Ib) y sus mezclas.
Además, los ensayos realizados por los
inventores pusieron de manifiesto que el caldo de fermentación de
dichos microorganismos recombinantes Streptomyces
diastaticus var. 108/743B, Streptomyces diastaticus var.
108/784 y Streptomyces diastaticus var.
108::PM1-500/743B también contiene, además de los
polienos amidados rimocidina B (Ia) y/o CE-108B
(Ib), los polienos no amidados rimocidina (IIa) y/o
CE-108 (IIb), los cuales contienen un grupo
carboxilo libre.
Por tanto, en otro aspecto, la invención se
relaciona con un procedimiento para la producción de un compuesto
seleccionado entre un compuesto de fórmula (I), rimocidina (IIa),
CE-108 (IIb) y sus mezclas, que comprende cultivar
un microorganismo seleccionado entre Streptomyces
diastaticus var. 108/743B, Streptomyces diastaticus var.
108/784, Streptomyces diastaticus var.
108::PM1-500/743B y combinaciones de los mismos,
bajo condiciones que permitan la producción de un compuesto
seleccionado entre un compuesto de fórmula (I), rimocidina (IIa),
CE-108 (IIb) y sus mezclas, y, si se desea, aislar
y purificar dicho compuesto. En una realización particular, el
compuesto de fórmula (I) se selecciona entre rimocidina B (Ia),
CE-108B (Ib) y sus mezclas.
En consecuencia, en otro aspecto, la invención
se relaciona con el empleo de un microorganismo seleccionado entre
Streptomyces diastaticus var. 108/743B, Streptomyces
diastaticus var. 108/784, Streptomyces diastaticus var.
108::PM1-500/743B y combinaciones de los mismos, en
la obtención de un compuesto seleccionado entre un compuesto de
fórmula (I), rimocidina (IIa), CE-108 (IIb) y sus
mezclas.
El caldo de fermentación de un microorganismo
seleccionado entre Streptomyces diastaticus var. 108/743B,
Streptomyces diastaticus var. 108/784, Streptomyces
diastaticus var. 108::PM1-500/743B y
combinaciones de los mismos, que comprende un compuesto
seleccionado entre un compuesto de fórmula (I), rimocidina (IIa),
CE-108 (IIb) y sus mezclas, puede ser
potencialmente útil como biocida y constituye un aspecto adicional
de esta invención. En una realización particular, el compuesto de
fórmula (I) se selecciona entre rimocidina B (Ia),
CE-108B (Ib) y sus mezclas.
El medio de cultivo de dichos microorganismos
recombinantes comprende, en general, una o más fuentes de carbono,
una o más fuentes de nitrógeno, una o más sales inorgánicas
asimilables por el microorganismo, y, si es necesario, uno o más
nutrientes orgánicos, tales como vitaminas y aminoácidos, disueltos
en un medio acuoso. Dichos medios, al igual que las condiciones
apropiadas (aireación/agitación, temperatura y tiempo de
fermentación, etapas, etc.), son conocidos por los expertos en la
materia. Ejemplos ilustrativos, no limitativos, de los medios y
condiciones para crecer dichos microorganismos recombinantes se
mencionan en el Ejemplo (apartado "Procedimientos
experimentales"). El caldo de fermentación de dichos
microorganismos recombinantes seleccionados entre Streptomyces
diastaticus var. 108/743B, Streptomyces diastaticus var.
108/784, Streptomyces diastaticus var.
108::PM1-500/743B y combinaciones de los mismos,
comprende un compuesto seleccionado entre un compuesto de fórmula
(I), por ejemplo, rimocidina B (Ia), CE-108B (Ib),
rimocidina (IIa), CE-108 (IIb) y sus mezclas, y
puede utilizarse como tal o bien puede ser tratado posteriormente
para separar el compuesto o compuestos de interés, los cuales
pueden aislarse por métodos convencionales. A modo ilustrativo, en
una realización particular, el cultivo celular se centrifuga para
separar el sobrenadante y el extracto celular y el sobrenadante se
utiliza para aislar y, si se desea, purificar, el polieno, amidado
o no-amidado, de interés. El estudio de las
características físico-químicas de dichos compuestos
permite diseñar un procedimiento para su purificación a partir del
sobrenadante.
\vskip1.000000\baselineskip
El plásmido pSM784, derivado del vector pIJ941
sobre el cual se ha clonado el gen de resistencia a eritromicina,
cuando es introducido en S. diastaticus var. 108, da lugar a
una cepa (S. diastaticus var. 108/784) productora de los
nuevos polienos amidados rimocidina B y CE-108B,
además de rimocidina y CE-108.
Asimismo, cuando el plásmido pSM743B, derivado
de un vector SCP2* más el gen ermE y portador, además, de un
fragmento del cluster rim (comprendido entre los nucleóticos
9336 y 15445, de la secuencia de ADN con número de Acceso AY442225,
que comprende el gen rimA) expresado bajo un promotor,
endógeno o exógeno, tal como el promotor del gen xysA
(fragmento de ADN BglII-SmaI de 547 pares de bases,
xysAp) del gen de la xilanasa de Streptomyces
halstedii JM8 (Ruiz-Arribas A., et al.,
1997, Appl. Environ. Microbiol., 63:2983-2988), es
introducido en S. diastaticus var. 108 o en S.
diastaticus var. 108::PM1-500, se ha observado
un incremento en la producción total tanto de polienos amidados
(rimocidina B y CE-108B) como de polienos no
amidados (rimocidina y CE-108). Este hecho podría
ser utilizado para incrementar la producción total de polienos con
grupo carboxílico y/o polienos amidados en otros organismos
productores de dichos polienos.
Prácticamente cualquier vector derivado del
vector SCP2* puede ser utilizado, por ejemplo, pIJ922, pIJ941, etc.
El gen ermE es un gen conocido (Uchiyama et al.,
(1985), Gene 38:103-110). Ensayos realizados por los
inventores han puesto de manifiesto que un ácido nucleico que
comprende uno o más fragmentos del vector SCP2*, junto con el gen
ermE, es necesario y suficiente para que en los
microorganismos recombinantes se generen los polienos
amidados.
amidados.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
1
Las cepas bacterianas y los plásmidos se
describen en la Tabla 1.
Streptomyces diastaticus var. 108 y sus
derivados por modificación genética se crecieron de forma rutinaria
en medio líquido y sólido SYM2 (Atlas R.M., Microbiological Media.
CRC Press, Boca Ratón, Florida) para el análisis de la producción
de tetraenos, y en un medio líquido TSB (Oxoid) para la extracción
de plásmidos y de ADN
total.
total.
Streptomyces lividans TK21 se utilizó
como hospedador general de clonación y se creció en un medio sólido
R5 y en medio líquido YEME tal como se describe en manuales de campo
(Kieser T. et al, 2000, Practical Streptomyces
Genetics, Norwich).
Las cepas de E. coli se crecieron en agar
Luria-Bertani (LB) o en caldos LB según se describe
en la literatura especializada (Maniatis T. et al., 1982,
Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor
Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y.).
P. chysogenum, C. krusei, A. niger, C.
albicans y C. neoformans, hongos empleados para ensayar
la actividad antifúngica, se crecieron en medio MPDA (composición:
2% de extracto de malta, 2% de glucosa, 0,1% de Bactopeptona).
\vskip1.000000\baselineskip
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(Tabla pasa a página
siguiente)
\vskip1.000000\baselineskip
Las cepas de E. coli se crecieron y
transformaron tal como se describe en Maniatis et al.
(1982). Las cepas de Streptomyces se manipularon tal como se
ha descrito previamente (Kieser T., et al., 2000, citado
supra). La conjugación intraespecífica se llevó a cabo
creciendo conjuntamente las cepas donadoras y receptoras en un medio
sólido R5 sin selección y posteriormente seleccionando en base a
las correspondientes resistencias a antibióticos de los plásmidos y
a los marcadores genéticos. La manipulación del ADN se realizó tal
como se ha descrito previamente (Maniatis T., et al., 1982,
citado supra).
\vskip1.000000\baselineskip
La producción de tetraenos se analizó extrayendo
la totalidad de una alícuota del cultivo con metanol tal como se ha
descrito previamente (Seco E.M. et al., 2004, citado
supra). Los extractos se filtraron y se sometieron a análisis
de HPLC con un equipo Waters 600S Controller, equipado con Waters
996 PDA; la determinación cuantitativa y las condiciones
cromatográficas fueron las mismas que las descritas previamente
(Pérez-Zúñiga F.J., et al., 2004, citado
supra).
\vskip1.000000\baselineskip
Los espectros de masas se determinaron en un
equipo 1100MSD HPLC conectado a un detector cuadrupolo Agilent
Technology Detector, usando electrospray como fuente y un modo de
ionización positiva. Las condiciones cromatográficas fueron las
mismas que las descritas previamente (Pérez-Zúñiga
F.J., et al., 2004, citado supra).
\vskip1.000000\baselineskip
Streptomyces diastaticus var. 108/784, o
microorganismos eventualmente modificados con construcciones
capaces de producir los polienos amidados (tal como se ha indicado
anteriormente) se cultivó o cultivaron bien en medio SYM2, sólido o
líquido (Pérez-Zúñiga F.J., et al., 2004,
citado supra). Transcurridos seis días, el medio sólido
completo donde se cultivaron los microorganismos, se fragmentó por
cizalla haciéndolo pasar por una jeringuilla de 50 mL; el medio
sólido así fragmentado se extrajo con cuatro volúmenes de metanol,
previamente acidificado con ácido fórmico 25 mM. Los cultivos
procedentes de medio líquido fueron liofilizados antes de realizar
extracciones similares con metanol. La suspensión acuosa se agitó
durante 1 hora y se centrifugó a 5.000 g durante 20 minutos para
eliminar las partículas sólidas en suspensión. El sobrenadante
transparente se concentró mediante roto-evaporación
a 10-20 X 10^{6} unidades por microlitro (\muL)
medidas a una longitud de onda de 304 nanometros (nm). La muestra
fue posteriormente almacenada en 80% metanol/agua hasta su empleo.
Doscientos mililitros del cultivo líquido celular o una placa (24 x
24 cm) cuyo cultivo fue previamente extraído con 5 volúmenes de
metanol, dieron lugar a una producción de hasta 40 mg de la mezcla
de tetraenos amidados. Las muestras extraídas en metanol se llevaron
a 20% de metanol con agua y se filtraron para eliminar el material
precipitado. El filtrado se aplicó lentamente a una columna Omnifit
(250 x 25 mm, Supelco Cat No. 56010) previamente rellenada con una
resina de intercambio fónico, tal como SP-Sepharose,
Phast Flow (Pharmacia) que previamente se equilibró con la misma
disolución. Bajo estas condiciones, la rimocidina y el compuesto
CE-108 eluyeron con el frente no unido al relleno
de la columna, al igual que pigmentos procedentes del cultivo; los
correspondientes polienos amidados rimocidina B (Ia) y
CE-108B (Ib) quedaron completamente retenidos. La
columna, conteniendo los compuestos de interés retenidos en la fase
sólida, se lavó exhaustivamente con la misma solución para eliminar
aquellos compuestos que no interaccionan con el relleno de SP
Sepharosa. Los polienos amidados rimocidina B (Ia) y
CE-108B (Ib), retenidos por interacción en la
columna, se eluyeron con acetato amónico 300 mM pH 5 en 20% de
metanol recogiéndose fracciones a intervalos de tiempo regulares.
De las fracciones eluidas se seleccionaron aquéllas que contenían
las mezclas de las amidas de interés; éstas se juntaron en y se
sometieron a un proceso físico de desalinización, empleando para
ello cartuchos Sep-Pak (Waters). Finalmente las
fracciones desalinizadas se disolvieron en 20% de metanol. La
fracción conteniendo la mezcla de polienos amidados (15 mg) que
habían sido desaladas, se fraccionaron finalmente por HPLC (con el
fin de separar los polienos amidados); para ello se empleó una
columna semi-preparativa (Supelcosil
PLC-8, 250 x 21,2 mm). Los parámetros
cromatográficos y las fases móviles, controlados con un controlador
de gradiente automático (Waters Automated Gradient Controller),
fueron: 12 minutos con 100% de B (acetato amónico 20 mM pH 5,
etanol 20%), 43 minutos de un gradiente binario hasta 50% de A
(metanol) y 50% de B (curva 6 especificada en los controladores
cromatográficos de Waters); 35 minutos de un gradiente binario hasta
100% de A (curva 8, de los mismos controladores señalados
anteriormente), y un flujo constante de 5 mL/min. Las fracciones se
recogieron a intervalos regulares (5 mL por fracción) y aquéllas
que llevaban los compuestos aislados purificados se juntaron y se
sometieron a una etapa de desalinización adicional, como la
descrita anteriormente y, finalmente, se liofilizaron dos
veces.
\vskip1.000000\baselineskip
Los ensayos se llevaron a cabo según el método
descrito por Gómez-Gómez et al.
(Gómez-Gómez J.M. et al., 1996, Mol.
Microbiol. 19:909-910). Las muestras de polienos se
desecaron previamente y se disolvieron en DMSO a una concentración
estimada de 10 a 30 mg/mL. Cantidades crecientes de los diferentes
polienos se llevaron a un volumen final de 100 \muL de DMSO y se
mezclaron mediante agitación suave con 500 \muL de tampón PBS
(Gómez-Gómez J.M. et al., 1996, citado
supra) conteniendo 2,5% de sangre humana o, eventualmente,
de caballo. Tras la incubación a 37ºC durante 30 minutos sin
agitación, las células se sedimentaron mediante centrifugación y el
grado de hemólisis se evaluó mediante la medida de la absorbancia a
545 nm. Los valores correspondientes a la hemólisis total se
estimaron con una suspensión de un 2,5% de sangre de caballo en
agua destilada. La sangre humana (fundamentalmente eritrocitos) se
obtuvo de Bancos de sangre local (Hospital Ramón y Cajal (Madrid));
la sangre de caballo procedía de Oxoid (sangre desfibrinada). La
anfotericina B y la nistatina A se obtuvieron de Sigma (números de
catálogo A-4888 y N-3503,
respectivamente); y, la pimaricina, de Calbiochem (527962). Todos
estos polienos se ensayaron directamente de las muestras
comerciales, sin purificación adicional.
\vskip1.000000\baselineskip
El gen rimA (Seco E.M. et al.,
2004, Chem. Biol. 11:357-366), codificado dentro de
un ARNm policistrónico, fue clonado bajo el control del promotor
xysA (xysAp) del gen de la xilanasa de
Streptomyces halstedii JM8 (Ruiz-Arribas A.,
1997, Appl. Environ. Microbiol. 63:2983-2988). Para
ello, el promotor xysAp fue rescatado a partir de pHis1
como un fragmento BglII/SmaI de 547 pares de bases que,
además, lleva el terminador del gen de resistencia a metilenomicina
(Ti: Adham S.A. et al., 2001, Arch. Microbiol.
177:91-97) situado en posición anterior al promotor
xysAp. Siguiendo los procedimientos habituales de clonaje de
ADN y de acuerdo con las propiedades de los plásmidos empleados en
la invención descritas en la Tabla I, el fragmento de ADN que
contenía el gen rimA y el extremo 3' del gen riml
(posiciones 9336 a 15445 pares de bases a partir de la secuencia
depositada en GenBank bajo el número de acceso AY442225, tal como
se indica en la Figura 1; Seco E.M. et al., 2004, citado
supra) se fusionó con xysAp en la orientación
adecuada que permitía expresar el rimA bajo el promotor
xysAp (recombinante rimA). Finalmente el gen
ermE de pNAe-1 (Tabla 1) se rescató por
digestión con las enzimas flanqueantes y el fragmento de ADN
resultante se clonó, en etapas intermedias, a continuación del gen
"recombinante rimA" para generar, en la construcción
final, un fragmento de ADN conteniendo (ver Figura 1A), de
izquierda a derecha: el gen rimA bajo el control del promotor
xysAp, el fragmento del gen rimI truncado y
finalmente el gen ermE completo. El fragmento de ADN
resultante se clonó, vía extremos romos, según la técnica habitual
en Biología Molecular, en el sitio de restricción único
EcoRV, localizado dentro del gen de resistencia a
tioestreptona, del vector de Streptomyces pIJ922. El
plásmido resultante (pSM743B, Figura 1A) confiere resistencia a
eritromicina pero no a tioestreptona al tener el correspondiente gen
de resistencia a tioestreptona interrumpido por inserción del
fragmento de ADN descrito anteriormente.
La correcta funcionalidad del gen rimA
recombinante, clonado en pSM743B, tal como se indica más arriba, se
comprobó por introducción del plásmido pSM743B en un mutante de
Streptomyces diastaticus var. 108 generado previamente por
disrupción del gen nativo rimA (Streptomyces
diastaticus var. 108/PM1-500, descrito en Seco
E.M. et al., 2004, citado supra). El recombinante
genético resultante (generado por introducción del plásmido pSM743B
en el mutante de Streptomyces diastaticus var. 108 con el gen
rimA previamente interrumpido) es capaz de producir los
macrólidos poliénicos nativos (rimocidina y CE-108),
así como los nuevos macrólidos amidados (rimocidina B y
CE-108B). Asimismo, el plásmido pSM743B introducido
en la cepa silvestre indujo también la producción de los cuatro
tetraenos (amidados y carboxilados) pero con un incremento en la
producción total de polienos probablemente debida a la expresión de
genes biosintéticos del cluster rim. Paralelamente se
construyó el plásmido pSM784. Para ello el gen ermE se
clonó, siguiendo la tecnología habitual en Biología Molecular y, en
sucesivas etapas, en vectores adecuados de Escherichia coli
como para obtener el gen ermE completo susceptible de ser
rescatado como un fragmento de ADN de extremos romos. Finalmente el
fragmento de ADN conteniendo el gen ermE en un fragmento de
ADN con extremos romos, se clonó en el sitio único de restricción
EcoRV del vector pIJ941. El vector resultante confiere
resistencia a eritromicina e higromicina B aunque es sensible a
tioestreptona al tener interrumpido el gen de resistencia a éste por
la inserción inactivante del fragmento del gen ermE (ver
Figura 1B). Cuando el plásmido pSM784 es introducido en la cepa
silvestre Streptomyces diastaticus var. 108, el
microorganismo recombinante resultante es capaz de producir, además
de los macrólidos rimocidina y CE-108, los nuevos
polienos amidados CE-108B y
rimocidina B.
rimocidina B.
Por tanto, los modificados genéticos de
Streptomyces diastaticus var. 108 conteniendo el vector
pSM743B o el vector pSM784 producen tanto los polienos originales
(rimocidina B y CE-108) como los nuevos polienos
amidados (CE-108 y rimocidina B), con un perfil
cromatográfico, analizado en HPLC, semejante, tal como se indica en
la Figura 1C. Pese a que cualitativamente ambos recombinantes
genéticos producen los mismos polienos, la producción de ellos es
significativamente mayor en aquellos recombinantes que contienen el
gen rimA y el gen de eritromicina (plásmido pSM743B).
La producción de ambos tetraenos (rimocidina y
CE-108) se restauró en el mutante Streptomyces
diastaticus var. 108 con el gen rimA interrumpido, al
introducir el plásmido pSM743B, indicando que el gen rimA
recombinante es funcional. Sin embargo, la producción de polienos
fue significativamente más baja en este mutante complementado que
en la cepa sivestre portando el mismo plásmido pSM743B (Tabla 1);
esta producción más baja no se alteró significativamente cuando se
añadieron al medio tanto glucosa como xilano. Estos resultados
parecen sugerir que la expresión de rimA seria una etapa
limitante en la producción de los polienos; esta etapa limitante
está claramente superada por el incremento de la dosis génica.
Estos resultados indican claramente que el gen
ermE en el vector derivado de SCP2* juega un papel
fundamental para generar los nuevos polienos. Se ha de destacar
que, ni el gen de resistencia a eritromicina (ermE), donado
en otros vectores tales como pHJL401 (Larson J.L. et al.,
(1986) Plasmid 15:199-209), ni un vector derivado
del SCP2*, independientemente, son suficientes para producir las
nuevas estructuras.
\vskip1.000000\baselineskip
Se llevaron a cabo análisis por HPLC combinado
con espectrometría de masas del caldo de fermentación de S.
diastaticus var. 108/743B y S. diastaticus var.
108::PM1-500/743B; las masas deducidas para los 2
nuevos tetraenos fueron 738 y 766 para los tiempos de retención más
bajos y más altos, respectivamente. En ambos casos, las masas de
los nuevos polienos son una unidad más baja que la de los polienos
con el tiempo de retención más cercano, CE-108
(739) y rimocidina (767). Tanto la diferencia de masas como la
movilidad cromatográfica apoyaban la idea de que los nuevos polienos
derivaban de los macrólidos naturales.
\vskip1.000000\baselineskip
Con el objetivo de elucidar la estructura
química, se caracterizaron preliminarmente los dos nuevos polienos
con el fin de desarrollar un procedimiento para su purificación.
Ambos compuestos interaccionan no sólo con sílica gel en fase
reversa como C8 y C18 sino también con una resina de intercambio
fónico tal como SP-Sepharosa, sugiriendo que estos
compuestos tenían una carga positiva accesible. Esta primera
caracterización permitió diseñar un procedimiento de purificación
sencillo a partir del caldo de fermentación de Streptomyces
diastaticus var. 108/pSM743B o Streptomyces diastaticus
var. 108/784 indistintamente (véase el apartado relativo a los
Procedimientos Experimen-
tales).
tales).
El compuesto CE-108B (Ib) se
obtuvo como un polvo con un espectro UV/visible típico de tetraenos
(\lambda_{max} = 317, 302, 289 nm), similar al de
CE-108 (IIb) (Pérez-Zúñiga F.J.
et al., 2004, J. Antibiot. (Tokio)
57:197-204). El espectro de
^{1}H-RMN con tres señales en el rango de
sp^{2} a \delta 6,25 (dd, 14,9, 10,9 Hz), un multiplete a
\delta 6,00-6,15 y un doblete de doblete a
\delta 5,87 (15,2, 8,4 Hz) era similar al de
CE-108. Dos protones intercambiables aparecieron en
a \delta 7,30 y 6,83 como singletes anchos. En el rango alifático
de \delta 1,40-2,50, el espectro mostraba un
patrón multiplete complejo, y las señales de tres tripletes de
metilos y dobletes, respectivamente, aparecieron en \delta 1,17,
1,15, y 0,83. El espectro de masas (+)-ESI MS puso
de manifiesto la existencia de iones
pseudo-moleculares a m/z 739 ([M+H]+) y 761
([M+Na]^{+}),
que corresponde a la fórmula molecular C_{37}H_{58}N_{2}O_{13} mediante alta resolución (encontrado 739,40110, calculado 739,401715 para [M+H]^{+}). El espectro de resonancia magnética ^{13}C-RMN indicó 37 señales de carbono como en CE-108, tal como exige la fórmula molecular. Los datos de ^{13}C-RMN de CE-108 y CE-108B estaban próximamente relacionados (Tabla 2) y permitieron concluir que CE-108 y CE-108B poseían el mismo esqueleto de carbono incluyendo el amino-azúcar. Según estos datos, el segundo nitrógeno debe ser atribuido a una función amida, que identifica a CE-108B (Ib) como la amida de CE-108 (IIb).
que corresponde a la fórmula molecular C_{37}H_{58}N_{2}O_{13} mediante alta resolución (encontrado 739,40110, calculado 739,401715 para [M+H]^{+}). El espectro de resonancia magnética ^{13}C-RMN indicó 37 señales de carbono como en CE-108, tal como exige la fórmula molecular. Los datos de ^{13}C-RMN de CE-108 y CE-108B estaban próximamente relacionados (Tabla 2) y permitieron concluir que CE-108 y CE-108B poseían el mismo esqueleto de carbono incluyendo el amino-azúcar. Según estos datos, el segundo nitrógeno debe ser atribuido a una función amida, que identifica a CE-108B (Ib) como la amida de CE-108 (IIb).
El polvo de rimocidina B (Ia) se disolvió en
DMSO. El espectro de masas (+)-ESI MS fijó el peso
molecular de rimocidina B (Ia) como 766, que corresponde, mediante
alta resolución, a la fórmula molecular
C_{39}H_{62}N_{2}O_{13} (encontrado 767,43254, calculado
767,43301 para [M+N]^{+}). El espectro de
^{1}H-RMN fue similar al de
CE-108B (Ib) y mostró dos protones intercambiables
H/D en \delta 7,30 y 6,83, dos dobletes de doblete y un
multiplete en el intervalo de \delta 6,40-5,80. La
región alifática era muy compleja debido a la menor resolución,
pero se identificaron fácilmente un triplete y un doblete en
\delta 1,83 y 1,16 atribuidos a señales metilo. El espectro de
^{13}C-RMN indicó la presencia de 39 señales de
carbono. La comparación con el de CE-108B (Ib)
reveló la presencia de tres señales carbonilo en 208,8, 174,1 y
172,1, además de señales sp^{2} de 8 átomos de carbono en
el intervalo 136,7-128,3 y de dos grupos acetal. La
similitud estrecha con CE-108B (Ib) identificó este
compuesto finalmente como la amida de rimocidina, identificada en
esta descripción como rimocidina B (Ia).
La actividad antifúngica de los nuevos tetraenos
amidados [rimocidina B (Ia) y CE-108B (Ib)] se
ensayó frente a varios hongos: Penicillium chrysogenum, Candida
albicans, Aspergillus niger, Candida krusei y Cryptococcus
neoformans. Cantidades crecientes de los diferentes tetraenos,
disueltos en metanol, se aplicaron sobre discos de papel (9 mm de
diámetro); después de la aplicación, los discos se secaron y se
colocaron sobre las placas de bioensayo en las que previamente se
había extendido los correspondientes hongos testigos. La actividad
de estos tetraenos amidados se comparó con la de las moléculas de
las que proceden [rimocidina (IIa) y CE-108 (IIb)],
mostrando que la actividad biológica de los polienos amidados fue
sustancialmente mayor que la de los correspondientes tetraenos de
los que proceden (Figura 2) en todos los hongos ensayados. En todos
los casos, la sustitución del grupo carboxilo libre por el grupo
amida incrementó la actividad antifúngica aproximadamente cuatro
veces.
En los experimentos anteriores es claro que la
modificación de los nuevos polienos amidados, producidos por los
recombinantes genéticos de Streptomyces diastaticus var.
108, daba lugar a compuestos con alta actividad antifúngica. Con el
objetivo de determinar si la toxicidad también estaba incrementada,
se llevaron a cabo determinaciones de la actividad hemolítica de
los nuevos compuestos polienos amidados, en comparación con los
compuestos que la cepa silvestre produce. Se utilizaron eritrocitos
humanos como modelos celulares para este estudio (Cybulska B. et
al., 2000, Acta Biochim. Pol. 47:121-131;
Gómez-Gómez J.M. et al., 1996, Mol.
Microbiol. 19:909-910). La actividad hemolítica de
los nuevos compuestos se evaluó (véase el apartado relativo a los
Procedimientos Experimentales) frente a rimocidina y
CE-108; también se incluyeron anfotericina B y
nistatina A. Como se muestra en la Tabla 3, la actividad hemolítica
de los tetraenos amidados [rimocidina B (Ia) y
CE-108B (Ib)] no fue significativamente diferente
de la de los correspondientes tetraenos de los que procedían,
mientras que su actividad antifúngica era claramente mayor. Merece
la pena destacar las diferencias en toxicidad observadas entre
CE-108 (IIb) y CE-108 B (Ib) con
rimocidina (IIa) y rimocidina B (Ib); mientras que se alcanza el 50%
de la hemólisis con 40 a 60 nanomoles de los dos últimos polienos,
se necesita una concentración de CE-108 y su amida
de 6 a 7 veces mayor para alcanzar el mismo grado de hemólisis. Por
tanto, las propiedades farmacológicas del polieno amidado
CE-108B están significativamente mejoradas:
mientras que CE-108 muestra una baja actividad
antifúngica, su correspondiente derivado amidado
(CE-108B), tiene una actividad antifúngica
incrementada a niveles casi tan altos como los de la rimocidina, en
tanto que su actividad hemolítica que es de 6 a 7 veces menor.
Estos ensayos también se llevaron a cabo con sangre de caballo
mostrando resultados similares (datos no mostrados).
Se describe la biosíntesis de dos nuevos
polienos amidados con cambios en el grupo carboxílico producidos
mediante manipulación genética de un organismo natural productor de
dos polienos mayoritarios no amidados: rimocidina y
CE-108.
Streptomyces diastaticus var, 108, un
productor de dos tetraenos naturales (rimocidina y
CE-108), adquiere la capacidad de producir, de forma
natural y como principales compuestos, las correspondientes amidas
(rimocidina B y CE-108B) si es modificado
adecuadamente mediante manipulación genética. Al igual que otros
derivados poliénicos semi-sintéticos, la conversión
del grupo carboxílico libre en un grupo amida conlleva una mejora
clara en alguna de sus propiedades farmacológicas (aumento
sustancial de actividad antifúngica pero no en las actividades
hemolíticas), proporcionando así una ventaja significativa, como
agentes antifúngicos, frente a los tetraenos nativos. Esta
modificación química en ambos derivados conlleva un aumento en la
toxicidad selectiva para las membranas de organismos en cuya
composición interviene el ergosterol. Los inventores han puesto de
manifiesto que se obtiene un resultado similar con pimaricina y su
derivado AB-400, que refuerza la idea de que la
sustitución del grupo carboxílico en los polienos por un grupo amida
aumentará también la toxicidad relativa de otros polienos.
Aunque el mecanismo preciso de la biosíntesis de
estos nuevos polienos amidados permanece desconocido hasta el
presente, pueden postularse, al menos, dos posibles mecanismos: (a)
las amidas serían el resultado de una actividad amidotransferasa
posterior al ensamblaje de la cadena policetónica de la aglicona
(actividad de "adorno" o modificación
post-PKS), la cual bajo las condiciones
experimentales descritas en esta invención podría activarse, o (b)
una actividad malonamil-CoA transferasa
incorporaria, mediante el módulo 7 de condensación de la
correspondiente PKS (Seco E.M. et al, 2004, Chem. Biol.
11:357-366), malonamil-CoA en lugar
de la metilmalonil-CoA como se propone en el modelo
biosintético para la producción de CE-108 y
rimocidina. En este último caso, se requeriría una de condensación
no decarboxilante tipo Claysen, tal como sucede en las tiolasas
biosintéticas (Heath & Rock, 2002, Nat. Prod. Rep.
19:581-596), para la incorporación de malonamida en
la cadena policetónica; en este caso la disponibilidad in
vivo de malonamida como unidad condensante seria crucial para
una buena incorporación en la cadena policetónica creciente. Merece
la pena destacar que la cepa productora también biosintetiza
oxitetraciclina, cuya unidad postulada "de arranque" para la
cadena policetónica es la malonamida; así pues este metabolito
estaría, en esta cepa, fácilmente disponible para la producción de
otros metabolitos secundarios, además de oxitetraciclina.
Aunque se desconoce el mecanismo genético que
conduce a la producción de CE-108B y rimocidina B,
parece claro que se requieren, al menos los plásmidos derivados de
SCP2* (tales como pIJ922 o pIJ941) y el gen ermE.
Recientemente se ha descrito que concentraciones
sub-inhibitorias de eritromicina pueden modular la
transcripción bacteriana (Goh et al., 2002, Proc. Natl.
Acad. Sci. U.S.A. 99: 17025-17030). No obstante, la
posibilidad de que la eritromicina pueda modular la expresión de un
posible regulador transcripcional haciendo posible la etapa de
amidación en un organismo productor de polieno puede descartarse ya
que las amidas también se detectaron en cultivos en los que no se
había adicionado eritromicina. Esto abre la posibilidad de que el
producto del gen ermE (una metilasa) pueda actuar sobre otro
gen intermedio, codificado dentro del ADN de los plásmidos
derivados de SCP2* (pIJ922 ó pIJ941) cuyo resultado final seria la
activación de un gen cromosómico responsable de la amidación de los
polienos naturales de Streptomyces diastaticus var. 108
(rimocidina y CE-108). La presente invención
proporciona un sistema para generar nuevos polienos amidados
mediante biotransformación por una cepa modificada genéticamente.
Este proceso, aplicado de forma satisfactoria a la ruta
biosintética de polienos comerciales, seria indudablemente un
proceso sencillo para la producción de compuestos farmacéuticos
mejorados. Dada la complejidad de las estructuras poliénicas a que
hace referencia esta invención, la biotransformación que se propone
en esta invención para generar compuestos poliénicos amidados
constituye un proceso indudablemente más eficiente que los
descritos hasta el momento por síntesis orgánica para generar
algunas estructuras semisintéticas.
Un cultivo del microorganismo Streptomyces
diastaticus var. 108 conteniendo el plásmido pSM784,
identificado en esta descripción como Streptomyces
diastaticus var. 108/784, ha sido depositado en Deutsche
Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH (DSMZ),
Braunschweig, Alemania, el 14 de marzo de 2005, correspondiéndole
el número de acceso DSM 17187.
Claims (25)
1. Un compuesto de fórmula (I)
en
donde
R es NH_{2}; y
R_{1} es alquilo
C_{1}-C_{3}
sus isómeros, sales, profármacos o
solvatos.
2. Compuesto según la reivindicación 1,
seleccionado entre los compuestos identificados como rimocidina B
(Ia) y CE-108B (Ib):
\vskip1.000000\baselineskip
3. Una composición biocida que comprende un
compuesto de fórmula (I) según la reivindicación 1, junto con un
vehículo inerte.
4. Composición según la reivindicación 3, en la
que dicho compuesto de fórmula (I) se selecciona entre rimocidina B
(Ia), CE-108B (Ib) y sus mezclas.
5. Una composición farmacéutica que comprende un
compuesto de fórmula (I) según la reivindicación 1, junto con,
opcionalmente, uno o más excipientes farmacéuticamente
aceptables.
6. Composición según la reivindicación 5, en la
que dicho compuesto de fórmula (I) se selecciona entre rimocidina B
(Ia), CE-108B (Ib) y sus mezclas.
7. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 5 ó 6, que comprende, además, uno o más agentes
terapéuticos.
8. Empleo de un compuesto de fórmula (I) según
la reivindicación 1, en la elaboración de un medicamento o
composición para la prevención y/o el tratamiento de la infección
causada por organismos patógenos de humanos o animales,
pertenecientes al siguiente grupo: hongos, microorganismos del
género Trypanosoma y microorganismos del género
Leishmania, comprendiendo todos ellos ergosterol en su
membrana.
9. Empleo según la reivindicación 8, en la que
dicho compuesto de fórmula (I) se selecciona entre rimocidina B
(Ia), CE-108B (Ib) y sus mezclas.
10. Una composición antifúngica que comprende un
compuesto de fórmula (I) según la reivindicación 1, junto con,
opcionalmente, uno o más vehículos inertes.
11. Composición según la reivindicación 10, en
la que dicho compuesto de fórmula (I) se selecciona entre
rimocidina B (Ia), CE-108B (Ib) y sus mezclas.
12. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 10 ú 11, que comprende, además, uno o más agentes
antifúngicos.
13. Un método para controlar la infección
causada por hongos fitopatógenos en una planta que comprende
aplicar a dicha planta, o al medio que la rodea, una composición
antifúngica según cualquiera de las reivindicaciones 10 a 12.
14. Un método para controlar la infección
causada por hongos fitopatógenos en un fruto que comprende aplicar
a dicho fruto una composición antifúngica según cualquiera de las
reivindicaciones 10 a 12.
15. Un método para controlar la infección
causada por un hongo capaz de desarrollarse en un preparado
alimentario que comprende aplicar a dicho preparado alimentario una
composición antifúngica según cualquiera de las reivindicaciones 10
a 12.
16. Vector identificado como pSM784
caracterizado porque se ha clonado en el sitio EcoRV del
vector conocido pIJ941 el gen de resistencia a eritromicina
(ermE).
17. Vector identificado como pSM743B
caracterizado porque se han clonado en el sitio EcoRV del
vector conocido pIJ922 los genes xysAP, rimA y
ermE.
18. Un microorganismo Streptomyces
diastaticus var. 108/784 (número de depósito DSM 17187) útil
para la producción del compuesto según fórmula (I)
caracterizado porque se obtiene mediante la transformación de
la cepa conocida Streptomyces diastaticus var. 108 con el
vector pSM784 según la reivindicación 16.
19. Un microorganismo Streptomyces
diastaticus var. 108/743B útil para la producción del compuesto
según fórmula (I) caracterizado porque se obtiene mediante
la transformación de la cepa conocida Streptomyces
diastaticus var. 108 con el vector pSM743B según la
reivindicación 17.
20. Un microorganismo Streptomyces
diastaticus var. 108::PM1-500/743B útil para la
producción del compuesto según fórmula (I) caracterizado
porque se obtiene mediante la transformación de la cepa conocida
Streptomyces diastaticus var. 108 mediante integración del
fago PM1-500 y transformación con el vector pSM743B
según la reivindicación 17.
21. Empleo de un microorganismo según cualquiera
de las reivindicaciones 18 a la 20 en la obtención de un compuesto
de fórmula (I) según la reivindicación 1.
22. Empleo según la reivindicación 21, en el que
dicho compuesto de fórmula (I) se selecciona entre rimocidina B
(Ia), CE-108B (Ib) y sus mezclas.
23. Empleo según la reivindicación 21 en el que
dicho compuesto de fórmula (I) se selecciona entre, rimocidina
(IIa), CE-108 (IIb) y sus mezclas.
24. Caldo de fermentación de un microorganismo
según las reivindicaciones 18 a la 20 que comprende un compuesto
seleccionado entre un compuesto de fórmula (I) según la
reivindicación 1, rimocidina (IIa), CE-108 (IIb) y
sus mezclas.
25. Caldo de fermentación según la
reivindicación 24, en el que dicho compuesto de fórmula (I) se
selecciona entre rimocidina B (Ia), CE-108B (Ib) y
sus mezclas.
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ES200500701A Expired - Fee Related ES2323253B1 (es) | 2005-03-23 | 2005-03-23 | Nuevos polienos amidados, procedimiento para su obtencion y aplicaciones. |
Country Status (1)
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---|---|
ES (1) | ES2323253B1 (es) |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4365058A (en) * | 1979-07-18 | 1982-12-21 | Politechnika Gdanska | Method of preparation of esters of antibiotics selected from the group consisting of polyene macrolides and of N-substituted derivatives thereof |
US4783527A (en) * | 1979-04-09 | 1988-11-08 | Politechnika Gdanska | Amides of amphoteric polyene macrolide antibiotics |
-
2005
- 2005-03-23 ES ES200500701A patent/ES2323253B1/es not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4783527A (en) * | 1979-04-09 | 1988-11-08 | Politechnika Gdanska | Amides of amphoteric polyene macrolide antibiotics |
US4365058A (en) * | 1979-07-18 | 1982-12-21 | Politechnika Gdanska | Method of preparation of esters of antibiotics selected from the group consisting of polyene macrolides and of N-substituted derivatives thereof |
Non-Patent Citations (4)
Title |
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PANDEY, R. C., RINEHART, K. L. Jr. Polyene antibiotics. VIII . 1, 2\\ The structure of rimocidin. The Journal of Antibiotics. 1977, Vol. 30, N$^{o}$ 2, páginas 146-157. ISSN 0021-8820. * |
PANDEY, R. C., RINEHART, K. L. Jr. Polyene antibiotics. VIII. The structure of rimocidin. The Journal of Antibiotics. 1977, Vol. 30, Nº 2, páginas 146-157. ISSN 0021-8820. * |
SECO, E. M., PÉREZ-ZÚÑIGA, F. J., ROLÓN, M. S, MALPARTIDA, F. Starter unit choice determines the production of two tetraene macrolides, rimocidin and CE-108, in Streptomyces diastaticus var. 108. Chemistry and Biology. Marzo 2004, Vol. 11, N$^{o}$ 3, páginas 357-366. ISSN 1074-5521. * |
SECO, E. M., PÉREZ-ZÚÑIGA, F. J., ROLÓN, M. S, MALPARTIDA, F. Starter unit choice determines the production of two tetraene macrolides, rimocidin and CE-108, in Streptomyces diastaticus var. 108. Chemistry and Biology. Marzo 2004, Vol. 11, Nº 3, páginas 357-366. ISSN 1074-5521. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
ES2323253B1 (es) | 2010-04-23 |
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