ES2317023T3 - Metodo para reclonar celulas de produccion. - Google Patents
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Abstract
Método para la clonación de células, que se caracteriza porque a) se depositaban menos de 5 células mamíferas en presencia de células feeder autógenas en un recipiente de cultivo en unas condiciones libres de suero y se cultivaban y multiplicaban en unas condiciones libres de suero, b) las células mamíferas depositadas se multiplicaban en un cultivo en suspensión sin suero, c) en el caso de células feeder, se trataba de células cultivadas de forma no adherente, y adaptadas a un medio libre de suero y d) la eficacia de la reclonación es mayor al 10% en la reclonación de células depositadas del modo correspondiente.
Description
Método para reclonar células de producción.
La presente invención se refiere al sector de la
tecnología del cultivo celular y al método para la reproducción o
multiplicación/clonación de células, preferiblemente de estirpes
celulares, que son importantes para la producción de productos
biofarmacéuticos así como a las composiciones que facilitan una
reproducción de las estirpes celulares.
Para la fabricación biotecnológica de proteínas
terapéuticas o activas desde el punto de vista biológico en células
mamíferas, los llamados "biofármacos", las correspondientes
células mamíferas son transinfectadas de forma estable con el ADN,
que codifica la correspondiente proteína biológicamente activa (o
bien sus subunidades). Tras el proceso de transinfección
normalmente se obtiene una acumulación de millones de células
transinfectadas de forma diferente. Por tanto la etapa decisiva
para la fabricación de estirpes celulares de producción eficientes
se basa en la selección y reproducción de clones celulares, que por
un lado crecen de forma muy estable y por otro lado muestran una
elevada productividad específica de proteínas terapéuticas
(formación del producto, etc.). Puesto que existen millones de
células que expresan el producto de forma distinta, resulta decisivo
poder analizar individualmente una multitud de células, para poder
elegir los candidatos apropiados (clones celulares
individuales), que crecen de forma muy robusta así como aportan
un valor o título de producto asimismo elevado. Este proceso de
aislamiento de células individuales y de subcultivo se conoce como -
clonación o bien reclonación.
La selección de células transinfectadas es
posible, por ejemplo, a través de la clasificación o selección
celular activada por la fluorescencia (FACS), de manera que la
expresión de la proteína terapéutica se relacione con la expresión
de una proteína marcador. Para ello se expresan conjuntamente en una
célula, por ejemplo, las proteínas que emiten fluorescencia y sus
variantes de Aequorea victoria, Renilla reniformis o bien
otras especies, como por ejemplo, las proteínas rojas, amarillas,
violetas, verdes fluorescentes o sus variantes de organismos no
bioluminiscentes como, por ejemplo, Discosoma sp., Anemonia sp.,
Clavularia sp., Zoanthis sp., junto con la proteína terapéutica.
Sobre la intensidad de la fluorescencia se pueden sacar conclusiones
respecto a la productividad específica y al comportamiento del
crecimiento de las células.
Sin embargo, existe la dificultad de depositar
las células de producción recombinantes típicas como las células de
mieloma (NSO) de ratón, ovario de hámster (CHO) o riñón de hámster
(BHK), en particular, cuando se adaptan al crecimiento en cultivos
de suspensión libres de suero, es decir en unas modernas condiciones
del cultivo celular relevantes en cuanto a la producción, de forma
aislada en recipientes de cultivo, por ejemplo, en las cavidades de
las microplacas, en cultivos libres de suero, y se multiplican de
forma eficiente (reclonación). Por ejemplo, en un cultivo en unas
condiciones sin suero se depositan solamente escasas células, menos
de 5 células, por lo que estás células mayoritariamente no se
reproducen o si lo hacen se reproducen de forma poco eficaz. Se
sospecha que el motivo de ello no reside en el contacto existente
entre célula y célula, en la necesidad de un gran factor de
crecimiento/nutriente en el caso de una densidad celular escasa y/o
si falta o existe una concentración mínima de factores de
señalización y acondicionamiento difusibles.
A nivel técnico el problema de la clonación de
células aisladas libres de suero en las células de producción
recombinantes mencionadas consiste en que los clones celulares son
generados conforme al método de la "limited dilution".
Es decir, se saturan un mínimo de 5 hasta 10 células en un medio sin
suero en un recipiente de cultivo y seguidamente se hacen pasar por
reiteradas clonaciones de la dilución, para obtener desde el punto
de vista estadístico un cultivo formado por células genéticamente
idénticas (método = limited dilution). Este tipo de
reclonación ahorra tiempo por un lado y por otro conduce a cultivos
de mezcla heterogénea desde el punto de vista genético, puesto que
el procedimiento se basa en un cálculo estadístico y no en un
cultivo real de cada una de las células idénticas genéticamente
depositadas de forma aislada. Estos cultivos de mezcla heterogéneos
se caracterizan en general por una limitada fortaleza en su
fermentación y un perfil de expresión heterológico.
Alternativamente, se pueden generar estirpes
celulares de producción relevante de clones de células aisladas
solamente por deposición de cada célula de las células adherentes
adaptadas al suero. Así Meng y cols. (2000) mencionan por ejemplo,
un método para la deposición de células aisladas de células CHO que
crecen adheridas en un medio que contiene suero. El método descrito
por Meng y cols., tiene sin embargo un inconveniente importante:
Debido a la adherencia de las células puede producir unas lesiones
notables en las células y alteraciones en el crecimiento y en la
productividad de las células reclonadas debido a la costosa
disolución enzimática de las células de la base (tratamiento con
tripsina). Además los clones de las células aisladas obtenidos se
deben adaptar seguidamente al crecimiento libre de suero en un
cultivo, lo que ordinariamente está ligado a un gasto elevado de
tiempo así como a una productividad alterada de células y de calidad
del producto (compárese aquí con Kaufmann y cols., 2001; Mueller y
cols., 1999).
Mediante el empleo de células nutritivas,
conocidas también como células feeder, al cultivar células
que crecen de forma adherente se pueden ver influidas de forma
positiva las propiedades de crecimiento de las células o bien se
reproducen algunos tipos de células básicamente en las condiciones
del cultivo celular. Aquí los ejemplos son células de
hombre-ratón o bien de hibridoma de
ratón-ratón (Hinak y cols., US 5.008,198),
queratinocitos primarios (Rheinwald y Green, 1975; WO9954435),
células madre (Williams y cols., 1988) y diferentes células
tumorales (Wee Eng Lim y cols., 2002; Rexroad y cols., 1997; Peng y
cols., 1996; Grigoriev y cols., 1996; Sanchez y cols., 1991;
Butcher y cols., 1988; Long y cols., 1986; Shenyour y cols., 1984;
Pintus y cols., 1983; Brodin y cols., 1983). Las células
feeder son la mayoría células detenidas en su crecimiento
física o químicamente, las cuales debido a un pretratamiento
especial han ajustado su capacidad para la división celular, por lo
que se mantienen vitales una media de 2 a 3 semanas. Por lo tanto
las células feeder están en condiciones de aportar factores
al medio que favorezcan el crecimiento y por lo tanto pueden
favorecer el crecimiento inicial de células no retenidas o bien
facilitarlo en el caso de diferentes células primarias. Para ello se
colocarán las células feeder en un recipiente de cultivo
formando una "monocapa". A continuación, se colocan en placas
las células que se van a cultivar de forma adherente sobre o entre
las células feeder y se cultivan en unas condiciones
estándar. Las células feeder se pueden fabricar, por ejemplo,
mediante irradiación o tratamiento con mitomicina C
(Azirino(2',3':3,4)pirrolo(1,2-a)indol-4,7-diona,6-amino-8-[[aminocarbonil)oxi]metil]-1,1a,2,8,8a,8b-hexahidro-8a-metoxi-5-metil-,[1aR-(1a.alfa.,8.beta.,8a.alfa.,8b.alfa.)]
(9Cl) (Butcher y cols, 1988). Las células primarias como las
células del bazo, los fibroblastos, las células sanguíneas (Morgan,
Darling; Kultur tierischer Zellen. Spectrum Akademischer Verlag
1994, pág 115f) y los macrófagos (Hlinak y cols., 1987) se han
descrito en los sistemas celulares Feeder. En relación con la
producción de anticuerpos en las células del hibridoma se ha
descrito la utilización de células feeder y la selección
celular basada en FACS. Hlinak y cols. (1987), por ejemplo,
describen una eficacia de reclonación del 33 hasta del 57% en la
reclonación de células del hibridoma que crecen de forma adherente a
base de dos (2) células por recipiente de cultivo. En las células
del hibridoma empleadas se trataba en general de células adaptadas a
un medio que contiene suero y que crece de forma adherente.
En la utilización de células feeder
heterogéneas, en especial de células feeder humanas para la
generación de células de producción existe un riesgo de
contaminación considerable por el virus de la enfermedad, como por
ejemplo, virus, bacterias o micoplasmas. Además muchas de las
células feeder (primarias) descritas necesitan un medio que
contiene suero, lo que inicialmente incrementa el riesgo de la
contaminación y en segundo lugar tiene el riesgo de que se deben
readaptar células de producción adaptadas al crecimiento libre de
suero lo que resulta caro.
En la utilización de células feeder
heterogéneas, en general, se necesita una contraselección de células
feeder. Las células de producción se basan, en general, en
una presión de selección, por ejemplo, por el empleo de aditivos de
medios (antibióticos como G418) y/o medios no completos (falta de
hipoxantina, timidina). Esta presión de selección permite la
selección de células, que han integrado y recogido la
correspondiente información genética para, por ejemplo, una proteína
recombinante. El medio así formado, adaptado a la célula de
producción influye de forma decisiva en el crecimiento de las
células feeder y conduce, enlazado al medio de producción no
compatible, a una muerte muy rápida de las células feeder.
Por ello no se garantiza la función de las células
feeder.
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Un cometido de la presente invención consistía
en hallar un método de reclonación eficiente, que a base de menos de
cinco células, preferiblemente de una célula, permita una
reproducción de células mamíferas relevante en la producción en unas
condiciones sin suero y en un cultivo en suspensión. En particular,
el cometido consiste en preparar el método correspondiente para la
reclonación de células BHK o CHO aisladas habitualmente de hámster
así como para células de mieloma aisladas de ratón, por ejemplo,
células de NS0.
Otro cometido de la invención era disponer de
composiciones que facilitaran la ejecución de los correspondientes
métodos de reclonación, en particular de aquellos, que permiten una
reclonación de células de mieloma de hámster o también de ratón.
Estos cometidos se resuelven mediante los
objetos conforme a la invención definidos en las reivindicaciones,
los cuales hacen referencia conforme a un aspecto de la invención a
un método para la clonación de células, que se caracteriza porque
menos de cinco, preferiblemente una (1) o (2) células mamíferas,
preferiblemente células de mieloma de ratón, en presencia de células
feeder, preferiblemente de origen autógeno, se colocan en un
recipiente de cultivo en unas condiciones sin suero y se cultivan y
se reproducen en unas condiciones sin suero. Un aspecto especial de
la invención se refiere a un método determinado para la reclonación
de células CHO ó BHK (células de hámster) o bien células NS0
(células de mieloma de ratón), preferiblemente cuando en las células
correspondientes se trata de aquellas que se adaptan a un
crecimiento libre de suero en cultivos en suspensión.
Otro aspecto de la invención se refiere a un
método correspondiente para la reclonación de células CHO-, BHK o
bien NS0, que se caracteriza por, que las células CHO se emplean
como células feeder cuando en las células mamíferas que se
van a clonar se trata de células CHO, que las células BHK se emplean
como células feeder cuando en las células mamíferas que se
van a clonar se trata de células BHK, y porque las células NS0 se
emplean como células feeder cuando en las células que se van
a clonar se trata de células NS0.
Los métodos conforme a la invención se
caracterizan por una buena eficacia de reclonación superior al 10%,
preferiblemente superior al 20%, en particular para las células
depositadas de forma aislada. Según otra forma de ejecución los
métodos de reclonación conforme a la invención disponen de una
eficacia de reclonación superior al 30%, preferiblemente superior al
40%, en especial superior al 50%, preferiblemente superior al 60%,
incluso superior al 70%, o incluso superior al 80%.
En este caso se consideran eficientes las
eficacias de reclonación del 10 hasta más del 65% en la reclonación
de cada una de las células CHO, del 10 hasta más del 50% en la
reclonación de cada una de las células BHK depositadas y de un 10
hasta de un 45% en la reclonación de cada una de las células NS0
depositadas. Cuando se depositan más de una (1) célula por
recipiente de cultivo, por ejemplo, dos, tres o cuatro, la eficacia
de reclonación para las células correspondientes se sitúa por encima
de los valores indicados para las células correspondientes para la
reclonación de células CHO, BHK y NS0.
Otro aspecto de la invención hace referencia a
un método correspondiente para la reclonación de células mamíferas,
en particular, células de mieloma de ratón o hámster, en el cual se
reproducen las células que se clonan en presencia de 100 hasta
200.000 células feeder por ml de medio.
Además la presente invención se refiere a las
composiciones que constan de un medio de cultivo libre de suero, con
menos de cinco células mamíferas capaces de dividirse y a las
células mamíferas capaces de dividirse y se refiere a las células
mamíferas capaces de dividirse, las células feeder autógenas.
Conforme a otro aspecto de la invención en las células mamíferas
capaces de dividirse se trata de células que se adaptan al
crecimiento libre de suero como cultivo de suspensión. En otra forma
de ejecución especial, la composición tiene únicamente una (1) o dos
(2) células mamíferas capaces de dividirse en el medio de cultivo.
Preferiblemente, en las células mamíferas capaces de dividirse se
trata de células de hámster, como por ejemplo células CHO ó BHK, o
células de mieloma de ratón, por ejemplo, células de NS0.
Conforme a otro aspecto según la invención, la
composición contiene células de hámster, preferiblemente células CHO
como células feeder, cuando en las células mamíferas capaces
de dividirse se trata de células CHO. Se trata de células BHK en las
células mamíferas capaces de dividirse, por lo que la composición
contiene asimismo células de hámster, preferiblemente células BHK
como células feeder. En el caso de células mamíferas capaces
de dividirse se trata de células de mieloma de ratón, por ejemplo,
células NS0, por lo que la composición además contiene células de
mieloma de ratón como células feeder, en el caso de células
NS0 asimismo células NS0 como células feeder.
Sorprendentemente se ha descubierto que mediante
el empleo de células feeder autógenas en suspensión, algunas
células mamíferas, preferiblemente las células de mieloma de hámster
o de ratón, se pueden depositar en un medio libre de proteínas y/o
de suero y crecer en cultivos y por tanto vencer los inconvenientes
mencionados antes en la reclonación, por ejemplo por la dilución
limitada, o bien la adaptación de estirpes celulares
mononucleares al crecimiento sin suero en un cultivo en
suspensión.
Contrariamente a ello se ha descrito en la
tecnología actual (Hugin A.W.: "Cloning of cells with autologous
feeder cells" Journal of immunological methods, Elsevier science
publishers B.V., Amsterdam, NL.Bd.205, Nr.2, 14 Juli 1997, páginas
211-212) solamente un método para mejorar la
eficacia de la reclonación utilizando células Feeder autógenas en un
medio que contiene suero. Sin embargo, Hugin no habla de una
reclonación libre de suero de células mamíferas en un cultivo en
suspensión
El método conforme a la invención facilita la
deposición de las células mamíferas correspondientes en un medio de
producción definido químicamente o sin proteínas, libre de suero, de
manera que corresponde a una adaptación realizada normalmente en un
medio de producción libre de proteínas o de suero. Esto conduce a
una acortamiento esencial de los tiempos de desarrollo (aprox. 50%)
al establecer las estirpes celulares relevantes en producción.
Además la deposición de una sola célula conduce a clones celulares
homogéneos, estables, lo que es esencial para la producción de
biofármacos. Además la utilización de células feeder
autógenas para la reclonación de células CHO, BHK o NS0 relevantes
en la producción, por ejemplo, la utilización de células de hámster,
preferiblemente células CHO o BHK, por ejemplo células de mieloma de
ratón, preferiblemente, células NS0, representa un riesgo de
contaminación mínimo en cuanto al virus de la enfermedad
humano-patógeno como la utilización de células
humanas o bien peor caracterizadas.
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Figura 1 muestra la correlación entre la dosis
de energía que se ha empleado en la fabricación de células
feeder, y la eficacia de clonación en la reclonación de
células aisladas CHO-DG44 depositadas de forma
automatizada. La deposición de células se realizaba sobre
aproximadamente 2000 células autógenas inactivadas feeder. A
partir de los gráficos se deduce que con la dosis de energía de
20-500 Gy las células feeder irradiadas
liberan suficientes factores al medio, de manera que más del 65% de
los clones aislados depositados dan lugar a colonias con 50 Gy.
Figura 2 muestra la productividad de los
cultivos de CHO-DG44 que expresan anticuerpos, que
se obtienen por la dilución limitada (columna izquierda) o bien
deposición de células aisladas (columna derecha). En la columna
izquierda se representa la productividad de 6 cultivos, los cuales
se han obtenido por medio de la dilución limitada. En la mitad
derecha se representa la productividad de 6 clones aislados de la
deposición automatizada de células aisladas. Para determinar la
productividad se realizaban tres ensayos paralelos por clon
celular/cultivo. Contrariamente a las clonaciones mediante
"dilución limitada", la clonación por la deposición
automatizada de clones individuales conducía a una dispersión
básicamente menor en la productividad. Los subcultivos cultivados en
paralelo y procedentes de un clon individual muestran una
homogeneidad esencialmente superior en cuanto a su productividad en
comparación con los subcultivos que se obtienen tras la dilución
limitada.
Figura 3a muestra el título de producto de los
clones celulares CHO-DG44 depositados por separado y
seleccionados según diferentes criterios. En el gráfico A inferior
se han depositado las células aisladas, que únicamente satisfacían
el criterio de selección de "células vivas". Este criterio se
ha definido en un citómetro de flujo sobre la aplicación
Forward-Side-Scatter. No se
realizaba una selección según la fluorescencia de las células. Por
el contrario, en los gráficos B y C medio y superior adicionalmente
al criterio de selección de "células vivas" se acoplaba de
forma lógica el criterio de selección de "fluorescencia de las
células". Se realizaba además una especificación posterior del
criterio de selección "Fluorescencia de las células" sobre la
intensidad de la fluorescencia. Para ello se depositaban por un lado
los clones celulares que emitían fluorescencia en un 20% y por otro
lado los que emitían fluorescencia en un 5%. En la desviación a la
derecha del histograma C se puede ver que el porcentaje de clones
celulares muy expresados al utilizar el criterio de células
fluorescentes en un 5% aumenta claramente frente a los criterios
habituales de selección empleados en A y B.
Figura 3b se basa en los datos visualizados en
la figura 3a. Se representa la probabilidad porcentual, para obtener
un productor con una productividad media doble (=productor
elevado).En los datos que se obtenían para todas las células vivas,
se adaptaba una distribución normal y se determinaba el título
medio. A partir de la función de distribución para la distribución
normal se calculaba entonces el porcentaje en el cual los clones
celulares obtenidos sobre la deposición de cada una de las células
poseen el título doble o elevado. Este porcentaje se representaba en
la figura 3b. A partir del gráfico se pone de manifiesto que la
probabilidad de un productor elevado en el empleo adicional del
criterio del 5% superior en comparación con el empleo del criterio
de células vivas aumenta en más de 20 veces.
Antes de que se explique seguidamente la
invención con ayuda de los ejemplos de ejecución no limitados
resulta que la utilización de artículos indeterminados, por ejemplo,
"un" o "una", así como de artículos determinados como
"el", "la", incluyen el singular y plural del término
correspondiente, siempre que una de ambas formas quede excluida de
un modo explícito y se indique o remita a una forma determinada
(singular, plural). Así el concepto "una célula" incluye
automáticamente "varias células", pues indica de forma
explícita que solamente se refiere a una única célula. El singular
se refiere explícitamente donde "una" se sustituye por (1).
El término "clonación/reclonación",
"clonar/reclonar" significa en relación con el cultivo celular
una técnica, con cuya ayuda se puede obtener una población celular
de células idénticas a partir de una célula de origen. La expresión
"clonación celular" o también "clonación de una sola
célula" se refiere por tanto a un método, en el cual a partir de
un conjunto de células se identifican algunas células con células de
genotipo diferente, se aíslan y seguidamente se multiplican en una
población celular formada por una multitud de células idénticas
desde el punto de vista genético. Para ello las células se depositan
de una en una, es decir, una (1) célula por recipiente de cultivo,
y a continuación se expanden en una población celular de células
idénticas, así que se trata de un método de "clonación directa de
cada una de las células". Si se depositan varias células al mismo
tiempo en un recipiente de cultivo, se expanden en una población
celular y ésta mediante una dilución reiterada (=dilución
limitada) se distribuye en poblaciones celulares de idénticas
células, entonces hablaremos de un método de "clonación
indirecta".
En el caso de "clones aislados" se trata de
células idénticas genéticamente que proceden de una única (1)
célula. Una población celular formada por idénticas células de la
misma procedencia se conocerá seguidamente como "población
celular monoclonal". Durante el cultivo de células del mismo
origen se producen cambios espontáneos del genoma, por ejemplo,
mutaciones y/o translocaciones, de manera que cada una de las
células de esta población celular se considera como células
idénticas en el sentido de la presente invención, y el cultivo se
entiende como población celular monoclonal. Por el contrario, en un
conjunto de células transinfectadas de forma estable
(transinfectantes) no se trata de clones celulares de misma
procedencia, es decir no de una población celular monoclonal,
incluso cuando se transinfectan células inicialmente idénticas
genéticamente con un ácido nucleico idéntico.
El término "subclones/subcultivos" se
refiere a diferentes generaciones de células, que se forman en base
a una célula origen/cultivo origen mediante el pase simple o
múltiple de las células divisorias. Por ejemplo, se habla de
"subclones/subcultivos", cuando se cultivan y se reproducen
idénticas células/cultivos celulares en varias generaciones.
Por una "reclonación eficiente o eficaz" se
entiende una eficiencia de clonación decoro mínimo un 10%,
preferiblemente de al menos un 20%, más preferiblemente de al menos
un 30% y todavía más preferible de al menos un 40%. De acuerdo con
una configuración especialmente preferida de la presente invención
se entiende por una reclonación efectiva una clonación con una
eficiencia de cómo mínimo un 50%, preferiblemente de cómo mínimo un
60%, más preferiblemente de un 70% como mínimo, y de incluso un
80%.
El término "eficiencia de clonación" se ha
definido como el porcentaje de células que se pueden formar tras la
deposición de poblaciones celulares vitales de preferiblemente más
de 50 células. Por ejemplo, en una selección celular se distribuyen
50 células en 50 recipientes de cultivo y crecen 25 de cada una de
estas 50 células depositadas, de manera que la eficacia de clonación
es del 50% (25 de 50).
La expresión "capaz de
dividirse/expandible" en el sentido de la presente invención
describe el potencial de una célula/población celular a poder
dividirse de forma ilimitada, al menos en 2, preferiblemente en 4
pases. Este potencial puede verse reducido o alterado por completo,
por ejemplo, mediante la irradiación con ^{137}Cs o bien mediante
el tratamiento con mitomicina C.
La expresión "derivado/descendiente" se
refiere a las células, que genéticamente se atribuyen a una
determinada célula de partida o inicial y, por ejemplo, son
generadas por el subcultivos (con o sin presión de selección) y/o
por la manipulación genética. Los re-aislamientos de
células del mismo tipo celular son registrados asimismo por la
expresión "Derivado/descendiente". Así por ejemplo todos los
derivados/descendientes de estirpes celulares CHO equivalen a las
células de hámster de Cricetulus griseus aisladas en 1958 por
Puck y cols., independientemente de si se obtenían por cultivo,
re-aislamiento o manipulaciones genéticas.
El término "células feeder
autógenas" significa que tanto las células feeder como
también las células que se van a cultivar en presencia de estas
células feeder proceden de forma taxonómica del mismo origen.
En las células que se van a cultivar se trata de por ejemplo una
célula de hámster (subfamilia de Cricetinae), preferiblemente
de una célula de la especie Cricetulus o Mesocricetus,
por ejemplo, de una célula CHO o bien BHK, así que cada una de estas
células feeder aislada originalmente de esta subfamilia
representa una célula feeder autógena para estas células de
hámster de la subfamilia Cricetinae. Según una configuración
preferida el término "célula feeder autógena" significa
que tanto las células feeder como también las células que van
a ser cultivadas de forma taxonómica proceden de la misma especie o
bien han sido aisladas originariamente de la misma especie (células
de Cricetulus o bien Mesocricetus). Se trata en el caso de
células que van a ser cultivadas, de una célula de hámster de la
especie Cricetulus o Mesocricetus, preferiblemente de
una célula CHO o bien BHK, de manera que cada una de las células
feeder aislada originariamente de la especie respectiva
representa una célula feeder autógena en el sentido de esta
invención. Conforme a otra configuración preferida existe también
una "célula feeder autógena", siempre que las células
feeder y las células que van a ser cultivadas procedan de la
misma especie, por ejemplo, Cricetulus griseus o
Mesocricetus auratus. Según otra configuración especialmente
preferida existe también una "célula feeder autógena", siempre
que las células feeder y las células que van a ser cultivadas
procedan de la misma especie y dispongan del mismo tropismo de
tejido (por ejemplo, células de ovario de Cricetulus griseus-
células CHO). Conforme a otra configuración especialmente preferida
en el caso de una célula feeder se trata de una "célula
feeder autógena", siempre que las células feeder y las
células que van a ser cultivadas procedan de la misma célula de
base, por ejemplo, cuando en el caso de ambas células se trata
originalmente de células CHO-DG44 o bien derivados
de estas células. Conforme a otra configuración preferida, la célula
feeder proporciona la misma resistencia, por ejemplo frente a
los antibióticos, que la célula que va a ser cultivada. Esto es
especialmente una ventaja cuando la deposición celular se realiza en
presencia de un medio de selección, por ejemplo, un antibiótico.
El término "sin suero" equivale a los
medios de cultivo así como a las condiciones del cultivo, que se
caracterizan porque las células son cultivadas en presencia de suero
humano y/o animal, preferiblemente en presencia de cualquier
proteína aislada del suero, preferiblemente en presencia de
proteínas obtenidas de forma no recombinante. Como consecuencia de
ello la expresión "células adaptadas a las condiciones sin
suero" equivale a aquellas células que pueden reproducirse en
presencia de suero humano o animal o bien de proteínas de suero.
El concepto "libre de proteínas" significa
que el medio de cultivo no contiene proteínas animales, por lo que
las proteínas aisladas de bacterias, hongos o levadura, no se
entienden como proteínas animales.
El concepto "definido químicamente"
describe un medio de cultivo, que está libre de suero,
preferiblemente de proteínas, y consta de sustancias definidas
químicamente. Los medios definidos químicamente constan por tanto de
una mezcla de sustancias preferiblemente puras. Un ejemplo de un
medio definido químicamente es, por ejemplo, el medio
CD-CHO de la empresa Invitrogen (Carlsbad, CA,
US).
La expresión "una célula cultivable en
suspensión" se refiere a las células, que se adaptan al
crecimiento en cultivos líquidos ("cultivos de suspensión") y
cuya capacidad para adherirse a las superficies de los recipientes,
por ejemplo a las placas de cultivo, es limitada o bien se pierde.
Las células que se adaptan tanto al crecimiento libre de suero como
al crecimiento en suspensión se conocen como "células adaptadas al
medio libre de suero y no adherentes". Si se preparan a partir de
dichos cultivos células feeder, se trata conforme a la
definición de "células feeder no adherentes y adaptadas al
medio sin suero".
La presente invención se refiere a un método
para la clonación de células, que se caracteriza porque menos de
cinco, por ejemplo, cuatro, tres, dos o una (1) célula mamífera se
depositan en presencia de células feeder, preferiblemente
células feeder autógenas, en un recipiente de cultivo en unas
condiciones libres de suero, y se cultivan y se multiplican en unas
condiciones libres de suero. De acuerdo con una configuración
preferida, la presente invención se refiere a un método
correspondiente para la clonación de células mamíferas, que se
caracteriza porque una (1) o dos células mamíferas se depositan por
recipiente de cultivo en unas condiciones sin suero y en presencia
de células feeder autógenas en unas condiciones libres de
suero. En otra configuración especialmente preferida se trata de un
método para la clonación de células aisladas, que se caracteriza
porque una (1) célula mamífera se deposita en presencia de
células feeder autógenas en un recipiente de cultivo en unas
condiciones libres de suero, se cultiva y se reproduce en unas
condiciones sin suero. En otra configuración especialmente
preferida en el caso de la célula depositada y de la célula que va a
ser cultivada se trata de una célula que crece en un cultivo en
suspensión.
Si únicamente se deposita una (1) célula por
recipiente de cultivo y se multiplica en una población celular, se
trata en el caso de cada población celular que crece de forma
aislada de una población celular monoclonal, y en el caso del
procedimiento se trata de un método para la clonación directa de
cada célula aislada. Si se depositan y multiplican más de una (1)
única célula por recipiente de cultivo por ejemplo, dos, tres o
cuatro células, se trata entonces en el caso de poblaciones
celulares que crecen de los llamados clones mixtos. Luego éstos
pueden mediante una clonación de cada célula o bien según un método
convencional, por ejemplo, por la dilución reiterada de poblaciones
celulares (dilución limitada) ser transferidos a las
denominadas poblaciones celulares monoclonales estadísticas (ver por
ejemplo, Morgan, Kultur tierischer Zellen, páginas 113 y 114,
Spektrum Akademischer Verlag, 1994).
Con el método llevado a cabo mediante la
presente invención se pueden multiplicar y también clonar en
particular células mamíferas de la subfamilia de las
Murinae, por ejemplo de la especie Mus o de la
subfamilia Cricetinae, por ejemplo, de las especies
Cricetulus o mesocricetus, así como de estas estirpes
celulares aisladas incluyendo sus descendientes/derivados.
Preferiblemente el método conforme a la invención es adecuado para
la reproducción/clonación de células de hámster o de células de
ratón-mieloma, así como de las estirpes celulares
estables derivadas de ellas.
Según ello la presente invención hace referencia
a un método para la clonación de células en presencia de células
feeder, preferiblemente de células feeder autógenas,
que se caracteriza porque para las células mamíferas depositadas y
que se van a clonar se trata de células de hámster o de mieloma de
ratón.
Conforme a una configuración especialmente
preferida los procedimientos conforme a la invención hacen
referencia a métodos para la reproducción/clonación de células de
hámster de la especie Cricetulus (hámster chino) así como de
las estirpes celulares estables derivadas de las células aisladas o
aisladas de esta especie, por ejemplo, de células CHO,
CHO-K1, CHO-DUKX,
CHO-DUKX B1 o CHO-DG44 así como de
los derivados/descendientes de estas estirpes celulares. Un método
especialmente apropiado a la invención es aquel en el que las
células CHO-DG44, CHO-DUKX y
CHO-K1, en particular las células
CHO-DG44 y CHO-DUKX se reproducen y
clonan en presencia de células autógenas feeder. Con ayuda
del método conforme a la invención se pueden multiplicar y también
clonar según el método aquí descrito, células de Mesocricetus
auratus (Syrischer Goldhamster) así como estirpes celulares
estables derivadas de ellas o aisladas, por ejemplo, células BHK21 o
BHK TK así como derivados/descendientes de estas estirpes celulares.
Como consecuencia de ello la presente invención se refiere
preferiblemente a un método para la reproducción y clonación de
células CHO o BHK, así como de sus derivados/descendientes, que se
caracteriza porque menos de cinco, por ejemplo, cuatro, tres, dos o
preferiblemente meramente una (1) célula se depositan en presencia
de células autógenas feeder en un recipiente de cultivo en
unas condiciones sin suero y se cultivan y reproducen.
Además la presente invención se refiere a un
método para la reproducción y en particular para la clonación de
células de mieloma de ratón, preferiblemente de Mus musculus
así como de estirpes celulares estables derivadas de las mismas o
aisladas a partir de ellas, por ejemplo, las células NSO y Sp2/0 así
como los derivados/descendientes de estas estirpes celulares. Este
método se caracteriza porque menos de cinco, por ejemplo,
cuatro, tres, dos o preferiblemente solamente una (1) de estas
células se deposita en presencia de células autógenas feeder
en un recipiente de cultivo en unas condiciones sin suero y se
cultivan y reproducen.
Otros ejemplos para células de hámster y de
ratón, que pueden reproducirse y clonarse conforme a la invención,
se muestran en la tabla 1 siguiente. Además de derivados y
descendientes de estas células/estirpes celulares, otras células de
mamíferos que incluyen las estirpes celulares del hombre, ratón,
rata, o bien de otros roedores como el ratón o el hámster, se pueden
reproducir o clonar según uno de los métodos conforme a la
invención.
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Según la invención, las correspondientes células
mamíferas son cultivadas y depositadas en unas condiciones sin
suero. Si se diera el caso estas etapas se llevan a cabo en unos
medios, que se han definido químicamente y se encuentran libres de
proteínas/péptidos animales. Los ejemplos para los medios que se
obtienen en el comercio son Ham's F12 Medium (Sigma, Deisenhofen,
DE), RPMI-1640(Sigma), Dulbecco's Modified
Eagle's Médium (DMEM;Sigma), Minimal Essential Médium (MEM; Sigma),
Iscove's Modified Dulbecco's Médium (IMDM;Sigma),
CD-CHO(Invitrogen), Carlsbad, Ca.,USA),
CHO-S-SFM-II(Invitrogen),
Medio de CHO libre de suero (Sigma) y medio de CHO libre de
proteínas. Cada uno de estos medios puede ser completado si se diera
el caso con diferentes compuestos, por ejemplo, hormonas y/o otros
factores de crecimiento (por ejemplo, insulina, transferrina, factor
de crecimiento epidérmico, factor de crecimiento similar a la
insulina), sales (por ejemplo, cloruro sódico, calcio, magnesio,
fosfato), tampones (por ejemplo, HEPES), nucleósidos (por ejemplo,
adenosina, timidina). Glutamina, glucosa u otras sustancias
nutritivas equivalentes, antibióticos y/o elementos traza. Para la
selección de células modificadas genéticamente, que expresan uno o
varios genes marcadores de la selección, se pueden añadir al medio
un o varios medios de selección adecuados, por ejemplo,
antibióticos.
Hasta el momento se ha descrito la utilización
de células feeder para el cultivo de células en relación con
el cultivo de células que crecen de forma adherente (por ejemplo,
Wee Eng Lim y cols., 2002; Rexroad y cols., 1997; Peng y cols.,1996;
Grigoriev y cols., 1996; Sanchez y cols., 1991; Butcher y cols.,
1988; Long y cols., 1986; Shneyour y cols., 1984; Pintus y cols.,
1983; Brodin y cols., 1983. Aquí se depositan células feeder
adherentes en un recipiente de cultivo o bien sobre un soporte como
capa para una sola célula (monolayer) y las células que van a
ser cultivadas se cultivan en esta monolayer. Puesto que las
células feeder han perdido su capacidad para crecer más (por
acción natural o bien artificial) las células que se van a cultivar
pueden reproducirse sin que las células feeder tengan que
crecer. Por lo que tanto las células que se van a cultivar como las
feeder son células que crecen de forma adherente.
La presente invención facilita conforme a otra
forma de ejecución según la invención la multiplicación de células
que crecen en suspensión, tanto si se utilizan células feeder
autógenas adherentes como si conforme a otra configuración preferida
se utilizan células feeder autógenas obtenidas en suspensión.
La utilización de células feeder autógenas obtenidas en
suspensión se prefiere especialmente cuando tanto las células
feeder como las células que se van a cultivar proceden de la
misma célula base, por ejemplo cuando en el caso de ambas células se
trata de células que se han adaptado a su crecimiento en suspensión.
Por lo tanto la presente invención hace referencia también a un
método para la reproducción/clonación de las células mamíferas
descritas antes, que se caracteriza porque las células que se van a
cultivar son depositadas, cultivadas y se reproducen en presencia de
células feeder autógenas obtenidas en suspensión. Se prefiere
especialmente un método que se caracteriza porque en el caso de
células que se van a cultivar se trata de células que se adaptan al
crecimiento en suspensión. En este contexto es preferible un método
para la reproducción/clonación de células mamíferas, que se
caracteriza porque la deposición de las células y la multiplicación
de las células mamíferas depositadas se realizan en un cultivo en
suspensión definido químicamente y/o libre de suero y/o de
proteínas.
El número de células feeder autógenas que
se van a emplear en la reproducción/clonación de las células
mamíferas aquí descritas depende fundamentalmente de la naturaleza
de la célula mamífera que se va a reproducir y va a ser clonada y se
puede determinar mediante un simple ensayo de titulación para cada
tipo de célula. Los métodos conforme a la invención para la
reproducción/clonación de células mamíferas se llevan a cabo por
ejemplo en presencia de al menos más de 100 células feeder
autógenas por ml de medio, preferiblemente en presencia de 100 hasta
200.000 células feeder autógenas por ml de medio. En otra
configuración preferida la reproducción/clonación de las células
mamíferas se realiza en presencia de 500 hasta 50.000 células
feeder autógenas. Se prefiere asimismo un método en el cual
la multiplicación/clonación de las células mamíferas se realiza
preferentemente en presencia de 500 hasta 10.000 células
feeder autógenas por ml de medio, preferiblemente en
presencia de 2000 hasta 10.000 células feeder autógenas por
ml de medio.
Según la definición del concepto "células
feeder autógenas", la presente invención se refiere a un
método para la reproducción/clonación de células mamíferas, que se
caracteriza porque las células de hámster, preferiblemente de la
subfamilia Cricetinae, mas preferiblemente de las especies
Cricetulus o Mesocricetus, se emplean como células
feeder, cuando en el caso de células mamíferas depositadas y
que se van a multiplicar/clonar se trata de células CHO o BHK, y se
caracteriza porque las células de mieloma de ratón se emplean como
células feeder, cuando en el caso de células mamíferas
depositadas y que se van a multiplicar /clonar se trata de células
NS0. Se prefiere además un procedimiento para la
reproducción/clonación de células mamíferas que se caracteriza
porque las células CHO se emplean como células feeder, cuando
las células mamíferas depositadas y que se van a reproducir/clonar
son células CHO, que se caracteriza porque las células BHK se
emplean como células feeder, cuando las células mamíferas
depositadas y que se van a reproducir/clonar son células BHK, y que
se caracteriza porque las células NS0 se emplean como células
feeder, cuando las células depositadas y que se van a
reproducir/clonar son células NS0.
Para el caso en que las células mamíferas
depositadas y que se van a cultivar son cultivadas en presencia de
un medio de selección, es adecuada la utilización de células
autógenas feeder, que asimismo disponen de un gen marcador
de selección mediador de la resistencia, con el cual se puede evitar
una muerte rápida de las células feeder en presencia del
medio de selección. Según ello la presente invención se refiere
también a un método para la clonación de células, en especial de las
células de mieloma de ratón o de hámster anteriormente mencionadas,
que se caracteriza porque menos de cinco, por ejemplo, cuatro, tres,
dos o una (1) de estas células mamíferas se deposita en presencia
de células autógenas feeder, en un recipiente de cultivo en
unas condiciones sin suero y se cultivan y se multiplican en unas
condiciones sin suero, de manera que las células autógenas
feeder y las células mamíferas depositadas disponen al menos
de un marcador de selección, que proporciona una resistencia frente
a un medio de selección y al menos la reproducción de las células
mamíferas que se van a clonar se realiza en unas condiciones sin
suero en presencia del medio de selección determinado frente al que
es resistente tanto la célula feeder como la célula mamífera
que se va a clonar.
Las células feeder autógenas se pueden
preparar, por ejemplo, por irradiación con una fuente de rayos
radioactiva, por ejemplo por irradiación con el isótopo de cesio
137. Para el método aquí descrito es preferible la irradiación con
una dosis de energía entre 1 y 1000 Gy. Es especialmente preferible
la utilización de una dosis de energía entre 10 y 300 Gy, a ser
posible entre 20 y 200 Gy. En relación con la clonación de células
de CHO se ha demostrado que la utilización de células feeder
autógenas, por ejemplo de células CHO, resulta preferible y conduce
a una eficacia de clonación eficiente, si éstas se han irradiado con
una dosis de energía entre 1 y 500 Gy. Se ha comprobado que es
especialmente preferible el empleo de células autógenas
feeder que han sido irradiadas con una dosis de energía
entre 20 y 100 Gy, preferiblemente con unos 50 Gy. Fundamentalmente
la dosis de energía óptima para cada célula se puede averiguar de
modo experimental de forma que las células feeder son
tratadas con distintas dosis de irradiación y análogamente al método
descrito en los ejemplos de las configuraciones la eficiencia de
clonación se calcula en función de la dosis de irradiación. Además
de la radiación gamma con ^{137}Cs y ^{60}Co (isótopo de cobalto
60) también es adecuado, por ejemplo, un tratamiento con rayos UV,
rayos de electrones, irradiación radiactiva, rayos de neutrones y
rayos de microondas.
Las células feeder se pueden emplear
directamente o tras una crioconservación, por ejemplo, en nitrógeno
líquido, en uno de los métodos conforme a la invención para la
reproducción/clonación de células mamíferas. Los métodos para la
crioconservación de células mamíferas son conocidos por el técnico y
se han descrito por ejemplo en Freshney (Hers.), Animal cell culture
- un método práctico, IRL-Press 1986, páginas
73-78, al que aquí se hace referencia.
Los presentes métodos son adecuados para
reproducir las células mamíferas depositadas hasta una densidad de
1x10^{5} hasta 4x10^{6} ml de medio en el recipiente de cultivo,
en el que originariamente se han depositado. Preferiblemente, se
realiza un primer pase para una densidad celular de 2x10^{5} hasta
8x10^{5} ml de medio, en particular para una densidad celular de
2x10^{5} hasta 5x10^{5} ml de medio.
Los métodos conforme a la invención para la
reproducción/clonación de las células mamíferas aquí descritas se
caracterizan por una eficacia de reclonación eficiente, de manera
que la presente invención se refiere a un método para la
reproducción/reclonación de células mamíferas, que se caracteriza
porque la eficiencia de clonación es como mínimo del 10%,
preferiblemente del 20%, más preferiblemente de un 30% como mínimo,
e incluso de un 40%. Según una configuración especialmente
preferida, la presente invención se refiere a un método para la
reproducción/reclonación de células mamíferas que se caracteriza
porque la eficiencia de reclonación es como mínimo del 50%,
preferiblemente del 60%, en particular del 70% y muy especialmente
del 80%.
Según los ejemplos aquí descritos para las
células CHO se obtenía una eficiencia de reclonación incluso
superior al 65%. Conforme a ello la presente invención se refiere
asimismo a un método para la reproducción/reclonación de células
CHO, que se caracteriza porque la eficiencia de reclonación en la
reclonación de las células CHO depositadas es mayor al 10%,
preferiblemente mayor al 20%, en particular mayor al 30%, mayor al
40%, e incluso mayor al 50 y al 60%. La presente invención se
refiere en general también a los métodos con eficiencias de
reclonación algo inferiores para los correspondientes tipos de
células indicadas.
\newpage
En una configuración preferida del método
conforme a la invención, la célula correspondiente que va a ser
clonada contiene uno o varios genes de interés que codifican uno o
varios productos (polipéptidos, proteínas, ácidos nucleicos, etc.).
Se trata preferiblemente en el caso de la célula correspondiente de
una célula CHO, BHK o bien NSO así como de los
derivados/descendientes de estas estirpes celulares. En general
puede tratarse de cualquier otra célula, por ejemplo de una de las
células mencionadas en la tabla 1.
En el gen(es) de interés que se van a
producir se puede tratar naturalmente de genes existentes en la
célula huésped pero también de genes introducidos artificialmente en
las células. Por definición cada secuencia o cada gen que se
introduce en una célula, se conoce en lo que se refiere a esta
célula como "secuencia heterogénea" o bien "gen
heterogéneo", incluso cuando la secuencia que se va a introducir
o el gen a introducir es idéntico a una secuencia endógena o a un
gen endógeno de la célula. Por ejemplo, un antígeno de hámster que
se introduce en una célula de hámster, es por definición un gen
heterogéneo. Cuando este gen heterogéneo es codificado como un gen
de interés entonces se habla de un "gen heterogéneo de
interés".
Un gen heterogéneo de interés se puede
introducir en la célula de formas distintas, por ejemplo, mediante
la transformación vírica, transinfección o bien a través de una
microinyección. Por lo que el gen heterogéneo de interés puede ser
introducido en la célula como ADN lineal o bien como parte de un
vector de expresión. Se conocen una multitud de vectores de
expresión eucarióticos, que facilitan los lugares de clonación para
la introducción de uno o varios genes heterogéneos así como su
expresión. Las empresas que los distribuyen son entre otras
Stratagene, La Jolla, CA, USA;Invitrogen, Carlsbad, CA, USA;
Promega, Madison, WI, USA o bien BD Biosciences Clontech, Palo ALto,
CA, USA. La transinfección de células con un ADN o un vector de
expresión que codifica uno o varios genes de interés, se realiza
según los métodos habituales, como por ejemplo los descritos en
Sambrook y cols., 1989 o Ausubel y cols., 1994. Los métodos de
transfección adecuados son, por ejemplo, la transfección mediada por
liposomas, la coprecipitación con fosfato de calcio, la
electroporación, la transfección mediada por policationes (por
ejemplo, dextrano-DEAE), la fusión de protoplastos,
microinyección y las infecciones víricas. Preferiblemente se
realiza una transfección estable, de manera que las moléculas de ADN
se integran en el genoma de la célula huésped o bien en un
cromosoma/minicromosoma artificial o se encuentran contenidas en la
célula huésped de forma estable episomal. Se prefiere pues el método
de transfección que facilita la frecuencia de transfección óptima y
la expresión de uno o varios genes heterogéneos de interés en la
célula correspondiente.
El gen heterogéneo de interés es
mayoritariamente funcional con un promotor que facilita la
transcripción del gen de interés, así como se acopla a otros
elementos reguladores que permiten una transcripción y traslación
(expresión) del gen de interés o bien incrementan su eficacia.
Como "promotor" se conoce una secuencia de
polinucleótidos, que facilita y controla la transcripción de los
genes o secuencias acoplados con ella. Un promotor contiene
secuencias de reconocimiento para el enlace del
ARN-polimerasa y del lugar de iniciación de la
transcripción (lugar de iniciación de la transcripción). Para la
expresión de una secuencia deseada en un tipo de célula determinada
o de una célula huésped se debe elegir un promotor funcional
adecuado. El técnico reconoce una multitud de promotores de
diferentes fuentes, que incluyen promotores constitutivos,
inducibles y reprimibles. Se encuentran documentados en bancos de
datos, por ejemplo, el banco de genes y puede hacerse referencia a
ellos como autónomos o independientes o bien como elementos de
fuentes comerciales o individuales clonados dentro de las secuencias
de los polinucleótidos. En los promotores inducibles la actividad
del promotor puede verse reducida o intensificada como reacción a
una señal. Un ejemplo de un promotor inducible es el promotor de
tetraciclina. Este contiene secuencias de operador de tetraciclina
(tetO), que pueden ser inducidas por una proteína transactivador
regulada por la tetraciclina (tTA). En presencia de tetraciclina se
inhibe el enlace de la tTA al tetO. Ejemplos de otros promotores
inducibles son el promotor de metalotionina y de choque calórico
(ver también Sambrook y cols., 1989; Gossen y cols., 1994). Entre
los promotores que son especialmente adecuados para una expresión
elevada en eucariontes se encuentran el promotor de Ubiquitina/S27a
de hámster (WO 97/15664), el promotor temprano SV40, el promotor
tardío principal de los adenovirus, el promotor de
metalotionina-I de ratón, la región repetitiva
terminal larga del virus del sarcoma de Rous y el promotor temprano
del virus humano de citomegalia. Ejemplos de otros promotores de
mamíferos heterogéneos son los promotores del choque calórico o de
la inmunoglobulina, y de la actina.
Por ejemplo, el promotor puede acoplarse a
secuencias amplificadoras para incrementar la actividad de la
transcripción. Para ello se pueden emplear uno o varios
amplificadores y/o varias copias de secuencias amplificadoras, por
ejemplo un amplificador CMV o SV40.
Con la expresión "amplificador" se hace
referencia a una secuencia de polinucleótidos que actúa en la
localización cis sobre la actividad de un promotor y de este
modo estimula la transcripción de un gen acoplado funcionalmente a
este promotor. Contrariamente a los promotores, la acción del
amplificador depende de la orientación y de la posición y por tanto
pueden estar colocados delante o detrás de una unidad de
transcripción, dentro de un intron o propiamente dentro de la
región codificadora. El amplificador puede estar localizado tanto
junto a la unidad de transcripción como también a una distancia
considerable del promotor. También es posible un solapamiento
físico y funcional con el promotor. El experto conoce una multitud
de amplificadores de diferentes fuentes (y documentados en los
bancos de datos como el banco de genes, por ejemplo, amplificador
SV40, amplificador CMV, amplificador de polioma, amplificador de
adenovirus) y disponibles como elementos clonados independientes o
dentro de las secuencias de polinucleótidos (por ejemplo,
documentados en ATCC o de fuentes comerciales e individuales). Una
multitud de secuencias de promotores contienen también secuencias de
amplificadores, como por ejemplo el promotor CMV frecuentemente
empleado. El amplificador CMV humano pertenece por tanto a los
amplificadores más fuertes identificados hasta el momento. Un
ejemplo de un amplificador inducible es el amplificador de
metalotioneina, que puede ser estimulado por los glucocorticoides o
metales pesados.
Fundamentalmente los elementos reguladores
incluyen promotores, amplificadores, señales de terminación y de
poliadenilación y otros elementos de control de la expresión. Para
los distintos tipos de células se conocen tanto las secuencias
reguladoras inducibles como también las constitutivas. "Los
elementos reguladores de la transcripción" incluyen habitualmente
un promotor de la secuencia de genes que se va a expresar, lugares
de inicio de la transcripción y de terminación de la transcripción
así como una señal de la poliadenilación.
La expresión "lugar de inicio de la
transcripción" hace referencia a una secuencia de nucleótidos en
la construcción génica, que corresponde a un ácido nucleico, que se
incorpora en el transcripto primario, es decir, el receptor del
ARNm. El lugar de inicio de la transcripción puede solaparse con las
secuencias del promotor.
La expresión "lugar de terminación de la
transcripción" se refiere a una secuencia de nucleótidos, que
normalmente está presente en el extremo 3' del gen de interés o del
segmento de gen transcribible y actúa sobre la interrupción de la
transcripción por la ARN polimerasa.
La "señal de poliadenilación" es una
secuencia de señalización que provoca el desdoblamiento en un lugar
específico en el extremo 3' del ARNm eucariótico y la construcción
post-transcripcional de una secuencia de unos
100-200 nucleótidos de adenina (cola poliA). La
señal de poliadenilación incluye la secuencia AATAAA aproximada de
10-30 nucleótidos corriente arriba del lugar de
desdoblamiento así como una secuencia situada corriente abajo. Se
conocen diferentes elementos de poliadenilación, por ejemplo, tk
poliA, SV40 tardío y poliA temprano o BGH poliA (por ejemplo,
descritos en US 5.122.458).
Los "elementos reguladores de la
traslación" incluyen un lugar de inicio de la traslación (AUG),
un codón de terminación y una señal poliA para cada polipéptido que
se va a expresar. Para una expresión óptima puede ser adecuado
separar, añadir o modificar las zonas 5' y/o 3' que no han sufrido
traslación de la secuencia de ácido nucleico que se va a expresar,
para eliminar los potenciales codones de inicio de la traslación no
adecuados y adicionales o bien otras secuencias que puedan
perjudicar la expresión a nivel de la transcripción o expresión.
Para causar la expresión, se pueden insertar de un modo alternativo
los lugares de enlace de consenso ribosomales directamente
corriente arriba del codón de partida. Para producir un polipéptido
secretado, el gen de interés contiene habitualmente una secuencia
de señalización, que codifica un péptido precursor de la señal, que
transporta el polipéptido sintetizado hacia y a través de la
membrana ER. La secuencia de señalización se encuentra a menudo,
pero no siempre, en un término amino de la proteína secretada y es
desdoblada por las peptidasas de señalización después de que la
proteína haya atravesado la membrana ER. La secuencia genética
habitualmente, pero no necesariamente, contendrá una única secuencia
de señalización. Cuando la secuencia de señalización nativa no está
presente, se puede introducir de algún modo conocido una secuencia
de señalización heterogénea. El experto conoce numerosas secuencias
de señalización y se depositan en los bancos de datos de secuencias
como el banco de genes y EMBL.
Los productos del gen de interés pueden englobar
proteínas/polipéptidos, por ejemplo, anticuerpos, enzimas,
citoquinas, linfoquinas, moléculas de adherencia, receptores así
como sus derivados o bien fragmentos, pero no se limitan a estos. En
general, todos los polipéptidos son significativos, los que actúan
como agonistas o antagonistas y/o pueden hallar una aplicación
terapéutica o diagnóstica.
La expresión "polipéptidos" se emplea para
las secuencias de aminoácidos o proteínas y define polímeros de
aminoácidos de cualquier longitud. Esta expresión engloba también
proteínas que son modificadas de forma postranslacional por medio de
reacciones como, por ejemplo, la glucosilación, fosforilación,
acetilación o tratamiento de proteínas. La estructura del
polipéptido puede ser modificada, por ejemplo, mediante
sustituciones, deleciones o la inserción de aminoácidos, la fusión
con otras proteínas, manteniendo su actividad biológica.
Ejemplos de proteínas son la insulina; el factor
de crecimiento similar a la insulina (IGF-I o
IGF-II);la hormona de crecimiento humana (hGH) y
otros factores de crecimiento como por ejemplo VEGF, EGF, TGF, por
ejemplo, TGF-alfa y beta, que incluye \beta1,
\beta2, \beta3, \beta4 y \beta5; el activador del
plasminógeno tisular (tPA); la eritropoyetina (EPO);
trombopoyetina(TBO); citoquinina, por ejemplo,
interleucina(IL) como IL-1,
IL-2, IL-3 IL-4,
IL-5, IL-6, IL-7,
IL-8, IL-9, IL-10,
IL-11, IL-12, IL-13,
IL-14, IL-15, IL-16,
IL-17, IL-18;
interferona(IFN)-alfa, beta, gamma, omega o
tau; factor de necrosis tumoral (TNF), como, por ejemplo,
TNF-alfa, beta, gamma, ligando CD40,
apo-2-ligando/TRAIL, DR4, DR5, DcR1,
DcR2, DcR3, OPG, ligando Fas;
G-CSF;GM-CSF;M-CSF;MCP-1
y VEGF. Otros ejemplos son los factores de coagulación como el
factor VII, factor VIII, factor IX, factor de von Willebrands;
factores anticoagulación como la proteína C; Enekephalinase,
RANTES(regulated on activation normally
T-cell expressed and secreted); la proteína
inflamatoria de macrófagos humanos
(MIP-1-alfa); albúmina de suero
(humana), molécula de adhesión celular como LFA-1,
Mac-1, p 150.95, VLA-4,
ICAM-2, ICAM-3, VCAM, o bien
\alphaV/\beta3 Integrina que incluye subunidades \alpha ó
\beta; antígenos de grupos sanguíneos; receptor flk2/3; receptor
OB; receptor mlp; CTLA-4; receptores
Apo-2L como por ejemplo Apo-2;
Transforming Growth Factor (TGF); proteínas CD; receptores de
células T; antígenos víricos como por ejemplo el gp120 de HIV;
antígenos asociados a tumores como por ejemplo receptor
HER-1, HER-3 o
HER-4, factores reumatoides, por ejemplo
NGF-beta o PDGF; Cadena Relaxin-A ó
B; Péptido asociado a la Gonadropina; Inhibina; Activina; un
antígeno citotóxico asociado a los linfocitos T (CTLA) o bien
factores de neurotrofina como por ejemplo BDNF,
neurotrofina-3, -4, -5 ó -6.
Otros ejemplos son los anticuerpos monoclonales,
policlonales, multiespecíficos y de una sola cadena (single
Caín) y los fragmentos de los mismos, como por ejemplo, Fab,
Fab'F(ab')_{2}Fc y fragmentos Fc', cadenas de
inmunoglobulina ligeras (L) y pesadas (H) y sus regiones constantes,
variables o hipervariables así como fragmentos Fv y Fd (Chamov y
cols., 1999). Los anticuerpos pueden ser de origen humano o no
humano. También se cuestionan los anticuerpos humanizados y los
anticuerpos quimera.
Los fragmentos Fab (Fragment
antigen-binding = FAb) constan de las regiones
variables de ambas cadenas, que se mantienen unidas por las regiones
constantes limítrofes. Pueden ser producidas por ejemplo mediante el
tratamiento con una proteasa, como por ejemplo la papaina, a partir
de anticuerpos convencionales o bien también por la clonación del
ADN. Otros fragmentos de anticuerpos son los fragmentos
F(ab')_{2}, que pueden ser fabricados por la digestión
proteolítica con pepsina.
Mediante la clonación de genes se pueden
fabricar fragmentos de anticuerpos reducidos, que solamente constan
de la región variable de la cadena ligera (VL) y pesada (VH). Estas
se conocen como fragmentos Fv (Fragment variable = fragmento
de la parte variable), Puesto que en estos fragmentos Fv no es
posible la unión covalente a lo largo de los radicales de cisteina
de las cadenas constantes, estos fragmentos a menudo se estabilizan
de otro modo. Para ello se acoplarán la región variable de la cadena
ligera y pesada por medio de un fragmento peptídico corto de
aproximadamente 10-30 aminoácidos, en particular
preferiblemente de 15 aminoácidos.
De este modo se forma una única cadena
polipeptídica, en la cual VH y VL están unidos por medio de un
enlace peptídico. Dichos fragmentos de anticuerpos se conocen como
fragmentos Fv de cadena única (scFv). Se conocen y se han
descrito ejemplos de anticuerpos scFv, ver por ejemplo Huston y
cols. (1988).
En años anteriores se han desarrollado
diferentes estrategias para fabricar derivados de scFv multímeros.
La intención consiste en la creación de anticuerpos recombinantes
con unas propiedades farmacocinéticas mejoradas y una mayor avidez
de enlace. Para conseguir la multimerización de los fragmentos scFv
estos se fabrican como proteínas de fusión con dominios de
multimerización. Como dominios de multimerización puede actuar, por
ejemplo, la región CH3 de una IgG o las estructuras de hélice
("coiled coil structure") como los dominios de la
leucina. En otras estrategias, se aprovecha la interacción entre las
regiones VH y VL del fragmento scFv para una multimerización (por
ejemplo, Dia, Tri y Pentabodies).
"Diabody" ha sido definido por el experto
como un derivado scFv homodímero, bivalente. El acortamiento del
enlace peptídico en la molécula scFv a 5-10
aminoácidos da lugar a la formación de homodímeros por la
superposición de cadenas VH/VL. Los Diabodies pueden ser además
estabilizados por medio de puentes de disulfuro. Ejemplos de
Diabodies encontramos en la literatura, por ejemplo, en Perisic y
cols. (1994).
Como "Minibody" el experto define un
derivado scFv homodímero bivalente. Consta de una proteína de
fusión, que contiene la región CH3 de una inmunoglobulina,
preferiblemente, de la IgG, en particular de la IgG1, como región de
dimerización. Esta se une a los fragmentos scFv a través de una
región de empalme, asimismo de la IgG, y una región de enlace.
Ejemplos de dichos Minibodies se describen en Hu y cols. (1996).
Con "Triabody" el experto hace referencia a
un derivado scFv homotrímero trivalente (Kortt y cols., 1997). La
fusión directa de VH-VL sin utilizar una secuencia
de enlace conduce a la formación de trímeros.
En los fragmentos denominados por el experto
mini-anticuerpos, que tienen una estructura bi-,
tri- o tetravalente, se trata asimismo de derivados del fragmento
scFv. La multimerización se consigue pues a través de las
estructuras "coiled coil" de di-, tri-, o tetrámeros (Pack y
cols., 1993 y 1995; Lovejoy y cols., 1993).
Para la selección de las células transinfectadas
se pueden transinfectar además con uno o varios genes marcadores de
la selección. En la literatura se han descrito una multitud de genes
marcadores de la selección, que incluyen marcadores
(positivos/negativos) bifuncionales (ver por ejemplo, WO 92/08796 y
WO 94/28143). Ejemplos de marcadores de selección, que se emplean en
células eucarióticas, contienen los genes para la
aminoglucósido-fosfotransferasa (APH),
higromicina-fosfotransferasa (HYG),
dihidrofolato-reductasa (DHFR),
timidinacinasa(TK), glutamina-sinmicina,
fleomicina y zeocina. Estos genes pueden ser introducidos en la
célula junto con el gen de interés o por separado. Preferiblemente
son introducidos a través de vectores de expresión. Las células
modificadas del modo correspondiente pueden ser cultivadas en
presencia de uno o varios medios de selección adecuados, que
prefieren células en crecimiento, que contienen un gen marcador de
selección determinado y lo expresan.
Una selección de células transinfectadas es
posible incluso mediante la selección celular activada por la
fluorescencia (FACS), por ejemplo a través de la
beta-galactosidasa bacteriana, el marcador
superficial celular o las proteínas fluorescentes. Las proteínas
fluorescentes permiten además un aislamiento basado en la FACS de
cada una de las células mamíferas. Las células detectadas de ese
modo pueden ser depositadas automáticamente en un recipiente de
cultivo como células aisladas o como varias células, por ejemplo,
con ayuda de un láser, por ejemplo con un láser de argon (488 nm) y
por ejemplo con una unidad clon en un Flow Cytometer (Coulter EPICS
Altra, Beckman-Coulter, Miami, FL, USA). Según una
configuración preferida únicamente se depositarán de este modo una
(1) única célula o dos células como máximo en un recipiente de
cultivo celular armado con células feeder autógenas. Se
prefiere especialmente la deposición de únicamente una sola célula.
Además se puede realizar una selección a través de perlas
magnéticas. Para ello se realiza un marcaje de células a través de,
por ejemplo, anticuerpos que se han acoplado a perlas magnéticas.
Esto permite una selección de células conforme unas características
definidas.
Se prefiere especialmente el aislamiento basado
en FACS de clones celulares, que se han depositado conforme a uno de
los métodos aquí descritos y han expresado conjuntamente una
proteína fluorescente y un gen de interés. Preferiblemente se
acoplan de un modo funcional la expresión de la proteína
fluorescente y del gen de interés. Dicho acoplamiento funcional
consiste, por ejemplo, en que ambos genes se encuentran en una
disposición espacial estrecha, de manera que los índices de
expresión de ambos genes se correlacionan unos con otros, por
ejemplo, tras la transfección estable o transitoria de una célula
huésped. Dicho acoplamiento funcional se puede conseguir, por
ejemplo, mediante la utilización de los mencionados elementos IRES
(=internal ribosome entry site) o bien mediante corte y
empalme de ARN, de manera que ambos genes (ge de interés y gen de
proteína fluorescente) son sintetizados como el ARNm biscitrónico.
De este modo existe una correlación directa entre la velocidad de
expresión de la proteína fluorescente y el gen de interés. Los
clones celulares correspondientes, que muestran una elevada
expresión en proteína fluorescente disponer a consecuencia del
acoplamiento funcional de una elevada velocidad de expresión del gen
de interés.
En el caso de la proteína fluorescente puede
tratarse por ejemplo de una proteína fluorescente de color verde,
verde azulado, azul, amarillo o de otros colores. Un ejemplo
especial es la proteína fluorescente de color verde (GFP) de
Aequorea victoria o Renilla reniformis y los mutantes
desarrollados a partir de ella; ver, por ejemplo, Bennet y cols.
(1988); Chalfie y cols. (1994); WO 01/04306 y la literatura allí
citada. Otras proteínas fluorescentes y los genes que las codifican
se han descrito en WO 00/34318, WO 00/34326, WO 00/34526 y WO
01/27150, a los que aquí se hace referencia. Para estas proteínas
fluorescentes se trata de fluoróforos de organismos no
bioluminiscentes de la especie Anthozoa, por ejemplo de Anemonia
majano, Clavularia sp., Zoanthus sp. I, Zoanthus sp. II, Discosoma
striata, Discosoma sp. "red", Discosoma sp.
"green", Discosoma sp. "Magenta", Anemonia
sulfata. Las proteínas de fluorescencia empleadas pueden constar
de proteínas tipo natural, mutantes y variantes de los mutantes
naturales o fabricados por vía genotecnológica, sus fragmentos,
derivados o por ejemplo variantes fusionados con otras proteínas o
péptidos. Las mutaciones registradas pueden, por ejemplo, modificar
el espectro de excitación o de emisión, la formación de cromóforos,
los coeficientes de extinción o la estabilidad de la proteína,
mediante la optimización del codón se puede mejorar además la
expresión en las células mamíferas o bien otras especies. Según la
invención la proteína fluorescente puede ser empleada también en la
fusión con un marcador de selección, preferiblemente con un marcador
de selección amplificable como, por ejemplo, la
dihidrofolato-reductasa (DHFR).
La etapa de selección se puede llevar a cabo en
poblaciones de células o bien con poblaciones de células/clones de
células previamente seleccionadas. Se pueden depositar una o varias,
preferiblemente una (1), dos, tres o cuatro células por recipiente
de cultivo celular. La deposición de las células se realiza
preferiblemente en un medio sin suero, se prefiere en particular en
un medio definido químicamente, en presencia de células autógenas
feeder. En otro lugar de esta comunicación se habla con
detalle de los medios adecuados así como de los métodos conforme a
la invención para la deposición celular utilizando células
feeder autógenas. Fundamentalmente se pueden realizar dos o
más pasos de selección, de manera que entre cada uno de los pasos o
etapas de selección las células se cultiven durante un espacio de
tiempo determinado, por ejemplo, unas dos semanas como reservas, en
un medio adecuado correspondiente y se multipliquen.
En una configuración preferida del método
conforme a la invención, en el cual uno o varios de los productos
del gen de interés existen en las células reclonadas, se cultivan
las células reclonadas preferiblemente en un medio de cultivo libre
de suero y en un cultivo en suspensión en unas condiciones, que
permiten una expresión del gen de interés. Si el gen de interés se
encuentra, por ejemplo, bajo el control del promotor constitutivo,
no se requiere una adición de inductores especiales. Si la expresión
del gen de interés se encuentra, por ejemplo, bajo el control de
promotores inducibles, al medio de cultivo celular se añadirá un
inductor determinado en una concentración suficiente pero no
tóxica. Las células pueden expandirse mediante múltiples subpases y
ser transferidas a los correspondientes recipientes de cultivo.
El/los productos del gen pueden presentarse o bien como un producto
celular, ligado a la membrana o como un producto secretor.
El producto de interés se obtiene
preferiblemente como un producto del gen secretado del medio de
cultivo celular. En la expresión de una proteína o polipéptido sin
señal de secreción se puede aislar el producto del gen a partir de
lisados celulares. Para obtener un producto puro, homogéneo, que
básicamente esté libre de otras proteínas recombinantes y de
proteínas de la célula huésped, se realizan las habituales fases de
limpieza. Para ello se elimina con frecuencia las células y los
restos de células del medio de cultivo o del lisado. El producto del
gen deseado puede ser liberado de las proteínas solubles
contaminantes, polipéptidos y ácidos nucleicos, por ejemplo,
mediante el fraccionamiento en columnas de inmunoafinidad y de
intercambio iónico, precipitación en etanol, fases invertidas de
HPLC o cromatografía en Sephadex, sílice o resinas de intercambio
catiónico como la DEAE. Los métodos que conducen a una limpieza de
una proteína heterogénea expresada de las células huésped
recombinantes son conocidos por el experto y se han descrito en la
literatura, por ejemplo, en Harris y cols. (1995) y Scopes
(1988).
Según otra configuración preferida, en el caso
de la célula mamífera se trata de una célula mamífera
transinfectada, en la cual se introduce el gen de interés. Aquí se
prefiere la transinfección estable de la correspondiente célula
mamífera.
\newpage
Tal como se ha mencionado antes, la presente
invención se refiere también a una selección basada en FACS de
algunas células mamíferas y la deposición de algunas o varias
células mamíferas, preferiblemente, de menos de 5, a ser posible
menos de 4, 3, 2 o 1 célula mamífera, que expresa una proteína de
interés, de manera que la selección y la deposición celular se
realizan preferiblemente dependiendo de la velocidad de expresión de
la proteína fluorescente coexpresada en la célula mamífera, cuya
expresión se acopla de un modo funcional a la expresión de la
proteína de interés. Conforme a otra configuración preferida se
elegirán solamente el 5% de las células con fluorescencia más clara,
preferiblemente el 3% y solamente el 1% de una mezcla de células.
Tal como muestran las figuras 3a y 3b, esto conduce a un
enriquecimiento de los clones celulares con una velocidad de
expresión comparativamente elevada del gen de interés. Mediante la
deposición de cada una de las células basada en la FACS se pueden
identificar y multiplicar clones celulares homogéneos, que disponen
de una velocidad de expresión comparativamente elevada en un gen-+
de interés, que se sitúan como punto de partida para otras etapas de
optimización (por ejemplo, amplificación del gen).
Los métodos para la fabricación de las
correspondientes células feeder se han descrito además en los
ejemplos de las configuraciones. Las células correspondientes
feeder de mieloma de ratón o de hámster pueden ser fabricadas
mediante procedimientos químicos o físicos conocidos por el experto,
por ejemplo, mediante su tratamiento con mitomicina C
(Azirino(2'3,':3,4)pirrolo(1,2-a)indol-4,7-diona-6-amino-8-[[(aminocarbonil)oxi]metil]-1,1a,2,8,8a,8b-hexahidro-8a-metoxi-5-metil,(1aR-(1a,alfa,8.beta.,8a.alfa.,8b.alfa))-(9Cl)(Butcher
y cols., 1988) o bien por irradiación con ^{137}Cs. Según una
configuración preferida, la presente invención hace referencia a
emplear o contener células feeder inactivadas física o
químicamente. El concepto "inactivada" significa en este
contexto, a que las células están limitadas en su capacidad de
división, es decir que la han podido perder pero siguen siendo
vitales. Esto significa que las células presentan incluso
actividades del metabolismo como, por ejemplo, la síntesis y la
secreción de los factores de crecimiento durante un periodo de
tiempo determinado, preferiblemente al menos una hasta dos semanas
después de la inactivación. Según una configuración preferida, se
trata en el caso de las células feeder correspondientes de
células feeder que se adaptan a unos cultivos sin suero.
Conforme a otra configuración preferida de la invención, se trata en
el caso de células feeder empleadas en un método conforme a
la invención, de células CHO, BHK o bien NSO así como de
derivados/descendientes de estas estirpes celulares.
Además todas estas células mencionadas en esta
comunicación se pueden emplear como células feeder conforme a
la inactivación correspondiente.
La presente invención se refiere además a las
composiciones a base de un medio de cultivo celular sin suero, con
menos de cinco células mamíferas capaces de dividirse,
preferiblemente con cuatro, tres, dos o una célula mamífera capaz de
dividirse y células feeder que son autógenas a las células
mamíferas capaces de dividirse. Según una configuración preferida de
la presente invención la composición correspondiente contiene
únicamente (1) una o dos células mamíferas capaces de dividirse.
Según otra configuración preferida la composición correspondiente
contiene meramente una (1) única célula mamífera capaz de
dividirse.
Otras composiciones preferidas contienen células
hámster como células feeder, preferiblemente de la subfamilia
Cricetinae, en particular de la especie Cricetulus o
bien Mesocricetus, cuando dentro de las células mamíferas
capaces de dividirse se trata de células BHK o de
derivados/descendientes de las mismas. Además contiene otra
composición preferida como las células de ratón células
feeder, preferiblemente la subfamilia Murinae, en
particular de la especie Mus, cuando en el caso de células
mamíferas capaces de dividirse se trata de células de hibridoma de
ratón, preferiblemente de células NS0 o de derivados/descendientes
de las mismas. Las composiciones especialmente preferidas son las
que se caracterizan porque, la composición contiene células CHO como
células feeder, en el caso de células mamíferas capaces de
dividirse se trata de células CHO, la composición contiene células
BHK como células feeder, en el caso de células mamíferas
capaces de dividirse se trata de células BHK, y la composición
contiene células NS0 como células feeder, en el caso de
células mamíferas capaces de dividirse se trata de células NS0.
Fundamentalmente existen también aquellas
composiciones conforme a la invención que permiten que se depositen
y multipliquen menos de 5, preferiblemente 4, 3, 2 o 1 célula de
hámster relevante en la producción, como por ejemplo, las células
CHO, o BHK así como las células de mieloma de ratón relevantes en la
producción, como por ejemplo, las células NSO en presencia de
células feeder de mamíferos en unas condiciones libres de
suero.
Los ejemplos para los medios definidos
químicamente o sin proteínas, libres de suero equivalen, por
ejemplo, a los medios Ham's F12 (Sigma, Deisenhofen, DE),
RPMI-1640(Sigma), Dulbecco's Modified Eagle's
Médium (DMEM; Sigma), Minimal Essential Médium (MEM;Sigma), Iscove's
Modified Dulbecco's Médium (IMDM; Sigma),
CD-CHO(Invitrogen, Carlsbad, Ca., USA),
CHO-S-SFMII(Invitrogen),
medio de CHO libre de suero (Sigma) y al medio CHO (Sigma) libre de
suero. Cada uno de estos medios puede ser completado si fuera
preciso con diferentes composiciones, por ejemplo, hormonas y/o
otros factores de crecimiento (por ejemplo, insulina, transferrina,
factor de crecimiento epidérmico, factor de crecimiento similar a la
insulina), sales (por ejemplo, cloruro sódico, fosfato de calcio y
magnesio), tampones (por ejemplo, HEPES), nucleósidos (por ejemplo,
adenosina, timidina), glutamina, glucosa y otras sustancias
nutritivas equivalentes, antibióticos y/o elementos traza. En el
caso de células capaces de multiplicarse se trata de células
recombinantes que expresan uno o varios marcadores de selección, de
manera que al medio se añaden uno o varios medios de selección
adecuados, por ejemplo, antibióticos.
- ATCC
- American Type Culture Collection
- BHK
- Baby Hamster Kidney
- ^{60}Co
- Isótopo de cobalto 60
- ^{137}Cs
- Isótopo de cesio 137
- CHO
- Chinese Hamster Ovary
- CMV
- Citomegalovirus
- DE
- Alemania
- DEAE
- Dietilaminoetil-
- DMSO
- Dimetilsulfóxido
- FACS
- Selector de células activado por la fluorescencia
- FITC
- Isotiocianato de fluoresceína
- Gy
- Gray
- HBSS
- Solución salina equilibrada de Hank
- HPLC
- Cromatografía líquida de alto rendimiento
- mRNA
- Acido ribonucleico mensajero
- NS0
- Célula de hibridoma de ratón
- polyA
- Secuencia de poliadenilación
- Sp2/0
- Célula de hibridoma de ratón
- SV40
- Virus Simian no.40
\vskip1.000000\baselineskip
Las células CHO-DG44/dhfr
(Urlaub y cols., 1983) se han cultivado de forma permanente como
células en suspensión en un medio de
CHO-S-SFMII al que se añade
hipoxantina y timidina libres de suero (Invitrogen GmbH, Karlsruhe,
DE) en frascos de cultivo celular a 37ºC en una atmósfera húmeda y
un 5% de CO_{2}. Los recuentos celulares así como la viabilidad se
han determinado con un Contador de Células CEDEX (Innovatis, DE) o
bien a través de una coloración de azul de tripano y las células
luego saturadas en una concentración de
1-3x10^{5}/ml y se hacen pasar 2-3
días. Para la clonación de cada una de las células se empleaban
CHO-DG44/dhfr recombinante, que expresa una
proteína fluorescente (por ejemplo, ZS-Green de
Zoanthus sp.) o bien una proteína fluorescente y un
anticuerpo monoclonal humano o humanizado. El cultivo de células
recombinantes clonadas se realizaba de forma análoga a estas
células. Como medio se empleaba asimismo el medio
CHO-S-SFM-II
(Invitrogen GmbH Karlsruhe, DE) sin hipoxantina y timidina.
Las células BHK se pueden cultivar de forma
permanente como células de suspensión en un medio Opti Pro SFM libre
de suero (Invitrogen GmbH, Karlsruhe, DE) en frascos de cultivo
celular a 37ºC en atmósfera húmeda y un 5% de CO_{2}. Los
recuentos celulares así como la viabilidad se puede determinar con
un Contador celular CEDEX (Innovatis, DE) o mediante la coloración
del azul de tripano, donde las células luego se saturan en una
concentración de de 1-3x10^{5}/ml y se hacen pasar
2-3 días. El cultivo de las células clonadas se
realizaba de forma análoga a las células BHK.
Las células NS0 se pueden cultivar de forma
permanente como células de suspensión en un medio de hibridoma libre
de suero, Animal component free Médium (Sigma, Aldrich, St. Louis,
USA) en frascos de cultivo celular a 37ºC en atmósfera húmeda y un
5% de CO_{2}. Los recuentos celulares así como la viabilidad se
puede determinar con un Contador celular CEDEX (Innovatis, DE) o
mediante la coloración del azul de tripano, donde las células luego
se saturan en una concentración de de
1-3x10^{5}/ml y se hacen pasar 2-3
días. El cultivo de las células clonadas se realizaba de forma
análoga a las células NS0. Como medio se emplea el medio de
hibridoma, Animal componente free Médium (Sigma, Aldrich, St. Luis,
USA).
Las células básicas de CHO suspendidas que
crecen sin suero y sin proteínas (células no transinfectadas), se
centrifugaban a 180 g durante 10 minutos y se ajustaban a una
concentración celular de 1x10^{6}/ml en HBSS (solución salina
equilibrada de Hank). Después se realizaba la irradiación de las
células con una fuente radiactiva (Cs137-Strahler,
Gammacell 2000, Fa. Molsgaard Medical A/S, Dänemark) con una
potencia de dosis energética de 4Gy/min. Con un tiempo de
irradiación entre 5 min y 125 min se obtenía una dosis energética
entre 20 y 500 Gy. Tras la irradiación las células se saturaban con
unas 2000 células/pocillo (=recipiente de cultivo) en microplacas de
valoración de 96 pocillos en un medio
CHO-S-SFMII específico para la
célula a unos 37ºC y 5% de CO_{2} en una atmósfera de incubación.
El método se lleva a cabo con las células BHK y NSO, de manera que
las células feeder se saturan en el medio específico para las
células.
Las células feeder fabricadas del modo
correspondiente pueden crioconservarse a -150ºC. La crioconservación
se realiza con ayuda de un aparato de congelación programable en un
medio correspondiente del cultivo celular (Consarctic
BV-25, Consarctic, Schöllkrippen, DE). Como
crioprotector se añade al medio DMSO (v/v) al 10%. La velocidad de
congelación se sitúa entre 0ºC y -20ºC a 1ºC/min, seguidamente se
realiza otro descenso de temperatura con 0,4ºC/min. Tras el proceso
de congelación se crioconservan las células feeder en la fase
gas en nitrógeno líquido.
La deposición celular automatizada (deposición
de una o de varias células) se lleva a cabo con un Citómetro de
Flujo (Coulter EPICS Altra (Fa.Beckman-Coulter,
Miami, FL, USA) dotado de láser de argon (488 nm). Las células se
centrifugan en la fase de crecimiento exponencial y se recogen en
una concentración celular de 1-1,5x10^{7}/ml en
HBSS. A continuación se seleccionan las células con la
"Hypersort-Option" a una velocidad de
8000-12000 células/segundo tras su deposición en luz
dispersa. Las células que expresan una proteína de fluorescencia se
pueden elegir de un modo alternativo conforme a su intensidad de
fluorescencia en lo que se refiere a la proteína de fluorescencia
expresada de forma intracelular. Las células se depositarán en
microplacas de 96 orificios dotadas de células feeder. La
deposición de las células BHK se realiza, por ejemplo, en un medio
OptiPro SFM (Invitrogen GmbH, Karlsruhe, DE). Las células NSO
elegidas se depositarán por ejemplo en un medio de hibridoma, medio
libre de componente animal (Sigma Aldrich, St. Louis USA).
En la selección de las células CHO se relizaba
la deposición celular en
CHO-S-SFM-II
(Invitrogen GmbH, Karlsruhe, DE). Se depositaba una célula
CHO-DG-44 recombinante que
co-expresaba un anticuerpo monoclonal humanizado así
como el ZS-Green de Zoanthus sp. La selección
celular se realizaba tal como se ha descrito con láser de argon a
488 nm.
La cuantificación del anticuerpo en los
sobrenadantes de células CHO-DG44 transinfectados de
forma estable, que expresan un anticuerpo humano o humanizado
monoclonal, se realizaba por medio de ELISA según protocolos
estándar (Ausubel y cols., 1994, actualizado) de forma que por un
lado se empleaba un fragmento Fc de IgG antihumano de cabra
(Dianova, Hamburg, DE) y por otro lado un anticuerpo de cadena
ligera Kappa anti humano de cabra conjugado de AP (Sigma). Como
estándar servía el anticuerpo purificado. Las productividades
(pg/célula/día) se calculaban conforme a la fórmula
pg/(Ct-Co)t/ln(Ct-Co),
de manera que Co y Ct indicaban el número de células en el cultivo y
t la duración del cultivo.
\vskip1.000000\baselineskip
Para examinar la influencia de la dosis de
energía en la fabricación de las células feeder sobre la
eficacia de la reclonación, se cultivaban las células
CHO-DG-44 tal como se han descrito
en los métodos "cultivo de células". La fabricación de células
feeder se realizaba tal como se ha descrito en los métodos
"Fabricación de células feeder por irradiación" con una
dosis de energía de 20 Gy, 50 Gy, 100 Gy, 200 Gy y 500 Gy,
respectivamente. Tras la irradiación se saturaban las células
feeder en microplacas de 96 pocillos con un número de células
de aproximadamente 2000 células/pocillo, y se depositaban en una
atmósfera de incubación. A continuación se realizaba una deposición
celular automatizada con una célula
CHO-DG-44 recombinante, que
expresaba una proteína fluorescente, tal como se ha descrito en los
métodos "deposición automatizada de una célula". Para ello se
depositaba una (1) única célula por pocillo frente a las células
feeder. Como parámetro objetivo para la eficacia de la
reclonación servía el número de pocillos positivos, es decir, los
pocillos en los cuales se encontraban los clones, los cuales después
de un tiempo de incubación de tres semanas daban lugar a una
población celular. Las eficacias de reclonación conseguidas se
situaban entre el 40 y el 70% para la reclonación de células
CHO-DG-44 recombinantes (ver figura
1).
\vskip1.000000\baselineskip
Para comparar la homogeneidad de los clones
celulares se depositaban las células CHO-DG 44
expresadas en anticuerpos recombinantes por un lado frente al método
estándar "Limited dilution" y se clonaban y por otro lado se
depositaban y se clonaban por medio de la deposición celular aqui
descrita en presencia de las células feeder (ver figura 2).
Para ello se cultivaban respectivamente, 6 grupos de células
CHO-DG-44 expresadas en anticuerpos
transinfectados según el método Limited-dilution y
paralelamente conforme a la deposición celular automatizada, tal
como se ha descrito en "cultivo de células", y a continuación
se reclinaban tal como se ha descrito en "deposición unicelular
automatizada". Los clones formados se cultivaban tal como se ha
descrito en "cultivo de células" y se determinaban después de
tres pasadas del título del producto según el método
"Determinación de la productividad de los productos genéticos
expresados de forma recombinante". El valor medio resultante de
estas tres pasadas se empleaba para la realización del gráfico.
\vskip1.000000\baselineskip
Mediante la transinfección de las células
CHO-DG44 con un vector de expresión, que codifica la
expresión bicistrónica de un gen del producto (anticuerpo
recombinante) y de una proteína fluorescente
(ZS-Green de Zoanthis sp.), se obtenían
grupos de células que co-expresaban tanto el
anticuerpo como la proteína fluorescente. Estos grupos de células se
depositaban y cultivaban conforme al método ya descrito en presencia
de células feeder CHO-DG44, en microplacas.
La deposición de los clones se realizaba por medio de tres criterios
diferentes
- A)
- Deposición de todas las células vivas
- B)
- Deposición del 20% de las células más fluorescentes
- C)
- Deposición del 5% de las células más fluorescentes
Los clones obtenidos son transferidos luego a
una macro placa de valoración de 24 pocillos y se cultivan tres
pasadas tal como se describe en "cultivo de células". Al final
de cada pasada se determinaba la titulación del anticuerpo en un
sobrenadante según el método "Determinación de la productividad
del producto genético expresado de modo recombinante". El valor
medio resultante de estas tres pasadas se empleaba para trazar el
gráfico. En él se registraba el número de clones obtenidos sobre
unas clases de títulos definidos y se adaptaba una distribución
normal.
Claims (15)
-
\global\parskip0.950000\baselineskip
1. Método para la clonación de células, que se caracteriza porquea) se depositaban menos de 5 células mamíferas en presencia de células feeder autógenas en un recipiente de cultivo en unas condiciones libres de suero y se cultivaban y multiplicaban en unas condiciones libres de suero,b) las células mamíferas depositadas se multiplicaban en un cultivo en suspensión sin suero,c) en el caso de células feeder, se trataba de células cultivadas de forma no adherente, y adaptadas a un medio libre de suero yd) la eficacia de la reclonación es mayor al 10% en la reclonación de células depositadas del modo correspondiente. - 2. Método conforme a la reivindicación 1, que se caracteriza porque únicamente se depositan una(1) ó dos(2) células mamíferas en un recipiente de cultivo en unas condiciones sin suero y en presencia de células feeder autógenas y se cultivan y multiplican en condiciones libres de suero.
- 3. Método conforme a la reivindicación 1, que se caracteriza porque una única célula mamífera (1) se deposita en presencia de células feeder autógenas en un recipiente de cultivo en unas condiciones sin suero y se cultiva y multiplica en condiciones libres de suero.
- 4. Método conforme a una de las reivindicaciones 1 hasta 3, que se caracteriza porque en el caso de las células mamíferas depositadas del modo correspondiente se trata de células de mieloma de ratón o de hámster.
- 5. Método conforme a una de las reivindicaciones 1 hasta 3, que se caracteriza porque en el caso de las células de hámster depositadas del modo correspondiente se trata de células de CHO o BHK.
- 6. Método conforme a una de las reivindicaciones 1 hasta 4, que se caracteriza porque en el caso de las células de mieloma de ratón depositadas del modo correspondiente se trata de células de NS0.
- 7. Método conforme a una de las reivindicaciones 1 hasta 6, que se caracteriza porque las células de hámster se emplean como células feeder cuando en el caso de células mamíferas depositadas del modo correspondiente se trata de células CHO o BHK y porque las células de mieloma de ratón se emplean como células feeder cuando en el caso de células mamíferas depositadas del modo correspondiente se trata de células NS0.
- 8. Método conforme a una de las reivindicaciones 1 hasta 6, que se caracteriza porque las células CHO se emplean como células feeder cuando en el caso de células mamíferas depositadas del modo correspondiente se trata de células CHO, que las células BHK se emplean como células feeder, cuando en el caso de células mamíferas depositadas del modo correspondiente se trata de células BHK, y que las células NS0 se emplean como células feeder, cuando en el caso de células mamíferas depositadas del modo correspondiente se trata de células NS0.
- 9. Método conforme a una de las reivindicaciones 1 hasta 8, que se caracteriza porque las células mamíferas depo-
sitadas del modo correspondiente se multiplican en presencia de 100 hasta 200.000 células feeder por ml de medio. - 10. Método conforme a una de las reivindicaciones 1 hasta 9, que se caracteriza porque las células mamíferas depositadas del modo correspondiente se cultivan y multiplican hasta una densidad de 4x10^{6} células/ml de medio.
- 11. Método conforme a una de las reivindicaciones 1 hasta 10, que se caracteriza porque la eficacia de reclonación en la reclonación de las células CHO depositadas del modo correspondiente es hasta mayor del 65%, en la reclonación de las células BHK depositadas del modo correspondiente es del 10 hasta del 50% mayor y en la reclonación de las células NS0 depositadas del modo correspondiente de un 10 hasta un 45% mayor.
- 12. Composición a base de un medio de cultivo libre de suero, que consta de menos de cinco células mamíferas capaces de dividirse y células feeder que son autógenas frente a las células mamíferas capaces de dividirse.
- 13. Composición conforme a la reivindicación 12, donde la composición contiene solamente una o dos células mamíferas capaces de dividirse en el medio de cultivo.
- 14. Composición conforme a la reivindicación 12 ó 13, que se caracteriza porque la composición contiene células de hámster como células feeder si las células mamíferas capaces de dividirse son células CHO o BHK y la composición contiene células de mieloma de ratón como células feeder si las células mamíferas capaces de dividirse son células NS0.
- 15. Composición conforme a la reivindicación 12 ó 13, que se caracteriza porque la composición contiene células CHO como células feeder si las células mamíferas capaces de dividirse son células CHO, la composición contiene células BHK como células feeder si las células mamíferas capaces de dividirse son células BHK, y la composición contiene células NS0 como células feeder si las células mamíferas capaces de dividirse son células NS0.
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CA2662399A1 (en) * | 2006-09-15 | 2008-03-20 | Boehringer Ingelheim Pharma Gmbh & Co. Kg | Methods of selecting cell clones |
EP1901068A1 (en) * | 2006-09-15 | 2008-03-19 | Boehringer Ingelheim Pharma GmbH & Co. KG | Methods of selecting cell clones |
WO2009115495A1 (de) * | 2008-03-19 | 2009-09-24 | Boehringer Ingelheim Pharma Gmbh & Co. Kg | Methode zur steigerung der reklonierungseffizienz |
JP5304275B2 (ja) * | 2009-01-29 | 2013-10-02 | Jnc株式会社 | アポクライティン−iiをコードするコドン最適化核酸およびその使用方法 |
CN102405279B (zh) | 2009-04-09 | 2015-10-21 | 塞尔卡有限公司 | 改善单细胞克隆的方法 |
CA2781332C (en) | 2009-11-19 | 2018-09-04 | National University Corporation Okayama University | System for increasing gene expression and vector comprising the system |
WO2013063516A1 (en) | 2011-10-28 | 2013-05-02 | Neotope Biosciences Limited | Humanized antibodies that recognize alpha-synuclein |
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UA118441C2 (uk) | 2012-10-08 | 2019-01-25 | Протена Біосаєнсиз Лімітед | Антитіло, що розпізнає альфа-синуклеїн |
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KR20160131073A (ko) | 2014-03-12 | 2016-11-15 | 프로테나 바이오사이언시즈 리미티드 | Lg4-5에 대해 특이적인 항-라미닌4 항체 |
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CA2998716A1 (en) | 2015-09-16 | 2017-03-23 | Prothena Biosciences Limited | Use of anti-mcam antibodies for treatment or prophylaxis of giant cell arteritis, polymyalgia rheumatica or takayasu's arteritis |
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Family Cites Families (16)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0173552B1 (en) | 1984-08-24 | 1991-10-09 | The Upjohn Company | Recombinant dna compounds and the expression of polypeptides such as tpa |
US5008198A (en) | 1984-09-14 | 1991-04-16 | Scripps Clinic And Research Foundation | Merozoite surface glycoproteins |
JP3150340B2 (ja) | 1990-11-13 | 2001-03-26 | イムネクス コーポレイション | 二機能選択可能融合遺伝子 |
US5459058A (en) * | 1991-03-28 | 1995-10-17 | Benjamin Rich | Cell culture system |
EP0804590A1 (en) | 1993-05-21 | 1997-11-05 | Targeted Genetics Corporation | Bifunctional selectable fusion genes based on the cytosine deaminase (cd) gene |
DE19539493A1 (de) | 1995-10-24 | 1997-04-30 | Thomae Gmbh Dr K | Starker homologer Promotor aus Hamster |
BR9909699A (pt) | 1998-04-17 | 2002-04-30 | Nestle Sa | Linhagem de células imortalizadas derivadas de tecidos cutâneos humanos normais |
WO2000034318A1 (en) | 1998-12-11 | 2000-06-15 | Clontech Laboratories, Inc. | Fluorescent proteins from non-bioluminescent species of class anthozoa, genes encoding such proteins and uses thereof |
WO2000034319A1 (en) | 1998-12-11 | 2000-06-15 | Clontech Laboratories, Inc. | Fluorescent proteins from non-bioluminescent species of class anthozoa, genes encoding such proteins and uses thereof |
WO2000034326A1 (en) | 1998-12-11 | 2000-06-15 | Clontech Laboratories, Inc. | Fluorescent proteins from non-bioluminescent species of class anthozoa, genes encoding such proteins and uses thereof |
ES2257303T3 (es) | 1999-07-12 | 2006-08-01 | Genentech, Inc. | Vectores de expresion y procedimientos. |
DK1200561T3 (da) * | 1999-08-05 | 2006-10-16 | Baxter Ag | Rekombinant stabil celleklon, dens fremstilling og anvendelse |
US7456017B2 (en) * | 1999-10-01 | 2008-11-25 | University Of North Carolina At Chapel Hill | Processes for clonal growth of hepatic progenitor cells |
CA2383642C (en) | 1999-10-14 | 2014-03-25 | Clontech Laboratories, Inc. | Anthozoa derived chromophores/fluorophores and methods for using the same |
JP2004510434A (ja) * | 2000-10-03 | 2004-04-08 | ユニバーシティ オブ ノース カロライナ | 肝前駆細胞のクローン増殖方法 |
US20030073234A1 (en) * | 2001-10-12 | 2003-04-17 | Michal Amit | Clonal human embryonic stem cell lines and methods of generating same |
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