ES2300176A1 - Metodo para el diagnostico molecular de cancer de prostata, kit para implementar el metodo. - Google Patents
Metodo para el diagnostico molecular de cancer de prostata, kit para implementar el metodo. Download PDFInfo
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Abstract
Método para el diagnóstico molecular de cáncer de próstata, kit para implementar el método. La presente invención se refiere a un método para el diagnóstico molecular de cáncer de próstata que comprende el análisis in vitro de la sobreexpresión o infraexpresión de combinaciones de genes capaces de discriminar con alta significación estadística las muestras de próstata tumoral de las muestras de próstata no tumoral. En particular, la presente invención se refiere a un kit para el diagnóstico molecular del cáncer de próstata capaz de llevar a cabo la detección mencionada anteriormente.
Description
Método para el diagnóstico molecular de cáncer
de próstata, kit para implementar el método.
La presente invención se engloba dentro del
sector de la biotecnología y específicamente dentro del campo de
los métodos de diagnóstico del cáncer de próstata. Así, la
presente invención se refiere a un método para el diagnóstico
molecular de cáncer de próstata que comprende el análisis in
vitro de la sobreexpresión o infraexpresión de combinaciones de
genes capaces de discriminar con alta significación estadística las
muestras de próstata tumoral de las muestras de próstata no
tumoral. En particular, la presente invención se refiere a un kit
para el diagnóstico molecular del cáncer de próstata capaz de
llevar a cabo la detección mencionada anteriormente.
El cáncer de próstata (CP) es una de las
neoplasias de mayor morbimortalidad en los países industrializados
y por tanto de gran impacto socio-económico [1],
por lo que es objeto de intenso estudio. A pesar de este esfuerzo,
y a diferencia de otros tipos de neoplasia, son comparativamente
escasos los conocimientos firmes sobre los factores moleculares que
determinan su iniciación, su mantenimiento y su progresión maligna.
Por otro lado, la característica más singular del CP, su alta
dependencia de andrógenos, puede proporcionar importantes claves
para comprender algunos de los mecanismos moleculares que subyacen
a la biología de este tumor.
Como en otros tumores, existe una predisposición
genética a padecer CP, por lo que múltiples estudios han buscado
la vinculación entre loci genéticos y la predisposición a padecer
CP. Estos estudios han proporcionado una multiplicidad y
heterogeneidad de loci genéticos [2]. Ninguno de estos loci y genes
explica más que una pequeña proporción de agregaciones familiares
de CP y, lo que es más llamativo, ninguno ha sido confirmado en
estudios de replicación independientes. Esto se podría explicar por
la gran heterogeneidad genética del CP, de modo que varios genes
altamente penetrantes pueden estar asociados a diferentes pedigrís
de CP familiar, así como por la alta frecuencia de fenocopias, es
decir, CP esporádicos incluidos en los estudios de CP familiar, por
ser sus características indistinguibles. Alternativamente, es
posible que ningún gen esté asociado singularmente a la
predisposición al CP, sino que habría una participación de
múltiples genes, cada uno de ellos con una penetrancia
relativamente baja. Una característica adicional del CP familiar es
que no se asocia significativamente con otros tipos de tumores, con
la posible excepción de cáncer de mama y tumores del SNC (Sistema
Nervioso Central) en agregaciones familiares concretas, lo que
indica que el gen o genes implicados no participan en síndromes
neoplásicos generalizados, sino que parecen ser
"organoespecíficos". Sin embargo, se han estudiado en CP
alteraciones de genes frecuentemente asociados a otras neoplasias,
como TP53, BRCA1, PTEN o genes de reparación afectados, p. ej., en
HNPCC (cáncer de colon hereditario sin poliposis), encontrándose
escasas alteraciones o, como en el caso de TP53 o PTEN, mutaciones
que aparecen sólo muy tardíamente en la evolución de los
tumores.
El que los genes de predisposición al CP
encontrados hasta ahora se encuentren alterados en muy pocos
individuos y familias, impide una aproximación preventiva eficaz al
problema. Una cuestión relacionada, aunque independiente, es la
detección precoz de CP. La determinación de los niveles séricos de
PSA (antígeno prostático específico) en sus diferentes formas sigue
siendo la referencia más relevante para la detección y el
seguimiento clínico del CP. Las dudas surgen cuando se requiere un
diagnóstico diferencial, o en casos de CP sin niveles elevados de
PSA. Esta proteína es un marcador tisular y de señalización
androgénica y no un marcador de malignidad propiamente dicho, por
lo que, en sentido estricto, sus niveles séricos son únicamente
indicativos de la masa total de glándulas epiteliales prostáticas
con capacidad de producirla y secretarla. Por tanto, se observan
niveles elevados de PSA no sólo en CP, sino también en HBP
(hiperplasia benigna de próstata) y otros procesos prostáticos
benignos, y, en sentido contrario, su producción se puede ver
comprometida en CP muy indiferenciados, en que las células
epiteliales prostáticas neoplásicas pierden la capacidad de
expresión de PSA.
Por todo ello, muchos laboratorios buscan nuevas
moléculas que ofrezcan mayor especificidad y sensibilidad que el
PSA como marcador de detección y seguimiento del CP. La aplicación
de técnicas de alto rendimiento (High Throughput, HT) al estudio
del CP ha permitido la identificación de moléculas previamente no
asociadas a CP y que se han confirmado como excelentes marcadores
de malignidad, con una capacidad discriminante y una especificidad
muy superiores al PSA cuando se detectan en tejidos [3]. Entre
estos marcadores destacan la
alpha-metilacil-CoA racemasa
(AMACR), la hepsina (HPN) y la sintasa de ácidos grasos (FASN), que
se expresan a altos niveles en la gran mayoría de casos de CP,
mientras que, a diferencia del PSA, sus niveles de expresión en
epitelio prostático normal son mínimos. Por otro lado, la mayoría
de células carcinomatosas en CP pierden la expresión de
glutation-S-transferasa
\pi(GSTP1) por hipermetilación de su promotor. Además, puesto que en las gándulas prostáticas carcinomatosas no hay células basales, hay una disminución en CP de la expresión de genes y proteínas característicos de estas células, como son keratinas de alto peso molecular (por ejemplo, CK5 o CK14) o la proteína nuclear p63, un homólogo del supresor tumoral p53, que se expresa en las capas basales de varios epitelios, incluido el prostático.
\pi(GSTP1) por hipermetilación de su promotor. Además, puesto que en las gándulas prostáticas carcinomatosas no hay células basales, hay una disminución en CP de la expresión de genes y proteínas característicos de estas células, como son keratinas de alto peso molecular (por ejemplo, CK5 o CK14) o la proteína nuclear p63, un homólogo del supresor tumoral p53, que se expresa en las capas basales de varios epitelios, incluido el prostático.
La disponibilidad de buenos reactivos ha
permitido el uso de algunos de estos marcadores en aplicaciones de
relevancia clínica tales como la determinación de niveles en
muestras de biopsias por punción, demostrándose su utilidad en el
diagnóstico de casos dudosos de CP [4]. Sin embargo, a pesar de su
gran especificidad tumoral, ninguna de las proteínas mencionadas es
secretada fisiológicamente por el epitelio prostático, por lo que
su determinación en suero y otros fluidos, una de las mayores
cualidades del PSA como indicador de masa de epitelio prostático
activo, no proporciona resultados totalmente coherentes con su
determinación tisular. A partir de los estudios de alto rendimiento
se están identificando otras moléculas secretadas, que se expresan
a niveles anómalos en CP. La determinación de una o más de estas
proteínas, aún no siendo específicas de tejido, en combinación con
la determinación de niveles de PSA, es un camino prometedor para
desarrollar ensayos de mayor especificidad y sensibilidad.
Por lo tanto existe una necesidad de identificar
subconjuntos de marcadores para el diagnóstico y pronóstico del
cáncer de próstata que mejoren significativamente los existentes.
En esta invención se proporcionan nuevos métodos para el
diagnóstico molecular de CP, con alta capacidad discriminatoria
entre muestras tumorales y no tumorales, basados en la detección de
la expresión de una serie de subconjuntos de genes descritos en la
presente invención, así como kits capaces de llevar a cabo dichos
métodos y los usos de dichas kits para el diagnóstico y pronóstico
de la enfermedad. El uso de niveles de expresión de conjuntos de
dos o más genes para discriminar muestras tumorales de muestras no
tumorales permite alcanzar niveles de significación estadística en
tal discriminación que con frecuencia no se alcanza con la
determinación del nivel de expresión de un único gen.
La presente invención se refiere a un método
para el diagnóstico molecular de cáncer de próstata, que comprende
el análisis, in vitro, en una muestra problema, del nivel de
expresión de al menos un gen o subconjuntos de al menos dos genes
seleccionados del grupo de 45 genes que consiste en: TACSTD1, HPN,
AMACR, APOC1, GJB1, PP3111, CAMKK2, ZNF85, SND1, NONO, ICA1, PYCR1,
ZNF278, BIK, HOXC6, CDK5, LASS2, NME1, PRDX4, SYNGR2, SIM2, EIF3S2,
NIT2, FOXA1, CX3CL1, SNAI2, GSTP1, DST, KRT5, CSTA, LAMB3, EPHA2,
GJA1, PER2, FOXO1A, TGFBR3, CLU, ROR2, ETS2, TP73L, DDR2, BNIP2,
FOXF1, MYO6 y ABCC4.
Además la presente invención se refiere pero no
se limita a kits, para llevar a cabo los métodos arriba indicados,
así como los usos de dichos kits.
Figura 1. Agrupamiento de muestras analizadas
sobre HGF (Human Genome Focus) arrays mediante FADA [13]. Las
muestras se agruparon automáticamente en tumorales (círculo situado
en la parte inferior de la Figura), normales (círculo situado en la
parte superior derecha de la Figura), líneas celulares (círculo
situado a la izquierda de la Figura) y muestras de estroma (círculo
situado en la parte superior izquierda de la Figura).
Figura 2. Representación de Eisen, tras el
análisis por FADA y cluster jerárquico (HC), de los 318 genes sobre
e infraexpresados en muestras prostáticas que más
significativamente discriminan muestras de tejido prostático normal
de muestras de carcinoma prostático [Tabla 2]. Los valores de
expresión utilizados para generar el agrupamiento jerárquico son
los correspondientes a la tabla 6. La jerarquía se establece
mediante el método llamado Hierarchical Clustering. Es un método
estándar en estadística aplicada y por tanto cualquier experto en
la materia puede derivar el resultado obtenido en la presente
invención a partir de los valores numéricos de la Tabla 6. En la
parte superior de la imagen: N, muestras de próstata normal; T,
muestras de adenocarcinoma prostático; S, muestras de estroma
prostático puro; C, células en cultivo. A la derecha se indican los
compartimentos a que corresponden predominantemente los distintos
grupos de genes. Esta es una interpretación post hoc, es
decir, hecha a partir de los perfiles de expresión observados para
estos genes.
Figura 3. Agrupamiento jerárquico de las 30
muestras analizadas sobre arrays Affymetrix HGF, usando los 45
genes incluidos en el Chip Diagnóstico 1 [Tabla 3]. Los valores de
expresión utilizados para generar el agrupamiento jerárquico son
los correspondientes a la Tabla 6. El agrupamiento resultante de
las muestras se denota de forma idéntica a como se ha descrito para
la Figura 2: N, tejido prostático normal; T, tejido tumoral; S,
estroma; C, células en cultivo.
Figura 4. Diagrama de Eisen correspondiente al
análisis por agrupamiento (cluster) jerárquico de los patrones de
expresión en próstata tumoral, normal, estroma prostático puro y
líneas celulares, obtenidos sobre arrays Affymetrix HGF, de 22
genes seleccionados y validados por RT-PCR en
tiempo real [Tabla 4]. Los valores utilizados para el agrupamiento
jerárquico de estos 22 genes se han tomado de la Tabla 6. El
agrupamiento resultante de las muestras se denota de forma idéntica
a como se ha descrito para la Figura 2: N, tejido prostático
normal; T, tejido tumoral; E, estroma; C, células en cultivo.
Figura 5. Diagrama de Eisen correspondiente al
análisis por cluster jerárquico de los patrones de expresión en
próstata tumoral, normal, estroma prostático puro y líneas
celulares, obtenidos sobre arrays Affymetrix HGF, de 14 genes
seleccionados y validados por RT-PCR en tiempo real
[Tabla 5]. Los valores utilizados para el agrupamiento jerárquico
de estos 14 genes se han tomado de la Tabla 6. El agrupamiento
resultante de las muestras se denota de forma idéntica a como se ha
descrito para la Figura 2: N, tejido prostático normal; T, tejido
tumoral; E, estroma; C, células en cultivo.
Figura 6. Discriminación entre muestras de
próstata tumoral (T) y próstata normal (N) mediante determinación
de niveles de transcrito con arrays de Affymetrix del gen MYO6 en
combinación con la determinación de niveles de transcritos de los
siguientes genes: ABCC4, AMACR, BIK, BNIP2, CDK5, CSTA, DST,
EIF3S2, EPHA2, ETS2, GJB1, HPN, NIT2, PYCR1, ROR2, TACSTD1 y TP73L.
Los valores de expresión utilizados para el agrupamiento jerárquico
de estos genes se han tomado de la Tabla 6.
Figura 7. Discriminación entre muestras de
próstata tumoral (T) y próstata normal (N) mediante determinación
de niveles de transcrito con arrays de Affymetrix del gen ABCC4 en
combinación con la determinación de niveles de transcritos de los
siguientes genes: CSTA, GJB1, GSTP1, HOXC6, HPN, LAMB3, MYO6, PRDX4
y TP73L. Los valores de expresión utilizados para el agrupamiento
jerárquico de estos genes se han tomado de la tabla 6.
Figura 8. Detección inmunohistoquímica de la
proteína MYO6 en una muestra tisular de un paciente con cáncer de
próstata que contiene glándulas tumorales (T) y glándulas normales
(N). La tinción es de intensidad claramente superior en las células
epiteliales tumorales que en las células epiteliales normales. La
tinción para MYO6 presenta un patrón citoplasmático, con refuerzo
submembranal.
Figura 9. Detección inmunohistoquímica de la
proteína EPHA2 en una muestra tisular de un paciente con cáncer de
próstata que contiene glándulas tumorales (T) y glándulas normales
(N). La tinción es exclusivamente en glándulas normales, en
concreto en células de la capa basal. La tinción presenta un patrón
citoplasmático con refuerzo de membrana.
Figura 10. Detección inmunohistoquímica de la
proteína CX3CL1 en diversas muestras de tejido prostático. Figura
10A: Muestra con glándulas tumorales (T) y normales (N), en que los
niveles de CX3CL1 son claramente inferiores en las células
tumorales en relación con las células normales. Figura 10B: Muestra
con células epiteliales tumorales en que la tinción para CX3CL1 es
intensa en la mayoría de células tumorales. Figura 10C: Muestra con
PIN (P) y glándulas normales (N), en que la tinción es
significativamente más intensa en las células de PIN que en las
células epiteliales normales.
Para la realización de la presente invención se
analizaron mediante hibridación sobre arrays Human Genome Focus de
Affymetrix un total de 31 muestras prostáticas (figura 1).
Las señales crudas de hibridación se
normalizaron según la normalización de Irizarry et al.
(2003), y se sometieron a análisis no supervisado mediante el
algoritmo FADA [13]. Los genes fueron considerados como
diferencialmente expresados entre los grupos normal y tumoral
cuando su valor de q asociado (17) era inferior a 2,5*10^{-4}.
Este análisis permitió la agrupación automática de muestras, de
forma que todas las muestras tumorales, excepto una, se agruparon
en un clade y todas las muestras normales se agruparon en otro
clade [Figura 1]. En este análisis se incluyeron también líneas
celulares prostáticas establecidas y células provenientes de
explantes primarios a partir de muestras humanas prostáticas. En el
análisis por FADA, las células cultivadas se agruparon
independientemente de los 2 clades anteriormente mencionados. A
partir de este análisis se dedujeron aquellos genes que más
significativamente discriminan muestras tumorales de muestras
normales (con un P menor o igual a 10^{-4} en un test t de
Student con corrección múltiple), encontrando un total de 318
genes, de los que 134 se encuentran significativamente
sobrerrepresentados (sobreexpresados) en tumores y 184
significativamente infrarrepresentados en tumores (en la Tabla 2 se
muestra una lista de genes capaces de discriminar entre muestras de
próstata tumoral y próstata normal, analizados según sus perfiles
de expresión obtenidos mediante hibridación sobre microarrays
Affymetrix HGF).
En los siguientes apartados se describen con
algo más de detalle algunos de estos genes y su relevancia en
CP.
En primer lugar, se analizaron aquellos genes
sobreexpresados en CP previamente estudiados [Figura 2]. La
identificación de estos genes sirvió de validación externa del
estudio. Los genes de esta categoría incluyen los bien estudiados
HPN y AMACR, y, en menor medida, genes como SIM2 y HOXC6. HPN ha
sido extensamente caracterizado [19-21], y se ha
demostrado muy recientemente que su sobreexpresión puede conducir a
un fenotipo transformado en modelos murinos de cáncer de próstata
[22]. AMACR también se ha estudiado en muchos laboratorios como
marcador de malignidad en CP [23-27], y su uso
clínico se ha extendido recientemente [26-29]. SIM2
se ha encontrado de forma más limitada como asociado a CP [29],
aunque ya ha sido objeto de estudio como posible diana terapéutica
con siRNA y oligonucleótidos antisentido en modelos celulares [29,
31]. HOXC6 se ha estudiado tanto como marcador de malignidad
[32-35], como en su papel en la supervivencia de
células tumorales prostáticas en cultivo [36].
En segundo lugar, se analizaron aquellos genes
sobreexpresados en CP previamente no relacionados inequívocamente
con el tumor de próstata. Entre estos genes hay muchos que aparecen
en "listados" de genes de trabajos que usan análisis de MA,
pero sin que en tales trabajos se haga un especial énfasis o
esfuerzo para su caracterización biológica. Entre estos genes los
hay de factores transcripcionales de elevado interés en este
contexto (FOXA1, NONO, ZNF278, ZNF85), genes de proteínas de
tráfico vesicular (MYO6, RAB17, SYNGR2, RABIF), genes de
transportadores de membrana (ABCC4, TMEM4, SLC19A7), genes de
enzimas del metabolismo de ácidos grasos y del metabolismo de
ácidos nucleicos.
En tercer lugar se analizaron aquellos genes
infraexpresados en CP. De los 184 genes detectados como
significativamente infraexpresados en tumores, hay un número
relativamente alto de genes que se expresan en estroma, por lo que
se sospecha que, a pesar del cuidado puesto en la selección de
muestras para igualar el componente estromal en muestras tumorales
y normales, hay una mayor representación del componente estromal en
muestras normales. No obstante, hay también un número alto de genes
que parecen propios de epitelio prostático normal, y que son los
que permiten la agrupación no supervisada de muestras normales en
una misma rama filética, separada de las muestras estromales
[Figura 1]. Algunos de estos genes ya han sido descritos como de
expresión disminuida en CP. Dos ejemplo son GSTP1 y LOH11CR2A, para
los que ya se ha demostrado que la pérdida de su expresión en
tumores se asocia a hipermetilación de islas CpG de sus regiones
promotoras [37, 38]. Otro gen interesante es TP73L, que codifica
para p63 y del que varias isoformas (principalmente \DeltaN y TA)
participan en la acción efectora del supresor tumoral p53 [39].
Además, se ha demostrado que la expresión de p63 se asocia con
células epiteliales basales de la glándula prostática normal, y que
la deleción de este gen en ratones impide la formación de una
próstata normal [40].
Adicionalmente, cultivos primarios de células
epiteliales prostáticas, así como líneas celulares prostáticas
inmortalizadas con HPV-16, pero no tumorogénicas
(p. ej., RWPEl), expresan TP73L, mientras que células prostáticas
establecidas a partir de tumores no expresan este gen. Otros genes
infraexpresados en tumores son de factores transcripcionales de la
familia FOX (FOXO1A, FOXF1) y otros factores transcripcionales,
potenciales supresores tumorales (TACC1, SLIT2), receptores
transmembrana y sus ligandos (TGFBR3, TGB3, FGFR1, FGF2, FGF7,
IL6R), o proteínas de adhesión celular (DDR2, CADH9, ITGA5,
GJA1).
Además, se validó mediante inmunohistoquímica
sobre muestras parafinadas (en formato Tissue Microarrays) los
niveles de expresión de algunas de las proteínas correspondientes a
genes sobreexpresados o infraexpresados en CP del presente estudio,
así como en estudios previos [13].
Uno de los genes que se encontró sobreexpresado
en los estudios transcripcionales, y cuya proteína se estudió por
inmunohistoquímica, fue MYO6. El presente estudio
inmunohistoquímico validó los datos transcripcionales, demostrando
que la proteína MYO6 también se sobreexpresa en una mayoría de
tumores. Un claro ejemplo de sobreexpresión de la proteína MYO6 en
carcinoma de próstata en relación con glándulas prostáticas
normales se muestra en la Figura 8, correspondiente a una muestra
que contiene tanto epitelio prostático tumoral como epitelio
prostático normal, habiendo sido teñidas con un anticuerpo
monoclonal específico de MYO6. Esta proteína es una miosina atípica
con funciones en endocitosis y tráfico vesicular, y que
previamente se había demostrado que se expresa a altos niveles en
adenocarcinoma de ovario, principalmente en asociación con bordes
invasivos [41].
También se llevó a cabo el análisis de la
expresión in situ de varios de los genes infraexpresados en
la presente invención, en particular aquellos cuya infraexpresión
representa una novedad en esta neoplasia, como el receptor tirosina
kinasa EPHA2, el regulador transcripcional SNAI2 o la quimioquina
CX3CL1. Son de resaltar estos resultados, en particular en relación
con EPHA2 y SNAI2, ya que tanto EPHA2 [42-58] como
SNAI2 [59-62] se asociaron en múltiples
publicaciones a una sobreexpresión, y no infraexpresión, en
múltiples tipos de tumores, entre los que se incluyen los
adenocarcinomas de próstata.
Un ejemplo de la pérdida de expresión de la
proteína EPHA2 en epitelio prostático tumoral se muestra en la
Figura 9, en que se ve que las glándulas prostáticas normales (en
células de la capa basal) expresan altos niveles de EPHA2, mientras
que las células epiteliales prostáticas tumorales situadas en
glándulas adyacentes carecen por completo de reactividad y por
tanto no expresan niveles detectables de esta proteína.
En el caso de la quimioquina CX3CL1 (también
llamada fractalkina), la expresión determinada mediante
RT-PCR en tiempo real indicaba una tendencia a que
el epitelio tumoral mostrase niveles de expresión inferiores al
epitelio normal. La tinción inmunohistoquímica para la
correspondiente proteína, sin embargo, mostró perfiles variables
según los casos, de modo que en algunas muestras se da una
disminución significativa de la expresión de CXC3L1 en epitelio
tumoral, mientras que en otros casos el epitelio prostático tumoral
presentaba altos niveles de la misma proteína [Figura 10].
Finalmente, distintos casos de neoplasia intraepitelial prostática
(PIN) mostraron niveles variables de tinción para CX3CL1, siendo en
algunos casos de intensidad mayor que en el epitelio normal
adyacente [Figura 10].
En el contexto de CP, por tanto, nuestros
resultados indican que la posible sobreexpresión de estas moléculas
no se debe utilizar como indicador de malignidad, o servir como
base para diana terapéutica en este tipo de tumores, a diferencia
de lo que generalmente se viene aceptando. Antes bien, nuestros
datos indican que el nivel de expresión de estas moléculas es bajo
o nulo en epitelio prostático maligno.
Como consecuencia de los anteriores análisis, se
ha identificado y definido un conjunto de genes, correspondiente
al grupo de 318 genes, y varios subconjuntos de genes, a partir de
este primero, útiles para el diagnóstico molecular de cáncer de
próstata con alta capacidad discriminatoria entre muestras
tumorales y no tumorales, en los que la determinación de los
niveles de mRNA y/o proteína representa una signatura diagnóstica
de cáncer de prótata que mejora significativamente los métodos
existentes de diagnóstico de dicho cáncer.
Con objeto de diseñar un método de diagnóstico
de cáncer de prostata en un formato más reducido que el conjunto
de 318 genes, más práctico y cercano a la práctica clínica (por
ejemplo mediante análisis RT-PCR tipo microarray o
chip de diagnóstico) se llevó a cabo una selección de grupo menor
de genes incluidos en este primer conjunto (ver Ejemplo 2). Esta
selección de un subconjunto de 45 genes representa una de las
múltiples alternativas que se pueden obtener a partir del análisis
de este grupo de genes original, y no debe ser entendida como una
limitación del alcance de la presente invención. Un experto en la
materia puede establecer grupos de genes distintos a los descritos
en la presente invención.
El primero de los subconjuntos contiene un
conjunto cuidadosamente seleccionado de 45 genes, validados por
RT-PCR en tiempo real, con una alta capacidad de
discriminación entre muestras normales y tumorales [Tabla 3, Figura
3]. Otra versión generada, para el análisis de un número aún más
limitado de genes, validados por RT-PCR en tiempo
real, mantiene prácticamente la misma capacidad de discriminación
entre muestras normales y tumorales que el anterior. Dicho
subconjunto de genes incluidos en este diseño corresponde a los 22
genes validados mostrados en la Tabla 4 y Figura 4, o incluso un
subconjunto aún más reducido, que corresponde a los 14 genes
mostrados en la Tabla 5 y Figura 5. Otras versiones generadas de
subconjuntos de genes con alta capacidad discriminatoria entre
muestras tumorales y no tumorales que entran dentro del alcance de
la presente invención se muestran en las Figuras 6 y 7. La
identificación de los niveles de expresión de todos estos
subconjuntos de genes sirven de base para el desarrollo de un kit o
dispositivo de diagnóstico de cáncer de próstata de relativo bajo
coste y alto rendimiento para cuantificar múltiples transcritos, en
tiempo real, en una plataforma que permite analizar
simultáneamente un diverso y alto número de muestras.
Preferentemente, cuando el kit de diagnóstico se basa en la
cuantificación de transcritos, se requiere menos de 1 ng de RNA
total por muestra. Igualmente, es posible el desarrollo de un kit o
dispositivo de diagnóstico de cáncer de próstata basado en la
determinación de los niveles de proteína de dichos genes en
muestras tumorales.
Por lo tanto, en un primer aspecto, la presente
invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata, que comprende el
análisis, in vitro, en una muestra problema, del nivel de
expresión de al menos un gen seleccionado del grupo de 45 genes que
consiste en: TACSTD1, HPN, AMACR, APOC1, GJB1, PP3111, CAMKK2,
ZNF85, SND1, NONO, ICA1, PYCR1, ZNF278, BIK, HOXC6, CDK5, LASS2,
NME1, PRDX4, SYNGR2, SIM2, EIF3S2, NIT2, FOXA1, CX3CL1, SNAI2,
GSTP1, DST, KRT5, CSTA, LAMB3, EPHA2, GJA1, PER2, FOXO1A, TGFBR3,
CLU, ROR2, ETS2, TP73L, DDR2, BNIP2, FOXF1, MYO6 y ABCC4.
En otro aspecto, la presente invención se
refiere pero no se limita a un método para el diagnóstico molecular
de cáncer de próstata, que comprende el análisis, in vitro,
en una muestra problema, del nivel de expresión de al menos dos
genes seleccionados del grupo de 45 genes que consiste en: TACSTD1,
HPN, AMACR, APOC1, GJB1, PP3111, CAMKK2, ZNF85, SND1, NONO, ICA1,
PYCR1, ZNF278, BIK, HOXC6, CDK5, LASS2, NME1, PRDX4, SYNGR2, SIM2,
EIF3S2, NIT2, FOXA1, CX3CL1, SNAI2, GSTP1, DST, KRT5, CSTA, LAMB3,
EPHA2, GJA1, PER2, FOXO1A, TGFBR3, CLU, ROR2, ETS2, TP73L, DDR2,
BNIP2, FOXF1, MYO6 y ABCC4 donde la capacidad discriminatoria
entre muestras tumorales y no tumorales cuando se determinan
conjuntamente los niveles de expresión de dos o más genes de dicho
grupo es mayor que la capacidad discriminatoria de los mismos genes
por separado.
En particular, la capacidad discriminatoria
cuando se determinan conjuntamente los niveles de expresión de dos
o más genes es un 1%, preferentemente un 10%, más preferentemente
un 25%, aún más preferentemente un 50% mayor que la capacidad
discriminatoria de al menos uno de los genes por separado.
En el contexto de la presente invención, se
define la "capacidad discriminatoria" como la capacidad de
discriminar entre muestras tumorales y no tumorales cuando se
aplica un método de clasificación de muestras basado en el conjunto
de datos obtenidos a partir de los experimentos de análisis de
expresión para un gen o para un subconjunto de al menos dos genes
del grupo de 45 genes objeto de la presente invención.
Por ejemplo, al aplicar un determinado método de
clasificación al conjunto de muestras descrito en la tabla 6, la
capacidad discriminatoria entre muestras tumorales y no tumorales
de los genes MYO6 y CDK5 determinados individualmente era de 93,6%
y 87,1%, respectivamente, mientras que la capacidad discriminatoria
de la determinación conjunta de ambos genes era de 96,8%. Aún otro
ejemplo, la capacidad discriminatoria de los genes ABCC4 y FOXO1A
determinados individualmente era de 87,1% y 83,9%, respectivamente,
mientras que la capacidad discriminatoria de la determinación
conjunta de ambos genes era de 96,8%.
El término "muestra problema" tal y como se
utiliza en la descripción se refiere, pero no se limita, a tejidos
y/o fluidos biológicos (sangre, orina, saliva, etc.), obtenidos
mediante biopsias, raspados o cualquier otro método conocido por un
experto en la materia que sirva para el mismo fin, de un vertebrado
susceptible de tener cáncer de próstata donde dicho vertebrado es
un humano.
En una realización preferida, la presente
invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata, que comprende el
análisis, in vitro, en una muestra problema, del nivel de
expresión de al menos dos genes seleccionados del grupo de 22 genes
que consiste en: TACSTD1, HPN, AMACR, APOC1, GJB1, CX3CL1, SNAI2,
GSTP1, DST, KRT5, CSTA, LAMB3, EPHA2, GJA1, PER2, FOXO1A, TGFBR3,
CLU, ROR2, ETS2, MYO6 y ABCC4 donde la capacidad discriminatoria
entre muestras tumorales y no tumorales cuando se determinan
conjuntamente los niveles de expresión de dos o más genes de dicho
grupo es mayor que la capacidad discriminatoria de los mismos genes
por separado.
En una realización aún más preferida, la
presente invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata, que comprende el
análisis, in vitro, en una muestra problema, del nivel de
expresión de al menos dos genes seleccionados del grupo de 14 genes
que consiste en: TACSTD1, HPN, AMACR, APOC1, CX3CL1, SNAI2, GSTP1,
DST, KRT5, CSTA, LAMB3, EPHA2, MYO6 y ABCC4 donde la capacidad
discriminatoria entre muestras tumorales y no tumorales cuando se
determinan conjuntamente los niveles de expresión de dos o más
genes de dicho grupo es mayor que la capacidad discriminatoria de
los mismos genes por separado.
En un tercer aspecto, la presente invención se
refiere pero no se limita a un método para el diagnóstico molecular
de cáncer de próstata con alta capacidad discriminatoria, entre
muestras tumorales y no tumorales, que comprende el análisis, in
vitro, en una muestra problema, del nivel de expresión de al
menos dos genes seleccionados de la tabla 3 donde al menos uno de
dichos genes seleccionados es el gen MYO6 o el gen ABCC4.
En una realización preferida, la presente
invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata con alta capacidad
discriminatoria, entre muestras tumorales y no tumorales, que
comprende el análisis, in vitro, en una muestra problema,
del nivel de expresión del gen MYO6 en combinación con el análisis
del nivel de expresión de al menos un gen del grupo que consiste
en: ABCC4, AMACR, BIK, BNIP2, CDK5, CSTA, DST, EIF3S2, EPHA2, ETS2,
GJB1, HPN, NIT2, PYCR1, ROR2, TACSTD1 y TP73L.
En una realización aún más preferida, la
presente invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata con alta capacidad
discriminatoria, entre muestras tumorales y no tumorales, que
comprende el análisis, in vitro, en una muestra problema, de
la sobreexpresión del gen MYO6 en combinación con el análisis de la
sobreexpresión de al menos un gen del grupo que consiste en: ABCC4,
AMACR, BIK, CDK5, EIF3S2, GJB1, HPN, NIT2, PYCR1, TACSTD1.
En una realización aún más preferida, la
presente invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata con alta capacidad
discriminatoria, entre muestras tumorales y no tumorales, que
comprende el análisis, in vitro, en una muestra problema, de
la sobreexpresión del gen MYO6 en combinación con el análisis de la
infraexpresión de al menos un gen del grupo que consiste en: BNIP2,
CSTA, DST, EPHA2, ETS2, ROR2, y TP73L.
En otra realización preferida, la presente
invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata con alta capacidad
discriminatoria, entre muestras tumorales y no tumorales, que
comprende el análisis, in vitro, en una muestra problema,
del nivel de expresión del gen ABCC4 en combinación con el análisis
del nivel de expresión de al menos un gen del grupo que consiste
en: CSTA, GJB1, GSTP1, HOXC6, HPN, LAMB3, MYO6, PRDX4 y TP73L.
En una realización aún más preferida, la
presente invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata con alta capacidad
discriminatoria, entre muestras tumorales y no tumorales, que
comprende el análisis, in vitro, en una muestra problema, de
la sobreexpresión del gen ABCC4 en combinación con el análisis de
la sobreexpresión de al menos un gen del grupo que consiste en:
GJB1, HOXC6, HPN, MYO6, PRDX4.
En una realización aún más preferida, la
presente invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata con alta capacidad
discriminatoria, entre muestras tumorales y no tumorales, que
comprende el análisis, in vitro, en una muestra problema, de
la sobreexpresión del gen ABCC4 en combinación con el análisis de
la infraexpresión de al menos un gen del grupo que consiste en:
CSTA, GSTP1, LAMB3, y TP73L.
En otra realización preferida, la presente
invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata con alta capacidad
discriminatoria, entre muestras tumorales y no tumorales, que
comprende el análisis, in vitro, en una muestra problema, de
la sobreexpresión de MYO6 o ABCC4, TACSTD1, HPN, AMACR o APOC1 o el
análisis de la infraexpresión de los genes CX3CL1, SNAI2, GSTP1,
DST, KRT5, CSTA, LAMB3 o EPHA2.
En una realización aún más preferida, la
presente invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata con alta capacidad
discriminatoria, entre muestras tumorales y no tumorales, que
comprende el análisis, in vitro, en una muestra problema, de
la sobreexpresión de MYO6, ABCC4, TACSTD1, HPN, AMACR, APOC1 o GJB1
o el análisis de la infraexpresión de los genes CX3CL1, SNAI2,
GSTP1, DST, KRT5, CSTA, LAMB3, EPHA2, GJA1, PER2, FOXO1A, TGFBR3,
CLU, ROR2 o ETS2.
En una realización aún más preferida, la
presente invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata con alta capacidad
discriminatoria, entre muestras tumorales y no tumorales, que
comprende el análisis, in vitro, en una muestra problema, de
la sobreexpresión de MYO6, ABCC4, TACSTD1, HPN, AMACR, APOC1, GJB1,
PP3111, CAMKK2, ZNF85, SND1, NONO, ICA1, PYCR1, ZNF278, BIK, HOXC6,
CDK5, LASS2, NME1, PRDX4, SYNGR2, SIM2, EIF3S2, NIT2 o FOXA1 o el
análisis de la infraexpresión de los genes CX3CL1, SNAI2, GSTP1,
DST, KRT5, CSTA, LAMB3, EPHA2, GJA1, PER2, FOXO1A, TGFBR3, CLU,
ROR2, ETS2, TP73L, DDR2, BNIP2, o FOXF1.
Por "gen sobrexpresado" tal y como se
utiliza en la presente invención debe entenderse, en general, la
expresión anormalmente alta de un gen o de sus productos de
transcripción o expresión (ARN o proteína) en células procedentes
de un tejido prostático tumorigénico respecto a la expresión de
dicho gen o de sus productos de transcripción o expresión (ARN o
proteína) en células normales del mismo tejido no tumorigénico. En
el caso de la determinación de niveles de expresión mediante
hibridación sobre microarrays Affymetrix definimos como gen
"sobreexpresado" en una muestra de cáncer de próstata aquél
cuyos niveles de expresión son al menos 2,0 veces superiores a los
niveles de expresión de la correspondiente muestra de tejido
prostático no tumoral. Cuando la determinación se realiza mediante
RT-PCR cuantitativa definimos como
"sobreexpresión" cuando el niveles de expresión en la muestra
tumoral del gen en cuestión es al menos 1,5 veces el nivel de
expresión en la correspondiente muestra prostática normal. Por otra
parte, cuando se analizan varias muestras tumorales, un gen se
considera "generalmente sobreexpresado", o
"sobreexpresado" en tales tumores de próstata cuando dicho gen
está sobreexpresado en al menos un 70% de las muestras tumorales
estudiadas, comparando los niveles normalizados de dicho gen,
determinados en muestras de tejido prostático tumoral, con la media
aritmética de los niveles normalizados de al menos cinco muestras
de tejido prostático no tumoral, definiendo cuantitativamente los
niveles de "sobreexpresión" tal como se describe arriba para
determinaciones sobre microarrays o mediante RT-PCR
cuantitativa.
Por "gen infraexpresado" tal y como se
utiliza en la presente invención debe entenderse, en general, la
expresión anormalmente baja de un gen o de sus productos de
transcripción o expresión (ARN o proteína) en células procedentes
de un tejido prostático tumorigénico respecto a la expresión de
dicho gen o de sus productos de transcripción o expresión (ARN o
proteína) en células normales del mismo tejido no tumorigénico. En
el caso de la determinación de niveles de expresión mediante
hibridación sobre microarrays Affymetrix definimos como gen
"infraexpresado" en una muestra de cáncer de próstata aquél
cuyos niveles de expresión son 0,5 veces, o menos, en relación con
los niveles de expresión de la correspondiente muestra de tejido
prostático no tumoral. Cuando la determinación se realiza mediante
RT-PCR cuantitativa definimos como
"infraexpresión" cuando el niveles de expresión en la muestra
tumoral del gen en cuestión es al 0,75 veces, o inferior, con
respecto al nivel de expresión en la correspondiente muestra
prostática normal. Por otra parte, cuando se analizan varias
muestras tumorales, un gen se considera "generalmente
infraexpresado" o "infraexpresado" en tales tumores de
próstata cuando dicho gen está infraexpresado en al menos un 70% de
las muestras tumorales estudiadas, comparando los niveles
normalizados de dicho gen, determinados en muestras de tejido
prostático tumoral, con la media aritmética de los niveles
normalizados de al menos cinco muestras de tejido prostático no
tumoral, definiendo cuantitativamente los niveles de
"infraexpresión" tal como se describe arriba para
determinaciones sobre microarrays o mediante RT-PCR
cuantitativa.
Se consideró que una muestra presentaba
sobreexpresión o infraexpresión de una proteína respecto a otra
muestra, cuando la diferencia del porcentaje de tinción epitelial
entre las dos muestras era superior al 20% y/o la intensidad era al
menos un grado diferente.
Y, finalmente, en una realización aún más
preferida la presente invención se refiere pero no se limita a un
método para el diagnóstico molecular de cáncer de próstata con
alta capacidad discriminatoria, entre muestras tumorales y no
tumorales, que comprende el análisis, in vitro, en una
muestra problema, de la sobreexpresión o infraexpresión de los 318
genes indicados en la Tabla 2.
En un cuarto aspecto, la presente invención se
refiere pero no se limita a un método para el diagnóstico molecular
de cáncer de próstata con alta capacidad discriminatoria, entre
muestras tumorales y no tumorales, que comprende el análisis, in
vitro, en una muestra problema del nivel de expresión de al
menos un gen o subgrupos de dos genes seleccionados de la tabla 3
donde el análisis del nivel de expresión de dichos genes se realiza
determinando el nivel de ARNm derivado de su transcripción y/o
determinando el nivel de proteína codificada por el gen o
fragmentos de la misma.
En una realización preferida, la presente
invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata con alta capacidad
discriminatoria, entre muestras tumorales y no tumorales, que
comprende el análisis, in vitro, en una muestra problema del
nivel de expresión de al menos un gen o subgrupos de dos genes
seleccionados de la tabla 3 donde el análisis del nivel de
expresión de dichos genes se realiza determinando el nivel de ARNm
derivado de su transcripción donde el análisis del nivel de ARNm se
puede realizar, a título ilustrativo y sin que limite el alcance de
la invención, mediante amplificación por PCR (reacción en cadena
de la polimerasa), RT-PCR (retrotranscripción en
combinación con la reacción en cadena de la polimerasa),
RT-LCR (retrotranscripción en combinación en
combinación con la reacción en cadena de la ligasa), SDA o
cualquier otro método de amplificación de ácidos nucleicos; chips
de DNA elaborados con oligonucleótidos depositados por cualquier
mecanismo; chips de DNA elaborados con oligonucleótidos sintetizados
in situ mediante fotolitografía o por cualquier otro
mecanismo; hibridación in situ utilizando sondas específicas
marcadas con cualquier método de marcaje; mediante geles de
electroforesis; mediante transferencia a membrana e hibridación con
una sonda específica; mediante RMN o cualquier otra técnica de
diagnóstico por imagen utilizando nanopartículas paramagnéticas o
cualquier otro tipo de nanopartículas detectables funcionalizadas
con anticuerpos o por cualquier otro medio.
En otra realización preferida, la presente
invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata con alta capacidad
discriminatoria, entre muestras tumorales y no tumorales, que
comprende el análisis, in vitro, en una muestra problema del
nivel de expresión de al menos un gen o subgrupos de dos genes
seleccionados de la tabla 3 donde la determinación del nivel de
expresión de dichos genes se realiza determinando el nivel de
proteína codificada por el gen o fragmentos de la misma, mediante
la incubación con un anticuerpo específico (donde el análisis se
lleva a cabo mediante Western blot y/o inmunohistoquímica);
mediante geles de electroforesis; mediante chips de proteína;
mediante ELISA o cualquier otro método enzimático; mediante RMN o
cualquier otra técnica de diagnóstico por imagen.
El término "anticuerpo" tal y como se
utiliza en la presente descripción incluye anticuerpos
monoclonales, anticuerpos policlonales, fragmentos recombinantes de
anticuerpos, combibodies, fragmentos Fab y scFv de anticuerpos,
así como los dominios de unión a ligando.
En un quinto aspecto, la presente invención se
refiere pero no se limita a un Kit para el diagnóstico molecular de
cáncer de próstata. Dicho kit puede comprender cebadores, sondas y
todos aquellos reactivos necesarios para analizar la variación en
el nivel de expresión de al menos un gen o subgrupos de dos genes
de cualquiera de los métodos anteriores. El kit además puede
incluir, sin ningún tipo de limitación, el uso de tampones,
polimerasas, cofactores para obtener una actividad óptima de éstas,
agentes para prevenir la contaminación, etc. Por otro lado el kit
puede incluir todos los soportes y recipientes necesarios para su
puesta en marcha y optimización.
Así, otro objeto de la presente invención lo
constituye un dispositivo para el diagnóstico molecular de cáncer
de próstata, en adelante dispositivo diagnóstico de la invención,
que comprende los elementos necesarios para analizar la variación
en los niveles de expresión de al menos un gen o subgrupos de dos
genes de cualquiera de los métodos anteriores.
Una realización preferente de la presente
invención consiste en un dispositivo diagnóstico de la invención
para la detección de los niveles de expresión de ARNm mediante una
técnica, a título ilustrativo y sin que limite el alcance de la
invención, perteneciente al siguiente grupo: análisis Northern
blot, reacción en cadena de la polimerasa (PCR), retrotranscripción
en combinación con la reacción en cadena de la polimerasa
(RT-PCR) en tiempo real, retrotranscripción en
combinación con la reacción en cadena de la ligasa
(RT-LCR), hibridación o microarrays.
Otra realización preferente de la invención lo
constituye un dispositivo diagnóstico de la invención para la
detección de los niveles de expresión de ARNm que consiste, a
título ilustrativo y sin que limite la invención, en un microarray
de ADN, un gene-chip de ADN o un chip
microelectrónico de ADN, que comprende sondas génicas.
Otra realización preferente de la invención lo
constituye un dispositivo diagnóstico de la invención para la
detección de los niveles de expresión de proteína mediante una
técnica, a título ilustrativo y sin que limite el alcance de la
invención, perteneciente al siguiente grupo: ELISA, Western blot y
un dispositivo tipo biochip o microarray de proteínas que incluyan
anticuerpos específicos.
En un sexto aspecto, la presente invención se
refiere pero no se limita a un método para el diagnóstico molecular
de cáncer de próstata con alta capacidad discriminatoria, entre
muestras tumorales y no tumorales, que comprende el análisis, in
vitro, en una muestra problema, donde la sobreexpresión de los
genes MYO6, ABCC4, TACSTD1, HPN, AMACR, APOC1 o el análisis de la
infraexpresión de los genes CX3CL1, SNAI2, GSTP1, DST, KRT5, CSTA,
LAMB3 o EPHA2 se utiliza como diagnóstico de la presencia de cáncer
de próstata o de una condición pre-maligna del mismo
o como pronóstico de la progresión del cáncer de próstata o de una
condición pre-maligna del mismo o como pronóstico
del riesgo de recurrencia de dicha enfermedad.
En una realización preferida, la presente
invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata con alta capacidad
discriminatoria, entre muestras tumorales y no tumorales, que
comprende el análisis, in vitro, en una muestra problema,
donde la sobreexpresión de MYO6, ABCC4, TACSTD1, HPN, AMACR, APOC1
o GJB1 o el análisis de la infraexpresión de los genes CX3CL1,
SNAI2, GSTP1, DST, KRT5, CSTA, LAMB3, EPHA2, GJA1, PER2, FOXO1A,
TGFBR3, CLU, ROR2 o ETS2 se utiliza como diagnóstico de la
presencia de cáncer de próstata o de una condición
pre-maligna del mismo o como pronóstico de la
progresión del cáncer de próstata o de una condición
pre-maligna del mismo o como pronóstico del riesgo
de recurrencia de dicha enfermedad.
En una realización aún más preferida, la
presente invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata con alta capacidad
discriminatoria, entre muestras tumorales y no tumorales, que
comprende el análisis, in vitro, en una muestra problema,
donde la sobreexpresión de los genes MYO6, ABCC4, TACSTD1, HPN,
AMACR, APOC1, GJB1, PP3111, CAMKK2, ZNF85, SND1, NONO, ICA1, PYCR1,
ZNF278, BIK, HOXC6, CDK5, LASS2, NME1, PRDX4, SYNGR2, SIM2, EIF3S2,
NIT2, o FOXA1 o el análisis de la infraexpresión de los genes
CX3CL1, SNAI2, GSTP1, DST, KRT5, CSTA, LAMB3, EPHA2, GJA1, PER2,
FOXO1A, TGFBR3, CLU, ROR2, ETS2, TP73L, DDR2, BNIP2 o FOXF1 se
utiliza como diagnóstico de la presencia de cáncer de próstata o de
una condición pre-maligna del mismo o como
pronóstico de la progresión del cáncer de próstata o de una
condición pre-maligna del mismo o como pronóstico
del riesgo de recurrencia de dicha enfermedad.
En una realización aún más preferida, la
presente invención se refiere pero no se limita a un método para el
diagnóstico molecular de cáncer de próstata con alta capacidad
discriminatoria, entre muestras tumorales y no tumorales, que
comprende el análisis, in vitro, en una muestra problema,
donde la sobreexpresión o infraexpresión de los 318 genes indicados
en la tabla 2 se utiliza como diagnóstico de la presencia de cáncer
de próstata o de una condición pre-maligna del
mismo o como pronóstico de la progresión del cáncer de próstata o
de una condición pre-maligna del mismo o como
pronóstico del riesgo de recurrencia de dicha enfermedad.
Salvo que se defina de otra manera, todos los
términos técnicos y científicos tienen el mismo significado que el
comúnmente entendido por un experto en la materia a la que la
invención pertenece. A lo largo de la descripción y las
reivindicaciones la palabra "comprende" y sus variantes no
pretenden excluir otras características técnicas, componentes o
pasos. Para los expertos en la materia, otros objetos, ventajas y
características de la invención se desprenderán en parte de la
descripción y en parte de la práctica de la invención. Los
siguientes ejemplos y dibujos se proporcionan a modo de
ilustración, y no se pretende que sean limitativos de la presente
invención.
Para la realización de la presente invención se
analizaron mediante hibridación sobre arrays Human Genome Focus de
Affymetrix una serie de 31 muestras prostáticas humanas (figura
1):
- I.
- 20 muestras enriquecidas en epitelio tumoral.
- II.
- 7 muestras enriquecidas en epitelio normal (<1% de células carcinomatosas).
- III.
- 1 muestra que comprende un grupo de 5 muestras normales (POOL N).
- IV.
- 3 muestras consistentes exclusivamente en tejido estromal.
Los tejidos recogidos se incluyeron en OCT, se
congelaron en isopentano y se almacenaron a -80°C. Las muestras
fueron evaluadas histológicamente y seleccionadas para el análisis
de acuerdo con dos criterios: (a) un mínimo del 90% de pureza de
epitelio normal o tumoral en las muestras normales y tumorales,
respectivamente; (b) ausencia o presencia mínima de focos de
inflamación o de atrofia. Todas las muestras, excepto tres (una
normal y dos tumorales), provienen de la zona periférica,
incluyendo las muestras de estroma. El contenido epitelial medio
estimado en las muestras tumorales fue del 70%, del cual, un
promedio del 90% presentaba características neoplásticas. El
contenido epitelial medio estimado en las muestras normales era del
40%, con ausencia de glándulas tumorales. Las muestras estromales
presentaban menos del 1% de epitelio. De cada muestra, se usaron
20-30 criosecciones, de 20 \mum de grosor cada
una, para la extracción de RNA total de los tejidos. La primera y
la última sección de cada muestra se tiñeron con
hematoxilina-eosina para confirmar el diagnóstico y
la calidad de las muestras. La Tabla 1 describe las características
clínico-patológicas correspondientes a las muestras
utilizadas.
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(Tabla pasa a página
siguiente)
Las líneas HeLa y RWPE-1
(obtenidas de la American Type Culture Collection) se cultivaron en
DMEM (PAA, Ontario, Canada) suplementado con el 10% de suero (FBS)
y KSFM (Gibco, Carlsbad, CA), respectivamente, con el objeto de
utilizarlas como controles. Los cultivos primarios (PC17 and PC23)
se derivaron de prostatectomías radicales de pacientes con cáncer
de próstata clínicamente localizado, en los cuales el
adenocarcinoma era detectado macroscópicamente. Los explantes de
tejido se lavaron en PBS, se disgregaron y se cultivaron en KSFM
(Gibco, Carlsbad, CA) suplementado con
5-\alpha-dihidrotestosterona a
una concentración de 10^{-11} M. Después de 4-5
semanas de cultivo, y dos pases, los cultivos fueron
morfológicamente evaluados para asegurar la ausencia de
fibroblastos, y se usaron para obtener RNA total.
Las muestras de tejido se microdiseccionaron por
láser. Se usaron criosecciones de 8 \mum de grosor, que fueron
montadas sobre portaobjetos recubiertos de membrana plástica (PALM
Mikrolaser Technology, Bernried, Germany), se fijaron durante 3
minutos en etanol 70%, se tiñeron con hematoxilina de Mayer (SIGMA,
St. Louis, MO), se deshidrataron en una serie de alcoholes, se
dejaron secar durante 5 minutos y se almacenaron a -80°C hasta su
uso. La microdisección de las muestras se realizó con el sistema
MicroBeam de PALM (PALM Mikrolaser Technology). Se recogió
aproximadamente 1.2 mm^{2} de epitelio normal o tumoral para cada
muestra y se estimó una homogeneidad del 99% mediante visualización
microscópica.
La extracción del RNA total de las muestras de
tejido y las líneas celulares se llevó a cabo mediante el kit
RNeasy Mini Kit (Qiagen, Valencia, CA). El RNA total de las
muestras microdiseccionadas se extrajo con el kit RNeasy Micro Kit
(Qiagen). En todos los casos, se hizo una digestión con DNase I
(Qiagen), y la calidad y la concentración del RNA se evaluó con el
aparato 2100 Bioanalyzer (Agilent Technologies, Palo Alto, CA).
Para el análisis de expresión génica mediante
hibridación sobre "microarrays" se usó RNA aislado a partir de
7 muestras de tejido prostático normal con su correspondiente
pareja (es decir, del mismo paciente y misma resección quirúrgica)
de muestra prostática tumoral, una muestra consistente en la mezcla
a partes iguales del RNA extraído de 5 muestras de tejido
prostático normal ("pool" normal), 13 muestras tumorales no
emparejadas (es decir, sin representación de tejido prostático
normal del mismo paciente), 3 muestras de estroma prostático normal
puro (sin tejido epitelial), dos líneas celulares epiteliales
establecidas (HeLa y RWPE-1) y dos cultivos
primarios de próstata (PC17 y PC23). La síntesis de cDNA se hizo a
partir de 2 \mug de RNA total, usando un cebador ("primer")
con una secuencia promotora para la RNA polimerasa T7 añadida en el
extremo 3' (Superscript II Reverse Transcriptase, Invitrogen,
Carlsbad, CA). Después de la síntesis de la segunda cadena, se
realizó una transcripción in vitro usando el kit de marcaje
BioArray High Yield RNA (Enzo, Farmingdale, NY) para obtener cRNA
marcado con biotina.
Previamente a la hibridación, lavado y escaneo
de los microarrays, los cRNA (15 \mug) fueron calentados a 95°C
durante 35 min para proporcionar fragmentos de
35-200 bases de longitud. Cada muestra se añadió a
una solución de hibridación [100 mM ácido
2-(N-morfolino)etansulfónico, 1 M Na+, y 20
mM EDTA] en presencia de 0,01% Tween-20 a una
concentración final de cRNA de 0.05 \mug/ml. Cinco pg de cRNA
fragmentado se hibridaron sobre un TestChip (Test3, Affymetrix,
Santa Clara, CA) como control de calidad. Diez pg de cada cRNA
fragmentado se hibridaron sobre Affymetrix Human Genome Focus
Arrays a 45°C durante 16 h, se lavaron y se tiñeron en la Affymetrix
Fluidics Station 400 y se escanearon a 3 \mum de resolución en un
scanner Agilent HP G2500A GeneArray (Agilent Technologies, Palo
Alto, CA).
Posteriormente, se realizó el análisis
informático y la normalización de los resultados obtenidos. Las
señales crudas de hibridación se normalizaron según la
normalización descrita por Irizarry et al., utilizando el
algoritmo RMA [14], disponible como parte del paquete Bioconductor
de Affymetrix. El primer paso en la normalización RMA es la
sustracción de la señal de fondo; esto se consigue considerando que
las sondas PM observadas pueden ser modeladas como un componente de
la señal que sigue una distribución normal. Los parámetros de las
distribuciones se ajustan a partir de los datos y entonces se
elimina el componente de ruido. Después se realiza una
normalización entre arrays, mediante la normalización
cuantil-cuantil a nivel de sonda, usando el método
propuesto por Bolstad et al. [15]. El objetivo es escalar
todos los chips a la misma distribución empírica. Finalmente, las
intensidades observadas de los grupos de sondas, se resumen para
obtener la medida de expresión de cada gen usando el algoritmo
medianpolish [16], el cual se ajusta a este modelo de manera
robusta.
Previamente a la selección de genes expresados
diferencialmente y al modelaje de redes génicas o de grupos de
muestras genotípicamente coherentes (ver más adelante), se comprobó
la coherencia genotípica de las muestras pertenecientes a cada uno
de los grupos. Los datos de expresión normalizados fueron
analizados con el programa FADA [13]. Este programa aplica un
Análisis Factorial de modo Q (es decir, en el espacio de la
muestra), una herramienta multivariable relacionada con el PCA,
acoplada a algoritmos de clustering. Los genes fueron considerados
como diferencialmente expresados entre los grupos normal y tumoral
cuando su valor q asociado [17] era inferior a 2,5*10^{-4}. Los
valores q fueron calculados a partir de los
p-valores obtenidos del t-test
usando el algoritmo Benjamini-Hochberg
step-down false-discovery rate (FDR)
[18], tal y como está implementado en el paquete de multitest del
Bioconductor. Este algoritmo ajusta los p-valores
hacia arriba para eliminar los efectos del testeo múltiple.
En el contexto de la presente invención se
entiende que los valores de un parámetro distinguen dos clases o
categorías de muestras (en nuestro caso, muestras tumorales de
muestras normales) con alta significación cuando el valor de p en
una comparación estadística (aplicando, p. ej.,
t-test) entre las dos categorías es inferior a
0.001. En la Tabla 6 se muestran los datos numéricos que
corresponden a los niveles de expresión de los genes indicados en
la primera columna para las muestras que se indican en la primera
fila. Las muestras terminadas en T corresponden a próstata tumoral
y las terminadas en N corresponden a próstata normal. La tabla 6
muestra también valores de expresión para las líneas celulares HeLa
(procedente de un carcinoma de cérvix humano) y
RWPE-1 (epitelio prostático humano transformado con
el herpesvirus HPV16), y para dos explantes primarios derivados de
tumores prostáticos, denominados PC17 y PC23. Los dígitos son
valores de las señales obtenidas por hibridación de cRNAs marcados
sobre microarrays Affymetrix HGF, normalizados por el método RMA
[14].
Este análisis permitió la agrupación automática
de las muestras, de forma que todas las muestras tumorales,
excepto una, se agruparon en un clade y todas las muestras normales
se agruparon en otro clade (Figura 1). Al mismo tiempo, las células
cultivadas y las muestras estromales se agruparon
independientemente de los 2 clades anteriormente mencionados
(Figura 1).
A partir de este análisis se identificaron
aquellos genes que más significativamente discriminan muestras
tumorales de muestras normales (con un P menor o igual a 10^{-4}
en un test t de Student con corrección múltiple), encontrando un
total de 318 genes, de los que 134 se encuentran significativamente
sobrerrepresentados (sobreexpresados) en tumores y 184
significativamente infrarrepresentados (infraexpresados en tumores
(Tabla 2).
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(Tabla pasa a página
siguiente)
Para ésto se ha realizado RT-PCR
en tiempo real de los genes de mayor interés biológico y como
marcadores a partir del panel completo de 318 genes identificados
anteriormente, usando tanto muestras no microdiseccionadas como
muestras microdiseccionadas por láser con el instrumento PALM. El
objeto del análisis RT-PCR es determinar los
niveles de expresión de estos genes en un formato, tipo chip de
diagnóstico, más reducido y cercano a la práctica clínica.
Se llevó a cabo un RT-PCR en
tiempo real para cada réplica de tejido prostático (triplicados) o
de muestras microdisecadas (cuadruplicados), ya sea de tejido
tumoral o normal. Así, se usó 1 ng de RNA total de partida para la
síntesis de cDNA con la transcriptasa reversa Superscript II
(Invitrogen) y hexámeros aleatorios a 42°C durante 50 min., seguido
por un tratamiento con RNasa a 37°C durante 20 min. Los cDNA
resultantes se usaron para realizar la PCR a tiempo real en un
instrumento ABI PRISM 7900HT (Applied Biosystems, Foster City, CA),
usando un array TaqMan de Baja Densidad (Applied Biosystems),
diseñado expresamente, que contenía primers y sondas específicos
para 45 genes de interés y el gen RPS18 como calibrador y que se ha
definido como Chip Diagnóstico 1 (ver Tabla 3). Las condiciones del
termociclador se establecieron según las especificaciones del
fabricante. Los datos obtenidos se analizaron usando el software
SDS 2.1 (Applied Biosystems) aplicando el método \Delta\DeltaCt
de cuantificación relativa.
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(Tabla pasa a página
siguiente)
Para estas determinaciones, el material
microdiseccionado correspondió únicamente a células epiteliales
puras, tanto a partir de tumores como a partir de tejido prostático
normal.
Este primer conjunto cuidadosamente seleccionado
de 45 genes proporcionó una alta capacidad de discriminación entre
muestras normales y tumorales. La selección de estos genes se
realizó en función de tres criterios: (1) la capacidad de cada gen
de discriminar muestras normales de tumorales en el análisis de
expresión sobre microarrays Affymetrix HGF (valores de la Tabla 6),
es decir, aquellos genes con valores de p más significativos; (2)
el interés biológico de los mismos, tomando datos funcionales y de
expresión previamente descritos en la literatura científica; y (3)
en la medida de lo posible, la existencia de anticuerpos comerciales
específicos de las correspondientes proteínas, para una posterior
validación de la expresión mediante inmunoensayos, incluyendo
determinaciones inmunohistoquímicas.
De hecho, este subconjunto de genes incluye
correctamente dentro del grupo de muestras tumorales una muestra
que se agrupaba incorrectamente en el análisis transcriptómico
global mediante FADA. [Figura 2].
Más concretamente, para muestras no
microdiseccionadas se comprobó por este método que, de los 26 genes
incluidos en el Chip Diagnóstico 1 que se consideró
sobreexpresados en tumores mediante el análisis por microarrays
Affymetrix HGF, 13 genes (50%) presentan también niveles más
elevados en tumores que en tejido no tumoral en la determinación
cuantitativa por RT-PCR en tiempo real. En el caso
de los 19 genes que se encontraron infraexpresados en tumores
mediante la determinación sobre microarrays, de los 18 genes que
fueron detectables, los 18 (95%) se encontraron infraexpresados
mediante RT-PCR en tiempo real, en el análisis de
muestras no microdiseccionadas. Cuando se efectuó la determinación
cuantitativa sobre muestras microdiseccionadas (es decir,
comparando epitelios puros tumorales con epitelios puros normales
de los mismos individuos), encontramos que, de los 26 genes
seleccionados como sobreexpresados en tumores, solamente 9 (34.6%)
también se encontraban sobreexpresados en la mayoría de muestras
mediante cuantificación de transcritos por RT-PCR
en tiempo real. En esta determinación sobre muestras
microdiseccionadas, de los 19 genes considerados como
infraexpresados en tumores tras los análisis sobre microarrays, 18
fueron evaluables, y de éstos, 15 (83.3%) también se encontraron
infraexpresados en la mayoría de muestras microdiseccionadas
mediante determinación cuantitativa por RT-PCR en
tiempo real. Por tanto, de los 45 genes valorables del Chip
Diagnóstico 1 (26 sobreexpresados y 19 infraexpresados), 24 (9
sobreexpresados y 15 infraexpresados) han sido validados en sus
respectivos perfiles de expresión mediante RT-PCR en
tiempo real sobre epitelios puros microdiseccionados por láser.
Teniendo en cuenta los resultados obtenidos en las validaciones con
muestras no microdiseccionadas y con muestras microdiseccionadas,
se seleccionaron aquellos genes que fueron validados en ambos
análisis, y de esta forma se obtuvo un conjunto de 22 genes (7
sobreexpresados y 15 infraexpresados, ver Tabla 4). Tomando los
datos de expresión sobre microarrays Affymetrix HGF
correspondientes a estos 22 genes, se comprobó que este pequeño
subconjunto de datos de expresión permite una perfecta
discriminación entre muestras normales y tumorales, con un alto
valor estadístico [Figura 4].
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(Tabla pasa a página
siguiente)
Usando criterios aún más estrictos de validación
por RT-PCR en tiempo real para la selección de
genes sobreexpresados o infraexpresados en tumores, y teniendo en
cuenta los compartimentos en los que se había deducido que se
expresaba cada gen a partir de sus perfiles de expresión, se pudo
identificar un subconjunto aún más restringido de 14 genes (6
sobreexpresados y 8 infraexpresados en tumores, ver Tabla 5).
Tomando de nuevo los datos de expresión correspondientes a estos 14
genes obtenidos para todas las muestras de partida sobre
microarrays Affymetrix HGF, se comprobó que este reducido conjunto
también discrimina con alta significación estadística las muestras
tumorales de las muestras de próstata no tumoral [Figura 5].
Por tanto, se considera estos subconjuntos de
45, 22 y 14 genes como una signatura transcripcional validada
experimentalmente en este estudio para la discriminación con alto
poder estadístico de muestras tumorales y muestras no tumorales de
tejido prostático. En la presente invención, se han comprobado
también subconjuntos aún más reducidos, de dos genes, capaces de
discriminar con alta significación estadística las muestras
tumorales de las muestras de próstata no tumoral (Figuras 6 y
7).
Las micromatrices ("microarrays") de tejido
fueron construidas usando un instrumento Beecher (Beecher
Instruments) y una aguja de 1 mm de diámetro. Se construyeron tres
microarrays diferentes, conteniendo zonas seleccionadas de muestras
de tejido prostático normal, tumoral y de PIN, previamente
incluidas en parafina. Como marcadores de orientación de las
muestras dentro de las matrices, se usaron bloques de tejido de
pulmón, previamente incluidos en tres tintas de colores diferentes,
y colocados en diferentes zonas del microarray. Se realizaron
cortes completos de los microarrays y se tiñeron con
hematoxilina-eosina para confirmar la calidad. Se
utilizaron cortes de dos micrómetros de grosor montados en
portaobjetos de vidrio recubiertos de xileno (Dako, Carpinteria,
Calif., USA) para las tinciones inmunohistoquímicas. Éstas se
realizaron con el sistema Techmate 500 (Dako), usando para la
detección el sistema Envision (Dako). Brevemente, las secciones
fueron desparafinadas y rehidratadas con series graduales de
alcoholes y agua. Para la detección de MYO6 se realizó una
desenmascaración de antígeno en una olla a presión con tampón
citrato a pH 6 durante 5 min. Para los antígenos EPHA2 y CX3CL1 no
se realizó este tratamiento. A continuación se incubaron los
microarrays con los anticuerpos primarios durante 30 min (dilución
1/100 para MYO6, anticuerpo monoclonal de ratón, adquirido de
Sigma, Missouri, USA; dilución 1/50 para EPHA2, anticuerpo
monoclonal de ratón, adquirido de Sigma; y dilución 1/200 para
CX3CL1, anticuerpo policlonal de cabra, adquirido de R&D
Systems, Minneapolis, MN, USA) y se lavaron en la solución tamponada
ChemMate (Dako). Se bloqueó la peroxidasa endógena durante 7.5 min
en la solución de bloqueo de peroxidasa ChemMate (Dako), y después
se incubó durante 30 min con un polímero marcado con peroxidasa.
Después de lavar con la solución tamponada ChemMate, los
microarrays fueron incubados con la solución del sustrato
cromogénico diaminobenzidina, lavados con agua, contrateñidos con
hematoxilina, deshidratados y montados.
Los resultados fueron analizados por un
patólogo. Se evaluaron dos aspectos de las inmunohistoquímicas: por
un lado, el porcentaje de tinción epitelial, valorado de 0 a 100%,
y por otro, la intensidad de dicha tinción, valorada en nula (0),
débil (1), moderada (2) o intensa (3). También se analizó el patrón
de expresión de cada una de las proteínas. Se consideró que una
muestra presentaba sobreexpresión o infraexpresión de una proteína
respecto a otra muestra, cuando la diferencia del porcentaje de
tinción epitelial entre las dos muestras era superior al 20% y/o la
intensidad era al menos un grado diferente.
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Claims (30)
1. Método para el diagnóstico molecular de
cáncer de próstata, que comprende el análisis, in vitro, en
una muestra problema del nivel de expresión de al menos dos genes
seleccionados del grupo que consiste en: TACSTD1, HPN, AMACR,
APOC1, GJB1, PP3111, CAMKK2, ZNF85, SND1, NONO, ICA1, PYCR1,
ZNF278, BIK, HOXC6, CDK5, LASS2, NME1, PRDX4, SYNGR2, SIM2, EIF3S2,
NIT2, FOXA1, CX3CL1, SNAI2, GSTP1, DST, KRT5, CSTA, LAMB3, EPHA2,
GJA1, PER2, FOXO1A, TGFBR3, CLU, ROR2, ETS2, TP73L, DDR2, BNIP2,
FOXF1, MYO6 y ABCC4, donde la capacidad discriminatoria entre
muestras tumorales y no tumorales cuando se determinan
conjuntamente los niveles de expresión de dos o más genes de dicho
grupo es mayor que la capacidad discriminatoria de los mismos
genes por separado.
2. Método, según la reivindicación 1, donde los
genes se seleccionan del grupo que consiste en: TACSTD1, HPN,
AMACR, APOC1, GJB1, CX3CL1, SNAI2, GSTP1, DST, KRT5, CSTA, LAMB3,
EPHA2, GJA1, PER2, FOXO1A, TGFBR3, CLU, ROR2, ETS2, MYO6 y ABCC4, y
donde la capacidad discriminatoria entre muestras tumorales y no
tumorales cuando se determinan conjuntamente los niveles de
expresión de dos o más genes de dicho grupo es mayor que la
capacidad discriminatoria de los mismos genes por separado.
3. Método, según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 2, donde los genes se seleccionan del grupo
que consiste en: TACSTD1, HPN, AMACR, APOC1, CX3CL1, SNAI2, GSTP1,
DST, KRT5, CSTA, LAMB3, EPHA2, MYO6 y ABCC4, y donde la capacidad
discriminatoria entre muestras tumorales y no tumorales cuando se
determinan conjuntamente los niveles de expresión de dos o más
genes de dicho grupo es mayor que la capacidad discriminatoria de
los mismos genes por separado.
4. Método, según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, donde al menos uno de los genes
seleccionados del grupo es el gen MYO6.
5. Método, según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, donde al menos uno de los genes
seleccionados del grupo es el gen ABCC4.
6. Método según la reivindicación 4, donde el
análisis del nivel de expresión del gen MYO6 se combina con el
análisis del nivel de expresión de al menos un gen del grupo que
consiste en: ABCC4, AMACR, BIK, BNIP2, CDK5, CSTA, DST, EIF3S2,
EPHA2, ETS2, GJB1, HPN, NIT2, PYCR1, ROR2, TACSTD1 y TP73L.
7. Método según la reivindicación 5, donde el
análisis del nivel de expresión del gen ABCC4 se combina con el
análisis del nivel de expresión de al menos un gen del grupo que
consiste en: CSTA, GJB1, GSTP1, HOXC6, HPN, LAMB3, MYO6, PRDX4 y
TP73L.
8. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1-7, donde el análisis del nivel
de expresión de dichos genes se realiza determinando el nivel de
ARNm derivado de su transcripción.
9. Método según la reivindicación 8, donde el
análisis se realiza mediante una amplificación por PCR,
RT-PCR, RT-LCR, SDA o cualquier
otro método de amplificación de ácidos nucleicos.
10. Método según la reivindicación 8, donde el
análisis se lleva a cabo por chips de DNA elaborados con
oligonucleótidos depositados por cualquier mecanismo.
11. Método según la reivindicación 8, donde el
análisis se lleva a cabo por chips de DNA elaborados con
oligonucleótidos sintetizados in situ mediante
fotolitografía o por cualquier otro mecanismo.
12. Método según la reivindicación 8, donde el
análisis se lleva a cabo mediante hibridación in situ
utilizando sondas específicas marcadas con cualquier método de
marcaje.
13. Método según la reivindicación 8, donde el
análisis se lleva a cabo mediante geles de electroforesis.
14. Método según la reivindicación 13, donde el
análisis se lleva a cabo mediante transferencia a membrana e
hibridación con una sonda específica.
15. Método según la reivindicación 8, donde el
análisis se lleva a cabo mediante RMN o cualquier otra técnica de
diagnóstico por imagen.
16. Método, según la reivindicación 8, donde el
análisis se lleva a cabo mediante RMN o cualquier otra técnica de
diagnóstico por imagen mediante la utilización de nanopartículas
paramagnéticas o cualquier otro tipo de nanopartículas detectables
funcionalizadas con anticuerpos o por cualquier otro medio.
17. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1-7, donde el análisis del nivel
de expresión de dichos genes se realiza determinando el nivel de
proteína codificada por el gen o fragmentos de la misma.
18. Método según la reivindicación 17, donde el
análisis se lleva a cabo mediante incubación con un anticuerpo
específico.
19. Método según la reivindicación 18, donde el
análisis se lleva a cabo mediante Western blot.
20. Método según la reivindicación 18, donde el
análisis se lleva a cabo mediante inmunohistoquímica.
21. Método según la reivindicación 17, donde el
análisis se lleva a cabo mediante geles de electroforesis.
22. Método según la reivindicación 17, donde el
análisis se lleva a cabo mediante chips de proteína.
23. Método según la reivindicación 17, donde el
análisis se lleva a cabo mediante ELISA o cualquier otro método
enzimático.
24. Método según la reivindicación 17, donde el
análisis se lleva a cabo mediante RMN o cualquier otra técnica de
diagnóstico por imagen.
25. Método según la reivindicación 17, donde el
análisis se lleva a cabo mediante RMN o cualquier otra técnica de
diagnóstico por imagen mediante la utilización de nanopartículas
paramagnéticas o cualquier otro tipo de nanopartículas detectables
funcionalizadas con anticuerpos o por cualquier otro medio.
26. Kit para el diagnóstico molecular de cáncer
de próstata que comprende los reactivos y aditivos apropiados para
detectar la variación en los niveles de expresión del gen o genes
de acuerdo con el método según cualquiera de las reivindicaciones 1
a 25.
27. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1-3, donde la sobreexpresión de
los genes MYO6, ABCC4, TACSTD1, HPN, AMACR o APOC1 o la
infraexpresión de los genes CX3CL1, SNAI2, GSTP1, DST, KRT5, CSTA,
LAMB3 o EPHA2 se utiliza como diagnóstico de la presencia de
cáncer de próstata o de una condición pre-maligna
del mismo o como pronóstico de la progresión del cáncer de
próstata o de una condición pre-maligna del mismo o
como pronóstico del riesgo de recurrencia de dicha enfermedad.
28. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1-2, donde la sobreexpresión de
los genes MYO6, ABCC4, TACSTD1, HPN, AMACR, APOC1 o GJB1 o la
infraexpresión de los genes CX3CL1, SNAI2, GSTP1, DST, KRT5, CSTA,
LAMB3, EPHA2, GJA1, PER2, FOXO1A, TGFBR3, CLU, ROR2 o ETS2 se
utiliza como diagnóstico de la presencia de cáncer de próstata o de
una condición pre-maligna del mismo o como
pronóstico de la progresión del cáncer de próstata o de una
condición pre-maligna del mismo o como pronóstico
del riesgo de recurrencia de dicha enfermedad.
29. Método según la reivindicación 1, donde la
sobreexpresión de los genes MYO6, ABCC4, TACSTD1, HPN, AMACR,
APOC1, GJB1, PP3111, CAMKK2, ZNF85, SND1, NONO, ICA1, PYCR1,
ZNF278, BIK, HOXC6, CDK5, LASS2, NME1, PRDX4, SYNGR2, SIM2, EIF3S2,
NIT2, o FOXA1 o la infraexpresión de los genes CX3CL1, SNAI2,
GSTP1, DST, KRT5, CSTA, LAMB3, EPHA2, GJA1, PER2, FOXO1A, TGFBR3,
CLU, ROR2, ETS2, TP73L, DDR2, BNIP2 o FOXF1 se utiliza como
diagnóstico de la presencia de cáncer de próstata o de una
condición pre-maligna del mismo o como pronóstico
de la progresión del cáncer de próstata o de una condición
pre-maligna del mismo o como pronóstico del riesgo
de recurrencia de dicha enfermedad.
30. Método, según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, donde la capacidad discriminatoria cuando
se determinan conjuntamente los niveles de expresión de dos o más
genes es un 1%, preferentemente un 10%, más preferentemente un 25%,
aún más preferentemente un 50% mayor que la capacidad
discriminatoria de al menos uno de los genes por separado.
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