ES2291165T3 - Membrana microporosa hidrofila. - Google Patents
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Abstract
Membrana hidrófila microporosa en forma de un capilar, constituida por una polisulfona químicamente sustituida, que presenta grupos metilenohidroxilos ligados por covalencia, donde cada una de las unidades de polímero repetitivas presenta un grado de sustitución (DS) de 0,5 a 1,9 grupos metilenohidroxilos, la membrana presenta un espesor de 20 µm a 400 µm, una porosidad con respecto al volumen del 50% al 90% y un tamaño de poros que aumenta esencialmente en sección transversal, con lo cual el tamaño de poros está en el orden de entre 10 nm y 50 nm en la zona de poros más pequeños, la membrana presenta un límite de separación molecular de 5.000 Dalton a 100.000 Dalton y es envasada en estado estéril y húmedo.
Description
Membrana microporosa hidrófila.
La invención se refiere a membranas hidrófilas
microporosas que son permeables para sustancias de bajo peso
molecular, particularmente proteínas. Además, la invención se
refiere a procedimientos para la producción de dichas
membranas.
En muchos campos de la biotecnología, en la
industria alimenticia y particularmente en la biomedicina resulta
extraordinariamente interesante separar determinadas macromoléculas
como por ejemplo enzimas, anticuerpos o determinadas hormonas o
materias-señal de otras sustancias. Esto desempeña
un papel por ejemplo en la limpieza de proteínas de agentes activos
genéticamente preparados. También en el sector de la diálisis de
pacientes con enfermedades del riñón o en la producción de capilares
artificiales las características de separación de las membranas
empleadas tienen una importancia extraordinaria.
Habitualmente, para las membranas, con cuya
ayuda deben ser separadas las mezclas macromoleculares, se utilizan
membranas microporosas a base de polímeros. Por regla general,
dichas membranas presentan una estructura asimétrica.
La cara superior de una membrana de este tipo
puede estar formada como una capa delgada de poros finos, de un
espesor de 0,2 a 2 \mum, la membrana en sí. Esta membrana puede
ser soportada por una infraestructura de un espesor de por ejemplo
aproximadamente 50 a 200 \mum, la cual está estructurada con
poros gruesos que aumentan hacia abajo.
Tales membranas asimétricas son fabricadas
principalmente según un procedimiento denominado inversión de
fases, desarrollado por Loeb y Sourirajan. Así, se disuelve un
polímero en un disolvente y se extiende como una película y se
precipita con un no disolvente, el llamado precipitante, y es
precipitado a una membrana de inversión de fases. El precipitante
puede ser mezclado ilimitadamente con el disolvente de polímero.
Por lo tanto el disolvente es diluido cada vez más por el
precipitante, hasta precipitar el polímero como membrana.
Según este procedimiento las membranas
estructuradas de manera asimétrica pueden producirse a partir de
diferentes polímeros solubles. Ejemplos de polímeros adecuados son
acetatos de celulosa, poliamidas, poliolefinas, polisulfonas y
polietercetonas. Según el agente precipitante empleado, se forma
una determinada estructura de la membrana. Aquellos precipitantes
que se diluyen con elevado calor de mezcla en los disolventes de
polímero dan lugar a la formación de una membrana con estructura en
forma de dedo. Los precipitantes con un calor de mezcla reducido
por el contrario dan lugar a membranas de estructura esponjosa. Por
lo tanto a través de la selección del precipitante o también del
disolvente se puede ajustar la estructura de una membrana.
El mecanismo de separación de estas membranas se
basa entre otras cosas en la exclusión de todas las macromoléculas
que tengan diámetros más grandes que los diámetros de los poros de
la cara superior de la membrana. Las macromoléculas con diámetros
claramente más pequeños pueden permear principalmente la membrana.
Este límite de separación molecular o límite de exclusión es
definido de tal manera que un 90% de una molécula de prueba del
tamaño conocido sea retenido por la membrana. Seleccionando
correspondientemente los polímeros utilizados y las condiciones de
producción de membranas puede establecerse un determinado límite de
separación molecular.
En caso de una mera difusión, la fuerza motriz
para el pasaje de las moléculas, es decir la permeación, es el
gradiente de presión osmótico que actúa como transmembran o
permeantes de las respectivas moléculas.
Las membranas de difusión usuales hasta ahora
son generalmente hidrófobas. Esto es muy desventajoso sobre todo en
la separación por difusión de proteínas de diferentes tamaños de
molécula, puesto que las proteínas se adhieren en la superficie de
la membrana y en la matriz de la membrana. Esto por un lado da
lugar a la formación de capas de recubrimiento (incrustaciones)
sobre la superficie de la membrana, por lo cual las características
de las membranas son modificadas considerablemente. Además, los
poros de la membrana son disminuidos u obstruidos completamente por
la adsorción de proteínas. Con ello se reduce considerablemente o
se impide completamente la intensidad del permeato. La
funcionalidad de dichas membranas es por lo tanto muy limitada y
sólo de corta duración. Principalmente tales membranas resultan
inadecuadas para la separación difusiva de proteínas.
Se han realizado diferentes ensayos para emplear
un material más hidrófilo para las membranas que evite estas
características adsortivas negativas de las membranas
convencionales. Las membranas basadas en un material hidrófilo como
por ejemplo acetato de celulosa, no presentan sin embargo la
estabilidad de temperatura necesaria y son sensibles a los agentes
químicos o microbiológicos. Dichos materiales hidrófilos de membrana
por lo tanto tampoco representan una solución al problema.
Como una solución posible se propuso modificar
la matriz de las membranas hidrófobas por la adsorción de
componentes hidrófilos, para poder proveer así una membrana con
características antiadsortivas. Así se logró que las proteínas no
fueran adsorbidas en solución, sino que fueron rechazadas más bien
por la membrana y permanecieron en solución. Por consiguiente se
evitó la formación de capas de recubrimiento sobre la superficie de
la membrana. Por otra parte no podían conseguirse resultados
satisfactorios respecto a la continuidad de las membranas para
proteínas, por lo que sigue existiendo la necesidad de una membrana
antiadsortiva que funcione bien y tenga una vida larga.
De la publicación de Möckel, Staude, Guiver,
"Static protein absorption, ultrafiltration behavior and
cleanability of hydrophilized polysulfone membranes" Journal of
Membrane Science, Elsevier Science, Amsterdam, NL, vol. 158, Nº.
1-2, de 1 de Junio de 1999 se conocen unas membranas
hidrófilas, producidas a partir de polisulfonas sustituidas con
grupos carboxilos. Dichas membranas exhiben ya buenas
características de separación con proteínas de bajo peso molecular.
Aun en caso de escasas cantidades de proteína, la adsorción en la
membrana sigue siendo demasiado grande. De la DE 19622338 A1 se
puede deducir la producción de membranas similares, en la cual se
logra una porosidad asimétrica en la producción de membranas por
inversión de fases.
La US 4,797,457 describe generalmente la
sustitución de polisulfonas con los sustituyentes más diferentes y
su aptitud como membranas. También se describe en la misma la
producción de las polisulfonas sustituidas con los grupos de
carboxilos mencionados. También se menciona que la transformación
de polisulfonas sustituidas con litio con aldehídos y cetonas
produce polímeros con características hidrófilas. Sin embargo no se
encuentran indicaciones para los problemas relacionados con la
difusión de cantidades más pequeñas de proteínas.
En la US 5,837,234 se describen unos órganos
bioartificiales, en los cuales están contenidas células vivas en
membranas hidrófilas de polietersulfona. El material de membrana de
polietersulfona puede ser fabricado por coextrusión mediante una
boquilla anular en forma de tubo y tiene superficies internas y
externas de poros finos, que están unidas por una estructura de
soporte de poros abiertos.
La invención pretende producir una membrana que
sea particularmente antiadsortiva para las proteínas y evite así
las desventajas descritas en el estado de la técnica. La membrana
en particular debe ser adecuada como membrana de difusión para
pequeñas cantidades de proteína y para órganos biohíbridos. El
objetivo se resuelve con una membrana microporosa hidrófila con las
características descritas en la reivindicación 1. Las formas de
realización preferidas de esta membrana están descritas en las
reivindicaciones 2 a 4. En la reivindicación 5 se reivindica un
procedimiento para la producción de dicha membrana hidrófila
microporosa. Las formas de realización preferidas del procedimiento
están representadas en las reivindicaciones 6 a 9. Las
reivindicaciones 10 a 15 conciernen esencialmente la utilización de
una membrana según la invención, incluyendo un órgano hueco
biohíbrido (reivindicación 13). El texto de todas las
reivindicaciones se toma por lo tanto como contenido de la
descripción como referencia.
El objeto de la invención es una membrana
hidrófila microporosa, en forma de un capilar de polisulfona
químicamente sustituido, el cual presenta grupos metilenohidroxilos
covalentes ligados, con lo cual cada unidad de polímero repetitiva
comprende un grado de sustitución (DS) de 0,5 a 1,9 grupos
metilenohidroxilos y la membrana presenta un espesor de 20 \mum a
400 \mum, una porosidad, con respecto al volumen del 50% al 90% y
en sección transversal presenta un tamaño de poros esencialmente
creciente, con lo cual el tamaño de poros es de entre 10 nm y 50 nm
en la zona de poros más pequeños, y la membrana presenta un límite
de separación molecular de 5.000 Dalton a 100.000 Dalton y es
envasada en estado estéril y húmedo.
Modificando los polímeros hidrófobos en sí, que
son químicamente muy estables y biocompatibles, se logra que una
membrana producida a partir de estos polímeros sustituidos posea
características hidrófilas y por lo tanto antiadsortivas. Por una
parte se logra que la membrana según la invención tenga las
características positivas en cuanto a estabilidad y vida de una
membrana de polímeros hidrófobos y por otra parte la modificación de
los polímeros conduce a una membrana que es adecuada
particularmente para por ejemplo una separación difusiva de
proteínas de diferentes tamaños de molécula. Contrariamente a las
hidrofilizaciones convencionales de superficies de membranas
hidrófobas en sí, la membrana según la invención presenta
continuamente una estructura hidrófila. Con ello se evita una
adsorción de proteínas tanto sobre la superficie como también en
los poros o en la matriz de la membrana, de manera que los problemas
descritos arriba de la vida corta y la obstrucción de los poros de
las membranas convencionales no aparecen en la membrana según la
invención.
La membrana según la invención tampoco se
desgasta en caso de utilización a largo plazo, puesto que es maciza
e hidrófila. En la membrana según la invención sorprendentemente
tampoco se perjudica la resistencia de la membrana. Generalmente se
parte de que una membrana de componentes hidrófilos no presenta la
estabilidad de una membrana hidrófoba. Combinando los polímeros
base hidrófobos con sustituyentes hidrófilos por una parte se
combinan las características positivas, es decir la estabilidad y la
duración de vida, de una membrana hidrófoba con las características
antiadsortivas extraordinarias de una membrana hidrófila.
Como sustituyentes hidrófilos sirven los grupos
metilenohidroxilos. Estos son adecuados particularmente, puesto que
aquí la distancia entre el grupo OH hidrófilo y el polímero base
hidrófobo es óptima para muchas aplicaciones.
Preferiblemente se utilizan polisulfonas
aromáticas como polímeros base. Ejemplos de polímeros base
especialmente adecuados son Polisulfona Udel® (PSU),
Polifenilosulfona Radel® (PPSU), Polietersulfona Victrex® (PES),
cuyos ejemplos de fórmulas estructurales de dichas unidades de
polímeros base están representados en el esquema a).
\newpage
Esquema
a)
La modificación de estos polímeros base con
sustituyentes hidrófilos ocurre esencialmente según los métodos
conocidos (DE 3636854 A1). El grado de sustitución (DS) es de 0,5 a
1,9 por unidad repetitiva. Variando las condiciones durante la
derivatización, p.ej. de los reactivos, polisulfonas:
butil-litio o el tiempo de permanencia del PEEK en
ácido sulfúrico al 98% de concentración, se pueden sintetizar los
derivados de polímero de diferentes grados de sustitución. Por
encima de un grado de sustitución de 2 se puede perjudicar bajo
ciertas circunstancias la estabilidad de la membrana o puede surgir
una solubilidad indeseada.
La modificación del polímero base puede
transcurrir por ejemplo según el siguiente esquema.
Esquema
b)
El esquema b) muestra el método de metalización
de las poliarilsulfonas disueltas o hinchadas en disolventes
apróticos con
n-butil-litio(BuLi) con
temperaturas comprendidas entre -65ºC y -90ºC en atmósfera de argón
con la sucesiva transformación de las poliarilsulfonas
carbanionizadas con los enlaces electrófilos. Como enlace
electrófilo se utiliza formaldehído.
La utilización de formaldehído genera una
poliarilsulfona hidrófila metilenohidroxilada de las unidades
representadas en el siguiente esquema c). Los polímeros base
sustituidos representados son particularmente adecuados para las
membranas según la invención. A partir de los diferentes polímeros
derivatizados se pueden producir membranas capilares, laminares o
tubulares, debido a su solubilidad en ácido
carboxílico-N-alquilamidas y en
N-metilpirrolidona(2).
Esquema
c)
La sustitución se realiza en ortoposición con
respecto al grupo sulfónico en los grupos fenilénicos adyacentes al
grupo sulfónico, por lo cual preferiblemente cada grupo fenilénico
no es sustituido más que una vez. Por regla general, los polímeros
ya no presentan otros sustituyentes además de la sustitución en los
grupos fenilénicos.
Los polímeros sustituidos según la invención son
disueltos preferiblemente en un disolvente inerte que sea mezclable
ilimitadamente con agua. La producción de las membranas puede
realizarse por ejemplo según el procedimiento de hilatura en húmedo
por inversión de fases con ayuda de hileras húmedas de 2 o 3
sustancias por precipitación con agua.
Las membranas según la invención,
particularmente las membranas de difusión de polisulfonas
hidrófilas aromáticas son permeables a las proteínas de bajo peso
molecular con masas molares de hasta 20 000 Dalton o superiores y
son impermeables a las proteínas de alto peso molecular con masas
molares superiores a 100 000 Dalton. Durante la permeación o
difusión sólo desempeña un papel esencial el tamaño de los poros de
la membrana, es decir el límite de separación molecular de la
membrana. La fuerza de impulsión para la permeación es el gradiente
de presión osmótico transmembranario de los permeantes.
Generalmente, la permeación se realiza sin otra
presión hidroestática. Sin embargo también es posible influir sobre
la separación por aplicación de una presión o de un vacío.
Según los polímeros utilizados y las condiciones
de producción de membranas se puede influir sobre el límite de
separación molecular de la membrana resultante. Aquí están
previstos límites de separación molecular de 5 000 Dalton a 100 000
Dalton. El límite de separación molecular elegido depende
esencialmente de la aplicación planificada. Si la membrana debe ser
continua por ejemplo para la insulina, es adecuada una membrana con
un límite de separación molecular de aproximadamente 70 000
Dalton.
En una forma de realización preferida de la
invención se trata de una membrana de un espesor extremadamente más
pequeño. Aquí, el espesor de pared de la membrana es de 20 \mum a
400 \mum. Especialmente preferido es un espesor de pared de
aproximadamente 40 \mum hasta aproximadamente 150 \mum. Con
ello se logra que las proteínas puedan pasar la membrana de forma
bastante rápida y completamente. Se disponen por lo tanto de vías de
difusión bastante cortas, por lo cual el intercambio de material
ocurre muy rápidamente. Según la invención, la membrana presenta
una porosidad, por lo cual se permite la difusión o la permeación
de proteínas. La porosidad de la membrana es del 50% al 90% con
respecto al volumen total de la membrana. Según la aplicación
deseada, particularmente la velocidad de permeación deseada, se
puede variar la porosidad de la membrana. Generalmente, la velocidad
de permeación disminuye en caso de una porosidad más escasa.
El límite de separación molecular de la membrana
está determinado esencialmente también por el tamaño de los poros.
El tamaño de los poros se encuentra por término medio entre 10 nm y
50 nm. La membrana presenta en sección transversal, es decir desde
una superficie hasta la otra, un tamaño de poros medio
esencialmente creciente hacia el exterior. Aquí, el tamaño de los
poros más pequeños es de 10 nm a 50 nm.
Además de la hidrofilia propia de la membrana
según la invención puede preferirse que junto a la hidrofilia
instalada químicamente se prevea una saturación adicional de puntos
de adsorción de la membrana. Una preadsorción de este tipo de la
membrana da lugar a que las características antiadsortivas de la
membrana aún se refuercen y se optimicen más. Además con ello se
puede mejorar la biocompatibilidad de la membrana. En una forma de
realización preferida, la membrana es preincubada con suero de
ternero fetal (SFT).
A través de la preincubación con, por ejemplo
suero de ternero fetal, se bloquean diferentes puntos de enlace no
específicos de la membrana. Así se logra un efecto sinérgico que
hace especialmente adecuada una membrana según la invención tratada
de esta manera para su utilización en la técnica biomédica.
Según la invención, la membrana es embalada en
estado estéril, por ejemplo soldada. Esto ocurre en estado húmedo
de la membrana, por ejemplo después de una preincubación con suero
de ternero fetal. La soldadura se realiza preferiblemente en
láminas plásticas convencionales. Mediante la soldadura es posible
almacenar y conservar las membranas según la invención durante un
período prolongado. Las membranas son esterilizadas, para impedir
una posible contaminación bacteriana. En una forma de realización
preferida la esterilización ocurre por radiación gamma.
La invención comprende además un procedimiento
para la producción de la membrana hidrófila microporosa. En este
procedimiento de producción son sustituidos en primer lugar los
polímeros base, los polímeros base sustituidos son disueltos en un
disolvente y precipitados con al menos un agente precipitante
mezclable con el disolvente. La sustitución de los polímeros es
realizada con formaldehído, que introduce al menos un grupo
hidroximetilo. De esta manera se obtiene una membrana que consiste
en principio en polímeros base hidrófobos, que presenta en su
conjunto características hidrófilas por sustitución, es decir por
introducción de grupos hidrófilos. Dicha membrana es
particularmente adecuada para la difusión o permeación de proteínas
de determinado peso molecular, puesto que aquí las ventajas con
respecto a las membranas basadas en la estabilidad de polímeros
hidrófobos se enlazan con las características hidrófilas
introducidas por modificación, con lo cual se puede proveer una
membrana estable pero extremadamente antiadsortiva.
El grupo metilenohidroxilo obtenido por
conversión con formaldehído, presenta características especialmente
favorables en cuanto a la hidrofilia, junto con una separación
óptima, es decir la distancia entre el grupo hidrófilo y el
polímero base.
Respecto a otras características del
procedimiento según la invención se indica la descripción arriba
citada.
La modificación de los polímeros base ocurre
esencialmente según los métodos conocidos. Preferiblemente esta
ocurre por metalización directa (intercambio H/Li) o por un
intercambio de halógeno-metal.
Mediante la elección del precipitante se puede
influenciar la distribución de los poros, particularmente de poros
de diferentes tamaños, en sección transversal de la membrana.
Aplicando agua como agente precipitante se puede producir una
membrana con estructura asimétrica, que presenta un tamaño de poros
esencialmente creciente en sección transversal de una superficie a
la otra. Aquí, la superficie con poros más pequeños sirve de
membrana en sí. La sección con tamaño de poros creciente sirve de
estructura de soporte o de matriz.
La producción de membranas capilares
estructuradas en forma de dedo ocurre preferiblemente por
disolución de los polímeros sustituidos según la invención en un
disolvente inerte que es mezclable con agua. Con ayuda de hileras
húmedas de 2 o 3 sustancias pueden producirse membranas capilares
estructuradas en forma de dedo por precipitación con agua libres de
disolventes de polímero.
Mediante la precipitación con agua conteniendo
aproximadamente del 20% al 60% del disolvente inerte de polímero se
pueden producir unas membranas capilares con mezclas de estructura
esponjosa y en forma de dedo.
Un campo de aplicación preferido de las
membranas según la invención es la técnica biomédica. Sobre todo en
vista a la fabricación de biorreactores y órganos biohíbridos, que
son introducidos en un organismo, las membranas según la invención
forman un material sumamente apropiado, puesto que en estas
membranas una larga vida está vinculada a unas características
funcionales óptimas.
\newpage
Otro campo de aplicación es el sector de lavado
de sangre o la diálisis. Junto a las características funcionales en
sí de la membrana es también siempre ventajosa la biocompatibilidad
de las membranas según la invención.
Además, las membranas según la invención son
adecuadas de manera sobresaliente para una llamada liberación de
sustancia activa en el organismo. Un ejemplo de dicha liberación de
sustancia activa es el páncreas biohibrido. Aquí se forma, bajo la
aplicación de las membranas según la invención, un órgano
artificial en forma de una cámara que aloja células del islote a
transplantar. Estas células del islote producen insulina, la cual,
debido a las características antiadsortivas de la membrana, abandona
esta cámara, cuyas limitaciones al menos están formadas
parcialmente por la membrana según la invención, y puede ser
absorbida en el organismo.
Según la invención, este órgano artificial, es
decir la cámara, está formada como capilar, dentro de la cual se
encuentran las células del islote. El órgano artificial por ejemplo
consiste en una membrana de difusión capilar microporosa helicoidal
en un tubo flexible, que está estabilizada por un vellón en aerosol
de poliuretano. Dicho capilar es introducido en un vaso sanguíneo.
Por permeación transmembranaria, la glucosa y sustancias nutrientes
esenciales pueden pasar de la corriente sanguínea al interior
capilar y así pueden alimentar las células del islote con los
nutrientes necesarios. De esta manera, la glucosa accede también a
la cámara. Las células del islote producen insulina a causa del
estímulo de la glucosa. La insulina pasa a la corriente sanguínea
por medio de la membrana según la invención a causa de la
precipitación por concentración. También otras proteínas de bajo
peso molecular segregadas por las células del islote entran de esta
manera en la corriente sanguínea.
Ventajosamente, el límite de separación
molecular de la membrana dentro de un órgano biohibrido de este
tipo es elegido de tal manera que la globulina inmune no pueda
pasar de la corriente sanguínea al capilar. Esto se logra por un
límite de separación molecular de la membrana de aproximadamente
100000 Dalton. De esta manera se evita que las células del islote
transplantadas dentro del órgano biohíbrido sean atacadas por el
sistema inmunológico y provoquen por lo tanto una reacción de
rechazo.
Una forma preferida para un páncreas biohíbrido
es la capilar, puesto que en la forma capilar se realiza una
densidad de espacio máxima en caso de una densidad máxima de
superficie de difusión. Un lumen capilar preferido es de
aproximadamente 600 hasta aproximadamente 800 \mum. El espesor de
pared ventajosamente es de aproximadamente 40 a 120 \mum.
Las membranas convencionales no son adecuadas
para la utilización en un órgano biohíbrido, particularmente en un
páncreas biohíbrido. El problema particular se encuentra aquí en
las cantidades de proteína muy reducidas, que, en las
concentraciones fisiológicas que surgen se mueven en el orden de
nMol/l. En por ejemplo membranas hidrófobas modificadas en
superficies (hidrofilización adsortiva) o membranas de polímeros
base sulfonizados, las cantidades de proteína muy reducidas son
casi completamente adsorbidas por la membrana, de modo que puede
pasar poca hasta incluso ninguna proteína deseada, particularmente
insulina, por la membrana. Esto muestran los resultados de Fane
et. Al., Desalination 53, 37, 1985. Según mediciones propias
de difusión de insulina lo mismo rige para membranas capilares de
PSU sulfonizado de grados de sustitución prácticamente relevantes
(DS) hasta DS 0,76. Las membranas según la invención son sin
embargo sumamente adecuadas para esta aplicación, según lo
justifican los resultados de medición mostrados en los
ejemplos.
Otro campo de aplicación preferido de las
membranas según la invención se encuentra en los biorreactores, por
ejemplo para el fraccionamiento de proteínas o para la limpieza de
proteínas de por ejemplo agentes activos fabricados
genéticamente.
Además, las membranas según la invención pueden
emplearse también muy ventajosamente en el sector del cultivo
celular.
Además, la utilización de la membrana según la
invención es especialmente adecuada en todos los sistemas en los
cuales juegue un papel la secreción de proteínas por células
vivientes. Aquí, las células son soportes para las membranas, por
lo cual las células similares o diferentes pueden ser situarse sólo
en uno o ambos lados de la membrana. Dichos sistemas pueden
emplearse por ejemplo como transplantes. La membrana puede separar
el sistema en compartimentos, dentro de los cuales transcurren
diferentes circulaciones de diferente función (p. ej. la
circulación de sangre/plasma y de nutrientes). Mediante los
correspondientes límites de exclusión moleculares, la membrana
procura que los compartimentos delimitados por la membrana estén
aislados con respecto al sistema inmunológico. Esto juega un papel
fundamental, particularmente cuando con ayuda de los compartimentos
formados por la membrana se introducen células que provienen de otro
organismo en un paciente.
Además del páncreas biohíbrido ya mencionado,
son posibles también otros sistemas de liberación de sustancia
activa utilizando la membrana según la invención. Estos pueden ser
sistemas que se disuelven lentamente solos en el cuerpo. Además son
posibles sistemas que contengan células vivientes, que han sido
manipuladas por ejemplo genéticamente, de tal manera que sinteticen
permanentemente determinadas sustancias activas y las liberen por la
membrana según la invención en el organismo, preferiblemente en la
circulación de sangre. Estos agentes activos son generalmente
proteínas, por ejemplo citoquinas. Dicho sistema es por ejemplo una
membrana capilar implantable, que contiene células que segregan
permanentemente factores analgésicos.
\newpage
Además, utilizando la membrana según la
invención puede proveerse un hígado biohíbrido, que puede ser
empleado para la terapia de pacientes en coma hepático. En este
caso, el hígado está dañado de tal manera que ya no puede tener
lugar una suficiente desintoxicación del cuerpo. El hígado
biohíbrido asume la desintoxicación hasta que por ejemplo haya un
transplante disponible o se haya regenerado el hígado del
paciente.
Además, la membrana según la invención puede
emplearse para analizar la comunicación de diferentes tipos
celulares (p. ej. del sistema inmunológico) mediante sustancias
mensajeras, preferiblemente citoquinas. En dichos sistemas
Transwell, la membrana separa dos tipos celulares diferentes que
por ejemplo pueden estimularse mutuamente. Las características
extremadamente antiadsortivas de las membranas según la invención
son aquí de un significado particular, puesto que sólo se vierten
unas cantidades extremadamente pequeñas de sustancias mensajeras,
que serían adsorbidas por las membranas convencionales y harían así
completamente imposible dicho análisis.
Se deducen las características descritas así
como otros detalles de la invención de la siguiente descripción de
unos ejemplos de realización en relación con las reivindicaciones
secundarias. Las figuras muestran:
Fig. 1 índices de difusión de insulina de
membranas capilares de PSU hidrofilizadas por adsorción y
metilenohidroxiladas. Las membranas PSU hidrófilas
metilenohidroxiladas (capilares 200 y capilares 400) muestran
claramente con creciente grado de sustitución unos índices más altos
de difusión de insulina en caso de fases de latencia más corta
(fase de retardo) como aquellas de PSU pura (capilar 1001) o de PSU
hidrofilizada por adsorción con PVP (capilar 80Br).
Fig. 2 índices de difusión de insulina para
membranas capilares de PSU carboxiladas con diferentes grados de
sustitución. Las membranas PSU carboxiladas muestran claramente con
creciente grado de sustitución unos índices de difusión de insulina
más altos en caso de fases de latencia más cortas.
Fig. 3 índices de difusión de insulina de
membranas capilares PSU hidrofilizadas por adsorbión, hidrófilas y
puras, respectivamente preincubadas con SFT. Las membranas
preincubadas con SFT de PSU hidrófilas metilenohidroxiladas
(capilares 400), hidrofilizadas por adsorbción con PVP y puras
muestran, en comparación con las membranas no preincubadas, mejores
índices de difusión de insulina y fases de latencia más cortas.
Aquí, la membrana hidrófila (capilar 400) muestra mejores índices
de difusión de insulina que las membranas de PSU hidrofilizadas por
adsorción y puras.
Fig. 4 comparación de índices de difusión de
insulina de membranas capilares de PPSU metilenohidroxiladas y
carboxiladas con y sin preincubación. La comparación muestra que
las membranas preincubadas con SFT de PPSU metilenohidroxiladas
(capilares 219) y carboxiladas (capilares 218) muestran claramente
mejores índices de difusión de insulina que las membranas no
preincubadas.
Fig. 5 Influencia del polímero capilar sobre la
secreción de insulina inducida con glucosa de islas de ratas
macroencapsuladas y libremente flotantes. La comparación con el
control (islas de ratas libremente flotantes) muestra, que incluso
una membrana metilenohidroxilada relativamente poco sustituida
(capilar 200) es esencialmente más permeable a la insulina que sólo
una (PSU/NDS) hidrofilizada por adsorción.
En un matraz de cuatro cuellos de 6 I, se
disuelve bajo argón 132 g de PSU 300,8 \cong mMol en 4 l de
tetrahidrofurano (THF). La solución clara y amarillenta es enfriada
a -65ºC y se le añade gota a gota en el plazo de 20 min. 66,4 ml
10M de n-butil-litio (BuLi) \cong
664 mMol. Así la solución se vuelve primero verdosa y luego marrón
rojiza. Se vuelve a agitar entre -65ºC y -80ºC durante 1,5 horas y
luego se añade 56 g de formaldehído = 1700 mMol, obtenido por
termolisis de paraformaldehido, disuelto en 1,5 l THF, igualmente
preenfriado entre -65ºC y -80ºC. Muy lentamente y bajo calentamiento
continuo a temperatura ambiente se obtiene una mezcla amarillenta
heterogénea (PSU\cdotCH_{2}OLi). Esta es transferida al enlace
hidroxílico por acidificación con ácido clorhídrico al 37% de
concentración (HCl), lo cual es reconocible porque la precipitación
se disuelve completamente. El THF es destilado y el polímero
absorbido en 500 ml de N,N-dimetilacetamida (DMAc).
La solución DMAc es vertida en 500 ml de agua completamente desalada
(agua VE), por lo cual se precipita el polímero que es desmenuzado
en el mezclador de laboratorio. Una vez filtrado el polímero, este
es lavado tres veces con agua VE hirviendo y secado por la noche en
el armario secador a 105ºC.
Se obtiene una PSU metilenohidroxilada no
reticulada.
Aprox. 60 g de paraformaldehido son calentados
en un matraz de triple cuello a 160ºC y el formaldehído monómero
que se produce es introducido con una corriente débil de argón en
un THF, en el cual se disuelve y se enfría entre
-65ºC a -80ºC. Los grupos OH de los grupos de hidroximetileno fueron verificados de manera espectroscópica.
-65ºC a -80ºC. Los grupos OH de los grupos de hidroximetileno fueron verificados de manera espectroscópica.
Se disolvió una muestra del polímero seco en
dimetilsulfóxido deuterizado (DMSO) y se registró el espectro
^{1}H-NMR. Mediante una relación de la integral
de los grupos de metileno a la integral de los grupos de metilo de
la unidad de isopropilideno de la PSU se obtuvo un DS de 1,9.
Síntesis y Analítica según se describe en el
ejemplo 1 con las diferencias de que 132 g de PSU = 300,8 mMol son
transformados con 24,5 ml 10M de BuLi = 245 mMol y la PSU
metalizada ha sido captada con 21 g de formaldehído = 627 mMol. El
análisis espectroscópico ^{1}H-NMR dio como
resultado PSU terminada con metilenohidroxilo con un DS de 0,7.
Bajo argón se hinchan, a temperatura ambiente en
un matraz de cuatro cuellos de 2 l, 30 g de PPSU \cong 75,0 mMol,
que ha sido precipitada de su solución en DMAc con agua VE, con 1,2
l THF. La suspensión es enfriada a -78ºC, a la cual se añade gota a
gota en un plazo de 20 min. 9 ml 10M BuLi \cong 90 mMol. Entonces
se vuelve a agitar a -78ºC durante 30 min. y bajo agitación
intensiva a -78ºC se introduce CO_{2}. La suspensión por lo tanto
se vuelve más clara, hasta que se forma una masa incolora uniforme.
Bajo agitación se deja calentar a temperatura ambiente. Entonces,
la suspensión (PPSU-COOLi) es transformada en la
forma de ácido carboxílico por acidificación con HCl a una
concentración del 37%. El THF es destilado y el polímero cargado en
200 ml DMAc y reelaborado según el ejemplo 1. Se obtiene una PPSU
no reticulada y terminada con carboxilo.
La transformación ha sido verificada de manera
espectroscópica IR y ^{1}H-NMR.
Bajo argón se hinchan, dentro de un matraz de 2
l de triple cuello, 30 g de PPSU \cong 75 mMol en 1,2 l de THF.
Durante el enfriamiento a -78ºC se obtiene una suspensión muy
hinchada, a la cual se añade gota a gota en un plazo de 20 min. 9
ml 10M BuLi \cong 90 mMol. Se vuelve a agitar a -65ºC durante 0,5
horas y luego se añaden 12 g de formaldehído (\cong 400 mMol),
según se describe en el ejemplo 1, disuelto en 0,8 l de THF,
preenfriado a -65ºC. Bajo agitación se deja calentar a temperatura
ambiente y el enlace de litio obtenido con HCl a una concentración
del 37% se transforma a la forma de hidróxilo. El THF es destilado
y el polímero es añadido en 200 ml DMAc y es reelaborado según lo
descrito bajo el ejemplo 1.
Se obtiene una PPSU no reticulada
metilenohidroxilada.
La transformación es verificada de manera
espectroscópica IR y ^{1}H-NMR.
20 g \cong 86,3 mMol de PES han sido hinchados
durante una hora a temperatura ambiente en 1 l de
1,3-Dioxolano secado por medio de una criba
molecular 4\ring{A}. Después del enfriamiento a -78ºC se añadió
gota a gota y bajo agitación 10,4 ml 10M BuLi = 104 mMol y se
reagitó durante 3 horas más, cuando la suspensión inicialmente
incolora cambió a beige pardo. Luego se introdujo CO_{2} a -78ºC,
cuando la suspensión se esclareció considerablemente. Tras el
calentamiento a temperatura ambiente se acidificó con HCl a una
concentración del 37%, se destiló el dioxolano, se recogió el
residuo en DMAc y se reelaboró según lo descrito bajo el ejemplo
1.
La transformación es verificada de manera
espectroscópica IR y ^{1}H-NMR.
De los polímeros previamente citados se
prepararon las soluciones fundidas con un 20% de contenido en
polímero en 75% DMAc y 5% LiCl y se elaboraron con hileras húmedas
de 2 o 3 sustancias (desarrollos propios, parcialmente en
colaboración con la empresa Lechler, Metzingen, Alemania) con un
precipitante, obteniendo membranas capilares asimétricas según el
principio de inversión de fases. En este caso, la solución fundida
de polímero ha sido pasada por una boquilla anular exterior y
puesta en contacto con precipitantes, que han sido transportados
por una boquilla interior central. Una vez recorrida una carrera de
precipitación libre definida, se sumergieron los capilares en un
baño de precipitación exterior con agua VE para un intercambio
ulterior disolvente-precipitante, que se completó
por enjuague de las membranas capilares por la noche con agua
corriente del grifo.
Las membranas capilares tenían una capa de piel
situada en el interior y una capa de soporte exterior. Sus luminas
ascendieron a entre 650 y 850 \mum con espesores totales de pared
extremadamente reducidos de entre 40 y 100 \mum según la medida
de una suficiente estabilidad mecánica.
Variando los parámetros de hilatura
- \bullet
- relación del diámetro de la boquilla anular con el diámetro exterior de la boquilla interior
- \bullet
- relación de las cantidades de solución fundida con las cantidades de precipitantes
- \bullet
- altura de precipitación se pueden variar los lúmenes capilares y espesores de pared.
El modo de proceder fue el del ejemplo 7 con la
diferencia de que se precipitó con soluciones con una concentración
del 20 al 60% de DMAc en agua VE. De esta manera se produjeron
membranas capilares con aumento de la parte de estructura esponjosa
cuanto mayor era el contenido en DMAc en el precipitante.
Las muestras de membrana capilar de PSU, con PSU
hidrolizada con polivinilpirrolidona (PVP) y de PSU hidrófila
fueron respectivamente llenadas con una solución de 239 U/l (1.434
Mol) de insulina en tampón de Tris/HCl, pH 7,4, obturadas por ambos
lados, suspendidas en vasos agitados imantados con cada vez 80 ml
de tampón puro de Tris/HCl, pH 7,4 (fase exterior) y se averiguaron
de manera inmunológica-fotométrica
(ELISA[DAKO insulina]) los índices de difusión para la
insulina como cantidad en función del tiempo de la insulina
permeada en % de la cantidad total de insulina presente en la
membrana.
Los resultados representados en las figuras 1 a
4 justifican que:
- \bullet
- Las membranas PSU hidrófilas metilenohidroxiladas muestran con DS creciente claramente unos índices más altos de difusión de insulina con fases de latencia más cortas que las de una PSU pura o una PSU hidrofilizada con PVP por adsorción (Fig. 1).
- \bullet
- Las membranas de PSU carboxilada muestran a partir de un DS de 0,8 igualmente unos índices más altos de difusión de insulina y fases de latencia más cortas que las de una PSU pura o una PSU hidrofilizada con PVP por adsorción. Una comparación muestra que las membranas de una PSU metilenohidroxilada presentan mejores índices de difusión de insulina y fases de latencia más cortas que las membranas de una PSU carboxilada con grados de sustitución comparables. Esto puede explicarse con un efecto hidrófilo mejor del espaciador CH_{2} entre el anillo aromático y el grupo OH en la PSU metilenohidroxilada (Figs. 1 y 2).
- \bullet
- En membranas preincubadas con SFT con una PSU hidrófila metilenohidroxilada (capilares 400), hidrofilizadas con PVP por adsorción y pura se lograron efectivamente en todo caso mejores índices de difusión de insulina y fases de latencia más cortas, pero con la diferencia cualitativa de que la membrana hidrófila presentó índices de difusión de insulina esencialmente mejores que las membranas de PSU hidrofilizada por adsorción y pura, cuyos valores en la sucesión arriba citada dentro del tiempo de difusión prácticamente relevante de 30 min. fueron cada vez peores. Se logró el mejor índice de difusión de insulina y una fase de latencia extremadamente corta de aprox. 1,7 min. con el capilar 400 de PSU metilenohidroxilada, el polímero con grupos hidroxilos espaciados en la cadena de polímero (Fig. 3).
- \bullet
- Una comparación de los índices de difusión y de las fases de latencia de la membrana hidrófila capilar 400 con y sin preincubación con SFT (Figs. 1 y 3) muestra que la combinación de la sustitución de los polímeros base con grupos hidrófilos, particularmente con grupos metilenohidróxilos, y la preincubaci6n con SFT lograron los mejores índices de difusión para proteínas de bajo peso molecular, como la insulina, y se lograron las fases de latencia más cortas.
- \bullet
- Ambas preparaciones actúan de manera sinérgica sobre la difusión transmembranaria de proteínas de bajo peso molecular.
- \bullet
- Del mismo modo se ensayaron membranas capilares de PPSU metilenohidroxilada (capilares 219) y de PPSU carboxilada (capilares 218) con y sin preadsorción con SFT sobre la permeabilidad a la insulina. Los resultados (Fig. 4) confirman los diagnósticos de las correspondientes membranas de PSU. Sólo la combinación de la sustitución de PPSU con grupos hidrófilos y la preadsorción con SFT conduce a índices óptimos de difusión de insulina.
Se llenaron cada vez 50 células del islote de
ratas recién aisladas en solución tamponada de
KREBS-RINGER-HEPES con pH 7,4 con 3
mMol/l de glucosa en las muestras de membranas capilares
preincubadas con SFT de PSU metilenohidroxilada (DS = 0,75) y de
PSU hidrofilizada por adsorción con dodecilsulfato de sodio (NDS),
obturadas por ambos lados (macroencapsuladas) y perifundidas en la
misma solución tamponada (fluido externo). Tras la estimulación
entre el minuto 30 y 45 aumentando la cantidad de glucosa a 16,7
mMol/l se determinó de manera radioinmunológica (RIA) la insulina
segregada por las células del islote y difundida de manera
transmembranaria y se comparó con la segregación de la insulina en
el fluido externo de las células del islote libremente flotantes
sin barrera de membrana (control).
Los resultados, valores medios de cada vez 7
series de medida, representados en la figura 5 muestran que incluso
una membrana metilenohidroxilada, relativamente poco sustituida,
para insulina es esencialmente más permeable que una membrana
hidrofilizada sólo de manera adsortiva.
Se llenaron 3 muestras de las membranas
capilares de PSU metilenohidroxilada, DS = 1,7 con respectivamente
100 \mul de una solución de albúmina con una concentración del 20%
(fracción bovina V, peso molar 69000 g/mol) en un tampón
Tris-HCl de 10 mMol, pH 7,4 y dializadas contra 80
ml de la misma concentración de tampón durante 120 min.
En los ensayos de dialisato no pudo verificarse
de manera fotométrica ninguna albúmina (determinación total de
proteínas con reactivo de color Bio Rad Nº. 016953 con 595 nm).
El límite de separación molecular de las
membranas debe establecerse por lo tanto a \leq 69 000.
\vskip1.000000\baselineskip
Esta lista de documentos relacionados por el
solicitante fue recopilada exclusivamente para la información del
lector y no forma parte del documento de patente europea. La misma
ha sido confeccionada con la mayor diligencia; la OEP sin embargo no
asume responsabilidad alguna por eventuales errores u omisiones.
- \bullet DE19622338 A1 [0012]
- \bullet US 5837234 A [0014]
- \bullet US 4797457 A [0013]
- \bullet DE 3636854 A1 [0021]
\bullet Static protein absorption,
ultrafiltration behavior and cleanability of hydrophilized
polysulfone membranes. MÖCKEL; STAUDE; GUIVER. Journal of Membrane
Science. Elsevier Science, 01, de Junio 1999 vol. 158 [0012].
Claims (15)
1. Membrana hidrófila microporosa en forma de un
capilar, constituida por una polisulfona químicamente sustituida,
que presenta grupos metilenohidroxilos ligados por covalencia,
donde cada una de las unidades de polímero repetitivas presenta un
grado de sustitución (DS) de 0,5 a 1,9 grupos metilenohidroxilos,
la membrana presenta un espesor de 20 \mum a 400 \mum, una
porosidad con respecto al volumen del 50% al 90% y un tamaño de
poros que aumenta esencialmente en sección transversal, con lo cual
el tamaño de poros está en el orden de entre 10 nm y 50 nm en la
zona de poros más pequeños, la membrana presenta un límite de
separación molecular de 5.000 Dalton a 100.000 Dalton y es envasada
en estado estéril y húmedo.
2. Membrana según la reivindicación 1,
caracterizada por el hecho de que las polisulfonas son
polisulfonas aromáticas, particularmente polifenilenosulfonas.
3. Membrana según una de las reivindicaciones
anteriores, caracterizada por el hecho de que la membrana
presenta un espesor de 40 \mum a 150 \mum.
4. Membrana según una de las reivindicaciones
anteriores, caracterizada por el hecho de que la membrana es
además saturada en adsorción, preferiblemente con suero de ternero
fetal.
5. Procedimiento para la producción de una
membrana hidrófila microporosa según una de las reivindicaciones
anteriores, comprendiendo esencialmente las siguientes etapas:
- a)
- sustitución de polímeros de polisulfona con la introducción de grupos metilenohidroxilos,
- b)
- disolución de los polímeros en un disolvente,
- c)
- formación de la membrana, particularmente por aplicación de la solución sobre un soporte o por un proceso de hilatura,
- d)
- precipitación con al menos un agente precipitante mezclable con el disolvente con formación de una membrana con un tamaño de poros esencialmente creciente en sección transversal.
6. Procedimiento según la reivindicación 5,
caracterizado por el hecho de que la sustitución se efectúa
bajo la utilización de formaldehído.
7. Procedimiento según una de las
reivindicaciones 5 ó 6, caracterizado por el hecho de que
los polímeros son activados antes de la sustitución,
preferiblemente con al menos un compuesto a base de litio.
8. Procedimiento según una de las
reivindicaciones 5 a 7, caracterizado por el hecho de que el
polímero es sustituido en los grupos fenilénicos adyacentes al
grupo sulfónico en ortoposición con respecto al grupo sulfónico,
con lo cual cada grupo fenilénico preferiblemente ya no es
sustituido más que una vez.
9. Procedimiento según una de las
reivindicaciones 5 a 8, caracterizado por el hecho de que se
utiliza agua como agente precipitante.
10. Utilización de la membrana hidrófila
microporosa según al menos una de las reivindicaciones 1 a 4 para
la separación por difusión de proteínas.
11. Utilización de la membrana hidrófila
microporosa según una de las reivindicaciones 1 a 4 para la
diálisis.
12. Utilización de la membrana hidrófila
microporosa según al menos una de las reivindicaciones 1 a 4 para
la producción de un órgano hueco biohíbrido con al menos una cámara
para recibir células de un órgano, con lo cual las paredes de la
cámara están formadas al menos parcialmente por la membrana.
13. Órgano hueco biohíbrido con al menos una
cámara para recibir células de un órgano, caracterizado por
el hecho de que las paredes de la cámara están formadas al menos
parcialmente por una membrana hidrófila microporosa según una de
las reivindicaciones 1 a 4.
14. Utilización según la reivindicación 12
caracterizada por el hecho de que el órgano hueco biohíbrido
es un páncreas biohíbrido.
15. Utilización de la membrana hidrófila
microporosa según una de las reivindicaciones 1 a 4 para el
intercambio de sustancias.
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