ES2277099T3 - Inmunoadyuvante. - Google Patents
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Abstract
Inmunoadyuvante para administración a un tejido tumoral desnaturalizado por un medio físico, que comprende: precipitados formados mediante coacervación de (a) una proteína soluble, siempre que se excluya una proteína soluble contenida en la tuberculina, y (b) un mucopolisacárido y que comprende, además: (c) una proteína soluble contenida en la tuberculina en el cual dicha (c) es coprecipitada con los precipitados.
Description
Inmunoadyuvante.
La presente invención se refiere a un
inmunoadyuvante.
La tuberculina se ha utilizado desde hace tiempo
como un reactivo de prueba para detectar una infección anamnéstica
con tuberculosis Micobacterium o para detectar una conversión
positiva después de administración de Micobacterium bovis BCG
(en lo que sigue abreviada como "BCG"). Una tuberculina
purificada obtenida por purificación de componentes proteicos en
tuberculina bruta a través de precipitación de sulfato amónico es
considerablemente segura, ya que no se inducen respuestas
inflamatorias hipersensibles de la piel, incluso cuando la propia
tuberculina se administra repetidamente a un humano, aunque algún
efecto elevador de tensión se ha observado en la denominada prueba
de reacción a tuberculina (Singh, D. et al., Am.
J. Respir. Crit. Care Med. Sep. 15, 2001;
164(6):962-4).
Los inventores de la presente hallaron que
pueden inducirse eficazmente inmunorreacciones antitumorales contra
células tumorales mediante administración de un tejido tumoral
solidificado o microparticulado a un cuerpo, junto con al menos un
tipo de citoquina o inductor de citoquina (PCT/JPOO/00692). También
hallaron que en el proceso anterior puede inducirse una potente
inmunorreacción antitumoral contra células tumorales mediante
administración simultánea de una tuberculina purificada en forma
soluble como un inmunoadyuvante general (PCT/JP00/0692). Según se
mencionó anteriormente, los componentes de la tuberculina pueden
utilizarse como un inmunoadyuvante. Sin embargo, dado que los
componentes de la tuberculina son solubles, presentan el
inconveniente de que desaparecen rápidamente de la zona de
administración por difusión.
Es sabido que los componentes en un filtrado de
un cultivo de M. tuberculosis promueven reacciones de
células T después de ligarse a micropartículas de poliestireno,
aunque presenten solamente una débil actividad adyuvante en estado
disuelto (Wilkinson, K. A., et al., J. Immunol.
Methods, 235:1-9, 2000). Cuando un adyuvante en
estado disuelto se inmoviliza sobre un portador adyuvante
insoluble, el adyuvante no desaparece rápidamente por difusión y
por ello presenta una potente actividad adyuvante. Sin embargo,
aunque las micropartículas de poliestireno en este producto de
inmovilización son fagocitadas por las células que presentan
antígenos, estas no son degradadas en las células y constituyen
plásticos de permanencia indeseable en un cuerpo.
Como forma de resolver el problema mencionado,
se cita un método en dicha literatura en el que los componentes de
un filtrado de un cultivo de bacteria se ligan a micropartículas de
un polímero sintético biodegradable (Vordermeier, H. M.,
et al., Vaccine, 13, 1576-1582, 1995;
Ertl, H. C., et al., Vaccine, 14,
879-885, 1996; Jones D. H., et al., J.
Biotechnology, 44, 29-36, 1996; Venkataprasad,
N., et al., Vaccine, 17, 1814-1819,
1999). Sin embargo, es sabido que el polímero sintético
descrito, por ejemplo, poli(DL-Iáctido
co-glicólido) (PLG), genera ácido láctico tras
degradación, y ello resulta en acidificación del entorno local en el
que tiene lugar la degradación, y por ello este método es también
indeseable para los cuerpos vivos.
La solicitud de patente europea EP 1159967
describe inmunoadyuvantes compuestos por GM-CSF o
IL-2 incorporados en microesferas de
heparina/albúmina de suero humano, que se utilizaron como vacuna en
combinación con células Hepa 1-6 fijas o tejido
tumoral fijo, respectivamente, y el adyuvante TiterMax Gold o
tuberculina, respectivamente. En el documento se demuestra la
eficacia terapéutica de la vacuna. Además, se describen
procedimientos para preparar micropartículas elaboradas a partir de
material tumoral solidificado y métodos para fijar antígenos
tumorales solubles a micropartículas sólidas. Las células pueden
inactivarse por medios físicos.
Por lo tanto, un adyuvante que sea sólido y
biodegradable y esté libre de las reacciones contrarias antes
mencionadas ha devenido deseable en el campo de la inmunología
tumoral. Además, entre las técnicas convencionales, no está
disponible inmunoadyuvante alguno que pueda eficazmente estimular
inmunorreacciones antitumorales contra células tumorales vivas
cuando se administra a un tejido desnaturalizado, cuyo tejido se
obtiene previamente mediante desnaturalización física de un tejido
tumoral o células tumorales que contienen complejos y diversos
antígenos tumorales en el cuerpo de un individuo de un animal
singeneico.
Según se mencionó anteriormente, la tuberculina
es muy segura incluso cuando se administra repetidamente a un
humano, aunque la tuberculina posee solamente una actividad
adyuvante débil en estado disuelto. Un objetivo de la presente
invención es proporcionar, mediante la utilización de tuberculina,
un inmunoadyuvante que puede mostrar eficazmente una actividad
adyuvante potente, al tiempo que evita condiciones indeseables para
los cuerpos
vivos.
vivos.
Los inventores de la presente invención
realizaron diversas investigaciones para alcanzar el anterior
objetivo. Como resultado, hallaron que una actividad adyuvante
potente se obtuvo con éxito mediante la provisión de una
preparación de liberación sostenida de tuberculina. Además, durante
el estudio de la preparación de liberación sostenida de
tuberculina, los inventores de la presente invención también
hallaron que, cuando se mezclan albúmina y heparina para formar
precipitados mediante coacervación, las proteínas de la tuberculina
se incorporan a esos precipitados, y con ello se forman
micropartículas insolubles, y que cuando esas micropartículas
insolubles se administran a un cuerpo junto con un antígeno y
tuberculina soluble purificada presentan un potente efecto
preventivo de tumores, y cuando se administran en vivo a un
tejido tumoral térmicamente desnaturalizado se inducen con éxito
inmunorreacciones antitumorales. La presente invención se logró a
partir de estos hallazgos.
La presente invención proporciona, por tanto, un
inmunoadyuvante, que comprende:
precipitados formados mediante coacervación
de
- (a)
- una proteína soluble (siempre que se excluya una proteína soluble contenida en la tuberculina), y
- (b)
- un mucopolisacárido
y que comprende, además:
- (c)
- una proteína soluble contenida en la tuberculina
en el cual dicha (c) es
coprecipitada con los
precipitados.
De acuerdo con realizaciones preferibles de la
anterior invención, se proporciona el inmunoadyuvante antes
mencionado, en el cual la proteína soluble del componente (a) es
albúmina, y el mucopolisacárido del componente (b) es heparina; el
inmunoadyuvante antes mencionado, en el cual los precipitados están
entrecruzados con un agente de reticulación intermolecular para
proteínas; el antes mencionado inmunoadyuvante, en el cual el citado
componente (c) consiste en una combinación de una proteína soluble
contenida en la tuberculina y una proteína soluble que presenta
antigenicidad; y el antes mencionado inmunoadyuvante, en el cual la
proteína soluble que presenta antigenicidad está derivada de un
tejido tumoral, célula tumoral, componente de célula tumoral, y/o
péptido derivado de antígeno tumoral/antígeno tumoral.
Desde otro aspecto, la presente invención
proporciona un inmunoadyuvante en forma de una micropartícula
insoluble que comprende (c) una proteína soluble contenida en la
tuberculina y (d) una molécula proteica soluble, en la cual los
componentes (c) y (d) están entrecruzados con un agente de
reticulación intermolecular para proteínas. Según una realización
preferida de esta invención, se proporciona el inmunoadyuvante antes
mencionado en el cual la molécula proteica soluble es colágeno.
De acuerdo con otras realizaciones, se
proporciona el inmunoadyuvante antes mencionado que se administra
en vivo a un mamífero, incluyendo el humano, después de
mezclarse con un antígeno y se utiliza para inducir una
inmunorreacción sistémica contra dicho antígeno; y el
inmunoadyuvante antes mencionado, en el cual el antígeno se deriva
de un tejido tumoral, célula tumoral, componente de célula tumoral,
y/o péptido derivado de antígeno tumoral/antígeno tumoral.
La presente invención proporciona, además, una
vacuna antitumoral que contiene el antes mencionado
inmunoadyuvante. Según realizaciones preferibles de esta invención,
se proporciona la vacuna antitumoral antes mencionada, destinada a
inducir una inmunorreacción antitumoral mediante administración a
un tejido tumoral desnaturalizado por un medio físico; la antes
mencionada vacuna antitumoral, en la cual el medio físico está
seleccionado dentro del grupo formado por irradiación de
microondas, coagulación por radiofrecuencia, criocoagulación,
calentamiento por bisturí eléctrico, inyección de agua caliente,
inyección de alcohol, embolización, irradiación mediante rayos
radioactivos, irradiación mediante rayos láser y disrupción
ultrasónica; la antes mencionada vacuna antitumoral, destinada a
estimular una inmunorreacción en vivo mediante
administración después de mezcla con una célula inmunocompetente
fuera del cuerpo; la antes mencionada vacuna antitumoral, en la cual
la célula inmunocompetente está seleccionada dentro del grupo
formado por célula dendrítica, linfocito B, linfocito T y célula
asesina (citocida) natural; y la antes mencionada vacuna
antitumoral, destinada a mezclarse extracorporalmente con una célula
inmunocompetente y un antígeno y luego ser administrada.
Además, desde otros aspectos, se proporciona un
procedimiento para inducir una inmunorreacción sistémica, que
comprende la etapa de administrar el inmunoadyuvante antes
mencionado a un mamífero, incluyendo el humano; un procedimiento
para el tratamiento terapéutico de un tumor, que comprende la etapa
de administrar la vacuna antitumoral antes mencionada a un tejido
tumoral desnaturalizado por un medio físico; un procedimiento para
inducir una inmunorreacción antitumoral, que comprende la etapa de
administrar la vacuna antitumoral antes mencionada a un tejido
tumoral desnaturalizado por un medio físico; y un procedimiento
para estimular una inmunorreacción en vivo, que comprende las
etapas de mezclar la vacuna antitumoral antes mencionada ex
vivo con una célula inmunocompetente, y luego administrar la
mezcla a un cuerpo de un mamífero, incluyendo el humano.
La Figura 1 representa el efecto supresor de la
vacuna antitumoral de la presente invención contra la proliferación
de cáncer de hígado. La línea de puntos indica la tasa de
supervivencia acumulada (grupo de control) y la línea sólida indica
la tasa de supervivencia acumulada (grupo administrado con la
vacuna de tuberculina microparticulada). La línea de puntos finos
indica la del grupo de control positivo.
La Figura 2 representa el efecto preventivo de
la vacuna antitumoral de la presente invención contra la
recurrencia tumoral, que fue administrada a un tejido tumoral
sometido a coagulación por microondas.
El inmunoadyuvante de la presente invención se
caracteriza porque comprende precipitados formados mediante
coacervación de:
- (a)
- una proteína soluble (excepto una proteína soluble contenida en la tuberculina), y
- (b)
- un mucopolisacárido, y
- (c)
- una proteína soluble contenida en la tuberculina
en el cual dicha (c) es
coprecipitada con los
precipitados.
La combinación de los antes mencionados (a)
proteína soluble y (b) mucopolisacárido no está particularmente
limitada, siempre que ambos produzcan precipitados mediante
coacervación bajo una condición bien conocida por los expertos en la
materia. Una explicación técnica de la coacervación se describe en
detalle en, por ejemplo, la patente US-5759582. Sin
embargo, este término no debe interpretarse en sentido limitativo y
debe entenderse en su más amplio significado. Por ejemplo, pueden
utilizarse albúmina y heparina preferiblemente como (a) la proteína
soluble y el mucopolisacárido, respectivamente, no obstante la
combinación de (a) la proteína soluble y (b) el mucopolisacárido no
se limita a la combinación antes mencionada. Como proteína soluble
contenida en la tuberculina puede utilizarse, por ejemplo, el total
de proteínas contenidas en tuberculina purificada, así como todo o
parte de las proteínas solubles preparadas a partir de tuberculina
por un método bien conocido por los expertos en la materia.
Mediante agitación de las antes mencionadas tres clases de
componentes, se forman precipitados mediante coacervación de los
componentes (a) y (b), y en este proceso, el componente (c) se
incorpora a los precipitados y es coprecipitado para producir los
precipitados.
La proporción de (c) la proteína soluble
contenida en la tuberculina y (a) la proteína soluble no está
particularmente limitada siempre que la proporción esté seleccionada
dentro de un intervalo en el que (a) la proteína soluble y (b) el
mucopolisacárido produzcan coacervación. Por ejemplo, cuando se
utiliza como proteína soluble una solución al 2,5% de albúmina de
suero humano a pH 2,5, se utiliza una solución de heparina
comercialmente disponible de aproximadamente 5 mg/ml como el
mucopolisacárido, 2,5 \mug de una proteína soluble de la
tuberculina se disuelven en 600 \mul del mucopolisacárido, y la
solución de albúmina de suero humano antes mencionada se añade por
goteo a la mezcla con agitación a diferentes proporciones en
volumen de 1/1,75, 1/1,5, 1/1,25 y 1/1 para formar micropartículas
mediante coacervación. Es preferible que cada suspensión sea
centrifugada y cuantificado el contenido de proteína en el
sobrenadante, y se elige una proporción de volumen en la que la
mayor parte de la proteína mezclada se incorpore a las
micropartículas. Debe advertirse que la proporción entre los
componentes (a) y (c), las condiciones de coacervación y similares
pueden seleccionarse adecuadamente por los expertos en la materia.
El tamaño de partícula en las micropartículas contenidas en los
precipitados resultantes es generalmente de 1 \mum o menor, pero
no queda limitado a un tamaño particular.
Los precipitados resultantes, preferiblemente
precipitados en forma de micropartículas, pueden utilizarse como un
inmunoadyuvante sin tratamiento alguno. Si es necesario, los
precipitados pueden ser lavados con agua destilada. Además, para
estabilización de los precipitados, las micropartículas insolubles
pueden prepararse mediante formación de entrecruzamientos bajo
tratamiento con un agente de reticulación intermolecular para
proteínas. El tipo de agente de reticulación intermolecular para
proteínas no está particularmente limitado y cualquier agente bien
conocido por los expertos en la materia puede utilizarse en una
forma bien conocida. Por ejemplo, cuando a 20 mg/ml de una solución
acuosa de
1-etil-3-(3-dimetilaminopropil)carbodiimida
se añaden proteínas a una concentración final de 0,8 a 1,5 mg/ml
con agitación mediante utilización de una mezcladora vórtex, y luego
la mezcla se deja reposar a temperatura ambiente durante 15
minutos, se forman entrecruzamientos suficientemente estables entre
las moléculas de proteína en los precipitados. Sin embargo, la
formación de entrecruzamientos no se limita a la aplicación de la
condición particular antes mencionada y al uso del particular
agente de reticulación intermolecular para proteínas. Según se
mencionó anteriormente, el inmunoadyuvante obtenido, preferiblemente
el sometido a un tratamiento de reticulación, no se disuelve
incluso cuando se lava con agua, y puede utilizarse preferiblemente
como el inmunoadyuvante de la presente invención.
Además, de acuerdo con otra realización
preferida de la presente invención, un inmunoadyuvante que contiene
una proteína soluble que presenta antigenicidad y una proteína
soluble contenida en la tuberculina que presenta actividad
adyuvante, puede producirse mediante la obtención de precipitados
en la misma forma antes descrita, excepto que la proteína soluble
que presenta antigenicidad y la proteína soluble contenida en la
tuberculina están mezcladas de antemano, y luego la mezcla
resultante se utiliza en lugar de la anterior (c).
\newpage
Desde otro aspecto, la presente invención
también proporciona un inmunoadyuvante en forma de micropartículas
insolubles, que comprende una proteína soluble contenida en la
tuberculina y un molécula proteica soluble, ambas de las cuales
están entrecruzadas mediante un agente de reticulación
intermolecular para proteínas. Como molécula proteica soluble,
pueden utilizarse moléculas proteicas solubles biodegradables. Por
ejemplo, puede utilizarse colágeno. Sin embargo, la molécula
proteica soluble no está necesariamente limitada al colágeno y
puede utilizarse cualquier molécula proteica soluble que sea
degradable en vivo. El tipo de agente de reticulación
intermolecular para proteínas no está particularmente limitado, y
puede utilizarse cualquier agente bien conocido por los expertos en
la materia en una forma bien conocida. Por ejemplo, pueden
utilizarse
1-etil-3-(3-dimetilaminopropil)carbodiimida
y similares. En general, un tamaño de partícula de las
micropartículas es preferiblemente de 1 \mum o menos, y sin
embargo, no se limita a ese tamaño particular.
El inmunoadyuvante de la presente invención
puede utilizarse como un inmunoadyuvante general. El
inmunoadyuvante puede simplemente ser mezclado con un antígeno y
administrado a un cuerpo de un humano o un animal, con lo cual
pueden inducirse inmunorreacciones sistémicas contra el antígeno.
Cuando el antígeno se deriva de tejido tumoral, célula tumoral,
componente de célula tumoral, y/o péptido derivado de antígeno
tumoral/antígeno tumoral, el inmunoadyuvante puede utilizarse como
una vacuna antitumoral. Por ejemplo, mediante mezcla del
inmunoadyuvante de la presente invención con células cancerosas
aisladas desde un paciente e inmovilizadas, y luego administrando la
mezcla intracutáneamente al paciente, pueden inducirse en
vivo inmunorreacciones antitumorales contra las células
cancerosas en el paciente. Sin embargo, el procedimiento de
utilización del inmunoadyuvante de la presente invención no se
limita al procedimiento antes mencionado y puede aplicarse
cualquier procedimiento convencional que utilice un
inmunoadyuvante.
Además, mediante desnaturalización de un tejido
tumoral en el cuerpo de un paciente por un medio físico y luego
administrando el inmunoadyuvante de la presente invención al
tejido, pueden inducirse inmunorreacciones antitumorales contra
células tumorales sobrevivientes en el cuerpo del paciente. El
medio físico para desnaturalizar el tejido tumoral no está
particularmente limitado, y sus ejemplos incluyen, por ejemplo,
medios de irradiación de microondas, coagulación por
radiofrecuencia, criocoagulación, calentamiento por bisturí
eléctrico, inyección de agua caliente, inyección de alcohol,
embolización, irradiación mediante rayos radioactivos, irradiación
mediante rayos láser, disrupción ultrasónica, y similares. Sin
embargo, los medios no se limitan a esos ejemplos, y cualquier otro
podría utilizarse siempre que pueda inducir la muerte celular de
las células tumorales en un tejido tumoral. Pueden utilizarse dos o
más tipos de medios físicos en apropiada combinación.
Por ejemplo, cuando un tejido tumoral es
coagulado por calor mediante irradiación de microondas, y el
inmunoadyuvante de la presente invención se administra en el tejido
coagulado, pueden inducirse inmunorreacciones antitumorales contra
las células tumorales que sobreviven dentro o alrededor del tejido
tumoral. Cuando se administra el inmunoadyuvante de la presente
invención, es también preferible administrar una solución de
tuberculina al mismo tiempo. Sin embargo, el método de administrar
el inmunoadyuvante de la presente invención no se limita a las
realizaciones antes mencionadas. Cualquier método puede aplicarse
siempre que el método pueda proporcionar un entorno en el cual el
inmunoadyuvante de la presente invención se incorpore a células con
antígenos que migren hacia el tejido tumoral desnaturalizado junto
con los antígenos tumorales contenidos en el tejido tumoral
desnaturalizado, o el inmunoadyuvante de la presente invención puede
estimular directamente células portadoras de
antígenos.
antígenos.
Además, pueden ser también estimuladas
inmunorreacciones en el cuerpo mediante previa mezcla extracorpórea
del inmunoadyuvante de la presente invención y células
inmunocompetentes, y luego administrando la mezcla al cuerpo de un
paciente. Como células inmunocompetentes pueden utilizarse
preferiblemente células dendríticas, linfocitos B, linfocitos T,
y/o células asesinas (citocidas) naturales, o similares. Sin
embargo, las células inmunocompetentes no se limitan a dichas
células.
Desde otro aspecto adicional, la presente
invención proporciona una vacuna que comprende el inmunoadyuvante
antes mencionado como un ingrediente activo. Cuando se administra
esta vacuna, también pueden ser mezcladas las células
inmunocompetentes. Además, puede utilizarse un tejido tumoral y/o
células tumorales como antígenos mediante mezcla con la vacuna.
Mediante la administración de una vacuna obtenida según se ha
descrito a un paciente de quien se deriva el tumor, este tumor puede
ser tratado terapéuticamente.
\vskip1.000000\baselineskip
La presente invención se explicará más
específicamente con referencia a los siguientes ejemplos. Sin
embargo, el objetivo de la presente invención no se limita a estos
ejemplos. El inmunoadyuvante de la presente invención preparado en
los ejemplos puede referirse a tuberculina microparticulada (o su
sinónimo).
\newpage
Ejemplo
1
1) Una solución al 25% de albúmina de suero
humano (HSA, Baxter Albumac, Baxter) fue diluida con agua
esterilizada hasta una concentración del 2,5% y se ajustó a pH 2,5
con HCl 4 N.
2) La solución resultante al 2,5% de albúmina de
suero humano y una solución de heparina (Heparina Novo 1000, 1000
U/ml, aproximadamente 7,69 mg/ml o menos, Aventis Pharma Ltd.)
fueron mezcladas previamente en diversas proporciones para
determinar las proporciones de mezcla óptimas de la solución de
heparina. Se prepararon inicialmente micropartículas con una
proporción de mezcla arbitraria y se centrifugaron a 2.500 rpm
(1.300 g) durante 15 minutos, y el contenido de proteína en el
sobrenadante fue cuantificado mediante utilización del "Protein
Assay Kit 1" (Japan Bio-Rad Laboratories, Inc.,
Tokio). Las proporciones óptimas de mezcla se definieron como
aquellas que satisfacen la condición bajo la cual no menos del 99,9%
de las proteínas mezcladas se incorporó a las
micropartículas.
micropartículas.
3) Se suspendió tuberculina [Japan BCG
Manufacturing Co., Ltd., tuberculina purificada para diagnosis
general (derivado de proteína de tuberculina purificada, PPD) para
una persona, cantidad equivalente a 0,25 \mug de un producto
estándar] en una solución de heparina para inyección y se añadió
por goteo con una solución al 2,5% de albúmina de suero humano en
una proporción determinada, con agitación mediante empleo de una
mezcladora vórtex.
4) La mezcla se centrifugó a 4.300 rpm (1.300 g)
durante 15 minutos, y los precipitados se lavaron dos veces con
agua destilada esterilizada y fueron resuspendidos en agua destilada
esterilizada.
5) La suspensión se añadió con una solución de
1-etil-3-(3-dimetilaminopropil)carbodiimida
(EDC, SIGMA, disuelta en agua a 20 mg/mi) en una concentración
final de 0,8 a 1,5 mg/ml con agitación mediante empleo de una
mezcladora vórtex y luego se dejó reposar a temperatura ambiente
durante 15 minutos.
6) La mezcla se centrifugó a 4.300 rpm (1.300 g)
durante 15 minutos, y los precipitados se lavaron 6 veces con agua
destilada esterilizada y fueron resuspendidos en solución salina
fisiológica esterilizada a la concentración requerida para obtener
una suspensión de tuberculina microparticulada.
1) Se inmovilizaron células cancerosas hepáticas
Hepa 1-6, cultivadas hasta que resultaron
confluentes en un plato de cultivo en plástico que presenta un
diámetro de 10 cm, con una solución al 3% de paraformaldehído a
temperatura ambiente durante 2 horas. Las células fueron lavadas
con tampón salino fosfatado de Dulbecco que contiene calcio y
magnesio (PBS(+)), lavadas y esterilizadas adicionalmente con 70%
de etanol, y lavadas con esmero nuevamente con PBS(+).
2) Estas células se añadieron con 10 ml por
plato de medio DMEM y se incubaron a 37ºC durante 2 días.
3) Las células fueron lavadas con esmero con
PBS(+), se añadieron con 3 ml por plato de una solución de
poli-L-lisina (25 \mug/ml) y se
incubaron durante 2 horas.
4) Las células fueron lavadas con esmero con
PBS(+), y luego las células inmovilizadas totales fueron recogidas
con un rascador y suspendidas en PBS(+).
5) Un volumen de 200 \mul de la suspensión
correspondiente a las células de 4 platos se situó en un tubo
Eppendorf, se añadió con 100 \mul de una solución de tuberculina
(0,25 \mug/100 \mul PBS(+)) y se incubaron durante 2 horas.
6) La mezcla se añadió con 150 \mul de la
suspensión de tuberculina microparticulada (que contiene
tuberculina a una concentración de 3 \mug/ml), y adicionalmente se
añadió con 50 \mul de PBS(+) para obtener una vacuna de
tuberculina microparticulada. De la misma forma, 200 \mul de una
solución obtenida mediante dilución de 5 KE/ml OK432 (Chugai
Pharmaceutical Co., Ltd., Picibanil 5KE) 10 veces con PBS(+) se
situaron en un tubo Eppendorf en lugar de la tuberculina
microparticulada y PBS(+), para obtener una vacuna para el grupo de
control positivo.
7) Nueve ratones singeneicos con células
cancerosas hepáticas Hepa 1-6 (C57L/J, de 6 a 9
semanas de edad, machos) fueron inyectados intracutáneamente con 50
\mul por animal de la anterior vacuna de tuberculina
microparticulada. Este proceso se repitió una semana más tarde.
Nueve ratones en el grupo de control fueron inyectados con solamente
tampón salino fosfatado de Dulbecco que no contenía calcio o
magnesio (PBS(-)). Además, los animales del grupo de control
positivo fueron inyectados con la vacuna para el grupo de control
positivo preparada en la anterior etapa 6) de una forma
similar.
8) Otra semana más tarde, los animales fueron
inyectados subcutáneamente con células Hepa 1-6 (1
x 10^{7} células/0,2 ml PBS(-)) en las patas derechas.
9) Después del anterior desafío, los animales
fueron inyectados intracutáneamente con 50 \mul por animal de una
vacuna de tuberculina microparticulada preparada de la misma forma
que hasta la anterior etapa 6) (siempre que la tuberculina
microparticulada utilizada para la preparación de esta vacuna
contuviera tuberculina a una concentración de 2 \mug/ml). Los 9
ratones en el grupo de control fueron inyectados solamente con
PBS(-). Además, los ratones en el grupo de control positivo fueron
inyectados con la vacuna para el grupo de control positivo
preparada en la anterior etapa 6) de una forma similar.
10) Posteriormente, se determinó la tasa de
supervivencia de los ratones después del crecimiento del cáncer
hepático subcutáneo.
Los resultados se representan en la Figura 1.
Esta figura muestra las curvas de Kaplan-Meier para
el grupo de control, el grupo administrado con la vacuna de
tuberculina microparticulada y el grupo de control positivo. El
grupo administrado con la vacuna de tuberculina microparticulada
mostró una tasa de supervivencia mayor que la del grupo de control
con una diferencia estadísticamente significativa (prueba
log-rank, p<0,0001). Además, el grupo
administrado también mostró un efecto antitumoral superior al
observado en el grupo de control positivo.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
2
1. Se preparó tuberculina microparticulada de la
misma forma que en la etapa 1 del Ejemplo 1.
2. Fueron inyectados intracutáneamente ratones
C57BL/6 (hembras, 6 animales por grupo) con 1 x 10^{6} células
cancerosas pulmonares singeneicas (células de carcinoma pulmonar de
Lewis) en las patas derechas, y cuando el tamaño del tejido
canceroso pulmonar subcutáneo alcanzó aproximadamente 75 mm^{3}
al 8º día, los ratones fueron anestesiados con pentobarbital sódico.
Luego, se recortó la piel alrededor del tejido canceroso pulmonar,
y un electrodo tipo Microtaze monoesfera para endoscopia
(E-24N, diámetro: 2,4 mm) se insertó en el tejido
canceroso de la
sección.
sección.
3. El electrodo se conectó al Microtaze (modelo
HSE-8M, Azwell Inc.) y el tejido fue irradiado con
microondas a 10 W durante 3 minutos hasta que el tejido canceroso
mostró aparentemente coagulación completa por calor.
4. La herida fue suturada, y una solución de
tuberculina (obtenida por disolución de 25 ng de tuberculina
purificada en 25 \mul de solución salina fisiológica) y
tuberculina microparticulada suspendida (que contiene 50 ng de
tuberculina purificada, suspendida en 5 \mul de solución salina
fisiológica) se inyectaron en el tejido canceroso al 10º día. En el
14º día, se repitió nuevamente esta inyección (grupo a). Los
ratones en el grupo de control (grupo b) fueron sometidos solamente
a irradiación de microondas. Además, se preparó también un grupo de
control no irradiado con microondas (grupo c), un grupo administrado
con OK-432 (1 KE/25 \mul) en lugar de la
tuberculina microparticulada (grupo d) y un grupo administrado con
OK-432 (1 KE/25 \mul) en lugar de la solución de
tuberculina (grupo e).
5. Posteriormente, se midieron a lo largo del
tiempo las variaciones en el tamaño (mm^{3}) del tejido canceroso
aumentado a causa de la recurrencia.
Los resultados se muestran en la Figura 2. Cada
punto representa un valor medio del tamaño del tejido canceroso
pulmonar en 6 ratones. Durante la observación hasta el 33º día
después del transplante de las células cancerosas pulmonares, la
recurrencia del cáncer de pulmón en los tejidos se suprimió
claramente en el grupo "a" en comparación con los grupos
"b" y "c". En particular, no se observó recurrencia en
cualquiera de los 6 animales en el grupo "a" que recibió la
tuberculina microparticulada y la solución de tuberculina, y por
tanto el grupo mostró supresión completa. Mientras tanto, en el
grupo "d" que no recibió la tuberculina microparticulada y el
grupo "e" que no recibió la solución de tuberculina, los
tejidos cancerosos mermaron después de la irradiación de microondas
y crecieron nuevamente, y cada uno de ellos era un tejido canceroso
pequeño. Aunque la proliferación del cáncer se suprimió en
comparación con los grupos "b" y "c", se observó
recurrencia en 5 de los 6 animales de esos grupos
(Tabla 1).
(Tabla 1).
Número de ratones, entre 6
animales por grupo, que mostraron recurrencia del cáncer de
pulmón
El inmunoadyuvante de la presente invención
puede mostrar eficazmente una actividad adyuvante potente y evitar
condiciones indeseables para cuerpos vivos.
Claims (3)
1. Inmunoadyuvante para administración a un
tejido tumoral desnaturalizado por un medio físico, que
comprende:
precipitados formados mediante coacervación
de
- (a)
- una proteína soluble, siempre que se excluya una proteína soluble contenida en la tuberculina, y
- (b)
- un mucopolisacárido
y que comprende, además:
- (c)
- una proteína soluble contenida en la tuberculina
en el cual dicha (c) es
coprecipitada con los
precipitados.
2. El inmunoadyuvante según la reivindicación 1,
en el cual el medio físico está seleccionado dentro del grupo
formado por irradiación de microondas, coagulación por
radiofrecuencia, criocoagulación, calentamiento por bisturí
eléctrico, inyección de agua caliente, inyección de alcohol,
embolización, irradiación mediante rayos radioactivos, irradiación
mediante rayos láser y disrupción ultrasónica.
3. Una vacuna antitumoral que comprende el
inmunoadyuvante según la reivindicación 1 ó 2.
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