ES2276795T3 - Mu-1, miembro de la familia del receptor de citoquina. - Google Patents
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Abstract
Un método para identificar un compuesto capaz de tratar un trastorno inmune que comprende ensayar la capacidad del compuesto para modular la interacción de Polipéptido MU-1 con una molécula STAT, identificando por lo tanto capaz de tratar un trastorno inmune en donde el polipéptido MU-1 es un miembro de la familia de proteína MU-1 que tiene una secuencia de aminoácido de al menos 65 % idéntica a la secuencia de aminoácido de la SEQ ID NO: 2 o 10.
Description
MU-1, miembro de la familia del
receptor de citoquina.
La presente invención se relaciona con miembros
nuevos de la familia del receptor de citoquina en mamíferos de
proteínas (que incluyen sin limitación proteínas de receptor murino
y humano), fragmentos de estos, polinucleótidos recombinantes y
células útiles para expresar tales proteínas, y métodos para
identificar compuestos capaces de tratar trastornos inmunes que
comprenden ensayar la capacidad de los compuestos para modular la
interacción de las proteínas con una molécula STAT.
Una variedad de moléculas reguladoras, conocidas
como hematopoyetinas, se han identificado por estar involucradas en
el desarrollo y proliferación de las varias poblaciones de células
sanguíneas o hematopoyéticas. La mayoría de hematopoyetinas exhiben
ciertas actividades biológicas al interactuar con un receptor sobre
la superficie de las células objetivo. Los receptores de citoquina
están comúnmente compuestos de uno, dos o tres cadenas. Muchos
receptores de citoquina y algunas citoquinas, tal como
IL-12 p40, son miembros de la superfamilia de
receptores de hematopoyetina de proteínas. La identificación de
nuevos miembros de la superficie familia de receptor de
hematopoyetina puede ser útil en la regulación de hematopoyesis, en
la regulación de respuestas inmunes y en la identificación de otros
miembros de la superfamilia hematopoyetina que incluyen citoquinas y
receptores.
Sería deseable identificar y determinar el ADN y
la secuencia de proteína para miembros desconocidos de aquí en
delante de la superfamilia del receptor de hematopoyetina.
De acuerdo con la presente invención, se
describe un método para identificar un compuesto capaz de tratar un
trastorno inmune que comprende ensayar la capacidad del compuesto
para modular la interacción del polipéptido MU-1 con
una molécula STAT, identificando por lo tanto un compuesto capaz de
tratar un trastorno inmune. La trayectoria de señalización STAT
puede, por ejemplo ser una trayectoria de señalización STAT 3 o una
trayectoria de señalización STAT 5 la invención también suministra
un método para identificar un modulador de la actividad
MU-1 que comprende poner en contacto una célula que
expresa una proteína MU-1 de acuerdo con la SEQ ID:
2 o 10, o una porción de esta capaz de detener la interacción con
las moléculas STAT, con un compuesto de ensayo y determinar la
capacidad de dicho compuesto de ensayo para modular la interacción
de dicha proteína MU-1 o dicha porción de esta, con
una molécula STAT. Dicha molécula STAT puede, por ejemplo ser STAT 3
o STAT 5. Adicionalmente, en este método la proteína
MU-1 puede, por ejemplo, estar de acuerdo con SEQ ID
NO: 9, y se puede expresar en dicha célula como una función del
dominio intracelular MU-1 y el dominio extracelular
del receptor BPO humano.
También se describen polinucleótidos que
codifican la cadena de superfamilia del receptor de hematopoyetina
MU-1, que incluye sin limitación aquellas de las
fuentes de murino y humano.
En ciertas modalidades, un polinucleótido
aislado comprende una secuencia de nucleótidos seleccionada del
grupo que consiste de:
(a) la secuencia de nucleótidos de la SEQ ID
NO 1;
(b) la secuencia de nucleótidos de la SEQ ID
NO 1: del nucleótido 238 al nucleótido 1852
(c) la secuencia del nucleótido de la SEQ ID
NO 1 del nucleido 301 al nucleótido 1852
(d) la secuencia del nucleótido de la SEQ ID NO
1 del nucleótido 301 al nucleótido 945
(e) una secuencia de nucleótido que varía de la
secuencia del nucleótido especificada en cualquiera (a)-(d) como un
resultado de una degeneración del código genético
(f) una secuencia de nucleótido capaz de
hibridizar bajo condiciones estrictas al nucleótido especificado en
cualquiera (a)-(d);
(g) una secuencia de nucleótido que codifica una
especie homologa de la secuencia de SEQ ID NO 2; y
(h) Una variante alélica de la secuencia de
nucleótido especificada en cualquiera de (a)-(d). preferiblemente
la secuencia de nucleótido codifica una proteína que tiene una
actividad biológica de la cadena de superfamilia del receptor
hematopoyetina MU-1. La secuencia de nucleótido se
puede ligar operablemente a una secuencia de control de
expresión.
\newpage
También se describen polinucleótidos aislados
que comprenden una secuencia de nucleótidos que codificada una
secuencia de nucleótidos que codifica un péptido o proteína que
comprende una secuencia de aminoácido seleccionada del grupo que
consiste de:
- (a)
- secuencia de aminoácido de SEQ ID NO 2;
- (b)
- la secuencia de aminoácido de SEQ ID NO 2 de los aminoácidos 22 a 538;
- (c)
- la secuencia de aminoácido de SEQ ID NO 2 de los aminoácidos 22 a 236;
- (d)
- la secuencia de aminoácido de SEQ ID NO 2 de los aminoácidos 1 a 236; y
- (e)
- fragmentos de (a)-(d) que tienen una actividad biológica de la cadena de superfamilia del receptor de hematopoyetina MU-1.
Se suministra adicionalmente un polinucleótido
aislado que comprende una secuencia de nucleótido seleccionada del
grupo que consiste de:
- (a)
- la secuencia del nucleótido de la SEQ ID NO 9;
- (b)
- una secuencia del nucleótido que varía de la secuencia de la secuencia especifica del nucleótido en (a) como un resultado de la degeneración del código genético;
- (c)
- una secuencia de nucleótido capaz de hibridizar bajo condiciones estrictas al nucleótido especificado en (a);
- (d)
- una variante alélica de la secuencia de nucleótido especificada en (a).
Se describe adicionalmente polinucleótidos
aislados que comprenden una secuencia de nucleótido que codifica un
péptido o proteína que comprende una secuencia de aminoácidos
seleccionada del grupo que consiste de:
- (a)
- la secuencia de aminoácido SEQ ID NO 10:
- (b)
- fragmentos de (a) que tienen una actividad biológica de la cadena de superfamilia del receptor de hematopoyetina MU-1.
También se suministran células huésped,
preferiblemente células de mamífero, transformadas con los
polinucleótidos.
En otras modalidades, la invención suministra un
proceso para producir una proteína MU-1. El proceso
comprende:
- (a)
- hacer crecer un cultivo de la célula huésped de la presente invención en un medio de cultivo adecuado; y
- (b)
- purificar la proteína; MU-1 humana del cultivo.
También se suministran proteínas producidas de
acuerdo con estos métodos.
La presente invención también suministra una
proteína MU-1 aislada que comprende una secuencia de
aminoácidos seleccionada del grupo que consiste de:
- (a)
- la secuencia de aminoácido de la SEQ ID NO 2;
- (b)
- la secuencia de aminoácido de la SEQ ID NO 2 de los aminoácidos 22 a 538
- (c)
- la secuencia de aminoácidos de la SEQ ID NO 2 de los aminoácidos 22 a 236;
- (d)
- la secuencia de aminoácidos de la SEQ ID NO 2 de los aminoácidos 1 a 236: y
- (e)
- fragmentos de (a)-(d) que tienen una actividad biológica de la cadena de superfamilia del receptor de hematopoyetina MU-1.
También se describe una proteína
MU-1 aislada que comprende una secuencia de
aminoácidos seleccionada del grupo que consiste de:
- (a)
- la secuencia de aminoácidos de la SEQ ID NO: 10;
- (b)
- fragmentos (a) que tienen una actividad biológica de la cadena de superfamilia del receptor de hematopoyetina MU-1.
La secuencia de aminoácido MU-1
de murino (SEQ ID NO: 10) de aproximadamente 65% idéntica a la
secuencia de aminoácido del MU-1 humano.
En otras modalidades preferidas, la secuencia de
aminoácido específica es parte de una proteína de fusión (con una
secuencia de aminoácidos adicional no derivada de
MU-1). Proteínas de fusión preferidas comprenden un
fragmento de anticuerpo, tal como un fragmento Fc.
Composiciones farmacéuticas que comprenden una
proteína MU-1 y un portador farmacéuticamente
aceptable también se suministra.
También se describen composiciones que
comprenden un anticuerpo que reacciona específicamente con una
proteína de la presente invención.
Una molécula de ácido nucleico
MU-1 como se describe aquí es de al menos 65%, 70%,
75%, 80%, 85%, 86%, 87%, 88%, 89%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%,
96%, 97%, 98%, 99%, 99.5% o más idénticos a la secuencia de
nucleótido (por ejemplo, a la longitud completa de la secuencia de
nucleótido) mostrada en la SEQ ID NO: 1 o 9.
Preferiblemente la molécula de ácido nucleico
consiste de la secuencia de nucleótido, mostrada en la SEQ ID MO: 1
o 9. También se prefiere que la molécula de ácido nucleico incluya
un fragmento de al menos 50, 100, 200, 300, 400, 500, 600, 700, 800,
900, 1000, 1100, 1200, 1300, 1400, 1500, 1600, 1700, 1800, o más
nucleótidos (por ejemplo nucleótidos contiguos) de la secuencia de
nucleótido de la SEQ ID NO 1 o 9, o un complemento de estos.
Preferiblemente, el miembro de la familia de
proteína MU-1 tiene una secuencia de aminoácido al
menos aproximadamente 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 86%, 87%, 88%, 89%,
90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99%, 99.5% O más
idéntica a la secuencia de aminoácido de la SEQ ID NO 2 o 10.
También se describe fragmentos de la proteína
que tienen la secuencia de aminoácido de la SEQ ID NO 2 o 10, en
donde el fragmento comprende al menos 15, 20, 30, 40, 50, 60, 70,
80, 90, o 100 aminoácidos (por ejemplo aminoácidos) contiguos de la
secuencia de aminoácido de la SEQ ID NO 2 o 10.
En otro aspecto, se suministra un método para
detectar la presencia de una molécula de ácido nucleico
MU-1, proteína o polipéptido en una muestra
biológica al poner en contacto la muestra biológica con un agente
capaz de detectar la molécula de ácido nucleico
MU-1, proteína o polipéptido de tal forma que la
presencia de una molécula de ácido nucleico MU-1,
proteína o polipéptido se detecta en la muestra biológica.
En otro aspecto, se suministra un método para
detectar la presencia de actividad MU-1 en una
muestra biológica al poner en contacto la muestra biológica con un
agente capaz de detectar un indicador de actividad
MU-1 de tal forma que la presencia de la actividad
MU-1 se detecta en la muestra biológica.
En otro aspecto, se describe un método para
modular la actividad MU-1 que comprende poner en
contacto una célula capaz de expresar MU-1 con un
agente que modula la actividad MU-1 de tal forma
que la actividad MU-1 en la célula. En una
modalidad, el agente inhibe la actividad MU-1. En
otra modalidad, el agente estimula la actividad
MU-1. En una modalidad, el agente es un anticuerpo
que se une específicamente a una proteína MU-1. En
otra modalidad, el agente modula la expresión del
MU-1 al modular la trascripción de un gen
MU-1 o traducción de un MU-1 mARN.
En aún otra modalidad, el agente es una molécula de ácido nucleico
que tiene una secuencia de nucleótido que es antisentido a la hebra
de codificación de un mARN MU-1 o un gen
MU-1.
Los métodos descritos se pueden utilizar para
tratar un sujeto que tiene un trastorno caracterizado por actividad
o expresión de ácido nucleico o proteína MU-1 no
deseada (por ejemplo, un trastorno asociado con
MU-1) al administrar un agente que es un modulador
MU-1 al sujeto. En una modalidad, el modulador
MU-1 es una proteína MU-1. En otra
modalidad el modulador MU-1 es una molécula de ácido
nucleico MU-1. En aún otra modalidad, el modulador
MU-1 es un péptido, péptido mimético, anticuerpo, u
otra molécula pequeña.
También se suministra ensayos diagnósticos para
identificar la presencia o ausencia de una alteración genética
caracterizada por al menos uno de (i) mutación o modificación
aberrante de un gen que codifica una proteína
MU-1,(ii) la seudo - regulación del gen
MU-1; y (iii) modificación
post-traduccional aberrante de una proteína
MU-1, en donde una forma de tipo silvestre del gen
codifica una proteína con una actividad MU-1.
En otro aspecto los métodos para identificar un
compuesto que se une a o modula la actividad de una proteína
MU-1 se suministran, al proporcionar una composición
indicadora que comprende una proteína MU-1 que tiene
actividad MU-1, que pone en contacto la composición
indicadora con un compuesto de ensayo, y determinar el efecto del
compuesto de ensayo sobre la actividad MU-1 (por
ejemplo modulación de fosforilación STAT, por ejemplo, fosforilación
STAT 3 o STAT) en la composición indicadora para identificar un
compuesto que modula la actividad de una proteína
MU-1.
\newpage
La figura 1 describe una secuencia de cADN de
longitud completa de MU-1 de murino. La secuencia de
nucleótido corresponde a nucleótidos 1-2628 SEQ ID
número 29.
La figura 2 describe la secuencia de aminoácido
de MU-1 de murino (que corresponde a los aminoácidos
1-529 de la SEQ ID número 10). Existe una
secuencia líder predicha en los aminoácidos 1-19,
que se predice por SPScan con clasificación de 10.1 (tipo
"negrilla"). Existe un dominio de transmembrana predicho en los
aminoácidos 237-253 (subrayado). Los motivos de
señalización predichos incluyen las siguientes regiones: casilla 1:
aminoácido 265-274 y casilla número 2: aminoácidos
3-324 (negrilla y subrayado); se ubican seis
tiroxinas en las posiciones de aminoácidos 281, 319, 361, 368, 397
y 510. El motivo WSXWS (SEQ ID número 8) se ubica en el residuo de
aminoácido 214 al residuo de aminoácido 218 (en tipo
"negrilla", grande). Sitios de acoplamiento STAT potenciales
incluyen los aminoácidos 393-398 y los aminoácidos
510-513.
La figura 3 describe la comparación GAP de la
secuencias de cADN MU-1 de murino y humano (que
corresponde a los ácidos nucleicos 1-2665 de la SEQ
ID número 1 y ácidos nucleicos 1-2628 de la SEQ ID
número 9, respectivamente). HuMU-1 =
MU-1 humano, mur MU-1 =
MU-1 de murino. Parámetros GAP: peso GAP = 50, case
promedio = 10.000, peso longitud E = 3, promedio de desfase = 0.000.
Porcentaje identidad = 66.116.
La figura 4 describe una comparación GAP de la
proteína MU-1 humana (que corresponde a los
aminoácidos 1-538 de la SEQ ID número 2) y la
proteína MU-1 de murino (que corresponde a los
aminoácidos 1-529 de la SEQ ID número 10). Matriz
de sustitución de aminoácido BLOSUM62. (Henikoff, S. y Henikoff,
J.G. (1.992)). Las matrices de sustitución de aminoácido de bloques
de proteína (Proc. Natl. Acad. Sci. USA
89:10915-10919). Parámetros GAP = peso GAP:8, case
promedio = 2.912, peso longitud = 2, promedio desfase = -2.003.
Porcentaje de identidad = 65.267.
La figura 5 describe una alineación múltiple de
secuencia de aminoácidos del MU-1 humano (que
corresponde a la SEQ ID número 2), MU-1 de murino
(que corresponde a la SEQ ID número 10), y cadena IL2beta humana
(número de acceso GENbank M26062). Se subrayan los dominios líder y
transmembrana. Los motivos de módulo de receptor de citoquina
conservados se indican por el tipo "negrilla". Se indican las
regiones de señalización potencial al subrayar y escribir en
"negrilla".
La figura 6 describe la señalización a través
del MU-1. El MU-1 fosforila el STAT5
en la quimera de clon E7 EPO- MU-1. Bajo las
condiciones especificadas en el ejemplo 3, la señalización a través
de MU-1 resulta en la fosforilación del STAT en
todos los puntos de tiempo ensayados. El tratamiento de controles o
las células BAF-3 quiméricas con
IL-3 resulta en la fosforilación del STAT3, pero no
el STAT1 o 5.
Los inventores de la presente solicitud han
suministrado poli nucleótidos que codifican la cadena de
superfamilia de receptor de hematopoyetina MU-1
(aquí en adelante "MU-1" o "proteína
MU-1"), que incluyen sin limitación poli
nucleótidos que codifican el MU-1 de murino y
humano.
En una modalidad particularmente preferida, la
proteína MU-1 y las moléculas de ácido nucleico son
moléculas MU-1 humanas. Una región del aminoácido 70
del receptor IL5 humano
(LMTNAFISIIDDLSKYDVQVRAAVSSM
CREAGLWSEWSQPIYVGNDEHKPLREWFVIVIMATICFILLIL, SEQ ID número 3) se utiliza para buscar en la base de datos EST GenBank utilizando el algoritmo TBLASTN. La secuencia dentro del clon BAC geonómico AC002303 del cromosoma humano 16P12 se identifica con homología a esta región, lo que sugiere que este segmento codificaría un gen para un receptor de hematopoyetina novedoso. Ejemplos de cuadros de lectura abierta dentro de 1000BP de nucleótido 40,886 revela un cuadro abierto 270BP que cuando se utiliza en la búsqueda BLASTP del GenPept identifica exclusivamente los miembros de la familia de receptor de citoquina. Un codón de parada presente al final de este cuadro de lectura se interpreta como indicio de transición sobre un límite de exón/intrón.
CREAGLWSEWSQPIYVGNDEHKPLREWFVIVIMATICFILLIL, SEQ ID número 3) se utiliza para buscar en la base de datos EST GenBank utilizando el algoritmo TBLASTN. La secuencia dentro del clon BAC geonómico AC002303 del cromosoma humano 16P12 se identifica con homología a esta región, lo que sugiere que este segmento codificaría un gen para un receptor de hematopoyetina novedoso. Ejemplos de cuadros de lectura abierta dentro de 1000BP de nucleótido 40,886 revela un cuadro abierto 270BP que cuando se utiliza en la búsqueda BLASTP del GenPept identifica exclusivamente los miembros de la familia de receptor de citoquina. Un codón de parada presente al final de este cuadro de lectura se interpreta como indicio de transición sobre un límite de exón/intrón.
Se determina luego si el ARN se transcribe de un
gen contenido dentro de este clon BAC del cromosoma 16P12. Se
sintetizan los iniciadores PCR basados en el segmento ORF más grande
que contienen la secuencia de péptido conservada dentro de la
familia del receptor de citoquina. Los iniciadores
GAGTCCGAGGAGAAAGCTGATCTCA (5p) (SEQ ID número 4) y
GAAAGATGACCGGGTCACTCCATT (3p) (SEQ ID número 5) se utilizan en PCR
para seleccionar las librerías fago a partir de varios tejidos
humanos (Clontech). Los productos PCR del tamaño 164BP esperado que
hibridizan específicamente a un oligonucleótido etiquetado
32-p de la secuencia
ACTCGAGCTATGAGCTG
CAGGTGCGGGCA (SEQ ID número 6) se observa en fago de pulmón, riñón, placenta y corazón. Utilizando el oligonucleótido ACTCGAGCTATGAGCTGCAGGTGCGGGCA (SEQ ID número 7) un clon de cADN de longitud completa NN14-1b (MU-1) se identifica, se purifica, y se secuencia. La secuencia de ADN y la secuencia de aminoácido predicha se muestran en la SEQ ID número 1 y SEQ ID número 2, respectivamente. La secuencia de aminoácido predicha de la cadena del receptor MU-1 humano incluye una secuencia de señal putativa de los aminoácidos 1921. El MU-1 humano maduro se cree que tiene la secuencia de los aminoácidos 24-538 de la SEQ ID número 2. Se encuentra un dominio de transmembrana en los aminoácidos 237-257.
CAGGTGCGGGCA (SEQ ID número 6) se observa en fago de pulmón, riñón, placenta y corazón. Utilizando el oligonucleótido ACTCGAGCTATGAGCTGCAGGTGCGGGCA (SEQ ID número 7) un clon de cADN de longitud completa NN14-1b (MU-1) se identifica, se purifica, y se secuencia. La secuencia de ADN y la secuencia de aminoácido predicha se muestran en la SEQ ID número 1 y SEQ ID número 2, respectivamente. La secuencia de aminoácido predicha de la cadena del receptor MU-1 humano incluye una secuencia de señal putativa de los aminoácidos 1921. El MU-1 humano maduro se cree que tiene la secuencia de los aminoácidos 24-538 de la SEQ ID número 2. Se encuentra un dominio de transmembrana en los aminoácidos 237-257.
En otra modalidad, las moléculas de ácido
nucleico y de proteína MU-1 son moléculas
MU-1 de murino. Para identificar la secuencia de
poli nucleótido que codifica la proteína MU-1 de
murino un fragmento parcial del homólogo de murino del receptor
MU-1 se aísla mediante PCR a partir de cADN de ratón
utilizando oligonucleótidos derivados de la secuencia humano como se
describe en el ejemplo 1. La secuencia de ADN de este fragmento se
determina y se derivan dos oligonucleótidos a partir de una porción
interna de este fragmento con las siguientes secuencias:
TTGAACGTGACTGTGGCCTT (5p) | (SEQ ID número 13) | |
TGAATGAAGTGCCTGGCTGA (3p) | (SEQ ID número 14) |
Se utilizan oligonucleótidos para amplificar un
fragmento de nucleótido 262 interno del producto PCR original (que
corresponde a los nucleótidos 781-1043 de la
secuencia de cADN de murino de la Figura 1 y la SEQ ID número 9)
para usar como una sonda de hibridización para seleccionar una
librería de cADN aislada de la línea de célula T2D6. Se determina la
secuencia de ADN a partir de dos clones independientes. El clon 6 se
secuencia y se confirma por ser el homólogo de murino de longitud
completa del MU-1 humano.
La secuencia de nucleótido de longitud completa
del MU-1 de murino se muestra en la Figura 1 (que
corresponde a los nucleótidos 1-2628 de la SEQ ID
número 9). La secuencia de nucleótido tiene una secuencia líder
predicha en los nucleótidos 407-464, que codifican
la secuencia en los nucleótidos 407-1993 y un codón
de terminación en los nucleótidos 1994-1997. Los
nucleótidos 1-406 corresponden a la región no
traducida 5' y los nucleótidos 1998-2628
corresponden a la región no traducida 3'. La secuencia de proteína
predicha de MU-1 de murino se muestra en la Figura 2
(que corresponde a los aminoácidos 1-529 de la SEQ
ID número 10).
La proteína MU-1 de murino
contiene una secuencia líder predicha determinada SPScan
(clasificación = 10.1) que corresponde a los aminoácidos
1-19 de la SEQ ID número 10), y un dominio de
transmembrana predicho (que corresponde a los aminoácidos
237-253 de la SEQ ID número 10). Los motivos de
señalización predichos incluyen las siguientes regiones: casilla 1:
aminoácidos 265-274 de la SEQ ID número 10,
casilla número 2: aminoácidos 310-324 de la SEQ ID
número 10, seis residuos de tirozina en las posiciones 281, 319,
319, 361, 368, 397 y 510 de la SEQ ID número 10. Los lípidos de
acoplamiento del STAT potenciales incluyen pero no se limitan a:
STAT5: EDDGYPA, STAT3: YLQR.
El cuadro de lectura abierto del
MU-1 codifica una membrana de la familia del
receptor de hematopoyetina. En una modalidad, el
MU-1 tiene una secuencia líder pares de cisteína
conservados, PP, y motivos WSXWS (SEQ ID número: 8) característicos
de la familia, así como también un dominio de transmembrana y un
dominio citoplásmico extensivo. El MU-1 también
contiene un PXPP conservado así como también motivos de señalización
de casilla i y casilla ii en el dominio citoplásmico (ver figura 5).
Estos dominios se conservan entre MU-1 de murino y
MU-1 de humano. La subsecuente alineación FASTA de
la secuencia con el GenPept muestra mayor homología con el
IL-2Rb de humano (ver figura 5).
Se deposita el cADN MU-1 de
humano con el American Type Culture Collection en Marzo 10, 1998,
con el número de acceso ATCC 98687.
Mediante análisis Northern, como se describe en
el ejemplo 4, se detecta MU-1 de murino en tejido de
bazo, pulmón y corazón en murino adulto. El MU-1
humano se detecta en tejidos linfoides humanos, PBL, timo, bazo y
nodos linfáticos y en pulmón de feto.
Cualquier forma de las proteínas
MU-1 de menos de longitud completa se abarca dentro
de la presente invención y se refieren aquí colectivamente con
longitud completa y formas maduras como "proteínas
MU-1" o "MU-1". Las
proteínas MU-1 de menos de longitud completa se
pueden producir la expresar un fragmento correspondiente del
polinucleótido que codifica la proteína MU-1 de
longitud completa (SEQ ID No: 4 o SEQ ID No: 6). Estos fragmentos se
polinucleótido correspondientes también se pueden utilizar. Los
polinucleótidos modificados como se describió anteriormente se
pueden hacer mediante técnicas de biológica molecular estándar, que
incluyen la construcción de mutantes de eliminación deseada
apropiados, métodos de mutagénesis dirigida al sitio o mediante
reducción de cadena de polimerasa utilizando iniciadores de
oligonucleótido apropiados.
Para los propósitos de la presente invención,
una proteína tiene "una actividad biológica de la cadena de
superfamilia del receptor de hematopoyetina MU-1"
si esta posee una o más de las actividades biológicas de la proteína
MU-1 madura correspondiente. La actividad
MU-1 incluye la interacción con moléculas STAT (por
ejemplo, STAT 5, STAT 3).
Fragmentos activos o MU-1 de
estos (proteínas MU-1) se pueden fusionar a la
moléculas portadoras tales como inmunoglobulinas o fragmentos de
inmunoglobulina. Por ejemplo, las formas solubles del
MU-1 se pueden fusionar a través de secuencias
"ligadoras" a la porción Fc de una inmunoglobulina. Otras
proteínas de fusión, tal como aquellas con GST,
Lex-A o MBP, también se pueden utilizar.
También se describen variantes alélicas de la
secuencia de nucleótido como se establece en la SEQ ID No: 1 y SEQ
ID No: 9 que son, formas alternativas de ocurrencia natural del
polinucleótido aislado de la SEQ ID No: 1 y SEQ ID No: 9 que también
codifican proteínas MU-1, preferiblemente aquellas
proteínas que tienen unan actividad biológica de
MU-1. También se incluye en la invención
polinucleótidos aislados que hibridizan a la secuencia de nucleótido
establecida en la SEQ ID No: 1 y SEQ ID No: 9 bajo condiciones
altamente estrictas (por ejemplo, 0.1 x SSC a 65ºC). Los
polinucleótidos aislados que codifican las proteínas
MU-1 pero que difieren de la secuencia de
nucleótido establecida en la SEQ ID No:1 y SEQ ID No: 9 por virtud
de la degeneración del código genético también se abarcan por la
presente invención. Variaciones en la secuencia de nucleótido como
se establece en la SEQ ID No: 1 y SEQ ID No: 9 que se originan por
mutaciones de punto o por modificaciones inducidas también se
incluyen.
Como se utiliza aquí el término "hibridiza
bajo condiciones estrictas" se pretende describir condiciones
para la hibridización y lavado bajo la cual las secuencias de
nucleótido al menos 60% idénticas la una a la otra típicamente
permanecen hibridizadas la una a la otra. Preferiblemente, las
condiciones son tales que la secuencias en al menos aproximadamente
el 70%, más preferiblemente al menos aproximadamente 80%, aún más
preferiblemente al menos 85% o 90% idéntica la una a la otra
típicamente permanecen hibridizadas la una a la otra. Tales
condiciones estrictas son conocidas por aquellos expertos en la
técnica y se pueden encontrar en Current Protocols in Molecular
Biology, Jhon Wiley & Sons, N.Y. (1989),
6.3.1-6.3.6. Un ejemplo no limitativo, preferido de
condiciones de hibridización estrictas es la hibridización en 6 X de
cloruro de sodio/citrato de sodio (SSC) a aproximadamente 45ºC,
seguido por una o más lavadas en 0.2 X SSC, 0.1% SDS a 50ºC,
preferiblemente a 55ºC, más preferiblemente a 60ºC, y aún más
preferiblemente a 65ºC. Se abarcan los rangos que atraviesan los
valores descritos anteriormente, por ejemplo,
55-60ºC o 50-65ºC. Preferiblemente,
una molécula de ácido nucleico aislado que hibridiza bajo
condiciones estrictas a la secuencia de la SEQ ID No: 1 o 9
corresponde a una molécula de ácido nucleico de ocurrencia natural.
Como se utiliza aquí, una molécula de ácido nucleico "de
ocurrencia natural" se refiere a una molécula de ADN o ARN que
tiene una secuencia de nucleótido que ocurre en la naturaleza (por
ejemplo codifica una proteína natural).
Para determinar el porcentaje de identidad de
dos secuencias de aminoácidos o de dos secuencia de ácido nucleico,
se alinean las secuencias par propósito de comparación óptimo (por
ejemplo, se pueden introducir espacios en uno o ambos de una primera
y una segunda secuencia de ácido nucleico o aminoácido para
alineación óptima y se pueden independizar secuencias no idénticas
para propósitos de comparación). En una modalidad preferida, la
longitud de una secuencia de referencia alineada para propósito de
comparación es al menos 30%, preferiblemente al menos 40%, más
preferiblemente al menos 50%, aún más preferiblemente al menos 60%,
y aún más preferiblemente al menos 70%, 80%, o 90% de la longitud de
la secuencia de referencia. Los residuos de aminoácidos o
nucleótidos en la posiciones de aminoácidos correspondientes o
posiciones de nucleótidos se comparan luego. Cuando una posición en
la primera secuencia se ocupa por el mismo residuo de aminoácido o
nucleótido como la posición correspondiente en la segunda secuencia,
entonces las moléculas son idénticas en esa posición (como se
utiliza aquí la "idéntica" de ácido nucleico o aminoácido es
equivalente a la "homología" de aminoácido o ácido nucleico).
El porcentaje de identidad entre las dos secuencias es una función
del número de posiciones idénticas compartidas por las secuencias,
teniendo en cuenta el número de espacios, y la longitud de cada
espacio, que se necesitan introducir para alineación óptima de las
dos secuencias.
La comparación de las secuencias y la
determinación de porcentaje de identidad entre dos secuencias se
pueden lograr utilizando un algoritmo matemático. En una modalidad
preferida el porcentaje de identidad entre dos secuencias de
aminoácido se determina utilizando el algoritmo Needleman y Wunsch
(J. Mol. Biol. (48):444-453 (1970)) que se ha
incorporado en el programa GAP en el paquete de software GCG
(disponible en http://www.gcg.com), utilizando la matriz Blosum 62
o una matriz PAM250, y un peso de espacio de 16, 14, 12, 10, 8, 6, o
4 y un peso de longitud de 1, 2, 3, 4, 5, o 6. En aún otra modalidad
preferida, el porcentaje de identidad entre dos secuencias de
nucleótidos se determina utilizando el programa GAP en el paquete de
software GCG (disponible en http://www.gcg.com), utilizando una
matriz NWSgapdna.CPM y un peso de espacio de 40, 50, 60, 70, o 80 y
un peso de longitud de 1, 2, 3, 4, 5, o 6. En otra modalidad, el
porcentaje de identidad entre dos secuencias de nucleótido o
aminoácido se determina utilizando el algoritmo de E. Meyers y W.
Miller (Myers and Miller, 1988, Comput. Appl, Biosci.
4:11-17) que se ha incorporado en el programa ALIGN
(versión 2.0), utilizando una tabal de residuo de peso PAM120, una
penalidad de longitud de espacio de 12 y una penalidad de espacio de
4.
Las secuencias de proteína y ácido nucleico
descritas aquí se pueden adicionalmente utilizar como una
"secuencia de pregunta" para desarrollar una búsqueda contra
bases de datos públicas para, por ejemplo, identificar otros
miembros de familia o secuencias relacionadas. Tales búsquedas se
pueden desarrollar utilizando programa NBLAST y XBLAST (versión 2.0)
de Altschul, et. al., (1990) J. Mol. Biol.
215:403-10. Las búsquedas de nucleótidos BLAST se
pueden desarrollar con el programa NBLAST, clasificación = 100,
longitud de palabra = 12 para obtener secuencias de nucleótidos
homologas a las moléculas de ácidos nucleicos Adhr-1
de la invención. Las búsquedas de proteína BLAST se pueden
desarrollar con el programa XBLAST, clasificación = 100 longitud de
palabra = 3 para obtener secuencias de aminoácido homologas a las
moléculas de proteína Adhr-1 de la invención. Para
obtener alineaciones espaciadas para propósitos de comparación, se
puede utilizar BLAST espaciado como se describe en Altschul et.
al., (1997) Nucleic Acids Res.
25(17):3389-3402. Cuando se utilizan los
programas BLAST y BLAST Espaciado los parámetros por defecto de los
programas respectivos (por ejemplo XBALST y NBLAST se pueden
utilizar. Ver http://www.ncbi.nlm.nih.gov.
También se describen polinucleótidos que
codifican homólogos del MU-1 humano a partir de
otras especies animales, particularmente otras especies de
mamíferos. Las especies homólogas se pueden identificar y aislar a
hacer sondas o iniciadores a partir de las secuencias de murino o
humanas descritas aquí y que seleccionan una librería a partir de
una especie apropiada, tal como por ejemplo librerías construidas a
partir de PBMC, timo o testículos de especies importantes.
Los polinucleótidos aislados se pueden ligar
operablemente a una secuencia de control de expresión tal como los
vectores de expresión pMT2 o pED descritos en Kaufman et al.,
Nucleic Acids Res. 19, 4485-4490(1991), con
el fin de producir la proteína
MU-recombinantemente. Se conocen muchas secuencias
de control de expresión adecuadas en la técnica. Los métodos
generales que expresan proteínas recombinantes también se conocen y
se ejemplifican en R. Kaufman, Methods in Enzimology 185,
537-566(1990). Como se define aquí "ligado
operablemente" significa ligado enzimático o químicamente para
formar un enlace covalente entre el polinucleótido aislado y la
secuencia de control de expresión, en tal una forma que la proteína
MU-1 se expresa mediante una célula huésped que se
ha transformado (transfectado) con un polinucleótido
ligado/secuencia de control de expresión.
Un número de tipos de células pueden actuar como
células huésped adecuadas para la expresión de la proteína
MU-1. Cualquier tipo de célula capaz de expresar
proteína MU-1 funcional se puede utilizar. Las
células de huésped de mamífero adecuadas incluyen, por ejemplo,
células de mono COS, células e ovario de Hámster Chino (CHO),
células de riñón humano 293, células epidérmicas humana A431,
células de colon humano 205, células 373, células
CV-1, otras líneas celulares de primate
transformadas, células diploides normales, cepas de células
derivadas de cultivos in vitro de tejidos primarios,
explantes primarios, células HeLa, células de ratón L BHK,
HL-60, U937, HaK, Rat2, BaF3, 32D,
FDCP-1, PC12, M1x o células C2C12.
También se pueden producir proteínas
MU-1 al ligar operablemente el polinucleótido
aislado a secuencias de control adecuadas en uno o más vectores de
expresión de insectos, y emplear un sistema de expresión de
insectos. Materiales y métodos para sistemas de expresión celular de
vaculovirus/insectos están disponibles comercialmente en forma de
kit, por ejemplo, invitrogen, San Diego, California, E.U.A (el kit
MaxBac®), y tales métodos son bien conocidos en la técnica, como se
describe en Summers y Smith, Texas Agricultural Experiment Station
Bulletin No. 1555(1987). Las formas solubles de la proteína
MU-1 también se pueden producir en células de
insecto utilizando polinucleótidos aislados como se describió
anteriormente.
Alternativamente, la proteína
MU-1 se puede producir en eucariotes inferiores tal
como levadura o en procariotes tales como bacterias. Las cepas de
levadura adecuadas incluyen cepas de Saccharomyces
cerevisiae, cepa de Schizosaccharomyces pombe, cepa de
Kluyveromyces candida, o cualquier cepa de levadura capaz de
expresar proteínas heterólogas. Cepas bacteriales adecuadas incluyen
cepa de Escherichia coli, cepa de Bacillus subtilis,
cepa de Salmonella typhimurium, o cualquier cepa bacterial
capaz de expresar proteínas heterólogas.
La expresión en bacterias puede resultar en la
formación de anticuerpos de inclusión que incorporan la proteína
recombinante. Así, se puede requerir replegar la proteína
recombinante con el fin de producir un material activo o más activo.
Varios métodos para obtener proteínas heterólogas correctamente
plegadas de cuerpos de inclusión bacterial se conocen en la técnica.
Estos métodos involucran generalmente solubilizar la proteína a
partir de la inclusión de cuerpos, luego desnaturalizar la proteína
completamente utilizando un agente caotrópico. Cuando los residuos
de cisteína están presentes en la secuencia de aminoácido primaria
de la proteína, es a menudo necesario acompañar el repliegue en un
ambiente que permita la formación correcta de enlaces de disulfuro
(un sistema redox). Se describen métodos generales de repliegue en
cono, Meth. Enzym., 185:187-195(1990). EP
0433225 y solicitud copendiente USSN 08/163,877 que describe otros
métodos apropiados.
También se puede expresar la proteína
MU-1 como un producto de animales transgénicos, por
ejemplo, como un componente de la leche de vacas transgénicas,
cabras, cerdos u ovejas que se caracteriza por células germinales o
somáticas que contienen una secuencia de polinucleótido que codifica
la proteína MU-1.
La proteína MU-1 se puede
preparar al hacer crecer un cultivo transformado de células huésped
bajo condiciones de cultivo necesarias para expresar la proteína
deseada. La proteína expresada resultante puede luego ser purificada
a partir del medio de cultivo o los extractos celulares. Las formas
solubles de la proteína MU-1 se pueden purificar a
partir del medio condicionado. Las formas de unión de membrana de la
proteína MU-1 se pueden purificar al preparar una
fracción de la membrana total a partir de células de expresión y
extraer las membranas con un detergente no iónico tal como tritón
X-100.
La proteína MU-1 se puede
purificar utilizando los métodos conocidos por aquellos expertos en
la técnica. Por ejemplo, la proteína MU-1 se puede
concentrar utilizando un filtro de concentración de proteína
disponible comercialmente, por ejemplo, una unidad de
ultrafiltración Pellicon o Millipore. Luego de la etapa de
concentración, el concentrado se puede aplicar a una matriz de
purificación de tal como un medio de filtración de gel.
Alternativamente, se puede emplear una resina de intercambio de
aniño por ejemplo, una a matriz o sustrato que tiene grupos
dietilaminoatilo (DEAR) o poloetilenoamina (PEI) pendientes. Las
matrices pueden ser de tipo acrilamida, agarosa, dextrano, celulosa
u otros tipos comúnmente empleados en la purificación de proteínas.
Alternativamente, se puede emplear una etapa de intercambio de
catión. Intercambiadores de Catión adecuados incluyen varias
matrices insolubles que comprenden sulfopropilo o grupos
carboximetilos. Grupos sulfopropilos se prefieren (por ejemplo
columnas S-Sefarose®). La purificación de la
proteína MU-1 del supernandante del cultivo también
puede incluir una o más etapas de columna sobre tales resinas de
afinidad como concanavalin A-agarosa
heparin-topopearl® o Cibacrom azul 3GA Sepharose®; o
mediante cromatografía de interacción hidrófoba utilizando tales
resinas como felinéter, gulieter, o propileter; o mediante
cromatografía de inmunoafinidad. Finalmente, una o mas o etapas de
cromatografía líquida de alto desempeño de fase inversa
(RP-HPLC) que emplean medio RP-HPLC
hidrófobo por ejemplo gel de sílice que tiene grupos metilo
pendientes u otros grupos alifáticos, se puede emplear
adicionalmente para purificar la proteína MU-1 las
columnas de afinidad que incluyen anticuerpos para la proteína MU- 1
también se pueden utilizar en la purificación de acuerdo con métodos
conocidos. Algunas o todas las etapas de purificación anteriores, en
varias combinaciones o con otros métodos conocidos, también se
pueden emplear para suministrar una proteína recombinarte aislada
sustancialmente purificada. Preferiblemente, la proteína
MU-1 aislada se purifica de tal forma que es
sustancialmente libre de otras proteínas de mamíferos.
Las proteínas MU-1 también se
pueden utilizar para selección de agentes que son capaces de unirse
al MU-1. Los ensayos de unión que utilizan una
proteína de unión deseada, inmovilizada o no, son bien conocidos en
la técnica y se pueden utilizar para este propósito utilizando la
proteína MU-1 de la invención. Ensayos de selección
(libre de células) basados en proteínas o basados en células
purificadas se pueden utilizar para identificar tales agentes. Por
ejemplo, se puede inmovilizar la proteína MU-1 en
forma purificada sobre un portador y unirse aligado potenciales para
purificación. La proteína MU-1 se puede medir.
Las proteicas MU-1, purificadas
de células o producidas recombinantemente se pueden utilizar como
una composición farmacéutica cuando se combinaba con un portador
farmacéuticamente aceptable. Tal una composición puede contener, en
adición a MU-1 o inhibidor y portador, varios
diluyentes, llenadotes, sales, amortiguadores, estabilizadores,
solubilizadores, y otros materiales bien conocidos en la técnica. El
término "farmacéuticamente aceptable" significa un material no
tóxico que no interfiere con la efectividad de la actividad
biológica del ingrediente activo. Las características del portador
dependerán de la ruta de administración.
La composición farmacéutica también puede
contener citoquinas, linfoquinas, u otros factores hematopoyéticos
tales como M-CSF,
OM-CSF,IL-1,IL-.2,
IL-3, IL-4, IL-5,
IL-6, IL-7, IL-8,
IL-9, IL-10, IL-11,
IL-12, IL-14, IL-15,
G-CSF, factor de célula madre y eritropoyetina. La
composición farmacéutica también puede incluir anticuerpos
anti-citoquina. La composición farmacéutica puede
contener factores trombolíticos o antitrombóticos tales como
activador de plasminógeno y factor VIII. La composición farmacéutica
puede contener adicionalmente otros agentes antiinflamatorios. Tales
factores adicionales y/o agentes se pueden incluir en la composición
farmacéutica para producir un efecto sinergístico con la proteína
MU-1 aislada o para minimizar efectos colaterales
originados por la proteína MU-1 aislada. Por el
contrario, la proteína MU-1 aislada se puede incluir
en las formulaciones de la citoquina particular, linfoquina, otro
factor hematopoyético, trombolítico o factor antitrombótico, o
agente antiinflamatorio para minimizar efectos colaterales de la
citoquina, linfoquina u otro factor hematopoyético, factor
trombolítico o factor antitrombótico, o agente antiinflamatorio.
La composición farmacéutica puede estar en la
forma de una liposoma en la que se combina la proteína
MU-1 aislada, en adición a otros portadores
farmacéuticamente aceptables, con agentes anfipáticos tales como
lípidos que existen en forma agregada como micelas, monocapas
insolubles, cristales líquidos, o capas lamelares. Lípidos adecuados
para formulación de liposoma incluye sin limitación monoglicéridos,
diglicéridos, sulfátidos, lisolecitina, fosfolípidos, saponina,
ácidos de bilis, y similares. La preparación de tales formulaciones
liposomales esta dentro del nivel del experto en la técnica, como se
describe, como por ejemplo, en la patente estadounidense No
4,235,871; Patente estadounidense 4,501,728; patente estadounidense
No 4,839,028; y patente estadounidense No, 4737,323.
Como se utiliza aquí, el término "cantidad
terapéuticamente efectiva" significa la cantidad total de cada
componente activo de la composición farmacéutica o método que es
suficiente para mostrar un beneficio al paciente significativo, por
ejemplo, mejoramiento de los síntomas de, curación de, o un
incremento en el índice de curación de tales condiciones. Cuando se
aplica a un ingrediente activo individual, se administra solo, el
término se refiere a un ingrediente solo. Cuando se aplica a una
combinación, el término se refiere a las cantidades combinadas de
los ingredientes activos que resultan en el efecto terapéutico si se
administran combinación, en forma serial o simultáneamente.
La proteína MU-1 aislada se
puede administrar sola o en combinación con otras terapias tal como
tratamientos que emplean cito quimas, linfoquinas u otros factores
hematopoyéticos. Cuando se coadministra con una o mas citoquinas,
linfoquinas u otro factores hematopoyéticos, la proteína
MU-1 se puede administrar simultáneamente con las
citoquinas, linfoquinas, otros factores hematopoyéticos, factores
trombolíticos o antitrombóticos, o secuencialmente. Si se administra
secuencialmente, el médico que atiende decidirá sobre la secuencia
apropiada de administración de proteína MU-1 en
combinación con factores de citoquina, linfoquinas, u otros factores
hematopoyéticos, factores trombo líticos o antitrombóticos.
La administración de la proteína
MU-1 utilizada en la composición farmacéutica o para
practicar el método de la presente invención se puede llevar a cabo
en una variedad de formas convencionales, tal como ingestión oral,
inhalación, o inyección cutánea, subcutánea o intravenosa, se
prefiere la administración intravenosa del paciente.
Cuando se administra oralmente una cantidad
terapéuticamente efectiva de proteína MU-1, la
proteína MU-1 estará en la forma de una tableta,
cápsula, polvo, solución o elíxir. Cuando se administra en forma de
tableta, la composición farmacéutica de la invención puede contener
adicionalmente un portador solidó tal como una gelatina o una
adyuvante. La tableta, cápsula y polvo contiene aproximadamente 5 a
95% de proteína MU-1, y preferiblemente de
aproximadamente 25 a 90% de proteína MU-1. Cuando
se administra en forma líquida, un portador líquido tal como agua,
petróleo, aceites de origen animal aceite de origen plantas tal como
aceite de cacahuete, aceite mineral, aceite de soya o aceite de
sésamo o aceites sintéticos. La forma líquida de la composición
farmacéutica puede contener adicionalmente solución salina
fisiológica, dextrosa u otra solución de sacarosa o glicoles tales
como etilenglicol, propilenglicol o polietilenglicol. Cuando se
administra en forma líquida, la composición farmacéutica contiene de
aproximada-
mente 0.5 a 90% en peso de proteína MU-1, y preferiblemente de aproximadamente 1 a 50% proteína MU-1.
mente 0.5 a 90% en peso de proteína MU-1, y preferiblemente de aproximadamente 1 a 50% proteína MU-1.
Cuando se administra una cantidad
terapéuticamente efectiva de proteína MU-1 post
inyección intravenosa, cutánea, o subcutánea, la proteína de
MU-1 estará en la forma de una solución acuosa
parenteralmente aceptable libre de pirógenos la preparación de tales
soluciones de proteína parenteralmente aceptables que tienen con
respecto al PH y su tonicidad, estabilidad y similares, que están
dentro de la habilidad del experto en la técnica. Una composición
farmacéutica preferida para inyección intravenosa, cutánea o
subcutánea debe contener, en adición a la proteína
MU-1 un vehiculo isotónico tal como inyección de
Cloruro de Sodio inyección de solución de Ringer inyección de
dextrosa, inyección de cloruro de Sodio y inyección de dextrosa,
inyección de Cloruro de Sodio y dextrosa, inyección de solución de
Ringer lactosada u otro vehiculo conocido en la técnica. La
composición farmacéutica también puede contener estabilizantes,
preservativos, amortiguadores, antioxidantes, u otros aditivos
conocidos por aquellos expertos en la técnica.
La cantidad de proteínas MU-1 en
la composición farmacéutica dependerá de la naturaleza y serenidad
de la condición hacer tratada, y sobre la naturaleza de
tratamientos anteriores que el paciente haya experimentado.
Finalmente, el médico que atiende decidirá la cantidad de proteína
MU-1 con la que tratar cada paciente individual
inicialmente, el médico que atiende administrará bajas dosis de
proteína MU-1 y observa la respuesta de paciente.
Dosis mayores de proteína MU-1 se pueden administrar
hasta que el efecto terapéutico óptimo se obtenga por el paciente,
y en ese punto la dosis no se incrementa adicionalmente. Se
contempla que las varias composiciones farmacéuticas utilizadas
deben contener aproximadamente 0.1 \mug a aproximadamente 100 mg
de proteína MU-1 por kg de peso corporal.
La duración de la terapia intravenosa que
utiliza la composición farmacéutica variará, dependiendo de la
severidad de la enfermedad a ser tratada y la condición y respuesta
idiosincrásica potencial de cada paciente individual. Se contempla
que la duración de cada aplicación de la proteína
MU-1 estará en el rango de 12 a 24 horas de
administración intravenosa continua. Finalmente el médico que
atiende decidirá la duración apropiada de la terapia intravenosa
que utiliza la composición farmacéutica.
Se espera que las proteínas y polinucleótidos
exhiban uno o más de los usos o actividades biológicas (que
incluyen aquellas asociadas con ensayos citados aquí) identificados
adelante. Los usos o actividades descritas para las proteínas se
pueden suministrar por administración o uso de tales proteínas o por
administración o uso polinucleótidos que codifican tales proteínas
(tal como, por ejemplo, en terapia de genes o vectores adecuados
para introducción de ADN).
Una proteína MU-1 puede exhibir
citoquina, la proliferación celular (que induce o inhibe) o la
diferenciación celular (que induce o inhibe) la actividad o puede
inducir producción de otras citoquinas en ciertas poblaciones
celulares.
Muchos factores de proteína descubiertos a la
fecha que incluyen todas las citoquinas han exhibido actividad en
uno o más ensayos de proliferación celular dependiente de factor, y
por lo tanto los ensayos sirven como una confirmación conveniente
de la actividad de citoquina. La actividad de la proteína
MU-1 se evidencia por uno cualquiera de un numero
de factores de rutina dependientes de ensayos de proliferación
celular para líneas celulares que incluyen, sin limitación, 32D,
DA2, DA1G, T10, B9, B9/11, BaF3, MC9/G,M+ (pre B M+), 2E8, RB5, DA1,
123, T1 165, HT2,CTLL2, Th-1. Mo7e y CMK.
Las células BAF-3 que expresan
receptores quiméricos huEPOR-huMU que proliferan en
respuesta al huEPO. Con el fin de ensayar la capacidad para el
receptor MU para señal a través de su dominio citoplásmico, se
construyen con ingeniería células BAF-3 para
expresar receptores quiméricos EPOr/MU (cito) y se ensayan para
incorporación de ^{3}H timidina en la presencia de EPO. Las
células BAF-3 que expresan proliferación de
moléculas EPOr en respuesta al EPo mientras que las células
BAF-3 parientes no lo hacen. El clon A5, que posee
el EPOr/MU(cito) quimérico prolifera en respuesta al EPOr
que demuestra que la porción citoplásmica de MU-1
puede sostener una señal proliferativa. Las células
BAF-3 que expresan EPOr sobre su superficie también
responden al EPO.
La actividad de una proteína puede, entre otras
significar, ser medido por los siguientes métodos:
Ensayos para profileración de célula T o
timosito incluye sin limitación aquellas descritas en: Current
Protocols in immunologic, Ed cy J.E. Coligan, A.M. Kruisbeek, D. H.
Margulies, E.M: Shevach, W Strober, Pub. Greene Publishing
Associatrs y Wiley-Interscience (capitulo 3 In
Vitro Assays for Mouse Lymphocyte 3.1-3.19:
Capitulo 7,immunologic studies in Humans); Takai et al., J.
Immunol 137:3494-3500, 1986; Beryagnolli et
al., J Immunol 145:1706-1712, 1990; Bertagnolli
et al., Cellular Immunology 133:327-341,
1991; Bertagnolli, et al., J.Ommunil.
146:3778-3783, 1992: Bowman et al., J.
Ommunol. 152:1756-1761 m 1994.
Ensayos para la producción y/ proliferación de
citoquina en células de bazo, células de nodo linfático o timocitos
incluyen, sin limitación aquellas descritas en: Policlonal T CEll
stimulation, Kruisbeek, A.M. y Shevach, E.M. in Current Protocols in
Immunology. J.E.e.a. Coligan eds. Vol 1 pp.
3.12.1-3.12.14, Jhon Wiley and Sons, Toronto. 1994;
y mención de interferón gama de ratón y humano, Schreiber, R:D. In
Current Protocols in Inmunology. J:E: e.a. Coligan eds. Vol 1 pp.
6.8.1-6.8.8, Jhon Wiley and Sons, Toronto.
1.994.
Ensayos p proteína de microglobulina
\beta_{2} ara proliferación y diferenciación de células
ematopoyéticas y linfopoyéticas incluyen, sin limitación aquellas
descritas en: Measurement of Human and murine Interleukin 2 and
Interleukin 4, Bottomly, K., Davis, L.S and Lipsky, P.E. In current
Protocols in Inmunology. J:E:e.a Coligan eds. Vol 1 pp.
6.3.1-6.3.12, Jhon Wiley and Sons, Toronto. 1991;
deVries et al., J. Exp. Med. 173:1205-1211,
1991: Moreau et al., Nature 336:690-692,
1998; Greenberger et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A.
80:2931-2938, 1983; Measurement of Mouse and Human
Interleukin 6- Nordan 11- Bennett, F., Giannotti, J., Clark, S.C.
and Turner, K. J. In current Protocols in immunology. J:E. e.a.
Coligan eds. Vol 1 pp. 6.15.1 Jhon Wiley and sons, Toronto. 1991;
Measurement of Mouse and Human Interleuking 9- Ciarletta, A., Jhon
Wiley and sons, Toronto. 1991.
Ensayos de respuestas de clon de células T
antígenos (que identificarán, entre otras, las proteínas que afectan
las interacciones celulares APC-T así como también
efectos de célula T directos al medir la proliferación y producción
de citoquina) incluye, sin limitación, aquellas descritas en:
Current Protocols in Inmunology, Ed by J:E: Coligan, A:M. Kruisbeek,
D.H: Margulies, E.M. Shevach, WW Strober, Pub. Greene Publishing
Associates and Wiley- interscience (Capítulo 3, in vitro
assays for Mouse Lymphocyte Function; Capítulo 6; Cytokinesand
their cellular receptors; Capítulo 7 Inmunologic studies in Humans);
Weinberger et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA
77:6091-6095, 1980; Weinberger et al., Eur.
J. Immnn. 11:405-411, 1981; Takai et al,. J.
Immunol. 140:508512. 1998.
Una proteína MU-1 también puede
exhibir actividad supresora de inmunización o estimuladora de
inmunización que incluye sin limitación las actividades para las
que se describen ensayos aquí. Una proteína puede ser útil en el
tratamiento de varias deficiencias inmunes y trastornes (que
incluyen inmunodeficiencia severa combinada (SCID)), por ejemplo,
en la regulación (hacia arriba o hacia abajo) el crecimiento y
proliferación de linfocitos T y/o B, así como también afectar la
actividad cito lítica de las células NK y otras poblaciones
celulares. Estas deficiencias inmunes pueden ser genéticas o se
pueden originar por virus (por ejemplo HIV) así como también
infecciones por bacterias u hongos, o puede resultar de trastornos
autoinmunes. Más específicamente, las enfermedades infecciosas
originadas por virus, bacterias, hongos u otras infecciones se
pueden tratar utilizando una proteína de la invención, que incluyen
infección por HIV, virus de la hepatitis, virus del herpes, mico
bacteria, leishmania SPP; malaria FPP. y varias infecciones por
hongos tales como candidiasis. Por supuesto, a este respecto,
también puede ser útil una proteína descrita en donde un propulsor
para el sistema inmune generalmente puede ser deseable, es decir,
en el tratamiento del cáncer.
Trastornos autoinmunes que se pueden tratar
utilizando una proteína descrita incluyen, por ejemplo enfermedad
del tejido conector, esclerosis múltiple, lupus eritematoso
sistémico, artritis reumatoide, inflamación pulmonar autoinmune,
síndrome Guillen Barre, tiroiditis autoinmune, diabetes mellitus
dependiente de insulina, miastenia gravis, enfermedad del huésped
vs. Injerto y enfermedad inflamatoria del ojo autoinmune. Tal una
proteína también puede ser útil en el tratamiento de reacciones
alérgicas y condiciones, tales como asma (particularmente asma
alérgica) hubo otros problemas respiratorios. Otras condiciones, en
las que se desea una supresión inmune (que incluye, por ejemplo,
trasplante de órgano), también puede ser tratable utilizando una
proteína descrita.
También el ADN de MU-1 mapea el
lugar cromosómico para la enfermedad de Crohn. Como un resultado,
las proteínas MU-1 Se pueden utilizar para tratar
la enfermedad de Crohn y otras enfermedades inflamatorias del
intestino.
Utilizando las proteínas MU-1
descritas aquí también puede ser posible regular respuestas inmunes
en un número de formas. La subregulación puede ser de la forma de
inhibición o bloqueo de una respuesta inmune ya en progreso o puede
involucrar evitar la inducción de una respuesta inmune. Las
funciones de células T activadas se pueden inhibir al suprimir las
respuestas de célula T o al inducir tolerancia específica en células
T, o ambos. La inmuno supresión de respuestas de célula T es
generalmente un proceso específico- no antígeno, activo que
requiere exposición continua de las células T al agente supresor. La
tolerancia, que involucra inducir no receptividad o anergia en
células T, es distinguible de inmuno supresión en que este
generalmente es antígeno específico y persiste después que ha
cesado la exposición al agente tolerizante. La tolerancia
operacional se puede demostrar por la falta de una respuesta de
célula T luego de reexposición a antígeno específico en la ausencia
de un agente tolerante.
La subregulación o prevención de una o más
funciones de antígeno (que incluye sin limitación funciones de
antígeno de linfocito B (tal como, por ejemplo, B7)), por ejemplo,
evitar la síntesis de lifnoquina de alto nivel por células T
activadas, será útil en situaciones de transplante de tejido, piel y
órgano y enfermedad de huésped vs. injerto (GVHD). Por ejemplo, el
bloqueo de la función de célula T debe resultar en reducción de
tejido en transplante de tejido. Típicamente, en transplantes de
tejido, el rechazo del transplante se inicia a través de su
reconocimiento como extraño para las células T, seguido por una
reacción inmune que destruye el transplante. La administración de
una molécula que exhibe o bloquea la interacción de un antígeno de
linfocito B7 con sus ligandos naturales sobre células inmunes (tal
como una forma monomérica soluble de un péptido que tiene actividad
D7-2 sola o en conjunto con una formo monomérica de
péptido que tiene una actividad de otro antígeno de linfocito B
(por ejemplo, B7-1, B7-3) o
anticuerpo de bloqueo), antes que el transplante puede conducir a
la unión de la molécula a los ligandos naturales sobre las células
inmunes sin transmitir la correspondiente señal coestimuladora. El
bloqueo de la función de antígeno de linfocito B en esta materia
evita la síntesis de citoquina por células inmunes, tal como células
T, y actúa así como un inmuno supresor. Más aún, la falta de
coestimulación también puede ser suficiente para energizar las
células T, induciendo por lo tanto tolerancia en un sujeto. La
inducción de tolerancia a largo plazo por reactivos que bloquean
antígeno de linfocito B puede evitar la necesidad de administración
repetida de estos reactivos de bloqueo. Para alcanzar inmuno
supresión o tolerancia suficiente en un sujeto, también puede ser
necesario bloquear la función de una combinación de antígeno de
linfocito B.
\newpage
La eficacia de reactivos de bloque particular en
prevenir el rechazo de transplante de órgano o GVHD se puede
evaluar utilizando modelos animales que son predictivos de la
eficacia en humanos. Ejemplos de sistemas apropiados que se pueden
utilizar incluyen injertos cardiacos halogénicos en ratas e injertos
de células islote pancreáticas xenogénicas en ratones, ambas de las
cuales se han utilizado para examinar los efectos inmuno supresores
de proteínas de fusión CTLA4Ig in vivo como se describe en
Lenschow et al., Science 257:789-792 (1992)
and Turka et al., proc. Natl. Acad. Sci. USA,
89-11102-11105 (1992).
Adicionalmente, los modelos de murino de GVHD (ver Paul Ed.,
Fundamental Inmunology, Raven Press, New York, 1989,
pp.846-847) se puede utilizar para determinar el
efecto de bloque de la función de antígeno de linfocito de in
vivo sobre el desarrollo de esa enfermedad.
La función de antígeno de bloqueo también puede
ser terapéuticamente útil para tratar enfermedades autoinmunes.
Muchos trastornos autoinmunes son el resultado de una activación
inapropiada de células T que son reactivas contra el propio tejido
y que promueven la producción de citoquinas y auto anticuerpos
involucrados en la patología de las enfermedades. La prevención de
la activación de las células T autoreactivas puede reducir o
eliminar síntomas de la enfermedad. La administración de reactivos
que bloquean la coestimulación de células T al interrumpir las
interacciones del receptor: ligando de antígenos de linfocito B se
pueden utilizar para inhibir la activación de células T y evitar la
producción la producción de anticuerpos o citoquinas derivadas de
células T que pueden estar involucradas en el proceso de la
enfermedad. Adicionalmente, bloquear reactivos puede inducir la
tolerancia específica de antígeno de células T auto reactivas que
puede conducir a alivio a largo plazo de la enfermedad. La eficacia
de reactivas de reactivos de bloqueo en la prevención o mejora de
trastornos autoinmunes se puede determinar utilizando un número de
modelos animales bien caracterizados de enfermedades autoinmunes
humanas. Ejemplos incluyen encefalitis autoinmune experimenta. De
murino, lupus heritematoso sistémico en ratones MRL/IPR/IPR o
ratones en el ZB híbridos, artritis colágeno autoinmune de murino,
diabetes mellitus en ratones NOD y ratas BB, y miastenia gravis
experimental en murino (ver Paul Ed., Fundamental Inmunology, Raven
Press, New York, 1989, pp.841-856).
La sobre regulación de una función de antígeno
(preferiblemente una función de antígeno de linfocito B), como un
medio de sobre regulación de respuesta inmune, también puede ser
útil en terapia. La sobre regulación de respuesta inmune puede
estar en la forma de mejoramiento de una respuesta inmune existente
o elicitar una respuesta inmune inicial. Por ejemplo, mejorar una
respuesta inmune a través de estimular la función de antígeno de
linfocito B que puede ser útil en casos de infección viral.
Adicionalmente, las enfermedades virales sistémicas tal como
influenza, el resfriado común y la encefalitis se puede aliviar
mediante la administración de formas estimuladoras de
sistémicamente antígenos de linfocito B.
Alternativamente, una respuesta inmune anti
viral se puede mejorar en un paciente infectado al remover células
T del paciente, coestimular las células T in Vitro con APC
impulsado por antígeno viral ya sea expresando un péptido
MU-1 o junto con una forma estimuladora de un
péptido soluble descrito aquí y reintroducir las células T
activadas in Vitro en el paciente. Otro método de mejorar la
respuesta inmune anti viral podría ser aislar células infectadas de
un paciente, transfectarlas con un ácido nucleico que codifica una
proteína como se describe aquí de tal forma que las células
expresan todo o una porción de la proteína sobre su superficie y
reintroducir las células transfectadas en el paciente. Las células
infectadas serían ahora capaces de suministrar una señal
coestimuladora A, y por lo tanto activar, células T in
vivo.
En otra aplicación la sobre regulación o mejora
de la función de antígeno (preferiblemente función de antígeno de
linfocito B) puede ser útil en la inducción de inmunizante tumor.
Las células de tumos (por ejemplo, sarcoma, melanoma, linfoma,
leucemia, neuroblastoma, carcinoma) transfectadas con un ácido
nucleico que codifica al menos péptido de la presente invención se
puede administrar a un sujeto para superar la tolerancia específica
de tumor en el sujeto. Si se desea, la célula de tumor se puede
transfectar para expresar una combinación de péptidos. Por ejemplo,
las células de tumor obtenidas de un paciente se pueden transfectar
ex vivo con un vector que dirige la expresión de un péptido
que tiene solo actividad similar a B7-2, o en
conjunto con un péptido que tiene actividad similar a
B7-1 y/o actividad similar B7-3. Las
células de tumor transfectadas se regresan al paciente para
resultar en la expresión del péptido sobre la superficie de las
células transfectadas. Alternativamente, las técnicas de terapia de
gen se pueden utilizar para objetivar una célula de tumor para
transfección in vivo.
La presencia del péptido descrito que tiene la
actividad de un antígeno linfocito B sobre la superficie de la
célula de tumor suministra la señal de coestimulación necesaria para
las células T para inducir una respuesta inmune mediada por célula T
contra las células de tumor transfecta. Adicionalmente, las células
de tumor que les falta las moléculas MHC clase 1 o MHC clase ii, o
que les falta reexpresar cantidades suficientes de moléculas MHC
clase i o MHC clase ii, se pueden transfectar con ácidos nucleicos
que codifican todo o una porción de (por ejemplo, una porción
truncada del dominio citoplásmico) de una proteína de cadena
\alpha MHC clase i, y proteína de micro globulina \beta_{2} o
una proteína de cadena MHC clase ii \alpha y una proteína de
\beta MHC clase ii para expresar por lo tanto las proteínas MHC
clase i o MHC clase ii de la superficie celular. La expresión de la
clase i apropiada o clase ii MHC en conjunto con un péptido que
tiene la actividad de un antígeno de linfocito B (por ejemplo
B7-1, B7-2, B7-3)
induce una respuesta inmune mediada por célula T contra la célula de
tumor transfectada. Opcionalmente, un gen que codifica una
construcción anti sentido que bloquea la expresión de una proteína
asociada con MHC clase ii, tal como la cadena invariante, también
cotransfectada con ADN que codifica un péptido que tiene la
actividad de un antígeno linfocito B para promover la presentación
de antígenos asociados con tumores e inducir la inmunidad específica
de tumor. Así, la inducción con una respuesta inmune mediada por
célula T en un sujeto humano ser suficiente para superar la
tolerancia específica de tumor en el sujeto.
La actividad de una proteína descrita puede,
entre otras significar, ser medida por los siguientes métodos:
Ensayos adecuados para citotoxicidad de timosito
o esplenocito que incluye, sin limitación, aquellas descritas en:
Current Protocols in Immunology, Ed by J. E. Coligan, A. M.
Kruisbeek, D. H. Margulies, E. M. Shevach, W Strober, Pub. Greene
Publishing Associates and Wiley-Interscience
(Chapter 3, In Vitro assays for Mouse Lymphocyte Function
3.1-3.19; Chapter 7, Immunologic studies in Humans);
Herrmann et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA
78:2488-2492, 1981; Herrmann et al., J.
Immunol. 128:1968-1974, 1982; Handa et al.,
J. Immunol. 135:1564-1572, 1985; Takai et
al., J. Immunol. 137:3494-3500, 1986; Takai
et al., J. Immunol. 140:508-512, 1988;
Herrmann et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 78:
2488-2492, 1981; Herrmann et al., J. Immunol.
128:1968-1974, 1982; Handa et al., J.
Immunol. 135:1564-1572, 1985; Takai et al.,
J. Immunol. 137:3494-3500, 1986; Bowman et
al., J. Virology 61:1992-1998; Takai et
al., J. Immunol. 140:508-512, 1988; Bertagnolli
et al., Cellular Immunology 133:327-341,
1991; Brown et al., J. Immunol.
153:3079-3092, 1994.
Ensayos para respuestas de inmunoglobulina
dependientes de célula T y conmutación de isotipos (que
identificarán entre otras proteínas que modulan las respuestas de
anticuerpos dependientes de células dependientes de T y que afectan
los perfiles Th1/Th2) incluyen, sin limitación aquellas descritas
en: Maliszewski, J. Immunol. 144:3028-3033, 1990;
and Assays for B cell function: In vitro antibody production,
Mond, J. J. and Brunswick, M. In Current Protocols in Immunology. J.
E. e. a. Coligan eds. Vol 1 pp. 3.8.1-3.8.16, John
Wiley and Sons, Toronto. 1994.
Los ensayos de reacción de linfocitos mezclados
(MLR) (que identificarán, entre otros las proteínas que generan
predominantemente las respuestas Th1 y CTL) incluyen, sin
limitación, aquellas descritas en: Current Protocols in Immunology,
Ed by J. E. Coligan, A. M. Kruisbeek, D. H. Margulies, E. M.
Shevach, W Strober, Pub. Greene Publishing Associates and
Wiley-Interscience (Chapter 3, In Vitro
assays for Mouse Lymphocyte Function 3.1-3.19;
Chapter 7, Immunologic studies in Humans); Takai et al., J.
Immunol. 137:3494-3500, 1986; Takai et al.,
J. Immunol. 140:508-512, 1988; Bertagnolli et
al., J. Immunol. 149:3778-3783, 1992.
Los ensayos dependientes de células dendríticas
(que identificarán, entre otros proteínas expresadas por células
dendríticas que activan células T naive) incluyen, sin limitación
aquellas descritas en: Guery et al., J. Immunol.
134:536-544,1995; Inaba et al., Journal of
Experimental Medicine 173:549-559, 1991; Macatonia
et al., Journal of Immunology
154:5071-5079,1995; Porgador et al., Journal
of Experimental Medicine 182:255-260, 1995; Nair
et al., Journal of Virology
67:4062-4069,1993; Huang et al., Science
264:961-965, 1994; Macatonia et al., Journal
of Experimental Medicine 169:1255-1264, 1989;
Bhardwaj et al., Journal of Clinical Investigation
94:797-807, 1994; y Inaba et al., Journal of
Experimental Medicine 172:631-640, 1990.
Ensayos para supervivencia de
linfocitos/apoptosis (que identificarán, entre otros, proteínas que
evitan la apoptosis después de inducción de superantígeno y
proteínas que regulan la homeostasis de linfocitos) incluyen, sin
limitación, aquellas descritas en: Darzynkiewicz et al.,
Cytometry 13:795-808, 1992; Gorczyca et al.,
Leukemia 7:659-670, 1993; Gorczyca et al.,
Cancer Research 53:1945-1951, 1993; Itoh et
al., Cell 66:233-243, 1991; Zacharchuk, Journal
of Immunology 145:4037-4045, 1990; Zamai et
al., Cytometry 14:891-897, 1993; Gorczyca et
al., International Journal of Oncology
1:639-648, 1992.
Ensayos para proteínas que influencian etapas
anteriores que incluyen desarrollo y compromiso de célula T sin
limitación, aquellas descritas en: Antica et al., Blood
84:111-117, 1994; Fine et al., Cellular
Immunology 155:111-122, 1994; Galy et al.,
Blood 85:2770-2778, 1995; Toki et al., Proc.
Nat. Acad Sci. USA 88:7548-7551, 1991.
Las moléculas MU-1 de la
presente invención también están involucradas en la modulación de la
actividad STAT, por ejemplo, señalización (por ejemplo, a través de
la interacción con moléculas STAT, por ejemplo, STAT 3 y/o STAT 5, y
modulación de fosforilación de STAT). Los moduladores de la
señalización STAT y los moduladores de de interacción
MU-1 con las moléculas STAT se pueden identificar a
través de ensayos de selección como se describe aquí.
Los ensayos que se pueden utilizar para
identificar moduladores de la actividad MU-1
incluyen ensayos para la actividad STAT, por ejemplo, señalización
STAT, tal como ensayos conocidos en la técnica y ensayos descritos
aquí. Ensayos para la actividad STAT también se describen en, por
ejemplo, Friedrich K, et al. (2001) Biol Chem 382
(2):343-51. Otros ensayos para la actividad STAT
incluyen ensayos para proliferación celular y fosforilación
STAT.
En un aspecto de la invención, se determina un
ensayo para un modulador de actividad MU-1 es un
ensayo basado en células en el que una célula que expresa una
proteína MU-1 o porción biológicamente activa de
esta se conecta con un compuesto de ensayo y la capacidad del
compuesto de ensayo para modular la actividad MU-1
(por ejemplo, interacción con moléculas STAT o modulación de
señalización STAT). Determinar la capacidad del compuesto de ensayo
para modular la actividad MU-1 se puede lograr al
monitorear, por ejemplo, la señalización STAT, la fosforilación de
las moléculas STAT, proliferación celular, diferenciación celular o
producción de citoquinas. La célula, por ejemplo, puede ser de
origen de mamífero, por ejemplo, una célula T activada.
Una proteína MU-1 puede ser útil
en la regulación de hematopoyesis y, posteriormente, en el
tratamiento de deficiencia celular mieloide o linfoide. Aún la
actividad biológica marginal en apoyo de las células formadoras de
colonia o líneas celulares dependientes de factor indican el
involucramiento en la regulación de la hematopoyesis, por ejemplo
en apoyar el crecimiento y proliferación de células progenitoras
eritroides solas o en combinación con otras citoquinas, indicando
por lo tanto la utilidad, por ejemplo, en el tratamiento de varias
anemias o para uso en conjunto con una irradiación/quimioterapia
para estimular la producción de precursores eritroides y/o células
eritroides; en apoyar el crecimiento y proliferación de células
mieloides tales como granulocitos y monocitos/mácrofagos (es decir,
actividad CSF tradicional) útil, por ejemplo, en conjunto con
quimioterapia para evitar o tratar posterior
mielo-supresión; en apoyar el crecimiento y
proliferación de megacariocitos y posteriormente de plaquetas
permitiendo por lo tanto la prevención y tratamiento de varios
trastornos de plaquetas tal como trombocitopenia, y generalmente
para uso en lugar de o complementariamente con transfusión de
plaquetas; y/o en apoyar el crecimiento y proliferación de células
madre hematopoyéticas que son capaces de madurar para cualquiera y
todas la células hematopoyéticas mencionadas anteriormente y por lo
tanto hallar la utilidad terapéutica en varios trastornos de
células madre (tal como aquellos usualmente tratados con
transplante, que incluyen, sin limitación anemia aplasica y
hemonoglobinuria nocturna paroximal), así como también en repoblar
el compartimiento de célula madre post irradiación/quimioterapia, ya
sea in vivo o ex-vivo (es decir, en
conjunto con transplante de medula ósea o con transplante de célula
de progenitor periférico (homologa o Heteróloga)) como células
normales o manipuladas genéticamente para terapia de gen.
La actividad de la proteína MU-1
puede, entre otras significar, ser medido por los siguientes
métodos:
Ensayos adecuados para proliferación y
diferenciación de varias líneas hematopoyéticas se cita
anteriormente.
Ensayos de diferenciación de células de tallo
embriónico (que identificarán, entre otros, proteínas que
influencian la hematopoyesis de diferenciación embrionica) incluyen,
sin limitación, aquellas descritas en: Johansson et al.
Cellular Biology 15:141-151, 1995; Keller et
al., Molecular and Cellular Biology 13:473-486,
1993; McClanahan et al., Blood 81:2903-2915,
1993.
Ensayos para supervivencia y diferenciación de
célula madre (que identificarán, entre otros, proteínas que regulan
la linfo-hematopoyesis) incluyen, sin limitación,
aquellas descritas en: Methylcellulose colony forming assays,
Freshney, M. G. In Culture of Hematopoietic Cells. R. I. Freshney,
et al. eds. Vol pp. 265-268,
Wiley-Liss, Inc., New York, NY. 1994; Hirayama
et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA
89:5907-5911, 1992; Primitive hematopoietic colony
forming cells with high proliferative potential, McNiece, I. K. and
Briddell, R. A. In Culture of Hematopoietic Cells. R. I. Freshney,
et al. eds. Vol pp. 23-39,
Wiley-Liss, Inc., New York, NY. 1994; Neben et
al., Experimental Hematology 22:353-359, 1994;
Cobblestone area forming cell assay, Ploemacher, R. E. In Culture of
hematopoietic Cells. R. I. Freshney, et al. eds. Vol pp.
1-21, Wiley-Liss, Inc., New York,
NY. 1994; Long term bone marrow cultures in the presence of stromal
cells, Spooncer, E., Dexter, M. and Allen, T. In Culture of
Hematopoietic Cells. R. I. Freshney, et al. eds. Vol pp.
163-179, Wiley-Liss, Inc., New York,
NY. 1994; Long term culture initiating cell assay, Sutherland, H. J.
In Culture of Hematopoietic Cells. R. I. Freshney, et al.
eds. Vol pp. 139-162, Wiley-Liss,
Inc., New York, NY. 1994.
Los polinucleótidos descritos aquí se pueden
utilizar por la comunidad investigadora para varios propósitos. Los
polinucleótidos se pueden utilizar para expresar proteínas
recombinantes para análisis, caracterización o uso terapéutico;
como marcadores para tejidos en el que la proteína correspondiente
se expresa preferencialmente (sea constitutivamente o en una etapa
particular de diferenciación de tejidos o desarrollo en estados de
la enfermedad); como marcadores de peso molecular en geles
Southern; como marcadores de cromosomas o etiquetas (cuando se
marca) para identificar cromosomas o mapear posiciones de gen
relacionados; para comparar con secuencias de ADN endógeno en
pacientes para identificar los trastornos genéticos potenciales;
como sondas para hibridizar y así descubrir secuencias de ADN
relacionadas; como una fuente de información para derivar
iniciadores PRC para huellas genéticas; como una sonda para
"sustraer" secuencias conocidas en el proceso de descubrir
otros polinucleótidos novedosos; para seleccionar y hacer
oligómeros para unir a un "chip de gen" u otro soporte, que
incluye examen de patrones de expresión; elevar anticuerpos
anti-proteína utilizando técnicas de inmunización
de ADN; y como un antígeno para elevar anticuerpos
anti-ADN o elicitar otra respuesta inmune. En donde
el polinucleótido codifica una proteína que une o une
potencialmente a otra proteína (tal como, por ejemplo, en una
interacción ligando-receptor), el polinucleótido
también se puede utilizar en ensayo de trampa de interacción (tal
como, por ejemplo, aquella descrita Gyuris et al., Cell
75:791-803 (1993)) para identificar polinucleótidos
que codifican la otra proteína con la que la unión ocurre o para
identificar inhibidores de a interacción de unión.
Las proteínas descritas aquí se pueden utilizar
similarmente en ensayos para determinar la actividad biológica, que
incluye en un panel de múltiples proteínas para selección de alto
rendimiento; elevar anticuerpos o elicitar otra respuesta inmune;
como un reactivo (que incluye un reactivo marcado) en ensayos
diseñados para determinar cuantitativamente niveles de la proteína
(o su receptor) en fluidos biológicos; como marcadores para tejidos
en los que la proteína correspondiente se expresa preferencialmente
(sea constitutivamente o en una etapa particular de diferenciación
de tejido o desarrollo o en un estado de enfermedad); y, por
supuesto, aislar receptores correlacionados o ligandos. En donde la
proteína une o une potencialmente a otra proteína (tal como, por
ejemplo, en una interacción ligando-receptor), la
proteína se puede utilizar para identificar la otra proteína con la
que ocurre la unión o para identificar inhibidores de interacción de
unión. Las proteínas involucradas en estas interacciones de unión
también se pueden utilizar para seleccionar péptidos o inhibidores
de moléculas pequeñas o agonistas de la interacción de unión.
Cualquiera o todas estas utilidades de
investigación son capaces de ser desarrolladas en grado reactivo o
formato de kit para comercialización como productos de
investigación.
Los métodos para desarrollar los usos listados
anteriormente son bien conocidos por aquellos expertos en la
técnica. Las referencias que describen tales métodos incluyen sin
limitación "Molecular Cloning: A Laboratory Manual", 2d ed.,
Cold Spring Harbor Laboratory Press, Sambrook, J., E. F. Fritsch and
T. Maniatis eds., 1989, and "Methods in Enzymology: Guide to
Molecular Cloning Techniques", Academic Press, Berger, S'L. and
A. R. Kimmel eds., 1987.
Los polinucleótidos y proteínas descritos aquí
también se pueden utilizar como fuentes o suplementos nutricionales.
Tales usos incluyen sin limitación uso como una proteína o
suplemento de aminoácido, uso como una fuente de carbono, uso como
una fuente de nitrógeno y uso como una fuente de carbohidratos. En
tales casos la proteína o poli nucleótido de la invención se puede
agregar a la alimentación de un organismo particular o se puede
administrar como un sólido separado o preparación líquida, tal como
en la forma de polvos, píldoras, soluciones, suspensiones o
cápsulas. En el caso de microorganismos, la proteína o poli
nucleótido se puede agregar al medio en o sobre lo que se cultiva
el microorganismo.
Las proteínas MU-1 también se
pueden utilizar para inmunizar animales para obtener anticuerpos
poli clonales y monoclonales que reaccionan específicamente con la
proteína MU-1 y que pueden inhibir la unión de
ligandos al receptor. Tales anti cuerpos se pueden obtener
utilizando MU-1 completo como un inmunógeno, o al
utilizar fragmentos de MU-1. Los fragmentos más
pequeños del MU-1 también se pueden utilizar para
inmunizar animales. Los inmunógenos de péptido adicionalmente
pueden contener un residuo cisteína en el terminal carboxilo y se
conjugan con un hapteno tal como hemocianina de lapa de ojo de
cerradura (kLH). Inmunógenos de péptidos adicionales se pueden
generar al reemplazar los residuos de tiroxina con residuos de
tiroxina sulfatados. Métodos para sintetizar tales péptidos se
conocen en la técnica, por ejemplo, como en RP. Merrifield, J. Amer.
Chem. Soc. 85, 2149-2154 (1963); J. L. Krstenansky,
et al., FEBS Lett. 211,10 (1987).
La unión de anticuerpos neutralizantes o no
neutralizantes (preferiblemente anticuerpo monoclonales) a la
proteína MU-1 también pueden ser terapéuticos útiles
para ciertos tumores y también en el tratamiento de condiciones
descritas anteriormente. Estos anti cuerpos mono clonales
neutralizantes pueden ser capaces de bloquear uniones de ligando a
la cadena del receptor MU-1.
Esta invención se ilustra adicionalmente por los
siguientes ejemplos que no se deben constituir como
limitan-
tes.
tes.
Un fragmento parcial del homólogo de murino del
receptor MU-1 se aísla por PCR utilizando
oligonucleótidos derivados de la secuencia humana. El cADN se
prepara a partir de ARN aislado de 17 días de timo de murino y de
línea de células T 2D6 de murino. Un fragmento de ADN de
aproximadamente 300 nucleótidos se amplifica a partir de cADN por
PCR con los siguientes oligonucleótidos, que corresponden a las
regiones 584-603 y 876-896,
respectivamente, de la secuencia de cADN humana en la figura 1 (que
corresponde a la SEQ ID número 1):
AGCATCAAGC CGGCTCCCCC (5p) | (SEQ ID NO: 11) | |
CTCCATTCAC TCCAGGTCCC (3p) | (SEQ ID NO: 12) |
La amplificación se lleva a cabo utilizando
polimeriaza Taq en amortiguador 1 x Taq que contiene 1.5 mM de
cloruro de magnesio durante 30 ciclos a 94°C durante un minuto, 50°C
durante 1 minuto, y 72°C durante un minuto. La secuencia de ADN de
este fragmento se determina y se derivan dos oligonucleótidos a
partir de una porción interna de este fragmento con las siguientes
secuencias:
TTGAACGTGACTGTGGCCTT (5p) | (SEQ ID NO: 13) | |
TGAATGAAGTGCCTGGCTGA (3p) | (SEQ ID NO: 14) |
Se utilizan oligonucleótidos para amplificar un
fragmento de nucleótido interno 262 de producto PCR original (que
corresponde a los nucleótidos 781-1043 en la
secuencia de cADN de murino de la figura 1 y la SEQ ID número 9)
para usar como la sonda de hibridización para seleccionar una
librería de cADN aislada de la línea de célula T 2D6. Los filtros se
hibridizan a 65°C utilizando condiciones de hibridización 5 X SSC y
se lavan en SSC a 65°C. Se aíslan 20 clones que hibridizan la sonda
en una selección de 426,000 clones. Se determina la secuencia de ADN
de dos clones independientes. La secuencia de longitud completa del
clon #6 confirma que este es el homólogo de murino de longitud
completa del MU-1 (SEQ ID NO: 9).
La secuencia de nucleótido de longitud completa
de MU-1 de murino se muestra en la figura 1 (que
corresponde a la SEQ ID número 9). La secuencia de nucleótido
tiene una secuencia líder predicha en los nucleótidos
407-464, que codifican la secuencia en los
nucleótidos 407-1993, codón de terminación en los
nucleótidos 1994 y 1997. Los nucleótidos 1-406
corresponden a la región 5' no traducida y los nucleótidos
1998-2628 corresponden a la región 3' no
traducida.
La secuencia de proteína predicha de
MU-1 de murino se muestra en la figura 2 (que
corresponde SEQ ID NO: 10). Esta proteína MU-1 de
murino contiene una secuencia líder predicha determinada por SP scan
(clasificación = 10.1) que corresponde a los aminoácidos
1-19 de la SEQ ID número 10), y el dominio de
transmembrana predicho (que corresponde a los aminoácidos
237-253 de la SEQ ID NO: 10). Los motivos de
señalización predichos incluyen las siguientes regiones: casilla 1:
aminoácidos 265-274 de la SEQ ID NO: 10, casilla
2: aminoácidos 310-324 de la SEQ ID NO: 10, seis
residuos de tiroxina en las posiciones 281,319,361,368,397, y 510 de
la SEQ ID NO: 10. Sitios de acoplamiento STAT potenciales incluyen:
STAT5 : EDDGYPA, STAT 3: YLQR.
El algoritmo GAP se utiliza para comparar los
aminoácidos MU-1 de murino y humano. Se muestra en
la figura 4 una comparación de las secuencias de proteína predichas
humana y de murino. Los aminoácidos son 65.267% idéntico utilizando
el algoritmo GAP. La alineación se genera mediante la matriz de
sustitución de aminoácidos BLOSUM62 (Henikoff, S. and Henikoff, J.
G. (1992)). Matrices de sustitución de aminoácidos de bloques de
proteína (Proc. Natl. Acad. Sci. USA
89:10915-10919). Parámetros Gap = peso Gap: 8,
promedio de case = 2.912, Peso Longitud = 2, promedio desfase =
-2.003. Porcentaje de similitud = 69.466.
Se muestra en la figura 3 una comparación de las
secuencias de nucleótido cADN de murino y humano. Las secuencias de
ADN son 66.116% idénticas cuando se alinean utilizando el algoritmo
GAP. Parámetros GAP: peso GAP = 50, promedio de case = 10. 000, peso
longitud = 3, promedio desfase = 0.000. Porcentaje de similitud =
66.198.
Las proteínas MU-1 humanas y de
ratón son miembros de la súper familia del receptor de citoquina
tipo 1. La evaluación de la secuencia del MU-1
humano y de murino revela la presencia de los motivos de
señalización de casilla -1 y casilla -2 potenciales. Se presentan
seis residuos de tiroxina en el dominio citoplásmico, y también
puede ser importante en funciones de señalización de
MU-1. Comparación de las secuencias
MU-1 con otros miembros de la familia sugiere la
presencia de sitios de acoplamiento potenciales para STAT5 y
STAT3.
Se construyen con ingeniería células
BAF-3 para expresar un receptor de citoquina
quimérico que consiste del dominio extra celular del receptor EPO
humano y el dominio intracelular del receptor MU-1.
Las células BAF-3 que expresan los receptores
quiméricos HUEPOR/MU-1 (cito) quiméricos proliferan
es respuesta al EPO soluble humano. Estas células se analizan para
determinar que las moléculas STAT se fosforilan en respuesta a la
señalización EPO. En resumen, las células BAF-3
parientes no modificadas de control y las células
BAF-3 quiméricas EPOR/MU están en descanso a partir
del medio de crecimiento que contiene IL-3, y se
reestimulan con IL-3 o EPO durante 0.15, 30 y 60
minutos. Las células se agrupan y resuspenden en amortiguador de
lisis de hielo frío que contiene ortovanadato, para preservar las
pirosinas fosforiladas. Cantidades iguales de lisato celular se
electroforan mediante SDS-PAG, y se marcan en
membranas de nitro celulosa para análisis western. Los blot
duplicados se tiñen para fosforilado y las formas no fosforiladas de
STAT 1, 3, 5, y 6 al utilizar anticuerpos específicos para forma de
la molécula STAT. Las células HELA, activadas y no activadas con
interferón alfa se utilizan como controles positivos
Estos resultados indican que bajo estas
condiciones específicas, la señalización a través MU- 1 resulta en
la fosforilación del STAT 5 en todos los puntos de tiempo ensayados
(T = 0, T = 15', T = 30', T = 60'). Los tratamientos de controles de
las células BAF-3 quiméricas con
IL-3 resultan en la fosforilación del STAT 3, pero
no en STAT 1 o 5.
Se desarrollan Northern blots de polyA+ ARN de
varios tejidos (Clonetech, Palo Alto, CA) según se recomienda por
el fabricante. Para los blots de murino, un fragmento de nucleótido
262 que corresponde a los nucleótidos 781-1043 de
la Figura. 1 y SEQ ID NO: 9 se utiliza para hibridización.
Una trascripción única de MU-1
de murino se detecta en tejidos de bazo, pulmón, y corazón de murino
adulto. La mayor trascripción se observa en tejidos humanos que no
se observa en tejidos de ratón.
Dos transcripciones de MU-1
humano se detectan en tejidos linfoides de humano adulto, PBL, timo,
bazo y nodo linfático, en pulmón fetal.
Los estudios de hibridización in situ se
desarrollan por Phylogency Inc. de Columbus, OH (de acuerdo con el
método de Lyons et. al., 1990, J. Cell. Biol:
111:2427-2436.). En resumen, se desparafinizan
secciones de 5-7 micrones de parafina, se fijan y
se digieren con proteínaza K, se tratan con
tri-etalonamina y se deshidratan. El cARN se
prepara a partir de plantillas de cADN linearizado para generar
sondas anti sentido y sentido. Se sintetizan transcripciones de
cRNA de acuerdo con las condiciones del fabricante (Ambion) y se
etiquetan con 35S-UTP. La secciones se hibridizan
durante la noche, se lavan en forma estricta y se tratan con ARNasa
A y se sumerge en emulsión de rastro nuclear y se expone durante
2-3 semanas. Las secciones de control se hibridizan
con sondas de sentido e indican el nivel de fondo del procedimiento.
La sonda de murino consiste de un fragmento de 186bp que
corresponde a 860-1064 nucleótidos (SEQ ID NO: 9).
La sonda humana es un producto PCR 231bp generado de ADN
MU-1 humano.
Se observa expresión MU-1 de
murino en nodos linfáticos de intestino delgado de adulto en centros
germinales y externos musculares. Modos linfáticos especializados y
parches de Peyers también exhiben expresión MU-1 de
murino.
Se detecta la expresión MU-1
humano en centros germinales de los módulos linfáticos en la
corteza. La medula que contiene macrófagos, es negativa para
MU-1 en el bazo se detecta la expresión
MU-1 humano en las regiones de pulpa blanca pero no
pulpa roja.
Se desarrolla análisis de protección RNAsa en
células T humanas activas y en descanso las líneas de células B, y
RPMI 8866, y las líneas celular T Jurkat. Se activan células T
humanas con anti-CD3 y anti-CD28.
Las líneas celulares se activan por éster de forbol e ionomizina. Se
construye el plásmido que produce el MU-10 ribosonda
al insertar un producto PCR 231bp (PCR se desarrollo al utilizar el
inicializador 5' CACAAAGCTTCAGTATGAGCTGCAG
TACAGGAACCGGGGA (SEQ TD NO: 15) y el iniciador 3' CACAGGATCCCTTTAACTCCTCTGACTGGGTCT
GAAAGAT (SEQ ID NO: 16) en los sitios BamH1 y Hindi del pGEM3zf (-) (promega, Madison, WI) vector. Para hacer la ribosonda, el plásmido que produce ribosonda se linealiza con Hindi III el ADN resultante se extrae con fenol/cloroformo y se precipita con etanol. Se utiliza polimerasa de ARN T7 para hacer la ribosonda de acuerdo con el protocolo sugerido por el vendedor (PharMingen, San Diego, CA). Se desarrolla el ensayo de protección RNsa al utilizar en el sistema de ensayo de protección de Ribonucleasa Multi-sonda RiboQuant de PharMingen 2.0 ug del ARN total se incluye en cada reacción RTA, después de digestión de ANA, las ribosondas protegidas se corren en un sistema de separación de ácido nucleico rápido Quick Point (Novex, San Diego, Ca).los geles se secan y se exponen de acuerdo con la sugerencia del vendedor.
TACAGGAACCGGGGA (SEQ TD NO: 15) y el iniciador 3' CACAGGATCCCTTTAACTCCTCTGACTGGGTCT
GAAAGAT (SEQ ID NO: 16) en los sitios BamH1 y Hindi del pGEM3zf (-) (promega, Madison, WI) vector. Para hacer la ribosonda, el plásmido que produce ribosonda se linealiza con Hindi III el ADN resultante se extrae con fenol/cloroformo y se precipita con etanol. Se utiliza polimerasa de ARN T7 para hacer la ribosonda de acuerdo con el protocolo sugerido por el vendedor (PharMingen, San Diego, CA). Se desarrolla el ensayo de protección RNsa al utilizar en el sistema de ensayo de protección de Ribonucleasa Multi-sonda RiboQuant de PharMingen 2.0 ug del ARN total se incluye en cada reacción RTA, después de digestión de ANA, las ribosondas protegidas se corren en un sistema de separación de ácido nucleico rápido Quick Point (Novex, San Diego, Ca).los geles se secan y se exponen de acuerdo con la sugerencia del vendedor.
El ARN MU-1 humano se sobre
regula en células CD3 purificadas humanas estimuladas anti-
CD3+anti-CD28 cuando se comparan con poblaciones no
estimuladas. El MU-1 también se sobre regula sobre
la reestipulación en poblaciones de células T TH y Th2 skewed. Las
líneas de células B, RPMI 8866 y Raji, expresan consecutivamente
MU-1 mientras que las líneas de células de Jurkat
no lo hacen.
Se construyen proteínas de fusión Og de murino y
humano y se simbolizan en Chips Biacore en un esfuerzo por
identificar el ligando para el MU-1. Una variedad de
medios condicionados de cultivos celular así como también un panel
de citoquinas conocidas se evalúa para unir al MU-1.
Algunas citoquinas también se ensayan en combinación con otras
cadenas de receptor en la familia para considerar la posibilidad que
el MU-1 pueda requerir una segunda cadena de
receptor para unir el ligando. Las siguientes citoquinas se ensayan
y se encuentran que son negativas para la unión
MU-1: mIL-2, hIL-2,
Hil-12, Mil-7, TSLP, TSLP+IL7,
TSLP+IL7R, TSLP+IL7g, TSLP+IL-2, TSLP +IL2+IL2Rbeta,
IL2Rgamma, IL7R, IL2+2Rbeta, IL2+2Rgamma, IL15+IL+2Rbeta,
IL15+2Rgamma, IL7+2Rgamma, IL2+IL7R,
IL15+IL7R, IL7+IL7R. Receptores conocidos han sido inmovilizados así como también ensayados para unión MUFc con resultados negativos. IL-15 se une al IL2Rb pero no al IL2Rg o MUFC.
IL15+IL7R, IL7+IL7R. Receptores conocidos han sido inmovilizados así como también ensayados para unión MUFc con resultados negativos. IL-15 se une al IL2Rb pero no al IL2Rg o MUFC.
<110> Genetics, Institute, Inc., et
al.
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<120> MU-1, MIEMBRO DE LA
FAMILIA DEL RECEPTOR DE CITOQUINA
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<130> GFN-5230 CPPC
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<140>
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<141>
\vskip0.400000\baselineskip
<150> 09/569,384
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
2000-05-11
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<160> 16
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<170> PatentIn Ver. 2.0
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<210> 1
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<211> 2665
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<400> 1
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<210> 2
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<211> 538
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<212> PRT
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<213> Homo sapiens
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<400> 2
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<210> 3
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<211> 70
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<212> PRT
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<213> Homo sapiens
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<400> 3
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<210> 4
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<211> 25
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<400> 4
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\hskip-.1em\dddseqskipgagtccgagg agaaagctga tctca
\hfill25
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<210> 5
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<211> 24
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<400> 5
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\hskip-.1em\dddseqskipgaaagatgac cgggtcactc catt
\hfill24
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<210> 6
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<211> 29
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<400> 6
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\hskip-.1em\dddseqskipactcgagcta tgagctgcag gtgcgggca
\hfill29
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<210> 7
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<211> 29
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<400> 7
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\hskip-.1em\dddseqskipactcgagcta tgagctgcag gtgcgggca
\hfill29
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<210> 8
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<211> 5
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<212> PRT
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<213> Homo sapiens
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<220>
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<223> Xaa EN LA POSICIÓN 3 PUEDE SER
CUALQUIER AMINO ÁCIDO
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<400> 8
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\sa{Trp Ser Xaa Trp Ser}
\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 9
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<211> 2628
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<212> ADN
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<213> Mus musculus
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 529
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus musculus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
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<212> ADN
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<110> Genetics, Institute, Inc., et
al.
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<120> MU-1, MIEMBRO DE LA
FAMILIA DEL RECEPTOR DE CITOQUINA
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<130> GFN-5230 CPPC
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<140>
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<141>
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<150> 09/569,384
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<151>
2000-05-11
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<170> PatentIn Ver. 2.0
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<223> Xaa EN LA POSICIÓN 3 PUEDE SER
CUALQUIER AMINO ÁCIDO
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\hfill40
Claims (5)
1. Un método para identificar un compuesto
capaz de tratar un trastorno inmune que comprende ensayar la
capacidad del compuesto para modular la interacción de Polipéptido
MU-1 con una molécula STAT, identificando por lo
tanto capaz de tratar un trastorno inmune en donde el polipéptido
MU-1 es un miembro de la familia de proteína
MU-1 que tiene una secuencia de aminoácido de al
menos 65% idéntica a la secuencia de aminoácido de la SEQ ID NO: 2 o
10.
2. El método de la reivindicación 1, en
donde la molécula STAT es STAT 3 o STAT 5.
3. Un método para identificar un modulador
de la actividad MU-1 que comprende poner en contacto
una célula que expresa una proteína MU-1 de acuerdo
con la SEQ ID NO 2 o 10, o una porción de esta capaz de
interacción con las moléculas STAT, con un compuesto de ensayo y
determinar la capacidad de dicho compuesto de ensayo para modular la
interacción de dicha proteína MU-1, o dicha proteína
de este, con una molécula STAT.
4. El método de la reivindicación 3, en
donde dicha molécula es STAT es STAT 3 o STAT 5.
5. El método de la reivindicación 3 o 4 en
donde la proteína MU-1 esta de acuerdo con SEQ ID
NO: 2 y se expresa en dicha célula como una fusión del dominio
intracelular MCT-1y el dominio extracelular del
receptor EPO humano.
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