ES2274517T3 - Conjugados de peptido-quelato metalico que se unen a la somatostatina. - Google Patents
Conjugados de peptido-quelato metalico que se unen a la somatostatina. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2274517T3 ES2274517T3 ES95919827T ES95919827T ES2274517T3 ES 2274517 T3 ES2274517 T3 ES 2274517T3 ES 95919827 T ES95919827 T ES 95919827T ES 95919827 T ES95919827 T ES 95919827T ES 2274517 T3 ES2274517 T3 ES 2274517T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- reagent
- agents
- somatostatin
- composition
- reagents
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07B—GENERAL METHODS OF ORGANIC CHEMISTRY; APPARATUS THEREFOR
- C07B59/00—Introduction of isotopes of elements into organic compounds ; Labelled organic compounds per se
- C07B59/008—Peptides; Proteins
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K51/00—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo
- A61K51/02—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo characterised by the carrier, i.e. characterised by the agent or material covalently linked or complexing the radioactive nucleus
- A61K51/04—Organic compounds
- A61K51/08—Peptides, e.g. proteins, carriers being peptides, polyamino acids, proteins
- A61K51/083—Peptides, e.g. proteins, carriers being peptides, polyamino acids, proteins the peptide being octreotide or a somatostatin-receptor-binding peptide
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K51/00—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo
- A61K51/02—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo characterised by the carrier, i.e. characterised by the agent or material covalently linked or complexing the radioactive nucleus
- A61K51/04—Organic compounds
- A61K51/08—Peptides, e.g. proteins, carriers being peptides, polyamino acids, proteins
- A61K51/088—Peptides, e.g. proteins, carriers being peptides, polyamino acids, proteins conjugates with carriers being peptides, polyamino acids or proteins
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P35/00—Antineoplastic agents
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- C07K14/575—Hormones
- C07K14/655—Somatostatins
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- C07K14/575—Hormones
- C07K14/655—Somatostatins
- C07K14/6555—Somatostatins at least 1 amino acid in D-form
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- C07K14/775—Apolipopeptides
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K7/00—Peptides having 5 to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
- C07K7/04—Linear peptides containing only normal peptide links
- C07K7/06—Linear peptides containing only normal peptide links having 5 to 11 amino acids
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K2121/00—Preparations for use in therapy
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K2123/00—Preparations for testing in vivo
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Public Health (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Optics & Photonics (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Endocrinology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Abstract
ESTA INVENCION SE REFIERE A AGENTES DE DIAGNOSTICO Y RADIODIAGNOSTICO, INCLUYENDO AGENTES DE VISUALIZACION ESCINTOGRAFICAS RADIOETIQUETADAS, Y AGENTES TERAPEUTICOS Y RADIOTERAPEUTICOS. LA INVENCION PROPORCIONA ESTOS AGENTES Y REACTIVOS PARA PREPARAR LOS AGENTES MENCIONADOS Y METODOS PARA PRODUCIR Y USAR ESTOS REACTIVOS. ESPECIFICAMENTE, LA INVENCION PROPORCIONA AGENTES DE VISUALIZACION RADIOETIQUETADOS Y AGENTES DE VISUALIZACION ETIQUETADOS NO RADIACTIVAMENTE PARA VISUALIZAR LUGARES CORPORALES DE MAMIFEROS Y REACTIVOS PARA PREPARAR ESTOS AGENTES DE VISUALIZACION. LA INVENCION TAMBIEN PROPORCIONA AGENTES TERAPEUTICOS RADIOETIQUETADOS, Y REACTIVOS Y METODOS PARA PREPARAR ESTOS AGENTES. LOS AGENTES Y REACTIVOS PROPORCIONADOS INCLUYEN UN PEPTIDO DE UNION ESPECIFICO, ENLAZADO COVALENTEMENTE A UNA MITAD CON UN COMPLEJO DE ION METALICO. SE MUESTRAN REACTIVOS, METODOS Y EQUIPOS PARA CONSEGUIR ESTOS REACTIVOS, METODOS PARA ETIQUETAR DICHOS REACTIVOS, Y METODOS PARA USAR ESTOS REACTIVOS.
Description
Conjugados de péptido-quelato
metálico que se unen a la somatostatina.
Esta invención se refiere a agentes
terapéuticos, a agentes radioterapéuticos, a agentes de
radiodiagnóstico, y a agentes de diagnóstico no radioactivos, y a
métodos para producir tales agentes de diagnóstico y terapéuticos.
La invención también se refiere a péptidos cíclicos que se unen
específicamente a receptores de somatostatina expresados en la
superficie de células de mamíferos, particularmente células de
mamíferos neoplásicas o metastásicas. La invención, en un aspecto,
se refiere a agentes formadores de imágenes grammagráficos para
formar imágenes de sitios en un cuerpo de un mamífero. A este
respecto, los agentes formadores de imágenes comprenden un péptido
de unión específica, que se une específicamente in vivo a
células que expresan el receptor de somatostatina, marcado con
tecnecio-99m (Tc-99m) vía un
resto de unión a marcador radioactivo, que forma un complejo con
Tc-99m. En otro aspecto, la invención proporciona
agentes formadores de imágenes radioyodados. La invención también
proporciona agentes terapéuticos, incluyendo agentes radioyodados,
complejos de metal radioactivo-reactivo y complejos
de metal no radioactivo-reactivo, todos los cuales
tienen utilidad terapéutica. La invención proporciona reactivos
para preparar cada una de las realizaciones de diagnóstico y
terapéuticas de los agentes de diagnóstico y terapéuticos de la
invención, las realizaciones radiomarcadas y los complejos metálicos
no radioactivos de los mismos, métodos para radiomarcar dichos
reactivos, y kits que comprenden realizaciones no radioactivas de
los reactivos de la invención, y otros componentes
para la preparación conveniente de agentes de diagnóstico y terapéuticos radiomarcados de la invención.
para la preparación conveniente de agentes de diagnóstico y terapéuticos radiomarcados de la invención.
La somatostatina es un tetradecapéptido que se
produce endógenamente por el hipotálamo y el páncreas en seres
humanos y otros mamíferos. El péptido tiene la fórmula:
Fórmula
I
(Se pueden encontrar abreviaturas de una sola
letra para aminoácidos en la publicación Biochemistry, de G.
Zubay (2ª ed.), 1988, (MacMillan Publishing: Nueva York), pág. 33).
Este péptido ejerce una amplia variedad de efectos biológicos in
vivo. Se sabe que actúa fisiológicamente sobre el sistema
nervioso central, el hipotálamo, el páncreas y el tubo
digestivo.
La somatostatina inhibe la liberación de
insulina y de glucagón procedentes del páncreas, inhibe la
liberación de la hormona del crecimiento procedente del hipotálamo,
y reduce las secreciones gástricas. Por lo tanto, la somatostatina
presenta aplicaciones clínicas y terapéuticas para el alivio de
cierto número de dolencias y enfermedades, tanto en seres humanos
como en otros animales. La somatostatina nativa presenta una
utilidad limitada, sin embargo, debido al corto tiempo de semivida
in vivo, en que es degradada rápidamente por peptidasas. Por
esta razón, se han desarrollado en la técnica anterior análogos de
somatostatina que presentan una estabilidad mejorada in
vivo.
Freidinger, en la patente U.S. nº 4.235.886, da
a conocer análogos de somatostatina hexapeptídicos cíclicos que son
útiles en el tratamiento de cierto número de enfermedades en seres
humanos.
Coy y Murphy, en la patente U.S. nº 4.485.101,
dan a conocer análogos de somatostatina dodecapeptídicos
sintéticos.
Freidinger, en la patente U.S. nº 4.611.054, da
a conocer análogos de somatostatina hexapeptídicos cíclicos que son
útiles en el tratamiento de cierto número de enfermedades en seres
humanos.
Nutt, en la patente U.S. nº 4.612.366, da a
conocer análogos de somatostatina hexapeptídicos cíclicos que son
útiles en el tratamiento de cierto número de enfermedades en seres
humanos.
Coy et al., en la patente U.S. nº
4.853.371, dan a conocer análogos de somatostatina octapeptídicos
sintéticos.
Coy y Murphy, en la patente U.S. nº 4.871.717,
dan a conocer análogos de somatostatina heptapeptídicos
sintéticos.
Coy et al., en la patente U.S. nº
4.904.642, dan a conocer análogos de somatostatina octapeptídicos
sintéticos.
Taylor et al., en la patente U.S. nº
5.073.541, dan a conocer un procedimiento para el tratamiento del
cáncer pulmonar microcítico.
Brady, en la Solicitud de Patente Europea nº
83111747.8, da a conocer análogos de somatostatina hexapeptídicos
dicíclicos que son útiles en el tratamiento de cierto número de
enfermedades en seres humanos.
Bauer et al., en la Solicitud de Patente
Europea nº 85810617.2, dan a conocer derivados de somatostatina que
son útiles en el tratamiento de cierto número de enfermedades en
seres humanos.
Eck y Moreau, en la Solicitud de Patente Europea
nº 90302760.5, dan a conocer análogos de somatostatina
octapeptídicos terapéuticos.
Coy y Murphy, en la Solicitud de Patente
Internacional nº PCT/US90/07074, dan a conocer análogos de
somatostatina para usos terapéuticos.
Schally et al., en la Solicitud de
Patente Europea nº EPA 911048445.2, dan a conocer péptidos cíclicos
para uso terapéutico.
Bodgen y Moreau, en la Solicitud de Patente
Internacional nº PCT/US92/01027, dan a conocer composiciones y
procedimientos para el tratamiento de enfermedades cutáneas
proliferativas.
La somatostatina ejerce sus efectos uniéndose a
receptores específicos expresados en la superficie celular de
células que constituyen el sistema nervioso central, el hipotálamo,
el páncreas y el tubo digestivo. Se ha encontrado que estos sitios
de unión de somatostatina de alta afinidad están abundantemente
expresados en la superficie celular de la mayoría de los tumores
con actividad endocrina que surgen a partir de dichos tejidos.
Frecuentemente, es ventajoso desde el punto de
vista clínico, para un médico, ser capaces de localizar el sitio de
estados patológicos en un paciente, usando un medio no invasivo.
Tales estados patológicos incluyen enfermedades de los pulmones,
del corazón, del hígado, de los riñones, de los huesos y del
cerebro, así como cáncer, trombosis, embolia pulmonar, infección,
inflamación y aterosclerosis.
En el campo de la medicina nuclear, ciertos
estados patológicos se localizan, o su grado se evalúa, detectando
la distribución de pequeñas cantidades de compuestos trazadores
marcados radioactivamente administrados internamente (denominados
radiotrazadores o compuestos radiofarmacéuticos). Los métodos para
detectar estos compuestos radiofarmacéuticos son conocidos
generalmente como métodos formadores de imágenes o de
radioimágenes.
En la formación de radioimágenes, el marcador
radioactivo es un radionúclido que emite radiación gamma, y el
radiotrazador se localiza usando una cámara que detecta radiación
gamma (este proceso se denomina a menudo como gammagrafía). El
sitio del que se toma la imagen es detectable debido a que el
radiotrazador se escobe para ser localizado en un sitio patológico
(denominado contraste positivo), o, como alternativa, el
radiotrazador se escoge específicamente para no ser localizado en
tales sitios patológicos (denominado contraste negativo). En muchas
situaciones, es una ventaja particular usar, como radiofármaco, un
compuesto de unión específica radiomarcado, que localiza
específicamente al sitio patológico in vivo.
Por ejemplo, la expresión de sitios de unión de
elevada afinidad por somatostatina es un marcador para ciertas
células tumorales, y se puede explotar la unión específica con
somatostatina para localizar e identificar tales células tumorales
in vivo.
Se conocen en la técnica anterior procedimientos
para radiomarcar análogos de somatostatina que han sido modificados
con el fin de que contengan un aminoácido tirosina (Tyr o Y).
Albert et al., en la Solicitud de Patente
UK 8927255.3, describe la gammagrafía utilizando derivados de
somatostatina, tales como octreótido marcado con ^{123}I.
Bakker et al., 1990, en la publicación
J. Nucl. Med. 31: 1501-1509, describen
la yodación radiactiva de un análogo de somatostatina y su utilidad
en la detección de tumores in vivo.
Bakker et al., 1991, en la publicación
J. Nucl. Med. 32: 1184-1189, enseñan
la utilidad de somatostatina radiomarcada para la gammagrafía in
vivo.
Bomanji et al., 1992, en la publicación
J. Nucl. Med. 33: 1121-1124, describen
la utilización de octreótido yodado (Tyr-3) para la
formación de imágenes médicas de tumores carcinoides
metastásicos.
Alternativamente, se han dado a conocer en la
técnica anterior procedimientos para radiomarcar somatostatina
modificando covalentemente el péptido para que contenga un grupo
quelante de radionúclido.
Albert et al., en la Solicitud de Patente
UK 8927255.3, dan a conocer la formación de imágenes médicas
utilizando derivados de somatostatina, tales como octreótido con
^{111}In por medio de un grupo quelante unido al terminal
amino.
Albert et al., en la Solicitud de Patente
Internacional nº WO 91/01.144, dan a conocer la formación de
imágenes médicas utilizando péptidos radiomarcados relacionados con
factores de crecimiento, hormonas, interferones y citoquinas, y
constituidos por un péptido de reconocimiento específico
covalentemente enlazado a un grupo quelante de radionúclido.
Albert et al., en la Solicitud de Patente
Europea nº 92810381.1, dan a conocer péptidos de somatostatina que
presentan quelantes unidos al terminal amino.
Faglia et al., 1991, en la publicación
J. Clin. Endocrinol. Metab. 73:
850-856 describen la detección de receptores de
somatostatina en pacientes.
Kwekkeboom et al., 1991, en la
publicación J. Nucl. Med. 32: 981 Resumen Nº 305, se
refiere a la radiomarcación de análogos de somatostatina con
^{111}In.
Albert et al., 1991, en el Resumen LM10,
12th American Peptide Symposium: 1991, describen los usos de
análogos de somatostatina derivatizados con ácido
dietilen-triaminopentaacético, marcados con
^{111}In.
Krenning et al., 1992, en la publicación
J. Nucl. Med. 33: 652-658 describen
una centelligrafía clínica utilizando
[^{111}In][DTPA]octreótido.
Se sabe que una variedad de radionúclidos son
útiles para la formación de radioimágenes, incluyendo ^{67}Ga,
^{99m}Tc (Tc-99m), ^{111}In, ^{123}I,
^{125}I, ^{169}Yb o ^{186}Re. Se debe de considerar un número
de factores para la formación óptima de radioimágenes en seres
humanos. Para maximizar la eficacia de la detección, se prefiere un
radionúclido que emite energía gamma en el intervalo de 100 hasta
200 keV. Para minimizar la dosis de radiación absorbida por el
paciente, el período de semidesintegración física del radionúclido
debe ser tan corto como lo permita el procedimiento de formación de
imágenes. Para permitir que se realicen exámenes en cualquier día y
a cualquier hora del día, es ventajoso tener una fuente del
radionúclido que esté siempre disponible en el sitio clínico. El
Tc-99m es un radionúclido preferido debido a que
emite radiación gamma a 140 keV, tiene un período de
semidesintegración física de 6 horas, y está fácilmente disponible
en el sitio usando un generador de
molibdeno-99/tecnecio-99m. Otros
radionúclidos usados en la técnica anterior son menos ventajosos
que Tc-99m. Esto puede ser debido a que el período
de semidesintegración física de tales radionúclidos son más largos,
dando como resultado una mayor cantidad de dosis de radiación
absorbida por el paciente (por ejemplo,
indio-111). También, muchos radionúclidos
desventajosos no se pueden producir usando un generador en el
sitio.
El Tc-99m es un metal de
transición que se puede quelar ventajosamente mediante un resto
complejante de metales. Los restos complejantes radiomarcados,
capaces de unirse a Tc-99m, se pueden enlazar
convenientemente a diversos compuestos de unión específica, para
proporcionar un medio para radiomarcar tales compuestos de unión
específica. Esto es debido a que la especie química más
habitualmente disponible de Tc-99m, el pertecnetato
(TcO_{4}^{-}), no se puede unir directamente a la mayoría de
los compuestos de unión específica de forma suficientemente fuerte
para ser útil como un radiofármaco. La complejación de
Tc-99m con tales restos complejantes radiomarcados
supone típicamente una reducción química del pertectenato usando un
agente reductor, tal como cloruro estannoso.
En la técnica anterior se conoce el uso de
agentes complejantes para complejar Tc-99m.
Byrne et al., Patente U.S. nº 4.434.151,
describe agentes quelantes de Tc-99m que contienen
homocisteína.
Fritzberg, Patente U.S. nº 4.444.690 describe
una serie de agentes quelantes de tecnecio a base de
2,3-bis(mercaptoacetamido)propanoato.
Byrne et al., Patente U.S. nº 4.571.430,
describe agentes quelantes de Tc-99m que contienen
homocisteína.
Byrne et al., Patente U.S. nº 4.575.556,
describe agentes quelantes de Tc-99m que contienen
homocisteína.
Nosco et al., Patente U.S. nº 4.925.650,
describe complejos quelantes de Tc-99m.
Kondo et al., Solicitud de Patente
Europea, Publicación nº 483704 A1 describe un procedimiento para
preparar un complejo de Tc-99m con un resto de
mercapto-Gly-Gly-Gly.
La Solicitud de Patente Europea nº 84109831.2
describe ligandos de bisamido, bistiol Tc-99m, y sus
sales, como agentes de monitorización de la función renal.
Davison et al., 1981, Inorg. Chem.
20: 1629-1632, describe complejos de quelatos
de oxotecnecio.
Fritzberg et al., 1982, J. Nucl.
Med. 23: 592-598 describe un agente
quelante de Tc-99m a base de
2,3-diaminopropanoato de
N,N’-bis(mercaptoacetilo).
Byrne et al., 1983, J. Nucl. Med.
24: P126, describe agentes complejantes de
Tc-99m que contienen homocisteína.
Bryson et al., 1988, Inorg. Chem.
27: 2154-2161, describe complejos neutros de
tecnecio-99 que son inestables a ligando en
exceso.
Misra et al., 1989, Tet. Lett.
30 1885-1888, describe compuestos de
bisaminbistiol con fines de radiomarcado.
El uso de agentes quelantes para radiomarcar
compuestos de unión específica es conocido en la técnica.
Gansow et al., Patente U.S. nº 4.472.509,
enseña métodos para fabricar y purificar anticuerpos monoclonales
conjugados con quelatos de Tc-99m.
Stavrianopoulos, Patente U.S. nº 4.943.523,
enseña moléculas detectables que comprenden restos quelantes de
metales.
Fritzberg et al., Solicitud de Patente
Europea nº 86100360.6, describe complejos de ácido ditiol, diamino,
o diamidocarboxílico o aminas útiles para obtener agentes formadores
de imágenes marcados con tecnecio.
Albert et al., Solicitud de Patente UK
8927255.3, describe la formación de radioimágenes usando derivados
de somatostatina, tales como octreótido marcado con ^{111}In
vía un grupo quelante unido al término amino.
Albert et al., Solicitud de Patente
Internacional WO 91/01144, describe la formación de radioimágenes
usando péptidos radiomarcados relacionados con factores de
crecimiento, hormonas, interferones y citoquinas, y que comprenden
un péptido de reconocimiento específico enlazado covalentemente a un
grupo quelante de radionúclidos.
Fischman et al., Solicitud de Patente
Internacional WO 93/13317, describe péptidos quimiotácticos unidos a
restos quelantes.
Kwekkeboom et al., 1991. J. Nucl.
Med. 32: 981 Abstract #305 se refiere al radiomarcado de
análogos de somatostatina con ^{111}In.
Albert et al., 1991, Abstract LM10, 12th
American Peptide Symposium: 1991, describe usos para análogos de
somatostatina derivatizados con ácido dietilentriaminopentaacético
marcado con ^{111}In.
Cox et al., 1991, Abstract, 7th
International Symposium on Radiopharmacology, p. 16, describe el uso
de análogos de somatostatina marcados con Tc-99m,
^{131}Iy ^{111}In en la radiolocalización de tumores endocrinos
in vivo mediante gammagrafía.
En la técnica anterior se conocen métodos para
marcar ciertos compuestos de unión específica con
Tc-99m.
Hnatowich, Patente U.S. nº 4,668,503, describe
el radiomarcado de proteína con Tc-99m.
Tolman, Patente U.S. nº 4,732,684, describe la
conjugación de moléculas seleccionadoras de dianas, y fragmentos de
metalotioneína.
Nicolotti et al., Patente U.S. nº
4,861,869, describe agentes de acoplamiento bifuncionales, útiles
para formar conjugados con moléculas biológicas tales como
anticuerpos.
Fritzberg et al., Patente U.S. nº
4.965.392, describe diversos queladores a base de
mercaptoacetilglicilglicina, protegidos en S, para marcar
proteínas.
Schochat et al., Patente U.S. nº
5.061.641, describe el radiomarcado directo de proteínas compuestas
de al menos un grupo sulfhidrilo "colgante".
Fritzberg et al., Patente U.S. nº
5.091.514, describe diversos queladores a base de
mercaptoacetilglicilglicina, protegidos en S, para marcar
proteínas.
Gustavson et al., Patente U.S. nº
5.112.953, describe agentes quelantes de Tc-99m para
radiomarcar proteínas.
Kasina et al., Patente U.S. nº 5.175.257,
describe diversas combinaciones de moléculas seleccionadoras de
dianas y grupos quelantes de Tc-99m.
Dean et al., Patente U.S. nº 5.180.816,
describe métodos para radiomarcar una proteína con
Tc-99m, vía un agente quelante
bifuncional.
Sundrehagen, Solicitud de Patente Internacional,
Publicación nº WO 85/03231, describe el radiomarcado con
Tc-99m de las proteínas.
Reno y Bottino, Solicitud de Patente Europea
87300426.1, describe el radiomarcado de anticuerpos con
Tc-99m.
Bremer et al., Solicitud de Patente
Europea nº 87118142.6, describe el radiomarcado con
Tc-99m de moléculas de anticuerpos.
Pak et al., Solicitud de Patente
Internacional WO 88/07382, describe un método para marcar
anticuerpos con Tc-99m.
Goedemans et al., Solicitud de Patente
Internacional WO 89/07456, describe el radiomarcado de proteínas
usando compuestos tiólicos cíclicos, particularmente
2-iminotiolano y derivados.
Dean et al., Solicitud de Patente
Internacional, Publicación nº WO 89/12625, enseña agentes de
acoplamiento bifuncionales para marcar con Tc-99m
las proteínas.
Schoemaker et al., Solicitud de Patente
Internacional, Publicación nº WO 90/06323, describe proteínas
quiméricas que comprenden una región de unión a metal.
Thornback et al., Solicitud EP nº
90402206.8, describe la preparación y uso de proteínas o péptidos
radiomarcados, usando compuestos que contienen tiol,
particularmente 2-iminotiolano.
Gustavson et al., Solicitud de Patente
Internacional, Publicación nº WO 91/09876, describe agentes
quelantes de Tc-99m para radiomarcar proteínas.
Rhodes. 1974, Sem. Nucl. Med. 4:
281-293, enseña el marcado de seroalbúmina humana
con tecnecio-99m.
Khaw et al., 1982, J. Nucl. Med.
23: 1011-1019, describe métodos para marcar
macromoléculas biológicamente activas con
Tc-99m.
Schwartz et al., 1991, Bioconjugate
Chem. 2: 333, describe un método para marcar proteínas
con Tc-99m usando un grupo
hidrazinonicotinamida.
En la técnica anterior se han dado a conocer
intentos para radiomarcar péptidos.
Ege et al., Patente U.S. nº 4.832.940,
enseña péptidos radiomarcados para la formación de imágenes de
linfocitos T localizados.
Morgan et al., Patente U.S. nº 4.986.979,
describe métodos para formar imágenes de sitios de inflamación.
Flanagan et al., Patente U.S. nº
5.248.764, describe conjugados entre un resto quelante de marcador
radioactivo y péptidos derivados del factor natiurético
ventricular.
Ranby et al., 1988, documento
PCT/US88/02276, describe un método para detectar depósitos de
fibrina en un animal, que comprende unir covalentemente un
compuesto radiomarcado a fibrina.
Lees et al., 1989, documento
PCT/US89/01854, enseña péptidos radiomarcados para la formación de
imágenes arteriales.
Morgan et al., Solicitud de Patente
Internacional, Publicación nº WO 90/10463, describe métodos para
formación de imágenes de sitios de inflamación.
Flanagan et al., Solicitud de Patente
Europea nº 90306428.5, describe el marcado con
Tc-99m de fragmentos peptídicos sintéticos vía un
conjunto de moléculas quelantes orgánicas.
Stuttle, Solicitud de Patente Internacional,
Publicación nº WO 90/15818, describe el marcado con
Tc-99m de oligopéptidos que contienen RGD.
Rodwell et al., 1991, documento
PCT/US91/03116, describe conjugados de "unidades de reconocimiento
molecular" con "dominios efectores".
Cox, Solicitud de Patente Internacional
PCT/US92/04559, describe derivados de somatostatina radiomarcados,
que contienen dos restos de cisteína.
Rhodes et al., Solicitud de Patente
Internacional, Publicación nº WO 93/12819, enseña péptidos que
comprenden dominios de unión a iones metálicos.
Lyle et al., Solicitud de Patente
Internacional, Publicación nº WO 93/15770, describe queladores de
Tc-99m, y péptidos marcados con
Tc-99m.
Coughlin et al., Solicitud de Patente
Internacional, Publicación nº WO 93/21151, describe agentes
quelantes bifuncionales que comprenden grupos tiourea para
radiomarcar moléculas seleccionadoras de dianas.
Knight et al., 1990, 37th Annual Meeting
of the Society of Nuclear Medicine, Abstract #209, reivindica la
formación de imágenes de trombos usando péptidos marcados con
Tc-99m.
Babich et al., 1993, J. Nucl. Med.
34: 1964-1974, describe péptidos marcados con
Tc-99m, que comprenden derivados de
hidrazinonicotinamida.
Los métodos para marcar directamente
somatostatina, derivados de somatostatina, análogos de somatostatina
o péptidos que se unen al receptor de somatostatina y contienen al
menos 2 restos de cisteína que forman un disulfuro, o en los que el
disulfuro se reduce a la forma de sulfhidrilo, se describen en la
patente U.S. nº 5.225.180, presentada el 6 de julio de 1993, de
propiedad conjunta, que se incorpora aquí como referencia en su
totalidad.
El uso de agentes quelantes para radiomarcar
péptidos, y los métodos para radiomarcar péptidos con
Tc-99m, son conocidos en la técnica anterior, y se
describen en la Solicitud de Patente U.S. Series n^{os}
07/653.012, 07/807.062, 07/871.282, 07/893.981, 07/955.466,
08/092.355 y 08/095.760 en trámite junto con la presente.
Existe la necesidad de análogos sintéticos de
somatostatina (para hacer practicable la fabricación habitual, y
para facilitar su aceptación por parte de las Autoridades
Reguladoras) que tengan una mayor estabilidad in vivo, para
ser usados terapéuticamente, como agentes gammagráficos cuando se
marcan radioactivamente con Tc-99m u otros
radioisótopos detectables para uso en la formación de imágenes in
vivo de tumores, y como agentes radioterapéuticos cuando se
marcan radioactivamente con un radioisótopo citotóxico, tal como
renio-188. Mediante esta invención, que satisface
específicamente esta necesidad, se proporcionan análogos sintéticos
pequeños de somatostatina.
La presente invención proporciona análogos de
somatostatina que comprenden péptidos cíclicos para aplicaciones
terapéuticas, incluyendo aplicaciones radioterapéuticas, y
aplicaciones de diagnóstico, incluyendo aplicaciones de
radiodiagnóstico, en particular aplicaciones de formaciones de
imágenes gammagráficas. Diferentes de la somatostatina natural, los
péptidos cíclicos de la invención no comprenden un enlace de
disulfuro. La invención también proporciona reactivos peptídicos
cíclicos que comprenden análogos de somatostatina peptídicos
cíclicos en los que tales péptidos incorporan un resto de unión a
ion metálico enlazado covalentemente. La invención proporciona
tales péptidos cíclicos, reactivos de péptidos cíclicos y reactivos
de péptidos cíclicos radiomarcados, que son agentes formadores de
imágenes gammagráficas, agentes de radiodiagnóstico y agentes
radioterapéuticos. Los agentes formadores de imágenes gammagráficas
de la invención comprenden reactivos de péptidos cíclicos
radiomarcados con un radioisótopo, preferiblemente
tecnecio-99m. Los agentes radioterapéuticos de la
invención comprenden reactivos de péptidos cíclicos radiomarcados
con un radioisótopo citotóxico, preferiblemente
renio-186 o renio-188. También se
proporcionan los métodos para obtener y usar tales péptidos
cíclicos, reactivos de péptidos cíclicos y sus realizaciones
radiomarcadas.
La invención proporciona composiciones de
materia que comprenden un péptido de unión específica que se une
específicamente a receptores de somatostatina en un cuerpo de
mamífero, enlazado covalentemente a un resto complejante de ion
metálico. Las composiciones de materia de la invención tienen la
fórmula:
ciclo(\underline{N-CH_{3})-Phe-Tyr-(_{D}-Trp)-Lys-Val-Hcy.}(CH_{2}CO.X)
en la que X es un resto complejante
de metal que tiene la fórmula
(aminoácido)_{n}-B-(aminoácido)_{m}-Z,
en la que B es un resto que contiene tiol, esto es, cisteína,
homocisteína, isocisteína, o penicilamina; (aminoácido)_{n}
y (aminoácido)_{m} son, cada uno independientemente,
cualquier \alpha- o \beta-aminoácido primario
que no comprende un grupo tiol; Z es -OH o -NH_{2}; y n y m son,
cada uno independientemente, un número entero entre 2 y 5 y 0 y 5,
respectivamente.
En las fórmulas que describen las composiciones
de materia de la invención, la combinación del término
"ciclo" y una secuencia de aminoácidos subrayada se
entenderá que significa que la secuencia de aminoácidos subrayada
está cerrada en ciclo a través de un enlace peptídico que enlaza el
término amino del primer aminoácido de la secuencia al término
carboxilo del último aminoácido de la secuencia. Cuando le sigue un
término entre paréntesis, tal como "(CH_{2}CO.X)", dicho
término entre paréntesis se entenderá que significa que la secuencia
entre paréntesis está enlazada covalentemente al átomo de azufre de
la cadena lateral de aminoácidos del aminoácido que contiene tiol
en la secuencia de aminoácidos subrayada, formando con ello un
enlace de sulfuro. De este modo, en la estructura química anterior,
se entenderá que el grupo -CH_{2}CO.X está enlazado covalentemente
al átomo de azufre de la cadena lateral de la homocisteína. Un
ejemplo de tal fórmula química se muestra en el Ejemplo 2.
Las composiciones de materia de la invención
tienen utilidad para un número de fines de diagnóstico y
terapéuticos.
De este modo, un aspecto de la invención
proporciona reactivos para preparar agentes formadores de imágenes
gammagráficos radiomarcados, para formar imágenes de sitios en un
cuerpo de un mamífero que tenga una sobreabundancia de receptores
de somatostatina. En tales realizaciones, el resto complejante de
ion metálico comprende un resto de unión de marcador radioactivo, y
el reactivo forma un complejo con el marcador radioactivo vía la
formación de un complejo con dicho resto. En una realización de este
aspecto de la invención, el agente formador de imágenes
gammagráficas se forma complejando el reactivo con
Tc-99m en condiciones reductoras.
De este modo, la invención también comprende
agentes formadores de imágenes gammagráficas que son complejos de
los reactivos de la invención con Tc-99m, y métodos
para radiomarcar los reactivos. Los complejos radiomarcados con
Tc-99m, proporcionados mediante la invención, se
forman haciendo reaccionar los reactivos de la invención con
Tc-99m en presencia de un agente reductor. Los
agentes reductores preferidos incluyen, pero no se limitan a, ion
ditionito, ion estannoso e ion ferroso. Los complejos de la
invención también se forman marcando los reactivos de la invención
con Tc-99m mediante intercambio de ligandos de un
complejo de Tc-99m prerreducido, como se proporciona
aquí.
Los agentes formadores de imágenes preferidos
comprenden complejos de Tc-99m de los reactivos de
la invención.
La invención también proporciona kits para
preparar agentes formadores de imágenes gammagráficas, que son los
reactivos de la invención radiomarcados con Tc-99m.
Los kits para radiomarcar los reactivos proporcionados por la
invención con Tc-99m están compuestos de un vial
cerrado herméticamente que contiene una cantidad predeterminada de
un reactivo de la invención y una cantidad suficiente de agente
reductor para marcar el reactivo con Tc-99m.
En un segundo aspecto de la invención, se
proporcionan agentes formadores de imágenes, en los que las
composiciones de materia de la invención son radiomarcadas con un
radioisótopo de yodo, preferiblemente I-123,
I-125, o I-131. La invención
proporciona agentes de formación de imágenes radioyodados, que son
complejos de los reactivos de la invención con yodo marcado
radioactivamente.
Una realización preferida de los reactivos
proporcionados por la invención para preparar agentes formadores de
imágenes radioyodados es un compuesto que tiene la fórmula:
ciclo(\underline{\mathit{N}-metil)FYW_{D}KV.Hcy}.(CH_{2}CO.GGCK.amida).
Los agentes formadores de imágenes preferidos
comprenden realizaciones radioyodadas de este reactivo.
En un tercer aspecto, se proporcionan agentes
formadores de imágenes no marcados radioactivamente, que comprenden
reactivos que son las composiciones de materia de la invención
complejadas con un ion o partícula metálica paramagnética. En
realizaciones de este aspecto de la invención, el ion metálico
paramagnético está complejado con el resto complejante de ion
metálico. En realizaciones en las que se usa una partícula,
preferiblemente una partícula metálica superparamagnética, las
composiciones de materia de la invención se enlazan a la partícula
superparamagnética ya sea covalente o asociativamente, usando
métodos descritos por Weissleder et al. (1992,
Radiology 182:381-385). La invención
proporciona tales agentes formadores de imágenes, para uso en
formaciones de imágenes mediante resonancia magnética. También se
proporcionan métodos para preparar estos agentes formadores de
imágenes no marcados radioactivamente.
Una realización preferida de los reactivos
proporcionados por la invención para preparar tales agentes
formadores de imágenes no marcados radioactivamente es un compuesto
que tiene la fórmula:
ciclo( N --
metil)FYW_{D}KV.Hcy.(CH_{2}CO.GGCK.amida).
Los agentes formadores de imágenes no marcados
radioactivamente preferidos comprenden complejos del ion férrico de
este reactivo.
También se proporcionan aquí agentes
terapéuticos. En un cuarto aspecto, la invención proporciona las
composiciones de materia de la invención no complejadas con un ion
metálico, como un agente terapéutico per se.
En un quinto aspecto, la invención proporciona
agentes terapéuticos radiomarcados, que comprenden un reactivo para
preparar el agente terapeútico que es una composición de materia
proporcionada por la invención. En tales realizaciones, se
proporcionan las composiciones de materia de la invención en las que
el resto complejante del ion metálico está complejado con una
partícula \beta que emite, o un electrón de conversión que emite,
un radioisótopo. Las realizaciones preferidas de partícula \beta
que emite radioisótopos son renio-186 y
renio-188. Un electrón de conversión preferido que
emite radioisótopo es estaño-117m. La invención
proporciona tales complejos de radioisótopos de las composiciones
de materia de la invención, para el tratamiento radioterapéutico de
células y tejidos patológicos que expresan el receptor de
somatostatina, particularmente células neoplásicas y metastásicas.
También se proporcionan métodos para preparar tales complejos de
radioisótopos terapéuticos de las composiciones de materia de
la
invención.
invención.
Una realización preferida de los reactivos de la
invención, proporcionada para preparar tales agentes
radioterapéuticos, es un compuesto que tiene la fórmula:
ciclo(\underline{\mathit{N}-metil)FYW_{D}KV.Hcy}.(CH_{2}CO.GGCK.amida).
Los agentes radioterapéuticos preferidos
comprenden complejos de iones metálicos que emiten una partícula
\beta o que emiten un electrón de conversión, con este
reactivo.
\newpage
En otro aspecto de los agentes radioterapéuticos
de la invención, se proporcionan agentes radioterapéuticos en los
que las composiciones de materia de la invención están radiomarcadas
con un radioisótopo de yodo, preferiblemente I-125
o I-131, o con astato-211. La
invención también proporciona los propios agentes terapéuticos
radiomarcados, así como métodos para radiomarcar los reactivos.
Realizaciones preferidas de los reactivos de la
invención, proporcionadas para preparar estos agentes radioyodados
y radioastatados terapéuticos, son compuestos que tienen la
fórmula:
ciclo(\underline{\mathit{N}-metil)FYW_{D}KV.Hcy}.(CH_{2}CO.GGCK.amida).
Los agentes radioterapéuticos preferidos
comprenden realizaciones radioyodadas y radioastatadas de este
reactivo.
Se proporcionan agentes terapéuticos que son
agentes complejados con átomos metálicos, no marcados
radioactivamente, que comprenden reactivos que son las
composiciones de materia de la invención complejados con un átomo
metálico no radioactivo, tal como cobre, cinc o renio. En
realizaciones de este aspecto de la invención, el ion metálico no
radioactivo está complejado con el resto complejante de ion
metálico. La invención proporciona tales agentes terapéuticos para
uso en el tratamiento de estados en los que los receptores de
somatostatina son sobreexpresados en las células que comprenden
ciertos tejidos, y para tratar células neoplásicas que hiperexpresan
receptores de somatostatina. También se proporcionan métodos para
preparar estos agentes terapéuticos complejados con átomos
metálicos no marcados radioactivamente.
Una realización preferida de los reactivos de la
invención, proporcionada para preparar agentes terapéuticos no
marcados radioactivamente, es un compuesto que tiene la fórmula:
ciclo(\underline{\mathit{N}-metil)FYW_{D}KV.Hcy}.(CH_{2}CO.GGCK.amida).
Los agentes terapéuticos no marcados
radioactivamente preferidos comprenden un complejo de renio de este
reactivo.
Esta invención proporciona métodos para preparar
realizaciones de péptidos de los reactivos de la invención mediante
síntesis química in vitro. En una realización preferida, los
péptidos se sintetizan mediante síntesis peptídica en fase
sólida.
Esta invención proporciona métodos para usar los
agentes de diagnóstico y de radiodiagnóstico, y terapéuticos y
radioterapéuticos, de la invención. Para realizaciones radiomarcadas
de los agentes de la invención, por ejemplo, agentes formadores de
imágenes gammagráficas marcados con Tc-99m, se
administra una cantidad diagnóstica o terapéutica eficaz del agente
de diagnóstico o de radiodiagnóstico, o terapéutico o
radioterapéutico, de la invención. En realizaciones de
radiodiagnóstico, la localización del marcador radioactivo se
detecta usando metodologías convencionales, tales como gammagrafía.
En realizaciones de diagnóstico no radioactivo, la localización de
sitios de acumulación de los agentes de diagnóstico de la invención
marcados con metales paramagnéticos se logra usando metodologías de
formación de imágenes mediante resonancia magnética. Los agentes
formadores de imágenes proporcionados por la invención tienen
utilidad para formar imágenes de tumores, particularmente para
formar imágenes de sitios neoplásicos primarios y metastásicos en
los que dichas células neoplásicas expresan receptores de
somatostatina (SSTR), y en particular tales células tumorales
primarias y especialmente metastásicas que han sido clínicamente
resistentes a la detección usando metodologías convencionales.
Además, los agentes formadores de imágenes de la invención son
útiles para detectar sitios de acumulación de linfocitos T asociada
con una enfermedad o patología oculta, por ejemplo, como
ocurre en pacientes que sufren tuberculosis.
La invención proporciona métodos para usar los
análogos de somatostatina de la invención para aliviar enfermedades
u otras dolencias en animales, preferiblemente seres humanos. Estas
enfermedades y dolencias incluyen, pero no se limitan a, diabetes y
retinopatía relacionada con diabetes, cirrosis hepática e infección
por hepatitis, úlceras hemorrágicas y otras hemorragias
gastrointestinales, pancreatitis, trastornos del sistema nervioso
central, trastornos endocrinos, enfermedad de Alzheimer, acromegalia
y otras enfermedades y trastornos relacionados con la producción de
niveles inapropiados de hormona de crecimiento in vivo, y
cáncer, particularmente aquellos cánceres cuyo crecimiento depende
o está influido por la producción de hormona del crecimiento. Las
realizaciones terapéuticas no marcadas radioactivamente también
tienen utilidad para tratar enfermedades relacionadas con la
hiperexpresión de SSTR, tales como diarrea provocada por gastrinoma
que hiperexpresa SSTR. Las dosis de los análogos de somatostatina
proporcionadas por la invención pueden ser las mismas que las dosis
de somatostatina natural usada normalmente para el tratamiento de
las enfermedades anteriores o de otras enfermedades, o se pueden
administrar menores cantidades de los compuestos de la invención
debido a su semivida in vivo más prolongada.
Los usos terapéuticos también incluyen la
extirpación radioterapéutica de células cancerígenas neoplásicas y
metastásicas en pacientes con tumores, cuyas células expresan el
receptor de somatostatina. El uso de los agentes radioterapéuticos
de la invención incluye el uso terapéutico primario para tumores
resistentes a terapias más convencionales, y para tumores que son
inoperables, así como incluye terapias auxiliares suplementarias de
la cirugía, terapia de radiación o quimioterapia convencional.
Las realizaciones radiomarcadas de la invención
también tienen utilidad como guías quirúrgicas para identificar
tejido tumoral, que expresa el receptor de somatostatina, durante la
cirugía. Para tal uso en cirugía guiada por radioisótopos, el
tejido cancerígeno, invisible de otro modo al cirujano, se puede
reconocer y extirpar durante la cirugía de otro modo
convencional.
Las realizaciones preferidas específicas de la
presente invención serán evidentes a partir de la siguiente
descripción más detallada de ciertas realizaciones preferidas y de
las reivindicaciones.
La Figura 1 muestra una imagen de P587 marcado
con ^{99m}Tc en una rata con tumor, indicado por una flecha, que
muestra la captación elevada en el sitio del tumor, en la pata
inferior.
La presente invención proporciona péptidos
cíclicos que son análogos de somatostatina y que no comprenden un
enlace de disulfuro. Tales análogos de somatostatina poseen de ese
modo un aumento de la estabilidad in vivo, en comparación con
la somatostatina natural. Estos péptidos cíclicos son ellos mismos
agentes terapéuticos para aliviar enfermedades y otras dolencias en
animales, incluyendo seres humanos.
También se proporcionan mediante la invención
péptidos cíclicos que se pueden radioyodar o radioastatar, y que de
ese modo son útiles en aplicaciones radioterapéuticas y de
radiodiagnóstico.
Otra realización de estos péptidos cíclicos que
se proporcionan mediante esta invención son reactivos de péptidos
cíclicos en los que los péptidos cíclicos de la invención están
enlazados covalentemente a un resto complejante de iones metálicos.
Tales reactivos de péptidos cíclicos son capaces de ser
radiomarcados para proporcionar agentes de radiodiagnóstico o
radioterapéuticos. Un ejemplo de una aplicación de radiodiagnóstico,
que usa los agentes radiomarcados de la invención, es la formación
de imágenes gammagráficas, en la que se puede determinar la
localización y extensión de tumores que tienen el receptor de
somatostatina. Los reactivos de péptidos cíclicos de la invención
también se pueden radiomarcar ventajosamente con radioisótopos
citotóxicos, tales como renio-186 o
renio-188, para usos radioterapéuticos.
Los reactivos de péptidos cíclicos de la
invención también son útiles para preparar complejos con metales no
radioactivos, siendo dichos complejos útiles terapéuticamente.
El marcaje con Tc-99m es una
ventaja de la presente invención debido a que las propiedades
nucleares y radioactivas de este isótopo lo hacen un agente
formador de imágenes gammagráficas ideal. Este isótopo tiene una
energía de fotón individual de 140 keV, y un período de
semidesintegración radioactivo de alrededor de 6 horas, y está
fácilmente disponible a partir de un generador de
^{99}Mo-^{99m}Tc. También se pueden usar, en la
práctica de la invención, según se describe aquí, otros
radionúclidos.
La expresión agente formador de imágenes
gammagráficas, como se usa aquí, pretende englobar un agente marcado
radioactivamente capaz de ser detectado con un medio de detección
de la radioactividad (incluyendo, pero sin limitarse a, una
gammacámara, un contador Geiger-Muller y una sonda
detectora gammagráfica).
Por otro lado, las realizaciones
radioterapéuticas de la invención se marcan ventajosamente con un
radioisótopo citotóxico, incluyendo, pero sin limitarse a,
cobre-67, yodo-125,
yodo-131, renio-186,
renio-188, y astato-211, lo más
preferible ^{186}Re o ^{188}Re. Tales realizaciones son útiles
en el tratamiento de enfermedades y otras dolencias relacionados
con la somatostatina, en animales, preferiblemente seres humanos,
incluyendo, pero sin limitarse a, cáncer y otras enfermedades
caracterizadas por el crecimiento de tumores cancerígenos o
benignos capaces de unirse a somatostatina o análogos de
somatostatina vía la expresión de receptores de somatostatina sobre
la superficie celular de las células que comprenden tales
tumores.
La presente invención proporciona reactivos para
preparar agentes de diagnóstico y de radiodiagnóstico, y agentes
terapéuticos y radioterapéuticos. Los reactivos proporcionados por
la invención comprenden un resto complejante de iones metálicos
enlazado covalentemente a un péptido de unión específica que se une
a sitios del receptor de somatostatina dentro de un cuerpo de un
mamífero.
Los compuestos pequeños, que tienen
preferiblemente un peso molecular menor que 10.000 daltons, son de
una ventaja comercial evidente. Tales compuestos pequeños se pueden
fabricar fácilmente. Además, probablemente no son inmunógenos, y se
eliminan rápidamente de la vasculatura, permitiendo así una
formación más rápida y mejor de las imágenes. Por el contrario, las
moléculas más grandes, tales como anticuerpos o sus fragmentos, u
otros péptidos derivados biológicamente mayores que 10.000 daltons,
son costosos de fabricar, y probablemente son inmunógenos y se
aclaran de forma más lenta a partir del torrente sanguíneo,
interfiriendo de ese modo con los diagnósticos rápidos in
vivo.
Es una ventaja de los análogos de somatostatina
proporcionados por esta invención que el enlace cíclico contenido
en ellos, que no es de disulfuro, es estable en las condiciones del
marcado radioactivo del resto enlazado covalentemente y que se une
al marcador radioactivo. Por el contrario, por ejemplo, la
conjugación de Tc-99m a un resto que se une a
Tc-99m, enlazado covalentemente a somatostatina
natural, o a un análogo de somatostatina que tiene un enlace de
disulfuro, puede dar como resultado la reducción del disulfuro,
acompañada de una pérdida de actividad biológica. Tal pérdida de
actividad biológica también puede suceder in vivo usando
somatostatina natural, o cualquier análogo de somatostatina que
tenga un enlace de disulfuro. La presente invención no está
sometida a pérdidas similares de actividad biológica in vivo,
debido a que los enlaces cíclicos que no son de disulfuro, en cada
uno de los análogos de somatostatina de la invención, comprenden
enlaces covalentes estables.
Para los fines de esta invención, la expresión
"péptido de unión específica" pretende significar cualquier
compuesto peptídico que se une específicamente a un sitio diana en
un cuerpo de mamífero, definido por una sobreabundancia de
moléculas del receptor de somatostatina (SSTR). "Unión
específica" se entenderá, por aquellos expertos en la técnica,
que significa que el péptido se localiza en gran medida en el sitio
diana y no en los tejidos circundantes. Tal unión específica es
ventajosa en agentes formadores de imágenes para diagnóstico, que
comprenden péptidos de unión específica, debido a que se dispersan a
través del cuerpo del mamífero tras la administración, y tal
localización específica de la radioactividad unida al reactivo
proporciona una definición visual de la diana in vivo.
Cada realización de la invención que contiene un
péptido de unión específica está comprendida de una secuencia de
aminoácidos. El término aminoácido, como se usa en esta invención,
pretende incluir todos los aminoácidos L y D, \alpha y \beta
primarios, de origen natural, modificados, sustituidos, alterados o
de cualquier otro modo. Las realizaciones de péptidos de unión
específica de los reactivos de la invención comprenden péptidos de
unión específica que tienen un peso molecular menor que alrededor de
5.000 daltons. Las realizaciones particularmente preferidas de los
péptidos de unión específica de la invención incluyen péptidos que
se unen específicamente y con elevada afinidad al receptor de
somatostatina (SSTR) en células que expresan el SSTR,
particularmente células tumorales y células linfocíticas T
activadas. Los reactivos que comprenden péptidos de unión específica
provistos por la invención incluyen, pero no se limitan a,
reactivos que comprenden péptidos que tienen las siguientes
secuencias de aminoácidos (los aminoácidos en los siguientes
péptidos son L-aminoácidos, excepto que se indique
de otro modo):
\newpage
(Las abreviaturas de una sola letra para los
aminoácidos se pueden encontrar en Zubay, ibid., p. 33; otras
abreviaturas son como en la Leyenda de la Tabla I). Esta lista de
reactivos proporcionada por la invención es ilustrativa y no
pretende ser limitante o exclusiva, y se entenderá por aquellos
expertos en la técnica que los reactivos que comprenden
combinaciones de los péptidos descritos aquí, o sus equivalentes, se
pueden enlazar covalentemente a cualquiera de los restos quelantes
de la invención, y pueden estar dentro de su alcance.
En una realización preferida, el reactivo de la
invención tiene la fórmula:
\vskip1.000000\baselineskip
Los péptidos de unión específica que comprenden
los reactivos de la presente invención se pueden sintetizar
químicamente in vitro. Tales péptidos se pueden preparar
generalmente de forma ventajosa en un sintetizador de péptidos. Los
péptidos de esta invención se pueden sintetizar de manera que el
resto complejante de iones metálicos esté enlazado covalentemente
al péptido durante la síntesis química in vitro, usando
técnicas mostradas aquí (véase, por ejemplo, el Ejemplo 2,
subsección O).
En realizaciones de la invención formadoras de
imágenes gammagráficas, se forma un complejo de
tecnecio-99m con los reactivos de esta invención.
Para lograr esto, el Tc-99m, preferiblemente como
una sal de pertecnetato de Tc-99m, se hace
reaccionar con los reactivos de esta invención, en presencia de un
agente reductor. Los agentes reductores preferidos son ditionito,
iones estannoso y ferroso; el agente reductor más preferido es una
sal estannosa, tal como cloruro estannoso. En una realización
adicional preferida, el agente reductor es un agente reductor en
fase sólida. Los complejos y los medios para preparar tales
complejos se proporcionan convenientemente en una forma de kit que
comprende un vial cerrado herméticamente que contiene una cantidad
predeterminada de un reactivo de la invención para ser marcado, y
una cantidad suficiente de agente reductor para marcar el reactivo
con Tc-99m. Como alternativa, el complejo se puede
formar haciendo reaccionar un reactivo de esta invención con un
complejo lábil preformado de tecnecio y otro compuesto conocido como
un ligando de transferencia (tal como tartrato, citrato, gluconato
o manitol, por ejemplo). Este procedimiento es conocido como
intercambio de ligandos, y es bien conocido por los expertos en la
técnica. Entre las sales de pertecnetato de Tc-99m
útiles en la presente invención, se incluyen las sales de metales
alcalinos, tales como la sal de sodio, o sales de amonio o sales de
alquilamonio inferior.
Los agentes formadores de imágenes
gammagráficas, marcados con tecnecio-99m según la
presente invención, se pueden preparar mediante adición de una
cantidad apropiada de Tc-99m o de un complejo de
Tc-99m en los viales, y mediante la reacción en
condiciones descritas en el Ejemplo 3 a continuación. El kit también
puede contener materiales auxiliares farmacéuticos convencionales,
tales como, por ejemplo, sales farmacéuticamente aceptables para
ajustar la presión osmótica, tampones, conservantes y similares. Los
componentes del kit pueden estar en forma líquida, congelada o
seca. En una realización preferida, se proporcionan componentes del
kit en forma liofilizada. Los reactivos de formación de imágenes
gammagráficas marcados radioactivamente según la presente invención
se pueden preparar mediante reacción en condiciones descritas en el
Ejemplo 3 más abajo.
Se proporcionan reactivos marcados
radioactivamente, proporcionados por la presente invención, que
tienen una cantidad adecuada de radioactividad. A la hora de formar
complejos radioactivos de Tc-99m, por ejemplo,
generalmente se prefiere formar complejos radioactivos en
disoluciones que contienen radioactividad en concentraciones de
alrededor de 0,01 milicurie (mCi) hasta 100 mCi por ml.
Los reactivos formadores de imágenes
proporcionados por la presente invención se pueden usar para
visualizar órganos, tales como el riñón, para diagnosticar
trastornos en estos órganos, y también se pueden formar imágenes de
tumores, en particular tumores gastrointestinales, mielomas,
carcinoma pulmonar microcítico y otros APUDomas, tumores endocrinos
tales como carcinomas medulares de tiroide y tumores de la
pituitaria, tumores cerebrales tales como meningiomas y
astrocitomas, y tumores de la próstata, de mama, de colon y de
ovarios. Según esta invención, los reactivos de péptidos marcados
con Tc-99m se administran en una única dosis
inyectable unitaria. Los reactivos de péptidos marcados con
Tc-99m proporcionados por la invención se pueden
administrar intravenosamente en cualquier medio convencional para
inyección intravenosa, tal como un medio de disolución salina
acuosa, o en un medio de plasma sanguíneo. Generalmente, la dosis
unitaria a administrar tiene una radioactividad de alrededor de
0,01 mCi hasta alrededor de 100 mCi, preferiblemente 1 mCi hasta 20
mCi. La disolución a inyectar en la dosis unitaria es desde
alrededor de 0,01 ml hasta alrededor de 10 ml. Después de la
administración intravenosa, la formación de imágenes in vivo
puede tener lugar en cuestión de unos pocos minutos. Sin embargo,
la formación de imágenes puede tener lugar, si se desea, en horas o
incluso más, después de que el péptido marcado radioactivamente se
inyecte en un paciente. En la mayoría de los casos, una cantidad
suficiente de la dosis administrada se acumulará en el área de la
que se forma su imagen, en alrededor de 0,1 horas, para tomar fotos
gammagráficas. Según esta invención, se puede utilizar cualquier
método convencional de formación de imágenes gammagráficas con
fines de diagnóstico.
Los péptidos cíclicos que se unen al receptor de
somatostatina y los complejos metálicos no radioactivos de los
reactivos de péptidos cíclicos de la invención se pueden usar
clínicamente como agentes terapéuticos para promover la regresión
de ciertos tipos de tumores, particularmente aquellos que expresan
receptores de somatostatina. Los péptidos cíclicos, análogos de
somatostatina, de la invención, también se pueden usar para reducir
la hipersecreción hormonal que a menudo acompaña a ciertos
cánceres, tales como los APUDomas. Los péptidos de la invención
usados como agentes terapéuticos se pueden administrar mediante
cualquier vía apropiada, incluyendo la intravenosa, la
intramuscular o por la boca, o en cualquier soporte farmacéutico
aceptable, en dosis que oscilan desde alrededor de 0,1 hasta
alrededor de 49 mg/kg de peso corporal/día.
Esta invención también proporciona péptidos
marcados radioactivamente con radioisótopos citotóxicos, tales como
renio-186 o renio-188, que se pueden
usar para radioterapia de ciertos tumores como se han descrito aquí
anteriormente. Para este fin, se puede administrar una cantidad de
un isótopo radioactivo, desde alrededor de 10 mCi hasta alrededor
de 200 mCi, vía cualquier ruta clínica adecuada, preferiblemente
mediante inyección intravenosa.
Los métodos para marcar y obtener estos
compuestos se ilustran de forma más completa en los siguientes
Ejemplos. Estos Ejemplos ilustran ciertos aspectos del método
descrito anteriormente y resultados ventajosos, y se muestran a
título ilustrativo y no limitativo.
Se llevó a cabo la síntesis de péptidos en fase
sólida (SPPS) a escala de 0,25 milimoles (mmoles) usando un
sintetizador peptídico Applied Biosystems Modelo 431A, y usando la
protección del término amino mediante
9-fluorenilmetiloxicarbonilo (Fmoc), acoplando con
diciclohexilcarbodiimida/hidroxibenzotriazol o hexafluorofosfato de
2-(1H-benzo-triazol-1-il)-1,1,3,3-tetrametiluronio/
hidroxibenzotriazol (HBTU/HOBT), y usando una resina Sasrin™ o
p-hidroximetil-fenoximetilpoliestireno (HMP)
para ácidos de término carboxílico, o una resina amídica Rink para
amidas de término carboxílico.
Se prepararon Fmoc.Hcy(S-tritilo) y
Fmoc.Pen(S-tritilo) a partir de aminoácido
apropiado, mediante tritilación con trifenilmetanol en ácido
trifluoroacético, seguido de la derivatización con Fmoc como se
describe por Atherton et al. (1989, Solid Phase Peptide
Synthesis, IRL Press: Oxford) y posteriormente en el Ejemplo 2,
subsección J más abajo. La
Fmoc-S-(3-Boc-aminopropil)cisteína
se preparó a partir de L-cisteína y bromuro de
Boc-aminopropilo, en metóxido sódico metanólico,
seguido del tratamiento con carbonato de
O-9-fluorenilmetil-O’N-succinimidilo
(FmocOSu),
a pH 10.
a pH 10.
Los grupos 2-haloacetilo se
introdujeron usando el ácido 2-haloacético apropiado
como el último resto a acoplar durante SPPS, o tratando el péptido
amínico libre del término N, unido a la resina, con ácido
2-haloacético/diisopropil-
carbodiimida/N-hidroxisuccinimida en NMP, o anhídrido 2-haloacétido/diisopropiletilamina en NMP.
carbodiimida/N-hidroxisuccinimida en NMP, o anhídrido 2-haloacétido/diisopropiletilamina en NMP.
Los péptidos que contienen tiol se hicieron
reaccionar con restos complejantes de Tc-99m que
contienen cloroacetilo, protegidos en el tiol, a pH 10, durante
0,5-24 horas a temperatura ambiente, opcionalmente
seguido de acidificación con ácido acético y evaporación de la
disolución para dar el aducto correspondiente de
péptido-sulfuro, como se describe con más detalle
en el Ejemplo 2, subsección O, más abajo. La desprotección y la
purificación se realizaron de forma habitual como se describe, para
producir el conjugado de quelante-péptido.
Los péptidos unidos a resina Sasrin^{TM} se
escindieron usando una disolución de 1% de TFA en diclorometano,
para producir el péptido protegido. Cuando fue apropiado, los
precursores peptídicos protegidos se ciclaron entre los términos
amino y carboxilo mediante reacción de la amina libre aminoterminal,
protegida en su cadena lateral, y el ácido libre carboxiterminal,
usando difenilfosforilazida, como se describe con más detalle en el
Ejemplo 2, subsección M, más abajo.
Los productos unidos a la resina amídica Rink o
a HMP se separaron habitualmente mediante escisión, y los péptidos
ciclados protegidos se desprotegieron usando una disolución
compuesta de ácido trifluoroacético (TFA), o TFA y cloruro de
metileno, que comprende opcionalmente agua, tioanisol, etanoditiol,
y triisopropilsilano en relaciones de 100:5:5:2,5:2, durante
0,5-3 horas a temperatura ambiente. Cuando fue
apropiado, los productos se volvieron a S-tritilar en
trifenolmetanol/TFA, y los grupos N-Boc se reintrodujeron en
el péptido usando (Boc)_{2}O.
Los péptidos brutos se purificaron mediante
cromatografía de líquidos a alta presión preparativa (HPLC), usando
una columna C18 Waters DeltaPak, y un gradiente de elución con 0,1%
de TFA en agua modificada con acetonitrilo. Después de la elución
de la columna, se evaporó el acetonitrilo de las fracciones eluidas,
que entonces se liofilizaron. La identidad de cada producto así
producido y purificado se confirmó mediante espectrometría de masas
con bombardeo de átomos rápidos (FABMS), o mediante espectroscopía
de masas por electropulverización
(ESMS).
(ESMS).
Una mezcla de
N-\alpha-carbobenzoxi-N-\varepsilon-terc-butoxicarbonil-lisina
(23 g, 60,5 mmoles) y N-hidroxisuccinimida (7,1 g, 61,7
mmoles) en 180 ml tetrahidrofurano seco (THF) enfriado en un baño de
agua fría, se añadió diisopropilcarbodiimida (9,66 ml, 61,7
mmoles). Esta mezcla de reacción se agitó toda la noche, y después
se filtró, y se evaporó el filtrado. El residuo del filtrado se
redisolvió entonces en acetato de etilo mínimo, 200 ml de éter y 200
ml de hexanos. El compuesto del título precipitó de esta mezcla y
se recuperó mediante filtración, se lavó con hexanos fríos y se
secó para dar 28,1 g (58,9 mmoles, 97% de rendimiento).
A una disolución de éster metílico de valina
(8,38 g, 50 mmoles) y diisopropiletilamina (12,7 ml, 50 mmoles), en
150 ml de THF, se añadió éster N-hidroxisuccinimídico de
N-\alpha-carbobenzoxi-N-\varepsilon-terc-butoxicarbonil-lisina
(23,9 g, 50 mmoles), seguido de 50 ml adicionales de THF. Después
de 2 h, el disolvente se eliminó por evaporación y se añadieron 50
ml acetato de etilo al residuo. Esta disolución se lavó
secuencialmente con 200 ml de ácido cítrico al 5%, 200 ml de
bicarbonato sódico saturado y 200 ml de salmuera saturada, se secó
sobre sulfato magnésico anhidro, se filtró y se evaporó. El aceite
resultante se disolvió en acetato de etilo mínimo, 200 ml de éter y
200 ml de hexanos. El compuesto del título se aisló por filtración,
y se secó para producir 20 g (40,5 mmoles, 81% de rendimiento).
A una disolución de éster metílico de
N-\alpha-carbobenzoxi-N-\varepsilon-terc-butoxicarbonil-lisil-valina
(19 g, 38,5 mmoles) y ácido acético (1 ml), en 100 ml acetato de
etilo, se añadió catalizador de paladio al 10% sobre carbón (0,19
g), y se agitó en una atmósfera de nitrógeno durante toda la noche.
La mezcla de reacción se filtró entonces sobre Celite, el filtrado
se evaporó, y el residuo se redisolvió en 100 ml metanol que
contiene 1 ml de ácido acético. A esta disolución se añadió paladio
al 10% sobre carbón (0,19 g), y la mezcla se hidrogenó a una
presión de 45 libras por pulgada al cuadrado, durante 2 h, usando un
hidrogenador Parr. La mezcla de reacción se filtró nuevamente sobre
Celite, y el filtrado se evaporó para dar 13,56 g del compuesto del
título (37,7 mmoles, 98% de rendimiento).
A una disolución de hemihidrato de
N-\alpha-fluorenilmetoxicarbonil-triptófano
(25 g, 82,1 mmoles) y N-hidroxisucci-
nimida (9,78 g, 85 mmoles), en 250 ml de THF seco enfriado en un baño de agua fría, se añadió diisopropilcarbodiimida (13,3 ml, 85 mmoles). La mezcla de reacción se agitó toda la noche, se filtró, y el filtrado se evaporó. El residuo se redisolvió entonces en tolueno y hexanos. El compuesto del título se aisló mediante filtración, y se secó para producir 34 g (66,5 mmoles, 81% de rendimiento).
nimida (9,78 g, 85 mmoles), en 250 ml de THF seco enfriado en un baño de agua fría, se añadió diisopropilcarbodiimida (13,3 ml, 85 mmoles). La mezcla de reacción se agitó toda la noche, se filtró, y el filtrado se evaporó. El residuo se redisolvió entonces en tolueno y hexanos. El compuesto del título se aisló mediante filtración, y se secó para producir 34 g (66,5 mmoles, 81% de rendimiento).
A una mezcla de éster metílico de
N-\varepsilon-terc-butoxicarbonil-lisil-valina
(13 g, 36,1 mmoles), en 200 ml de THF, se añadió éster
N-hidroxisuccinimídico de
fluorenilmetoxicarbonil-_{D}-triptófano,
(18,9 g, 36,1 mmoles). Se añadió diisopropiletilamina para ajustar
el pH de la mezcla de reacción hasta pH 8, y la reacción se agitó
durante 2 días. El disolvente se eliminó entonces mediante
evaporación, y el residuo se redisolvió en acetato de etilo, se
lavó con ácido cítrico al 5%, con bicarbonato saturado, y con
salmuera saturada, y después se secó sobre sulfato de sodio. La
disolución se filtró entonces y se evaporó, y el residuo se
redisolvió en acetato de etilo. El compuesto del título se recuperó
después de varias cristalizaciones de esta disolución, para dar
17,3 g de producto (22,5 mmoles, 62% de rendimiento).
A una disolución de
N-\alpha-fluorenilmetoxicarbonil-O-terc-butiltirosina
(25 g, 54,3 mmoles) y N-hidroxisuccinimida (6,62 g, 57,5
mmoles), en 250 ml de THF seco enfriado en un baño de agua fría, se
añadió diisopropilcarbodiimida (9,0 ml, 57,5 mmoles). La mezcla de
reacción se agitó toda la noche, se filtró, y el filtrado se
evaporó. El residuo se redisolvió entonces en tolueno y hexanos. El
compuesto del título se aisló mediante filtración, y se secó para
producir 27,7 g (49,7 mmoles, 92% de rendimiento).
El éster metílico de
fluorenilmetoxicarbonil-_{D}-triptofanoil-N-\varepsilon-terc-butoxicarbonil-lisil-valina
(17 g, 22,1 mmoles) se trató con 40 ml dietilamina y 40 ml de THF a
temperatura ambiente durante 1,5 h. La mezcla de reacción se
evaporó entonces, se resuspendió en 100 ml de THF y reevaporó tres
veces. El residuo se recogió en 120 ml de THF seco, y se añadió
éster N-hidroxisuccinimídico de
N-fluorenilmetoxicarbonil-O-terc-butiltirosina
(12,3 g, 22,1 mmoles), seguido de 20 ml de THF seco y 4 ml de
diisopropiletilamina, dando como resultado una disolución que tiene
un pH de 9. Después de agitar toda la noche, la reacción se evaporó,
y el residuo se recogió en acetato de etilo. La disolución de
acetato de etilo se lavó con ácido cítrico al 5%, con bicarbonato
sódico saturado y con salmuera saturada, después se secó sobre
sulfato magnésico y se evaporó. El residuo se recogió en acetato de
etilo, éter y hexanos, y el compuesto del título precipitó. El
compuesto precipitado se aisló mediante filtración, y se secó para
dar 14,6 g del compuesto del título (14,8 mmoles, 67% de
rendimiento).
A una disolución de
N-\alpha-fluorenilmetoxicarbonil-N-metilfenilalanina
(25 g, 62,3 mmoles) y N-hidroxisuccinimida (7,5 g, 65
mmoles) en 180 ml de THF seco enfriado en un baño de agua fría, se
añadió diisopropilcarbodiimida (10 ml, 64,2 mmoles). La mezcla de
reacción se agitó toda la noche, se filtró y se evaporó el filtrado.
El residuo se redisolvió entonces en tolueno y hexanos. El
compuesto del título se aisló mediante filtración, y se secó para
dar 28,3 g (57 mmoles, 91% de rendimiento).
El éster metílico de
fluorenilmetoxicarbonil-O-terc-butil-tirosil-_{D}-triptofanoil-N-\varepsilon-terc-butoxicarbonil-lisil-valina
(14 g, 14,2 mmoles) se trató con 35 ml de dietilamina y 35 ml de
THF a temperatura ambiente durante 1 h. La mezcla de reacción se
evaporó entonces, se resuspendió en 100 ml de THF, y reevaporó tres
veces. El residuo se recogió en acetato de etilo y hexanos. El
producto, éster metílico de
O-terc-butiltirosil-D-triptofanoil-N-\varepsilon-terc-butoxicarbonil-lisil-valina,
precipitó, se aisló por filtración y se secó para producir 9,7 g
(12,7 mmoles, 90% de rendimiento). El éster metílico de
O-terc-butiltirosil-_{D}-triptofanoil-N-\varepsilon-terc-butoxicarbonil-lisil-valina,
se disolvió en 35 ml de THF seco, y se añadió éster
N-hidroxisuccinimídico de
N-fluorenilmetoxicarbonil-N-metilfenilalanina (6,35
g, 14,2 mmoles), seguido de 3 ml de
diisopropil-etilamina, dando como resultado una
disolución que tiene un pH de 9. Después de agitar toda la noche,
la reacción se evaporó y el residuo se recogió en acetato de etilo.
La disolución de acetato de etilo se lavó con ácido cítrico al 5%,
con bicarbonato sódico saturado y con salmuera saturada, después se
secó sobre sulfato de magnesio, y se evaporó. El residuo se recogió
en acetato de etilo, éter y hexanos, y el compuesto del título
precipitó. El compuesto precipitado se aisló mediante filtración y
se secó para dar 12,4 g del compuesto del título (11,5 mmoles, 81%
de rendimiento).
a. A alrededor de 400 ml de amoníaco líquido,
enfriado hasta -78ºC en un baño de hielo seco/etanol, se añadieron
pequeñas cantidades de sodio elemental, seguido de una cantidad
suficiente de homocisteína para paralizar el color azul resultante
de la disolución de sodio/amoníaco hasta que se habían consumido 5,7
g (248 mmoles) de sodio y 9,75 g (36,3 mmoles) de homocisteína, y
el color azul de la disolución de sodio/amoníaco persistió durante
alrededor de 15 minutos. Se añadió cloruro amónico (0,5 g) para
paralizar el color azul final, y después la reacción se retiró del
baño de enfriamiento y se dejó que se evaporase el amoníaco en una
corriente de argón. El matraz se calentó ligeramente para eliminar
esencialmente todo el amoníaco residual.
Al residuo se añadió trifenilmetanol (23,6 g, 91
mmoles), y el matraz de reacción se enfrió en un baño de
hielo/agua. Se añadieron 250 ml de ácido trifluoroacético (TFA), y,
después de 30 minutos, la mezcla se evaporó y el residuo se
redisolvió y se reevaporó tres veces con cloroformo. El residuo se
redisolvió entonces en 300 ml de agua, y el pH se ajustó hasta pH 4
con ácido cítrico al 5% y KOH 1 M. El producto precipitó como una
goma, y se recogió mediante filtración. El residuo se trituró
entonces con éter para producir
S-tritil-homocisteína (7 g, 18,6
mmoles, 26% de rendimiento). Se aisló una segunda cosecha del
filtrado mediante cristalización en dimetilformamida (DMF)/agua,
para dar un rendimiento combinado de 24,2 g (64 mmoles, 89%).
b. A una disolución de
S-tritil-homocisteína (20 g, 53 mmoles) en
150 ml de acetona/100 ml de agua, se añadió carbonato de sodio
(11,5 g, 109 mmoles), y después carbonato de
O-fluorenilmetil-O’-(N-succinimidilo)
(17,5 g, 52 mmoles), disuelto en 200 ml de acetona, realizándose
estas adiciones durante el transcurso de alrededor de 1 h. La
mezcla de reacción se agitó entonces durante alrededor de 2 días, y
después se evaporaron los disolventes orgánicos. Al residuo acuoso
se añadieron 300 ml de acetato de etilo, y la mezcla se acidificó
con HCl 1 M. La fase orgánica se separó y se lavó secuencialmente
con HCl 1 M, HCl 0,5 M y HCl 0,25 M, después se secó sobre sulfato
de magnesio, se filtró y se evaporó. El producto bruto se
cromatografió sobre gel de sílice (100% de
cloroformo-3% de metanol en cloroformo) para
producir el compuesto del título (19,4 g, 32 mmoles, 62% de
rendimiento).
El éster metílico de
fluorenilmetoxicarbonil-N-metilfenilalanin-O-terc-butil-tirosil-_{D}-triptofanoil-N-\varepsilon-terc-butoxi-
carbonil-lisil-valina (9,8 g, 8,5 mol) se trató con 28 ml de dietilamina y 30 ml de THF, a temperatura ambiente durante 1 h. La mezcla de reacción se evaporó entonces, se resuspendió en 100 ml de THF, y reevaporó tres veces. El residuo se recogió en acetato de etilo y hexanos. Se precipitó el producto, éster metílico de N-metilfenilalanin-O-terc-butiltirosil-_{D}-triptofanoil-N-\varepsilon-terc-butoxicarbonil-lisil-valina, se aisló mediante filtración y se secó para producir 4,9 g (8,1 mmoles, 95% de rendimiento).
carbonil-lisil-valina (9,8 g, 8,5 mol) se trató con 28 ml de dietilamina y 30 ml de THF, a temperatura ambiente durante 1 h. La mezcla de reacción se evaporó entonces, se resuspendió en 100 ml de THF, y reevaporó tres veces. El residuo se recogió en acetato de etilo y hexanos. Se precipitó el producto, éster metílico de N-metilfenilalanin-O-terc-butiltirosil-_{D}-triptofanoil-N-\varepsilon-terc-butoxicarbonil-lisil-valina, se aisló mediante filtración y se secó para producir 4,9 g (8,1 mmoles, 95% de rendimiento).
A una disolución de
N-fluorenilmetoxicarbonil-S-tritil-homocisteína,
en 50 ml de THF seco enfriado en un baño de enfriamiento a -15ºC, se
añadió cloruro de
N,N’-bis(2-oxo-3-oxazolidinil)fosfínico
(BOP-Cl; 2,47 g, 9,7 mmoles) y 1,7 ml de
diisopropiletilamina (9,7 mmoles), y la mezcla de reacción se agitó
durante 30 minutos. Se añadió éster metílico de
N-metilfenilalanin-O-terc-butiltirosil-_{D}-triptofanoil-N-\varepsilon-terc-butoxicarbonil-lisil-valina
(7,48 g) en 50 ml de THF seco, seguido de 1,7 ml adicionales de
diisopropiletilamina. La El volumen de reacción se redujo un 50%
mediante evaporación, y después se agitó durante 2 días a
temperatura ambiente. El disolvente se eliminó por evaporación, y
el residuo se redisolvió en acetato de etilo, se lavó con ácido
cítrico al 5%, con bicarbonato sódico saturado y con salmuera
saturada, y se secó sobre sulfato de magnesio. El residuo se
recogió en acetato de etilo, éter y hexanos, y se precipitó el
compuesto del título. El compuesto precipitado se aisló mediante
filtración para dar 10,2 g (6,77 mmoles, 84% de rendimiento).
Una disolución de éster metílico de
N-fluorenilmetoxicarbonil-S-tritil-homocistein-N-metilfenil-alanin-O-terc-
butil-tirosil-_{D}-triptofanoil-N-\varepsilon-terc-butoxicarbonil-lisil-valina, (10 g, 6,6 mmoles) y LiOH.2H_{2}O, en 50 ml de THF y 4 ml de agua, se agitó durante 3 días. Se añadieron 25% en moles adicionales de LiOH.2H_{2}O, y dos horas después el disolvente se evaporó, y el residuo se redisolvió en acetato de etilo. Esta disolución se lavó entonces con ácido cítrico al 5%, con bicarbonato sódico saturado, y con salmuera saturada, se secó sobre sulfato de magnesio, se filtró y se evaporó. El residuo se redisolvió en acetato de etilo, éter y hexanos, y el compuesto del título precipitó y se aisló mediante filtración y se secó. El producto impuro resultante se cromatografió de forma ultrarrápida en gel de sílice, usando cloroformo/10% de metanol en cloroformo, para producir 3,46 g del compuesto del título puro (47 mmoles, 41% de rendimiento).
butil-tirosil-_{D}-triptofanoil-N-\varepsilon-terc-butoxicarbonil-lisil-valina, (10 g, 6,6 mmoles) y LiOH.2H_{2}O, en 50 ml de THF y 4 ml de agua, se agitó durante 3 días. Se añadieron 25% en moles adicionales de LiOH.2H_{2}O, y dos horas después el disolvente se evaporó, y el residuo se redisolvió en acetato de etilo. Esta disolución se lavó entonces con ácido cítrico al 5%, con bicarbonato sódico saturado, y con salmuera saturada, se secó sobre sulfato de magnesio, se filtró y se evaporó. El residuo se redisolvió en acetato de etilo, éter y hexanos, y el compuesto del título precipitó y se aisló mediante filtración y se secó. El producto impuro resultante se cromatografió de forma ultrarrápida en gel de sílice, usando cloroformo/10% de metanol en cloroformo, para producir 3,46 g del compuesto del título puro (47 mmoles, 41% de rendimiento).
Una disolución de
S-tritil-homocistein-N-metilfenilalanin-O-terc-butil-tirosil-_{D}-triptofanoil-N-\varepsilon-terc-butoxicarbo-
nil-lisil-valina (3,42 g, 2,69 mmoles) disuelta en 1740 ml DMF, se enfrió en un baño de agua con hielo, y se añadieron 1,16 ml de diisopropiletilamina y difenilfosforilazida (DPPA; 5,4 g, 1,16 mmoles). La reacción se incubó -20ºC durante 5 días, y se añadieron 25% en moles adicionales de DPPA, seguido de 100% en moles adicionales de diisopropiletilamina. El disolvente DMF se eliminó entonces por evaporación, y el compuesto del título bruto se cristalizó en acetato de etilo, éter y hexanos, para producir 2,43 g (1,9 mmoles, 69%).
nil-lisil-valina (3,42 g, 2,69 mmoles) disuelta en 1740 ml DMF, se enfrió en un baño de agua con hielo, y se añadieron 1,16 ml de diisopropiletilamina y difenilfosforilazida (DPPA; 5,4 g, 1,16 mmoles). La reacción se incubó -20ºC durante 5 días, y se añadieron 25% en moles adicionales de DPPA, seguido de 100% en moles adicionales de diisopropiletilamina. El disolvente DMF se eliminó entonces por evaporación, y el compuesto del título bruto se cristalizó en acetato de etilo, éter y hexanos, para producir 2,43 g (1,9 mmoles, 69%).
La
ciclo-S-tritil-homocistein-N-metilfenilalanin-O-terc-butil-tirosil-_{D}-triptofanoil-N-\varepsilon-terc-butoxicarbonil-lisil-
valina (2,34 g, 1,9 mmoles) se trató con 18,7 ml de TFA, 2 ml de
diclorometano, 0,94 ml de agua, 0,47 ml de etanoditiol y 0,37 ml de
triisopropilsilano durante 1 h a temperatura ambiente. El TFA se
eliminó por evaporación, y el residuo se redisolvió y reevaporó en
cloroformo tres veces. Después, el residuo se redisolvió en 10 ml
cloroformo, y se vertió en 400 ml de éter frío. El precipitado del
producto bruto se recogió por filtración y se purificó mediante
HPLC de fase inversa preparativa en C18 (usando un gradiente de 30%
de acetonitrilo \rightarrow 60% de acetonitrilo en agua,
conteniendo todos los disolventes 0,1% de TFA), para dar el
compuesto del título (1 g, 1,2 mmoles, 62% de rendimiento). El
análisis mediante espectrometría de masas con bombardeo de átomos
rápidos (FABMS) dio un MH^{+} de 855, en comparación con el valor
teórico (medio) predicho de 855,09.
La
ciclo-N-metilfenilalanil-tirosil-_{D}-triptofanoil-lisil-valil-homocisteína
(250 mg, 0,29 mmoles) y la
2-cloroacetil-glicil-glicil-S-tritil-cisteinil-lisilamida
(preparada mediante SPPS como se describe en el Ejemplo 1: 238 mg,
0,35 mmoles) se disolvieron en 7 ml de acetonitrilo y 7 ml de una
disolución de 100 mM carbonato de sodio/0,5 mM de EDTA, pH 10, y se
agitó toda la noche. La mezcla de reacción se evaporó entonces hasta
sequedad, y se desprotegió en TFA que contiene triisopropilsilano,
como se describe antes en el Ejemplo 1. El compuesto del título se
purificó entonces mediante HPLC de fase inversa, para producir 92,4%
del rendimiento teórico esperado. El análisis mediante
espectrometría de masas con bombardeo de átomos rápidos (FABMS) dio
un MH^{+} de 1258, en comparación con el valor predicho (medio)
teórico de 1257,70. La estructura de este producto, denominado
P587, se representa mediante la fórmula:
\vskip1.000000\baselineskip
Se disolvieron 0,1 mg de un reactivo peptídico
preparado como en el Ejemplo 1 en 0,1 ml de agua, o 0,9% de cloruro
de sodio, o 10% de hidroxipropilciclodextrina (HPCD), o etanol:agua
50:50, o disolución salina tamponada con fosfato (PBS), o 50 mM de
tampón de fosfato de potasio (pH = 5, 6 ó 7,4). El gluceptato de
Tc-99m se preparó reconstituyendo un vial Glucoscan
(E.I. DuPont de Nemours, Inc., Wilmington, DE) con 1,0 ml de
pertecnetato de sodio Tc-99m que contiene hasta 200
mCi, y se dejó reposar durante 15 minutos a temperatura ambiente.
Después, se añadieron 25 \mul de gluceptato de
Tc-99m al reactivo, y se dejó que la reacción
transcurriese a temperatura ambiente, o a 100ºC durante
5-30 minutos, y después se filtró a través de un
filtro de 0,2 \mum.
La pureza del reactivo peptídico marcado con
Tc-99m se determinó mediante HPLC, usando las
siguientes condiciones: se cargó una columna analítica Waters
Delta-Pak RP-18, que tiene
dimensiones de 5 \mum x 4,6 mm x 220 mm, con cada péptido marcado
radioactivamente, que entonces se eluyeron a un caudal de disolvente
de 1 ml/min. El gradiente de elución se realizó durante
10-20 minutos, usando un gradiente lineal,
comenzando con 100% de disolvente A (0,1% de TFA/agua) y terminando
con 100% de disolución B (0,1% de TFA/90% de acetonitrilo/agua).
Los componentes radioactivos se detectaron mediante un detector
radiométrico en línea, conectado a un registrador integrador. El
gluceptato de Tc-99m y el pertecnetado de sodio
Tc-99m eluyen entre 1 y 4 minutos en estas
condiciones, mientras que el péptido marcado con
Tc-99m eluyó después de una cantidad de tiempo mucho
mayor.
La siguiente Tabla ilustra el marcaje exitoso
con Tc-99m de péptidos preparados según el Ejemplo
1, usando el método descrito aquí.
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
La radioyodación y radioastatización se
realizaron como se describe por Seevers et al. (1982,
Chem. Rev. 82: 575-590).
Los complejos de renio no radioactivos se
prepararon codisolviendo cada uno de los reactivos de péptidos de
la invención con alrededor de un equivalente molar de
oxotetrabromorrenato (+5) de tetrabutilamonio, preparado como se
describe por Cotton et al. (1966, Inorg. Chem.
5: 9-16) en dimetilformamida o
acetonitrilo/agua, y se agitó durante 0,5-5 días.
Los complejos de renio se aislaron mediante HPLC de fase inversa,
como se describe anteriormente para péptidos marcados con
Tc-99m, y se caracterizaron mediante FABMS o
ESMS.
Los complejos de renio radioactivos, usando, por
ejemplo, Re-186 o Re-188, se
prepararon a partir de las sales de perrenato apropiadas, usando el
mismo protocolo que para el marcaje con Tc-99m, o
añadiendo un agente reductor a una disolución del péptido y
perrenato, o usando opcionalmente un agente de transferencia de
ligando tal como citrato, e incubando la reacción a una temperatura
entre la temperatura ambiente y 100ºC, durante un tiempo entre 5 y
60 minutos.
\vskip1.000000\baselineskip
La capacidad de diversos reactivos de la
invención que se unen al receptor de somatostatina para unirse a
receptores de somatostatina in vitro se demostró en un ensayo
de inhibición de la unión, mediada por el reactivo de péptido, de
un análogo de somatostatina marcado radioactivamente a membranas
celulares que contienen el receptor de somatostatina.
La estirpe celular tumoral pancreática AR42J de
rata, que expresa el receptor de somatostatina, se cultivó en medio
esencial modificado de Dulbecco (DMEM), suplementado con 10% de
suero fetal de ternero (FCS) y 8 mM de glutamina, en una atmósfera
de 5% de CO_{2} humidificada, a 37ºC. Las células cosechadas se
homogeneizaron en tampón frío (50 mM de Tris-HCl, pH
7,4), y el homogenado se centrifugó entonces a 39.000 g durante 10
minutos a 4ºC. Los peletes se lavaron una vez con tampón, y después
se resuspendieron en 10 mM de tampón Tris-HCl (pH
7,4) enfriado con hielo. Después se incubaron alícuotas iguales de
esta preparación de membrana celular con
[^{125}I-Tyr^{11}]somatostatina-14
(Amersham, Arlington Heights, IL), a una concentración final de 0,5
nM a 750.000 cpm/ml de actividad específica 2000 Ci/mmol, y con un
péptido o con un complejo de péptido-renio de la
invención (a una concentración final que oscila desde 10^{-11} M
hasta 10^{-6}M en 50 mM de tampón HEPES, pH 7,4, que contiene 1%
de seroalbúmina bovina, 5 mM de MgCl_{2}, 0,02 mg/ml de
bacitracina, 0,02 mg/ml de fluoruro de fenilmetilsulfonilo y
200.000 UI de Trasylol durante 25 minutos a 30ºC.
Después de la incubación, esta mezcla de
membrana se filtró a través de un filtro GC/F (Whatman Ltd.,
Maidstone, Inglaterra), lavado con polietilenimina, usando un
colector de filtración, y el residuo que queda en el filtro se lavó
tres veces con 5 ml de tampón HEPES frío. El filtro y una muestra de
los lavados del filtro se contaron entonces en un contador gamma.
Para evaluar la unión no específica, el ensayo también se realizó
esencialmente como se describe, en presencia de 200 nM de
somatostatina-14 no marcada. El análisis de datos
incluye gráficas de Hill de los datos, para producir las constantes
de inhibición como se describe mediante Bylund y Yamamura (1990,
Methods in Neurotransmitter Receptor Analysis, Yamamura et
al., eds., Raven Press: N.Y.). Los resultados obtenidos usando
este ensayo con los reactivos de la invención fueron los
siguientes:
\vskip1.000000\baselineskip
Estos resultados demuestran que los reactivos
peptídicos de la invención se unen con una afinidad elevada a
receptores de somatostatina in vitro.
La formación de imágenes in vivo de
receptores de somatostatina expresados por células tumorales de rata
se realizó esencialmente como se describe por Bakker et al.
(1991, Life Sciences 49:
1593-1601).
Las células tumorales pancreáticas de rata
CA20948, descongeladas a partir de pasta de tumor cosechada
congelada, se implantaron intramuscularmente en una suspensión de
0,05 a 0,1 ml/animal, en el muslo trasero derecho de ratas Lewis de
6 semanas. Se dejó que los tumores creciesen hasta aproximadamente
0,5 a 2 g, se cosecharon, y la pasta tumoral se usó para implantar
en un segundo conjunto de ratas Lewis que no se ha sometido
previamente a experimentación. El paso de esta manera se repitió
para generar generaciones sucesivas de animales con tumores. Los
animales con tumores usados para los estudios in vivo fueron
habitualmente los del tercer a quinto paso, y tenían tumores de 0,2
a 2 g.
Para estudios de la especificidad de la
localización del radiotrazador en los tumores, se administró a
animales seleccionados una dosis subcutánea que bloquea SSTR (4
mg/kg) de octreótido, 30 minutos antes de la inyección del
radiotrazador. (Bakker et al. han demostrado que este
protocolo da como resultado una reducción de la captación de
^{111}In-[DTPA]octreótido por parte del tumor en un
40%.
Las ratas Lewis que tienen tumores CA20948 de
tercer a quinto paso se inmovilizaron, y se les inyectó
intravenosamente, vía la vena de la cola dorsal, una dosis de
0,15-0,20 mCi de péptido marcado con ^{99m}Tc,
correspondiente a 3 hasta 8 \mug de péptido en 0,2 a 0,4 ml.
En tiempos seleccionados, los animales se
sacrificaron mediante dislocación cervical, y se realizó la
necropsia seleccionada. Las muestras de tejido cosechadas se
pesaron y se contaron junto con una alícuota de la dosis inyectada,
en un contador gamma de pocillos.
En la Tabla 3 se presentan los resultados de la
biodistribución de 90 minutos de péptidos seleccionados marcados
radioactivamente. Notablemente, ^{99m}Tc-P587,
^{99m}Tc-P617, ^{99m}Tc-P726, y
^{99m}Tc-P736 mostraron una captación tumoral muy
elevada y relaciones de tumor/sangre que demuestran su captación
específica elevada en el tejido (tumoral) diana.
La Figura 1 muestra una imagen de
^{99m}Tc-P587 en una rata con tumor. La captación
elevada en el tumor, en la pata inferior (flecha), es claramente
visible.
La captación de ^{99m}Tc-P587
en tumores en ratas se comparó con y sin tratamiento de inyección
previa con octreótido, un análogo de somatostatina que se sabe que
se une al receptor de somatostatina in vivo. En estos
experimentos, el bloqueo del receptor mediante la administración de
octreótido, antes de la administración de
^{99m}Tc-P587, redujo en un 76% la captación
tumoral específica del péptido marcado radioactivamente. Estos
resultados confirmaron que la unión de
^{99m}Tc-P587 in vivo fue específica de
SSTR.
En un ensayo clínico, se lograron formaciones de
imágenes gammagráficas de pacientes humanos que tienen tumores que
expresan SSTR, usando el reactivo P587 marcado con
Tc-99m.
Un total de 10 pacientes, cuatro hembras y seis
varones, que oscilan desde 27 hasta 69 años de edad, han sido
diagnosticados previamente con adenoma de la pituitaria que segrega
hormona de crecimiento (4 pacientes), con melanoma (1 paciente),
cáncer medular de tiroide (1 paciente), carcinoma pulmonar
microcítico (SCLC; 1 paciente), linfoma que no es de Hodgkin (1
paciente) o con carcinoide gástrico (1 paciente). A cada uno de
estos pacientes se les administró P587 marcado con
Tc-99m, a una dosis de 10-22 mCi por
0,2-0,5 mg, mediante inyección intravenosa.
Después, se realizó la formación de imágenes gammagráficas como se
describe aquí, en cada paciente, durante 4 horas tras la
inyección.
La formación de imágenes mediante cámara gamma
comenzó simultáneamente con la inyección. Se adquirieron imágenes
anteriores como un estudio dinámico (adquisiciones de imágenes de 10
segundos) durante los primeros 10 minutos, y después como imágenes
estáticas a 1, 2, 3 y 4 h después de la inyección. Las imágenes
anteriores se adquirieron para 500.000 recuentos o 20 min. (lo que
sea más corto), a aproximadamente 10-20 min., y a
aproximadamente 1, 2, 3 y 4 h después de la inyección.
Se encontró que el agente formador de imágenes
gammagráficas se aclara rápidamente del torrente sanguíneo, dando
como resultado una permanencia en la circulación de menos de 10% de
la dosis inyectada dentro de los 30 minutos de la inyección. Esto
permitió la adquisición de imágenes de sitios tumorales tan pronto
como 15-30 minutos después de la inyección del
agente formador de imágenes gammagráficas. Todos los tumores
conocidos se detectaron en este estudio, así como dos lesiones
metastásicas no detectadas previamente, que fueron confirmadas
posteriormente usando tomografía asistida por ordenador (barrido de
CAT).
Estos resultados demostraron que los agentes de
la invención formadores de imágenes gammagráficas fueron muy
eficaces detectando tumores primarios y metastásicos que expresan
SSTR en seres humanos in vivo.
Se debe de entender que la descripción anterior
enfatiza ciertas realizaciones específicas de la invención, y que
todas las modificaciones o alternativas equivalentes a ellas están
dentro del espíritu y del alcance de la invención, como se expone
en las reivindicaciones anejas.
Claims (15)
1. Una composición de materia que comprende
un péptido de unión específica enlazado covalentemente a un resto
complejante de ion metálico, en la que el péptido se une
específicamente a receptores de somatostatina, teniendo el reactivo
la fórmula:
ciclo\underline{(N-CH_{3})-Phe-Tyr-(}D\underline{-Trp)-Lys-Val-Hcy.}(CH_{2}CO.X)
- en la que X es un resto complejante de ion metálico que tiene la fórmula
-(aminoácido)_{n}-B-(aminoácido)_{m}-Z,
- en la que B es un resto que contiene tiol, que es, cisteína, homocisteína, isocisteína, o penicilamina;
- (aminoácido)_{n} y (aminoácido)_{m} son, cada uno independientemente, cualquier \alpha- o \beta-aminoácido primario que no comprende un grupo tiol;
- Z es -OH o -NH_{2};
- n es un número entero entre 2 y 5; y
- m es un número entero entre 0 y 5;
con la condición de que el reactivo no tenga
ninguna de las siguientes fórmulas:
\vskip1.000000\baselineskip
2. Un reactivo para preparar un agente
formador de imágenes gammagráficas, para formar imágenes de un sitio
en un cuerpo de un mamífero, opcionalmente un sitio de un tumor
primario o metastásico, que expresa el receptor de somatostatina,
que comprende una composición de materia según la reivindicación
1.
3. Un agente formador de imágenes
gammagráficas que comprende un reactivo según la reivindicación 2,
en el que el resto de unión al marcador radioactivo está unido a
tecnecio-99m.
4. Un complejo formado haciendo reaccionar
un reactivo de la reivindicación 2 con tecnecio-99m
en presencia de un agente reductor, por ejemplo ion estannoso, o
marcando un reactivo de la reivindicación 2 con
tecnecio-99m mediante intercambio de ligando de un
complejo de tecnecio-99m reducido previamente.
5. Un kit para preparar una preparación
radiofarmacéutica, comprendiendo dicho kit un vial cerrado
herméticamente que contiene una cantidad predeterminada de un
reactivo de la reivindicación 2 y una cantidad suficiente de agente
reductor para marcar el reactivo con
tecnecio-99m.
6. Un método para marcar un reactivo según
la reivindicación 2, que comprende hacer reaccionar el reactivo con
tecnecio-99m en presencia de un agente reductor, por
ejemplo ion estannoso.
7. Una composición de materia que comprende
un péptido de unión específica enlazado covalentemente a un resto
complejante de iones metálicos, en la que el péptido se une
específicamente a receptores de somatostatina, teniendo el reactivo
la fórmula:
ciclo\underline{(N-CH_{3})-Phe-Tyr-(}D\underline{-Trp)-Lys-Val-Hcy.}(CH_{2}CO.X)
- en la que X es un resto complejante de ion metálico que tiene la fórmula
-(aminoácido)_{n}-B-(aminoácido)_{m}-Z,
- en la que B es un resto que contiene tiol, que es, cisteína, homocisteína, isocisteína, o penicilamina;
- (aminoácido)_{n} y (aminoácido)_{m} son, cada uno independientemente, cualquier \alpha- o \beta-aminoácido primario que no comprende un grupo tiol;
- Z es -OH o NH_{2};
- n es un número entero entre 2 y 5; y
- m es un número entero entre 0 y 5;
en la que el resto complejante de
ion metálico está unido a un ion metálico, por ejemplo renio, cinc o
estaño; opcionalmente, siendo el ion metálico un ion metálico que
emite partículas \beta, por ejemplo renio-186 o
renio-188, o un ion metálico que emite electrones de
conversión, por ejemplo
estaño-117m;
con la condición de que, cuando el
ion metálico es tecnecio-99m, el reactivo no tenga
ninguna de las siguientes
fórmulas:
8. Una composición de materia según la
reivindicación 7, en la que el reactivo tiene la fórmula:
9. Una composición de materia según la
reivindicación 7 o la reivindicación 8, que está marcada
radioactivamente, preferiblemente está marcada con
yodo-123, yodo-125,
yodo-131, o astato-211.
10. Una composición de materia según la
reivindicación 7 o la reivindicación 8, en la que el resto
complejante de ion metálico está unido a un ion metálico
paramagnético, por ejemplo hierro o cobre, opcionalmente en la que
el reactivo está unido a una partícula superparamagnética.
11. Un agente formador de imágenes para
diagnóstico, que comprende la composición según la reivindicación 9
o la reivindicación 10.
12. Una composición farmacéutica que
comprende la composición de materia de la reivindicación 1, la
reivindicación 7, la reivindicación 8, la reivindicación 9 o la
reivindicación 10, y un vehículo farmacéuticamente aceptable.
13. El uso de una composición de materia de
la reivindicación 1, la reivindicación 7, la reivindicación 8, la
reivindicación 9 o la reivindicación 10, un reactivo de la
reivindicación 2, un agente de la reivindicación 3, o un complejo
de la reivindicación 4, en la preparación de un medicamento para
formar imágenes de un sitio en un cuerpo de un mamífero.
14. El uso de una composición de materia de
la reivindicación 1, la reivindicación 7, la reivindicación 8, la
reivindicación 9 o la reivindicación 10, o una composición
farmacéutica de la reivindicación 12, en la preparación de un
medicamento para tratar un animal que tiene un tumor cancerígeno o
benigno, o que tiene células neoplásicas o metastásicas que
expresan un receptor de somatostatina.
15. El uso de un agente formador de imágenes
de la reivindicación 3, o una composición de materia de la
reivindicación 9, para la preparación de un medicamento para la
cirugía guiada mediante radioisótopos, en la que se extirpa el
tejido que contiene células neoplásicas o metastásicas identificadas
mediante localización de radioactividad a partir de la composición
de materia administrada.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US241625 | 1981-03-09 | ||
US08/241,625 US5783170A (en) | 1991-11-27 | 1994-05-12 | Peptide-metal chelate conjugates |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2274517T3 true ES2274517T3 (es) | 2007-05-16 |
Family
ID=22911488
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES95919827T Expired - Lifetime ES2274517T3 (es) | 1994-05-12 | 1995-05-12 | Conjugados de peptido-quelato metalico que se unen a la somatostatina. |
Country Status (12)
Country | Link |
---|---|
US (5) | US5783170A (es) |
EP (1) | EP0759786B1 (es) |
JP (1) | JP3918157B2 (es) |
CN (1) | CN1078480C (es) |
AT (1) | ATE340594T1 (es) |
AU (1) | AU708797B2 (es) |
DE (1) | DE69535242T2 (es) |
DK (1) | DK0759786T3 (es) |
ES (1) | ES2274517T3 (es) |
PT (1) | PT759786E (es) |
WO (1) | WO1995031221A1 (es) |
ZA (1) | ZA953878B (es) |
Families Citing this family (33)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5382654A (en) * | 1992-02-05 | 1995-01-17 | Mallinckrodt Medical, Inc. | Radiolabelled peptide compounds |
US5965107A (en) * | 1992-03-13 | 1999-10-12 | Diatide, Inc. | Technetium-99m labeled peptides for imaging |
US5443815A (en) * | 1991-11-27 | 1995-08-22 | Diatech, Inc. | Technetium-99m labeled peptides for imaging |
US7238340B1 (en) * | 1991-11-27 | 2007-07-03 | Cis Bio International | Monoamine, diamide, thiol-containing metal chelating agents |
US5997844A (en) * | 1991-02-08 | 1999-12-07 | Diatide, Inc. | Technetium-99m labeled peptides for imaging |
US5783170A (en) * | 1991-11-27 | 1998-07-21 | Diatide, Inc. | Peptide-metal chelate conjugates |
US6017512A (en) * | 1992-06-23 | 2000-01-25 | Diatide, Inc. | Radiolabeled peptides |
US6051206A (en) * | 1994-06-03 | 2000-04-18 | Diatide, Inc | Radiolabeled somatostatin-derived peptides for imaging and therapeutic uses |
US6713605B1 (en) * | 1996-04-10 | 2004-03-30 | Kansas State University Research Foundation | Synthetic peptides that inhibit leukocyte superoxide anion production and/or attract leukocytes |
US6685913B1 (en) | 1999-03-09 | 2004-02-03 | Thomas Jefferson University | Lipid soluble radioactive metal chelates for tumor therapy |
US6358491B1 (en) * | 1999-08-27 | 2002-03-19 | Berlex Laboratories, Inc. | Somatostatin analogs |
US6579967B1 (en) | 1999-12-14 | 2003-06-17 | The Salk Institute For Biological Studies | Receptor-selective somatostatin analogs |
US7019109B2 (en) * | 2001-03-16 | 2006-03-28 | The Salk Institute For Bilogical Studies | SSTR1-selective analogs |
US20020187099A1 (en) * | 2001-05-16 | 2002-12-12 | Rajesh Manchanda | Stabilization of radionuclide-containing compositions |
AU2003259172A1 (en) * | 2002-07-24 | 2004-02-09 | The Salk Institute For Biological Studies | Receptor (sstr4)- selective somatostatin analogs |
CA2515155C (en) * | 2003-02-13 | 2013-11-19 | The Regents Of The University Of California | Methods and compositions for detection and analysis of polynucleotide-binding protein interactions using light harvesting multichromophores |
US20050118099A1 (en) * | 2003-03-10 | 2005-06-02 | Braslawsky Gary R. | Thiol-mediated drug attachment to targeting peptides |
US20070184537A1 (en) * | 2003-06-03 | 2007-08-09 | Paul Scherrer Institut | Method for the linkage of bifunctional chelating agents and (radioactive) transition metal complexes to proteins and peptides |
US8540968B2 (en) | 2004-03-02 | 2013-09-24 | Cellectar, Inc. | Phospholipid ether analogs as agents for detecting and locating cancer, and methods thereof |
WO2005084716A2 (en) | 2004-03-02 | 2005-09-15 | Cellectar, Llc | Phospholipid analogs for diagnosis and treatment of cancer |
WO2006114324A1 (en) * | 2005-04-28 | 2006-11-02 | Schering Ag | Compounds comprising cyclized somatostatin receptor binding peptides |
EP1717247A1 (en) * | 2005-04-28 | 2006-11-02 | Schering AG | Cyclic peptides binding to the somatostatin receptor |
US7842280B2 (en) * | 2006-09-06 | 2010-11-30 | Case Western Reserve University | Flexibly labeling peptides |
WO2008143958A1 (en) * | 2007-05-18 | 2008-11-27 | The Brigham And Women's Hospital, Inc. | Use of somatostatin analogs in myocardial perfusion imaging |
WO2009032181A2 (en) * | 2007-09-04 | 2009-03-12 | Ipsen Pharma S.A.S. | Methods and intermediates for chemical synthesis of polypeptides and proteins |
EP2328492B1 (en) | 2008-06-06 | 2018-03-28 | Providence Medical Technology, Inc. | Facet joint implants and delivery tools |
US8361152B2 (en) | 2008-06-06 | 2013-01-29 | Providence Medical Technology, Inc. | Facet joint implants and delivery tools |
WO2010144788A2 (en) | 2009-06-12 | 2010-12-16 | Cellectar, Inc. | Ether and alkyl phospholipid compounds for treating cancer and imaging and detection of cancer stem cells |
EP2475400A2 (en) * | 2009-09-11 | 2012-07-18 | Cellectar, Inc. | Non-radioactive phospholipid compounds, compositions, and methods of use |
US20120065092A1 (en) * | 2010-09-14 | 2012-03-15 | Wai Hobert | Fusion analyte cytometric bead assay, and systems and kits for performing the same |
RU2014113269A (ru) * | 2011-09-07 | 2015-10-20 | ДАУ ГЛОБАЛ ТЕКНОЛОДЖИЗ ЭлЭлСи | Жидкость для технического обслуживания ствола скважины, содержащая гидрофобно модифицированные полимеры |
WO2014144476A1 (en) * | 2013-03-15 | 2014-09-18 | The Broad Institute, Inc. | Methods for the detection of dna-rna proximity in vivo |
CN110256310A (zh) * | 2019-07-01 | 2019-09-20 | 吉尔生化(上海)有限公司 | 一种n-芴甲氧羰基-s-(4-甲氧基三苯甲基)-l-高半胱氨酸的制备方法 |
Family Cites Families (71)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4235886A (en) * | 1979-10-31 | 1980-11-25 | Merck & Co., Inc. | Cyclic hexapeptide somatostatin analogs |
US4444690A (en) * | 1982-02-25 | 1984-04-24 | University Patents, Inc. | Technetium chelates |
US4472509A (en) * | 1982-06-07 | 1984-09-18 | Gansow Otto A | Metal chelate conjugated monoclonal antibodies |
US4668503A (en) * | 1982-07-26 | 1987-05-26 | Trustees Of University Of Massachusetts | Process for labeling amines with 99m Tc |
US4434151A (en) * | 1982-11-08 | 1984-02-28 | Medi-Physics, Inc. | Bifunctional chelating agents |
US4575556A (en) * | 1982-11-08 | 1986-03-11 | Medi-Physics, Inc. | Bifunctional chelating agents |
US4571430A (en) * | 1982-11-08 | 1986-02-18 | Medi-Physics, Inc. | Homocysteine and homocysteinamide derivatives |
US4673562A (en) * | 1983-08-19 | 1987-06-16 | The Children's Medical Center Corporation | Bisamide bisthiol compounds useful for making technetium radiodiagnostic renal agents |
US4485101A (en) * | 1983-10-11 | 1984-11-27 | Administrators Of The Tulane Educational Fund | Peptides |
WO1985003231A1 (en) * | 1984-01-23 | 1985-08-01 | Institutt For Energiteknikk | TECHNETIUM-99m COMPOSITION FOR LABELLING PROTEINACEOUS MATERIAL AND METHOD |
US4943523A (en) * | 1984-01-30 | 1990-07-24 | Enzo Biochem, Inc. | Detectable molecules, method of preparation and use |
DE3680924D1 (de) * | 1985-01-14 | 1991-09-26 | Neorx Corp | Metall-radionuklid markiertes protein fuer diagnose und therapie. |
US4611054A (en) * | 1985-04-29 | 1986-09-09 | Merck & Co., Inc. | Cyclic hexapeptide somatostatin analogs |
US4612366A (en) * | 1985-06-17 | 1986-09-16 | Merck & Co., Inc. | Cyclic hexapeptide somatostatin analogs |
US4904642A (en) * | 1985-09-12 | 1990-02-27 | The Administrators Of The Tulane Educational Fund | Therapeutic somatostatin analogs |
GB8525974D0 (en) * | 1985-10-22 | 1985-11-27 | Nyegaard & Co As | Chemical substance |
JPS62155994A (ja) * | 1985-12-27 | 1987-07-10 | Mitsubishi Monsanto Chem Co | 活性汚泥のバルキング防止剤及びそのバルキング防止方法 |
US4877868A (en) * | 1986-03-12 | 1989-10-31 | Neorx Corporation | Radionuclide antibody coupling |
US4861869A (en) * | 1986-05-29 | 1989-08-29 | Mallinckrodt, Inc. | Coupling agents for joining radionuclide metal ions with biologically useful proteins |
US4853371A (en) * | 1986-06-17 | 1989-08-01 | The Administrators Of The Tulane Educational Fund | Therapeutic somatostatin analogs |
DE3728599A1 (de) * | 1986-12-10 | 1988-06-23 | Hoechst Ag | Verfahren zur herstellung einer mit technetium-99m-markierten organspezifischen substanz |
US4871717A (en) * | 1987-01-07 | 1989-10-03 | Administrators Of The Tulane Educational Fund | Peptides |
US5279811A (en) * | 1987-02-18 | 1994-01-18 | The Du Pont Merck Pharmaceutical Company | Ester-substituted diaminedithiols and radiolabeled complexes thereof |
US5091514A (en) * | 1987-03-26 | 1992-02-25 | Neorx Corporation | Metal-radionuclide-labeled proteins and glycoproteins for diagnosis and therapy |
EP0284071B1 (en) * | 1987-03-26 | 1994-06-08 | Neorx Corporation | Metal-radionuclide-labeled proteins and glycoproteins for diagnosis and therapy |
US4965392A (en) * | 1987-03-26 | 1990-10-23 | Neorx Corporation | Chelating compounds for metal-radionuclide labeled proteins |
JPH02504387A (ja) * | 1987-04-02 | 1990-12-13 | セントカー・カーデイオバスキユラー・イメージング・パートナーズ・エルピー | 金属イオンで抗体を標識付けする方法 |
EP0325639A4 (en) * | 1987-07-07 | 1990-10-24 | Cytrx Biopool Ltd. | Fibrin-binding compound and method |
EP0401302B1 (en) * | 1988-02-09 | 1995-06-28 | Mallinckrodt, Inc. | Method of preparing a metal-radionuclide-labelled protein |
US5061641A (en) * | 1988-04-01 | 1991-10-29 | Immunomedics, Inc. | Method for radiolabeling proteins |
AU628357B2 (en) * | 1988-05-02 | 1992-09-17 | New England Deaconess Hospital Corporation | Synthetic peptides for arterial imaging |
US5218128A (en) * | 1988-06-15 | 1993-06-08 | Centocor, Inc. | Bifunctional coupling agents and radionuclide labeled compositions prepared therefrom |
US5180816A (en) * | 1988-08-24 | 1993-01-19 | Centocor | One vial method for labeling protein/linker conjugates with technetium-99M |
US4925650A (en) * | 1988-11-16 | 1990-05-15 | Mallinckrodt, Inc. | Technetium -99m complex for examining the renal function |
WO1990006323A2 (en) * | 1988-11-29 | 1990-06-14 | Centocor, Inc. | Chimeric proteins incorporating a metal binding protein |
MY106120A (en) * | 1988-12-05 | 1995-03-31 | Novartis Ag | Peptide derivatives. |
GB9111199D0 (en) * | 1991-05-23 | 1991-07-17 | Sandoz Ltd | Improvements in or relating to organic compounds |
US5196510A (en) * | 1988-12-29 | 1993-03-23 | Cytogen Corporation | Molecular recognition units |
US4986979A (en) * | 1989-03-14 | 1991-01-22 | Neorx Corporation | Imaging tissue sites of inflammation |
CA2012115C (en) * | 1989-03-15 | 2001-07-03 | Biomeasure, Inc. | Iodinated somatostatins |
US5196515A (en) * | 1989-03-17 | 1993-03-23 | The Johns Hopkins University | Thiolactone bifunctional chelating agents for diagnostic and therapeutic products |
US5095111A (en) * | 1989-03-17 | 1992-03-10 | The John Hopkins University | Thiolactone bifunctional chelating agents for diagnostic and therapeutic products |
JP2882679B2 (ja) * | 1989-04-26 | 1999-04-12 | ジ・アドミニストレーターズ・オブ・ザ・ツーレイン・エデュケイショナル・ファンド | 線状ソマトスタチン類似体 |
DE69023394T2 (de) * | 1989-06-16 | 1996-07-04 | Merck Frosst Canada Inc | Chelat-Derivate von atrialnatriurethischem Faktor (ANF). |
US5248764A (en) * | 1989-06-16 | 1993-09-28 | Merck Frosst Canada, Inc. | Chelate derivatives of atrial natriuretic factor (ANF) |
GB8914020D0 (en) * | 1989-06-19 | 1989-08-09 | Antisoma Ltd | Synthetic peptides for use in thrombus detection |
WO1991001144A1 (en) * | 1989-07-20 | 1991-02-07 | Sandoz Ltd | Labeled polypeptide derivatives |
FR2650672A1 (fr) * | 1989-08-02 | 1991-02-08 | Medgenix Group Sa | Procede de marquage de proteines ou polypeptides au technetium-99m, conjugue obtenu, utilisation a titre d'agent d'imagerie, kit de reconstitution desdits conjugues |
US5175257A (en) * | 1989-12-29 | 1992-12-29 | Neorx Corporation | Radiolabeled proteins for diagnostic or therapeutic use |
US5112953A (en) * | 1989-12-29 | 1992-05-12 | Neorx Corporation | Radiolabeled proteins for diagnostic or therapeutic use |
EP0450480B1 (en) * | 1990-04-06 | 1995-06-21 | The Administrators of The Tulane Educational Fund | Somatostatin Analogues |
US5178025A (en) * | 1990-08-31 | 1993-01-12 | Innovative Medical Engineering, Inc. | Tiltable lift seat devices |
US5382654A (en) * | 1992-02-05 | 1995-01-17 | Mallinckrodt Medical, Inc. | Radiolabelled peptide compounds |
JP2860157B2 (ja) * | 1990-10-31 | 1999-02-24 | 日本メジフィジックス株式会社 | 腎機能測定用の既放射能標識テクネチウムキレート注射剤の製造方法 |
ATE181240T1 (de) * | 1991-02-08 | 1999-07-15 | Biomeasure Inc | Verwendung von somatostatinanalogen zur behandlung von melanomen |
US7238340B1 (en) * | 1991-11-27 | 2007-07-03 | Cis Bio International | Monoamine, diamide, thiol-containing metal chelating agents |
US5997844A (en) * | 1991-02-08 | 1999-12-07 | Diatide, Inc. | Technetium-99m labeled peptides for imaging |
US5443815A (en) * | 1991-11-27 | 1995-08-22 | Diatech, Inc. | Technetium-99m labeled peptides for imaging |
JPH06508357A (ja) * | 1991-06-03 | 1994-09-22 | マリンクロッド・メディカル・インコーポレイテッド | 標識ポリペプチド、その製造法および使用 |
US5225180A (en) * | 1991-09-10 | 1993-07-06 | Diatech, Inc. | Technetium-99m labeled somatostatin-derived peptides for imaging |
US5783170A (en) * | 1991-11-27 | 1998-07-21 | Diatide, Inc. | Peptide-metal chelate conjugates |
ES2155447T3 (es) * | 1992-01-03 | 2001-05-16 | Rhomed Inc | Aplicaciones farmaceuticas de peptidos-iones metalicos. |
DE69330494T2 (de) * | 1992-02-05 | 2002-03-28 | Mallinckrodt Inc | Radioaktiv markierte somatostatin |
US5326856A (en) * | 1992-04-09 | 1994-07-05 | Cytogen Corporation | Bifunctional isothiocyanate derived thiocarbonyls as ligands for metal binding |
US5508020A (en) * | 1992-06-05 | 1996-04-16 | Diatech, Inc. | Technetium-99M labeled peptides for imaging |
US5716596A (en) * | 1992-06-23 | 1998-02-10 | Diatide, Inc. | Radioactively labeled somatostatin-derived peptides for imaging and therapeutic uses |
US5620675A (en) * | 1992-06-23 | 1997-04-15 | Diatech, Inc. | Radioactive peptides |
ES2158897T3 (es) * | 1993-06-23 | 2001-09-16 | Diatide Inc | Peptidos radiomarcados derivados de somatostatina y utilizados en procedimientos de formacion de imagenes y terapeuticos. |
DK0772459T3 (da) * | 1994-05-02 | 2003-06-02 | Diatide Inc | Technetium-99m mærkede billeddannende midler. |
US5556939A (en) * | 1994-10-13 | 1996-09-17 | Merck Frosst Canada, Inc. | TC or RE radionuclide labelled chelate, hexapeptide complexes useful for diagnostic or therapeutic applications |
US5632969A (en) * | 1994-10-13 | 1997-05-27 | Merck & Co., Inc. | N3 S2 chelating ligands optionally radiolabelled with Tc or Re, useful for diagnostic or therapeutic applications |
-
1994
- 1994-05-12 US US08/241,625 patent/US5783170A/en not_active Expired - Fee Related
-
1995
- 1995-05-12 WO PCT/US1995/006034 patent/WO1995031221A1/en active IP Right Grant
- 1995-05-12 JP JP52982195A patent/JP3918157B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 1995-05-12 PT PT95919827T patent/PT759786E/pt unknown
- 1995-05-12 DE DE69535242T patent/DE69535242T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1995-05-12 CN CN95193841A patent/CN1078480C/zh not_active Expired - Fee Related
- 1995-05-12 DK DK95919827T patent/DK0759786T3/da active
- 1995-05-12 AU AU25500/95A patent/AU708797B2/en not_active Ceased
- 1995-05-12 AT AT95919827T patent/ATE340594T1/de not_active IP Right Cessation
- 1995-05-12 EP EP95919827A patent/EP0759786B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1995-05-12 ZA ZA953878A patent/ZA953878B/xx unknown
- 1995-05-12 ES ES95919827T patent/ES2274517T3/es not_active Expired - Lifetime
-
1998
- 1998-03-13 US US09/039,062 patent/US5965108A/en not_active Expired - Fee Related
- 1998-03-13 US US09/039,116 patent/US5981477A/en not_active Expired - Fee Related
- 1998-03-13 US US09/042,315 patent/US5985241A/en not_active Expired - Fee Related
- 1998-03-13 US US09/042,224 patent/US5972308A/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
WO1995031221A1 (en) | 1995-11-23 |
EP0759786A1 (en) | 1997-03-05 |
EP0759786B1 (en) | 2006-09-27 |
US5783170A (en) | 1998-07-21 |
DE69535242T2 (de) | 2007-05-16 |
ZA953878B (en) | 1996-01-18 |
CN1155248A (zh) | 1997-07-23 |
US5972308A (en) | 1999-10-26 |
JP3918157B2 (ja) | 2007-05-23 |
AU2550095A (en) | 1995-12-05 |
CN1078480C (zh) | 2002-01-30 |
PT759786E (pt) | 2007-01-31 |
AU708797B2 (en) | 1999-08-12 |
ATE340594T1 (de) | 2006-10-15 |
US5985241A (en) | 1999-11-16 |
DK0759786T3 (da) | 2007-01-29 |
DE69535242D1 (de) | 2006-11-09 |
US5965108A (en) | 1999-10-12 |
JPH10500411A (ja) | 1998-01-13 |
US5981477A (en) | 1999-11-09 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2274517T3 (es) | Conjugados de peptido-quelato metalico que se unen a la somatostatina. | |
JP3601827B2 (ja) | ソマトスタチン誘導体およびそれらの放射標識物 | |
ES2204954T3 (es) | Formadores de quelatos metalicos que contienen monoamina, diamida y tiol. | |
US6017509A (en) | Radiolabeled somatostatin receptor-binding peptides | |
CA2138647C (en) | Radioactively-labeled somatostatin-derived peptides for imaging and therapeutic uses | |
US6214316B1 (en) | Somatostatin analogs | |
US5997844A (en) | Technetium-99m labeled peptides for imaging | |
EP0820313A2 (en) | Radiolabeled peptides for diagnosis and therapy | |
ES2308778T3 (es) | Composiciones de peptidos radiomarcados para dirigir a un sitio especifico. | |
US5871711A (en) | Radioactively-labeled somatostatin-derived peptides for imaging and therapeutic uses | |
US6017512A (en) | Radiolabeled peptides | |
US6183722B1 (en) | Somatostatin analogs | |
CA2190108C (en) | Somatostatin binding peptide-metal chelate conjugates | |
AU776961B2 (en) | Radioactively-labeled somatostantin-derived peptides for imaging and therapeutic uses | |
AU2694495A (en) | Monoamine, diamide, thiol-containing metal chelating agents |