ES2268718T3 - Procedimiento para la preparacion de una composicion que contiene factor viii. - Google Patents

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Ronald Dr. Kotitschke
Dieter Dr. Rudnick
Herbert Dr. Dichtelmuller
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Abstract

LA INVENCION TRATA DE UN PROCEDIMIENTO PARA LA FABRICACION DE UNA COMPOSICION QUE CONTIENE UN FACTOR VIII ALTAMENTE PURIFICADO, CON DOBLE INACTIVACION VIRICA PROVENIENTE DE PLASMA SANGUINEO HUMANO.

Description

Procedimiento para la preparación de una composición que contiene factor VIII.
La invención se refiere a un procedimiento para la preparación de una composición que contiene Factor VIII (Factor VIII de coagulación sanguínea, abreviado FVIII), con una purificación especialmente alta y doblemente inactivado para virus, a partir del plasma sanguíneo humano.
En el estado de la técnica se describen procedimientos para la preparación de productos de FVIII altamente purificados e inactivados para virus, aislados del plasma sanguíneo humano. Por ejemplo, el documento EP 0 367 840 describe la preparación de un producto de FVIII que utiliza intercambiadores de iones para la purificación de FVIII. Para la inactivación de virus, la solución de FVIII se trata con disolventes /detergentes orgánicos biocompatibles. El documento DE 42 04 694 describe intercambiadores de aniones con diferentes características que son apropiados para la purificación de FVIII.
El documento EP 0 337 144 describe materiales de separación para el fraccionamiento de biopolímeros, que se pueden utilizar en la cromatografía de afinidad o de intercambio iónico. El documento EP 0 567 448 describe la combinación de las medidas de una purificación cromatográfica, un tratamiento tensioactivo del FVIII en solución acuosa, y un tratamiento térmico de la preparación de FVIII en estado sólido. El tratamiento térmico se lleva a cabo con vapor caliente en presencia de metanol o etanol, bajo el establecimiento de determinadas relaciones cuantitativas. El documento WO 93/15105 describe la preparación de FVIII a partir de crioprecipitados, con el empleo de intercambiadores de aniones. El documento EP 0 399 321 describe la preparación de un concentrado de FVIII por precipitación del FVIII con polietilenglicol (PEG) y tratamiento térmico, en presencia de sacarosa (1,2 hasta 0,6 g/m de concentrado de FVIII). El documento FBE 0 383 645 describe la preparación de un concentrado de FVIII por separación del FVIII del Factor de von Willebrand. El documento EP 0 412 466 describe la preparación de FVIII con alta actividad específica, que, adicionalmente, se pasteuriza. La Patente de EE.UU. 5.099.002 describe el calentamiento de concentrados de coagulación liofilizados para reducir la capacidad de infección de virus, en caso que estén presentes. El documento WO 94/17 834 describe la inactivación de virus mediante el tratamiento de la fuente con fosfatos alquílicos, de manera simultánea o consecutiva, y a una temperatura de 55ºC hasta 67ºC durante un período de tiempo de 5 hasta 30 horas. El documento EP 018 561 describe la preparación de factores de coagulación por calentamiento a 60-70ºC, en presencia de glicina y un sacárido en solución. El documento EP 0 094 611 describe una composición enriquecida en FVIII para la preparación de un medicamento que se calienta a 60ºC hasta 125ºC en estado liofilizado, con una actividad específica mayor que 300 unidades de FVIII por gramo de proteína.
En la publicación "Hemophilia World 1995; Vol. 2; Nº 3" se recopilan en un suplemento de este volumen los concentrados de FVIII y FIX disponibles en ese momento en los EE.UU., bajo el título "Clotting Factor Concentrates, USA 1995". De esta publicación proceden los datos de la Tabla 1 sobre los procedimientos de inactivación de virus con los que se tratan estos productos, complementados con productos y fabricantes europeos.
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(Tabla pasa a página siguiente)
TABLA 1 Concentrados de Factor VIII (Productos comercializados 1995)
1
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Los concentrados de FVIII mencionados en la Tabla 1 han sido desarrollados en los diez últimos años (Kasper CK, Lusher JM y The Transfusion Practices Commitee of the American Association of Blood Banks. "Recent evolution of clotting factor concentrates for haemophilia A and B". Transfusion 1993, 33: 422-4334). El objetivo más importante en el desarrollo de estos productos ha sido el de mejorar su seguridad en relación con la transmisión de virus. Este objetivo se ha logrado por la mejoría del análisis de los donantes y el uso de nuevas técnicas para la inactivación de virus y purificación del FVIII.
A finales de la década de los años 70 y principios de la de los 80, se desarrollaron dos de los más importantes procedimientos para inactivación de virus en concentrados de FVIII. Uno de los procedimientos comprende un tratamiento térmico del FVIII en solución, en presencia de estabilizadores. El otro procedimiento describe el uso de fosfatos alquílicos. En 1979 se describió en el documento EP 0 018 561 el calentamiento del FVIII en solución, en presencia de azúcares (40-60%) y aminoácidos (1-2,5 mol/l). El calentamiento de proteínas en soluciones, en presencia de azúcares, se amplió por la adición de sales que contienen iones de Ca (documento EP 0 106 269). El método de inactivación de virus en soluciones de proteínas se complementó por medio de variantes de las citadas publicaciones, tales como el documento EP 0 035 204, en el que el intervalo de temperaturas se amplió desde 60ºC hasta 75ºC, y la concentración del azúcar se utilizó desde 30% hasta la saturación. El calentamiento de fracciones proteicas que contienen FVIII en estado liofilizado se describe en el documento EP 0 171 506. El intervalo de temperatura comprende desde 60ºC hasta 125ºC. El tratamiento con vapor de fracciones de plasma que contienen FVIII se ha mencionado ya anteriormente.
En el documento EO 0 131 740 se describe el tratamiento de fracciones de plasma que contienen FVIII con una combinación de un fosfato alquílico y un detergente. Este procedimiento ha demostrado ser especialmente eficaz en la inactivación de virus encapsulados (Horowitz MS et al., Lancet 1988, 2:186-189; Horowitz B., Curr. Stud. Hematol. Blood Transfus. 1989, 56: 83-96; Horowitz B., Transfusion 1985, 25:516-522). En principio, este procedimiento de inactivación de virus (procedimiento de disolvente-detergente (SD)), sin embargo, no es capaz de inactivar virus sin una envoltura viral lipídica.
Dado que en la fabricación de medicamentos a partir de plasma humano no cabe excluir el riesgo de transmisión de patógenos infecciosos por el análisis de los plasmas de donantes, este riesgo se debe reducir, adicionalmente, mediante el uso de procedimientos de inactivación de virus. Las medidas para inactivar virus con envoltura son especialmente recomendables después de que en 1992-1993 se informara de aprox. 100 casos de infección de hepatitis A en relación con un concentrado de FVIII tratado con SD (Lancet (1992), 340: 123; Lancet (1993), 341: 179; Ann. Intern. Med. (1994); MMWR (1996), Vol. 45, Nr. 2: 29-32). Estos casos de hepatitis A tuvieron como consecuencia un plan escalonado de las autoridades alemanas (Pharm. Ind. 1993; 4:71-72).
Además del riesgo de transmisión de patógenos infecciosos a través de productos de FVIII, la aparición de inhibidores de FVIII (anticuerpos contra FVIII) constituye un problema fundamental en la terapia de sustitución de la hemofilia A. Los anticuerpos aparecen en 3-52% de los pacientes con hemofilia A grave, lo que explicable mediante una serie de variables (De Blasi R. et al., Thrombosis Haemostasis 1994, 71:544-7; Ehrenforth S. et al., Lancet 1992; 339:594-8; Scharrer I. et al., Blood Coag. Fibrinol. 1993, 4:753-8; McMillan CW. et al., Blood 1988, 71:344-8). Dichas variables se refieren a la edad de los pacientes, la frecuencia de tratamiento, y al tipo de preparado de FVIII (Addiego JE. et al., Thromb. Haemost. 1993, 67:19-27; Burnouf T. et al., Vox. Sang. 1991, 60: 8-15; Peerlink K. et al., Thromb. Haemost. 1993, 69:115-8; Rodendaal FR. et al., Blood 1993, 81: 2180-6; Sultan Y., Thromb. Haemostat. 1992, 67: 600-2; Peerlink K. et al., Blood 1993, 81; 3332-5; Guérois C. et al., Thrombos Haemostas 1995, 73 (2): 215-8).
Las diferencias de inmunorrespuesta de los pacientes o de su predisposición genética podrían influir sobre la incidencia de los inhibidores (Roberts HR., Blood Coag and Fibrinol 1991, 2(1): 21-23; Hoyer J. Brit. J. of Haematology 1995, 90: 498-501).
Adicionalmente, se ha demostrado que diferentes mutaciones del gen de FVIII están correlacionadas con la aparición de anticuerpos (Schwaab R. et al., Thrombosis and Haemostasis 1995, 74 (8); 1402-1406).
Las variables que influyen sobre la incidencia de inhibidores de FVIII son:
1.
El paciente: defecto genético, reacciones inmunológicas características, estado inmunológico.
2.
El tratamiento: producto de FVIII, número de exposiciones.
3.
La evaluación: supervisión y sensibilidad de los métodos de supervisión.
Aun cuando hasta la fecha no es posible atribuir claramente a una única causa la aparición de anticuerpos contra FVIII con propiedades inhibitorias, los resultados de algunos estudios ponen de manifiesto la importancia que se asigna a los preparados de FVIII en la inducción de inhibidores de FVIII (Vermylen I. et al., Acta Clinica Belgica (1991); 46: 20).
Desde mayo de 1990 hasta septiembre de 1991, se trataron pacientes con hemofilia A ya sometidos a frecuentes tratamientos (PTPs = previously multitransfused hemophiliacs = hemofílicos sometidos anteriormente a múltiples transfusiones), con un nuevo concentrado de FVIII. Este producto había sido purificado por cromatografía sobre vidrio y pasteurizado. De 47 pacientes tratados exclusivamente con este producto, 4 desarrollaron un título elevado de inhibidores (40, 90, 100 y 200 Unidades Bethesda (BU)). Otro paciente (20 BU) fue tratado, básicamente, también con este producto de FVIII. El uso de este producto se interrumpió a causa de estos hallazgos.
La preparación de un concentrado de FVIII altamente purificado a partir de grandes combinaciones de plasma, con una actividad específica de 100 requiere que se satisfagan numerosos requisitos en el procedimiento de producción de un concentrado de FVIII de esta clase.
El efecto de las medidas de inactivación de virus sobre la estructura de las proteínas es una cuestión importante, especialmente con respecto al problema de los inhibidores. La principal función biológica del FVIII, su actividad, debería tener en el concentrado de FVIII, utilizado para el tratamiento de los pacientes hemofílicos, una relación prácticamente idéntica a la proteína FVIII, el FVIII-Ag, que en el medio, el plasma, del cual se aísla.
El concentrado de FVIII, obtenido tras la purificación a partir del plasma, debería contener, además del FVIII, básicamente sólo el factor de von Willebrand (vWF), su proteína portadora natural. Dado que el objetivo de la purificación del FVIII desde el plasma es separarlo de las restantes proteínas plasmáticas, se debe evitar el uso de proteínas plasmáticas como estabilizadores, ya que éstas anularían los esfuerzos realizados para la purificación. En consecuencia, el paciente hemofílico debe recibir únicamente la proteína que necesita. El FVIII purificado desde el plasma está compuesto por una mezcla de polipéptidos con pesos moleculares entre 80 y 210 kDa, que representan una serie de subunidades de diversos heterodímeros (Kaufmann, R., Transfusion Medicine Reviews 1992, 4: 235-
246).
Por consiguiente, la presente invención tiene como misión la puesta a punto de un nuevo procedimiento para purificar e inactivar los virus de los materiales de partida que contienen Factor VIII, esencialmente sin utilizar estabilizadores.
Esta tarea se resuelve por el procedimiento caracterizado en las reivindicaciones. De manera especial, se pone a punto un procedimiento para la preparación de una composición que contiene Factor VIII, que comprende los pasos de:
(a)
tratamiento con fosfato de tri(n-butilo)/detergente de una solución que contiene Factor VIII, y
(b)
tratamiento térmico de un material liofilizado que contiene Factor VIII, que tiene una humedad residual dentro del intervalo de 0,3 hasta 1,8% en peso, a aproximadamente 100ºC durante 15 hasta 120 min,
en donde la solución que contiene Factor VIII se congela de forma ultra-rápida en nitrógeno líquido antes de la liofilización.
El procedimiento según la invención para la preparación de un concentrado de FVIII altamente purificado y sin acción inmunogénica a partir de plasma humano, se lleva a cabo utilizando dos diferentes procedimientos de inactivación de virus. Esta doble inactivación viral comprende, como se ha mencionado anteriormente, el tratamiento de la solución de FVIII con fosfato de tri-(n-butilo) ("TNBP")/derivado de polioxietileno del éster de sorbitano (Tween®) (SD = disolvente detergente), preferentemente 0,2-0,5% en peso de TNBP/0,5-3% en peso de Tween®, y un tratamiento térmico del producto final liofilizado de FVIII en el envase final a 100ºC durante 30 minutos, con un contenido en humedad residual de 0,3% hasta 1,8% en peso. Adicionalmente, en la preparación se utilizan, preferentemente, pasos para el empobrecimiento en virus.
El concentrado de FVIII preparado a partir de plasma humano, según la invención, se designará en lo sucesivo como "FVIII SDH" (SDH = disolvente/detergente/calor [en sus siglas en inglés/alemán]). El FVIII SDH se prepara, preferentemente, a partir de un crioprecipitado como material de partida, obtenido según métodos conocidos de un combinado de plasma. En el crioprecipitado se encuentran presentes prácticamente todas las proteínas plasmáticas, algunas en forma enriquecida con respecto al plasma, en especial el FVIII y fibrinógeno.
El procedimiento según la invención del FVIII SDH comprende, en una forma de realización preferida, los siguientes pasos de preparación:
(1)
La separación del fibrinógeno y, eventualmente, la separación de otros factores de coagulación del complejo PPSB se lleva a cabo, por ejemplo, por una precipitación con etanol y/o por adsorción sobre Al(OH)_{3}.
(2)
La inactivación de virus de la fracción bruta de FVIII se realiza, preferentemente, con TNBP/Tween® 80.
(3)
La cromatografía de columna específica con intercambiadores de iones da lugar a la separación de TNBP y Tween® 80, así como a la separación de las restantes proteínas plasmáticas.
(4)
El eluato se somete, preferentemente, a dia-y/o ultrafiltración, ajustándose los electrolitos a las concentraciones deseadas.
(5)
Tras la filtración estéril, se lleva a cabo el envasado final en viales de vidrio, que se sumergen en nitrógeno líquido (aproximadamente -195ºC), con lo cual la solución de FVIII experimenta una congelación ultra-rápida.
(6)
La liofilización de la solución de FVIII congelada tiene lugar a alto vacío y se lleva a cabo hasta una humedad residual del producto final dentro de un intervalo de 0,3 hasta 1,8%.
(7)
El preparado liofilizado se calienta a 100ºC en un autoclave durante 30 min.
El producto de FVIII preparado según la invención carece de acción inmunogénica y está enriquecido, con respecto al plasma de partida, por ejemplo, en alrededor de 10^{4} veces, especialmente por la aplicación de la purificación cromatográfica.
Los pasos de empobrecimiento en virus del procesamiento y purificación de FVIII a partir de plasma humano, utilizando el procedimiento según la invención para la preparación de un concentrado de FVIII sin acción inmunogénica, se muestran en la Tabla 2. Para algunos virus con y sin envoltura destacados, los índices de inactivación para cada paso de procesamiento de la preparación de concentrado de FVIII se expresan en log 10.
TABLA 2 Empobrecimiento en virus e inactivación de virus para FVIII sin acción inmunogénica a partir de plasma (reducción de virus: log 10)
2
El concentrado de FVIII preparado de acuerdo con el procedimiento según la invención a partir de plasma humano contiene el FVIII, por ejemplo, en una cantidad enriquecida 10.000 veces con respecto al plasma. La concentración detectable por 1.000 UI de FVIII SDH (UI = Unidades Internacionales) de las proteínas individuales se compara con la concentración de proteínas presente en un litro de plasma (Tabla 3).
TABLA 3 Concentración de proteínas en plasma y FVIII SDH (Valores medios)
Proteína Concentración en plasma FVIII SDH Método
(mg/l) (mg/1000 UI)
FVIII 0,1 - 0,2 0,1 - 0,2 1
Proteínas totales 65.000 10 2
vWF 18 6 1
Fibrinógeno 3.000 3,5 3
Fibronectina 30 0,3 3
Albúmina 44.000 0,03 3
IgG 12.000 0,5 3
IgM 1.400 0,2 3
IgA 2.100 <0,01 3
1 = ELISA (ensayo de inmunosorción ligado a enzimas)
2 = Bradford (autor del método) (Bradford MM: Analytical Biochemistry 1976, 72:248-254)
3 = RID (Inmunodifusión radial)
De esta exposición de los datos de concentración de las proteínas detectables en FVIII SDH se deduce que, por ejemplo, 96% de las cantidades de proteínas detectables en el producto está compuesto por FVIII, vWF y fibrinógeno no coagulable. El fibrinógeno está presente como fibrinógeno no coagulable, es decir, la determinación de fibrinógeno según Clauss ofrece un resultado negativo (Clauss A., Acta Haemat 1957, 17:237-246).
Los métodos utilizados para la preparación de los concentrados de FVIII y para la inactivación o eliminación de los virus presentes en el plasma sanguíneo influyen, probablemente, sobre la estructura y actividad biológica de las proteínas. Un requisito fundamental de la capacidad de utilización de los productos de FVIII es que, antes de su administración y tras la adición del disolvente - normalmente, se trata de agua apropiada para aplicaciones clínicas (agua para inyección) - éste se disuelva sin formar residuos. Las proteínas desnaturalizadas son básicamente insolubles en agua. La estructura y actividad biológica del producto de FVIII preparado según la invención están conservadas cuando se le prepara de acuerdo con el procedimiento según la invención ya que, solamente bajo estas condiciones, el concentrado de FVIII se disuelve con agua para inyección, sin producir residuos tras su calentamiento durante hasta 2 horas a 100ºC.
El requisito decisivo para que el FVIII SDH según la invención se pueda calentar durante 30 min a 100ºC, sin que sufra desnaturalización, pero disolviéndose en agua sin formar residuos, y para no tener que agregar al tampón de liofilización un estabilizador en forma de proteínas o azúcares, es la congelación ultra-rápida de la solución de FVIII en nitrógeno líquido, a una temperatura de -195ºC, antes de la liofilización. Sorprendentemente, la estructura y la actividad biológicas del concentrado de FVIII, FVIII SDH, preparado por el procedimiento según la invención, no resultan alteradas, y no se produce desnaturalización de las proteínas por el calentamiento.
Para comprobar el efecto del procedimiento de preparación según la invención sobre la estructura de las proteínas, se ha llevado a cabo una serie de ensayos físicos y biológicos (Kotitschke R. et al., Hämostaseologie 1994, 14:100-3; Arrighi S. et al., Thromb Haemost 1995, 74 (3); 868-73). Se ha analizado especialmente el efecto del tratamiento térmico sobre las proteínas bajo las condiciones del procedimiento de preparación según la invención, ya que, tal y como se sabe, el FVIII es extremadamente inestable al almacenamiento y sensible al tratamiento térmico.
El tratamiento térmico del FVIII en solución exige habitualmente la estabilización del FVIII mediante la adición de determinados estabilizadores. Además, se conoce la posibilidad de aplicar un tratamiento térmico del FVIII en estado liofilizado, sin una pérdida de actividad digna de mención, sólo para productos de FVIII cuya actividad específica tras su preparación a partir de plasma es muy baja (por ejemplo, <20), o a los que se deben agregar estabilizadores en forma de proteínas o azúcares (véase la Tabla 1).
El producto FVIII SDH según la invención se puede calentar, sorprendentemente, sin que se produzca una pérdida de actividad digna de mención, a 100ºC durante un período de hasta 2 horas, cuando el contenido en humedad residual es menor que 1,8%, y la solución que contiene el Factor VIII se ha congelado de forma ultra-rápida en nitrógeno líquido, antes de la liofilización. Sobre la base de los datos que aparecen a continuación, es evidente que el producto de FVIII calentado y no calentado ofrece resultados idénticos en cuanto a la comprobación de su estructura y actividad (Fig. 2 y Tabla 4).
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TABLA 4 Haemoctin® SDH: FVIIIC / FVIIIAg
Tratamiento FVIIIC (x 10) FVIIIAg (x 10) FVIIIC / FVIIIAg (/10)
Crio 0,98 1,66 5,9
Al(OH)_{3} 0,79 1,38 5,7
TNBP/Tween® 0,59 1,01 5,8
Eluato-S 3,18 4,68 6,8
ZP (UF/DF) 5,79 8,55 6,8
GT 5,57 6,95 8
SDH 5,25 6,8 7,7
TABLA 4 (continuación)
Tratamiento FVIIIC (x 10) FVIIIAg (x 10) FVIIIC / FVIIIAg (/10)
Crio 1,29 1,3 9,9
Al(OH)_{3} 0,99 1,01 9,8
TNBP/Tween® 0,67 0,7 9,6
Eluato-S 4,46 5 8,9
ZP (UF/DF) 6,31 6,45 9,7
GT 6,25 5,9 10,5
SDH 5,55 5,7 9,7
Crio 0,98 0,98 10
Al(OH)_{3} 0,81 0,73 11
TNBP/Tween® 0,61 0,67 9,1
Eluato-S 3,8 4,34 8,8
ZP (UF/DF) 6,2 6,38 9,7
GT 5,78 5,7 10,1
SDH 5,52 5,3 10,4
Las Figuras muestran:
Fig. 1 muestra esquemáticamente la preparación de FVIII SDH en una forma de realización preferida.
Fig. 2 muestra la relación de FVIIIC/FVIIIAg en diversos pasos de la preparación de FVIII de tres lotes de FVIII SDH. El lote a se diferencia claramente de los lotes b y c por la relación reducida del producto de partida de la preparación de FVIII del crioprecipitado. Para poder representar en este gráfico las columnas en dimensiones prácticamente comparables para los distintos parámetros, éstos se han multiplicado por 10 o dividido por 10. En esta representación, la relación se debe dividir por 10 para que resulte apreciable que ésta es aproximadamente = 1,0 para los lotes b y c en cada paso de preparación. El crioprecipitado del lote a muestra una relación de aproximadamente 0,6, es decir, una evidencia de la pérdida de actividad de FVIII en la preparación y el almacenamiento de este lote de crioprecipitado. El procesamiento hasta alcanzar el concentrado de FVIII altamente purificado lleva la relación hasta 0,8, pero no la devuelve a 1,0. En este estudio resulta decisiva, sin embargo, la comparación de la relación de las muestras calentada y no calentada. Ésta es prácticamente igual para ambos productos y confirma, de este modo, la pérdida de actividad relativamente escasa causada por el tratamiento térmico.
El efecto del procedimiento de preparación según la invención sobre la estructura de proteínas se ha comprobado sobre la base de la distribución del peso molecular y por electroforesis sobre gel de poliacrilamida-SDS (PAGE). Además, se han analizado los productos no calentado (FVIII SD) y calentado (FVIII SDH) con respecto a la aparición de neo-antígenos (R. Kotitschke et al., Hämostaseologie 1994; 14:100-3; S. Arighi et al., Thromb Haemost 1995; 73(3): 868-73). Estos análisis muestran idénticos resultados para FVIII SD y FVIII SDH, con lo que se ha demostrado que la estructura proteica de las proteínas en el concentrado de FVIII preparado según la invención no se altera.
Fig. 3 muestra la observación de uso para FVIII SDH. La observación de uso en siete centros de tratamiento de hemofilia A se inició en 1993. Participaron en esta observación de uso 51 pacientes, con un período máximo de observación de 27 meses. En Hungría, con anterioridad a 1993, prácticamente todos los pacientes con hemofilia A se trataban con crioprecipitado y/o sólo con un concentrado de FVIII. Por lo tanto, fue posible analizar la incidencia del inhibidor en un grupo de pacientes relativamente homogéneo después del tratamiento con FVIII SDH, y comparar la incidencia del inhibidor de este grupo (Grupo I) con un Grupo II de pacientes con hemofilia A pretratados en centros terapéuticos alemanes con diferentes concentrados de FVIII. En ninguno de los 51 pacientes apareció inhibidor. Los pacientes se investigaron durante un período de tiempo de 4 hasta 26 meses, y un número predominante de ellos, durante 12 meses. El número máximo de días de tratamiento acumulados ascendió a 349. Un día de tratamiento comprende la cantidad de FVIII utilizada para el tratamiento de un episodio de sangrado.
La "respuesta", "recuperación in vivo" y la vida media se determinaron con el ensayo de 1 etapa de FVIII y un sustrato cromógeno (en 16 pacientes); véase la Tabla 5. Estos datos se corresponden con los publicados anteriormente por otros autores para concentrados de FVIII pd (pd = derivados del plasma, en inglés).
TABLA 5 FVIII SDH: Vida media biológica y recuperación in vivo en 16 pacientes con hemofilia A
Ensayo de 1 etapa Sustrato cromógeno
Recuperación in vivo (%) 71 \pm 15 77 \pm 17
Respuesta (%) 1,6 \pm 0,4 1,7 \pm 0,4
Vida media 13,0 \pm 2,8 12,7 \pm 3,2
El procedimiento según la invención se explicará de forma más detallada mediante los siguientes ejemplos.
Ejemplo 1 Preparación de FVIII a partir de plasma humano, que no es inmunogénico tras su administración al paciente
Plasma de donante: Se agregaron nueve partes de sangre venosa de donante a una parte de una solución estabilizadora de citrato sódico al 3,8%. Inmediatamente después de su extracción, la sangre se centrifugó y se reinfundieron al donante los eritrocitos separados en solución salina fisiológica (plasmaféresis). El plasma se congeló a más tardar 18 horas después.
El plasma congelado se descongeló a una temperatura de +2ºC hasta +4ºC. Se combinaron los plasmas de múltiples donantes. El crioprecipitado se obtuvo por centrifugación de manera en sí conocida.
1 kg de crioprecipitado, obtenido de aproximadamente 100 l de plasma, se suspendió en 3 kg de una mezcla de agua/etanol (10 g de etanol en 1 l de H_{2}O) que contuvo 900 UI de heparina.
El valor de pH de la suspensión se ajustó a 7,0 mediante agitación con ácido acético 0,1 M. La mezcla se calentó a temperatura ambiente y se agitó durante 30 min. A la solución obtenida de esta forma se agregaron 108 g de una suspensión al 2% de Al(OH)_{3} por kg de crioprecipitado usado, y se agitó a temperatura ambiente durante 15 min. El valor de pH se ajustó a 6,55 mediante la adición de ácido acético 0,1 M, y la temperatura se redujo a 15ºC. Se precipitado se separó por centrifugación y se desechó.
El sobrenadante se trató para la inactivación de virus con una mezcla de fosfato de tri-(n-butilo) (TNBP) (0,3% en peso) y Tween® 80 (1% en peso). Por kg de solución de FVIII se utilizaron 10,52 g de Tween® 80 y 3,16 ml de TNBP. Tween® 80 se disolvió con 4 ml de H_{2}O destilada. El valor de pH de la solución de FVIII se ajustó a 7,1 con NaOH 1 M, y la solución se precalentó a 25ºC. La mezcla de TNBP y Tween® 80 se agregó, bajo agitación, durante un espacio de tiempo de 15 min. La solución de FVIII mezclada con TNBP/Tween® 80 se agitó durante 13 horas a aproximadamente 25ºC. A continuación, la solución de FVIII se cromatografió sobre un gel de intercambio aniónico. Antes de la aplicación de la solución de proteína, la columna se equilibró con un tampón a pH 6,95 de NaCl (0,12 M), citrato de Na (0,01 M), glicina (0,12 M) y CaCl_{2} (0,001 M). La extinción del eluato de columna se midió a 280 nm. La solución de FVIII esterilizada se aplicó sobre el gel equilibrado y se lavó posteriormente con el tampón de equilibrado, hasta que se alcanzó la señal UV de la línea base. Para la separación de las proteínas acompañantes, la columna se lavó con un tampón de mayor potencia iónica de NaCl (0,16 M), citrato de Na (0,01 M), glicina (0,12 M) y CaCl_{2} (0,001 M) a pH 6,95.
La elución del FVIII se llevó a cabo con el siguiente tampón de elución: NaCl 0,25 M, citrato de Na 0,01 M, glicina 0,12 M, CaCl_{2} 0,001 M, a pH 6,95. El eluato de la cromatografía que contiene FVIII se concentró mediante ultrafiltración a aproximadamente la mitad del volumen de eluato utilizado, y se diluyó con un tampón de citrato de Na 0,01 M, glicina 0,12 M y CaCl_{2} 0,001, hasta una actividad de FVIII de la solución de aproximadamente 110 UI de FVIII por ml. La solución de FVIII se filtró bajo condiciones estériles y se acondicionó a razón de 10 ml en su envase final (viales de vidrio de 20 ml). Los viales con la solución de FVIII se sumergieron en nitrógeno líquido a -195ºC y, a continuación, se secaron en una instalación de liofilización hasta una humedad residual del producto de FVIII de aproximadamente 0,5%.
Los viales con el producto liofilizado se introdujeron en un autoclave y se calentaron durante 30 min a 100ºC. La medición de la temperatura se llevó a efecto con el dispositivo "Datatrace Micropack" de la compañía Hero Instruments Electronic Vertriebs GmbH, Alemania. Inmediatamente después de la extracción de los viales del autoclave, se les enfrió en una sala de refrigeración (aproximadamente + 4ºC). La actividad de FVIII de la muestra calentada fue del 95% de la muestra no calentada.
Ejemplo 2
Se preparó y disolvió 1 kg de crioprecipitado de la misma forma que en el Ejemplo 1. El procesamiento del crioprecipitado hasta su ultrafiltración se llevó a cabo de la misma forma descrita en el Ejemplo 1. La dilución de la solución de eluato de la columna de FVIII concentrada se efectuó con un tampón de citrato de Na 0,001 M, glicina 0,12 M y CaCl_{2} 0,01 M, hasta alcanzar una actividad de FVIII de 50 UI de FVIII por ml. La solución de FVIII se filtró bajo condiciones estériles y se acondicionó a razón de 10 ml en su envase final (viales de 20 ml). La congelación de estos viales, así como su liofilización y tratamiento térmico se llevaron a cabo de la forma descrita en el Ejemplo 1.

Claims (8)

1. Procedimiento para preparar una composición no inmunogénica que contiene un Factor VIII, que comprende los pasos de:
(a)
tratamiento con fosfato de tri-(n-butilo)/detergente de una solución que contiene Factor VIII, y
(b)
tratamiento térmico de un material que contiene FVIII liofilizado, que tiene una humedad residual dentro del intervalo de 0,3 hasta 1,8% en peso, a aproximadamente 100ºC durante 15-120 min
en donde la solución que contiene Factor VIII se somete a congelación ultra-rápida en nitrógeno líquido antes de la liofilización.
2. Procedimiento según la reivindicación 1, en el que el detergente es un derivado de polioxietileno de un éster de sorbitano.
3. Procedimiento según la reivindicación 1 ó 2, en el que, antes del paso (a), se separan de la solución que contiene FVIII el fibrinógeno y, eventualmente, otros factores de coagulación del complejo PPSB por precipitación con etanol y/o una adsorción sobre Al(OH)_{3}.
4. Procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 3, en el que, después del paso (a), se separan de la solución que contiene FVIII el fosfato de tri-(n-butilo) y el detergente por cromatografía de intercambio de iones.
5. Procedimiento según la reivindicación 4, en el que la solución que contiene FVIII, como eluato de la cromatografía de intercambio de iones, se somete a dia- y/o ultrafiltración.
6. Procedimiento según la reivindicación 5, en el que la solución que contiene FVIII se filtra bajo condiciones estériles tras la dia- y/o ultrafiltración.
7. Procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 6, en el que el tratamiento térmico se lleva a cabo en un autoclave.
8. Composición no inmunogénica que contiene FVIII, obtenible por un procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 7.
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