ES2264149T3 - Sensores electroquimicos con selectividad mejorada y sensibilidad aumentada. - Google Patents
Sensores electroquimicos con selectividad mejorada y sensibilidad aumentada.Info
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Abstract
LA PRESENTE INVENCION DESCRIBE SENSORES ELECTROQUIMICOS, CON PREFERENCIA BIOSENSORES ELECTROQUIMICOS, DONDE LOS ELECTRODOS DE REFERENCIA Y LOS ELECTRODOS DE MEDICION ESTAN SEPARADOS UNO DE OTRO A TRAVES DE UNA FORMACION PLANA ELECTRICAMENTE POROSA NO CONDUCTORA.
Description
Sensores electroquímicos con selectividad
mejorada y sensibilidad aumentada.
La presente invención describe sensores
amperométricos, preferiblemente biosensores electroquímicos. Se
describe también un procedimiento para la fabricación de
biosensores amperométricos para el campo del diagnóstico de fluidos
corporales.
El uso de biosensores amperométricos,
especialmente en el campo del diagnóstico de azúcar en sangre, es
estado de la técnica desde hace algunos años.
Se describen dichos productos, por ejemplo, en
la patente de EE.UU. 4545382, en los documentos EP 127958, EP
351891 y solicitud EP 0471986. Los correspondientes sistemas de
ensayo están disponibles comercialmente con los nombres de producto
Medisense®, ExacTex® y Glucocard®. Permiten un sencillo diagnóstico
del azúcar en sangre en condiciones de usuario doméstico.
Han conseguido una importancia especial los
biosensores amperométricos con glucosaoxidasa como componente
receptor. Como se describe detalladamente en Anal. Chem.
1990, 62, 1111 a 1117, mediante la reacción de glucosa con
glucosaoxidasa se produce una cantidad de peróxido de hidrógeno
proporcional a la concentración de azúcar.
Sin embargo, ya que la oxidación anódica
H_{2}O_{2} \rightarrow O_{2}+ 2H^{+}+ 2e^{-} requiere
una tensión celular relativamente alta (aprox. 600 mV), pueden
aparecer problemas de interferencia indeseados en el análisis de
sangre completa. A la tensión anteriormente citada, determinados
componentes sanguíneos, como ácido ascórbico, reaccionan
igualmente, apareciendo entonces resultados falsos positivos.
Con vistas a la mejora de la selectividad en
sensores amperométricos, se ha desarrollado por tanto el concepto
de los mediadores. Los mediadores utilizados frecuentemente en los
biosensores de la denominada segunda generación son, por ejemplo,
ferrocenos o hexacianoferrato de potasio
K_{3}F(CN)_{6}. La determinación amperométrica de
azúcar en sangre se desarrolla en este caso según el siguiente
esquema de reacción:
- (1)
- Glucosa + GO (FAD) \rightarrow gluconolactona + GO (FADH_{2})
- (2)
- GO (FADH_{2}) + Fe(III)(CN)_{6}^{3-} \rightarrow Fe(II)(CN)_{6}^{4-} + GO (FAD) + H^{+}
- (3)
- Fe(II)(CN)_{6}^{4-} \rightarrow Fe(III)(CN)_{6}^{3-}+ e^{-}.
La determinación amperométrica de azúcar en
sangre se limita metrológicamente por tanto a la oxidación anódica
descrita en (3), que transcurre a un potencial de +360 mV. Dichos
biosensores modificados con mediador presentan por tanto una
selectividad aumentada.
Con vistas a resultados reproducibles, debe
reducirse lo más completamente posible la reacción secundaria
controlada por O_{2} GO (FADH_{2}) + O_{2} \rightarrow GO
(FAD) + H_{2}O_{2}.
La constitución de un agente de ensayo adecuado
contiene, además de los reactivos de análisis necesarios, por
ejemplo, glucosaoxidasa y hexacianoferrato de potasio, al menos dos
electrodos (electrodo de trabajo y electrodo de referencia) que
deben ponerse en contacto mediante un puente electrolítico.
Como materiales de electrodo se tienen en cuenta
los metales nobles correspondientes del estado de la técnica, como
paladio, platino, oro, plata y cobre o grafito, en los que el ánodo
(electrodo de trabajo) y el cátodo (electrodo de referencia) pueden
fabricarse a partir de distintos materiales o a partir del mismo
material, y pueden poseer superficies de igual tamaño o distinto
tamaño.
El desarrollo del ensayo en los sistemas
disponibles comercialmente para los pacientes se limita al
suministro del fluido de muestra (sangre completa), indicándose
digitalmente el valor de análisis al cabo de al menos un
minuto.
Sin embargo, el desarrollo real de la reacción
en la que se oxida el analito (glucosa) y se reduce el mediador
está controlado metrológicamente de modo que observen las siguientes
etapas:
- a)
- toma de sangre y desarrollo de la reacción correspondiente a (1) a (2),
- b)
- después de observar un tiempo de reacción conocido de aprox. 5 a 30 s, se aplica una tensión constante de aprox. 400 mV, teniendo lugar la oxidación anódica descrita en (3),
- c)
- después de un tiempo de espera corto, se mide la corriente.
La valoración analítica se realiza en el campo
de las corrientes límites de difusión, en el que según la denominada
ecuación de Cottrell
ecuación
(A)i(t)= \frac{n \cdot F \cdot A \cdot
\sqrt{D} \cdot C}{\sqrt{\pi} \cdot
\sqrt{t}}
i=
corriente
n= número de electrones en la reacción de
electrodo
F= constante de Faraday
D= coeficiente de difusión
C= concentración del analito
A= superficie del electrodo de trabajo
D= grosor de la capa límite de difusión sobre el
electrodo de trabajo
t= tiempo.
Para satisfacer estas condiciones, es necesario
que la forma oxidada del mediador rédox
(K_{3}Fe(CN)_{6}) en el contraelectrodo supere
claramente la concentración de la forma reducida del mediador
(K_{4}Fe(CN)_{6}) en el electrodo de trabajo.
Los agentes de ensayo que posibilitan una
aplicación separada del sistema mediador, por ejemplo
hexacianoferrato de potasio (K_{3}Fe(CN)_{6}),
sobre el contralelectrodo, así como del receptor enzimático (GO)
sobre el electrodo de trabajo, dado el caso fijado mediante
inmovilización, deberían en consecuencia ser ventajosos.
Los sistemas de ensayo con zonas reactivas
separadas pueden ser también ventajosos con vistas a la estabilidad
a largo plazo del sistema reactivo.
En una serie de distintas publicaciones, se
citan otras características de propiedades deseables para
biosensores electroquímicos que pueden contribuir a una
optimización del sistema general.
Se citan a continuación algunas importantes:
La memoria de patente europea 0276782 describe
electrodos enzimáticos con capas de albúmina reticuladas mediante
glutaraldehído que, debido a su permeabilidad, protegen al electrodo
de trabajo de componentes interferentes electroactivos,
particularmente de proteínas de alto peso molecular.
Se describe el uso de membranas sintéticas para
la exclusión de glóbulos rojos de celdas electroquímicas en la
solicitud de patente europea 0289265.
En el documento WO 94/27140 se describen
sensores electroquímicos con membranas de exclusión de eritrocitos
que contienen agentes de aglutinación de eritrocitos móviles.
En la solicitud de patente europea 0546536 se
describe un sistema con un electrodo de trabajo de dos piezas
compuesto por un campo exento de enzima y un campo que contiene
enzima, en el que en primer lugar se registran los componentes
interferentes oxidables no reaccionables enzimáticamente, como ácido
ascórbico. Después, se determina calculando el valor de azúcar en
sangre real corregido a partir de las medidas de potencial
individual.
Nankai y col. describen en el documento WO
86/07642 un sistema de tres electrodos que, además de electrodo de
trabajo y electrodo de referencia, contiene también un electrodo
base que equilibra la dependencia de la tensión celular de la
corriente celular.
Se describe en el documento EP 0385964 el
aumento de la sensibilidad mediante la ampliación de la superficie
del electrodo correspondientemente a la ecuación (A).
Nankai y col. describen en la solicitud europea
0471986 la fabricación de un sistema de ensayo amperométrico de
azúcar en sangre con sensores individuales, caracterizándose este
sistema por una manejabilidad especialmente buena. El sensor
individual insertado en el aparato de valoración amperométrica se
pone en contacto mediante la punta del sensor con la gota de sangre
a analizar. Mediante un microcapilar (sistema de flujo capilar), se
transporta sangre completa al espacio de trabajo del sensor
(electrodo de trabajo o de referencia más reactivos de análisis). En
este momento, se disuelven los reactivos de análisis
(GO/K_{3}Fe(CN)_{6}) en el fluido a analizar
(sangre) y se desarrolla la reacción de análisis ya citada. En caso
de humedecer ambos electrodos con sangre, condición para una
capacidad de funcionamiento libre de interferencias, se realiza
automáticamente el arranque del aparato de análisis debido al valor
de resistencia reducido. El aparato puede manejarse por tanto sin
ningún botón de mando. Con vistas a una obtención de sangre poco
dolorosa, la cantidad de sangre necesaria se mantiene al mínimo
posible, y por tanto se limita el volumen del sistema microcapilar a
aproximadamente 5 \mul. Desde el espacio de reacción limitado por
el microcapilar, las pistas conductoras se dirigen a través de la
pieza de sensor extendida hacia la toma de corriente, por tanto,
está excluida una contaminación de piezas de función importantes en
el aparato de valoración.
Para la fabricación de los biosensores de
glucosa en sangre citados se utiliza habitualmente el procedimiento
de tecnología de serigrafía.
Para el proceso de impresión de la pieza de
electrodo (transductor) se utilizan pastas de serigrafía
comercialmente disponibles, por ejemplo, basadas en grafito o plata
(compañía Acheson), que se impresionan sobre materiales soporte
como cerámica o láminas de plástico. A este respecto, son necesarias
varias etapas consecutivas de impresión y secado (pistas
conductoras, electrodos de trabajo, electrodos de referencia, capas
dieléctricas).
Las pastas de serigrafía, que contienen con
vistas a la procesabilidad una serie de distintos aditivos como
antiespumantes, agentes tixotrópicos y detergentes, presentan a
menudo elevadas carencias respecto a la reproducibilidad.
Frecuentemente, las superficies de electrodo
serigrafiadas deben activarse todavía mediante tratamiento con
plasma. Debido a la alta proporción de aglutinante relativamente
hidrófobo, sus superficies son, a saber, más hidrófobas, mal
humedecidas y de conductividad altamente reducida frente al material
conductor puro, por ejemplo, grafito o plata.
Deben tenerse en cuenta otras desventajas del
tratamiento con plasma, como envejecimiento u obtención de grupos
superficiales activos rédox no deseados. A continuación de la
fabricación de la pieza de electrodo se realiza la aplicación de la
formulación de reactivo de análisis, por ejemplo, glucosaoxidasa
(GO) y hexacianoferrato de potasio en el caso de análisis de azúcar
en sangre. En este momento, cada superficie de trabajo individual
del sensor debe dotarse individualmente, aplicándose igualmente o
bien el procedimiento de tecnología de serigrafía o el costoso
procedimiento de micropipeteado.
En un tercer proceso del procedimiento, se
aplica finalmente el sistema microcapilar mediante adhesión de las
correspondientes láminas premoldeadas, que deben proveer dado el
caso capas hidrófilas con vistas a una buena humectabilidad.
Observado en conjunto, se trata pues de un
proceso de fabricación relativamente complicado.
Se ha encontrado ahora sorprendentemente un
procedimiento para la fabricación de sensores electroquímicos que
simplifica claramente con vistas a la fabricación y es más seguro
con vistas a la reproducibilidad.
El procedimiento según la invención permite
especialmente reunir en un sistema las propiedades pretendidas
descritas en el texto, que deben conducir a una mejora del producto.
En el estado actual, estos perfiles de propiedades combinadas e
integrales todavía no se han puesto en práctica.
Así, es posible un aumento de la sensibilidad
(susceptibilidad) de manera sencilla mediante una ampliación de la
superficie de la matriz reactiva, sin que los volúmenes de muestra
necesarios (por ejemplo, gota de sangre) deban aumentar claramente,
como en el sistema convencional.
Es posible un aumento de la selectividad
mediante la integración de capas de separación porosas. Como se
describe con detalle a continuación, pueden integrarse procesos de
separación aumentadores de la selectividad en distintas capas de
sensor, a saber, por ejemplo, electrodo de referencia poroso,
membranas como matriz reactiva y, dado el caso, mediante
recubrimiento de membrana del electrodo de trabajo.
Para la ilustración de los sistemas sensores
según la invención servirá la Fig. 1:
Se aplica sobre una lámina de grafito (2), que
está fijada sobre una lámina base (1), una matriz reactiva
(membrana) (3) con una superficie en el intervalo de varios
mm^{2}. Sobre ella, se sujeta mediante una cinta adhesiva doble
perforada (4) una tira de un fieltro de grafito (5). Como cubierta
superior, se pega finalmente una lámina perforada (6). El volumen
de muestra necesario puede definirse mediante la integración de una
zona de retención de fluido en el fieltro de grafito, por ejemplo,
detrás de la matriz reactiva (membrana) (3).
La puesta en contacto del potenciostato se
realiza en (7) para la capa de fieltro de grafito (electrodo de
referencia, cátodo), así como en (8) para la lámina de grafito
(electrodo de trabajo, ánodo). La toma de muestra puede realizarse
por el lado delantero (9) del fieltro de grafito, con lo que aparece
un transporte de fluido en la dirección de la matriz reactiva, como
se describe en los ejemplos.
A continuación, se describen detalladamente los
componentes usados o posibles para las capas funcionales
individuales.
Se utilizan preferiblemente láminas de grafito
que están disponibles con los nombres comerciales Sigraflex® de la
compañía SGL CarbonGroup.
Los parámetros importantes para esta finalidad
de uso son:
- Resistencia eléctrica específica:
- 8 a 10 \Omega\mum paralelamente a la capa
- \quad
- 600 a 650 \Omega\mum perpendicularmente a la capa
- Grosor de capa:
- 0,25 a 1,00 mm
- Pureza:
- >99,85%.
Con vistas al aumento de la selectividad de
reacción, puede proveerse la superficie de grafito orientada a la
matriz reactiva (3), como se describe después en los ejemplos, con
una capa de membrana integral, pudiéndose tratar de una membrana
microporosa o de una capa de membrana hinchable exenta de poros.
Como alternativa a las láminas de grafito,
pueden utilizarse otros materiales de electrodo conocidos como oro,
plata o platino.
No es necesario un tratamiento con plasma para
la mejora de la humectabilidad o para el aumento de la
conductibilidad.
Los fabricados planos permeables que se tienen
aquí en cuenta pueden seleccionarse del grupo de los fieltros
poliméricos, por ejemplo, de poliéster o polivinilalcohol, tejidos
poliméricos, por ejemplo, de poliamida o poliéster o
preferiblemente del grupo de membranas poliméricas.
Las membranas poliméricas preferidas son
aquellas que acompañan a los grupos de microfiltración, y que se
encuentran en el intervalo de poro de aprox. 0,1 a 10 \mum, de
forma especialmente preferida en el intervalo de 0,3 a 5 \mum, y
que se caracterizan por una buena humectabilidad. Son ejemplos de
ellas membranas de poliamida (Biodyne®) de la compañía PALL,
membranas de poli(fluoruro de vinilo) hidrofilizadas
(Durapore®) de la compañía Millipore, membranas de polisulfona
hidrofilizadas (Supor®) de la compañía Gelmann o membranas de
mezcla polimérica como se describen en el documento US 5124128.
Los tipos de membrana utilizados pueden ser
autosoportados o soportados por soporte, pudiendo componerse el
material soporte de fieltro polimérico o tejido polimérico, y
pudiendo integrarse central o lateralmente en la capa de membrana.
En lo que respecta a la constitución estructural, las membranas
utilizadas pueden ser asimétricas o simétricas.
Una ventaja especial de los sensores según la
invención se basa en el carácter dual de estas matrices reactivas
especiales, que ejercen tanto funciones portadoras de reactivo como
funciones de separación.
La selección de la matriz soporte permeable
adecuada se adapta según el caso de aplicación especial. Así, son
especialmente bien adecuadas, por ejemplo para el ensayo de azúcar
en sangre, aquellas membranas que dejan permear bien el plasma,
pero que retienen los glóbulos rojos sanguíneos.
También es posible utilizar aquellos sistemas de
matriz soporte que posibilitan una inmovilización de los reactivos
de análisis, por ejemplo, glucosaoxidasa. Serían entonces formas de
realización concebibles, por ejemplo, biosensores de funcionamiento
continuo o reutilizables.
Con vistas a reacciones de análisis de varias
etapas, por ejemplo ensayo de colesterol, pueden combinarse también
varios sistemas de matriz soporte uno encima de otro. Proporcionan
entonces múltiples posibilidades con vistas a la introducción de
los reactivos de análisis, así como para la separación de los
componentes interferentes indeseados.
Como se describe algo más detalladamente a
continuación en el ejemplo del ensayo de azúcar en sangre, existen
ya en las variantes de matriz monocapa distintos tipos de
posibilidades de introducción de reactivos, en comparación con la
serigrafía o el micropipeteado, que son de interés, por ejemplo, con
vistas a la actuación de la reacción o a la estabilidad a largo
plazo:
La matriz soporte puede impregnarse en el caso
más sencillo mediante procedimientos de impregnación convencionales,
por ejemplo, con glucosaoxidasa y hexacianoferrato de potasio.
También es posible recubrir un preparado
reactivo pastoso sobre uno o ambos lados de la matriz, pudiendo
combinarse también procedimientos de impregnación y
recubrimiento.
Así, por ejemplo, como se describe
detalladamente en los ejemplos, en un procedimiento preferido para
el ensayo amperométrico de azúcar en sangre, la matriz soporte se
impregna con hexacianoferrato de potasio, mientras que se aplica
una formulación de glucosaoxidasa pastosa sobre el lado orientado
hacia el electrodo de trabajo.
Sin embargo, en todas las formas de introducción
de reactivos es evidente que, en comparación con procedimientos
como serigrafía o micropipeteado, no puede utilizarse dotado de
sensor individual sino procedimientos establecidos en el
diagnóstico de tiras reactivas convencionales, de lo que resultan
ventajas industriales considerables.
Las superficies de matriz reactiva utilizadas
para el sensor individual pueden variar igualmente en un intervalo
relativamente amplio. Así, pueden obtenerse, por ejemplo, para
analitos menos sensibles o presentes en un intervalo de
concentración más bajo, con la ayuda de superficies de matriz
reactiva mayores, correspondientemente a la ecuación (A), señales
de respuesta a la dosis todavía bien interpretables, sin que sean
necesarios volúmenes de muestra (por ejemplo sangre)
desproporcionadamente grandes.
Debido a la posibilidad de poder aumentar la
sensibilidad mediante la superficie de matriz reactiva, los sensores
según la invención son de gran interés especialmente también para
sistemas de análisis inmunoquímico.
Las superficies de matriz practicables se
encuentran en el intervalo de varios mm^{2}. Como se describe en
los ejemplos, se utilizaron para la evaluación del ensayo de azúcar
en sangre discos de matriz de forma circular con un diámetro de 3
mm, que corresponde a una superficie de aproximadamente 7
mm^{2}.
Para el funcionamiento de los biosensores así
fabricados, sorprendentemente eran suficientes volúmenes de ensayo
en el intervalo de aprox. 2 \mul, pudiendo conseguirse en
comparación con los biosensores de azúcar en sangre conocidos hasta
ahora rendimientos de corriente claramente mayores (valores
aumentados aprox. 8 veces).
Los biosensores convencionales que comprenden
superficies de electrodo de trabajo de aprox. 1 a 2 mm^{2}
necesitan cantidades de volumen de muestra (sangre) de al menos 5
\mul, y consiguen un rendimiento de corriente en el intervalo de
aprox. 0,1 a 20 \muA.
Los sistemas sensores que pueden trabajar con
volúmenes de muestra mínimos son de interés especialmente en el
marco del denominado concepto "mínimamente invasivo" (documento
PCT WO 95/10223), en el que fijan como objetivo valores de 2 \mul
o menos.
Como material preferido se utilizaron, como ya
se ha citado, fieltros de grafito, que se pueden obtener, por
ejemplo, con el nombre comercial Sigrafil® SPC 7011 de la compañía
SGL Carbon Group.
Se trata a este respecto de fieltro negro muy
resistente al desgarro con un gramaje de 30 g/m^{2}, un grosor de
0,5 mm, un diámetro medio de fibra de 7 \mum y un sistema
aglutinante de polivinilalcohol reticulado, cuya proporción se
encuentra de aprox. el 20 al 24% en peso.
Como ya se ha indicado, este material se
caracteriza por dos propiedades especiales que son de interés para
la fabricación de biosensores electrónicos. Son éstas las
capacidades de transporte de fluido muy rápida y suavemente, tanto
en dirección vertical como horizontal, así como su conductividad
eléctrica, encontrándose la resistencia eléctrica específica en el
intervalo de aprox. 10 \Omega\mum.
Esta capa de fieltro de grafito ejerce por tanto
simultáneamente la función de transporte capilar de fluido así como
de electrodo de referencia.
Dichas capas de fieltro de grafito en
combinación con agentes aglutinantes como lectinas pueden efectuar
también de modo excelente una separación de sangre/plasma.
Dichos procesos de separación son de gran
interés en el análisis de muestras de sangre con respecto a la
reducción de la influencia del hematocrito.
Como alternativa a los fieltros de grafito
citados, pueden utilizarse también otros tejidos porosos conductores
eléctricos, como tejidos, fieltros o membranas metalizados, que
pueden tratarse para mejorar la humectabilidad con sustancias
tensioactivas.
Como ejemplo de un tejido conductor eléctrico
adecuado se citan los tipos Metalen 120 a 34T de la compañía
SEFAR.
Se trata a este respecto de un tejido de
poliéster mutihilo niquelado.
Las membranas conductoras se pueden obtener, por
ejemplo, en la compañía Millipore basadas en plata pura.
Con el fin de obtener electrodos de referencia
porosos conductores, también es posible utilizar membranas
convencionales que se metalizan según un procedimiento
corriente.
La lámina base (1) o la lámina superior de
recubrimiento (6) puede seleccionarse, en principio, sin un gran
procedimiento de selección a partir del amplio surtido de láminas de
plástico.
Sin embargo, con vistas a la estabilidad
mecánica de la tira de biosensor, se prefieren láminas con
determinadas rigideces y grosores de capa.
Se utilizaron, por ejemplo, láminas de
poliéster, policarbonato y PVC en el intervalo de grosor de aprox.
100 a 300 \mum, que eran parcialmente transparentes o
pigmentadas.
Con respecto a un transporte de fluido mejorado,
puede ser ventajoso cuando el lado interno de la lámina de
recubrimiento porta una capa de sustrato hidrófilo. Dichas láminas
modificadas se obtienen, por ejemplo, en el surtido de láminas
estándar de las compañías ICI o DuPont.
El pegado o laminado de las capas individuales
puede realizarse, como se ha citado, con ayuda de cintas adhesivas,
adhesivos de fusión en caliente o uno de los procedimientos de
exudación conocidos.
Ejemplo
Se constituyó un agente de ensayo amperométrico
según la fig. 1:
- (1)
- Lámina base (lámina de policarbonato, 250 \mum de grosor)
- (2)
- Lámina de grafito (Sigraflex®, con cinta adhesiva doble sujeta a (1))
- (3)
- Membrana reactiva (Biodyne®, compañía PALL, impregnada con glucosaoxidasa y hexacianoferrato de potasio)
- (4)
- Cinta adhesiva doble
- (5)
- Fieltro de grafito (Sigratex® SPC 7011)
- (6)
- Lámina de recubrimiento (lámina de policarbonato, 250 \mum de grosor).
Se realizó la puesta en contacto del amperímetro
con el fieltro de grafito en (7) (cátodo, electrodo de referencia)
o en la lámina de grafito en (8) (ánodo, electrodo de trabajo).
El suministro de muestra (3 \mul) se realizó
en la parte delantera (9) del fieltro de grafito con ayuda de una
pipeta. Así, se produjo un transporte de fluido capilar en la
dirección de la matriz reactiva.
Preparación de la matriz reactiva:
Se impregnó una membrana de nailon de la
compañía PALL (Biodyne, 0,45 \mum) con una disolución de
hexacianoferrato de potasio al 20%, y se secó.
Con ayuda de un agitador de giro rápido
(disolvedor), se fabricó una solución de vertido que contenía una
glucosaoxidasa a partir de los siguientes componentes:
4,42 g de poli(óxido de etileno) 300.000 (Union
Carbide)
84,08 g de tampón citrato (0,01 M, pH= 6,5)
0,58 g de 1-octanol
3,84 g de Aerosil® (sílice altamente dispersada,
compañía Degussa)
0,12 g de tensioactivo FC-170C
(compañía 3M)
7,00 g de glucosaoxidasa (150 \mug/mg).
Después de desgasificar, se recubrió esta
solución de vertido con ayuda de una rasqueta (aplicación húmeda de
50 \mum) sobre la membrana de nailon impregnada con
hexacianoferrato de potasio, y se secó con aire caliente.
Con ayuda de una punzonadora de revólver, se
troquelaron en la membrana reactiva así fabricada recortes
redondeados con un diámetro de 3 mm.
Después del montaje del formato representado en
la Fig. 1, se llevaron a cabo series de ensayos amperométricos a
400 mV con las siguientes disoluciones de ensayo:
0, 25, 50, 100, 200, 300, 400, 500 mg/dl de
glucosa.
Se observaron tiempos de medida de 30 s,
obteniéndose correspondientemente a la ecuación de Cottrell curvas
cronoamperométricas decrecientes con 1/t. Correspondientemente a la
concentración de glucosa creciente, se obtuvieron valores de
densidad de corriente crecientemente elevados.
Se aplicó sangre completa fresca con un valor de
glucosa de 104 mg/dl análogamente a a). Resultó una curva de medida
que era en gran medida congruente con la curva a 100 mg/dl de
a).
2.
Ejemplo
Con ayuda de un agitador de giro rápido
(disolvedor), se fabricó una disolución de vertido a partir de los
siguientes componentes:
Dralon L | (Bayer AG) | 50,0 g |
Ultason E | (BASF) | 50,0 g |
Aerosil 200 | (Degussa) | 30,0 g |
Pluriol P 600 | (BASF) | 90,0 g |
N-metilpirrolidona | (NMP) | 484,0 g. |
Después de desgasificar, se recubrió esta
solución de vertido con ayuda de una rasqueta (aplicación húmeda de
150 \mum) sobre la lámina de grafito (Sigraflex), y se sumergió en
un baño de agua. Después de secar e impregnar con glucosaoxidasa y
hexacianoferrato de potasio, se troqueló, como se describe en el
ejemplo 1, un disco de membrana de 3 mm de diámetro y se configuró
igualmente al formato descrito en el ejemplo 1.
En la valoración cronoamperométrica, se
obtuvieron a concentraciones crecientes de glucosa densidades de
corriente crecientes, análogamente al ejemplo 1a.
Con ayuda de un agitador de giro rápido, se
fabricó una disolución de vertido a partir de los siguientes
componentes:
8,77 g | dispersión acuosa de poliuretano DLS | (Bayer AG) |
9,66 g | poli(óxido de etileno) 300.000 | (Union Carbide) |
0,06 g | Pluronic PE 6400 | (BASF) |
1,20 g | tampón citrato (0,1 M, pH= 6,5) | |
0,34 g | Aerosil 200 | (Degussa) |
1,00 g | glucosaoxidasa (154 U/mg). |
Después de desgasificar, se recubrió esta
disolución de vertido con ayuda de una rasqueta (aplicación húmeda
de 100 \mum) sobre una lámina de grafito (Sigraflex®), se secó y
se troqueló (discos circulares de 3 mm).
El electrodo de trabajo así recubierto se
utilizó correspondientemente a (3) de la Fig. 1. En la valoración
con disoluciones acuosas de glucosa a una tensión aplicada de 600
mV, se midieron a concentraciones crecientes de glucosa densidades
de corrientes crecientes, análogamente al ejemplo 1a.
Resultados de los sensores de glucosa con
láminas de grafito recubiertas con membrana:
Mientras que las disoluciones acuosas de glucosa
pura dieron resultados en gran medida análogos al ejemplo 1, con
los sistemas de sensor modificados con membrana se obtuvieron
resultados mejorados con vistas a las disoluciones de ensayo que
contenían conjuntamente componentes interferentes (ácido ascórbico,
acetaminofeno).
Se eliminó de forma prácticamente total una
alteración falsa positiva por compuestos interferentes.
Claims (11)
1. Sensor amperométrico que contiene un
electrodo de trabajo y un electrodo de referencia, así como al
menos un reactivo de análisis, caracterizado porque el
electrodo de trabajo y el electrodo de referencia están separados
entre sí por un fabricado plano permeable no conductor eléctrico que
presenta un reactivo de análisis, y porque el electrodo de
referencia está compuesto por un fabricado plano poroso conductor
eléctrico que sirve para el transporte capilar de fluido desde una
zona de suministro de muestra al fabricado plano permeable no
conductor eléctrico.
2. Sensor según la reivindicación 1,
caracterizado porque el fabricado plano permeable no
conductor eléctrico está compuesto por un material poroso, por
ejemplo, fieltro, papel, tela, membrana o por una capa de membrana
hinchable no porosa.
3. Sensor según las reivindicaciones 1 a
2, caracterizado porque el fabricado plano permeable no
conductor eléctrico está constituido por varias capas.
4. Sensor según la reivindicación 3,
caracterizado porque las capas individuales contienen
distintos reactivos de análisis.
5. Sensor según las reivindicaciones 1 a
4, caracterizado porque el fabricado plano permeable no
conductor eléctrico tiene una superficie en el intervalo de algunos
mm^{2}, preferiblemente en el intervalo de 7 mm^{2}.
6. Sensor según las reivindicaciones 1 a
5, caracterizado porque el fabricado plano permeable no
conductor eléctrico tiene un tamaño de poro en el intervalo de 0,1
a 10 \mum, preferiblemente en el intervalo de 0,3 a 0,5
\mum.
7. Sensor según las reivindicaciones 1 a
6, caracterizado porque los reactivos de análisis se ponen
en contacto con el fabricado plano permeable no conductor eléctrico
mediante impregnación o recubrimiento.
8. Sensor según las reivindicaciones 1 a
7, caracterizado porque los reactivos de análisis son
glucosaoxidasa y hexacianoferrato de potasio.
9. Sensor según las reivindicaciones 1 a
8, caracterizado porque el fabricado plano poroso no
conductor eléctrico está compuesto por tela, fieltro o membrana
metalizados.
10. Sensor según las reivindicaciones 1 a
9, caracterizado porque el fabricado plano poroso conductor
eléctrico está compuesto por un material de fibra de grafito
hidrófilo, preferiblemente fieltro de grafito, o por un fieltro
hidrófilo no conductor con una lámina conductora de metal o grafito
superpuesta.
11. Sensor según las reivindicaciones 1 a
10, caracterizado porque el fabricado plano poroso conductor
eléctrico contiene otros reactivos.
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