ES2252755T3 - Uso de emulsiones que comprenden fluorocarbonos liquidos encapsulados en lipidos para procedimientos de diagnostico dirigidos in vivo. - Google Patents

Uso de emulsiones que comprenden fluorocarbonos liquidos encapsulados en lipidos para procedimientos de diagnostico dirigidos in vivo.

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Abstract

UN METODO PARA LA UNION BASADA EN LIGANDO DE PARTICULAS DE LIPIDOS ENCAPSULADAS A EPITOPOS MOLECULARES EN UNA SUPERFICIE IN VIVO O IN VITRO COMPRENDE LA ADMINISTRACION SECUENCIAL DE (A) LIGANDO ESPECIFICO DE SITIO ACTIVADO CON UN AGENTE ACTIVADOR DE BIOTINA; (B) UN AGENTE ACTIVADOR DE AVIDINA; Y (C) PARTICULAS LIPIDICAS ENCAPSULADAS ACTIVADAS CON UN AGENTE ACTIVADOR DE BIOTINA, EN EL QUE EL LIGANDO ESTA CONJUGADO A PARTICULAS A TRAVES DE LA INTERACCION AVIDINA TANTE SE UNE A LOS EPITOPOS MOLECULARES EN DICHA SUPERFICIE. EL CONJUGADO ES EFICAZ PARA LA OBTENCION DE IMAGENES POR RAYOS X, ULTRASONIDOS, RESONANCIA MAGNETICA O TOMOGRAFIA DE EMISION DE POSITRONES. SE DESCUBREN COMPOSICIONES PARA SU USO EN LA OBTENCION DE IMAGENES DIAGNOSTICAS DE SUPERFICIES NATURALES O SINTETICAS POR ULTRASONIDOS Y PARA LA ESTIMULACION DE LA REFLEXION ACUSTICA DE LAS MISMAS.

Description

Uso de emulsiones que comprenden fluorocarbonos líquidos encapsulados en lípidos para procedimientos de diagnóstico dirigidos in vivo.
Antecedentes de la invención
Esta invención se refiere a un sistema de unión novedoso específico de sitio y a composiciones novedosas, y más particularmente, a tal sistema y composiciones que son útiles en métodos mejorados para la obtención de imágenes de ultrasonido, la administración del fármaco o el agente quimioterápico y los ensayos diagnósticos y los sistemas de detección.
Hasta ahora, con respecto a la obtención de imágenes de ultrasonido, aunque se ha demostrado que los agentes de contraste ultrasónicos basados en la tecnología de "burbujas" desarrollan un desajuste de impedancia acústica en virtud del gas encapsulado o bien en proteínas (Feinstein et al., J. Am. Coll. Cardiol. 1990; 16:316-324 y Keller et al., J. Am. Soc. Echo. 1989; 2:48-52), polisacáridos (Corday et al., J. Am. Coll. Cardiol. 1984; 3:978-85) polímeros biodegradables (Schneider et al., Invest. Radiol., 1993; 27:134-139 y Bichon et al., solicitud de patente europea número 890810367.4: 1990) o lípidos (D’Arrigo et al., J. Neurormag., 1991; 1:134-139; Simon et al., Invest. Radiol., 1992; 27:29-34; y Unger et al., Radiology 1992; 195:453-456), no se conocen pruebas experimentales de selección como objetivo específica de sitio de un agente de obtención de imágenes o contraste acústico con cambios resultantes en las propiedades acústicas del tejido, superficie o soporte seleccionado como diana. Esta falta de resultados se ha producido a pesar de los numerosos métodos descritos en la bibliografía para modificar tales agentes para fines de selección como objetivo y el fracaso de los enfoques anteriores de la selección como objetivo puede deberse a la naturaleza química de los agentes, a las limitaciones del proceso de producción o a las inestabilidades de las partículas.
Se han descrito agentes de contraste acústicos no gaseosos incluyendo emulsiones lipídicas (Fink et al., Ultrason. Imaging, 1985 7:191-197), liposomas (Lanza et al., J. Am. Coll. Cardiol., 1992 (resumen); 19 (3 Supl. A) 114A), y emulsiones perfluorocarbononadas (Mattrey et al., Radiology 1982; 145: 759-762 y Mattrey et al., Ultrasound Med. 1983; 2:173-176). Como con los agentes de contraste tratados anteriormente, no se ha notificado ninguna demostración de emulsión o liposoma dirigida al sitio. De nuevo, tal fracaso puede reflejar la inestabilidad de las partículas, las incompatibilidades del proceso o la naturaleza química del agente de contraste. Las emulsiones lipídicas se evaluaron por Fink et al., citado anteriormente y no mostraron ecogenicidad adecuada en estudios que examinaban la obtención de imágenes hepáticas. Se sugirió que una única formulación química de liposomas descrita por Lanza et al., citado anteriormente, tenía la posibilidad de ser un contraste ultrasónico que se podía dirigir, pero esto no se ha demostrado hasta la fecha. Las emulsiones perfluorocarbonadas, Perflubron (bromuro de perfluorooctilo, P100) y Flusol (perfluorodecalina y perfluorotripropilamina, F20) se han utilizado como agentes de contraste ultrasónicos y se ha notificado que se acumulan en el hígado, el bazo y tumores derivados de la captación fagocítica de partículas de emulsión en estos sitios (Mattrey et al. 1983, citado anteriormente). Estas emulsiones perfluorocarbononadas también se ha observado que potencian las señales Doppler y que vuelven opacas las luces. Los fluorocarbonos y las emulsiones fluorocarbonadas para su uso como agentes de contraste se describen en las patentes de los EE.UU. números 4.927.623, 5.077.036, 4.838.274, 5.068.098, 5.114.703, 5.362.477, 5.362.478, 5.171.755, 5.304.325, 5.350.571 y 5.403.575. Sin embargo, no se ha notificado ninguna demostración de emulsiones perfluorocarbonadas como un sistema de contraste acústico dirigido a un ligando.
Las descripciones anteriores de tejido u órgano que se selecciona como objetivo en los equipos ultrasónicos biomédicos se referían al conjunto de partículas acústicamente reflectantes dentro de o alrededor de anomalías tisulares estructurales. La mejora acústica localizada de las patologías tisulares (por ejemplo, cánceres) no se ha dirigido al ligando, sino que más bien ha dependido de las tasas dinámicas diferenciales de la captación y/o el aclaramiento de las partículas entre los tejidos normales y los cancerosos. Tales agentes de contraste han incluido disoluciones acuosas (Ophir et al., Ultrason. Imaging 1979, 1:265-279; Ophir et al., Ultrasound Med. Biol. 1989, 15:319-333; y Tyler et al., Ultrason. Imaging, 3:323-329), emulsiones (Fink et al. Ultrason. Imaging, 1985, 7:191-197), y suspensiones (Mattrey et al. 1982 citado anteriormente y Mattrey et al., Radiology, 1987, 163:339-343). Aunque se ha sugerido la posibilidad de contraste ultrasónico dirigido al ligando que selecciona como objetivo con liposomas acústicamente reflectantes, no se han notificado aplicaciones satisfactorias de este concepto (Lanza et al. 1992, citado anteriormente y Valentini et al., J. Am. Coll. Cardiol., 1995, 25:16A). Enfoques anteriores a la selección como objetivo in vivo de partículas han incluido la conjugación directa de un ligando (por ejemplo, anticuerpo monoclonal) con una vesícula mediante una variedad de métodos (véase, por ejemplo, Torchlin et al., Biochem. Biophys. Res. Commun. 1978, 85:983-990; Endoh et al., J. Immunol. Methods, 1981, 44:79-85; Hashimoto et al., J. Immunol. Methods, 1983, 62:155-162 y Martin et al., Biochemistry, 1981, 20:4229-4238).
Sigue habiendo una necesidad de metodologías nuevas y mejoradas para sistemas de unión basados en ligandos que pueden adaptarse como un sistema de contraste ultrasónico que permita la detección de restos moleculares, tales como péptidos, hidratos de carbono o ácidos nucleicos, y cuyos usos pueden oscilar desde ensayos diagnósticos de laboratorio similares a ELISA basados en utrasonidos en sistemas en fase líquida y sólida y en cultivos celulares; sistemas de detección electroforéticos, cromatográficos y de hibridación para la detección de trombos, infecciones, cánceres e infartos en pacientes con la utilización de métodos de obtención de imágenes de ultrasonido convencionales.
Sumario de la invención
Entre los diversos objetos de la invención, puede observarse la provisión de un método novedoso para la unión basada en ligandos de partículas encapsuladas lipídicas a epítopos moleculares en una superficie in vivo o in vitro, la provisión de un método tal en el que el ligando se conjuga con las partículas encapsuladas lipídicas mediante una interacción avidina-biotina y el conjugado resultante se une a epítopos moleculares sobre una superficie; la provisión de un método tal que sea útil para mejorar la reflectividad acústica de una superficie biológica para la obtención de imágenes de ultrasonido; la provisión de un método de este tipo, en el que el conjugado formado es efectivo para la obtención de imágenes por rayos X, ultrasonidos, resonancia magnética o tomografía por emisión de positrones; la provisión de composiciones para su uso en la obtención de imágenes de ultrasonido de una superficie biológica y para mejorar la reflectividad acústica de tal superficie; la provisión de agentes de contraste ultrasónicos que llegan a ser altamente reflectantes cuando se unen al sitio o a la superficie biológica deseados mediante el sistema de unión basado en ligandos de la invención; y la provisión de tales métodos y composiciones que pueden seleccionar como objetivo y alterar las propiedades ecogénicas de una superficie tisular para la identificación mejorada y específica de procesos patológicos. Otros objetos formarán parte evidente y en parte se indican más adelante en el presente documento.
En resumen, en su realización más amplia, la presente invención se refiere al uso de una composición que comprende una emulsión de partículas encapsuladas lipídicas que comprenden fluorocarbono líquido, estando dichas partículas acopladas a un agente para la unión basada en ligandos de dichas partículas a un receptor o epítopo molecular, para la preparación de una formulación para un procedimiento diagnóstico dirigido in vivo, en el que dicho procedimiento diagnóstico comprende la obtención de imágenes de dicho objetivo en presencia de dicha emulsión de partículas encapsuladas lipídicas que comprenden fluorocarbono líquido, con la condición de que el fluorocarbono gaseoso no esté presente como agente de contraste.
¿?agente de activación de biotina, por lo que el ligando se conjuga con las partículas mediante una interacción avidina-biotina y el conjugado resultante se une a los epítopos moleculares sobre tal superficie. El conjugado es efectivo para la obtención de imágenes mediante rayos X, ultrasonidos, resonancia magnética o tomografía por emisión de positrones. En una realización más específica, la invención se refiere a un método para mejorar la reflectividad acústica de una superficie biológica mediante la administración secuencial de los componentes observados anteriormente, por lo que el conjugado resultante se une a una superficie natural o sintética para mejorar la reflectividad acústica de la misma para la obtención de imágenes de ultrasonido. La invención también se refiere a composiciones para su uso en la obtención de imágenes de ultrasonido de tales superficies y para mejorar la reflectividad acústica de las mismas.
Breve descripción de los dibujos
La figura 1 es un gráfico que muestra los cambios en el tamaño de partícula de los agregados de emulsiones perfluorocarbonadas biotinilada y control con concentración creciente de avidina;
la figura 2 muestra imágenes de ultrasonidos de emulsiones perfluorocarbonadas control y biotinilada antes y después de la adición de avidina;
la figura 3 es una ilustración gráfica de imágenes de los tubos de diálisis y la región de colocación de interés para análisis en escala de grises;
la figura 4 es un gráfico que muestra cambios en la escala de grises de píxeles promedio asociados con la adición de avidina a las emulsiones perfluorocarbonadas control o biotinilada.
la figura 5 es un gráfico que muestra el efecto de las emulsiones perfluorocarbonadas control y biotinilada sobre la función de transferencia de retrodispersión aparente y la retrodispersión integrada de membranas de nitrocelulosa tratadas con avidina;
La figura 6 es un gráfico que muestra la función de transferencia de retrodispersión aparente de emulsiones perfluorocarbonadas biotinilada y control dirigidas al dímero D conjugado covalentemente con membranas de nitrocelulosa;
la figura 7 es un gráfico que muestra la función de transferencia de retrodispersión aparente (dB) de emulsiones perfluorocarbonadas biotinilada y control a frecuencias ultrasónicas bajas;
la figura 8 es un gráfico que muestra la función de transferencia de retrodispersión aparente de emulsiones perfluorocarbonadas biotinilada y control de tamaño de partícula grande dirigidas a membranas de nitrocelulosa tratadas con avidina;
la figura 9 muestra imágenes de ultrasonidos de trombos plasmáticos antes y después de la exposición a emulsiones control o biotinilada;
la figura 10 es un gráfico que muestra el nivel de la escala de grises de píxeles promedio de trombos plasmáticos preseleccionados como objetivo con un anticuerpo monoclonal anti-fibrina y expuestos a emulsiones perfluorocarbonadas control o biotinilada;
la figura 11 muestra imágenes ultrasónicas de trombos en la arteria femoral mejoradas acústicamente con emulsión perfluorocarbonada biotinilada in vivo;
la figura 12 es un gráfico que muestra el cambio neto en la función de transferencia de retrodispersión aparente de emulsiones perfluorocarbonadas biotinilada y control dirigidas a un antígeno específico de la próstata en el carcinoma prostático con relación a las regiones normales;
la figura 13 es un gráfico que muestra el cambio neto en la retrodispersión integrada entre el estroma prostático normal y regiones con cáncer para emulsiones perfluorocarbonadas control frente a biotinilada;
la figura 14 es un gráfico que muestra el cambio neto en la función de transferencia de retrodispersión aparente de emulsiones perfluorocarbonadas biotinilada y control dirigidas al antígeno OC-125 en el carcinoma ovárico con relación a las regiones normales;
la figura 15 es un gráfico que muestra el cambio neto en la retrodispersión integrada entre tejido ovárico normal y regiones con carcinoma para emulsiones perfluorocarbonadas control frente a biotinilada;
la figura 16 muestra imágenes ultrasónicas y ópticas de amígdala utilizando contraste perfluorocarbonado y peroxidasa de rábano dirigida al epitelio con anticuerpos anti-citoqueratina;
la figura 17 muestra imágenes ultrasónicas con detección de picos del epitelio de la amígdala mejoradas acústicamente con emulsión perfluorocarbonada dirigida con el anticuerpo anti-citoqueratina;
la figura 18 es un gráfico que muestra curvas de titulación con avidina para tres emulsiones perfluorocarbonadas biotiniladas que incorporan diversas concentraciones de gadolinio -DTPA-BOA;
La figura 19 muestra la mejora de la reflectividad acústica de coágulos plasmáticos tratados con contraste de RMN y ultrasónico dual con perfluorocarbonos dirigido; y
La figura 20 muestra un trombo de la arteria femoral detectado mediante resonancia magnética y ultrasonidos.
Descripción de las realizaciones preferidas
Según la presente invención, se ha encontrado ahora que puede lograrse un sistema de unión basado en ligandos que tiene una aplicación amplia, mediante la unión basada en ligandos de partículas encapsuladas lipídicas a epítopos moleculares sobre una superficie in vivo o in vitro mediante la administración secuencial de (a) un ligando específico de sitio activado con un agente de activación de biotina; (b) un agente de activación de avidina; y (c) partículas encapsuladas lipídicas activadas con un agente de activación de biotina, por el que el ligando se conjuga con las partículas encapsuladas lipídicas mediante una interacción o complejación de avidina-biotina y el conjugado resultante se une a los epítopos moleculares sobre la superficie. El sistema de unión basado en ligandos de la presente invención permite de esta manera la detección de restos moleculares, tales como péptidos, hidratos de carbono o ácidos nucleicos con una sonda de ligando específica (por ejemplo, un anticuerpo o fragmento de anticuerpo) complejado o conjugado con avidina y biotina, portándose está última por las partículas encapsuladas lipídicas (por ejemplo liposoma o emulsión encapsulada lipídicas biotinilados). El sistema de unión basado en ligandos de la invención puede emplearse en un sistema de agente de contraste ultrasónico, sistema diagnóstico de laboratorio similar a ELISA basado en ultrasonidos en sistemas en fase líquida y sólida y en cultivos celulares, sistemas de detección electroforéticos, cromatográficos y de hibridación, y para la detección de trombos, infecciones, cánceres e infartos en pacientes, con el uso de métodos de obtención de imágenes ultrasónicos convencionales. La invención también puede aplicarse para fines terapéuticos mediante la administración de agentes o fármacos quimioterápicos a los sitios deseados debido a la especificidad del sistema de unión acoplado con la capacidad para monitorizar el progreso del tratamiento terapéutico mediante la obtención repetida de imágenes en tales sitios. A este respecto, la conjugación anteriormente nombrada del ligando con las partículas encapsuladas lipídicas mediante una interacción o complejación de avidina-biotina es efectiva para la obtención de imágenes por rayos X, ultrasonidos, resonancia magnética o tomografía por emisión de positrones.
La invención puede ser útil en un método para mejorar la reflectividad de una superficie biológica mediante la administración secuencial a la superficie de (a) un ligando específico de sitio activado con un agente de activación de biotina; (b) un agente de activación de avidina; y (c) partículas encapsuladas lipídicas activadas con un agente de activación de biotina; por el que el ligando se conjuga con las partículas encapsuladas lipídicas mediante una interacción de avidina-biotina y el conjugado resultante se une a la superficie biológica para mejorar la reflectividad acústica de la misma para la obtención de imágenes ultrasónica. Este enfoque trifásico novedoso utiliza una interacción avidina-biotina para permitir la administración del ligando que selecciona el objetivo separado de las partículas encapsuladas lipídicas. En una aplicación específica del método se va a administrar primero un ligando biotinilado a un paciente para seleccionar previamente como objetivo la superficie tisular o biológica de interés y para hacerlo circular durante un periodo de tiempo necesario o suficiente para optimizar el porcentaje de unión. En la segunda fase, se administra avidina, se hace circular y se une al ligando biotinilado unido al tejido o superficie objetivo y a cualquier ligando residual, libre, en circulación. La reticulación de la avidina aumenta la avidez y la estabilidad del ligando sobre el tejido o superficie objetivo, mientras que potencia el rápido aclaramiento de los complejos de avidina-ligando circulantes mediante el sistema reticuloendotelial. En la tercera fase, se administran las partículas encapsuladas lipídicas biotiniladas, se unen a la avidina mediante sitios de unión a biotina no ocupados y se confiere un aumento del contraste acústico a la superficie tisular seleccionada como objetivo. Puede realizarse la administración secuencial repetida de avidina y partículas encapsuladas lipídicas biotiniladas para aumentar el efecto del contraste acústico de las partículas encapsuladas lipídicas unidas a la superficie seleccionada como objetivo.
En la práctica de la invención, el ligando empleado puede estar constituido, por ejemplo, por anticuerpos monoclonales o policlonales, virus, agentes quimioterápicos, agonistas y antagonistas de receptores, fragmentos de anticuerpos, lectina, albúmina, péptidos, hormonas, aminoazúcares, lípidos, ácidos grasos, ácidos nucleicos y células, preparados o aislados a partir de fuentes naturales o sintéticas. En resumen, puede utilizarse cualquier ligando específico de sitio para cualquier receptor o epítopo molecular para detectarse mediante la práctica de la invención.
El ligando se activa con un agente de activación de biotina. Tal como se emplea en el presente documento, el término "agente de activación de biotina" o "biotinilado" engloba biotina, biocitina u otros análogos de la biotina, tales como éster de N-hidroxicuccinimida de amidocaproato de biotina, ácido biotina-4-amidobenzoico, hidrazida caproílica de biotinamida y otros derivados y conjugados de la biotina. Otros derivados incluyen biotina-dextrano, éster de N-hidroxisuccinimida de disulfuro de biotina, biotina-6 amidoquinolina, hidrazida de biotina, éster de N-hidroxisuccinimida de d-biotina, biotina-maleimida, éster de p-nitrofenilo de d-biotina, nucleótidos biotinilados y aminoácidos biotinilados tales como Ne-biotinil-l-lisina.
En la segunda fase, tal como se mencionó anteriormente, se administra un agente de activación de avidina. Tal como se emplea en el presente documento, el término "agente de activación de avidina" o "tratado con avidina", engloba avidina, estreptavidina y otros análogos de avidina, tales como conjugados de estreptavidina o avidina, especies fraccionadas y altamente purificadas de avidina o estreptavidina, y variantes no o parcialmente aminoacídicas, análogos de avidina recombinantes o químicamente sintetizados con aminoácidos o sustituciones químicas que todavía se ajustan a la unión biotina.
Las partículas encapsuladas lipídicas o el agente de contraste empleado en la tercera fase pueden estar constituidos, por ejemplo, por un liposoma o emulsión biotinilados que contengan líquido. En un ejemplo específico, las partículas encapsuladas lipídicas pueden estar constituidas por una emulsión perfluorocarbonada, teniendo incorporadas las partículas de la emulsión en su recubrimiento externo un resto compatible lipídico biotinilado, tal como un fosfolípido, un ácido graso, colesterol, lipolípido, esfingomielina, tocoferol, glucolípido, estearilamina, cardiolipina un lípido con ácidos grasos con enlaces éter o éster, o un lípido polimerizado. Por tanto, el agente de contraste biotinilado que constituye las partículas encapsuladas lipídicas puede producirse mediante la incorporación de fosfatidiletanolamina biotinilada en la monocapa lipídica exterior de una emulsión perfluorocarbonada.
Las emulsiones perfluorocarbonadas son particularmente adecuadas para aplicaciones biomédicas y para su uso en la práctica de la presente invención. Se sabe que son estables, biológicamente inertes y fácilmente metabolizadas, principalmente por la evaporación transpulmonar de los alvéolos. Además, su pequeño tamaño de partícula se ajusta fácilmente al paso transpulmonar y su semivida circulatoria (4 - 8 horas) supera ventajosamente a la de otros agentes. Además, los perfluorocarbonos se han utilizado hasta la fecha en una amplia variedad de aplicaciones biomédicas, incluyendo el uso como sustitutos de sangre artificial. Para su uso en la presente invención, pueden emplearse diversas emulsiones fluorocarbonadas, incluyendo aquellas en las que el fluorocarbono es un fluorocarbono hidrocarbonado, un éter, poliéter o éter corona perfluoroalquilado. Emulsiones perfluorocarbonadas útiles se describen en las patentes de los EE.UU. números 4.927.623, 5.077.036, 5.114.703, 5.171.755, 5.304.325, 5.350.571, 5.393.524 y 5.403.575 e incluyen aquellas en las que el compuesto perfluorocarbonado es perfluorotributilamina, perfluorodecalina, bromuro de perfluorooctilo, perfluorodiclorooctano, perfluorodecano, perfluorotripropilamina, perfluorotrimetilciclohexano u otros compuestos perfluorocarbonados. Además pueden incorporarse mezclas de tales compuestos perfluorocarbonados en las emulsiones utilizadas en la práctica de la invención. Como ejemplo específico de una emulsión perfluorocarbonada útil en la invención puede mencionarse una emulsión de perfluorodiclorooctanto, en la que el recubrimiento lipídico de la misma contiene entre aproximadamente el 50 y el 99,5 por ciento molar de lecitina, preferiblemente aproximadamente del 55 al 70 por ciento molar de lecitina, del 0 al 50 por ciento molar de colesterol, preferiblemente aproximadamente del 25 al 45 por ciento molar de colesterol y aproximadamente del 0,5 al 10 por ciento molar de fosfatidiletanolamina biotinilada, preferiblemente aproximadamente del 1 al 5 por ciento molar de fosfatidiletanolamina biotinilada. Otros fosfolípidos tales como fosfatidilserina, pueden biotinilarse, grupos acilo grasos tales como estearilamina pueden conjugarse con biotina, o colesterol u otros compuestos químicos solubles en grasas pueden biotinilarse e incorporarse en el recubrimiento lipídico para las partículas encapsuladas lipídicas. La preparación de un perfluorocarbono biotinilado ejemplo para su uso en la práctica de la invención se describe más adelante en el presente documento según procedimientos conocidos.
Cuando las partículas encapsuladas lipídicas están constituidas por un liposoma, en lugar de por una emulsión, tal liposoma puede prepararse tal como se describe generalmente en la bibliografía (véase, por ejemplo, Kimelberg et al., CRC Crit. Rev. Toxicol. 6,25 (1978) y Yatvin et al., Medical Physics, Vol. 9, No. 2, 149 (1982)). Los liposomas se conocen en la técnica y generalmente comprenden materiales lipídicos incluyendo lecitina y esteroles, fosfatidilcolina del huevo, ácido fosfatídico del huevo, colesterol y alfa-tocoferol.
Con respecto al tamaño de partícula de las partículas encapsuladas lipídicas constituidas por una emulsión perfluorocarbonada o liposoma, el tamaño de partícula puede oscilar entre aproximadamente 0,05 hasta 5 micras y preferiblemente entre aproximadamente 0,05 y 0,5 micras. Por tanto, se prefieren las partículas de pequeño tamaño porque circulan más y tienen a ser más estables que las partículas más grandes.
Tal como se indica, el ligando se conjuga con las partículas encapsuladas lipídicas o emulsión perfluorocarbonada mediante una interacción avidina-biotina. El ligando también puede conjugarse con la emulsión directa o indirectamente mediante grupos químicos intermedios o conjugados directa o indirectamente con biotina o un análogo de biotina mediante grupos químicos intermedios, tales como una molécula espaciadora de alcano u otro espaciador hidrocarbonado. El uso de moléculas espaciadoras entre el ligando y la biotina o entre la biotina y la emulsión no es necesario pero ayuda a hacer que la biotina esté más disponible para unirse a la avidina.
Alternativamente, pero menos preferiblemente, el uso basado en ligandos de la invención puede llevarse a cabo mediante la administración secuencial de un ligando específico de sitio activado con una biotina o agente de activación de avidina y partículas encapsuladas lipídicas activadas con una biotina o agente de activación de avidina, utilizándose un agente de activación de biotina cuando se empleó un agente de activación de avidina en la primera etapa y utilizándose un agente de activación de avidina cuando se empleó un agente de activación de biotina en la primera etapa. La conjugación directa del ligando con una emulsión perfluorocarbonada, por ejemplo, es menos preferible, puesto que puede acelerar el aclaramiento in vivo del agente de contraste de emulsión.
En la práctica de la invención, se ha encontrado inesperadamente que los componentes individuales de los agentes de contraste ultrasónicos, tal como se describió anteriormente, son escasamente reflectantes o tienen ecogenicidad baja en el torrente circulatorio, pero llegan a ser altamente reflectantes cuando se forma el complejo de ligando-avidina-emulsión in vivo en el sitio o superficie biológica deseados y mejora así sustancialmente la reflectividad acústica de la misma para la obtención de imágenes de ultrasonido. Esto está en marcado contraste con los agentes de contraste sonográficos conocidos anteriormente que son intrínsecamente brillantes o de alta reflectividad en el torrente sanguíneo. La reflectividad acústica mejorada lograda mediante la presente invención proporciona la ventaja de potenciar la razón señal - ruido, porque el contraste de fondo de partículas encapsuladas lipídicas en la sangre es mínima. Por tanto, la presente invención ofrece un método no invasivo mejorado para formar un agente de contraste acústico que puede seleccionarse como objetivo in vitro o in vivo y que cuando se une a un sitio deseado específico altera la reflectividad acústica de una superficie tisular o medio de soporte de una manera detectable por los transductores ultrasónicos adecuados para las aplicaciones biomédicas y diagnósticas dentro de un intervalo de frecuencia de al menos 5 a 50 MHz (las frecuencias nominales centrales pueden oscilar más ampliamente basándose en el conocimiento de que son transductores de banda ancha). El método de la invención proporciona ventajosamente un medio práctico para detectar cualquier epítopo o receptor molecular para el que está disponible un anticuerpo monoclonal biotinilado u otro ligando sin necesidad de utilizar radiación ionizante con o sin procedimientos invasivos asociados en diversas aplicaciones clínicas y, mientras se emplea tecnología ultrasónica habitual disponible comercialmente. La presente invención no emplea agentes o sistemas de contraste ultrasónicos para delinear el flujo sanguíneo como en la técnica anterior, sino más bien para detectar acontecimientos fisiológicos y patológicos mediante la detección de la acumulación del agente de contraste en sitios de unión específicos.
En la aplicación de la invención a ensayos diagnósticos, tales como ensayos diagnósticos de laboratorio tipo ELISA basados en ultrasonidos en sistemas en fase líquida y sólida, la superficie sobre la que se produce la unión basada en ligandos de las partículas encapsuladas lipídicas a los epítopos moleculares puede ser, por ejemplo, nylon, membranas de nitrocelulosa o un gel, así como una superficie biológica.
El sistema de unión basado en ligandos de la invención también puede aplicarse para proporcionar sistema de administración de terapia génica o agente quimioterápico combinado con obtención de imágenes de ultrasonido. Por ejemplo, agentes quimioterápicos o fármacos de activación inmunitaria, tales como el activador del plasminógeno tisular, adriamicina, vincristina, urocinasa, estreptocinasa, metotrexato, citarabina, tioguanina, doxorrubicina, 5-fluorouracilo, cisplatino, etopósido, ifosfamida, asparginasa, desoxicoformicina, hexametilmelamina e incluyendo agentes radiactivos, pueden incorporarse en las partículas encapsuladas lipídicas y llegar a formar parte del conjugado unido a un sitio de superficie biológica específico para la acción terapéutica. La presente invención también permitiría ventajosamente que se obtuvieran imágenes ultrasónicas del sitio con el fin de monitorizar el progreso del tratamiento en el sitio y de realizar ajustes deseados en la dosis del agente terapéutico dirigido al sitio. La invención proporciona por tanto, medios no invasivos para la detección y el tratamiento terapéutico de trombos, infecciones, cánceres e infartos en pacientes, mientras se emplean sistemas de obtención de imágenes de ultrasonido convencionales.
Los ejemplos siguientes ilustran la práctica de la invención.
Ejemplo 1
El procedimiento para preparar una emulsión de perfluorodiclorooctano encapsulada lipídica biotinilada para su uso en la obtención de imágenes de ultrasonido es tal como sigue.
La emulsión de perflurodiclorooctano (PFDCO) lipídica biotinilada está comprendida de los siguientes componentes: PFDCO (40% v/v), aceite de cártamo (2,0% p/v), una co-mezcla de tensioactivo (2,0% p/v) y glicerina (1,7% p/v). La co-mezcla de tensioactivo está compuesta de aproximadamente el 64% molar de lecitina, el 35% molar de colesterol y el 1% molar de N-(6-biotinoil)amino)hexanoil)dipalmitoil-L-alfa-fosfatidiletanolamina. Estos componentes se pesan juntos en un tubo de ensayo y se disuelven en cloroformo. El cloroformo se extrae del material y la mezcla de tensioactivo resultante se seca a 50ºC en una estufa a vacío durante la noche. La comezcla se dispersa en agua mediante sonicación, dando como resultado una suspensión de liposomas. La suspensión se transfiere a un recipiente de mezclado de 30 mL de capacidad (Dynamics Corporation of America, New Hartford, CT) junto con el PFDCO y el aceite. La mezcla se combina durante 30 - 60 segundos hasta obtener una preemulsión. La muestra preemulsionada se transfiere al depósito de un microfluidizador, modelo S110 (Microfluidics, Newton, MA), y se emulsiona durante tres minutos a 69,95 MPa. Para evitar que la emulsión se caliente excesivamente durante la homogeneización, la válvula de corte y el serpentín de mezclado del microfluidizador están sumergidos en un baño de agua a temperatura ambiente durante el procesamiento. La temperatura final de la emulsión es de aproximadamente 35ºC. La emulsión terminada se envasa en viales con 10 mL de suero, se cubre con gas nitrógeno y se sellan con tapón/cierre de engarce. El tamaño promedio de partícula del producto terminado, medida mediante un dispositivo para la determinación del tamaño de partícula por difusión de láser luminoso (Brookhaven Instruments Corporation, Holtsville, NY), es de 250 nm.
Ejemplo 2
La incorporación de fosfatidiletanolamina biotinilada en la monocapa lipídica de encapsulación de la emulsión perfluorocarbonada se lleva a cabo tal como se describe en el ejemplo 1 y se demuestra que el tamaño de partícula del agregado aumenta en presencia de concentraciones valoradas de avidina (Pierce, Rockford, IL 61105). Se prepara una emulsión control preparada idénticamente que incorpora fosfatidiletanolamina no biotinilada en la monocapa lipídica externa de la emulsión perfluorocarbonada. La avidina se resuspende en solución salina tamponada con fosfato isotónica (PBS, Fisher Inc., Fair Lawn, NJ). Dentro de una cubeta de poliestireno, se prepara una mezcla de reacción de 3,0 ml que contiene PBS, emulsión perfluorocarbonada control o biotinilada (20 \mul) y avidina, a 0,0, 0,5, 1,0, 1,5 ó 2,0 \mug/ml. Los contenidos se mezclaron mediante inversión suave y se hicieron reaccionar durante treinta minutos a temperatura ambiente. Los tamaños de partícula de la emulsión se determinan por triplicado con un analizador del tamaño de partícula Brookhaven BI-90 (Holtsville, NY) a 37ºC. El tamaño de partícula del agregado de la emulsión biotinilada aumentó progresivamente desde un nivel inicial de 263 \pm 2,54 nm hasta más de 2000 nm con el aumento de concentración de avidina (figura 1). Se observó floculación y sedimentación marcadas cuando las concentraciones de avidina sobrepasaban 2,0 \mug/ml. El tamaño de partícula de la emulsión control es de 234 \pm 3,81 nm de diámetro y la adición de 2,0 \mug de avidina a la mezcla de reacción no afecta al tamaño de partícula. Estos resultados demuestran claramente que la fosfatidiletanolamina biotinilada se incorpora y se orienta apropiadamente en la monocapa lipídica externa de la emulsión perfluorocarbonada y que las biotinas de la superficie están adecuadamente disponibles para la avidina en el medio. Múltiples sitios de unión a biotina en la molécula de avidina, así como múltiples residuos de biotina sobre la superficie de la emulsión progresan hacia una rápida complejación de las partículas in vitro.
Ejemplo 3
Partículas de emulsión perfluorocarbonada biotinilada, de aproximadamente 250 nm de diámetro, con baja reflectividad acústica independiente, se complejan con avidina en disolución, lo que produce la agregación y mejora la ecogenicidad. Se preparan las emulsiones perfluorocarbonadas biotinilada y control (200 \mul) tal como se describió anteriormente y se diluyen en PBS (15 ml) y se colocan dentro de tubos de diálisis (Spectra/Por 4, 25 mm, MWCO 12,000-14,000, Spectrum Medical Industries, Inc., Los Angeles, CA), se obtienen imágenes ultrasónicamente dentro de un baño de agua y PBS a temperatura ambiente utilizando un transductor focalizado de 7,5 MHz y un sistema de obtención de imágenes con alineamiento en fase (Phased Array Imaging System) de Hewlett Packard (HP) Sonos 2500 (Andover, MA). Las imágenes en tiempo real se registran en una cinta de vídeo SVHS para el análisis posterior de la imagen. Se evalúa la escala de grises de píxeles y la homogeneidad en las imágenes congeladas seleccionadas utilizando NIH Image 1.47 (Institutos Nacionales de Salud). Se añade avidina (30 \mug/ml) a cada suspensión de emulsión, se mezcla mediante inversión suave y se deja que se compleje durante 30 minutos. Las suspensiones de emulsión son ópticamente opacas, pero no se detectan ultrasónicamente antes de la adición de avidina. La complejación de la emulsión perfluorocarbonada biotinilada se garantiza rápidamente con la adición de avidina y pronto aparece un precipitado floculante blanco. La avidina no induce cambios en la suspensión de la emulsión control. La insonación de las suspensiones revela que las partículas de la emulsión perfluorocarbonada biotinilada opacifican los tubos de diálisis; mientras, las partículas control no se aprecian acústicamente (figura 2). El análisis de la intensidad del eco de la de escala de grises en las imágenes congeladas de las suspensiones de las emulsiones control y biotinilada antes y después de la avidina se resume en las figuras 3 y 4. El aumento del nivel de la escala de grises promedio de la suspensión de emulsión biotinilada (71,3 \pm 22,1) con relación a su nivel de escala de grises de píxeles antes de la avidina (2,2 \pm 4,4) demuestra que se logra la mejora acústica. Los niveles promedio de la escala de grises de píxeles de la emulsión control antes (3 \pm 7,33) y después (1,0 \pm 1,3) de la adición de avidina son similares. Estos resultados demuestran la baja reflectividad acústica de la emulsión perfluorocarbonada cuando se obtienen imágenes como partículas independientes, en comparación con la mejora de la naturaleza ecogénica de las partículas biotiniladas agregadas. La falta de cambio acústico en la suspensión de emulsión control en presencia de avidina confirma la especificidad del ligando de la emulsión biotinilada.
Ejemplo 4
La emulsión perfluorocarbonada biotinilada, de aproximadamente 250 nm de diámetro, se dirige específicamente a avidina, se une covalentemente a una membrana de nitrocelulosa modificada y aumenta la reflectividad acústica de la superficie de membrana a altas frecuencias ultrasónicas (de 30 a 60 MHz). En resumen, se conjugaron membranas de nitrocelulosa (S+S NC^{MR}, Schleicher & Schuell, Keane, NH) con avidina utilizando una molécula espaciadora de diaminohexano (Sigma Chemical Co., St. Louis, MO) y activación con glutaraldehído (Sigma Chemical Co., St. Louis, MO), tal como se describe por Másson et al. (Electrophoresis 1993, 14, 860-865). Discos de nitrocelulosa (2 cm de diámetro) se sumergen en diaminohexano al 2,5% disuelto en agua desionizada durante 60 minutos con agitación rotatoria lenta constante. Las membranas se lavan con ácido acético 1 M durante 6 - 7 horas, seguido por un lavado de 18+ horas con agua desionizada con agitación constante. Las membranas se colocan en glutaraldehído al 1% en tampón bicarbonato de sodio 0,1 M, pH 10,0 durante 15 minutos, después se lavan durante tres horas con agua desionizada. Las membranas de nitrocelulosa se almacenan y se secan a 4ºC hasta su utilización; el almacenamiento no sobrepasa los tres días.
Se añaden gota a gota cincuenta (50) \mul de avidina (250 \mug) en el centro de seis membranas con una microjeringa y se deja que se sequen. Cada membrana se lava exhaustivamente con Tween-20 al 0,1% (Sigma Chemical Co., St. Louis, MO) en PBS, luego se coloca en albúmina sérica bovina al 3% (BSA, cristalizada, Sigma Chemical Company, St. Louis, MO), se disuelve en PBS - Tween-20 al 0,1% durante 20 minutos para bloquear los sitios de unión a proteínas no específicos alrededor de la periferia del disco. Tras el bloqueo por BSA, cada disco se lava exhaustivamente con PBS y se coloca en 300 \mul de emulsión perfluorocarbonada biotinilada o control suspendida en 4 ml de PBS durante 20 minutos. La emulsión no unida se elimina con lavados de PBS consecutivos. Cada disco se vuelve a exponer a avidina y a la emulsión control o biotinilada para garantizar la cobertura saturada de la superficie de nitrocelulosa. Los discos de nitrocelulosa se lavan y se almacenan en PBS a 4ºC hasta la obtención de imágenes con microscopía acústica.
Para la obtención de imágenes microscópicas acústicas, cada disco de nitrocelulosa se coloca plano encima de una placa de acero inoxidable pulida en un soporte de poliestireno con una ventana central de 2 X 2 cm eliminada. La muestra preparada se sumerge en PBS a temperatura ambiente para la insonación ultrasónica. Para la insonación se utiliza un microscopio acústico de diseño a la medida, utilizando un transductor piezoeléctrico de línea retardadora, focalizado, con ancho de banda de 50 MHz (frecuencia nominal), (6,35 mm de diámetro, 12,70 mm de longitud focal, Modelo V390, Panametrics Co., Waltham, MA) que se hace funcionar en el modo de eco por impulsos. Se recogen los datos de radiofrecuencia (RF) retrodispersada y se digitalizan a 500 megamuestras por segundo utilizando un osciloscopio de digitalización Tektronix DSA 601 (Beaverton, OR) con resolución de 8 bits. Se utiliza un sistema de ganancia variable para aumentar el intervalo dinámico efectivo de este digitalizador. Se obtienen los datos de radiofrecuencia de aproximadamente 100 sitios independientes de cada región de interés con resolución de incremento lateral de 100 micras.
Un barrido con detección de picos en radiofrecuencia de los datos se convierte en un mapa de escala de grises (0 = dispersión inferior, 255 = dispersión superior) para permitir la selección de las regiones de interés para el análisis de retrodispersión integrada. Los datos ultrasónicos de radiofrecuencia (RF) se almacenan en un formato de exploración por trama y se analizan con un software diseñado a la medida. Se controla el paso de los segmentos de las líneas de RF para el análisis de retrodispersión integrada para englobar las superficies delantera y posterior del disco de nitrocelulosa. Los datos se multiplican mediante una ventana rectangular y sus espectros de potencia se determinan mediante transformación de Fourier rápida. Se calculan los espectros de potencia para las muestras relacionadas con el espectro de potencia devuelto desde un reflector plano de acero inoxidable casi perfecto y la función de transferencia de retrodispersión dependiente de la frecuencia a través del ancho de banda útil del transductor (de 30 a 60 MHz) y se expresan en decibelios con relación a la dispersión acústica desde el reflector de placa de acero inoxidable casi perfecto (Wong et al., Ultrasound in Med & Biol. 1993; 19: 365-374). La retrodispersión integrada (IB) se calcula como el promedio de la función de la transferencia de retrodispersión dependiente de la frecuencia a través del ancho de banda útil del transductor.
Los discos incubados con emulsión perfluorocarbonada biotinilada tienen regiones centrales con alta dispersión acústica, en relación con las regiones periféricas (es decir, de fondo) del mismo disco. Los discos de nitrocelulosa incubados con la emulsión control no tienen regiones centrales de alta dispersión y no se detectan diferencias en el carácter acústico mediante cambios en la firma RF entre las regiones central y periférica del disco. La IB de la región de emulsión biotinilada, localizada centralmente (17,8 \pm 0,2 dB) es 6,3 \pm 0,1 dB (4 veces) mayor (p < 0,05) que la IB de la región análoga en el disco control (-24,1 \pm 0,2 dB). La variación dependiente de la frecuencia en la función de la transferencia de retrodispersión aparente (media \pm EEM) de las regiones con gotas de avidina de los discos con emulsión biotinilada y control se presentan en la figura 5. Se observa una respuesta acústica homogénea y consistentente mayor a través del espectro de frecuencia, debido a la emulsión biotinilada unida. Estos resultados demuestran la efectividad de la emulsión perfluorocarbonada biotinilada para seleccionar como objetivo específicamente un antígeno unido a una superficie y modificar radicalmente la reflectividad acústica de la superficie con el medio de baño, aumentando la potencia retrodispersada ultrasónica a frecuencias altas.
Ejemplo 5
La emulsión perfluorocarbonada biotinilada (250 nm de diámetro) dirige específicamente al dímero D unido covalentemente a una membrana de nitrocelulosa modificada utilizando un complejo de fragmento F(_{ab}) anti-dímero D biotinilado - avidina y da como resultado un marcado aumento en la potencia acústica reflejada desde la superficie. El dímero D se une covalentemente a los discos de nitrocelulosa modificados con una molécula espaciadora de diaminohexano y activados con glutaraldeído, tal como se describió anteriormente en el ejemplo 4. Se añaden gota a gota cincuenta (50) \mug del dímero D con una microjeringa en el centro de tres de seis membranas y se deja que se sequen al aire. El dímero D no unido se lava exhaustivamente de las membranas con solución salina tamponada con fosfato (PBS) - Tween-20 al 0,1%. Los sitios de unión a proteínas no específicos de todas las membranas se bloquean con albúmina sérica bovina (BSA) al 3% en PBS - Tween-20 al 0,1% durante 20 minutos, seguido por lavados consecutivos con PBS. Las membranas con gotas de dímero D se incuban con 12,5 \mug de anticuerpo F(ab) anti-dímero B biotinilado en 4,0 ml de BSA al 3% durante 2 horas, se lavan con tampón PBS y después se incuban con 250 \mug de avidina en 4 ml de PBS durante 30 minutos. Tras eliminar la avidina no unida con lavados de PBS, los discos se exponen a emulsión perfluorocarbonada biotinilada o control (300 \mul) en 4,0 ml de PBS durante 20 minutos. El exceso de emulsión se elimina con lavados con tampón PBS. Los discos se vuelven a exponer a avidina y emulsión perfluorocarbonada, tal como se describió anteriormente y las membranas se almacenan en PBS a 4ºC hasta la obtención de imágenes.
Para la obtención de imágenes microscópicas acústicas, cada disco de nitrocelulosa se coloca plano encima de una placa de acero inoxidable pulida en un soporte de poliestireno, se sumerge en PBS a temperatura ambiente y se realiza la insolación con un microscopio acústico de diseño a la medida, utilizando un transductor piezoeléctrico de línea retardadora, focalizado, con ancho de banda de 50 MHz (frecuencia nominal), (6,35 mm de diámetro, 12,70 mm de longitud focal, Modelo V390, Panametrics Co., Waltham, MA) que se hace funcionar en el modo de eco por impulsos. Se recogen los datos de radiofrecuencia (RF) retrodispersada y se digitalizan a 500 megamuestras por segundo utilizando un osciloscopio de digitalización Tektronix DSA 601 (Beaverton, OR) con resolución de 8 bits. Se utiliza un sistema de ganancia variable para aumentar el intervalo dinámico efectivo de este digitalizador. Se obtienen los datos de radiofrecuencia de aproximadamente 100 sitios independientes de cada región de interés con resolución de incremento lateral de 100 micras.
Un barrido con detección de picos en radiofrecuencia de los datos se convierte en un mapa de escala de grises (0 = dispersión inferior, 255 = dispersión superior) para permitir la inspección visual y la selección de las regiones de interés para el análisis de retrodispersión integrada (IB). Los datos ultrasónicos de radiofrecuencia (RF) se almacenan en un formato de exploración por trama y se analizan con un software diseñado a la medida. Se controla el paso de los segmentos de las líneas de RF para el análisis de retrodispersión integrada para englobar las superficies delantera y posterior del disco de nitrocelulosa. Los datos se multiplican mediante una ventana rectangular y sus espectros de potencia se determinan mediante transformación de Fourier rápida. Se calculan los espectros de potencia para las muestras relacionadas con el espectro de potencia devuelto desde un reflector plano de acero inoxidable casi perfecto y la función de transferencia de retrodispersión dependiente de la frecuencia a través del ancho de banda útil del transductor (de 30 a 60 MHz) y se expresan en decibelios con relación a la dispersión acústica desde el reflector de placa de acero inoxidable casi perfecto (Wong et al., Ultrasound in Med & Biol. 1993; 19: 365-374). La retrodispersión integrada se calcula como el promedio de la función de la transferencia de retrodispersión dependiente de la frecuencia a través del ancho de banda útil del transductor.
El fragmento F(_{ab}) anti-dímero D biotinilado se une específicamente a la región central de los discos con gotas de dímero D y se retícula con la avidina mediante su resto de biotina. Al igual que en los ejemplos anteriores, la emulsión perfluorocarbonada biotinilada se une específicamente a la avidina unida al anticuerpo; mientras, la unión no específica de la emulsión control no tiene unión y no se detecta acústicamente. La IB de la nitrocelulosa recubierta con la región de emulsión biotinilada (-18,0 \pm 0,2 dB) fue mayor en 4,6 \pm 0,1 dB (p < 0,05) que la del disco control (-22,6 \pm 0,1 dB) en el intervalo de frecuencia de 30 a 60 mHz. La variación dependiente de la frecuencia en la función de la transferencia de retrodispersión aparente (media \pm EEM) de los discos con emulsión biotinilada y control se presentan en la figura 6. Se observa una respuesta acústica homogénea y consistentemente mayor a través del espectro de frecuencia, debido a la emulsión biotinilada unida. Estos datos confirman y amplían los hallazgos del ejemplo 4 con la avidina sola, demostrando que la emulsión perfluorocarbonada biotinilada unida mediante un sistema de ligando como selección de objetivo específico puede aumentar significativamente la retrodispersión acústica de una superficie de soporte sólida.
Ejemplo 6
La emulsión perfluorocarbonada biotinilada (250 nm de diámetro), se dirige específicamente a avidina conjugada con discos de nitrocelulosa y se somete a insonación a frecuencias clínicamente relevantes (de 5 a 15 MHz) y aumenta significativamente la retrodispersión acústica de la membrana. En resumen, se conjugaron membranas de nitrocelulosa (S+S NC^{MR}, Schleicher & Schuell, Keane, NH) con avidina utilizando una molécula espaciadora de diaminohexano (Sigma Chemical Co., St. Louis, MO) y activación con glutaraldehído (Sigma Chemical Co., St. Louis, MO), tal como se describe por Másson et al. (Electrophoresis 1993, 14, 860-865). Discos de nitrocelulosa (2 cm de diámetro) se sumergen en diaminohexano al 2,5% disuelto en agua desionizada durante 60 minutos con agitación rotatoria lenta constante. Las membranas se transfieren y se lavan con ácido acético 1 M durante 6 - 7 horas, seguido por un lavado continuado en agua desionizada durante al menos de 18 horas adicionales con agitación constante. Las membranas se colocan en glutaraldehído al 1% en tampón bicarbonato de sodio 0,1 M, pH 10,0 durante 15 minutos. Una vez completa la activación con glutaraldehído, las membranas se lavan con agitación continua durante tres horas. Las membranas de nitrocelulosa se almacenan y se secan a 4ºC hasta su utilización; el almacenamiento no sobrepasa los tres días.
Se añaden gota a gota cincuenta (50) \mul de avidina (250 \mug) en el centro de una membrana de nitrocelulosa con una microjeringa y se deja que se seque. Cada membrana se lava con Tween-20 al 0,1% (Sigma Chemical Co., St. Louis, MO) en solución salina tamponada con fosfato (PBS), luego se coloca en albúmina sérica bovina al 3% (BSA, cristalizada, Sigma Chemical Company, St. Louis, MO), se disuelve en PBS - Tween-20 al 0,1% durante 20 minutos para bloquear los sitios de unión a proteínas no específicos alrededor de la periferia del disco. Tras el bloqueo por BSA, cada disco se lava con PBS y se coloca en 300 \mul de emulsiones perfluorocarbonadas biotinilada o control suspendidas en 4 ml de PBS durante 20 minutos con agitación suave y rotatoria. La emulsión no unida se elimina con lavados de PBS. Cada disco se vuelve a exponer a avidina, se lava con PBS, se vuelve a exponer a la emulsión control o biotinilada y se vuelve a lavar con PBS, tal como se describió anteriormente. Los discos de nitrocelulosa se almacenan en PBS a 4ºC hasta la obtención de imágenes con el microscopio acústico.
Para la obtención de imágenes microscópicas acústicas, cada disco de nitrocelulosa se coloca plano encima de una placa de acero inoxidable pulida en un soporte de poliestireno con una ventana central de 2 X 2 cm eliminada. La muestra preparada se sumerge en PBS a temperatura ambiente para la insonación ultrasónica. Para la insonación se utiliza un microscopio acústico de diseño a la medida, utilizando un transductor piezoeléctrico de línea retardadora, focalizado, con ancho de banda de 50 MHz (frecuencia nominal), (12,70 mm de diámetro, 50,80 mm de longitud focal, Modelo V311, Panametrics Co., Waltham, MA) que se hace funcionar en el modo de eco por impulsos. Se recogen los datos de radiofrecuencia (RF) retrodispersada y se digitalizan a 500 megamuestras por segundo utilizando un osciloscopio de digitalización Tektronix DSA 601 (Beaverton, OR) con resolución de 8 bits. Se utiliza un sistema de ganancia variable para aumentar el intervalo dinámico efectivo de este digitalizador. Se obtienen los datos de radiofrecuencia de aproximadamente 100 sitios independientes de cada región de interés con resolución de incremento lateral de 250 micras.
Un barrido con detección de picos en radiofrecuencia de los datos se convierte en un mapa de escala de grises (0 = dispersión inferior, 255 = dispersión superior) para permitir la inspección visual y la selección de las regiones de interés para el análisis de retrodispersión integrada. Los datos ultrasónicos de radiofrecuencia se almacenan en un formato de exploración por trama y se analizan con un software diseñado a la medida. Se controla el paso de los segmentos de las líneas de RF para el análisis de retrodispersión integrada para englobar las superficies delantera y posterior del disco de nitrocelulosa. Los datos se multiplican mediante una ventana rectangular y sus espectros de potencia se determinan mediante transformación de Fourier rápida. Se calculan los espectros de potencia para las muestras relacionadas con el espectro de potencia devuelto desde un reflector plano de acero inoxidable casi perfecto y la función de transferencia de retrodispersión dependiente de la frecuencia a través del ancho de banda útil del transductor (de 5 a 15 MHz) y se expresan en decibelios con relación a la dispersión acústica desde el reflector de placa de acero inoxidable casi perfecto (Wong et al., Ultrasound in Med & Biol. 1993; 19: 365-374). La retrodispersión integrada (IB) se calcula como el promedio de la función de la transferencia de retrodispersión dependiente de la frecuencia a través del ancho de banda útil del transductor.
Los discos incubados con emulsión perfluorocarbonada biotinilada tienen regiones centrales con alta dispersión acústica, en relación con las regiones periféricas del mismo disco o las regiones centrales del disco con la emulsión control. Los discos de nitrocelulosa incubados con la emulsión control no tienen regiones de alta dispersión. La IB de la nitrocelulosa recubierta con la emulsión biotinilada (0,5 \pm 0,5 dB) fue mayor en 9,6 \pm 0,1 dB (8 veces) (p < 0,05) que la del disco control (-9,2 \pm 0,5 dB) en el intervalo de frecuencia de 5 a 10 MHz. La variación dependiente de la frecuencia en la función de la transferencia de retrodispersión aparente (media \pm EEM) de los discos con emulsión biotinilada y control se presentan en la figura 7. Se observa una respuesta acústica homogénea y consistentemente mayor a través del espectro de frecuencia, debido a la emulsión biotinilada unida. Estos datos confirman y amplían los hallazgos de los ejemplos 4 y 5 con la avidina y el dímero D, demostrando que la emulsión perfluorocarbonada biotinilada unida mediante un sistema de ligando como selección de objetivo específico puede aumentar significativamente la retrodispersión acústica de una superficie de soporte sólida y que esta retrodispersión acústica mejorada se detecta a frecuencias ultrasónicas bajas, clínicamente útiles (de 5 a 15 MHz), así como a frecuencias altas (de 30 a 60 MHz).
Ejemplo 7
El contraste perfluorocarbonado biotinilado, de aproximadamente 300 nm de diámetro, se dirige específicamente a avidina conjugada con discos de nitrocelulosa y se somete a insonación a frecuencias clínicamente relevantes (al menos de 5 a 15 MHz de ancho de banda). En resumen, se conjugaron membranas de nitrocelulosa (S+S NC^{MR}, Schleicher & Schuell, Keane, NH) con avidina utilizando una molécula espaciadora de diaminohexano (Sigma Chemical Co., St. Louis, MO) y activación con glutaraldehído (Sigma Chemical Co., St. Louis, MO), tal como se describe por Másson et al. (Electrophoresis 1993, 14, 860-865). Discos de nitrocelulosa (2 cm de diámetro) se sumergen en diaminohexano al 2,5% disuelto en agua desionizada durante 60 minutos con agitación rotatoria lenta constante. Las membranas se transfieren y se lavan con ácido acético 1 M durante 6 - 7 horas, después se transfieren para un lavado continuado en agua desionizada durante al menos 18 adicionales con agitación constante. Las membranas se colocan en glutaraldehído al 1% en tampón bicarbonato de sodio 0,1 M, pH 10,0 durante 15 minutos. Una vez completa la activación con glutaraldehído, las membranas se lavan con agitación continua durante tres horas. Las membranas de nitrocelulosa se almacenan y se secan a 4ºC hasta su utilización; el almacenamiento no sobrepasa los tres
días.
Se añaden gota a gota cincuenta (50) \mul de avidina (250 \mug) en el centro de dos de cuatro membranas con una microjeringa y se deja que se sequen. Cada membrana se lava con Tween-20 al 0,1% (Sigma Chemical Co., St. Louis, MO) en solución salina tamponada con fosfato (PBS), luego se coloca en albúmina sérica bovina al 3% (BSA, cristalizada, Sigma Chemical Company, St. Louis, MO), se disuelve en PBS - Tween-20 al 0,1% durante 20 minutos para bloquear los sitios de unión a proteínas no específicos alrededor de la periferia del disco. Tras el bloqueo por BSA, cada disco se lava con PBS y se coloca en 300 \mul de las emulsiones perfluorocarbonadas biotinilada o control, de aproximadamente 3000 nm de tamaño de partícula, suspendidas en 4 ml de PBS durante 20 minutos con agitación suave y rotatoria. La emulsión no unida se elimina con lavados de PBS consecutivos. Cada disco se vuelve a exponer a avidina, se lava con PBS, se expone a la emulsión perfluorocarbonada y se vuelve a lavar con PBS, tal como se describió anteriormente. Los discos de nitrocelulosa se almacenan en PBS a 4ºC hasta la obtención de imágenes con el microscopio acústico.
Para la obtención de imágenes con el microscopio acústico, cada disco de nitrocelulosa se coloca plano encima de una placa de acero inoxidable pulida en un soporte de poliestireno con una ventana central de 2 X 2 cm eliminada. La muestra preparada se sumerge en PBS a temperatura ambiente para la insonación ultrasónica. Para la insonación se utiliza un microscopio acústico de diseño a la medida, utilizando un transductor piezoeléctrico de línea retardadora, focalizado, con ancho de banda de 10 MHz (frecuencia nominal), (12,70 mm de diámetro, 50,80 mm de longitud focal, Modelo V311, Panametrics Co., Waltham, MA) que se hace funcionar en el modo de eco por impulsos. Se recogen los datos de radiofrecuencia (RF) retrodispersada y se digitalizan a 500 megamuestras por segundo utilizando un osciloscopio de digitalización Tektronix DSA 601 (Beaverton, OR) con resolución de 8 bits. Se utiliza un sistema de ganancia variable para aumentar el intervalo dinámico efectivo de este digitalizador. Se obtienen los datos de radiofrecuencia de aproximadamente 100 sitios independientes de cada región de interés con resolución de incremento lateral de 250 micras.
Un barrido con detección de picos en radiofrecuencia de los datos se convierte en un mapa de escala de grises (0 = dispersión inferior, 255 = dispersión superior) del disco para permitir la inspección visual y la selección de las regiones de interés para el análisis de retrodispersión integrada. Los datos ultrasónicos de radiofrecuencia se almacenan en un formato de exploración por trama y se analizan con un software diseñado a la medida. Se controla el paso de los segmentos de las líneas de RF para el análisis de retrodispersión integrada (IB) para englobar las superficies delantera y posterior del disco de nitrocelulosa. Los datos se multiplican mediante una ventana rectangular y sus espectros de potencia se determinan mediante transformación de Fourier rápida. Se calculan los espectros de potencia para las muestras relacionadas con el espectro de potencia devuelto desde un reflector plano de acero inoxidable casi perfecto y la función de transferencia de retrodispersión dependiente de la frecuencia a través del ancho de banda útil del transductor (de 5 a 15 MHz) y se expresan en decibelios con relación a la dispersión acústica desde el reflector de placa de acero inoxidable casi perfecto (Wong et al., Ultrasound in Med & Biol. 1993; 19: 365-374). La retrodispersión integrada se calcula como el promedio de la función de la transferencia de retrodispersión dependiente de la frecuencia a través del ancho de banda útil del transductor.
Los discos incubados con emulsión perfluorocarbonada biotinilada tienen regiones centrales con alta dispersión acústica, en relación con las regiones periféricas del mismo disco. Los discos de nitrocelulosa incubados con la emulsión control no tienen regiones centrales de alta dispersión y no se detectan diferencias en el carácter acústico entre las regiones central y periférica del disco. La IB de la nitrocelulosa recubierta con la emulsión biotinilada (-2,4 \pm 0,7 dB) fue mayor en 8,8 \pm 0,3 dB (aproximadamente 8 veces) mayor (p < 0,05) que la del disco control (-11,2 \pm 0,4 dB) en el intervalo de frecuencia de 5 a 15 MHz. La variación dependiente de la frecuencia en la función de la transferencia de retrodispersión aparente (media \pm EEM) de los discos con emulsión biotinilada y control se presentan en la figura 8. Se observa una respuesta acústica homogénea y consistentemente mayor a través del espectro de frecuencia, debido a la emulsión biotinilada unida. Estos datos confirman y amplían los hallazgos de los ejemplos 4, 5 y 6 con la avidina y el dímero D, demostrando que las emulsiones perfluorocarbonadas biotiniladas con tamaño de partícula grande pueden unirse mediante un sistema de ligando como selección de objetivo específico y aumentar significativamente la retrodispersión acústica de una superficie de soporte sólida. Esta retrodispersión acústica mejorada se detecta a frecuencias ultrasónicas clínicamente relevantes, de 5 a 15 MHz.
Ejemplo 8
La emulsión perfluorocarbonada biotinilada se dirige a trombos plasmáticos utilizando anticuerpos monoclonales anti-fibrina biotinilados (NIB1H10; Tymkewycz et al. 1993. Blood Coagulation and Fibrinolysis 4:211-221) y avidina. En un estudio representativo (1 de 5), se obtiene sangre completa porcina y se añade un anticoagulante (9:1, v/v) con citrato sódico estéril. La sangre se centrifuga a 1500 RPM a temperatura ambiente y la fracción plasmática se obtiene y se almacena a 4ºC. Se producen dos trombos plasmáticos porcinos mediante combinación de plasma, cloruro cálcico 100 mM (3:1 v/v) y 2 - 5 U de trombina en un tubo de plástico a través del cual se hace pasar hilo de sutura Vicryl 5-0. Se deja que los trombos coagulen a temperatura ambiente.
Un trombo se incuba con 150 \mug de anticuerpo monoclonal anti-fibrina y 10 ml de PBS con albúmina sérica bovina (BSA) al 1% (BSA) durante dos horas y se incuba un segundo trombo control en PBS con BSA al 1%. El trombo tratado con anticuerpo se incuba entonces con 0,5 mg de avidina en 10 ml de PBS con BSA al 1% durante 30 minutos. El trombo control se deja en PBS con BSA al 1%. Ambos trombos se lavan exhaustivamente con PBS. Cada trombo se incuba con 300 \mul/10 ml de PBS de emulsión biotinilada o control durante 30 minutos. Todos los trombos se vuelven a exponer a la emulsión dos veces para garantizar la cobertura uniforme y la insonación ultrasónica (figura 9). La obtención de imagen ultrasónica se lleva a cabo utilizando un transductor con alineamiento en fase lineal de 7,5 MHz y un sistema de obtención de imágenes de Hewlett Packard Sonos 2500 (Hewlett Packard, Inc., Andover, MA). Todos los registros ultrasónicos se producen con niveles de compensación de ganancia de tiempo y compensación de ganancia fija y se registran en una cinta de vídeo SVHS para el análisis posterior de la imagen. Se tomó como muestra la escala de grises de píxeles promedio en una región amplia de interés para 21 imágenes congeladas independientes para cada trombo utilizando NIH Image 1.47 (Institutos Nacionales de Salud; figura 10). Se encuentra que la emulsión perfluorocarbonada biotinilada proporciona una mejora acústica marcada de la superficie. Los niveles de la escala de grises de píxeles promedio del trombo con emulsión biotinilada son de 79,5 \pm 2,5, mientras que el brillo del control fue marcadamente inferior (34,8 \pm 2,2, p < 0,05). Estos resultados demuestran la capacidad de la emulsión perfluorocarbonada biotinilada para seleccionar como objetivo y mejorar la capacidad acústica de un tejido biológico (es decir, el trombo) in vitro.
Ejemplo 9
La emulsión perfluorocarbonada biotinilada dirige, mediante anticuerpos anti-fibrina biotinilados (NIB5F3 y
NIB1H10, Tymkewycz et al. 1993. Blood Coagulation and Fibrinolysis 4:211-221), a un trombo aislado de la arteria femoral en seis perros sin raza conocida. El perro sin raza conocida se anestesia con inducción de pentobarbital sódico y anestesia de halotano. Se aísla la arteria femoral derecha y todas las ramificaciones al nivel de la rama safena. Se inserta un cable de cobre plateado unido a la punta de una aguja en ángulo recto de calibre 22, aislado tubos de plástico (polietileno P-240), en la arteria femoral y se asegura con hilo de sutura Plene 4-0. Se aplica una corriente de 200 - 400 \muA durante hasta dos horas. La formación del trombo se monitoriza con sistema Doppler a ondas continuas y se interrumpe tras observar un aumento de aproximadamente el 50% en la velocidad de circulación en relación distal a la lesión eléctrica. Se aprecia decoloración accidental derivada de la corriente en relación proximal con el punto de entrada del cable. Se inserta un catéter de calibre 20 en una rama proximal de la arteria femoral y se asegura con hilo de sutura de seda 4-0. Se une un goteo presurizado de NaCl al 0,9% mediante una llave de paso de tres vías al catéter. El flujo de sangre en el segmento aislado se interrumpo mediante una ligadura de lazo proximal. El exceso de sangre se elimina por lavado del segmento arterial para inhibir la formación adicional de trombos mediante la infusión de solución salina durante 15 minutos. Las ramificaciones con drenaje distal de la arteria femoral se ligan o se atrapan con hilo de sutura. Se inyecta anticuerpo monoclonal anti-fibrina biotinilado (50 \mug/1,0 ml de PBS) mediante el catéter y se elimina por lavado con algunas gotas de solución salina. Se permite que el anticuerpo se incube durante una hora, después se libera la ligadura de lazo en relación distal con la inserción del cable y el exceso de anticuerpo se elimina por lavado con solución salina durante cinco minutos. La arteria femoral distal se vuelve a ocluir y se infunde avidina (250 \mug/1,0 ml de PBS) y se incuba durante 30 minutos. La ligadura distal se libera de nuevo y el exceso de avidina se elimina por lavado con solución salina durante cinco minutos. Se restablece la ligadura distal y la emulsión perfluorocarbonada biotinilada se infunde y se incuba durante 30 minutos. Tras la exposición inicial del trombo a la emulsión, la emulsión no unida se elimina por lavado con disolución salina. Los trombos se exponen a avidina y la emulsión perfluorocarbonada biotinilada, tal como se describió anteriormente. En tres animales, también se aísla la arteria contralateral, se ocluye parcialmente con trombos inducidos eléctricamente y se expone a una emulsión perfluorocarbonada control análoga a la administración de emulsión biotinilada descrita anteriormente. Se obtienen imágenes ultrasónicas de las arterias femorales expuestas a la emulsión perfluorocarbonada control o biotinilada a 7,5 MHz con un transductor centralizado, con alineamiento en fase lineal y un sistema de obtención de imágenes ultrasónico de Hewlett-Packard Sonos 2500, antes y después de la administración de contraste. Los trombos plenamente formados, seleccionados como objetivo para el contraste y el control, no se aprecian ultrasónicamente. Para 6 de las 6 arterias femorales, los trombos parcialmente oclusivos están marcadamente potenciados utilizando el contraste perfluorocarbonado bitotinilado seleccionado como objetivo por anti-fibrina. En 3 de los 3 trombos de arterias femorales, la exposición a la emulsión control perfluorocarbonada no acentúa su reflectividad acústica y estos trombos siguen siendo ultrasónicamente indetectables. La figura 11 revela un ejemplo representativo de un sitio de formación de trombo en la arteria femoral tras la inducción eléctrica antes y después de la exposición al anticuerpo anti-fibrina y al contraste biotinilado. En la imagen antes del contraste, se observa la arteria femoral con un ánodo en la punta del cable ecogénico brillante que sobresale hacia la luz, pero no se aprecia trombo. Tras el tratamiento con la emulsión de contraste biotinilada, se observa claramente un gran trombo parcialmente ocluido mediante el aumento de la reflectividad acústica (figura 11). De nuevo, no se observa la formación de trombos en la arteria control antes o después de la exposición a la emulsión control. Estos resultados demuestran el concepto de utilizar la emulsión perfluorocarbonada unida para mejorar acústicamente las superficies biológicas, tales como tejido trombótico, in vivo para permitir la detección con un sistema de obtención de imágenes por ultrasonidos comercialmente disponible.
Ejemplo 10
La emulsión perfluorocarbonada biotinilada, de aproximadamente 250 nm de diámetro, se dirige a un carcinoma prostático utilizando anticuerpos monoclonales específicos para la próstata (PSA) y se detecta acústicamente utilizando microscopía acústica polar, de alta frecuencia y alta resolución. Ejemplos representativos de tejidos humanos con carcinoma prostático se tratan de manera habitual mediante la fijación por inmersión en formalina tamponada neutra al 10% y se embeben en parafina. Se preparan cortes de veinte micras para la microscopía acústica; se utilizan cortes de 5 micras para los estudios ópticos. Todos los cortes histológicos se preparan en portaobjetos de vidrio limpiados con ácido que se han recubierto con poli-L-lisina. Todos los cortes preparados se calientan a 55ºC durante 1 hora en una estufa.
Antes de la inmunotinción, se elimina la cera de todos los cortes en tres cambios de Americlear, y se deshidratan en cambios sucesivos de etanol al 95% y al 100%. La actividad de la peroxidasa endógena se bloquea sólo en los cortes preparados para los estudios ópticos mediante la inmersión en metanol absoluto que contiene peróxido de hidrógeno al 0,6% (v/v) durante 30 minutos. Estos y todos los cortes para la microscopía acústica se rehidratan entonces mediante etanoles graduales y agua destilada y se colocan en PBS isotónico (pH 7,4). Todos los cortes se incuban con anticuerpos monoclonales específicos dirigidos.
Los cortes de próstata se incuban con anticuerpos monoclonales primarios anti-PSA, siguiendo las recomendaciones del vendedor, durante 18 horas a 4ºC en cámaras de atmósfera húmeda. Tras la incubación primaria, los cortes se enjuagan con PBS isotónica, después se recubren con una inmunoglobulina policlonal de caballo biotinilada anti-ratón (VectaStain Elite Kits, Vector Laboratories, Burlingame, CA) durante 1 hora a temperatura ambiente. Tras enjuagar en PBS, se prepara un corte de 30 micras para la microscopía acústica. Un corte para microscopía óptica (5 micras) se incuba con complejo de avidina-biotina-peroxidasa (VectaStain Elite Kit, Vector Lab) durante 1 hora a temperatura ambiente. Este corte se enjuaga en tampón fosfato (pH 7,6) y se sumerge en una disolución de tetracloruro de 3,3'-diaminobencidina (Sigma Chemicals, St. Louis, MO; 0,5 mg/ml en tampón fosfato, pH 7,6, que contiene el 0,003% [v/v] de peróxido de hidrógeno) durante aproximadamente diez minutos. El precipitado cromogénico se mejora ópticamente mediante una breve inmersión de los cortes teñidos en tetróxido de osmio al 0,125% (p/v). El corte se enjuaga entonces en agua del grifo, se somete a tinción de contraste en hematoxilina de Harris, se deshidrata en etanoles graduales y Americlear, y se prepara en un medio de preparación sintético.
Una vez que se ha incubado y lavado el segundo anticuerpo, se incuban los portaobjetos para microscopía acústica en avidina (1,0 mg/-20 cc de PBS) utilizando un baño sobre una mesa giratoria durante 30 minutos. El exceso de avidina se lava con tampón de PBS isotónica, pH 7,4-7,5 en lavados de tres minutos. Los portaobjetos se incuban con emulsión perfluorocarbonada biotinilada o control durante veinte minutos (0,5 cc/-20,0 ml de PBS), se lavan brevemente con PBS isotónica 3X durante 5 minutos cada una y se vuelven a incubar con avidina (1,0 mg/\sim20 cc) durante 15 minutos. El exceso de avidina se elimina mediante enjuagado con tres lavados de 5 minutos en PBS. El portaobjetos se vuelve a incubar entonces a las concentraciones anteriores con emulsión perfluorocarbonada biotinilada o control durante 20 minutos. La emulsión no unida se elimina mediante lavado en tres cambios de PBS (5 minutos cada uno) y los portaobjetos se transfieren al microscopio acústico para su análisis.
Las muestras preparadas se sumergen cada una en solución salina tamponada con fosfato isotónica a temperatura ambiente para la insonación ultrasónica. Se utiliza un microscopio acústico diseñado a la medida para recoger los datos ultrasónicos. El microscopio consiste en un transductor piezoeléctrico de línea retardadora, focalizado, con ancho de banda de 50 MHz (6,35 mm de diámetro, 12,70 mm de longitud focal, 62 micras de diámetro del haz, Modelo V390, Panametrics Co., Waltham, MA) que se hace funcionar en el modo de eco por impulsos. Se utiliza un osciloscopio de digitalización Tektronix DSA 601 (Beaverton, OR) para digitalizar los datos de radiofrecuencia (rf) retrodispersada polar de 35 grados a 500 megamuestras por segundo con resolución de 8 bits. Se utiliza un sistema de ganancia variable para aumentar el intervalo dinámico efectivo de este digitalizador. Se obtienen los datos de radiofrecuencia de aproximadamente 100 sitios independientes de cada muestra con resolución de incremento lateral de 50 micras.
Los datos de rf se almacenan en un formato de exploración por trama de baja resolución y se analizan con un software diseñado a la medida. Se controla el paso de los segmentos de las líneas de rf para el análisis de retrodispersión integrada para englobar a la superficie delantera (es decir, excluyendo la pared posterior). Los datos cuyo paso se ha controlado se multiplican mediante una ventana Hamming y sus espectros de potencia se determinan mediante transformación de Fourier rápida. Los espectros de potencia dentro de un corte de tejido se comparan directamente sin hacer referencia a la placa de acero. La retrodispersión integrada (IB) se calcula como el promedio de la función de la transferencia de retrodispersión dependiente de la frecuencia a través del ancho de banda útil del transductor (de 30 a 55 MHz). Los tejidos inmunoteñidos se revisan utilizando un microscopio Nikon Optiphot-2 para las regiones de tinción positiva de PSA y se comparan las características acústicas.
El cambio neto en la función de transferencia de retrodispersión aparente entre el estroma prostático normal y las regiones con carcinoma está claramente aumentado en las secciones tratadas con emulsión perfluorocarbonada biotinilada dirigida a PSA, frente a la control a través del espectro de frecuencia (de 30 a 55 MHz; figura 12). La emulsión perfluorocarbonada biotinilada aumenta (p < 0,05) la retrodispersión integrada de las regiones de cáncer prostático (47,17 \pm dB) frente a las del estroma normal (40,79 \pm 1,18 dB) en 6,38 dB (aproximadamente 4 veces). En los cortes de tejido control, la retrodispersión integrada de la región de carcinoma prostático (39,63 \pm 1,63 dB) fue mayor (p < 0,05) que la de las zonas de estroma normal (36,13 \pm 2,17 dB) en aproximadamente 3,5 dB (2 veces), lo que refleja las diferencias inherentes en el carácter acústico entre el tejido prostático normal y el canceroso. Sin embargo, la emulsión perfluorocarbonada biotinilada dirigida amplificó (p < 0,05) estas diferencias inherentes en aproximadamente 2 veces (2,87 dB; figura 13). Estos resultados demuestran claramente la capacidad de la emulsión perfluorocarbonada biotinilada dirigida al sitio para mejorar específicamente la detección acústica del cáncer de próstata
in vitro.
Ejemplo 11
La emulsión perfluorocarbonada biotinilada, de aproximadamente 250 nm de diámetro, se dirige a carcinoma ovárico utilizando anticuerpos monoclonales específicos para el antígeno OC-125 y se detectó acústicamente utilizando microscopía acústica polar, de alta frecuencia y alta resolución. Ejemplos representativos de tejidos humanos con carcinoma ovárico se tratan de manera habitual mediante la fijación por inmersión en formalina tamponada neutra al 10% y se embeben en parafina. Se preparan cortes de veinte micras para la microscopía acústica; se utilizan cortes de 5 micras para los estudios ópticos. Todos los cortes histológicos se preparan en portaobjetos de vidrio limpiados con ácido que se han recubierto con poli-L-lisina. Todos los cortes preparados se calientan a 55ºC durante 1 hora en una estufa.
Antes de la inmunotinción, se elimina la cera de todos los cortes en tres cambios de Americlear, y se deshidratan en cambios sucesivos de etanol al 95% y al 100%. La actividad de la peroxidasa endógena se bloquea sólo en los cortes preparados para los estudios ópticos mediante la inmersión en metanol absoluto que contiene peróxido de hidrógeno al 0,6% (v/v) durante 30 minutos. Estos y todos los cortes para la microscopía acústica se rehidratan entonces mediante etanoles graduales y agua destilada y se colocan en PBS isotónico (pH 7,4). Todos los cortes se incuban con anticuerpos monoclonales específicos dirigidos.
Los cortes de ovario se incuban con anticuerpos monoclonales primarios anti-OC-125, siguiendo las recomendaciones del vendedor, durante 18 horas a 4ºC en cámaras de atmósfera húmeda. Tras la incubación primaria, los cortes se enjuagan con PBS isotónica, después se recubren con una inmunoglobulina policlonal de caballo biotinilada anti-ratón (VectaStain Elite Kits, Vector Laboratories, Burlingame, CA) durante 1 hora a temperatura ambiente. Tras enjuagar en PBS, se prepara cortes de 30 micras por duplicado para la microscopía acústica. Los cortes para microscopía óptica (5 micras) se incuban con complejo de avidina-biotina-peroxidasa (VectaStain Elite Kit, Vector Lab) durante 1 hora a temperatura ambiente. Estos cortes se enjuagan en tampón fosfato (pH 7,6) y se sumergen en una disolución de tetracloruro de 3,3'-diaminobencidina (Sigma Chemicals, St. Louis, MO; 0,5 mug/ml en tampón fosfato, pH 7,6, que contiene el 0,0003% [v/v] de peróxido de hidrógeno) durante aproximadamente diez minutos. El precipitado cromogénico se mejora ópticamente mediante una breve inmersión de los cortes teñidos en tetróxido de osmio al 0,125% (p/v). Los cortes se enjuagan entonces en agua del grifo, se somete a tinción de contraste en hematoxilina de Harris, se deshidratan en etanoles graduales y Americlear, y se preparan en un medio de preparación sintético.
Una vez que se ha incubado y lavado el segundo anticuerpo biotinilado, se incuban los portaobjetos en avidina (1,0 mg/\sim20 cc de PBS) utilizando un baño sobre una mesa giratoria durante 30 minutos. El exceso de avidina se lava con tampón de PBS isotónica, pH 7,4-7,5 en tres lavados de 5 minutos. Los portaobjetos preparados se incuban con emulsión perfluorocarbonada biotinilada o control durante veinte minutos (0,5 cc/\sim20,0 ml de PBS), se lavan brevemente con PBS isotónica 3X durante 5 minutos cada una y se vuelven a lavar con avidina (1,0 mg/\sim20 cc) durante 15 minutos. El exceso de avidina se elimina mediante enjuagado con tres lavados de 5 minutos en PBS. Los portaobjetos se vuelven a incubar entonces a las concentraciones anteriores con emulsión perfluorocarbonada biotinilada o control durante 20 minutos. La emulsión no unida se elimina mediante lavado en tres cambios de PBS (5 minutos cada uno) y los portaobjetos se transfieren al microscopio acústico para su análisis.
Las muestras preparadas se sumergen cada una en solución salina tamponada con fosfato isotónica a temperatura ambiente para la insonación ultrasónica. Se utiliza un microscopio acústico diseñado a la medida para recoger los datos ultrasónicos. El microscopio consiste en un transductor piezoeléctrico de línea retardadora, focalizado, con ancho de banda de 50 MHz (6,35 mm de diámetro, 12,70 mm de longitud focal, 62 micras de diámetro del haz, Modelo V390, Panametrics Co., Waltham, MA) que se hace funcionar en el modo de eco por impulsos. Se utiliza un osciloscopio de digitalización Tektronix DSA 601 (Beaverton, OR) para digitalizar los datos de radiofrecuencia (rf) retrodispersada polar de 35 grados a 500 megamuestras por segundo con resolución de 8 bits. Se utiliza un sistema de ganancia variable para aumentar el intervalo dinámico efectivo de este digitalizador. Se obtienen los datos de radiofrecuencia de aproximadamente 100 sitios independientes de cada muestra con resolución de incremento lateral de 50 micras.
Los datos de rf se almacenan en un formato de exploración por trama de baja resolución y se analizan con un software diseñado a la medida. Se controla el paso de los segmentos de las líneas de rf para el análisis de retrodispersión integrada para englobar a la superficie delantera (es decir, excluyendo la pared posterior). Los datos cuyo paso se ha controlado se multiplican mediante una ventana Hamming y sus espectros de potencia se determinan mediante transformación de Fourier rápida. La retrodispersión integrada se calcula a partir del promedio de la función de la transferencia de retrodispersión dependiente de la frecuencia a través del ancho de banda útil del transductor (de 30 a 55 MHz). Los espectros de potencia de las muestras se refieren al espectro de potencia devuelto desde un portaobjetos de vidrio para microscopio. La IB se expresa en decibelios con relación a la dispersión acústica desde el portaobjetos de vidrio. Los tejidos inmunoteñidos se revisan utilizando un microscopio Nikon Optiphot-2 para las regiones de tinción positiva para PSA y se comparan las características acústicas.
El cambio neto en la función de transferencia de retrodispersión aparente entre el estroma ovárico normal y las regiones con carcinoma está claramente aumentado en las secciones tratadas con emulsión perfluorocarbonada biotinilada dirigida a OC-125, frente a la control a través del espectro de frecuencia (de 30 a 55 MHz; figura 14). La emulsión perfluorocarbonada biotinilada aumenta (p < 0,05) la retrodispersión integrada de las regiones de cáncer ovárico (-28,19 \pm 1,39 dB) frente a las del estroma normal (-38,75 \pm 0,84 dB) en 10,57 dB (mayor de 8 veces). En los cortes de tejido control, la retrodispersión integrada de la región de carcinoma ovárico (-33,49 \pm 0,86 dB) fue mayor (p < 0,05) que la de las zonas de estroma normal (-40,21 \pm 0,61 dB) en aproximadamente 6,72 dB (4 veces), lo que refleja las diferencias inherentes en el carácter acústico entre el tejido ovárico normal y el canceroso. Sin embargo, la emulsión perfluorocarbonada biotinilada dirigida amplificó (p < 0,05) estas diferencias inherentes en aproximadamente 2 veces (3,84 dB; figura 15). Estos resultados demuestran claramente la capacidad de la emulsión perfluorocarbonada biotinilada dirigida al sitio para mejorar específicamente la detección acústica del cáncer de ovario
in vitro.
Ejemplo 12
La emulsión perfluorocarbonada biotinilada, de aproximadamente 250 nm de diámetro, se dirige a la cápsula epitelial de la amígdala utilizando anticuerpos monoclonales específicos para citoqueratina y los antígenos CD-20 y BCL-2 y se detectan acústicamente utilizando microscopía acústica polar, de alta frecuencia y alta resolución. Ejemplos representativos de amígdala humana se tratan de manera habitual mediante la fijación por inmersión en formalina tamponada neutra al 10% y se embeben en parafina. Se preparan cortes de veinte micras para la microscopía acústica; se utilizan cortes de 5 micras para los estudios ópticos. Todos los cortes histológicos se preparan en portaobjetos de vidrio limpiados con ácido que se han recubierto con poli-L-lisina. Todos los cortes preparados se calientan a 55ºC durante 1 hora en una estufa.
Antes de la inmunotinción, se elimina la cera de todos los cortes en tres cambios de Americlear, y se deshidratan en cambios sucesivos de etanol al 95% y al 100%. La actividad de la peroxidasa endógena se bloquea sólo en los cortes preparados para los estudios ópticos mediante la inmersión en metanol absoluto que contiene peróxido de hidrógeno al 0,6% (v/v) durante 30 minutos. Estos y todos los cortes para la microscopía acústica se rehidratan entonces mediante etanoles graduales y agua destilada y se colocan en PBS isotónico (pH 7,4). Todos los cortes se incuban con anticuerpos monoclonales específicos dirigidos.
Los cortes de amígdala se incuban con una mezcla de anticuerpos monoclonales primarios anti-CD-20, BCL-2 y citoqueratina siguiendo las recomendaciones del vendedor, durante 18 horas a 4ºC en cámaras de atmósfera húmeda. Tras la incubación primaria, los cortes se enjuagan con PBS isotónica, después se recubren con una inmunoglobulina policlonal de caballo biotinilada anti-ratón (VectaStain Elite Kits, Vector Laboratories, Burlingame, CA) durante 1 hora a temperatura ambiente. Tras enjuagar en PBS, se prepara cortes de 30 micras por duplicado para la microscopía acústica. Los cortes para microscopía óptica (5 micras) se incuban con complejo de avidina-biotina-peroxidasa (VectaStain Elite Kit, Vector Lab) durante 1 hora a temperatura ambiente. Los cortes se enjuagan en tampón fosfato (pH 7,6) y se sumergen en una disolución de tetracloruro de 3,3'diaminobencidina (Sigma Chemicals, St. Louis, MO; 0,5 mg/ml en tampón fosfato, pH 7,6, que contiene el 0,003% [v/v] de peróxido de hidrógeno) durante aproximadamente diez minutos. El precipitado cromogénico se mejora ópticamente mediante una breve inmersión de los cortes teñidos en tetróxido de osmio al 0,125% (p/v). Los cortes se enjuagan entonces en agua del grifo, se someten a tinción de contraste en hematoxilina de Harris, se deshidratan en etanoles graduales y Americlear, y se preparan en un medio de preparación sintético.
Una vez que se ha incubado y lavado el segundo anticuerpo biotinilado, se incuba un portaobjetos en avidina (1,0 mg/-20 cc de PBS) utilizando un baño sobre una mesa giratoria durante 30 minutos. El exceso de avidina se lava con tampón de PBS isotónica, pH 7,4-7,5 en tres lavados de 5 minutos. El portaobjetos preparado se incuba con emulsión perfluorocarbonada biotinilada durante veinte minutos (0,5 cc/\sim20,0 ml de PBS), se lava brevemente con PBS isotónica 3X durante 5 minutos cada una y se vuelve a lavar con avidina (1,0 mg/\sim20 cc) durante 15 minutos. El exceso de avidina se elimina mediante enjuagado con tres lavados de 5 minutos en PBS. Los portaobjetos se vuelven a incubar entonces a las concentraciones anteriores con emulsión perfluorocarbonada biotinilada durante 20 minutos. La emulsión no unida se elimina mediante lavado en tres cambios de PBS (5 minutos cada uno) y el portaobjetos se transfiere al microscopio acústico para su análisis.
La muestra preparada se sumerge en solución salina tamponada con fosfato isotónica a temperatura ambiente para la insonación ultrasónica. Se utiliza un microscopio acústico diseñado a la medida para recoger los datos ultrasónicos. El microscopio consiste en un transductor piezoeléctrico de línea retardadora, focalizado, con ancho de banda de 50 MHz (6,35 mm de diámetro, 12,70 mm de longitud focal, 62 micras de diámetro del haz, Modelo V390, Panametrics Co., Waltham, MA) que se hace funcionar en el modo de eco por impulsos. Se utiliza un osciloscopio de digitalización Tektronix DSA 601 (Beaverton, OR) para digitalizar los datos de radiofrecuencia (rf) retrodispersada polar de 35 grados a 500 megamuestras por segundo con resolución de 8 bits. Se utiliza un sistema de ganancia variable para aumentar el intervalo dinámico efectivo de este digitalizador. Se obtienen los datos de radiofrecuencia de la totalidad de la muestra y se crea una imagen detectada del pico del corte y se compara con la imagen de tejido inmunoteñido.
El tejido inmunoteñido se examina y se obtiene una imagen utilizando un microscopio Nikon Optiphot-2 con un acoplamiento de cámara Javlin Chromachip II. Las imágenes se encaminan a través de un mezclador digital de Panasonic modelo WJ-AVE5 para grabadores de vídeo SVHS de Panasonic, modelos AG-1960 o AG-1970 y se visualiza en un monitor Sony Trinitron. Las imágenes se capturan utilizando software NuVista (Truevision, Inc., Indianapolis, IN 46256) que se ejecuta en un microordenador Macintosh LCIII.
La figura 16 compara la imagen obtenida acústicamente de la amígdala como un barrido de detección de picos en radiofrecuencia a una resolución de incremento lateral de 100 micras (a) con una imagen obtenida ópticamente del corte inmunoteñido con peroxidasa de rábano (b). La cápsula epitelial seleccionada como objetivo por una mezcla de anticuerpos anti-citoqueratina se tiñe claramente con la peroxidasa de rábano y las regiones homólogas en la imagen acústica se "vuelven más brillantes" por el contraste acústico biotinilado dirigido. En la figura 17, se mejora la imagen acústica mediante detección de picos en radiofrecuencia a una resolución de incremento lateral de 100 micras (a) hasta una resolución de incremento lateral de 50 micras. Se observa claramente que el contraste de perfluorocarbono biotinilado dirigido mejora acústicamente el borde epitelial de la amígdala, de forma análoga a la imagen óptica inmunoteñida. Este ejemplo demuestra claramente la fidelidad del contraste perfluorocarbonado biotinilado que se dirige para mejorar el contraste acústico de los tejidos, tales como los ganglios linfáticos.
Ejemplo 13 Método para preparar microemulsiones perfluorocarbonadas control y biotinilada que incorporan gadolinio-DTPA en la membrana lipídica externa
El agente de contraste perfluorocarbonado biotinilado se produjo incorporando fosfatidiletanolamina biotinilada en la monocapa lipídica externa de una microemulsión perfluorocarbonada. En resumen, la emulsión estaba comprendida de perfluorodiclooctano (40%, v/v, PFDCO, Minnesota Manufacturing and Mining, St. Paul, MN), aceite de cártamo (2,0% p/v), una co-mezcla de tensioactivo (2,0% p/v) y glicerina (1,7% p/v). La co-mezcla de tensioactivo incluía del 50 al 70% molar de lecitina (Pharmacia Inc., Clayton, NC), del 0 al 35% molar de colesterol (Sigma Chemical Co. St. Louis, MO) y del 0,5 al 1% molar de N-(6(biotinoil)amino)hexanoil)-dipalmitoil-L-alfa-fosfatidiletanolamina (Pierce, Rockford, IL) y del 0 al 30% de bis(oleilamida) del ácido dietilenetriaminopentaacético - gadolinio, (Gd-DTPA-BOA), (Gateway Chemical Technology, St. Louis, MO) que se disuelven en cloroformo. La mezcla cloroformo - lípido se evaporó a presión reducida, se secó en una estufa a vacío a 50ºC durante la noche y se dispersó en agua mediante sonicación, dando como resultado una suspensión de liposomas. La suspensión de liposomas se transfirió a un recipiente de mezclado (Dynamics Corporation of America, New Hartford, CT) con perfluorodiclorooctano, aceite de cártamo y agua destilada y desionizada y se emulsionó durante de 30 a 60 segundos. La mezcla emulsionada se transfirió a un microfluidizador, modelo S110 (Microfluidics, Newton, MA), y se procesó continuamente a 69,95 MPa durante tres minutos. La emulsión completa se introdujo en un vial, se cubrió con nitrógeno y se selló con tapón/cierre de engarce hasta su uso. Se preparó una emulsión control de manera idéntica, excepto porque la fosfatidiletanolamina biotinilada se sustituyó en la co-mezcla de tensioactivo. Se determinaron los tamaños de partícula de la emulsión perfluorocarbonada biotinilada y control por triplicado a 37ºC con un analizador del tamaño de partícula por difusión de luz láser Brookhaven BI-90 (Brookhaven Instruments Corporation, Holtsville, NY).
Ejemplo 14 Demostración del efecto de la incorporación de gadolinio en los aumentos del tamaño de partícula asociados con la adición de avidina
Se añadieron emulsiones perfluorocarbonadas biotiniladas de gadolinio-DTPA (30 \mul) a 2,97 ml de solución salina tamponada con fosfato (PBS) isotónica, pH 7,4, y avidina en una cubeta de poliestireno. La avidina (Pierce, Inc., Rockford, IL) se disolvió en PBS y estuvo presente en la cubeta a concentraciones finales de 0 a 10 \mug/ml. Todas las muestras se prepararon por duplicado, se mezclaron por inmersión suave y se agitaron continuamente a baja velocidad en una tabla giratoria durante 30 minutos a temperatura ambiente. Se determinaron los tamaños de partícula de la emulsión por triplicado a 37ºC con un analizador del tamaño de partícula submicrométrico por difusión de láser luminoso Brookhaven BI-90 (Brookhaven Instruments Corporation, Holtsville, NY). La figura 18 revela que el tamaño de partícula inicial para las tres emulsiones que incorporan gadolinio se mantuvo en torno a 250 nm. La adición de avidina aumentó el tamaño de partícula de una manera relacionada con la dosis. Los aumentos incrementales en el tamaño de partícula fueron ligera, pero no perjudicialmente más pequeños para las concentraciones más altas de incorporación de gadolinio.
Ejemplo 15 Demuestra la capacidad de las emulsiones perfluorocarbonadas biotiniladas que incorporan gadolinio - DTPA en su membrana externa para seleccionar como objetivo y aumentar acústicamente coágulos plasmáticos humanos
Se obtuvo sangre completa humana fresca y se añadió un anticoagulante (9:1, v/v) con citrato sódico estéril. En una serie de ensayos, se produjeron coágulos plasmáticos (6) combinando el plasma y cloruro cálcico 100 mM (3:1 v/v) con 5 unidades de trombina (Sigma Chemical Company, St. Louis, MO) en un molde de plástico sobre una superficie de nitrocelulosa. Se permitió que el plasma coagulara suavemente a temperatura ambiente. La mitad de los coágulos (3) se incubaron individualmente con 150 \mug de anticuerpo monoclonal anti-fibrina biotinilado (NIB 5F3; NIBSC, Herts, Reino Unido) en 10 ml de PBS durante dos horas; los coágulos restantes (3) se mantuvieron en PBS. Los coágulos tratados con anticuerpos se incubaron entonces con avidina (50 \mug/ml de PBS) durante 30 minutos seguido por gadolinio al 10%, emulsión perfluorocarbonada biotinilada (30 \mul/ml de PBS) durante 30 minutos. Los coágulos control se trataron de forma similar con emulsión perfluorocarbonada control (30 \mul/ml de PBS). Los coágulos dirigidos y control se volvieron a tratar con avidina y con emulsión perfluorocarbonada dirigida o control, respectivamente, para optimizar la saturación de la superficie antes de la interrogación ultrasónica. Los coágulos en discos de nitrocelulosa se colocaron en un baño de agua y se obtuvieron imágenes con catéteres intravasculares a 30 MHz (Boston Scientific Corporation, Maple Grove, MN) y un escáner ultrasónico convencional con un transductor en fase lineal a 7,5 MHz (Hewlett Packard Inc.) Las imágenes ultrasónicas se grabaron en una cinta de vídeo Super-VHS para el análisis posterior de la imagen. La figura 19 demuestra claramente la mejora en la reflectividad acústica de la superficie del coágulo plasmático con el contraste acústico de dirección que no se aprecia en el control. Estos resultados demuestran que se conservaba la capacidad de selección como objetivo y la mejora en los efectos de reflectividad acústica de la emulsión perfluorocarbonada biotinilada.
Ejemplo 16 La eficacia del agente de contraste de RMN/ultrasónico dual en disolución para proporcionar el acortamiento de T1 de manera dependiente de la concentración
Se prepararon emulsiones biotiniladas que incorporan gadolinio-DTPA a concentraciones globales del 0,2, 0,4 y 0,6% en moles en la membrana lipídica externa, tal como se describe en el ejemplo 13. Las partículas de contraste dual se diluyeron en serie con PBS en tubos de plástico de 3 cc y se realizó la obtención de imágenes mediante resonancia magnética utilizando un Philips Gyroscan S15 ACS-NT (1,5 T). Se utilizó una secuencia de impulsos de RM de Look-Locker para obtener un mapa de la curva de relajación longitudinal. Brevemente, se aplicó un impulso de inversión, seguido por la adquisición de una serie de imágenes con pequeños ángulos de inclinación ("flip angles") y un corto espaciado entre imágenes. Los cambios de intensidad de la señal entre imágenes estaban relacionados directamente con la curva de relajación real, y se determinó T1 (el tiempo de relajación de espín-red) a partir de esta relación. Los parámetros de la secuencia de impulsos utilizados en este experimento fueron TR de 50 ms, TE de 10 ms, ángulo de inclinación de 5 grados, matriz de 64 x 64, campo de visión de 160 x 104 mm, 20 imágenes, retraso tras el impulso de inversión de 16 ms. El experimento se repitió con un Tr de 25 ms con el fin de medir T1 muy cortos a una elevada concentración de Gd^{3+}. Se generaron mapas paramétricos de T1 en los que la intensidad de píxel es el valor de T1 en milisegundos. La tabla 1 revela la dependencia directa del acortamiento de T1 con la concentración de gadolinio. El acortamiento de T1 fue superior para las partículas que contenían concentraciones superiores de gadolinio, ya se hubiese conseguido mediante formulación o dilución.
TABLA 1 Dependencia de T1 con la concentración de gadolinio
0,2% de Gd 0,4% de Gd 0,6% de Gd
Dilución de la formulación [Gd] mM T1 (ms) [Gd] mM T1 (ms) [Gd] mM T1 (ms)
1:16 (2,5% de PFC) 0,000125 972 \pm 2 0,000252 492 \pm 1 0,000314 519 \pm 1
1:8 (5% de PFC) 0,000249 878 \pm 7 0,000505 339 \pm 2 0,000628 414 \pm 4
1:4 (10% de PFC) 0,000498 430 \pm 7 0,00101 189 \pm 2 0,001256 156 \pm 2
1:2 (20% de PFC) 0,000996 169 \pm 1 0,00202 92 \pm 1 0,002511 90 \pm 1
1:1 (40% de PFC) 0,001992 65 \pm 1 0,00404 < 50 0,005022 < 50
La emulsión de control (es decir, sin gadolinio) tenía un %1 medio de 1788 \pm 9 ms. Los T1 más cortos de 50 ms no pudieron resolverse con la presente técnica. La relajatividad para cada preparación (0,2%, 0,4% y 0,6% de [Gd]) se determinó calculando la pendiente de la recta que relaciona [Gd] en mM con 1/%1 (tabla 2). La relajatividad de las emulsiones con 0,2% de gadolinio fue la mayor; mientras, la relajatividad de las formulaciones de contraste del 0,4% y el 0,6 fueron más cortas y similares.
TABLA 2 Relajatividad de las preparaciones
pendiente (ms-mM) ordenada en el origen r
0,2% 7,89 -0,00093 0,99
0,4% 5,06 0,00049 0,99
0,6% 4,36 0,00034 0,99
Ejemplo 17 La eficacia del agente de contraste de RMN/ultrasónico dual dirigido in vitro a coágulos plasmáticos humanos para proporcionar el acortamiento de T1
Se prepararon emulsiones biotiniladas que incorporan gadolinio-DTPA a concentraciones globales del 10, 20 y 30% en moles en la membrana lipídica externa, tal como se describe en el ejemplo 13. El porcentaje en peso real de gadolinio en las emulsiones aplicadas son del 0,25% (10%), 0,43% (20%) y 0,54% (30%). Se obtuvo sangre humana completa, fresca y anticoagulada (9:1, v/v) con citrato de sodio estéril. En una serie de ensayos, se produjeron coágulos plasmáticos (6) combinando plasma y cloruro de calcio 1000 mM (3:1, v/v) con 5 unidades de trombina (Sigma Chemical Company, St. Louis, MO) en un molde de plástico sobre una superficie de nitrocelulosa. Las dimensiones del coágulo cuando se formó sobre la membrana de soporte de nitrocelulosa eran: espesor < 0,5 mm; diámetro \sim 1 cm. Se permitió que el plasma se coagulara lentamente a temperatura ambiente. La mitad de los coágulos (3) se incubaron individualmente con 150 \mug de anticuerpo monoclonal anti-fibrina biotinilado (NIB 5F3; NIBSC, Herts, Reino Unido) en 10 ml de PBS durante dos horas; los coágulos restantes (3) se mantuvieron en PBS. Los coágulos tratados con el anticuerpo se incubaron luego con avidina (50 \mug/ml de PBS) durante 30 minutos seguido por emulsión perfluorocarbonada biotinilada, con gadolinio al 10% (30 \mul/ml de PBS) durante 30 minutos. Los coágulos control se trataron de manera similar con emulsión perfluorocarbonada control (30 \mul/ml de PBS). La mitad de los coágulos seleccionados como objetivo y control se volvieron a tratar con avidina y la emulsión perfluorocarbonada dirigida o control, respectivamente, para optimizar la saturación superficial antes de la obtención de imágenes.
Los coágulos expuestos al contraste de gadolinio dirigido y control se recubrieron con gelatina al 10% en P-30, placas de Petri de plástico y se realizó la obtención de imágenes mediante resonancia magnética utilizando un Philips Gyroscan S15 ACS-NT (1,5 T). Se utilizó una secuencia de impulsos de Look-Locker para obtener un mapa de la curva de relajación longitudinal. Brevemente, se aplicó un impulso de inversión, seguido por la adquisición de una serie de imágenes con pequeños ángulos de inclinación y un corto espaciado entre imágenes. Los parámetros de la secuencia de impulsos utilizados en este experimento fueron TR de 50 ms, TE de 10 ms, ángulo de inclinación de 5 grados, matriz de 64 x 64, campo de visión de 160 x 104 mm, 20 imágenes, retraso tras el impulso de inversión de 16 ms. Se determinó T1 a partir del mapa de T1 paramétrico resultante en cada coágulo y en el gel circundante. Se determinó T2 (tiempo de relajación espín-espín) a partir de una secuencia de espín-eco de 8 ecos con TE de 30 ms y TR de 8000 ms. La dimensión del vóxel de la imagen para este experimento fue de \sim 2,5 x 2,0 x 2,0 mm.
El valor de T1 medio para el gel fue de 582 \pm 8 ms. Los valores de T2 para todas las muestras cayeron en un estrecho intervalo entre 80 y 92 ms. El T2 del gel fue de 91 ms. Añadir Gd a la preparación dio como resultado una caída medible y significativa de T1 que formó una meseta en la concentración paramagnética más baja (tabla 3). Debido a que el efecto de volumen parcial en esta medición (es decir, sólo una capa fina de emulsión de gadolinio sobre la superficie de un coágulo con respecto a la dimensión del vóxel, o aproximadamente 11:1 de sustrato de gel con respecto a la emulsión de gadolinio), el efecto de aumento del contraste es real y notablemente sensible.
TABLA 3 Dependencia de T1 con [Gd] dirigido a coágulos de fibrina insertados en gelatina
[Gd] 1 exposición al sistema de selección de 2 exposiciones al sistema de selección de
objetivo objetivo
T1 (ms) T1 (ms)
0,0% 725 \pm 16 824 \pm 41
0,25% 662 \pm 23 696 \pm 15
0,43% 642 \pm 21 660 \pm 11
0,54% 666 \pm 17 667 \pm 13
Ejemplo 18 Selección como objetivo de trombos caninos in vivo para la obtención de imágenes mediante resonancia magnética utilizando el agente de contraste dual
Según los protocolos para animales aprobados, se anestesiaron perros que pesaban 20 - 30 kg con pentobarbital sódico (30 mg/longitud de onda, i.v.) seguido por halotano al 1% en oxígeno. Se dejaron al descubierto la arteria femoral derecha y todas las ramas entre el ligamento inguinal y la arteria safena. Se seleccionó por canulación una rama arterial proximal, ligeramente distal con respecto al ligamento inguinal. Se ligaron todas las demás ramas. Se insertó la punta de una aguja de calibre 23 engarzada en un cable de cobre plateado de manera oblicua en la arteria femoral, 2 - 3 cm proximal a la rama safena y se sujetó con una sutura de Prolene 4-0 a través del tejido conjuntivo en el otro lado. Se aplicó corriente anódica (200 - 400 \muA) durante de 90 a 120 minutos para inducir un trombo parcialmente oclusivo. Se utilizó una sonda de flujo Doppler situada de manera proximal para monitorizar el desarrollo del trombo. Se utilizó la constricción distal parcial de la arteria femoral para facilitar la formación del trombo.
Una vez que se hubo formado un trombo, se insertó un catéter de calibre 20 en la rama proximal preservada de la arteria y se unió un gotero a presión de NaCl al 0,9% mediante una llave de paso de tres vías para el catéter. Se permitió que se irrigara la arteria con solución salina y se detuvo el flujo sanguíneo anterógrado a través de la arteria femoral mediante la colocación de una pinza 1 - 2 cm proximal al catéter. Se evitó el flujo sanguíneo continuado a través de la arteria femoral distal que contiene el trombo en la duración del estudio.
Tras irrigarse sangre desde el segmento arterial aislado con infusión continua de solución salina, se ocluyó temporalmente la arterial femoral distal con una pinza. Para los trombos seleccionados como objetivo para el contraste, se inyectó anticuerpo monoclonal anti-fibrina biotinilado (150 \mug de NIB 5F3 o NIB 1H10 en 0,5 ml de PBS, pH 7,2-7,4) a través de la llave de paso de tres vías y se incubó en el vaso durante una hora. Se liberó entonces la pinza distal en la arteria femoral y se eliminó por irrigación el anticuerpo no unido con solución salina al 0,9%. Tras reestablecer la oclusión arterial distal, se inyectaron 0,5 mg de avidina (Pierce, Rockfold, IL) en 0,5 ml de PBS en el segmento y se incubó dentro de la arteria durante 30 minutos. De nuevo, se liberó la oclusión distal y se eliminó por irrigación la avidina no unida de la luz con NaCl al 0,9%. Se reestableció la oclusión arterial distal y se inyectaron 0,2 ml de emulsión biotinilada en la luz del vaso y se incubó durante 30 minutos.
Se obtuvieron imágenes de las arterias mediante ultrasonidos tras la formación del trombo (nivel inicial y tras cada administración de anticuerpo, avidina y emulsión perfluorocarbonada con un transductor con alineamiento en fase lineal de 7,5 MHz utilizando un sistema de obtención de imágenes disponible comercialmente. Se utilizó el electrodo de aguja reflectante para localizar regiones de trombosis para insonación. Una vez que se recogieron todos los datos, se confirmó la presencia del trombo en cada animal mediante la incisión de la arteria a la finalización del estudio.
Tras la obtención ultrasónica de imágenes, el segmento de la arteria femoral se perfundió con formalina in situ durante 30 minutos, y luego se cortó con un soporte rígido para conservar la conformación, el segmento arterial se situó en un recipiente con formalina y se trasladó a un escáner de RMN para la obtención de imágenes. Se realizó una resonancia magnética nuclear utilizando un Philips Gyroscan S15 ACS-NOT (1,5 T), usando la técnica de Look-Locker con un TR de 100 ms, TE de 10 ms, ángulo de inclinación de 5 grados, una matriz de 64 x 64, un campo de visión de 160 x 104 mm, 20 imágenes, un retraso tras el impulso de inversión de 16 ms. El espesor de los cortes fue de 4 mm.
El T1 medido del fondo de formalina fue de 2319 \pm 12 ms y el T1 medido del trombo fue de 1717 \pm 173 ms. Esta diferencia en T1 entre el coágulo y el fondo dio como resultado un alto contraste, tal como se muestra en la figura 20. La ubicación y las dimensiones de la señal T1 aumentada fueron análogas al resultado obtenido mediante ultrasonidos, figura 20, y se confirmó la disección de la arteria. Una segunda preparación de trombo arterial de la que se obtuvo imágenes con las mismas técnicas de resonancia magnética dio resultados análogos. En este experimento, el T1 del coágulo fue de 1572 \pm 173 ms, y el T1 del fondo fue de 2319 \pm 12 ms.
En vista de lo anterior, se observará que se alcanzan los diversos objetos de la invención y se obtienen otros resultados ventajosos.

Claims (10)

1. Uso de una composición que comprende una emulsión de partículas lipídicas encapsuladas que comprenden un fluorocarbono líquido, acopladas dichas partículas a un agente para la unión basada en ligando de dichas partículas a un epítopo o receptor molecular, para la preparación de una formulación para un procedimiento de diagnóstico dirigido in vivo, en el que dicho procedimiento de diagnóstico comprende obtener imágenes de dicho objetivo en presencia de dicha emulsión de partículas lipídicas encapsuladas que comprenden un fluorocarbono líquido, con la condición de que no esté presente fluorocarbono gaseoso como agente de contraste.
2. Uso según la reivindicación 1, en el que dicho agente es un agente biotinilado.
3. Uso según la reivindicación 1, en el que dicho agente es un ligando específico para dicho epítopo o receptor.
4. Uso según la reivindicación 3, en el que dicho ligando es un anticuerpo o fragmento del mismo.
5. Uso según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, en el que el fluorocarbono comprende al menos un perfluorocarbono.
6. Uso según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, en el que dicha obtención de imágenes es obtención acústica de imágenes.
7. Uso según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, en el que dicha obtención de imágenes es obtención de imágenes mediante resonancia magnética (RMN).
8. Uso según la reivindicación 7, en el que dicha composición contiene además un quelato de gadolinio acoplado a dichas partículas.
9. Uso según la reivindicación 2, en el que dicho procedimiento de diagnóstico comprende además administrar a un sujeto que va a diagnosticarse, un ligando biotinilado específico para dicho epítopo o receptor y en el que o bien dicha composición contiene además avidina o estreptavidina, o bien en el que dicho procedimiento de diagnóstico comprende además administrar avidina o estreptavidina al sujeto.
10. Uso según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 9, en el que dicha composición contiene además un agente quimioterápico.
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