ES2226503T3 - Preparacion de un material de colageno con la degradacionin vivo controlada. - Google Patents

Preparacion de un material de colageno con la degradacionin vivo controlada.

Info

Publication number
ES2226503T3
ES2226503T3 ES99972934T ES99972934T ES2226503T3 ES 2226503 T3 ES2226503 T3 ES 2226503T3 ES 99972934 T ES99972934 T ES 99972934T ES 99972934 T ES99972934 T ES 99972934T ES 2226503 T3 ES2226503 T3 ES 2226503T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
collagen
component
crosslinked
collagen component
fibers
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
ES99972934T
Other languages
English (en)
Inventor
Yves Bayon
Philippe Gravagna
Jean-Louis Tayot
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Imedex Biomateriaux
Original Assignee
Imedex Biomateriaux
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Imedex Biomateriaux filed Critical Imedex Biomateriaux
Application granted granted Critical
Publication of ES2226503T3 publication Critical patent/ES2226503T3/es
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08HDERIVATIVES OF NATURAL MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08H1/00Macromolecular products derived from proteins
    • C08H1/06Macromolecular products derived from proteins derived from horn, hoofs, hair, skin or leather
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L15/00Chemical aspects of, or use of materials for, bandages, dressings or absorbent pads
    • A61L15/16Bandages, dressings or absorbent pads for physiological fluids such as urine or blood, e.g. sanitary towels, tampons
    • A61L15/22Bandages, dressings or absorbent pads for physiological fluids such as urine or blood, e.g. sanitary towels, tampons containing macromolecular materials
    • A61L15/32Proteins, polypeptides; Degradation products or derivatives thereof, e.g. albumin, collagen, fibrin, gelatin
    • A61L15/325Collagen
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/14Macromolecular materials
    • A61L27/22Polypeptides or derivatives thereof, e.g. degradation products
    • A61L27/24Collagen
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/40Composite materials, i.e. containing one material dispersed in a matrix of the same or different material
    • A61L27/44Composite materials, i.e. containing one material dispersed in a matrix of the same or different material having a macromolecular matrix
    • A61L27/48Composite materials, i.e. containing one material dispersed in a matrix of the same or different material having a macromolecular matrix with macromolecular fillers
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/50Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
    • A61L27/54Biologically active materials, e.g. therapeutic substances
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L31/00Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
    • A61L31/04Macromolecular materials
    • A61L31/043Proteins; Polypeptides; Degradation products thereof
    • A61L31/044Collagen
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L31/00Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
    • A61L31/12Composite materials, i.e. containing one material dispersed in a matrix of the same or different material
    • A61L31/125Composite materials, i.e. containing one material dispersed in a matrix of the same or different material having a macromolecular matrix
    • A61L31/129Composite materials, i.e. containing one material dispersed in a matrix of the same or different material having a macromolecular matrix containing macromolecular fillers
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L31/00Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
    • A61L31/14Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
    • A61L31/16Biologically active materials, e.g. therapeutic substances

Abstract

Procedimiento para la preparación de un material de colágeno reticulado, biocompatible, no tóxico y con velocidad de biodegradación in vivo controlada, caracterizado porque comprende someter un componente de colágeno sensiblemente desprovisto de agente complementario de reticulación y, preferentemente, no reticulado, en estado húmedo a una irradiación por radiación beta, siendo estéril el material de colágeno obtenido y biodegradable en el transcurso de algunos días hasta varias semanas.

Description

Preparación de un material de colágeno con una degradación in vivo controlada.
La presente invención se refiere a un procedimiento para la preparación de un material de colágeno, que permite controlar la velocidad de biodegradación in vivo de este material.
La invención se refiere, de una manera más precisa, a un procedimiento para el tratamiento de un componente de colágeno que permite obtener materiales con una estabilidad y con propiedades mecánicas variables según las condiciones de dicho tratamiento, adaptadas a las diversas aplicaciones biomedicinales del colágeno.
Los biomateriales a base de colágeno se utilizan actualmente en múltiples aplicaciones que presentan como principal ventaja la de ser resorbibles. Sin embargo, según sus aplicaciones, es necesario controlar su degradación biológica. En efecto, las propiedades mecánicas del material de colágeno implantado deben disminuir progresivamente y dicho material debe ser, finalmente, digerido por completo durante un período determinado.
Según las aplicaciones de estos biomateriales a base de colágeno, la degradación de este último debe producirse, en general, en un tiempo que va desde algunos días hasta varias semanas.
Para alcanzar estos objetivos, las propiedades del colágeno pueden ser modificadas de varias maneras posibles. De este modo se conocían, en la técnica, tratamientos que conducen a la formación de uniones iónicas, de uniones de hidrógeno o incluso de uniones covalentes (Chvapil et al., en International Review of Connective Tissue Research, Vo. 6, Eds, D.A. Hall and D.S. Jackson, Academic Press, UK, 1973, 1-61).
La creación de enlaces intermoleculares permite aumentar el tiempo de biodegradación del material de colágeno y la resistencia mecánica de las fibras de colágeno al mismo tiempo que se disminuye la capacidad de absorción de agua. La solubilidad y la velocidad de degradación enzimática de estas últimas (Pachence et al., Medical Device & Diagnostic Industry, 1987, 9, 46-55).
De este modo se han propuesto en la técnica, procedimientos que permiten reticular el colágeno bien por métodos físicos o bien por métodos químicos.
Los métodos químicos hacen uso de agentes reticulantes tales como compuestos aldehídicos, entre los cuales se pueden citar, en particular, el formaldehído, el glutaraldehído, el succinaldehído, el glioxal y la acroleína o también las carbodiimidas, los diisocianatos y los derivados azida (Pachence et al., Medical Device & Diagnostic Industry, 1987, 9, 46-55; Weadock et al., Biomat. Med. Dev. Art. Org., 1983-84, 11, 293-318; BIOETICA et INSERM, FR 2 617 855).
Los compuestos aldehídicos son ciertamente los agentes reticulantes más utilizados pero generan biomateriales potencialmente citotóxicos.
Es deseable introducir el menor número posible de productos químicos en un biomaterial implantable puesto que estos aditivos engendran complicaciones y exigencias reglamentarias cada vez más pesadas para demostrar la ausencia de toxicidad de tales productos.
Se conocía, por otra parte, en la técnica un procedimiento para modificar el colágeno formando funciones aldehídos en el propio seno de este, mediante rotura por oxidación del ácido peryódico o de una de sus sales, permitiendo este tratamiento la reticulación del colágeno a pH neutro o básico (M. Tardy y J.L. Tayot, US 4 931 546).
Finalmente, se ha propuesto también en la técnica la modificación de las propiedades del colágeno mediante el funcionalizado de los grupos amino y carboxilato de los aminoácidos que contiene. Según esta proposición, las modificaciones de carga y de polaridad pueden ralentizar o acelerar así la degradación del colágeno (Green et al., Biochem, J., 1953, 154, 181-187; Gustavson, Ark. Kemi., 1961, 55, 541-546).
Los métodos físicos comprenden, por su parte, la deshidratación, el envejecimiento, el calentamiento en ausencia de humedad o incluso la irradiación con rayos ultravioletas, con radiación beta o gamma.
Entre éstos, el tratamiento con irradiación por rayos beta o gamma es utilizado para esterilizar los materiales de colágeno deshidratados, pero conduce a materiales cuya resistencia es difícilmente predecible a la luz de la literatura existente.
Los diferentes parámetros que pueden intervenir en este tipo de tratamiento no son conocidos de manera suficiente como para permitir controlar la cantidad de los biomateriales de colágeno que resultan, en particular desde el punto de vista de su resistencia mecánica y de su velocidad de biodegradación (Sintzel et al., Drug Dev. Ind. Pharm., 1997, 23, 857-878).
La patente US 5,035,715 describe una irradiación con rayos gamma de una mezcla sensiblemente no húmeda de colágeno y de un material mineral, lo que permite obtener una cierta reticulación.
La patente EP 0 351 296 describe una irradiación gamma de bolas de colágeno, que permite aumentar su densidad.
La solicitud WO 95/34332 describe la esterilización de una prótesis de válvula de origen hístico porcino, que contiene, por lo tanto, colágeno, con un haz de electrones o también mediante irradiación X o gamma. La irradiación electrónica de tipo beta de la prótesis permeable ligeramente reticulada con un agente químico entraña una degradación menor que la irradiación gamma. Este documento no enseña que es posible acrecentar la reticulación y la resistencia a la degradación de una válvula de este tipo mediante radiación beta. Por el contrario, enseña que la radiación beta apenas tiene influencia sobre la reticulación.
La patente US 5,674,290 describe la esterilización por irradiación gamma de implantes de colágeno que tienen un contenido en agua elevado, en una cubierta estanca y transparente a la radiación gamma. Cuando esta enseñanza es aplicada al colágeno, el colágeno se retícula previamente por un agente químico. Este documento constata que, en contra de lo que ocurre en el caso de la esterilización por radiación gamma de un material de colágeno seco, la esterilización por radiación gamma del material de colágeno húmedo no modifica más que muy ligeramente la degradabilidad enzimática del material. El documento sugiere, de forma errónea, que la esterilización de un material de este tipo por haz de electrones sería equivalente a la esterilización por irradiación por esterilización gamma.
Por lo tanto se comprueba que los diversos tratamientos que se conocen en la técnica, que permiten actuar sobre ciertas propiedades de los materiales de colágeno, son o bien el origen de toxicidades indeseables o potenciales en las aplicaciones consideradas, o incluso difíciles o costosos de realización o no permiten controlar eficazmente las propiedades del material final obtenido.
La presente invención tiene por objeto proporcionar un tratamiento que permita obtener materiales de colágeno cuya velocidad de degradación in vivo y cuyas propiedades mecánicas sean modulables según las aplicaciones potenciales de dichos materiales.
Otro objetivo de la invención consiste en proporcionar un procedimiento de tratamiento que conduzca a un biomaterial listo para su empleo, procediéndose simultáneamente a la reticulación y a la esterilización del material de colágeno.
A este efecto, la presente invención tiene por objeto un procedimiento para la preparación de un material de colágeno reticulado, biocompatible, no tóxico y de velocidad de biodegradación in vivo controlada, caracterizado porque comprende someter un componente de colágeno, en estado húmedo, a una irradiación por radiación beta, siendo el material de colágeno obtenido estéril y biodegradable durante algunos días hasta varias semanas.
La invención tiene también por objeto el procedimiento anteriormente indicado, caracterizado porque el componente de colágeno en estado húmedo está asociado con una red de fibras de colágeno, preferentemente de estructura helicoidal, como paso previo a su irradiación.
La invención se refiere también a los materiales obtenidos por el procedimiento anteriormente indicado.
La invención se refiere, además, a un material biocompuesto, que es biocompatible, no tóxico y estéril, con velocidad de biodegradación in vivo controlada, suturable o engrapable, caracterizado porque comprende únicamente o principalmente, dos capas íntimamente asociadas y reticuladas con interpenetración de las redes reticuladas, estando formada una de dichas capas por una película a base de un componente de colágeno reticulado y la otra por una compresa recalcada, formada por fibras de colágeno reticulado que se han hecho insolubles, principalmente de colágeno de estructura helicoidal, preparadas a partir de colágeno solubilizado o dispersado en una solución
acuosa.
Los inventores han descubierto, de manera completamente sorprendente e imprevisible, que las propiedades de los materiales de colágeno dependen del modo de irradiación beta o gamma de la radiación.
Estos han descubierto, en particular, que el grado de hidratación del material irradiado juega, a su vez, un papel decisivo en las propiedades finales del material de colágeno resultante.
En efecto los inventores han observado que los resultados obtenidos son claramente diferentes según la naturaleza del componente de colágeno tratado y según las condiciones de esterilización por irradiación aplicadas.
Los inventores han puesto en evidencia, también, un tratamiento que permite, a la vez, la reticulación y la estructuración del componente de colágeno tratado, simultáneamente a su esterilización, que conduce, a partir de un material húmedo sensiblemente desprovisto de agente complementario de reticulación y, preferentemente, no reticulado, a un material listo para su empleo con propiedades definidas, en particular desde el punto de vista de su resistencia mecánica y de su tiempo de degradación in vivo.
Según la invención, el término "estructuración" del componente de colágeno se refiere al balance entre el grado de reticulación y el grado de hidrólisis de dicho componente de colágeno, que conduce a biomateriales más o menos resistentes.
Según la invención, la naturaleza del componente de colágeno se refiere, en particular, a su estado (grado de humedad), a su pH o también a su funcionalización, en caso dado.
El componente de colágeno empleado en el procedimiento de la invención se encuentra en estado húmedo. Por estado húmedo se entiende una materia que presenta un grado de humedad mayor que el 30%, de una manera más preferente comprendido entre el 40 y el 95%.
A título comparativo, el estado seco corresponde, por su parte, a una materia cuyo grado de humedad sea menor que el 30%, estando contenido este, preferentemente, entre el 5 y el 20%.
En este caso, este puede presentarse en estado húmedo en forma de un gel o de una solución acuosa, o en estado parcialmente deshidratado, en forma de una película, siendo el grado de humedad en este último caso próximo al 30% a diferencia de lo que ocurre en el caso de los geles y de las soluciones que contienen una cantidad de agua mucho mayor.
Independientemente de su forma, la concentración en componente de colágeno (materia seca) es como mínimo del 0,5%, siendo esta preferentemente mayor que el 2,5%.
El componente de colágeno utilizado para las finalidades de la invención puede consistir en o puede comprender colágeno indiferentemente de origen animal o humano u obtenido por medios de recombinación genética. Preferentemente se utiliza colágeno natural, solubilizado a pH ácido o también tal como se obtiene después del tratamiento por digestión con la pepsina. En particular puede tratarse de colágeno bovino del tipo I o de colágenos humanos del tipo I o III o también de mezclas en cualquier proporción de estos últimos.
El componente de colágeno, que puede estar constituido igualmente o comprender colágeno modificado por rotura mediante oxidación, principalmente por medio de ácido peryódico o de una de sus sales según la técnica anteriormente citada.
Se recuerda brevemente que esta técnica consiste en someter una solución ácida de colágeno a la acción del ácido peryódico o una de sus sales por mezcla con una solución de este ácido o sal a una concentración comprendida entre 1 y 10^{-5} M, preferentemente entre 5\cdot10^{-3} M y 10^{-1} M, a una temperatura próxima a la temperatura ambiente, durante un período de tiempo que puede ir desde 10 minutos hasta 72 horas.
Según la invención, se utiliza una solución acuosa ácida de colágeno, cuya concentración esté comprendida entre 5 y 50 g/l, siendo esta preferentemente de 30 g/l.
Este tratamiento provoca roturas en ciertos constituyentes del colágeno que son la hidroxilisina y los azúcares y de este modo crea puntos reactivos sin provocar la reticulación mientras que el pH permanezca ácido.
La rotura por oxidación del colágeno tiene como función permitir una reticulación moderada ulterior del material de colágeno pero la invención no excluye que pueda realizarse esta función por otros medios de reticulación moderada, por ejemplo por radiación beta o gamma, o con otros agentes de reticulación moderada, por ejemplo agentes químicos a dosis suficientemente pequeñas y no tóxicas.
Además, el componente de colágeno empleado según la invención puede consistir o puede comprender colágeno que haya perdido, al menos parcialmente su estructura helicoidal, principalmente por calentamiento a la temperatura mayor que 37ºC, preferentemente comprendida entre 40 y 50ºC durante menos de una hora.
Principalmente se puede obtener una preparación final que se puede asimilar a la gelatina pero cuyo peso molecular de las cadenas elementales es mayor o igual que 100 kDa.
El tratamiento por calentamiento a temperatura mayor que 37ºC de la solución de colágeno entraña la pérdida progresiva de la estructura helicoidal del colágeno, pero la invención no excluye que se pueda realizar esta función por otros medios físicos o químicos, por ejemplo mediante ultrasonidos o por adición de agentes caotrópi-
cos.
El componente de colágeno puede estar formado también, o comprender, colágeno funcionalizado al nivel de las funciones amino y/o carboxilo de los aminoácidos por ejemplo por succinilación, metilación o incluso por injerto de ácidos grasos, o cualquier otro método conocido para modificar químicamente el colágeno.
La invención se aplica, igualmente, a mezclas en cualquier proporción de los diferentes componentes de colágeno precitados.
El componente de colágeno según la invención puede contener igualmente un aditivo hidrófilo macromolecular.
De acuerdo con la presente invención, el aditivo hidrófilo macromolecular presenta un peso molecular ventajosamente mayor que 3.000 Daltons.
Puede tratarse de polímeros hidrófilos de síntesis, ventajosamente de peso molecular comprendido entre 3.000 y 20.000 Daltons. El polietilenglicol es particularmente preferido.
Puede tratarse, igualmente, de polisacáridos, entre los cuales se pueden citar el almidón, el dextrano y la celulosa, que son preferidos.
Igualmente se puede tener prevista la utilización de tales polisacáridos en forma oxidada, haciendo aparecer funciones carboxílicas en estas moléculas.
Los mucopolisacáridos pueden ser también convenientes para los fines de la invención pero no son preferidos puesto que su origen animal particular hace que su preparación sea difícil para satisfacer las normas reglamentarias de trazabilidad.
El aditivo hidrófilo se selecciona en función de diversos parámetros relacionados principalmente con su aplicación, como su precio, su inocuidad, su biodegradabilidad y/o su facilitad de eliminación, principalmente por vía renal, en caso de aplicación terapéutica.
La concentración en aditivo hidrófilo es de 2 hasta 10 veces menor que la del componente de colágeno.
A continuación se describe, de una manera más precisa, el procedimiento para la preparación de un material de colágeno según la presente invención.
Este comprende una etapa, según la cual, el componente de colágeno, tal como se ha definido anteriormente, se somete a una irradiación por radiación beta a dosis variables según la resistencia mecánica deseada para el biomaterial final, así como su velocidad de biodegradación in vivo.
El componente de colágeno se trata, ventajosamente, a pH neutro, preferentemente comprendido entre 6,5 y 8 con el objeto de favorecer las reacciones de reticulación y obtener un biomaterial biocompatible merced al pH fisiológico.
El componente de colágeno es reticulado/estructurado por irradiación con rayos beta a dosis esterilizantes, ventajosamente del orden de 5 a 50 KGrey, preferentemente comprendido entre 25 y 35 KGrey.
En ciertas condiciones, pueden reducirse las dosis, por ejemplo hasta 5 KGrey para materiales ya estériles o muy poco contaminados, lo que permite modular a la baja el grado de reticulación.
De acuerdo con la invención, el tratamiento por irradiación beta aplicado a un componente de colágeno en estado húmedo permite obtener un material que presente una fuerte resistencia a la degradación, que también es biodegradable in vivo al cabo de varias semanas cuando una exposición a una radiación gamma conduzca a un biomaterial con una baja resistencia a la degradación, que de este modo será biodegradable in vivo al cabo de algunos días.
Estos resultados son inversos a los que se obtienen para un componente de colágeno en estado seco, en el que una irradiación con radiación beta conduce a un biomaterial, cuya degradación se obtendrá al cabo de algunos días mientras que la irradiación gamma conduce a un biomaterial cuya degradación se obtendrá al cabo de varias semanas.
Según una variante de realización de la invención, el componente de colágeno destinado a ser estructurado por irradiación, es asociado previamente a una red de fibras de colágeno no desnaturalizado que se encuentra, ventajosamente, en forma de una compresa recalcada.
La preparación de esta compresa puede realizarse a partir de colágeno natural, oxidado por medio de ácido peryódico o de una de sus sales.
Se forman fibras a partir de la solución resultante, que a continuación se reticulan por neutralización.
Las fibras de colágeno oxidado, de estructura helicoidal, reticuladas de este modo, son liofilizadas y deshidratadas y a continuación se recalcan para formar la compresa.
A continuación se deposita sobre esta compresa, recalcada, de colágeno fibroso, una solución de compuesto de colágeno preparada como se ha indicado precedentemente.
El conjunto se seca ventajosamente y se rehidrata en parte para aumentar la concentración en componente de colágeno.
A continuación se procede al tratamiento por irradiación como se ha descrito anteriormente.
De este modo se obtiene la estructuración/reticulación del conjunto anteriormente indicado que conduce a un material bicompuesto, que comprende una capa que forma película a base de un componente de colágeno reticulado, asociada con una compresa recalcada de fibras de colágeno reticulado, con interpenetración de las redes reticuladas.
De una manera general, este procedimiento puede ser aplicado a compresas de fibras, tejidas o no tejidas, de colágeno ventajosamente con estructura helicoidal.
Los materiales de colágeno obtenidos por el procedimiento de la invención son útiles para la prevención de las adherencias post-operatorias y/o la cicatrización de heridas.
Tales materiales son útiles, particularmente, para favorecer la cicatrización de heridas cutáneas y de heridas quirúrgicas. Su naturaleza biocompatible les hace muy fácilmente colonizables por las células de los diferentes tejidos, en contacto con los cuales son aplicados.
En el caso de heridas internas, se ha observado que esta cicatrización se efectúa de manera armoniosa, sin entrañar proliferaciones hísticas fibrosas anárquicas, responsables de adherencias post-operatorias.
La actividad cicatrizante de estos materiales puede ser reforzada, evidentemente, mediante la adición de factores de crecimiento o de diferenciación celulares.
Los materiales según la invención están recomendados, por lo tanto, para asegurar rápidamente una cicatrización de calidad, tan próxima como sea posible a la anatomía inicial.
Los materiales de colágeno asociados con una red de fibras de colágeno son útiles, igualmente, para la cicatrización de heridas como se ha indicado previamente. Estos presentan la ventaja de ser suturables y engrapables teniendo en cuenta su resistencia muy elevada, que resulta de la irradiación con radiaciones beta.
Estos materiales pueden ser utilizados, igualmente, para la substitución de tejidos o paredes (por ejemplo pared del esófago, del intestino...) o para el rellenado de éstas (en caso de ablación parcial de una parte de tejido o pared).
Ejemplos Ejemplo 1 Estructuración de un gel de colágeno calentado
Se prepara una solución ácida de colágeno bovino, de tipo I, con una concentración del 16%, mediante la solubilización de polvo ácido de colágeno en agua ultrafiltrada, desmineralizada, a una temperatura comprendida entre 40 y 60ºC, durante un período de tiempo menor que 30 minutos. La solución se neutraliza hasta pH 7,45, por adición de sosa normal, desde el momento en que la solución de colágeno sea suficientemente fluida, es decir a 5 a 10 minutos después de la adición de colágeno en agua, para evitar la hidrólisis del colágeno.
La solución de colágeno se filtra a continuación de manera estéril sobre una membrana con una porosidad de 0,22 \mum y se conserva a una temperatura comprendida entre 0 y 10ºC, antes de su utilización.
Se obtiene una preparación final que puede asimilarse a la gelatina, pero cuyo peso molecular de las cadenas elementales es mayor o igual que aproximadamente 100 kDa.
Otras fuentes de colágeno, conocidas por el técnico en la materia, pueden ser utilizadas para obtener colágeno calentado como se ha descrito anteriormente en este ejemplo.
En el caso del colágeno bovino de tipo I, este puede ser soluble en ácido (extraído a partir de piel o de tendones a pH ácido), o solubilizado por digestión con pepsina, que facilita las filtraciones esterilizantes ulteriores del colágeno calentado.
La solución de colágeno calentada, obtenida, se conforma a continuación mediante moldeo, "perlado" (formación de bolas por paso a través de capilares y recogida de las gotas, secado parcial (que permite aumentar la concentración en componente de colágeno), o por cualquier otro procedimiento a una temperatura comprendida entre 40 y 70ºC, a continuación refrigeración a una temperatura comprendida entre 0 y 25ºC.
Estos tratamientos tienen por objeto la obtención de biomateriales de cualquier forma, adaptada a las aplicaciones buscadas, tal como por ejemplo tubos capilares, bolas, microbolas, cápsulas, películas, que pueden contener moléculas de interés terapéutico.
El biomaterial preparado se retícula y se esteriliza bien mediante irradiación gamma o bien por irradiación beta, a la dosis de 25 a 35 KGy.
El biomaterial irradiado mediante las radiaciones gamma se disuelve en agua desmineralizada, a 37ºC, en menos de 24 horas.
Por el contrario, el tratamiento por irradiación beta retícula en gran medida al biomaterial. Este no se degrada a 60ºC, en agua desmineralizada, incluso al cabo de un día. Su capacidad de absorción de agua es reducida e incluso es nula. Esta es menor que el 10% del peso del biomaterial. Su biodegradación es lenta in vivo, y necesita varias semanas cuando el punto de implantación del biomaterial, en el caso del animal, sea subcutáneo o esté en contacto con vísceras.
Según una variante, este material puede prepararse a partir de una solución de colágeno natural con una concentración comprendida entre el 0,5 y el 3%, que contenga 5 g/l de NaCl y no sometida a la etapa de calentamiento, con el fin de preservar la estructura helicoidal del colágeno.
Ejemplo 2 Estructuración de una película de colágeno parcialmente rehidratado
El material del ejemplo 1 se prepara en forma de película con un espesor de 2 mm, sin ningún aditivo químico.
Antes de la etapa de tratamiento final por irradiación, la película obtenida se deshidrata bajo un flujo de aire seco y se filtra durante 24 horas.
La película seca, obtenida, se rehidrata a continuación durante 5 a 10 minutos en agua destilada.
La película parcialmente rehidratada se acondiciona en un embalaje estanco al vapor de agua, a continuación se somete al tratamiento por irradiación beta o gamma a una dosis de 25 a 35 kiloGrey.
La película obtenida finalmente mide entre 0,5 y 1 mm de espesor en función del tiempo de rehidratación precedentemente aplicado. Su contenido en colágeno está comprendido entre el 30 y el 60%.
El material esterilizado por irradiación beta es muy resistente a fuerzas de tracción y se degrada in vivo, por vía subcutánea, después de más de 3 semanas.
El material esterilizado por irradiación gamma es poco resistente a fuerzas de tracción, se hincha de manera espontánea en contacto con el agua a 37ºC y se degrada in vivo tras implantación en menos de una semana.
Como variante, este material puede prepararse a partir de una solución de colágeno natural a una concentración comprendida entre 0,5 y 3%, que contiene 5 g/l de NaCl y no sometido a la etapa de calentamiento, con el fin de preservar la estructura helicoidal del colágeno.
Ejemplo 3 Realización de un material suturable por asociación del material de colágeno del ejemplo 2 con una red de fibras de colágeno de estructura helicoidal a) Preparación de la red de fibras de colágeno
Se prepara una solución ácida de colágeno bovino de tipo I con una concentración del 1% solubilizándose el polvo ácido en agua ultrafiltrada, desmineralizada, a 20ºC.
Esta solución se combina con ácido ortoperyódico, al abrigo de la luz, con el fin de obtener una concentración final de 5 x 10^{-3} M con vistas a la preparación de fibras de colágeno oxidado, según la patente FR 2 601 371.
Al cabo de 2 horas de tratamiento esta solución se inyecta en una serie de capilares paralelos, con un diámetro interior próximo a 300 micras, que producen así tubos finos de colágeno, cortados en unidades de 4 cm de longitud, merced a un dispositivo de sección automático. Estos finos capilares de colágeno se recogen a granel en una solución tampón alcalina de carbonato de sodio 0,05 M a pH 9,3, combinada con etanol al 30%.
En estas condiciones, el colágeno oxidado se retícula inmediatamente y los tubos de colágeno se vuelven insolubles. Los tubos, reticulados de este modo, se lavan en bajos sucesivos de agua ultrafiltrada. A continuación se realiza una suspensión de estas fibras que contienen 2% de materia seca de colágeno, se combina con glicerina al 1% y se extiende en placas con un espesor de 5 mm.
Las placas se liofilizan a continuación y las compresas deshidratadas son recalcadas por presión, para obtener un espesor de 1 a 2 mm.
b) Preparación de la solución de colágeno calentada
Se realiza una solución de colágeno al 5% calentada en las condiciones descritas en el ejemplo 1 o 2.
c) Asociación de los dos materiales precedentes
La solución preparada en "b)" se cuela sobre la compresa recalcada descrita en el párrafo "a)", a una dosis de 0,2 ml/cm^{2} aproximadamente.
El conjunto se seca a continuación bajo flujo laminar estéril durante 24 horas.
El material compuesto se rehidrata a continuación parcialmente por inmersión en agua, durante 10 minutos.
El material se acondiciona en un embalaje estanco al vapor de agua y se esteriliza por irradiación beta (haz de electrones acelerados).
Se obtiene un material extremadamente resistente al estirado, cuyas propiedades mecánicas lo hacen utilizable con las técnicas quirúrgicas de sutura y de engrapado.
Este material está constituido únicamente por colágeno, sin ningún aditivo químico. No es tóxico, es perfectamente tolerado por el organismo y puede ser utilizado como substituto de los tejidos animales, utilizados actualmente por los cirujanos (fascia lata, duramadre, etc.), en las aplicaciones de substitución o de rellenado de tejidos, paredes... o también de cicatrización.
Ejemplo 4 Estructuración de hidrocoloides de colágeno constituidos por fibras de colágeno natural oxidado
Los hidrocoloides de colágeno se realizan a partir de colágeno bovino natural, no digerido por la pepsina, y oxidado con ácido peryódico, según el procedimiento descrito en la patente US 4 931 546.
Se emplean fibras de colágeno natural de tipo I extraído de pieles de terneros jóvenes. Pueden utilizarse otras fuentes de colágeno, conocidas por el técnico en la materia.
Se prepara una solución de colágeno con 30 g/l mediante suspensión en HCl 0,01 N, en un volumen de 720 ml. Esta se combina con ácido peryódico a la concentración final de 8 mM, es decir de 1,83 g/l.
La oxidación se efectúa a una temperatura de 22 \pm 3ºC, durante 3 h \pm 30 minutos, bajo agitación y al abrigo de la humedad.
A continuación, el colágeno oxidado se precipita por adición de NaCl a 240 g/l, hasta obtener una concentración final de NaCl de 41 g/l.
Al cabo de 30 minutos de espera, el precipitado se recoge por decantación a través de un tamiz de tela con una porosidad comprendida entre 20 y 100 \mum y a continuación se lava 4 veces con una solución de NaCl 41 g/l en HCl 0,01 N para eliminar cualquier traza de ácido peryódico o de sus derivados formados en el transcurso de la oxidación del colágeno. Se obtiene un precipitado de 110 g.
A continuación se elimina el cloruro de sodio mediante tres lavados sucesivos del precipitado salino de colágeno, utilizándose una mezcla de acetona/agua (80/20, m/m).
Un lavado final con acetona al 100% permite obtener 51,5 g de un precipitado acetónico, concentrado, de colágeno oxidado ácido, no reticulado y desprovisto de productos tóxicos, debidos al empleo del ácido peryódico.
El precipitado acetónico se recoge en 390 ml de agua desmineralizada ultrafiltrada (apirógena) a 40ºC durante 5 a 10 minutos, para obtener una concentración en colágeno del 4,1%. A continuación la mezcla se calienta durante 30 minutos a 50 \pm 5ºC.
Antes de su utilización, la solución de colágeno calentada, oxidada, puede ser conservada a -20ºC.
Para la realización del hidrocoloide, el colágeno oxidado, calentado, como se ha preparado anteriormente, a la concentración final del 4,1% se combina, a 38ºC, con una solución estéril de PEG 4000 (polietilenglicol de peso molecular 4.000) para alcanzar la concentración final del 1,3% de PEG y del 3,9% en colágeno total. El pH de esta solución se neutraliza a continuación a 7,3.
La mezcla de colágeno se cuela en soportes hidrófobos, de poliestireno o de PVC, a razón de 0,2 g por cm^{2}. Se evapora, bajo flujo de aire estéril, durante 18 hasta 24 horas, a una temperatura próxima a 22ºC. La película resultante se rehidrata durante 15 a 20 minutos en agua desmineralizada apirógena, para obtener un hidrocoloide. Este biomaterial es estructurado y esterilizado por irradiación con radiación beta o gamma, a una dosis comprendida entre 25 y 35 KGy. Su humedad, antes de la esterilización está comprendida preferentemente entre el 75 y 95%.
Los hidrocoloides estructurados por irradiación por radiación gamma se deslía en menos de 24 horas, a 37ºC, cuando se sumergen en agua desmineralizada apirógena.
Por el contrario, la irradiación beta, a las dosis anteriormente indicadas, permite obtener un hidrocoloide más resistente que guarda su integridad, incluso tras haber sido sumergido en agua desmineralizada apirógena, a 37ºC, durante 24 horas.
Ejemplo 5 Estructuración de hidrocoloides de colágeno constituidos por fibras de colágeno natural no oxidado
Los hidrocoloides descritos en este ejemplo representan una variante del ejemplo 4.
Estos se preparan a partir de colágeno calentado no oxidado y de PEG 4000 como aditivo hidrófilo macromolecular.
Se recoge colágeno I bovino natural ácido, a la concentración final del 3%, en agua desmineralizada ultrafiltrada que contiene un 1% de PEG 4000. La mezcla se mantiene a 42ºC, bajo agitación, hasta la obtención de una solución homogénea, es decir en menos de 30 minutos. A continuación, se desgasifica bajo vacío.
Esta mezcla se cuela, a continuación, en soportes hidrófobos, de poliestireno o de PVC, a razón de 0,27 g por cm^{2}.
Se seca, bajo flujo de aire estéril, durante 18 hasta 24 horas.
La película resultante es rehidratada, durante 15 a 20 minutos, en un tampón fisiológico, con el fin de obtener una película de pH neutro, comprendido entre 7 y 8. Puede utilizarse a este efecto un tampón fosfato 150 mM, de pH 8,2.
Este biomaterial es estructurado y esterilizado por irradiación con radiación beta o gamma, a una dosis comprendida entre 25 y 35 KGy. Su humedad, antes de la esterilización está comprendida preferentemente entre el 75 y el 95%.
Las propiedades de los materiales obtenidos son comparables a las de los materiales descritos en los ejemplos precedentes. La esterilización por irradiación beta hace más resistente al hidrocoloide a base de colágeno I bovino natural, no oxidado, que la esterilización por irradiación gamma.
Ejemplo 6 Estructuración de hidrocoloides de colágeno constituidos por colágeno I bovino pepsinado, oxidado
Los hidrocoloides descritos en este ejemplo representan una variante de los ejemplos 4 y 5.
Se utiliza colágeno I bovino, pepsinado. Igualmente pueden utilizarse colágenos humanos de tipo I o III, o su mezcla en cualquier proporción.
El colágeno es oxidado como se ha descrito en el ejemplo 4, con las modificaciones siguientes:
El precipitado acetónico de colágeno oxidado se recoge a la concentración final de un 3%, en agua desmineralizada ultrafiltrada, a 40ºC. A continuación se calienta a 50ºC, durante 30 minutos. La solución de colágeno calentado, oxidado, se esteriliza por filtración sobre membrana con una porosidad de 0,45 \mum, en una estufa a 40ºC.
A la temperatura de 38ºC se añade al colágeno, oxidado, como se ha preparado anteriormente, PEG 4000 en solución acuosa al 20%, para alcanzar la concentración final en PEG del 1%. La mezcla se neutraliza hasta un pH de 7,0 con sosa 0,5 N y 0,1 N. A continuación se distribuye en soportes hidrófobos, de poliestireno o de PVC, a razón de 0,27 g por cm^{2}.
Se seca, bajo flujo de aire estéril, durante 18 hasta 24 horas, a una temperatura próxima a 22ºC. A continuación rehidratado en agua desmineralizada ultrafiltrada.
Este biomaterial es estructurado y esterilizado por irradiación por radiación beta o gamma, a una dosis comprendida entre 25 y 35 KGy.
Su humedad, antes de la esterilización, está comprendida preferentemente entre el 75 y el 95%.
Como en los ejemplos precedentes, realizados a partir de biomateriales húmedos, la irradiación beta permite obtener materiales más resistentes que la irradiación gamma.
Ejemplo 7 Estructuración de hidrocoloides de colágeno constituidos por colágeno de tipo I, pepsinado, calentado, no oxidado
Los hidrocoloides descritos en este ejemplo representan una variante de los ejemplos 4, 5 y 6.
Los hidrocoloides de colágeno se realizan a partir de colágeno bovino natural de tipo I, digerido con pepsina y calentado.
De la misma manera pueden utilizarse colágenos calentados humanos de tipo I, III o su mezcla en cualquier proporción.
Se emplea una solución de colágeno calentada al 3% y neutralizada, a pH 7,45, preparada según el ejemplo 1.
Se añade al colágeno calentado al 3%, a 42ºC, una solución estéril concentrada de PEG 4000 para obtener una concentración final del 0,9% en PEG y del 2,7% en colágeno. El pH de la solución se ajusta a 7,0, por adición de una solución concentrada de hidróxido de sodio.
Esta mezcla se cuela a continuación en soportes hidrófobos, de poliestireno o de PVC, a razón de 0,27 g por cm^{2}.
Se seca, bajo flujo de aire estéril, durante 18 a 24 horas, a una temperatura próxima a 22ºC.
La película resultante se rehidrata, durante 15 a 20 minutos, en agua desmineralizada ultrafiltrada.
Este biomaterial es estructurado y esterilizado por irradiación beta o gamma, a una dosis comprendida entre 25 y 35 KGy.
Su humedad, antes de la esterilización, está preferentemente comprendida entre el 75 y el 95%.
Como en los ejemplos precedentes, realizados a partir de biomateriales húmedos, la irradiación gamma permite obtener materiales menos resistentes que la irradiación beta.
Ejemplo comparativo
Estructuración de una película de colágeno seco
Se realiza una película de colágeno como se ha descrito en la solicitud de patente FR 9711589.
Se emplea colágeno oxidado, calentado, preparado según el ejemplo 6.
El colágeno utilizado como materia prima para la preparación del colágeno oxidado, calentado, es colágeno bovino de tipo I, eventualmente solubilizado por digestión con la pepsina y, purificado mediante precipitaciones salinas, según las técnicas ya descritas. Del mismo pueden utilizarse colágenos humanos de tipo I o III o sus mezclas en cualquier proporción.
Una solución de colágeno calentado, oxidado, al 3% se combina, a 35ºC, con una solución estéril concentrada de PEG 4000 y de glicerina, para obtener una concentración final de 0,9% en PEG del 0,54% en glicerina y del 2,7% en colágeno total. El pH de la solución se ajusta a 7,0 mediante adición de una solución concentrada de hidróxido de sodio.
Esta solución se cuela en capa delgada con una densidad de 0,133 g/cm^{2} sobre un soporte plano hidrófobo de tipo PVC o poliestireno. La película se seca bajo flujo de aire estéril, a una temperatura próxima a 22ºC.
El espesor medio de la película obtenida es de 40 a 50 \mum, con un grado medio de humedad del 10%.
La película seca es irradiada con radiación beta o gamma a una dosis comprendida entre 25 y 35 KGy.
En este caso, la película seca, irradiada con radiación gamma, presenta propiedades mecánicas mayores que la película irradiada con radiación beta, como indica el grado de hinchamiento, menor en el caso de las películas tratadas con los rayos gamma. Paralelamente, la biodegradación de la película seca tratada, con los rayos gamma, in vivo, es mayor que 3 semanas. Por el contrario, la película seca irradiada con radiación beta es "digerida" in vivo en menos de una semana.
1

Claims (26)

1. Procedimiento para la preparación de un material de colágeno reticulado, biocompatible, no tóxico y con velocidad de biodegradación in vivo controlada, caracterizado porque comprende someter un componente de colágeno sensiblemente desprovisto de agente complementario de reticulación y, preferentemente, no reticulado, en estado húmedo a una irradiación por radiación beta, siendo estéril el material de colágeno obtenido y biodegradable en el transcurso de algunos días hasta varias semanas.
2. Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado porque el compuesto de colágeno presenta un grado de humedad mayor que el 30%, preferentemente mayor que el 40%.
3. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1 y 2, caracterizado porque el componente de colágeno se encuentra en forma de un gel.
4. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1 y 2, caracterizado porque el componente de colágeno se encuentra en forma de una solución acuosa.
5. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque el componente de colágeno presenta un pH neutro, preferentemente comprendido entre 6,5 y 8.
6. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque la concentración en componente de colágeno (materia seca) es del 0,5% como mínimo y, preferentemente, es mayor que el 2,5%.
7. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque el componente de colágeno consiste en, o comprende, colágeno que ha perdido al menos parcialmente su estructura helicoidal.
8. Procedimiento según la reivindicación 7, caracterizado porque el colágeno que ha perdido al menos parcialmente su estructura helicoidal está formado por colágeno no hidrolizado, constituido en su mayor parte por cadenas \alpha.
9. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 7 y 8, caracterizado porque el componente de colágeno consiste en, o comprende, colágeno que ha perdido al menos parcialmente su estructura helicoidal por calentamiento por encima de 37ºC, preferentemente entre 40 y 50ºC.
10. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, caracterizado porque el componente de colágeno consiste en, o comprende, colágeno oxidado.
11. Procedimiento según la reivindicación 10, caracterizado porque el colágeno oxidado consiste en colágeno modificado por rotura por oxidación por medio de ácido peryódico o una de sus sales.
12. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, caracterizado porque el componente de colágeno comprende colágeno funcionalizado al nivel de las funciones amino y/o carboxilo de los aminoácidos.
13. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque el componente de colágeno comprende un aditivo hidrófilo macromolecular.
14. Procedimiento según la reivindicación 12, caracterizado porque el aditivo hidrófilo macromolecular presenta un peso molecular mayor que 3.000 Daltons.
15. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 13 y 14, caracterizado porque el aditivo hidrófilo macromolecular es un polímero hidrófilo de peso molecular comprendido entre 3.000 y 20.000 Daltons.
16. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 13 a 15, caracterizado porque el aditivo hidrófilo macromolecular es el polietilenglicol.
17. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 13 a 16, caracterizado porque el aditivo hidrófilo macromolecular se elige entre los polisacáridos, principalmente el almidón, el dextrano o la celulosa, o los mucopolisacáridos.
18. Procedimiento según la reivindicación 17, caracterizado porque el aditivo hidrófilo macromolecular es un polisacárido en forma oxidada.
19. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque el componente de colágeno es irradiado a una dosis de 5 a 50 KGy.
20. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque el componente de colágeno es irradiado a una dosis de 20 a 50 KGy, preferentemente de 25 a 35 KGy.
21. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque el componente de colágeno es irradiado con radiación beta, estando fuertemente reticulado el material de colágeno resultante y siendo biodegradable in vivo en el transcurso de varias semanas.
22. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque el componente de colágeno en estado húmedo se asocia con una red de fibras de colágeno, preferentemente de estructura helicoidal, como paso previo a su irradiación.
23. Procedimiento según la reivindicación 22, caracterizado porque la red de fibras de colágeno consiste en una compresa de fibras recalcadas, obtenida a partir de una solución ácida de colágeno natural, por tratamiento por medio de ácido peryódico o una de sus sales, formación de fibras y a continuación reticulación por neutralización, siendo recalcadas bajo presión las fibras de colágeno de estructura helicoidal, reticuladas, resultantes, y porque se deposita una solución de componente de colágeno sobre dicha compresa y a continuación el conjunto es irradiado con radiación beta.
24. Material de colágeno bicompuesto que es biocompatible, no tóxico y estéril, con una velocidad de degradación in vivo controlada, suturable o engrapable, caracterizado porque comprende únicamente o principalmente dos capas asociadas inicialmente y reticuladas con interpenetración de las redes reticuladas, estando formada una de dichas capas por una película a base de un componente de colágeno reticulado y la otra por una compresa recalcada, formada por fibras de colágeno reticulado, que se han insolubilizado, principalmente de colágeno con estructura helicoidal, preparadas a partir de colágeno solubilizado o dispersado en una solución acuosa.
25. Material de colágeno bicompuesto según la reivindicación 24, caracterizado porque está reticulado por el procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 22 y 23.
26. Material de colágeno según una cualquiera de las reivindicaciones 24 y 25, caracterizado porque el componente de colágeno es tal como se ha definido según una cualquiera de las reivindicaciones 7 a 18.
ES99972934T 1998-11-30 1999-11-09 Preparacion de un material de colageno con la degradacionin vivo controlada. Expired - Lifetime ES2226503T3 (es)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR9815072 1998-11-30
FR9815072A FR2786400B1 (fr) 1998-11-30 1998-11-30 Procede de preparation d'un materiau collagenique a vitesse de biodegradation in vivo controlee et materiaux obtenus

Publications (1)

Publication Number Publication Date
ES2226503T3 true ES2226503T3 (es) 2005-03-16

Family

ID=9533368

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES99972934T Expired - Lifetime ES2226503T3 (es) 1998-11-30 1999-11-09 Preparacion de un material de colageno con la degradacionin vivo controlada.

Country Status (9)

Country Link
US (1) US6706684B1 (es)
EP (1) EP1135175B1 (es)
AT (1) ATE270901T1 (es)
AU (1) AU1165100A (es)
CA (1) CA2352984C (es)
DE (1) DE69918714T2 (es)
ES (1) ES2226503T3 (es)
FR (1) FR2786400B1 (es)
WO (1) WO2000032246A1 (es)

Families Citing this family (58)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2003020327A2 (en) * 2001-09-06 2003-03-13 Bone Sa A cross-linked collagenous biomaterial
US20050283256A1 (en) * 2004-02-09 2005-12-22 Codman & Shurtleff, Inc. Collagen device and method of preparing the same
WO2006005890A1 (fr) * 2004-07-08 2006-01-19 Symatese Colle lyophilisee a base de collagene et son utilisation pour la fabrication de protheses collantes
US7235592B2 (en) 2004-10-12 2007-06-26 Zimmer Gmbh PVA hydrogel
WO2006091706A1 (en) 2005-02-23 2006-08-31 Zimmer Technology, Inc. Blend hydrogels and methods of making
US7429241B2 (en) * 2005-09-29 2008-09-30 Codman & Shurtleff, Inc. Dural graft and method of preparing the same
WO2007067697A2 (en) 2005-12-07 2007-06-14 Zimmer, Inc. Methods of bonding or modifying hydrogels using irradiation
US20070141108A1 (en) * 2005-12-20 2007-06-21 Zimmer, Inc. Fiber-reinforced water-swellable articles
JP2007177244A (ja) 2005-12-22 2007-07-12 Zimmer Inc ペルフルオロシクロブタン架橋ハイドロゲル
US7670762B2 (en) * 2006-01-17 2010-03-02 Brennen Medical, Llc Biocompatible tissue graft material for implant and method of making
US8110242B2 (en) 2006-03-24 2012-02-07 Zimmer, Inc. Methods of preparing hydrogel coatings
US20090004455A1 (en) * 2007-06-27 2009-01-01 Philippe Gravagna Reinforced composite implant
US8932619B2 (en) * 2007-06-27 2015-01-13 Sofradim Production Dural repair material
US8062330B2 (en) 2007-06-27 2011-11-22 Tyco Healthcare Group Lp Buttress and surgical stapling apparatus
US7731988B2 (en) 2007-08-03 2010-06-08 Zimmer, Inc. Multi-polymer hydrogels
US8062739B2 (en) 2007-08-31 2011-11-22 Zimmer, Inc. Hydrogels with gradient
US20090068250A1 (en) * 2007-09-07 2009-03-12 Philippe Gravagna Bioresorbable and biocompatible compounds for surgical use
US7947784B2 (en) 2007-11-16 2011-05-24 Zimmer, Inc. Reactive compounding of hydrogels
US9308068B2 (en) 2007-12-03 2016-04-12 Sofradim Production Implant for parastomal hernia
US8034362B2 (en) 2008-01-04 2011-10-11 Zimmer, Inc. Chemical composition of hydrogels for use as articulating surfaces
CA2713358A1 (en) * 2008-01-31 2009-08-06 Sofradim Production Preparation of terminally-sterilized collagen that is soluble at neutral ph
AU2009201541B2 (en) * 2008-04-23 2014-12-04 Integra Lifesciences Corporation Flowable collagen material for dural closure
WO2009156866A2 (en) 2008-06-27 2009-12-30 Sofradim Production Biosynthetic implant for soft tissue repair
FR2937244B1 (fr) * 2008-10-22 2011-11-18 Sofradim Production Implant de remplacement de tendon a base de collagene
FR2949688B1 (fr) 2009-09-04 2012-08-24 Sofradim Production Tissu avec picots revetu d'une couche microporeuse bioresorbable
US9439809B2 (en) 2010-03-26 2016-09-13 3M Innovative Properties Company Method of sterilization of wound dressings
CA2804592C (en) 2010-07-08 2019-10-29 Lifecell Corporation Method for shaping tissue matrices
US8637067B1 (en) 2011-03-10 2014-01-28 Lifecell Corporation Elastic tissue matrix derived hydrogel
FR2972626B1 (fr) 2011-03-16 2014-04-11 Sofradim Production Prothese comprenant un tricot tridimensionnel et ajoure
FR2977790B1 (fr) 2011-07-13 2013-07-19 Sofradim Production Prothese pour hernie ombilicale
FR2977789B1 (fr) 2011-07-13 2013-07-19 Sofradim Production Prothese pour hernie ombilicale
CA2847615A1 (en) 2011-09-30 2013-04-04 Sofradim Production Multilayer implants for delivery of therapeutic agents
WO2013046058A2 (en) 2011-09-30 2013-04-04 Sofradim Production Reversible stiffening of light weight mesh
FR2985170B1 (fr) 2011-12-29 2014-01-24 Sofradim Production Prothese pour hernie inguinale
FR2985271B1 (fr) 2011-12-29 2014-01-24 Sofradim Production Tricot a picots
FR2994185B1 (fr) 2012-08-02 2015-07-31 Sofradim Production Procede de preparation d’une couche poreuse a base de chitosane
FR2995778B1 (fr) 2012-09-25 2015-06-26 Sofradim Production Prothese de renfort de la paroi abdominale et procede de fabrication
FR2995779B1 (fr) 2012-09-25 2015-09-25 Sofradim Production Prothese comprenant un treillis et un moyen de consolidation
FR2995788B1 (fr) 2012-09-25 2014-09-26 Sofradim Production Patch hemostatique et procede de preparation
AU2013322268B2 (en) 2012-09-28 2017-08-31 Sofradim Production Packaging for a hernia repair device
FR3006581B1 (fr) 2013-06-07 2016-07-22 Sofradim Production Prothese a base d’un textile pour voie laparoscopique
FR3006578B1 (fr) 2013-06-07 2015-05-29 Sofradim Production Prothese a base d’un textile pour voie laparoscopique
EP3000489B1 (en) 2014-09-24 2017-04-05 Sofradim Production Method for preparing an anti-adhesion barrier film
EP3000433B1 (en) 2014-09-29 2022-09-21 Sofradim Production Device for introducing a prosthesis for hernia treatment into an incision and flexible textile based prosthesis
EP3000432B1 (en) 2014-09-29 2022-05-04 Sofradim Production Textile-based prosthesis for treatment of inguinal hernia
EP3029189B1 (en) 2014-12-05 2021-08-11 Sofradim Production Prosthetic porous knit, method of making same and hernia prosthesis
EP3059255B1 (en) 2015-02-17 2020-05-13 Sofradim Production Method for preparing a chitosan-based matrix comprising a fiber reinforcement member
CN106139247B (zh) * 2015-04-17 2019-11-12 天津市赛宁生物工程技术有限公司 一种人工硬脑/脊膜补片的制备方法
EP3085337B1 (en) 2015-04-24 2022-09-14 Sofradim Production Prosthesis for supporting a breast structure
ES2676072T3 (es) 2015-06-19 2018-07-16 Sofradim Production Prótesis sintética que comprende un tejido de punto y una película no porosa y método para formarla
EP3195830B1 (en) 2016-01-25 2020-11-18 Sofradim Production Prosthesis for hernia repair
EP3413943A1 (en) 2016-02-11 2018-12-19 LifeCell Corporation Methods for stabilizing collagen-containing tissue products against enzymatic degradation
EP3312325B1 (en) 2016-10-21 2021-09-22 Sofradim Production Method for forming a mesh having a barbed suture attached thereto and the mesh thus obtained
EP3398554A1 (en) 2017-05-02 2018-11-07 Sofradim Production Prosthesis for inguinal hernia repair
TW202016288A (zh) * 2018-06-29 2020-05-01 國立研究開發法人量子科學技術研究開發機構 細胞培養用水凝膠、凝膠套組、細胞培養物之製造方法、及細胞培養用水凝膠之製造方法
EP3653171A1 (en) 2018-11-16 2020-05-20 Sofradim Production Implants suitable for soft tissue repair
BR112023021555A2 (pt) 2021-04-19 2024-01-30 Viscofan Sa Hidrogéis de colágeno úteis como carreadores de células
CN114470333B (zh) * 2022-03-09 2023-05-23 哈尔滨敷尔佳科技股份有限公司 交联重组胶原蛋白凝胶的制备方法

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS494559B1 (es) * 1970-08-06 1974-02-01
US4865602A (en) * 1986-11-06 1989-09-12 Collagen Corporation Gamma irradiation of collagen/mineral mixtures
FR2634121B1 (fr) * 1988-07-13 1992-05-07 Imedex Procede de preparation de microparticules de collagene et produits obtenus
US5634943A (en) * 1990-07-12 1997-06-03 University Of Miami Injectable polyethylene oxide gel implant and method for production
AU2863495A (en) * 1994-06-15 1996-01-05 St. Jude Medical Inc. Enhanced cross-linking of natural tissues
US5674290A (en) * 1995-04-05 1997-10-07 Li; Shu-Tung Water-stabilized biopolymeric implants
US5733337A (en) * 1995-04-07 1998-03-31 Organogenesis, Inc. Tissue repair fabric
FR2759084B1 (fr) * 1997-02-06 1999-10-29 Dev Des Utilisations Du Collag Materiau collagenique utile notamment pour la prevention d'adherences post-operatoires

Also Published As

Publication number Publication date
US6706684B1 (en) 2004-03-16
DE69918714D1 (de) 2004-08-19
EP1135175A1 (fr) 2001-09-26
AU1165100A (en) 2000-06-19
DE69918714T2 (de) 2005-07-21
ATE270901T1 (de) 2004-07-15
FR2786400A1 (fr) 2000-06-02
CA2352984A1 (fr) 2000-06-08
EP1135175B1 (fr) 2004-07-14
FR2786400B1 (fr) 2002-05-10
WO2000032246A1 (fr) 2000-06-08
CA2352984C (fr) 2007-06-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2226503T3 (es) Preparacion de un material de colageno con la degradacionin vivo controlada.
ES2221044T3 (es) Material de colageno laminado y procedimiento para producir el mismo.
ES2251971T3 (es) Peptido colagenico reticulado para la prevencion de las adherencias post-quirurgicas.
CA2173546C (en) Medical materials and manufacturing methods thereof
ES2214880T3 (es) Material colagenico bicompuesto, su procedimiento de obtencion y sus aplicaciones terapeuticas.
CA2749888C (en) Method and membrane for tissue regeneration
TWI461227B (zh) 再生生物功能性膠原生物基質用來治療內臟或體壁缺陷的用途
US6391939B2 (en) Collagenic material useful in particular for preventing post-operative adhesions
US5139527A (en) Biologic absorbable implant material for filling and closing soft tissue cavities and method of its preparation
JP5779249B2 (ja) 癒着防止用医用材料及びその製造方法
ES2358197T3 (es) Utilización de prótesis tridimensionales que contienen derivados del ácido hialurónico.
ES2614475T3 (es) Membrana de tipo lámina plana, permeable, autoenrollable
CA1333050C (en) Biologic absorbable implant material for filling and closing soft-tissue cavities and method of its preparation
JPH07213597A (ja) 精製コラーゲン様物質の撚り糸、この撚り糸から製造された成形体、及びこれらの製造方法
EP3305339B1 (en) Method for manufacturing collagen film using ultraviolet light, collagen film manufactured by using same, and biomaterial prepared using collagen film
JPH0826081B2 (ja) キトサンのn−カルボキシアルキル誘導体を不溶化する方法
Moni et al. Development of antibacterial biomaterial for medical application
WO2017205740A1 (en) Process for preparing tissue regeneration matrix
JPH0669486B2 (ja) 生物学的機能を有するコラーゲン膜の製造法
KR20060011503A (ko) 장기 유착 방지 수화겔 및 그의 제조 방법
KR20160142758A (ko) 자외선을 이용한 콜라겐 필름의 제조방법, 이를 이용하여 제조된 콜라겐 필름 및 콜라겐 필름을 이용하여 제조된 생체재료
CA3194691A1 (en) Multi-layered collagen structure
EP4337272A1 (en) Flat self-curling sheet membranes and methods for producing same
RO128003B1 (ro) Procedeu de obţinere a conductorilor pentru ghidare nervoasă şi conductorii obţinuţi cu acesta
PL170843B1 (pl) Sposób wytwarzania materiału na powłoki tkanek miękkich