ES2210496T3 - Anticuerpos que se unen al receptor (ccr2) de la proteina quimiotactica de monocitos 1 (mcp-1). - Google Patents
Anticuerpos que se unen al receptor (ccr2) de la proteina quimiotactica de monocitos 1 (mcp-1).Info
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Abstract
LA INVENCION SE REFIERE A ANTICUERPOS QUE SON CAPACES DE FIJAR EL RECEPTOR CCR2 DE LA PROTEINA QUIMIOATRACTIVA DE MONOCITOS 1 (MCP - 1), ESPECIALMENTE LOS QUE SON CAPACES DE ACTUAR COMO ANTAGONISTAS O COMO AGONISTAS. LOS ANTICUERPOS REIVINDICADOS PUEDEN UTILIZARSE PARA DIAGNOSTICO IN VITRO Y/O IN VIVO, PARA LA SELECCION Y DETECCION DE TEJIDOS Y CLASES DE CELULAS QUE EXPRESAN EL RECEPTOR MCP - 1, PARA LA SELECCION DE NUEVOS FARMACOS Y PARA USO TERAPEUTICO. LA INVENCION SE REFIERE IGUALMENTE A UNA PREPARACION QUE COMPRENDE EL ANTICUERPO REIVINDICADO Y A UN MICROORGANISMO O LINEA CELULAR CAPAZ DE PRODUCIR EL ANTICUERPO REIVINDICADO.
Description
Anticuerpos que se unen al receptor (CCR2) de la
proteína quimiotáctica de monocitos 1 (MCP-1).
La presente invención se refiere, en general, a
anticuerpos que pueden unirse al receptor CCR2 de la proteína
quimiotáctica de monocitos 1 (MCP-1).
De manera más específica, la invención se refiere
a agonistas y antagonistas, que actúan sobre los receptores, para el
receptor CCR2 de la proteína quimiotáctica de monocitos 1
(MCP-1), que incluyen anticuerpos, especialmente,
anticuerpos monoclonales, que interaccionan con las regiones
extracelulares de los receptores de MCP-1, que
compiten con MCP-1 y otros ligandos naturales para
la unión al receptor.
Las quimiocinas constituyen un grupo diverso de
pequeñas proteínas de secreción básicas que regulan la migración
quimiotáctica y la activación de varios leucocitos diferentes, en
particular, en el contexto de la activación de la respuesta
inmunológica durante situaciones inflamatorias.
Ejemplos de células que han demostrado que
responden quimiotácticamente y se activan mediante las quimiocinas
son los neutrófilos, eosinófilos, basófilos, monocitos, macrófagos,
así como linfocitos B y diferentes tipos de linfocitos T
(Oppenheim, J.J. y col. (1991) Annu. Rev. Immunol. 9,
617-48; Miller, M.D & Krangel, K. (1992)
Crit. Rev. Immunol. 12 (1,2) 17-46;
Baggiolini, M. Y col. (1994) Adv. Immunol. 55,
97-179).
Las quimiocinas pueden clasificarse en dos grupos
principales basándose en el patrón de residuos de cisteinil que
participan en la formación de puentes disulfuro en las proteínas
maduras. El primer grupo, las quimiocinas CXC, o las quimiocinas a,
se caracterizan por la presencia de dos residuos cisteinil en la
región amino-terminal, entre los que se sitúa un
residuo aminoacídico diferente.
El segundo grupo, las quimiocinas CC, o las
quimiocinas b, se caracterizan por la presencia de dos residuos
cisteinil adyacentes en la región amino terminal.
Un tercer grupo menor de quimiocinas,
representado por la linfotactina que se ha aislado de ratón y de
humanos (Kelner, G.S. y col. (1994) Science 266,
1395-9; Kennedy, J. y col. (1995) J. Immunol.
155, 203-9), se caracteriza por la presencia de sólo
dos residuos de cisteína, presumiblemente formando un único puente
disulfuro en la proteína madura. Hasta el momento, estas son las
únicas representantes del grupo denominado quimiocinas de tipo
c.
Las quimiocinas CXC actúan principalmente sobre
los neutrófilos, en particular aquellas quimiocinas CXC que llevan
la secuencia de aminoácidos
Glu-Leu-Arg en su amino terminal.
Ejemplos de quimiocinas CXC que actúan sobre neutrófilos son la
interleucina-8 (IL-8),
GRO-\alpha, -\beta y \gamma,
NAP-2, ENA-78 y
GCP-2.
Las quimiocinas CC actúan sobre una gran variedad
de leucocitos tales como monocitos, macrófagos, eosinófilos,
basófilos, así como linfocitos B y T. Ejemplos de éstas son
MCP-1, MCP-2, MCP-3,
MIP-1\alpha, MIP-1\beta,
eotaxina, RANTES, I-309. La última lleva dos
residuos cisteinil adicionales probablemente formando un tercer
puente disulfuro en la proteína madura.
MCP-1, o la proteína
quimiotáctica de monocitos 1, se purificó originalmente de
linfocitos humanos estimulados con fitohemaglutinina (Yoshimura, T.
y col. (1989) J. Immunol. 142, 1956-62), de
una línea humana de glioma (Yoshimura, T. y col. (1989) J. Exp.
Med. 169, 1449-59) y de la línea celular
mielomonocítica humana THP-1 (Matsushima, K. y col.
(1989) J. Exp. Med. 169, 1485-90).
MCP-1 se ha denominado también MCAF, LDCF, GDCF,
HC11, TSG-8, SCYA2 y A2. El clonaje molecular del
ADNc que codifica para MCP-1 (Furutani, Y. y col.
(1989) Biochem. Biophys. Res. Comm. 169,
249-55; Rollins, B.J. y col. (1989) Mol. Cell.
Biol. 9, 4687-95; Chang, H.C. y col. (1989)
Int. Immunol. 1, 388-97) reveló un marco
abierto de lectura de 99 aminoácidos, que incluyen un péptido señal
de 23 aminoácidos.
MCP-1 es producida por los
monocitos y una variedad de células de tejidos tales como células
endoteliales, células epiteliales, fibroblastos, queratinocitos,
células sinoviales, queratinocitos, células mesangiales,
osteoblastos, células de músculo liso, así como por una multitud de
células tumorales (Baggiolini, M. y col. (1994) Adv. Immunol.
55, 97-179, y en referencias de la presente
memoria).
Su expresión se estimula con varios tipos de
agentes pro-inflamatorios, tales como
IL-1\beta, TNF-\alpha,
IFN-\gamma, lipopolisacárido y
GM-CSF. Se sugiere que MCP-1 puede
desempeñar un importante papel en la patogénesis de la
aterosclerosis. Los macrófagos que están cargados con lípidos,
denominados células espumosas, comprenden la mayoría de las células
en las lesiones ateroscleróticas y se sugiere que el reclutamiento
activo de monocitos a través del MCP-1 de estas
células y de las células activadas del endotelio tiene un papel
central en la formación de las estrías grasas y las placas
ateroscleróticas (Ylä-Herttuala, S. y col. (1991) Proc. Natl.
Acad. Sci. USA 88 (12), 5252-6; Schwartz, C.J. y
col.(1993) Am. J. Cardiol. 71(6),
9B-14B; Takeya, M. (1993) Hum. Pathol. 24
(5), 534-9).
En el líquido sinovial y en el plasma de
pacientes con artritis reumatoide, la concentración de
MCP-1 ha demostrado estar aumentada al compararse
con la de otras enfermedades artríticas y la fuente principal de
ésta son los macrófagos que expresan constitutivamente
MCP-1. En el sinovio reumatoide,
MCP-1 junto con otras citocinas inflamatorias tales
como IL-1\beta, IL-6,
IL-8 y TNF-\alpha, contribuyen a
la inmunopatogénesis de la artritis reumatoide (Koch, A.E. (1992)
J. Clin. Invest. 90, 772-79; Hosaka, S. y
col. (1994) Clin. Exp. Immunol. 97, 451-7;
Akahoshi, T. y col. (1993) Arthritis Rheum. 36,
762-71; Harigai, M. y col. (1993) Clin. Immunol.
Immunopathol. 69, 83-91).
El daño pulmonar dependiente de fagocitos
mononucleares mediado por complejos inmunes de IgA se caracteriza
por la acumulación de células mononucleares y fagocíticas y ha
demostrado ser enormemente dependiente de la expresión de
MCP-1 (Jones, M.L. y col. (1992) J. Immunol.
149, 2147-54). De manera similar,
MCP-1 parece desempeñar un importante papel en la
patogénesis de la fibrosis pulmonar idiopática y de la sarcoidosis
(Iyonaga, K. y col. (1994) Hum. Pathol. 25,
455-63; Car, B.D. y col. (1994) Am. J. Respir.
Crit. Car. Med. 149, 655-9).
En modelos animales, se ha demostrado que
MCP-1 se expresa en el cerebro tras la isquemia
local (Kim, J.S. (1995) J. Neuroimmunol. 56,
127-34; Wang, X. y col. (1995) Stroke
26,661-5) y durante la encefalomielitis autoinmune
experimental (Holkower, K. y col. (1993) J. Immunol. 150,
2525-33; Ransohoff, R.M. y col. (1993) 7,
592-600). MCP-1 puede ser una
citocina importante que tiene como diana las células mononucleares
en las enfermedades ilustradas por estos modelos animales, tales
como el derrame cerebral y la esclerosis múltiple.
En las lesiones psoriásicas,
MCP-1 parece regular la interacción entre los
queratinocitos proliferantes y los macrófagos dérmicos, y puede
localizarse por encima de la unión dérmica/epidérmica. Además de la
IL-8, que es importante para la infiltración de
neutrófilos en estos tipos de lesiones, MCP-1 puede
servir para reclutar células mononucleares (Schroeder, J.M. (1992)
Arch. Dermatol. Res. 284 Suppl 1, S22-6;
Gillitzer, R. y col. (1993) J. Invest. Dermatol. 101,
127-31).
MCP-1 parece estar implicado en
el control de la infiltración celular en muchos tumores sólidos. Se
ha demostrado una correlación entre la producción de tumores
asociada a MCP-1 y el número y la actividad
proliferativa de los macrófagos asociados al tumor (Walter, S. y
col. (1991) Pathobiology 59(4),
239-42; Mantovani, A. y col. (1994) Adv. Exp.
Med. Biol. 351, 47-54). Usando células de
sarcoma trasplantadas en ratones, se ha demostrado que las células
que expresan gran cantidad de MCP-1 crecen más
lentamente, y que esto está relacionado con el número de macrófagos
asociados al tumor (Walter, S. y col. (1991) Int. J. Cancer,
49, 431-5). De manera similar, células de carcinoma
de colon murino manipuladas genéticamente para expresar
MCP-1 exhibieron un potencial metastático reducido
(Huang, S. y col. (1994) Cancer Immunol. Immunother. 39,
231-8).
MCP-1 es un potente agente
quimiotáctico y factor de activación para los monocitos, que induce
quimiotaxis, flujo de calcio y el estallido respiratorio, mostrando
actividad en el intervalo picomolar (Yoshimura, T. & Leonard,
E.J. (1990) J. Immunol. 154, 292-97;
Zachariae, C.O.C. y col. (1990) J. Exp. Med. 171,
2177-82; Rollins, B. y col. (1991) Blood 78,
1112-6; Vaddi, K. & Newton, R.C. (1994) J.
Leukoc. Biol. 55, 756-62).
MCP-1, además, regula a la alta CD11b/CD18 y
CD11c/CD18 de forma transitoria, que es lo que probablemente
facilita la migración transendotelial durante la inflamación
(Jiang,Y. y col. (1992) J. Immunol. 148,
2423-8; Vaddi, K. & Newton, R.C. (1994) J.
Immunol. 153, 4721-32).
Recientemente, se ha hecho evidente que además de
sobre los monocitos, MCP-1 actúa sobre los
linfocitos T CD4+ y CD8+ como un agente quimiotáctico in
vitro e in vivo (Loetscher, P. y col. (1994) FASEB
J. 8, 1055-60; Carr, M.W. y col. (1994) Proc.
Natl. Acad. Sci. USA 91, 3652-6; Taub, D.D. y
col. (1995) 95, 1370-6). Las células asesinas
naturales que se estimulan con interleucina-2
también están sometidas a la quimiotaxis por MCP-1
(Maghazachi, A.A. y col. (1994) J. Immunol. 153,
4969-77; Allaven, P. y col.(1994) Eur. J.
Immunol. 24, 3233-6. Esto subraya la importancia
de esta quimiocina en el reclutamiento de las células efectoras en
las lesiones inflamatorias.
Además de los efectos sobre los monocitos y los
linfocitos T, MCP-1 es un agente quimiotáctico
moderado y un potente activador de la liberación de mediadores de la
alergia, tales como histamina y leucotrienos, de los basófilos
(Kuna, P. y col. (1992) J. Exp. Med. 175,
489-93; Bischoff, S.C. y col. (1992) J. Exp.
Med. 175, 1271-7; Bischoff, S.C. y col. (1993)
Eur. J. Immunol. 23, 761-7). En contraste con
los basófilos, otros granulocitos implicados en las lesiones
alérgicas inflamatorias, los eosinófilos, no responden a
MCP-1 (Rot, A. y col. (1992) J. Exp. Med.
176, 1489-95).
Existe un receptor de MCP-1, que
parece que se expresa de dos formas ligeramente diferentes debido al
ayuste alternativo del ARNm que codifica para la región
carboxi-terminal,
MCP-1-RA y MCP-1RB
(Charo, I.F. y col. (1994) Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 91,
2752-56).
Estos receptores (CCR2) se expresan en monocitos,
precursores de células mieloides y linfocitos T activados (Myers,
S.J. y col. 1995. J. Biol. Chem., 270,
5786-5792, Qin, S. y col. 1996. Eur. J.
Immunol. 26, 640-647). Éstos proporcionan una
forma efectiva que define las bases moleculares de las interacciones
quimiocina-receptor y la comprensión del papel de
MCP-1 en la regulación de la infiltración
monocito/macrófago en una variedad de enfermedades.
El receptor MCP-1 pertenece a las
proteínas del tipo de siete dominios transmembrana y es homólogo a
los receptores de
MIP-1\alpha/RANTES(CC-CKR1);
Neote, K. y col. (1993) Cell 72, 415-25) e
interleucina-8/GRO (Holmes, W.E. y col. (1991)
Science 253, 1278-80; Murphy, P.M. &
Tiffany, H.L. (1991) Science 253, 1280-3). La
constante de disociación de MCP-1 para el receptor
transfectado en las células HEK-293 es 0,26 nM que
coincide con los valores medidos en monocitos (Myers, S.J. y col.
(1995) J. Biol. Chem. 270, 5786-92; Van Riper, G. y
col. (1993) J. Exp. Med. 177, 851-6).
La activación del receptor
MCP-1RB en células transfectadas
HEK-293 por MCP-1 inhibe la
adenilato ciclasa a una concentración de 90 pM y moviliza el calcio
intracelular a concentraciones ligeramente más altas, aparentemente
independiente de la hidrólisis de fosfatidil inositol. Los efectos
sobre la adenilato ciclasa y la liberación de calcio intracelular se
inhiben fuertemente con la toxina pertussis, que implica la
participación de proteínas G heterotriméricas de tipo Gi en la
transducción de la señal (Meyers, S.J. y col. (1995) J. Biol.
Chem. 720, 5786-92).
La reciente descripción de los receptores de
quimiocinas como correceptores del VIH-1 y de las
quimiocinas como agentes neutralizantes de la infección por VIH,
asigna a estas moléculas un papel clave en la patogénesis del
VIH-1 (Doranz, B.J. y col. 1996, Cell 85,
1149-1158; Feng, Y y col. 1996. Science 272,
872-877; Deng, H. y col. 1996, Nature 381,
661-666; Cocchi F. Y col. 1995, Science 270,
1811-1815; Choe, H. y col. 1996, Cell 85,
1135-1148; Alkhatib, G y col. 1996. Science
272, 1955-1958). Las herramientas específicas son
esenciales para desentrañar la forma en la que las quimiocinas y el
VIH-1 interaccionan con los receptores de
quimiocinas, para determinar qué receptores son importantes en
dirigir las diferentes cepas de VIH-1 hacia
diferentes poblaciones de células mononucleares de sangre periférica
(PBMC) y en qué etapa (unión, desensibilización, transducción de
señal) tiene lugar esta interacción.
El documento WO94/11504, una solicitud de patente
presentada a nombre de Horuk, Neote y Schall, describe el
aislamiento de ADN que codifica para el receptor humano de
quimiocina CC, C-C CKR-1 y los
procedimientos para obtener dicho ADN, junto con los sistemas de
expresión para la producción recombinante de C-C
CKR-1 son útiles en las composiciones terapéuticas o
de diagnóstico. Adicionalmente, se describe un procedimiento para
identificar nuevos receptores de quimiocinas.
El documento WO95/19436, una solicitud de patente
presentada a nombre de los regentes de la Universidad de California,
describe una secuencia de ADN aislado que codifica la expresión del
receptor MCP-1. Además, se menciona que podría
identificarse un antagonista del receptor de MCP-1
mediante la expresión del dominio N-terminal del
receptor de MCP-1 y la detección de una pérdida de
unión al dominio del receptor de MCP-1. Se
reivindica una composición farmacéutica que comprende los
antagonistas del receptor de MCP-1 identificados
mediante el procedimiento descrito.
No se realiza dicha identificación ni se aíslan
antagonistas.
Hemos generado un AcMo específico para el
receptor de quimiocinas CCR2 mediante la inmunización de ratones con
péptidos sintéticos que corresponden a varios dominios
extracelulares del receptor. Describimos la generación de AcMo
capaces de reconocer específicamente al receptor CCR2 nativo. El
análisis de la expresión de CCR2 en PBMC y células de amígala, ambas
humanas, muestra su expresión en células B, que se añade además a su
expresión conocida en monocitos y células T activadas. Esto
sugeriría un papel para MCP-1 en las células B.
Estos AcMo se caracterizan por su capacidad para bloquear y/o
mimetizar la actividad de MCP-1, basándose en la
inducción de quimiotaxis y Ca^{2+} en monocitos humanos y líneas
celulares monocíticas. Usando estos AcMo, definimos regiones de CCR2
críticas para la unión al ligando y para producir una respuesta a
través de este receptor; demostramos una disociación entre estas
dos actividades que puede ayudar a desentrañar los complejos
mecanismos implicados en la señalización de las quimiocinas así como
las relaciones específicas de estos tipos de receptores. Basándose
en la capacidad de estos AcMo para activar a los receptores de
quimiocinas o para bloquear las respuestas a quimiocinas, hemos
esbozado un modelo que tiene en cuenta nuestros conocimientos
actuales acerca de las respuestas a quimiocinas.
En contraste con los anticuerpos neutralizantes
del receptor de IL-8, que se dirigen a la región
NH_{2} terminal (37), nuestros AcMo con actividad antagonista
(MCP R-04 y MCP R-05) mapean en el
tercer bucle de la región extracelular del receptor CCR2. Otro AcMo
con especificidad frente a péptidos similares (MCP
R-03), aunque se une al receptor, no bloquea la
actividad de MCP-1. La actividad neutralizante de
estos anticuerpos se limita, por lo tanto, al reconocimiento de unos
pocos residuos clave dentro de esta región, que desempeñan un papel
crítico en la unión a la quimiocina o en la modulación de la
actividad de la quimiocina.
Estudios iniciales concluyeron la importancia del
dominio NH_{2} terminal del receptor de quimiocinas para el
IL-8R, un miembro de la familia de receptores de
quimiocinas CXC. Varias explicaciones pueden considerar esta
diferencia. Primera, las características estructurales que controlan
la interacción de la quimiocina CC con su receptor pueden ser
distintas de las de las quimiocinas CXC, y la presente implicación
del tercer dominio extracelular podría reflejar esta diferencia; los
anticuerpos neutralizantes para otros receptores CC deben probarse
antes para que se pueda llegar a conclusiones formales. La segunda
es el hecho sorprendente de que el AcMo específico del amino
terminal, por ejemplo, MCP R-02, pueda mimetizar la
respuesta a la quimiocina. Esto nos permite considerar esta región
crítica en la activación agonística del receptor CCR2.
Por lo tanto, concluimos que los receptores de
quimiocinas se organizan en dos dominios funcionales distintos, que
corresponden a las regiones NH_{2} terminal y al tercer bucle
extracelular. Todos los receptores de quimiocinas conocidos tienen
un alto grado de identidad de la secuencia y muchas quimiocinas
pueden interaccionar con más de un receptor de quimiocinas. Por lo
que es probable que las interacciones
receptor-ligando impliquen regiones similares en los
distintos receptores, pero efectuando modificaciones diferentes en
el dominio NH_{2} terminal implicado en la transducción de señal.
Nuestros hallazgos podrían así extrapolarse a toda la familia de
receptores de quimiocinas y contribuir a una explicación de la
degeneración en la señalización de
quimiocina-receptor de quimiocina.
En la parte experimental describimos la
generación de AcMo que son capaces de reconocer al receptor
MCP-1 nativo y su caracterización, que incluye su
capacidad para bloquear y/o mimetizar a MCP-1 y la
inducción de Ca^{2+} en monocitos humanos y líneas celulares
monocíticas, y la quimiotaxis.
La invención se refiere a un anticuerpo,
preferiblemente un anticuerpo monoclonal, que es capaz de unirse al
receptor CCR2 de la proteína quimiotáctica de monocitos
(MCP-1) como se define en las reivindicaciones
adjuntas.
Los anticuerpos según las reivindicaciones
reconocen la región extracelular amino terminal del receptor o
reconocen secuencias presentes en el tercer bucle extracelular del
receptor y actúan como agonistas o antagonistas,
respectivamente.
El anticuerpo reivindicado puede usarse para
diagnóstico in vitro y/o in vivo y para uso
terapéutico.
Otro aspecto de la invención es el uso para la
discriminación y detección de tejidos y clases de células que
expresan el receptor de MCP-1 y para el análisis de
nuevos fármacos, por ejemplo, nuevos fármacos
anti-inflamatorios.
Por ejemplo, los anticuerpos marcados
radiactivamente capaces de unirse al receptor de
MCP-1 pueden usarse para visualizar áreas de
procesos inflamatorios activos en todo el cuerpo in vivo,
donde hay una acumulación de especies celulares que llevan
receptores de MCP-1 en sus superficies. Además,
puede analizarse in vitro la presencia de especies celulares
que expresan el receptor de MCP-1 en las poblaciones
celulares heterogéneas usando un microscopía de inmunofluorescencia
o citometría de flujo.
Otro uso para los anticuerpos que se unen a
regiones específicas del receptor, como se ejemplifica en la parte
experimental, es el análisis in vitro de sustancias de bajo
peso molecular capaces de interaccionar con el receptor de tal forma
que desplacen a estos anticuerpos. Por ejemplo, los anticuerpos que
se unen al dominio extracelular amino terminal del receptor pueden
marcarse radiactivamente, con fluorescencia, enzimáticamente o con
un marcador de afinidad, de tal forma que estos anticuerpos pueden
interaccionar con preparaciones del receptor de
MCP-1 purificado bioquímicamente inmovilizado en
pocillos de placas de plástico. El desplazamiento de estos
anticuerpos por los compuestos de bajo peso molecular podría medirse
mediante la detección del anticuerpo residual unido o mediante la
liberación del anticuerpo. De manera similar, los anticuerpos que
interaccionan con otras regiones extracelulares del receptor de
MCP-1 podrían usarse para analizar otros compuestos
que afectan a la unión de estos anticuerpos. Puede esperarse que los
compuestos de bajo peso molecular que desplazan estos anticuerpos lo
hagan uniéndose a las regiones extracelulares del receptor de
MCP-1, y así poseen propiedades agonistas o
antagonistas. Puede esperarse que los compuestos antagonistas de
bajo peso molecular posean propiedades
anti-inflamatorias potenciales cuando se administran
in vivo, y sean útiles como nuevos fármacos en el tratamiento
de situaciones inflamatorias.
La invención se refiere además a una preparación
de anticuerpo que comprende el anticuerpo reivindicado y una
preparación de una composición farmacéutica que comprende el
anticuerpo y un vehículo.
La preparación comprende el anticuerpo en una
cantidad terapéuticamente efectiva junto con un vehículo
farmacéuticamente aceptable. El vehículo se selecciona dependiendo
de la ruta de administración y se conoce por los expertos en la
técnica.
Esta preparación, posible junto con un vehículo,
puede tener un uso terapéutico potencial, especialmente cuando se
tratan enfermedades tales como la inflamación, la artritis
reumatoide, el daño pulmonar dependiente de fagocitos mononucleares,
la fibrosis pulmonar idiopática, la sarcoidosis, la isquemia focal,
la encefalomielitis autoinmune, el derrame cerebral, la esclerosis
múltiple, las lesiones psoriásicas, tumores y rechazo crónico de
trasplante mediante la administración del anticuerpo reivindicado al
paciente que lo necesita.
Como el receptor de MCP-1 está
presente en las células T CD4+ y CD8+ el anticuerpo reivindicado
puede ser activo en una destrucción específica de células mediada
por linfocitos, tales como células tumorales o células infectadas
por virus que causan, por ejemplo, SIDA.
El anticuerpo que es un agonista para el receptor
de MCP-1 podría usarse además en un anticuerpo
biespecífico en el que una parte se dirige contra una célula o una
célula infectada por VIH y la otra parte es el agonista. La
bibliografía correspondiente a anticuerpos biespecíficos se da, por
ejemplo, en AL Howell y col. J. Leuckoc. Biol. 1994, Mar
55(3); 385-91 y Haagen I.A. y col. Cancer
Immunol. Immunother. 1994, Dec 39(6);
391-6.
Son también parte de la invención un
microorganismo o una línea celular capaces de producir el anticuerpo
reivindicado.
\newpage
Son parte de la invención anticuerpos quiméricos
u otros anticuerpos recombinantes capaces de unirse al receptor de
MCP-1, así como derivados de proteínas de fusión,
derivados de conjugación o derivados fragmentados de estos
anticuerpos.
Los anticuerpos especiales
MCPR-01, MCPR-03 y
MCPR-06 como se describen más adelante son útiles
para la caracterización del receptor y MCPR-02 es un
agonista del receptor y, MCPR-04 y
MCPR-05 son antagonistas del receptor.
El AcMo MCPR-02 podría usarse
para neutralizar la infección y el AcMo MCPR-04 y
MCPR-05 podrían usarse para bloquear la
neutralización del VIH-1 inducida por
MCP-1.
Además, hemos usado estos AcMo para identificar
el receptor CCR2 en varias poblaciones leucocitarias y para
identificar la polarización de este receptor en los linfocitos.
Estos AcMo podrían usarse además para identificar cambios
conformacionales en los receptores de CCR2 después de la
activación.
Mediante el uso de estas secuencias que hemos
identificado en los dos dominios funcionales distintos los
anticuerpos pueden prepararse por una persona experta en la
técnica.
Las Figuras de 1a a 1f muestran la unión de
anticuerpos monoclonales seleccionados a células
Mono-Mac-1 usando citometría de
flujo. Cada figura muestra la unión de uno de los anticuerpos
monoclonales de MCPR-01 a MCPR-06,
respectivamente.
La Figura 2 ilustra la liberación de calcio
inducida por MCP-1 en células
Mono-Mac-1 y los efectos de la
preincubación con un anticuerpo monoclonal irrelevante (AcMo-), con
el anticuerpo monoclonal MCPR-04, con el anticuerpo
monoclonal MCPR-05 y con el anticuerpo monoclonal
MCPR-06.
Las Figuras 3a a 3f muestran la movilización de
Ca^{2+}. Las células Mono-Mac-1,
cargadas con Fluo-3 se estimularon secuencialmente
con 100 nM de un anticuerpo monoclonal irrelevante (3a) o con
MCPR-04 (3b) seguido por MCP-1 5 nM.
En otros casos las células se incubaron durante 30 min a 4ºC con la
misma concentración de un anticuerpo monoclonal irrelevante (3c) o
con MCPR-05 (3d) previamente a la estimulación con
MCP-1.
Las células cargadas se incubaron con un AcMo
irrelevante (3e) o con MCPR-01 (3f), seguidas de
MCP-1 nM.
Las Figuras 4a y 4b. Quimiotaxis. Las células
Mono-Mac-1 se preincubaron con
varias concentraciones de MCPR-05 y se situaron en
la parte superior de la cámara de los cultivos polarizados cubiertos
de células endoteliales y se añadió MCP-1 (1nM) al
pocillo inferior (4a). Las células migraron al pocillo inferior
donde se contaron y el resultado se expresó como Índice de Migración
(I.M.), que se calculó como el incremento x-veces en
la migración observada en el control negativo (Medio).4b muestra el
efecto de la dilución del AcMo MCPR-02 en la
migración de células Mono-Mac-1 bajo
las mismas condiciones.
Figuras 5a y 5b. Expresión del receptor CCR2 en
leucocitos humanos. La expresión del receptor de quimiocinas CCR2 en
PBL en reposo (-) o activadas (+) o en células derivadas de amígdala
(5a), usando doble tinción con MCPR-05 y anticuerpos
anti-T (CD4) o anti-B
(CD-19, CD-20), como se indica. El
porcentaje de células que expresan el receptor CCR2, como se define
por la unión de MCPR-05 en la citometría de flujo en
varias poblaciones linfocitarias definidas con los marcadores CD
indicados.
Figuras 6a a 6c. Efecto de la preincubación con
el AcMo antagonista MCPR-05 en el flujo de Ca^{2+}
inducido por MCP-3 (A, B) y transmigración (C) de
las células.
Las Tablas I a III ilustran la invención.
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\+#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{ BSA \+ Albúmina de suero bovino\cr CD11b y c \+ Antígenos de superficie\cr DMF \+ Dimetil formamida\cr DMSO \+ Dimetil sulfóxido\cr ECL \+ Quimioluminiscencia enzimática\cr ED1 \+ Un anticuerpo monoclonal que reconoce los monocitos de rata de Serotec.\cr ED2 \+ Un anticuerpo monoclonal que reconoce los macrófagos de rata de Serotec.\cr EIA \+ Ensayo inmunoenzimático\cr FACS \+ Citometría de flujo\cr FCS \+ Suero de ternera fetal\cr FITC \+ Isotiocianato de fluoresceína\cr GM-CSF \+ Factor estimulante de colonias de granulocitos y monocitos\cr VIH \+ Virus de la inmunodeficiencia humana\cr IFN- \gamma \+ Interferón- \gamma \cr IL-1 \beta \+ Interleucina\cr KLH \+ Hemocianina de la lapa californiana, Pierce\cr MCP-1RB \+ Receptor tipo B de la proteína quimiotáctica de monocitos-1.\cr MIP \+ Proteína inflamatoria de macrófagos\cr Mono-Mac-1 \+ Células que expresan el receptor de MCP-1, obtenidas de la Colección Alemana de\cr \+ Microorganismos y Cultivos Celulares (DSM ACC252)\cr PBL \+ Leucocitos de sangre periférica, aislados de células de sangre completa obtenidos de pacientes\cr \+ sanos y purificados mediante centrifugación en Ficoll-Paque (5,7 mg/ml)\cr PBS \+ Tampón fosfato salino\cr RPMI \+ Medio estándar\cr THP-1 \+ Células que expresan el receptor de MCP-1, ATCC TIB202\cr TNF- \alpha \+ Factor de necrosis tumoral - \alpha \cr}
Se sintetizaron dos péptidos FDYDYGAPCHKFDVK y
GLSNCESTSQLDQATQVTET que cubren las secuencias 24-38
y 273-292, respectivamente, del receptor tipo B
(MCP-1RB) de la proteína quimiotáctica de
monocitos-1 en un sintetizador de péptidos múltiple
automatizado (AMS 422, Abimed) usando el procedimiento de fase
sólida y química F-moc estándar en una base de 25
\mumol. La síntesis se llevó a cabo sobre un aminoácido protegido
N-\alpha-Fmoc, unido a una resina
de alcohol p-benziloxibenzil (resina
4-(Hidroximetil)fenoximetil-copoli(estireno-1%
divinilbenceno)(resina Wang, Novabiochem), con aminoácidos
protegidos Fmoc activados in situ con PyBOP
(benzotriazola-1-il-oxi-tris-pirridolino-fosfonio
hexafluorfosfato) en presencia de N-metil morfolina
(NMM) y 20% de piperidina/DMF para eliminar la protección. Los
grupos de la cadena lateral protegida fueron los que siguen: Asn,
Cys, Gln e His Trt); Glu y Asp (OtBu); Lys (Boc); Ser, Thr y Tyr
(tBu). Los péptidos se separaron de la resina con ácido
trifluoroacético 82,5% (TFA) y fenol 5%, H_{2}O 5%, tioanisol 5%,
EDT 3,5% como eliminadores de radicales, se precipitaron y se
lavaron con metil ter-butil éter, se extrajeron con
agua, se liofilizaron y se purificaron mediante cromatografía
líquida de alta resolución en una columna semipreparativa Nucleosil
C-18 (Tracer). La pureza y la composición de los
péptidos se confirmaron por cromatografía líquida de alta resolución
en fase inversa en una columna analítica Nucleosil 120
C-18 (Tracer) con un gradiente de acetonitrilo
5-70% que contenía TFA 1% y mediante el análisis de
aminoácidos usando un analizador de aminoácidos Beckman 6300, tras
la hidrólisis ácida en una atmósfera de N_{2} durante 18h a
110ºC.
Los péptidos MCP-1RB
(24-38) y (273-292) se acoplaron a
la hemocianina de lapa californiana (KLH, Pierce) a través de la Cys
32 y la Cys 277 respectivamente usando
sulfo-succinimidil
4-(N-maleimido-metil)ciclohexano-1-carboxilato
(Sulfo-SMCC) como agente enlazante.
KLH se activó en tampón fosfato salino pH 7,2
usando un cociente molar de Sulfo-SMCC de 6000:1
durante 60 minutos a 30ºC. La KLH activada se filtró en gel a través
de Sephadex G-25 y se mezcló con los péptidos en
fosfato de sódico 0,1 M pH 8,0 usando un cociente molar del péptido
y KLH de 3000:1 durante 18 h a temperatura ambiente. El cociente
molar final del péptido y la proteína vehículo se estimó por la
composición de aminoácidos del complejo en relación con la
composición de aminoácidos de la proteína vehículo sola.
Se inmunizaron ratones Balb/c, de dos a tres
meses de edad, con los péptidos acoplados a KLH descritos
anteriormente. Cada ratón recibió inicialmente una inyección
subcutánea de 40 \mug de péptido en 0,15 ml de tampón fosfato
salino (PBS) emulsionados en 0,15 ml del adyuvante completo de
Freund (Difco Laboratories, USA), (Día 0). Se estimuló a los ratones
subcutáneamente los días 30 y 60 con la misma cantidad de péptido,
emulsionado en el adyuvante incompleto de Freund. Antes de la
fusión, se estimuló a los ratones vía intravenosa los días -3 y -2
con 30 \mug de péptido en 0,15 ml de solución salina estéril.
El suero de los ratones inmunizados con
KLH-MCP1RB(24-38) o con
KLH-MCP1RB(2273-292) se
recogió a los 7-10 días posteriores a cada
estimulación y se determinó la presencia de anticuerpos específicos
mediante ensayo inmunoenzimático (EIA), transferencia Western o
citometría de flujo (FACS). Todos los ratones respondieron al
inmunógeno correspondiente (péptido sintético sin acoplar) en el
EIA, con títulos (dilución de antisuero que daba la mitad de la
unión máxima) de 1/2500-1/20000.
En todos los experimentos de fusión se usó la
línea celular de mieloma no secretora P3X63Ag8.653 (CRL 1580, ATCC).
Los ratones inmunizados se seleccionaron basándose en la producción
de anticuerpo, se sacrificaron y el bazo se extirpó asépticamente y
se aplastó hasta que se liberó a la mayoría de las células. Las
células se transfirieron a RPMI 1640 (Biowhittaker) que contenía 10%
de suero de ternera fetal (FCS), piruvato 1mM y glutamina 2nM (medio
completo). Previo a la fusión, los eritrocitos del bazo se lisaron
usando NH_{4}Cl (0,85% en H_{2}O) y se eliminaron mediante
centrifugación. Las células de mieloma se mezclaron con los
esplenocitos en un cociente 1:5 y las células se lavaron dos veces
mediante centrifugación en medio sin suero precalentado. Después del
último lavado, se añadió 1 ml de Polietilenglicol 4000 (PEG, Merck,
50% p/v en RPMI 1640) precalentado al sedimento de células durante 1
min con agitación suave. El PEG se diluyó mediante la adición lenta
de 20 ml de medio sin suero (1 ml/min). Entonces las células se
centrifugaron (1000 rpm, 10 min a temperatura ambiente), se
resuspendieron en medio completo, se contaron y se transfirieron a
botellas de cultivo a una concentración de 10^{6} cel/ml. Las
células se dejaron toda la noche a 37ºC en una atmósfera al 5% de
CO_{2}.
Las células fusionadas se centrifugaron y se
resuspendieron en medio completo que contenía azaserina e
hipoxantina (10^{-5} y 10^{-4} M, respectivamente, Sigma
Chemical Co.) y se cultivaron a una densidad de 10^{4}
células/pocillo en placas de cultivo de 96 pocillos sobre timocitos
como capa nutricia. En la mayoría de los casos sólo se cultivó parte
de la fusión y el resto de la fusión se congeló. Después de
12-14 días se analizó la presencia de anticuerpos
específicos en los sobrenadantes de los pocillos con los híbridos en
crecimiento (véase a continuación en el Ejemplo 4).
Los pocillos que contenían los híbridos positivos
se transfirieron a placas de 24 pocillos en medio completo que
contenía hipoxantina. Aquellos híbridos que produjeron anticuerpos
que se consideraron de interés, se estabilizaron mediante clonaje
por dilución límite, hasta que se consiguió una producción de
anticuerpo estable.
Los sobrenadantes de los híbridos que crecían en
medio libre de suero y del fluido ascítico de ratones inyectados con
pristano, se usaron como fuente de anticuerpos.
Los péptidos sintéticos MCP1RB
(24-38) y (273-292) (3 \mug/ml en
PBS, 100 ml/pocillo) se adsorbieron en placas de microvaloración
(Maxi-sorb, Nunc) durante toda la noche a 4ºC. Los
sitios de unión de la proteína se bloquearon con BSA 0,5% en PBS
(200 \mul/pocillo, 60 min a 37ºC). Tras lavar las placas con agua
destilada, los anticuerpos monoclonales se incubaron durante 60 min
a 37ºC, seguido de un anticuerpo de cabra contra inmunoglobulina de
ratón marcado con peroxidasa (GAM-PO, Tago Inc.) y
OPD (Sigma Chemical Co.). La reacción se paró con ácido sulfúrico
3N y la densidad óptica se determinó a 492 nm.
El isotipo de cada anticuerpo se determinó
mediante EIA, usando anticuerpos de cabra
anti-inmunoglobulinas de ratón purificados
adsorbidos en fase sólida (2,5 \mug/ml en PBS, 100
\mul/pocillo) durante toda la noche a 4ºC. Tras el bloqueo con
BSA, los anticuerpos monoclonales se incubaron durante 60 min a
37ºC, seguido por anticuerpos específicos de subclase
anti-Ig de ratón marcados con peroxidasa (Southern
Biotechnologies Associates, Inc. EEUU) y OPD. La reacción se paró
con ácido sulfúrico 3N y las densidades ópticas se determinaron a
492 nm.
Las células THP-1 o
Mono-Mac-1, que expresan el receptor
MCP-1, se centrifugaron (1000 rpm, 10 min, a
temperatura ambiente), se cultivaron en placas con fondo en V de 96
pocillos (250.000 cél/pocillo) y se incubaron con
50 \mul/pocillo de los diferentes sobrenadantes sin diluir (del Ejemplo 3) durante 60 min a 4ºC. Las células se lavaron dos veces con PBS que contenía BSA 2% y FCS 2% mediante centrifugación (750 rpm, 5 min a 4ºC). El anticuerpo de cabra contra ratón conjugado con FITC se añadió entonces y se incubó durante 30 min a 4ºC y se lavó dos veces. La fluorescencia unida a la célula se determinó en un citómetro de flujo Profile XL.
50 \mul/pocillo de los diferentes sobrenadantes sin diluir (del Ejemplo 3) durante 60 min a 4ºC. Las células se lavaron dos veces con PBS que contenía BSA 2% y FCS 2% mediante centrifugación (750 rpm, 5 min a 4ºC). El anticuerpo de cabra contra ratón conjugado con FITC se añadió entonces y se incubó durante 30 min a 4ºC y se lavó dos veces. La fluorescencia unida a la célula se determinó en un citómetro de flujo Profile XL.
Los cambios en las concentración de calcio
intracelular se controlaron usando la sonda fluorescente
Fluo-3 (Calbiochem). Las células
Mono-Mac-1 (2,5 x 10^{6} cél/ml)
se resuspendieron en medio completo que contenía HEPES 10 nM y se
incubaron con 2 ml/10^{6} células de Fluo-3 (250
nM en DMSO) durante 15 min a 37ºC. Después de la incubación las
células se lavaron y se resuspendieron en medio completo que
contenía CaCl_{2} 2 mM y se guardaron a 37ºC antes de que se
añadiera un intervalo de diferentes concentraciones de ligando
(quimiocina o anticuerpo monoclonal en PBS). La liberación de Calcio
en respuesta a las citocinas o al anticuerpo monoclonal se determinó
mediante FACS a 525 nm, mostrando la unión del receptor al
ligando.
Para la determinación de la actividad antagonista
del AcMo correspondiente, las células
Mono-Mac-1 se preincubaron con
varias concentraciones de anticuerpos purificados con sulfato
amónico en RPMI (medio estándar) durante 30 min a 4ºC. Tras lavarse,
las células se cargaron con Fluo-3 y la liberación
de Calcio se determinó como se describió anteriormente.
Las células
Mono-Mac-1, las células
THP-1, los PBL humanos y las células de bazo de rata
se centrifugaron y se resuspendieron en tampón Tris 50 mM, NaCl 50
mM, DTT 5 mM que contenía un cóctel de inhibidores de proteasas. Las
células se sometieron a 3-5 ciclos de congelación
(en nitrógeno líquido) y descongelación. Después, las células se
centrifugaron a 1500 rpm durante 2 min a 4ºC y se desechó el
sedimento. El sobrenadante que quedó se centrifugó a 12500 rpm a 4ºC
durante 15 min, y el sedimento se resuspendió en PBS. Los lisados se
corrieron en geles de poliacrilamida SDS de 12,5% (p/v) bajo
condiciones reductoras según el método de Laemmli UK y col.
(Nature, 227, 680-85, 1970). Los geles se
transfirieron a nitrocelulosa en un aparato de transferencia
semi-seca (Bio-Rad) durante 60 min a
250 mA en un tampón base Tris 48 mM, glicina 39 mM, metanol 20% que
contenía SDS 0,037%. Tras bloquear la membrana con leche desnatada
10% en PBS, los anticuerpos monoclonales se incubaron con agitación
durante 120 min a temperatura ambiente, seguido de un anticuerpo de
cabra anti-inmunoglobulinas de ratón marcado con
peroxidasa diluido (ICN). La transferencia se reveló usando ECL
(Amersham), siguiendo las instrucciones del fabricante.
La inmunoprecipitación se realizó como se
describe (30). Brevemente, los extractos de proteínas se
pre-clarificaron mediante incubación con 20
\mug/10^{7} células de anti-IgG de
ratón-agarosa (Sigma) durante 60 min a 4ºC y se
centrifugaron (1 min, 15.000 \chig). Los sobrenadantes se
incubaron entonces con el AcMo MCP-1R03 (5 mg/ml en
PBS) durante 90 min a 4ºC, seguido de una incubación con 20
\mug/10^{7} células de anti-IgG de
ratón-agarosa durante 60 min. Las muestras se
centrifugaron a 15.000 \chig durante 15 min a 4ºC y los sedimentos
de agarosa se lavaron dos veces con tampón de lisis y tres veces con
Tris-HCl 50 mM, pH 7,6 (15.000 \chig, 1 min a
4ºC), se resuspendieron en tampón de Laemmli y se sometieron a
electroforesis.
Los anticuerpos se purificaron mediante
precipitación con sulfato amónico 50% y/o cromatografía de afinidad
sobre Sefarosa con proteína A inmovilizada (Pharmacia, Suecia) de
fluido ascítico o de sobrenadantes de los híbridos correspondientes
cultivados en medio libre de suero (0-1% FCS en
medio Ultradoma, Gibco).
Los monocitos humanos de células
Mono-Mac-1 purificados con
Nycoprep^{TM} se situaron en el pocillo superior de las cámaras de
transmigración de 24 pocillos (Transwell, Costar, Cambridge MA), que
se habían cubierto previamente con células endoteliales de cerebro
de ratón (50.000 cél/pocillo durante 48 horas a 37ºC, CO_{2} 5% o
hasta la confluencia). Las quimiocinas o el anticuerpo agonista se
añadieron al pocillo inferior, diluidos en RPMI, BSA 0,25%. Las
placas se incubaron durante 120 min a 37ºC, CO_{2} 5%. Después,
las inertes se eliminaron de los pocillos y se contaron las células
que migraron a la cámara inferior.
Para bloquear la quimiotaxis inducida por
MCP-1, se añadieron diferentes concentraciones de
AcMo purificado en PBS al pocillo superior, simultáneamente a la
adición de quimiocinas al pocillo inferior. La quimiotaxis se siguió
como se describió anteriormente.
Dos de los sueros que reconocían a las células
Mono-Mac-1 en FACS (Tabla I) y los
ratones correspondientes se usaron posteriormente para las fusiones
celulares. Tras la fusión, se seleccionaron y estabilizaron los
híbridos que producían anticuerpos que se unían al péptido sintético
sin acoplar en EIA y dieron resultados positivos en FACS.
Se caracterizaron seis anticuerpos monoclonales
con el fin de determinar su capacidad para reconocer el receptor de
MCP-1 en lisados de células
Mono-Mac-1 mediante
inmunoprecipitación del receptor de MCP-1 asó como
en transferencia Western.
Además, se caracterizó también su capacidad para
actuar como agonistas o antagonistas de MCP-1.
Las características principales de estos
anticuerpos monoclonales se resumen en la tabla III.
Los seis AcMo reconocen células
Mono-Mac-1 y células
THP-1 en FACS (Figura1).
El eje X indica el logaritmo de la intensidad de
fluorescencia relativa y el eje Y indica el número de células
relativo.
La proteína reconocida mediante transferencia
Western corresponde a una proteína de 32 kDa en los tipos de células
t empleados (líneas celulares humanas monocíticas y monocitos
humanos).
Los análisis de transferencia Western muestran
que MCPR-02 y MCPR-05 son capaces de
unirse al receptor de MCP-1 humano y de rata
inmovilizado sobre una membrana de celulosa.
Los seis anticuerpos reconocen células
THP-1 y Mono-Mac-1
en análisis de citometría de flujo. Uno, MCPR-05
reconoce además una banda específica de 32 kDa en ambas líneas
celulares, así como en PBLs y linfocitos derivados de amígdala, en
análisis de transferencia Western, que se desplaza con el péptido
(273-292); el AcMo MCPR-03
inmunoprecipita la misma proteína de 32 kDa de las células
Mono-Mac-1. La especificidad del
anticuerpo monoclonal para CCR2 se demostró previamente mediante
transferencia Western y análisis por citometría de flujo usando
células 239, que se sabe que no expresan los receptores de
quimiocinas CCR2, transfectadas con CCR2, así como en células
Jurkat, que expresan varios receptores de quimiocinas (CCR3, CCR5 y
fusina) pero no CCR2. Mientras que ninguno de estos anticuerpos
reconoció ninguna de las líneas celulares mediante citometría de
flujo o transferencia Western, ambas son claramente positivas
después de transfectarse con el gen de CCR2.
Los análisis de citometría de flujo de PBLs
humanos indican que estos AcMo reconocen PBLs
CD-11b. Uno de los AcMo, MCPR-05,
reconoce también leucocitos de sangre periférica de rata y
esplenocitos, que se tiñen positivamente con los anticuerpos
monoclonales ED1 y ED2 (Serotec). El anticuerpo monoclonal de ratón
ED1 reconoce monocitos y macrófagos de rata, mientras que el
anticuerpo monoclonal de ratón ED2 reconoce macrófagos de rata.
Tres AcMo (MCPR-04, -05 y -06)
actúan como antagonistas del receptor, ya que bloquean el flujo de
Calcio inducido por MCP-1 en células
Mono-Mac-1 (figura 2). Los
anticuerpos con actividad antagonista reconocen el tercer bucle
extracelular del receptor (aa 273-292), mientras
que el anticuerpo agonista reconoce la región amino terminal (aa
24-38).
Un AcMo (MCPR-02) actúa como
agonista del receptor de MCP-1, basándose en
determinaciones de Calcio. Se vio un incremento rápido y transitorio
en la concentración de Ca^{2+} en las células
Mono-Mac-1 después de la
estimulación con el AcMo MCPR-02. El pretratamiento
de las células con este AcMo lleva a un marcado incremento en la
respuesta a MCP-1, mostrando que la respuesta al
calcio es desensibilizante (Figura 3f).
Quimiotaxis. Las células
Mono-Mac-1 se preincubaron con
varias concentraciones de MCPR-05 y se situaron en
la cámara superior de los cultivos polarizados cubiertos de células
endoteliales y se añadió MCP-1 (1 nM) al pocillo
inferior (Figura 4a). Las células que migraron al pocillo inferior
se contaron y se expresó como Índice de Migración (I.M.), que se
calculó como el incremento observado en la migración
x-veces respecto al control negativo (Medio).
Para la concentración de 100 a 1000 nM se pudo
observar una reducción significativa de la quimiotaxis de las
células Mono-Mac-1 para el
anticuerpo antagonista MCPR-05.
La Figura 4b muestra el efecto de la dilución del
AcMo MCPR-02 sobre la migración de células
Mono-Mac-1 bajo las mismas
condiciones.
CCR2 se expresa en monocitos, células B en reposo
y células T activadas.
Basándonos en la especificidad de estos AcMo,
hemos establecido la población de células mononucleares de sangre
periférica humana que expresan el CCR2. Las PBMC en reposo, así como
las activadas con PHA o ionóforo, se examinaron por citometría de
flujo con tinción de doble color en conjunción con marcadores
específicos para monocito/macrófagos, células B y células T. En las
células sin tratar, el AcMo reconoció el 100% de las células
CD11b^{+}, CD13^{+} y CD14^{+} en la población de
monocito/macrófagos,en función del análisis de los detectores de
tamaño y complejidad. Los anticuerpos anti-CCR2 se
unieron al 50% de todas las células CD19^{+}, mientras que se
observó mínima o ninguna unión en las células CD3^{+}. Esto indica
la expresión del receptor de quimiocinas CCR2 en monocitos y células
B, pero no en células T. Los linfocitos derivados de amígdala en
reposo y activados se usaron para confirmar estos datos, mostrando
que efectivamente todos los monocitos/macrófagos y la mayoría de las
células B del bazo y las amígdalas se marcaban con los anticuerpos
anto-CCR2 (Figuras 5a y 5b). Tras la activación, el
30-45% de las células CD4^{+} y el
20-40% de las CD8^{+} expresan el receptor CCR2,
mientras que su expresión no se altera en amígdala, ni en células B
de sangre periférica, indicando una expresión de CCR2 en células T
dependiente de activación. No se ven modificaciones en la expresión
del receptor en células B en la activación, a pesar de que su origen
sea PBL o amígdala.
Las Figuras 5a y 5b resumen las poblaciones
celulares que expresan el receptor de quimiocinas CCR2 en amígdala y
en PBL.
Las Figuras 6a a 6c muestran que
MCPR-05 bloquea el flujo de Ca^{2+} y la
transmigración de las células
Mono-Mac-1. El flujo de Calcio se
indujo usando MCP-3 3 nM. El efecto de la
preincubación con el AcMo antagonista MCPR-05 sobre
el flujo de Ca^{2+} inducido por MCP-3 se muestra
en las Figuras 6a y 6b y la transmigración de estas células se
muestra en la Figura 6c, comparadas con un AcMo control de isotipos
(hGH5). Los resultados corresponden a la media de triplicados de un
experimento representativo.
El anticuerpo antagonista MCPR-02
de Mono-Mac-1 provocó una respuesta
quimiotáctica significativa de las células
Mono-Mac-1 a las diluciones 1/2 y
1/6.
Por lo tanto, hemos obtenido AcMo que son capaces
de neutralizar la actividad de MCP-1 y AcMo que
mimetizan la actividad de MCP-1. Estas dos
propiedades están diferenciadas claramente en dos regiones del
receptor de MCP-1. El AcMo bloqueante reconoce
secuencias presentes en el tercer bucle extracelular del receptor,
que podría correlacionarse con regiones implicadas en la unión de
MCP-1, mientras que la actividad agonista mapea en
la región N-terminal del receptor y podría
correlacionarse con regiones necesarias para el funcionamiento del
receptor.
Así, hemos hallado anticuerpos capaces de unirse
al receptor de MCP-1 y entre los cuales algunos son
agonistas (MCPR-02) y algunos son antagonistas
(MCPR-04, MCPR-05 y
MCPR-06). Estos hallazgos deben considerarse muy
sorprendentes y muy interesantes y prometedores en su uso como
medicamentos.
Todos los anticuerpos descritos que reconocen el
receptor de MCP-1 pueden ser útiles con fines
diagnósticos in vivo.
Dos de los anticuerpos hallados
(MCPR-02 y MCPR-05) son capaces de
unirse al receptor de MCP-1 en inmunoprecipitación
en el contexto de un tejido biológico y además reconocen el receptor
adsorbido a una membrana artificial en experimentos de
inmunotransferencia. Los anticuerpos pueden ser útiles con fines
diagnósticos in vitro que impliquen antígenos
inmovilizados.
Describimos un panel de anticuerpos monoclonales
específicos para CCR2 humano, derivados usando péptidos sintéticos
del tercer dominio extracelular (residuos aminoacídicos
273-292) y de la región amino terminal (residuos
24-38) de este receptor. En el análisis por
citometría de flujo y transferencia Western, estos AcMo reconocen
células Jurkat y 293 transfectadas con CCR2, mientras que no
reconocen células transfectadas control. Se ha demostrado
recientemente que varios receptores de quimiocinas CC (CCR2, 3, 4 y
5) y CXC (fusina) actúan como correceptores requeridos para la
fusión celular y para la infección de células por VIH. Esto ha
aumentado el interés en esta familia de receptores como posibles
dianas para la prevención de las consecuencias de la infección por
VIH (22-27). También hemos descrito que CCR2 actúa
como un correceptor del VIH-1, mostrando que
MCP-1 exhibe una actividad neutralizante sobre el
VIH (enviado para publicar). Además, el AcMO
MCPR-02 promueve la neutralización del VIH, mientras
que el AcMo antagonista de MCP-1
MCPR-05 no neutraliza al virus, pero bloquea
efectivamente la neutralización inducida por MCP-1.
Debido a que los AcMo MCPR-04 y R-05
no bloquean la infección por VIH, estos datos indican que
VIH-1 interacciona con el dominio NH_{2} terminal
del receptor CCR2. Finalmente, ya que el AcMo
MCPR-02, así como la quimiocina
MCP-1 bloquea la infección por
VIH-1, podríamos defender que el
VIH-1 interacciona con la forma inactiva del
receptor, pero no con la forma activa.
- ^{1}
- EIA usando péptido sintético sin acoplar adsorbido a fase sólida.
- ^{2}
- Usando membranas de células mono mac-1 o THP-1
- ^{3}
- Análisis por citometría de flujo de células mono mac-1 y THP-1.
- ^{1}
- EIA usando péptido sintético sin acoplar adsorbido a fase sólida.
- ^{2}
- Análisis por citometría de flujo de células mono mac-1 y THP-1.
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Claims (15)
1. Anticuerpo que es capaz de unirse al receptor
CCR2 de la proteína quimiotáctica de monocitos 1
(MCP-1) que (a) reconoce la región extracelular
amino terminal del receptor y actúa como un agonista funcional o (b)
reconoce las secuencias de aminoácidos presentes en el tercer bucle
extracelular del receptor y actúa como un antagonista funcional del
receptor.
2. Anticuerpo según la reivindicación 1, que es
un anticuerpo monoclonal.
3. Anticuerpo según la reivindicación 1 que
reconoce secuencias presentes en el tercer bucle extracelular del
receptor y que reconoce los residuos aminoacídicos
273-292 del receptor.
4. Anticuerpo según la reivindicación 1 que
reconoce la región extracelular amino terminal del receptor y que
reconoce los residuos aminoacídicos 24-38 del
receptor.
5. Anticuerpo según cualquiera de las
reivindicaciones precedentes capaz de unirse al receptor de
MCP-1 y capaz de inmunoprecipitar el receptor
MCP-1 en el contexto de células o tejido biológico y
capaz de detectar el receptor de MCP-1 adsorbido
sobre una membrana artificial.
6. Anticuerpo según la reivindicación 5 y que
reconoce las células Mono-Mac-1 y
THP-1, que expresan el receptor de
MCP-1, en inmunofluorescencia.
7. Uso de un anticuerpo según cualquiera de las
reivindicaciones precedentes para diagnóstico in vitro.
8. Uso de un anticuerpo según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6 para la discriminación y detección in
vitro de tejidos y clases de células que expresan el receptor de
MCP-1.
9. Uso de un anticuerpo según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6 para la discriminación de nuevos fármacos,
in vitro.
10. Preparación de anticuerpo que comprenda el
anticuerpo según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6.
11. Anticuerpo según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6 para uso terapéutico.
12. Composición farmacéutica que comprenda el
anticuerpo según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6 y un
vehículo.
13. Un microorganismo o línea celular capaz de
producir el anticuerpo según cualquiera de las reivindicaciones 1 a
6.
14. Un anticuerpo según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6 para uso como un diagnóstico in
vivo.
15. Un anticuerpo según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6 para uso como un discriminante in vivo
para nuevos fármacos.
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