ES2203618T3 - Procedimiento de purificacion de una solucion acuosa de albumina bruta. - Google Patents

Procedimiento de purificacion de una solucion acuosa de albumina bruta.

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ES2203618T3 ES93911814T ES93911814T ES2203618T3 ES 2203618 T3 ES2203618 T3 ES 2203618T3 ES 93911814 T ES93911814 T ES 93911814T ES 93911814 T ES93911814 T ES 93911814T ES 2203618 T3 ES2203618 T3 ES 2203618T3
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Abstract

PROCESO DE PURIFICACION DE UNA SOLUCION ACUOSA DE ALBUMINA BRUTA EN LA QUE SE FIJAN PROTEINAS CONTAMINANTES POR CROMATOGRAFIA SOBRE UNA FASE ESTACIONARIA SOLIDA, PREFERENTEMENTE PARTICULAR, ESTANDO LA SOLUCION DE ALBUMINA PURIFICADA RECOGIDA COMO EFLUENTE, EN EL QUE SE UTILIZA COMO FASE ESTACIONARIA UNA FASE NEUTRA CARGADA CON AL MENOS UN COMPUESTO ELEGIDO EN EL GRUPO FORMADO POR LOS COMPUESTOS QUE COMPRENDE RADICALES ALKILO C3 A C8 Y LOS COMPUESTOS QUE COMPRENDE GRUPOS SULFATO.

Description

Procedimiento de purificación de una solución acuosa de albúmina bruta.
El invento se refiere a un procedimiento de purificación de una disolución acuosa de albúmina bruta.
La disolución puede ser cualquier disolución acuosa de albúmina bruta. Más particularmente una disolución de albúmina obtenida a partir del plasma sanguíneo de un mamífero tal como bovino, caballo, cerdo, oveja o conejo, y, preferiblemente, una disolución obtenida a partir del plasma humano.
Es bien conocido como separar a partir de la sangre, mediante centrifugación, por una parte, los glóbulos y, por otra parte, el plasma sanguíneo. Se sabe después de muchos años que el plasma contiene, además de la albúmina que constituye la mayor parte de las materias disueltas, toda una serie de otras moléculas, en particular proteínas, cuya extracción es particularmente interesante habida cuenta de sus utilizaciones terapéuticas. Se han propuesto por tanto, procedimientos de precipitación fraccionada mediante un agente de precipitación a pHs, fuerzas iónicas y temperaturas variables. El método mas ampliamente utilizado en el momento actual es el de Cohn (véase COHN J. y otros J. Am Chem. Soc. 72,465-474/1950) o variantes de este método en las que el agente de precipitación utilizado es etanol. Según dicho método de Cohn, el plasma se enfría a -30ºC luego se recalienta a +2ºC, de lo que resulta un crioprecipitado que contiene el factor VIII antihemofílico, el fibrinógeno y la fibronectina. El sobrenadante, llamado "sobrenadante I" se separa del precipitado anteriormente mencionado; se disminuye su pH a 5,85 \pm 0,05 y se añade etanol hasta que la concentración etanólica sea de 19% en volumen, la temperatura disminuye, a medida que se añade etanol, hasta -5ºC. Se obtiene así un precipitado, llamado "precipitado (II + III)", que contiene, en particular, gammaglobulinas y un sobrenadante, llamado "sobrenadante (II+III)" que contiene albúmina e impurezas. Se recoge el sobrenadante obtenido de ese modo y se aumenta la tasa de alcohol hasta obtener una concentración etanólica de 40% en volumen, la temperatura disminuye hasta alrededor de -8ºC. Se obtiene de ese modo un precipitado, llamado "precipitado IV", y un sobrenadante, llamado "sobrenadante IV" que contiene albúmina en un grado de pureza de alrededor de 94 a 97% en peso de proteínas. El sobrenadante IV sirve de materialprima para las disoluciones de albúmina deseadas, pero contiene una gran cantidad de etanol; según una técnica previa se puede dializar directamente el sobrenadante IV frente a suero fisiológico, pero hace falta entonces utilizar una gran cantidad de agua y el procedimiento es por tanto lento y costoso; según otra técnica, se disminuye el pH del sobrenadante IV hasta 4,80 \pm 0,05 lo que hace precipitar la albúmina: se separa este precipitado, llamado "precipitado V", y se vuelve a poner en disolución en suero fisiológico, el resto del etanol se extrae mediante diálisis.
Para completar la purificación de albúmina, se ha propuesto utilizar técnicas cromatográficas, en particular de intercambio de iones (véase en particular Curling J. M., Methods of Plasma Protein Fractionation, ed. J. Curling, Acad. Press, 77-91 (1980); Tayot J.L. y otros, Methods of Plasma Protein Fractionation, ed. J. Curling, Acad. Press, 149-160 (1980); Saint-Blancard J., Nouveaux échangeurs d'ions Trisacryl, Ann. Pharm. Fr. 39, 403-409 (1981)). El principio de estos métodos es fijar la albúmina sobre un soporte específico, en función del pH y de la fuerza iónica, y eliminar de ese modo en el efluente ciertas impurezas que se encuentran en la disolución de albúmina tratada mediante cromatografía. Desgraciadamente, aunque estas técnicas permiten mejorar de manera sensible la calidad de las disoluciones de albúmina obtenidas, por el contrario, son difíciles de poner en marcha y costosas. En efecto, las disoluciones de albúmina tratadas contienen aproximadamente 4% de diversas impurezas para extraer. Dado que se fija la albúmina sobre el relleno de la columna de cromatografía, hace falta fijar el 96% de la materia tratada y como la fijación de albúmina por gramo de relleno es limitada, del orden de tamaño de aproximadamente 10 mg, esto implica la puesta en marcha de un volumen muy grande de lecho de relleno dentro de las columnas. Dado que el relleno es muy voluminoso, la puesta en marcha exige una gran cantidad de agua para asegurar por una parte, el preequilibrado de la columna y por otra parte, el paso del producto por la columna; además, la naturaleza de los rellenos utilizados exigen generalmente, para el preequilibrado, la utilización de tampones especiales. Por otra parte, cuando la albúmina ha sido retenida en el lecho de relleno, hace falta, para recuperarla, proceder a su elución de la columna por medio de disoluciones tampón apropiadas, de modo que la albúmina se encuentre enseguida mezclada en estos tampones y que convenga volver a dializar las disoluciones de albúmina para hacer desaparecer las sales de las disoluciones tampón y obtener finalmente un producto inyectable.
Es igualmente conocido por ejemplo por el documento de patente europea EP-A 0 367 220, el separar las impurezas mediante el paso sobre una columna de DEAE-SEPHADEX o sobre una columna de SEFAROSA 4B activada mediante bromuro de cianógeno sobre la cual se fijan anticuerpos específicos, las impurezas tales como la haptoglobina y \alpha1-AGP se fijan sobre la columna y el efluente está constituido por la albúmina purificada. Este tipo de cromatografía es ventajosa ya que, en primer lugar, sólo las impurezas deben quedar retenidas sobre la columna de cromatografía, lo que permite utilizar lechos de relleno de volumen reducido; en segundo lugar, el volumen del efluente que contiene la albúmina es igualmente reducido, en efecto, es del orden del volumen de carga inicial; en tercer lugar, el preequilibrado de las columnas no necesita de ese modo mas que cantidades de líquido reducidas; en cuarto lugar, no hay que lavar los lechos de relleno de modo preventivo completo para la recuperación de la albúmina y en quinto lugar, basta con regenerar las columnas de cromatografía por un simple lavado, sin necesidad de grandes precauciones en lo que respecta a los métodos de lavado. Pero la albúmina obtenida puede formar aún, al calentarse cantidades muy importantes de polímeros.
El presente invento tiene por objeto un procedimiento de purificación en el cual se fijan las impurezas mediante cromatografía, el efluente está constituido por una disolución de albúmina que permite obtener una albúmina muy pura, que no forma prácticamente polímeros al calentarse.
El presente invento se refiere a un procedimiento de purificación de una disolución acuosa de albúmina bruta en el que se fijan proteínas contaminantes mediante cromatografía sobre una fase estacionaria
sólida, la disolución de albúmina purificada se recoge como efluente, caracterizado por el hecho de que se elige como fase estacionaria, una fase neutra o próxima a la neutralidad que contiene al menos un compuesto elegido del grupo formado por los compuestos que llevan radicales alquilo C3-C8 y los compuestos que llevan grupos sulfato.
La fase estacionaria sólida puede estar bajo la forma de fibras o de membranas; está, preferiblemente, constituida por un material en partículas neutro, es decir, generalmente considerado como neutro en cromatografía, cuyas partículas tienen una dimensión media inferior a 2 mm, preferiblemente comprendida entre 1 \mum y 2 mm. En este caso, la cromatografía se efectúa sobre al menos una columna.
La disolución acuosa bruta de albúmina es, preferiblemente, una disolución obtenida a partir de plasma sanguíneo en particular humano mediante un método conocido de tipo COHN, según el cual se fracciona dicho plasma mediante tratamientos sucesivos por modificación de la temperatura y por acción de un agente de precipitación para obtener, después de la separación al menos parcial de los factores VIII y IX y \gamma-globulinas, disoluciones de albúmina para extraer el agente de precipitación y recoger la disolución de albúmina bruta:
La disolución acuosa bruta de albúmina tiene, ventajosamente, una concentración en albúmina bruta comprendida entre 1 g y 300 g por litro y a un pH comprendido entre 6 y 8, preferiblemente entre 6,9 y 7,1.
El compuesto que lleva los radicales alquilo C3-C8, que carga la fase estacionaria, es preferiblemente, un radical butilo. El lecho de relleno de la(s) columna(s) de cromatografía está por tanto constituido en particular por el producto comercializado por la sociedad "MERCK" bajo la denominación comercial "FRACTOGEL TSK-BUTYL-650".
El compuesto que lleva los grupos sulfato que carga la fase estacionaria es, preferiblemente, un dextransulfato. El lecho de relleno de la(s) columna(s) de cromatografía está constituida en particular por el producto comercializado bajo la denominación "DEXTRAN BEADS SULFATED" por la sociedad "SIGMA".
Según el presente invento, se hace preferiblemente, experimentar a la disolución acuosa bruta de albúmina al menos dos cromatografías, siendo al menos una cromatografía en fase estacionaria que contiene un compuesto que lleva radicales alquilo C3-C8 y siendo al menos otra una cromatografía en fase estacionara que contiene un compuesto que lleva grupos sulfato.
De modo ventajoso, se somete a la disolución acuosa bruta de albúmina a una cromatografía en fase estacionaria que contiene un compuesto que lleva grupos sulfato, antes y después de una cromatografía en fase estacionaria que contiene un compuesto que lleva radicales alquilo C3-C8 o inversamente a una cromatografía en fase estacionaria que contiene un compuesto que lleva los radicales alquilo C3-C8 antes y después de una cromatografía en fase estacionaria que contiene grupos sulfato.
Se puede, ventajosamente, utilizar directamente los efluentes de una primera cromatografía para alimentar la cromatografía siguiente. La temperatura de la cromatografía es de 1 a 30ºC. El caudal de cromatografía en columnas está comprendido generalmente entre 1 y 30 cm/hora.
Si fuera necesario, se ajusta el pH de la disolución acuosa de albúmina obtenida como efluente final de cromatografía a un valor comprendido entre 6,9 y 7,1, después se la somete a una filtración esteril, para responder a las necesidades reglamentarias de la Farmacopea europea.
Antes de someter una disolución acuosa de albúmina a una cromatografía en fase estacionaria que contiene un compuesto que lleva radicales alquilo C3-C8, se equilibra(n) la (las) columna(s) correspondiente(s) con una disolución acuosa salina que tiene al menos 10 veces la fuerza iónica de la disolución acuosa de albúmina. Del mismo modo, antes de someter a una disolución acuosa de albúmina a una cromatografía en fase estacionaria que contiene un compuestos que tiene grupo sulfato, se equilibra la (las) columna(s) correspondiente(s) con una disolución salina a lo sumo isotónica con respecto a la disolución de albúmina. Preferiblemente, se utiliza para el equilibrado de las(s) columna(s) de cromatografía una disolución de cloruro de sodio o un tamón fosfato salino (PBS).
En el modo preferido de realización que conlleva dos o tres cromatografías en serie, el procedimiento según el invento no necesita ningún cambio de tampon en el transcurso de la manipulación ni ningún cambio de pH, al efectuarse las diferentes cromatografías en serie.
En el caso en que la disolución de albúmina tratada es una disolución de albúmina plasmática humana preparada mediante el procedimiento Cohn o un procedimiento derivado, la disolución de albúmina obtenida es estable, y no forma prácticamente polímeros al calentarse y no presenta más que una muy ligera coloración, que corresponde a la desaparición de las trazas de hemoglobina y del grupo hemo. Cuando se trata una disolución de albúmina bovina por ejemplo a partir del producto "FLUKA nº 05480", la albúmina obtenida es bastante más estable que la albúmina inicial. Por otro lado, es posible tratar las disoluciones de albúmina inyectable descartadas (por ejemplo por turbidez o partículas) para volverles a dar una buena estabilidad.
Para comprender mejor el objeto del invento, se describe ahora, a título de ejemplo puramente ilustrativo y no limitante, un modo de puesta en marcha, estando representadas las características del producto obtenido en el dibujo anexo.
En este dibujo:
-la figura 1 representa los perfiles de coloración después de electroforesis en acetato de celulosa para una albúmina obtenida según el invento y una albúmina de la técnica actual (según el método de Cohn);
-la figura 2 representa las curvas de absorción de densidad óptica obtenidas mediante filtración en gel para una albúmina obtenida según el invento y una albúmina de la técnica actual (según el método de Cohn);
-la figura 3 representa el espectro de densidad óptica obtenido para una albúmina obtenida según el invento y una albúmina de la técnica actual (según el método de Cohn);
-la figura 4 representa la variación de la turbidez en función del tiempo de calentamiento a 60ºC para una albúmina obtenida según el invento y una albúmina de la técnica actual (según el método de Cohn).
Se utiliza, como materia prima de partida, un plasma humano fraccionado según el procedimiento
descrito por KISTLER y NITSCHMAN (Vox Sang. 7, 414-424 (1962)); este procedimiento retoma lo esencial del método de Cohn anteriormente descrito: las fracciones de partida que contienen la albúmina son, ya sea el sobrenadante IV, ya sea el precipitado V.
Cuando se parte del sobrenadante IV, que comprende etanol 40% (en volumen) y a un pH de 5,85 \pm 0,05, se diluye a la mitad el sobrenadante con una disolución de NaCl a 7 g/l. El pH se ajusta a 7,45 \pm 0,05 con una disolución de sosa 1N. Se preconcentra la albúmina hasta 90 g/l en un casete de ultrafiltración de tipo "Omega"(Filtron) puesto en marcha en un sistema de ultrafiltración " Minisette SS Cell NPT Cell" (Filtron Tech. Corp.). Este casete tiene una superficie filtrante de 0,07 m^{2} y un umbral de retención de 30 KDa. La circulación está asegurada mediante una bomba peristáltica con una presión que varía desde 2 x 10^{5} Pa al principio de la operación hasta 5x10^{5} Pa hacia el final. Cuando se ha logrado la concentración de 90 g/l en albúmina, se añade a la disolución de albúmina una disolución de NaCl a 9 g/l y se continua dializando un volumen constante hasta obtener una tasa de etanol inferior a 0,1% en volumen, cuando el etanol ha sido eliminado de ese modo, se continua la diálisis para concentrar la disolución hasta 200 g de albúmina por litro. Se ajusta el pH a 7,10 \pm 0,05 con una disolución de ácido clorhídrico 1N.
Cuando se parte del precipitado V, se vuelve a poner dicho precipitado en suspensión en un suero fisiológico (disolución de NaCl a 9 g por litro) utilizando 4 litros de suero fisiológico por kilogramo de precipitado. Se filtra para eliminar los grumos del precipitado que no se vuelven a poner en suspensión en el curso de la agitación; se ajusta el pH a 7,45 \pm0,05 con una disolución de sosa 1 N y se concentra la disolución obtenida de ese modo hasta 90 g de proteína por litro utilizando el mismo sistema de diálisis que se ha descrito anteriormente para el sobrenadante IV. Se continúa entonces la diálisis para concentrar la disolución hasta 200 g de proteína por litro. Se ajusta el pH a 7,1 \pm 0,05 con una disolución de ácido clorhídrico 1N.
La disolución de albúmina preparada de ese modo a partir del sobrenadante IV o del precipitado V se filtra entonces estérilmente (filtro "Millex-GS" de 0,2 micras (Millipore)). Se obtiene de ese modo la disolución acuosa bruta de albúmina que se tratara enseguida mediante el procedimiento según el invento.
La disolución acuosa bruta de albúmina experimenta primero una cromatografía en fase estacionaria que contiene un compuesto que lleva grupos sulfato, dicha cromatografía es en gel polisulfatado. Esta cromatografía se realiza en una columna de 50 ml (2,5 cm x 10 cm) (Biorad), que contiene un material en partículas vendido por la sociedad "SIGMA" bajo la denominación comercial "DEXTRAN BEADS SULFATED". La columna se equilibra previamente haciendo pasar en el lecho 3 volúmenes de columna de suero fisiológico. La disolución de albúmina se envía entonces sobre esta columna y el efluente se envía directamente sobre una de las dos columnas de cromatografía en fase estacionaria que contiene radicales en C3 a C8, dicha cromatografía es hidrofóbica.
La cromatografía hidrofóbica se realiza en una columna idéntica a la precedente, cuyo lecho de cromatografía está constituido de un material en partículas vendido por la sociedad MERCK bajo la denominación comercial "FRACTOGEL TSK BUTYL-650". Antes de ser utilizada, esta columna se equilibra haciendo pasar en el lecho de cromatografía 3 volúmenes de columna de suero fisiológico. Cuando se ha equilibrado, la columna de cromatografía hidrofóbica se empalma directamente en serie sobre la salida de la columna de cromatografía en gel polisulfatado. El equilibrado de las dos columnas puede efectuarse igualmente en serie.
El desarrollo de la cromatografía va seguido de la medida de la densidad óptica a 280 nm de las fracciones a la salida de la columna. El efluente de las dos columnas de cromatografía en serie se recupera y después se concentra mediante diálisis a 200 g de albúmina por litro o se diluye, en suero fisiológico, a 40 g de albúmina por litro según el uso al que se la destine; el pH se ajusta a 7,00 \pm0,05 y el efluente se filtra estérilmente sobre filtros "Millex-GS" de 0,2 micras (Millipore). El caudal en las dos columnas montadas en serie es de 1 cm/hora; las cromatografías se efectúan a 20ºC. Al seguir el desarrollo de la cromatografía, se constata que se puede cargar hasta 400 de albúmina por litro de lecho de cromatografía en la primera o en la segunda columna sin disminuir sensiblemente la eficacia de la separación.
El lecho de la columna de cromatografía en gel polisulfatado se regenera mediante un lavado con dos volúmenes de columna de una disolución de cloruro de sodio a 2 moles por litro, seguido por un lavado con dos volúmenes de columna de una disolución de cloruro de sodio a 1 mol por litro, a pH 9. La regeneración del relleno de la columna de cromatografía hidrófoba se efectúa mediante el lavado con dos volúmenes de columna de una disolución de sosa 0,1 N.
Se ha constatado que la capacidad de fijación de los lechos de cromatografía no se afectaba por 40 ciclos sucesivos de cromatografía/regeneración.
Se han evaluado ciertas características de la albúmina obtenida mediante el procedimiento según el invento descrito a continuación y se proporcionan a continuación los resultados experimentales correspondientes. Se han comparado las propiedades de la disolución acuosa de albúmina antes del paso sobre las dos columnas de cromatografía en gel polisulfatado e hidrofóbico y después del paso sobre estas dos columnas. La disolución antes del paso es por tanto una albúmina de la técnica actual y la disolución después del paso es una albúmina cromatografiada según el invento.
Se prepara una muestra a partir de la albúmina de la técnica actual y una muestra a partir de la albúmina preparada según el invento. Se añade a estas muestras 10 mg de caprilato de sodio por gramo de albúmina y se calienta la muestra a 60ºC durante 10 horas.
1-Inmunoelectroforesis
Se ha utilizado el método de GRABAR (Grabar P. y otros, Biochem. Biophy. Acta, 17, 67-75 (1955)). El antisuero total se ha preparado inmunizando un caballo con plasma humano completo. Para la albúmina de la técnica actual, se constata la presencia de una línea de precipitación alrededor del depósito de los posos que corresponde a la presencia de "neoantígenos" constituídos por proteínas desnaturalizadas; por el contrario, esta línea de precipitación no existe para la albúmina cromatografiada según el invento, lo que demuestra que el procedimiento según el invento permite separar la albúmina de las proteínas contaminantes que constituyen las impurezas.
2-Electroforesis en membrana de acetato de celulosa
Se han ensayado disoluciones al 5% en proteínas como describe en el artículo ROELANDS J.F. y otros, Vox Sang., 26, 415-424 (1974). Las muestras han sido ensayadas bajo 220 voltios durante 35 minutos con un tampón "TRIS-VERONAL" a pH 9,2, a una fuerza iónica de 0,05. Las membranas fueron reveladas con el colorante "PONCEAU S" y la cuantificación fue hecha por densitometría. Las curvas resultantes se proporcionan en la figura 1: sobre el gráfico marcado A, se constata, al lado del pico principal P_{1} que corresponde a la albúmina, un pico secundario P_{2} que corresponde a impurezas, mientras que en la gráfica B que corresponde a la albúmina según el invento, el pico P_{1} se encuentra en posición idéntica pero el P_{2} ha desaparecido, lo que muestra la eficacia del procedimiento de purificación según el invento.
3-Filtración en gel
Se utiliza una columna de "Biorad" (1,5 x 50 cm) con un relleno de "SHEPHACRYL S 400 HR" vendido por la sociedad "PHARMACIA LKB BIOTECHNOLOGY". Esta columna se equilibra previamente con un tampón fosfato a pH 7. Se pasan enseguida 20 mg de albúmina de cada muestra sobre la columna preparada; el caudal es de 1 ml por minuto. Se monitoriza la absorción óptica a 280 nm sobre las fracciones cromatográficas (1,2 ml por fracción) por medio de un espectrofotómetro "Uvicon 810".
Las curvas experimentales obtenidas se representan en la figura 2. La curva en trazo continuo corresponde a la albúmina de la técnica actual y muestra, al lado del pico P_{3} correspondiente a la albúmina, un pico P_{4} correspondiente a impurezas contaminantes, de los polímeros. Al contrario, la curva en trazos punteados corresponde a la albúmina obtenida según el invento y, sobre esta curva, el pico P'_{3} muy próximo al P_{3}, corresponde a la albúmina pero no hay pico próximo lo que demuestra la ausencia de impurezas contaminantes.
4-Espectro de densidad óptica
Se ha estudiado el espectro de densidad óptica
entre 350 y 500 nm para una muestra de albúmina de la técnica actual y una muestra de albúmina obtenida según el invento (curvas 1 y 2 respectivamente de la figura 3). Se constata que, para la albúmina obtenida según el invento, hay una ausencia de absorción a 403 nm contrariamente a lo que pasa para la otra muestra. Se sabe que la hemoglobina absorbe a una longitud de onda lambda igual a 403 nm. Se constata por tanto que la albúmina de la técnica actual contiene trazas de hemoglobina, que no se encuentran en la albúmina obtenida según el invento; esta última tiene efectivamente un color menos intenso, aún después de calentamiento durante 10 horas a 60ºC con un aditivo de estabilización.
5-Variación de la turbidez
Se ha estudiado la variación de la turbidez en función del tiempo de calentamiento a 60ºC para la albúmina de la técnica actual y la albúmina obtenida según el invento. Las dos muestras han experimentado una adición del 1% en peso de caprilato de sodio con respecto al peso de la albúmina.
La figura 4 muestra que la muestra de albúmina de la técnica actual (curva C_{1}) tiene una turbidez, que evoluciona lo suficientemente rápido en el transcurso del tiempo, contrariamente a la muestra de albúmina según el procedimiento (curva C_{2}). Esta variación de turbidez corresponde a la formación de polímeros. Se constata por tanto que la eliminación de los contaminantes de la albúmina conlleva la reducción de la formación de los polímeros, que aparecen después del calentamiento a 60ºC durante 10 horas y durante el almacenamiento prolongado de las disoluciones de albúmina pese a la adición de los estabilizantes tales como el caprilato de sodio. El procedimiento de preparación según el invento conduce a una disolución de albúmina que forma bastantes menos polímeros, lo que es particularmente interesante en el plano
comercial.

Claims (15)

1. Procedimiento de purificación de una disolución acuosa de albúmina bruta en la que se fijan proteínas contaminantes por cromatografía en fase estacionaria sólida, recogiéndose la disolución de albúmina purificada como efluente, caracterizado por el hecho de que se elige como fase estacionaria una fase neutra o próxima a la neutralidad que contiene al menos un compuesto elegido dentro del grupo formado por los compuestos que llevan radicales alquilo C3-C8 y los compuestos que llevan grupos sulfato.
2. Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado por el hecho de que la fase estacionaria es un material en particulas, neutro, cuyas partículas tienen una dimensión media inferior a 2 mm, comprendida preferiblemente entre 1 \mum y 2 mm y que la cromatografía se efectúa empleando al menos una columna.
3. Procedimiento según una de las reivindicaciones 1 ó 2, caracterizado por el hecho de que la disolución acuosa bruta de albúmina se obtiene a partir del plasma sanguíneo humano mediante un método conocido según el cual se fracciona dicho plasma mediante tratamientos sucesivos por modificación de la temperatura y por acción de un agente de precipitación para dar como resultado, después de la separación al menos parcial de los factores VIII y IX y las \gamma-globulinas, disoluciones de albúmina que contienen el agente de precipitación, que se dializan para extraer el agente de precipitación y recoger la disolución de albúmina bruta.
4. Procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 3, caracterizado por el hecho de que la disolución de albúmina que se ha de purificar tiene una concentración de albúmina bruta comprendida entre 1 g y 300 g por litro y tiene un pH comprendido entre 6 y 8, preferiblemente entre 6,9 y 7,1.
5. Procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 4, caracterizado por el hecho de que el compuesto que lleva radicales alquilo C3-C8 es un compuesto que lleva radicales butilo.
6. Procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 4, caracterizado por el hecho de que el compuesto que lleva grupos sulfato es un dextran sulfato.
7. Procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 6, caracterizado por el hecho de que se somete la disolución acuosa de albúmina bruta al menos a dos cromatografias, siendo una al menos una cromatografía en fase estacionaria que contiene un compuesto que lleva radicales alquilo C3-C8 y siendo al menos otra una cromatografía en fase estacionaria que contiene un compuesto que lleva grupos sulfato.
8. Procedimiento según la reivindicación 7, caracterizado por el hecho de que se somete la disolución de albúmina bruta, primero a una (o varias) cromatografía(s) en fase estacionaria que contienen un compuesto que lleva grupos sulfato, y después a una (o varias) cromatografía(s) en fase estacionaria que contiene radicales alquilo C3-C8.
9. Procedimiento según una de las reivindicaciones 7 u 8, caracterizada por el hecho de que se somete la disolución acuosa bruta de albúmina a una cromatografía en fase estacionara que contiene en compuestos que llevan radicales alquilo C3-C8, antes y después de una cromatografía en fase estacionaria que contiene compuestos que llevan grupos sulfato o a la inversa.
10. Procedimiento según una de las reivindicaciones 7 a 9, caracterizado por el hecho de que se utiliza directamente el efluente de una primera cromatografía para alimentar la cromatografía siguiente.
11. Procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 10, caracterizado por el hecho de que el caudal de cromatografía está comprendido entre 1 y 30 cm/hora.
12. Procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 11, caracterizado por el hecho de que la temperatura de cromatografía está comprendida entre 1 y 30ºC.
13. Procedimiento según una de las reivindicaciones 2 a 12, caracterizado por el hecho de que antes de someter la disolución acuosa de albúmina bruta a una cromatografía en fase estacionaria que contiene compuestos que llevan radicales alquilo C3-C8, se equilibra la(s) columna(s) correspondiente(s) con una disolución acuosa salina que tiene a lo sumo 10 veces la fuerza iónica de la disolución de albúmina que se ha de tratar.
14. Procedimiento según una de las reivindicaciones 2 a 12, caracterizado por el hecho de que antes de someter la disolución acuosa de albúmina bruta a una cromatografía en fase estacionaria que contiene un compuesto que lleva grupos sulfato, se equlibra la(s) columna(s) correspondiente(s) con una disolución salina a lo sumo isotónica con respecto a la disolución de albúmina que se ha de tratar.
15. Procedimiento según una de las reivindicaciones 13 ó 14, caracterizado por el hecho de que se utiliza, para el equilibrado de la(s) columna(s), una disolución de cloruro de sodio o un tampón fosfato.
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Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6197936B1 (en) * 1998-10-21 2001-03-06 Nissho Corporation Method for producing a plastic vessel containing an albumin preparation
FR2827047B1 (fr) * 2001-07-03 2003-09-26 Apoh Technollgies Sa Procede de separation et/ou detection et/ou identification et/ou quantification de proteines prions
US20060234907A1 (en) * 2004-02-13 2006-10-19 Werner Gehringer Albumin solution and process for the production thereof
KR20120018827A (ko) 2009-02-20 2012-03-05 벤트리아 바이오사이언스 단백질의 조합을 함유하는 세포 배양 배지
MX2012000735A (es) 2009-07-30 2012-01-27 Hoffmann La Roche Separador de columna de cromatografia movible.
BR112013017573B1 (pt) 2011-02-02 2021-05-18 F. Hoffmann-La Roche Ag uso de um suporte de coluna de cromatografia, suporte de coluna de cromatografia e dispositivo para suportar coluna de cromatografia
US9663553B2 (en) 2014-01-29 2017-05-30 Hemarus Therapeutics Limited Integrated process for the production of therapeutics (human albumin, immunoglobulins, clotting factor VIII and clotting factor IX) from human plasma
US11739166B2 (en) 2020-07-02 2023-08-29 Davol Inc. Reactive polysaccharide-based hemostatic agent

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2541593B1 (fr) * 1983-02-25 1988-06-17 Rhone Poulenc Spec Chim Support mineral poreux pour la purification et le fractionnement des macromolecules biologiques
IL88326A (en) * 1987-11-18 1993-03-15 Gist Brocades Nv Purification of serum albumin
US4855055A (en) * 1988-09-28 1989-08-08 National Science Council Isolation and purification pre-S2 containing hepatitis B virus surface antigen by chemical affinity chromatography
US5094960A (en) * 1988-10-07 1992-03-10 New York Blood Center, Inc. Removal of process chemicals from labile biological mixtures by hydrophobic interaction chromatography
JP3554796B2 (ja) * 1988-10-31 2004-08-18 三菱ウェルファーマ株式会社 アルブミン製剤及びその製造方法
US5169936A (en) * 1989-04-14 1992-12-08 Biogen, Inc. Protein purification on immobilized metal affinity resins effected by elution using a weak ligand
US5250662A (en) * 1989-10-05 1993-10-05 Alpha Therapeutic Corporation Albumin purification
FR2672604B1 (fr) * 1991-02-07 1995-05-05 Pasteur Merieux Serums Vacc Procede pour isoler de l'albumine humaine a partir du surnageant iv, notamment iv-4, ou de la fraction v de cohn ou d'un surnageant ou fraction analogue.

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