DE4320315A1 - Verwendung eines Casein enthaltenden Propolis-Extraktes - Google Patents
Verwendung eines Casein enthaltenden Propolis-ExtraktesInfo
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Description
Die Erfindung betrifft die Verwendung eines Casein
enthaltenden Propolis-Extraktes gegen entzündliche
Erkrankungen im Hals-, Nasen- und Ohrenbereich.
Ausgehend von der Tatsache, daß z. B. Entzündungen der
Atemwege aufgrund einer Reizung und Verletzung der
Schleimhäute und des Epithelgewebes einer schonenden
Behandlung zur Hemmung der Entzündungsreaktion bedürfen,
besteht ein Bedarf nach einem milden, natürlichen
Arzneimittel, welches sowohl die Entzündungsreaktion hemmt
als auch einen Schutz für Schleimhäute und Epithelgewebe
bietet.
Es ist heute bekannt, daß Entzündungsreaktionen biochemisch
einen komplexen Mechanismus darstellen, an dem eine Reihe
von Substanzen beteiligt ist. Zu diesen Substanzen gehören
insbesondere die entzündungsfördernden Eicasonoide,
insbesondere das Prostaglandin E₂ (PGE₂), Prostaglandin
I₂ oder Prostacyclin.
Im Falle einer akuten Entzündung wird die Biosynthese von
Prostaglandin stark angeregt. Dies ist zurückzuführen auf
Störungen der Zellmembran, dem erhöhten Einströmen von
Ca-Ionen in die Zelle sowie insbesondere auf die Wirkung von
Entzündungsmediatoren, wie z. B. Bradykinin.
Entzündungsmediatoren lösen selbst Entzündungsvorgänge aus,
erhöhen die Gefäßpermeabilität, stimulieren sensible
Nervenenden und regen die
Prostaglandin-Biosynthese in erhöhtem Masse an. Im Falle von
Bradykinin wird Phospholipase A₂ aktiviert, was zu einer
Abspaltung von Arachidonsäure von Membranphospholipiden
führt. In der Folge wird Arachidonsäure durch Cyclooxygenase
oder Lipoxygenase sowie Folgeenzymen zu den verschiedenen
Eicosanoiden metabolisiert. Je nach Zelltyp entstehen dabei
vorzugsweise die Substanzen PGE₂, PGI₂, Thromboxan A₂
(TXA₂), Hydroxyfettsäuren, Leukotriene, etc. Von den
genannten Substanzen verstärkt insbesonder PGE₂ die
Wirkung von Bradykinin, so daß es dadurch zu einer
Intensivierung der Entzündung kommt.
Im Lungengewebe kommt es zu einer erhöhten Synthese der
Leukotriene, was zur Bronchokonstriktion und Asthma
bronchiale führt. Abhängig vom Zelltyp kann es auch zu einer
erhöhten Bildung von TXA₂ kommen, wodurch die
Thrombocyten-Aggregation angeregt wird, was wiederum zu
Verschlüssen von Arteriolen führt.
Die vorstehend genannten Vorgänge, wie sie bei Entzündungen
beobachtet werden, stellen oxidative Reaktionen dar. Diese
oxidativen Reaktionen können zum Auftreten reaktiver
Sauerstoffspezies führen, wie z. B. dem Superoxidradikalanion
(O˙₂⁻), Wasserstoffperoxid, Hydroxylradikal (OH˙)
sowie Singulettsauerstoff (lO₂). Diese reaktiven Sauerstoffspezies stehen unter Normalbedingen im Gleichgewicht mit den Antioxidantien, die sowohl enzymatischer als auch nicht-enzymatischer Natur sein können. Im Falle einer Entzündung ist dieses Gleichgewicht gestört und es kommt zu einer Anhäufung oxidativ bedingter Schäden.
sowie Singulettsauerstoff (lO₂). Diese reaktiven Sauerstoffspezies stehen unter Normalbedingen im Gleichgewicht mit den Antioxidantien, die sowohl enzymatischer als auch nicht-enzymatischer Natur sein können. Im Falle einer Entzündung ist dieses Gleichgewicht gestört und es kommt zu einer Anhäufung oxidativ bedingter Schäden.
Um den Entzündungsvorgang zu hemmen, ist es daher
erforderlich, die Elektronentransportkette zu unterbrechen
sowie die reaktiven Sauerstoffradikale abzufangen. Während
es bekannt ist, als Inhibitoren der
Prostaglandin-Biosynthese nicht-steroide entzündungshemmende
Arzneimittel, wie Indomethacin, Salicylsäure, Iboprofen,
etc., einzusetzen, soll gemäß der Erfindung ein natürliches
Substanzgemisch, nämlich Propolis, zur Verfügung gestellt
werden, um bei topischer Anwendung eine Unterbrechung der
Elektronentransportkette herbeizuführen. Im weiteren ist es
erfindungsgemäß vorgesehen, Casein als Zusatz dem
Arzneimittel zuzugeben, um Schleimhäute und Epithelgewebe zu
schützen, aber insbesondere auch um die Eisenverfügbarkeit
für die ablaufenden enzymatischen Vorgänge und für die
bakterielle Verfügbarkeit zu verändern.
Es ist bekannt, daß die Eisenionen eine wichtige Rolle bei
der Sauerstoffaktivierung spielen, wobei sie die sogenannte
"Haber-Weiss"-Reaktion katalysieren. Der Zusatz von Casein
zu dem erfindungsgemäßen Arzneimittel soll bewirken, daß
Eisenionen gebunden werden, und somit für den bakteriellen
Stoffwechsel nicht mehr zur Verfügung stehen.
Um die biochemischen Grundvorgänge, nach welchen das
erfindungsgemäße Arzneimittel einwirkt, aufzuklären, werden
nachfolgend Versuchsreihen an einem Modellsystem
beschrieben, welches als eine "Nachbildung" eines Teils der
Elektronentransportkette angesehen werden kann. Dabei
handelt es sich um das Diaphorase-NADH-System. Während für
Modellreaktionen an dem genannten Diaphorase-NADH-System
verschiedene Nachweisreaktionen angewendet werden können,
sollen die nachfolgenden Versuche am Beispiel der
KBM-Spaltung die Hemmwirkung von Propolis bzw. der
Kombination von Propolis und Eisen demonstrieren.
Außerdem ist es bevorzugt, bei dem erfindungsgemäßen
Arzneimittel einen wäßrigen Propolis-Extrakt anzuwenden,
dessen Herstellung ebenfalls beschrieben wird.
Die Konzentration von Propolis in dem genannten Extrakt kann
im Bereich von 0,1% bis 20% liegen. Ein bevorzugter
Konzentrationsbereich liegt zwischen 0,5% und 5%.
Die Caseinkonzentration in dem erfindungsgemäßen
Arzneimittel beträgt vorzugsweise 0,1 bis 10 Gew.-%. Als
Caseinpräparation kann kommerziell erhältliches Casein
eingesetzt werden, welches für die pharmazeutische Anwendung
geeignet ist.
Sofern es gewünscht ist, das erfindungsgemäße Arzneimittel
als wässrig/ethanolische Lösung anzuwenden, soll die
Alkoholkonzentration ca. 10 bis 20% nicht übersteigen. Im
allgemeinen richtet sich die Alkoholkonzentration nach der
Caseinkonzentration und soll dabei in einem Bereich liegen,
der nicht zu einer Ausfällung von Casein führt.
Dem erfindungsgemäßen Arzneimittel können je nach
Anwendungsbereich übliche Zusatzstoffe zugegeben werden, wie
Verdickungsmittel, Konservierungsmittel, Vitamine,
etherische Öle, etc.
Die von der Anmelderin durchgeführten Untersuchungen sind
sowohl in den nachfolgenden Tabellen als auch in Fig. 1 bis
6 wiedergegeben, wobei die Abbildungen betreffen:
Fig. 1 Die Hemmung der KMB-Spaltung bei 0,3 U Diaphorase
i.A. durch verschiedene Propolis-Konzentrationen.
Dabei zeigt sich, daß die 50%-Hemmwerte für
PEE bei etwa 0,7% i.A., PWEB bei etwa 0,6% i.A.,
PWEU bei etwa 0,6% i.A. liegen. Die vorstehenden
Abkürzungen werden im Text näher erläutert.
Fig. 2 Die Hemmung der KMB-Spaltung bei 2,2 U Diaphorase
i.A. durch verschiedene Propolis-Konzentrationen.
Dabei zeigt sich, daß die 50%-Hemmwerte für
PEE bei etwa 0,9% i.A., PWEB bei etwa 17% i.A.,
PWEU bei etwa 4,6% i.A. liegen.
Fig. 3 Die Aktivität von 0,3 U Diaphorase bei der
KMB-Spaltung in Abhängigkeit von der
NADH-Konzentration.
Fig. 4 Die Hemmung der KMB-Spaltung durch Propolis in
Abhängigkeit von der NADH-Konzentration.
Fig. 5 Die Hemmung der KMB-Spaltung im
Diaphorase-NADH-System durch Ethanol. Dabei zeigte
sich, daß 50% Hemmung erhalten werden bei 0,028%
Ethanol i.A.
Fig. 6 Der Einfluß von Propolis und Fe2+ mit und ohne
Casein auf die KMB-Spaltung im Diaphorase-System.
Fig. 7 Abhängigkeit der Indolessigsäure (IES)-Oxidation von
der PEE-Konzentration in Anwesenheit bzw. Abwesenheit
von Peroxidase im Ansatz.
Fig. 8 Abhängigkeit der Indolessigsäure (IES)-Oxidation von
der PWEB-Konzentration in Anwesenheit bzw.
Abwesenheit von Peroxidase im Ansatz.
Fig. 9 Abhängigkeit der Indolessigsäure (IES)-Oxidation von
der PWEU-Konzentration in Anwesenheit bzw.
Abwesenheit von Peroxidase im Ansatz.
Der wachshaltige, ethanolische Extrakt, wie er üblicherweise
kommerziell erhältlich ist, muß für seine Einsatzfähigkeit
gemäß der Erfindung zunächst in eine wäßrige Lösung
überführt werden. Als Ausgangsmaterial kann hierfür
PEE-40-Extrakt dienen, der kommerziell von Salomon,
Kopenhagen, erhalten wird.
Ein weiteres Ausgangsmaterial kann unbehandelter,
partikelhaltiger Propolis-Rohextrakt darstellen, wie er
beispielsweise als PWE-13-Rohextrakt (erhältlich durch
Salomon) bekannt ist. Auch dieser Rohextrakt wird den
nachfolgenden Aufarbeitungsschritten unterzogen. Die
Herstellung des wäßrigen Propolis-Extraktes erfolgt
zunächst durch Gefriertrocknen des Ausgangsextraktes, wobei
aufgrund des Trockengewichtes auf das Ausgangsvolumen
zurückgerechnet wird. Für den wäßrigen Extrakt ergibt sich
eine Ausbeute von 12,9 ± 0,2 mg Trockensubstanz pro 1 ml
PWE-13-Rohextrakt und analog für den ethanolischen Extrakt
3,4 ± 0,1 mg Trockensubstanz pro 1 ml PEE-40. Die
Reextraktion beider Propolis-Rückstände mit 13,0 ml
destilliertem Wasser pro 1 mg Trockengewicht erfolgt für 30
Minuten bei 37°C. Dabei wird die ursprüngliche
PWE-13-Konzentration wieder hergestellt und aus der
PEE-40-Trockensubstanz eine wäßrige Lösung mit
vergleichbarer Konzentration gewonnen. Letztere
unterscheidet sich grundlegend vom ethanolischen Extrakt und
besitzt nur noch dessen wasserlösliche Inhaltsstoffe, die
jedoch nicht mit denjenigen des PWE-13-Extraktes
übereinstimmen müssen.
Nach 30minütiger Zentrifugation bei 27.000 g werden die
unlöslichen Rückstände durch Filtrieren über eine Glasfritte
vollständig entfernt. Auf diese Weise ergeben sich drei
Propolis-Extrakte, die an der KMB-Modell-Reaktion
durchgetestet werden, nämlich
- 1. PEE: lyophilisierter, wäßriger PEE-40-Extrakt,
- 2. PWEB: behandelter, d. h. lyophilisierter und partikelfreier PWE-13-Extrakt,
- 3. PWEU: unbehandelter, partikelhaltiger PWE-13-Rohextrakt.
Propolis-Extrakte weisen einen beträchtlichen Gehalt an
mono- und diphenolischen Inhaltsstoffen auf. Das
Peroxidase-Indolessigsäure-System stellt einen empfindlichen
Nachweis für diese mono- und diphenolischen Inhaltsstoffe
dar. Dabei wird Peroxidase durch Monophenole aktiviert,
während sie durch Diphenole gehemmt wird. Enthält ein zu
untersuchendes Gemisch beide Komponenten, nämlich Mono- und
Diphenole so ergibt sich durch Addition dieser beiden Kurven
zunächst in Abhängigkeit von der Konzentration des
Propolis-Extraktes ein Anstieg der
Indolessigsäure-Oxidation, der dann durch die sich
überlagernde Hemmung der Diphenole abrupt abbricht und bis
auf den Wert absinkt, der in Abwesenheit von Peroxidase
erhalten wird. Daraufhin steigt die
Indolessigsäure-Oxidation bei zunehmender Konzentration des
Propolis-Extraktes wieder an.
Um nun Propolis-Extrakte standardisieren zu können, wurde
gefunden, daß hierfür der Wert für die 50%ige
Indolessigsäure-Oxidation im abfallenden Teil der Kurve als
Standardwert gesetzt werden kann. Auf der Basis dieses
Standardwertes sind dann die Konzentrationen von
Propolis-Extrakten, welche nicht bekannt sind, zu ermitteln.
In den Abb. 7, 8 und 9 sind als Basiskurven die Werte
eingetragen, die für unterschiedlich behandelte
Propolis-Extrakte (PEE, PWEB und PWEU) bei einer
Konzentration von 0,3 mM Indolessigsäure in Abwesenheit von
Peroxidase erhalten werden.
Außerdem ist in den Kurven 7 bis 9 die Aktivierung der
Indolessigsäure der Propolis-Extrakte PEE, PWEB und PWEU in
Gegenwart von Indolessigsäure und Peroxidase aufgezeigt.
Durch Überlagerung der Aktivierungskurve infolge von
monophenolischen Verbindungen und der Inhibierungskurve
durch die diphenolischen Verbindungen ergibt sich ein
steiler Abbruch des Kurvenverlaufes. Setzt man den Wert für
die 50%ige Indolessisäure-Oxidation in diesem abbrechenden
Kurvenverlauf als Standardwert, so erhält man unter den
gegebenen Bedingungen für:
PEE eine 50%ige Indolessigsäure-Oxidation bei etwa 2% im
Ansatz (i.A.),
PWEB einen Wert zwischen 0,25 und 0,29% i.A., und
PWEU einen Wert zwischen 0,14 und 0,16% i.A.
PWEB einen Wert zwischen 0,25 und 0,29% i.A., und
PWEU einen Wert zwischen 0,14 und 0,16% i.A.
Durch die Diaphorase wird aus Juglon ein Semichinonradikal
gebildet, dessen Autoxidation zur Entstehung von O˙₂⁻
H₂O₂ und OH˙ führt. Letzteres kann KMB spalten und
daraus Ethylen freisetzen, welches im Gaschromatographen
nachgewiesen werden kann. Diese Testreaktion erfaßt deshalb
sowohl eine mögliche Hemmwirkungen der Propolis-Extrakte auf
das Enzym und dessen Elektronenübertragung, als auch deren
Radikalfängereigenschaften.
Testansatz:
1 ml Phosphat-Puffer, pH 7,4, 100 mM (50 mM i.A.)
ad 2 ml H₂O
100 µl NADH, 2 mM (100 µM i.A.)
100 µl Juglon, 1 mM (50/UM i.A.)
100 µl Propolis, 5% i.A.
100 µl KMB, 25 mM (1,25 mM i.A.)
ad 2 ml H₂O
100 µl NADH, 2 mM (100 µM i.A.)
100 µl Juglon, 1 mM (50/UM i.A.)
100 µl Propolis, 5% i.A.
100 µl KMB, 25 mM (1,25 mM i.A.)
Start:
100 µl Diaphorase, 3 U/ml (0,3 U i.A.)
Vor der Gasentnahme wird der Reaktionsansatz für 30 Minuten
bei 37°C im Wasserbad inkubiert.
Propolis-Konzentrationsreihen mit 0,3 U Diaphorase und
100 µM NADH im Ansatz werden in Tabelle 1 gezeigt.
Die vorstehende Tabelle 1 zeigt deutlich, daß bei
zunehmender Propolis-Konzentration bei sämtlichen
Propolis-Extrakten ein deutlicher Anstieg der prozentualen
Hemmung der Diaphorase-Aktivität zu beobachten ist. Dies ist
schematisch in Fig. 1 dargestellt.
Eine Zunahme der Hemmung, wenn auch nicht für die drei
untersuchten Propolis-Extrakte in gleichem Masse, ist auch
dann zu beobachten, wenn im Testansatz jeweils 2,2 g
Diaphorase und 375 µM NADH verwendet wurden. Hierzu sind
die Ergebnisse in der nachfolgenden Tabelle 2
zusammengestellt.
Die Werte von Tabelle 2 werden in Fig. 2
schematisch wiedergegeben.
Der Einfluß der NADH-Konzentration ist den in Tabelle 3
durchgeführten Versuchsreihen zu entnehmen, wobei in Fig. 3
die Abhängigkeit der Aktivität von 0,3 U Diaphorase bei der
KMB-Spaltung in Korrelation zur NADH-Konzentration
wiedergegeben ist.
Die Hemmwerte beziehen sich auf den 100%-Wert der jeweiligen
NADH-Verdünnung ohne Propolis im Testansatz.
Fig. 4 zeigt die Hemmung der KMB-Spaltung durch Propolis in
Abhängigkeit von der NADH-Konzentration.
Der Einfluß auf die Hemmwirkung des Modellsystems durch
Alkohol wird in der nachfolgenden Versuchsreihe untersucht.
Rechnet man mit nur 99%iger Ethanol-Entfernung durch die
Lyophile, so würde sich 1% Rest-Ethanol in der
PEE-Trockensubstanz (= 0,01 ml/mg TG) befinden. Bei der
Reextraktion mit 13 ml H₂O/mg Trockengewicht würde dieser
Restgehalt auf 0,077% absinken, so daß bei einer 10%igen
PEE-Konzentration im Ansatz 0,0077% Ethanol vorhanden wären.
In diesem Konzentrationsbereich ergeben sich meßbare
Quencheffekte von 20 bis 30%. Dies bedeutet, daß maximal
20% bis 30% der Hemmwirkung von 10% PEE i.A. auf Ethanol
zurückgeführt werden können, wenn man annimmt, daß sich
etwa 1% bis 2% Rest-Ethanol im PEE-Trockenpulver befinden.
Bei weiteren PEE-Verdünnungen spielen Ethanol-Rückstände
keine Rolle mehr.
Die ungewöhnlich hohen Hemmeffekte durch den PEE-Extrakt bei
der KMB-Spaltung beruhen demnach auf Inhaltsstoffen mit
guten Radikalfängereigenschaften, die keinen Einfluß auf
die Diaphorase und die vorher beschriebenen Testsysteme
haben.
Die Hemmung der KMB-Spaltung im Diaphorase-NADH-System durch
Ethanol ist in der nachfolgenden Tabelle 4 sowie in Fig. 5
gezeigt.
Abgesehen von der Schutzwirkung des Caseins auf die
Schleimhäute und das Epithelgewebe, übt Casein auch einen
Einfluß auf den Ablauf der KMB-Spaltung im
Diaphorase-System aus. Um dies experimentell nachzuweisen,
wurde die Grundrate der Ethylenbildung aus KMB in
Abhängigkeit von der Propolis-Konzentration bestimmt. Hierzu
diente folgender Ansatz:
Phosphatpuffer pH 7,4|0,1 M i.A. | |
H₂O | ad 2 ml |
Juglon | 0,05 mM i.A. |
NADH | 0,1 mM i.A. |
Casein | 0 mg i.A. bzw. 0,2 mg i.A. |
Propolis | verschiedene Konzentrationen |
Diaphorase | 0,3 U i.A. |
KMB | 1,25 mM i.A. |
Inkubation: | 30 Minuten bei 37°C im Dunkeln. |
Ohne Zusatz der Testsubstanzen Propolis und Casein werden
4.368 ± 108 pmol Ethylen/Ansatz gebildet. Dieser Wert wird
als 100%-Wert definiert.
In Fig. 6 ist der Einfluß von Propolis und Fe2+ mit und
ohne Casein auf die KMB-Spaltung im Diaphorase-System
gezeigt. Aus Fig. 6 ergibt sich, daß Casein die
Propolis-Aktivität nicht negativ beeinflußt. Auf der
anderen Seite reagiert Casein mit niedrigen
Fe-Konzentrationen (1 µ Molar), was durch Stimulierung der
Fe-abhängigen KMB-Spaltung dokumentiert wird (Tabelle 5a und
5b). Ohne Fe-Zusätze wird jedoch die KMB-Spaltung durch
Propolis und Casein kooperativ gehemmt (Tabelle 6a und 6b).
Die vorstehenden Ergebnisse zeigen somit deutlich, daß die
Kombination von Propolis und Casein eine verstärkte
Hemmwirkung auf die KMB-Spaltung bewirkt. Es wird
angenommen, daß der Einfluß von Casein insbesondere auf
der komplexierenden Wirkung intrinsischer bzw.
proteingebundener Eisenionen besteht, was wiederum eine
veränderte Verfügbarkeit zur Folge hat.
Claims (13)
1. Verwendung eines Casein enthaltenden Propolis-Extraktes
gegen entzündliche Erkrankungen im Hals-, Nasen- und
Ohrenbereich.
2. Verwendung nach Anspruch 1, wonach Propolis und Casein
in einem Verhältnis von 10 zu 1 bis 500 zu 1 in dem
Extrakt enthalten sind.
3. Verwendung nach Anspruch 1 und 2, dadurch
gekennzeichnet, daß der Extrakt eine wäßrige bzw.
eine wäßrig-alkoholische Lösung darstellt.
4. Verwendung nach Ansprüchen 1 bis 3, dadurch
gekennzeichnet, daß dem Extrakt als weiterer Zusatz 1
mM KMB zugegeben wird.
5. Verwendung nach Ansprüchen 1 bis 4, dadurch
gekennzeichnet, daß der Casein enthaltende
Propolis-Extrakt folgende Zusammensetzung aufweist:
Propolis 1-10%
Casein 0,5-10 g
Alkohol 0-20%mit Wasser aufgefüllt auf 100 ml.
Casein 0,5-10 g
Alkohol 0-20%mit Wasser aufgefüllt auf 100 ml.
6. Verwendung nach einem oder mehreren der Ansprüche 1 bis
5, wonach der Casein enthaltende Extrakt in Form von
Ohrentropfen, Augentropfen, Nasentropfen, Halstropfen,
als Präparation zum Gurgeln, Lösung zum Einnehmen oder
als Lingualtabletten formuliert ist.
7. Verwendung nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, daß
der Extrakt als Lösung oder Spray gegen Hals- und
Nasenentzündungen formuliert ist.
8. Verwendung nach einem der vorangehenden Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet, daß der Extrakt als Kaugumi
zur Behandlung von Zahnfleischerkrankungen und Mundfäule
formuliert ist.
9. Verwendung des Extraktes zur Heilung von Erkrankungen im
Genitalbereich.
10. Verwendung nach Anspruch 9 zur Tränkung von Tampons.
11. Verfahren zur Standardisierung von Propolis-Extrakten,
dadurch gekennzeichnet, daß man mit Hilfe eines
geeigneten enzymatischen Peroxidasesystems, welches auf
die oxidiernde Wirkung monophenolischer
Propolis-Extrakt-Komponenten und die inhibierende
Wirkung diphenolischer Propolis-Extrakt-Komponenten
anspricht, im abbrechenden Teil des Kurvenverlaufes der
Peroxidase-Oxidations-Reaktion in Abhängigkeit von
Propolis-Extrakt-Verdünnungen einen Fixpunkt markiert,
diesem die entsprechende Propolis-Extrakt-Konzentration
zuordnet und letzteren Wert als Standardwert zur
Konzentrationsbestimmung unbekannter Propolis-Extrakte
verwendet.
12. Verfahren nach Anspruch 11, dadurch gekennzeichnet, daß
als Peroxidase-System das
Peroxidase-Indolessigsäure-System eingesetzt wird.
13. Verfahren nach Anspruch 11 und 12, dadurch
gekennzeichnet, daß als Fixpunkt der Wert im Abbruch
des Kurvenverlaufes festgehalten wird, bei dem sich eine
50%ige Indolessigsäure-Oxidation ergibt.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19934320315 DE4320315A1 (de) | 1993-06-18 | 1993-06-18 | Verwendung eines Casein enthaltenden Propolis-Extraktes |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19934320315 DE4320315A1 (de) | 1993-06-18 | 1993-06-18 | Verwendung eines Casein enthaltenden Propolis-Extraktes |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE4320315A1 true DE4320315A1 (de) | 1994-12-22 |
Family
ID=6490683
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE19934320315 Withdrawn DE4320315A1 (de) | 1993-06-18 | 1993-06-18 | Verwendung eines Casein enthaltenden Propolis-Extraktes |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE4320315A1 (de) |
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---|---|---|---|---|
DE19513540A1 (de) * | 1995-04-10 | 1996-10-17 | Friesland Brands Bv | Verwendung von Propolis |
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WO2018126304A1 (pt) * | 2017-01-03 | 2018-07-12 | Universidade Federal De Alagoas | Caseinatos de própolis vermelha, processo de obtenção de caseinatos de própolis vemelha, composição, uso dos caseinatos de própolis vermelha e uso da composição |
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- 1993-06-18 DE DE19934320315 patent/DE4320315A1/de not_active Withdrawn
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FR2617016A1 (fr) * | 1987-06-26 | 1988-12-30 | Nutribio Sarl | Produit destine a completer l'alimentation en micro et macro element |
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