DE4117459A1 - Burst-test - Google Patents

Burst-test

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Description

Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Bestim­ mung der intrazellulären oxidativen Vernichtung von Fremdpar­ tikeln in Säugerleukozyten sowie ein dafür geeignetes Reagenzien-Kit.
Der Säugerorganismus verfügt zur Abwehr von eindringenden Mikroorganismen sowie zur Beseitigung von alten und beschä­ digten Zellen oder Zelltrümmern über Mechanismen, die zur Auflösung dieser unerwünschten Bestandteile führen. Zunächst werden die unerwünschten Bestandteile an der Oberfläche der zur Phagozytose befähigten Leukozyten in peripherem Blut, im wesentlichen Monozyten, Makrophagen und polymorphkernige Leukozyten, gebunden. Wenn diese zur Phagozytose speziali­ sierte Zelle den gebundenen Bestandteil als "fremd" erkennt, wird der Bestandteil von der Zelle umschlossen und dann durch den sogenannten "oxidativen Burst" vernichtet.
Verminderte Burst- bzw. Phagozytoseleistungen werden u. a. bei angeborenen Defekten, wie der chronischen granulomatösen Erkrankung (CGD), der "adhesive glycoprotein deficiency", dem "hyperimmunoglobulin E-recurrent infection syndrome" (HIE), der Chediak-Higashi disease (CHD), der "specific granule deficiency" und bei der Myeloperoxidase-Defizienz gefunden. Erworbene Defekte der Funktion von neutrophilen Granulozyten sind bei Traumata, Diabetes, Nierenversagen, Alkoholismus und verschiedenen Infektionen zu beobachten (Donabedian, in: Phagocytes and Disease, herausgegeben von Klempner M.S. et al., (1989), Kluwer, Dordrecht).
Für die klinische Diagnostik ist es wichtig, bei Vorliegen einer Immunschwäche festzustellen, inwieweit die Fähigkeit der Leukozyten zum oxidativen Burst beeinträchtigt sind. Zum Nachweis des oxidativen Bursts sind bereits verschiedene Verfahren bekannt, bei denen man in isolierten Leukozyten mit Hilfe von fluoreszierenden Substanzen, die durch Oxidation aktiviert werden, die durch den oxidativen Burst resultieren­ de Fluoreszenz innerhalb der Zelle mißt.
Ryan et al. (J.Immunol.Meth. 130 (1990), 223-233) beschreiben ein Verfahren zur Stimulation von menschlichen Neutrophilen durch Immunkomplexe, um einen oxidativen Burst hervorzurufen und dessen Aktivität zu messen. Die Immunkomplexe bestehen aus Rinderserumalbumin, das kovalent mit der nicht-fluores­ zierenden Fluoreszenzfarbstoffvorstufe 2′,7′-Dichlordihydro­ fluorescein (DCFH) kovalent verknüpft und zur Bildung eines Immunkomplexes mit Anti-BSA-Immunglobulin behandelt worden sind. Der resultierende Komplex ist ein wirksamer Aktivator zur Stimulation des oxidativen Bursts, wobei das Ausmaß des oxidativen Bursts dem Auftreten der oxidierten Form des Fluo­ reszenzfarbstoffs 2′,7′-Dichlorfluoreszin (DCF) entspricht.
Emmendorffer et al. (J.Immunol.Meth. 131 (1990), 269-275) beschreiben ein Verfahren zur Bestimmung des oxidativen Bursts in humanen und murinen Phagozyten unter Verwendung der nicht fluoreszierenden reduzierten Fluoreszenzfarbstoffvor­ stufe Dihydrorhodamin 123. Als Testmaterial werden Leukozyten verwendet, die durch Zentrifugations- und Lyseschritte von Erythrozyten gereinigt wurden.
Nachteil der oben genannten Verfahren ist, daß sie nicht mit Vollblut durchgeführt wurden und daher aufwendig sind. Wei­ terhin führt die Aufreinigung der Leukozyten zu Artefakten, Störanfälligkeit und mangelnder Reproduzierbarkeit.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung war es somit, ein Verfah­ ren zu entwickeln, bei die Nachteile des Standes der Technik mindestens teilweise beseitigt sind. Insbesondere sollte ein Verfahren entwickelt werden, bei dem die Bestimmung des oxi­ dativen Bursts direkt in nicht aufgereinigten Körperflüssig­ keiten, insbesondere in Vollblut durchgeführt werden können.
Die erfindungsgemäße Aufgabe wird gelöst durch ein Verfahren zur Bestimmung der intrazellulären oxidativen Vernichtung von Fremdpartikeln in Säugerleukozyten, welches dadurch gekenn­ zeichnet ist, daß man
  • a) eine Körperflüssigkeit mit einer definierten Menge von mindestens einem Leukozyten-Stimulans versetzt, unter Schütteln 2 bis 120 Minuten bei einer Temperatur von 30 bis 40°C inkubiert,
  • b) eine definierte Menge einer Substrat-Lösung zugibt, die eine inaktive Fluoreszenzsubstrat-Vorstufe enthält, die durch Oxidation aktiviert werden kann und im aktiven Zustand vorzugsweise an einen intrazellulären Bestand­ teil bindet, und erneut unter Schütteln 2 bis 120 Minu­ ten bei einer Temperatur von 30 bis 40°C inkubiert,
  • c) ein Lysereagenz, sofern erforderlich, zugibt, das in der Probelösung vorhandene Erythrozyten lysiert und
  • d) anschließend die Fluoreszenz bestimmt.
Ein wichtiger Punkt des erfindungsgemäßen Verfahrens ist, daß der oxidative Burst in einer nicht aufgereinigten Körperflüs­ sigkeit, insbesondere in Vollblut gemessen werden kann. Die Phagozytose und der nachfolgende oxidative Burst finden di­ rekt im nicht separierten Vollblut statt und erst an­ schließend erfolgt Lysis der Erythrozyten und Fixierung der Leukozyten. Dadurch wird eine aufwendige Aufreinigung der Leukozyten vor der Oxidasereaktion vermieden, wodurch die Meßgenauigkeit erhöht wird. Zur Bestimmung des oxidativen Bursts wird vorzugsweise heparinisiertes Vollblut einge­ setzt.
Die Erfindung kann mit jeder Art von Säugerleukozyten durch­ geführt werden, sofern diese zur intrazellulären oxidativen Vernichtung von Fremdpartikeln, d. h. einem oxidativen Burst in der Lage sind. Vorzugsweise findet die Bestimmung an menschlichen Leukozyten statt.
In einer bevorzugten Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens führt man zwei parallele Bestimmungen mit unter­ schiedlichen Leukozytenstimulantien durch, von denen eines eine starke oxidative Reaktion und ein anderes eine schwache oxidative Reaktion in der getesteten Zelle hervorruft. Als starke Stimulantien kann man beispielsweise opsonisierte, d. h. mit Antikörpern und Komplement aus gepoolten Seren vor­ behandelte Bakterien oder Phorbolester (z. B. Phorbol-12-Myri­ stat-13-Acetat) verwenden. Vorzugsweise verwendet man opsoni­ sierte Bakterien, insbesondere E.coli, Staphylococcus aureus oder Pseudomonas aeruginosa, besonders bevorzugt E.coli-Bak­ terien. Die Konzentration der opsonisierten Bakterien im Test beträgt vorzugsweise etwa 106 bis 107 Bakterien pro 100 µl Körperflüssigkeit.
Ein Leukozyten-Stimulans, das eine schwache oxidative Reak­ tion in der Zelle hervorruft, ist beispielsweise ein Komple­ mentfaktor (z. B. Komplementfaktor 5A) oder ein chemotakti­ sches Peptid mit einem N-terminalen N-Formyl-Rest, insbeson­ dere ein solches, das aus der Gruppe, bestehend aus fMLP (N-Formyl-Met-Leu-Phe) oder Strukturanaloga davon, z. B. N-For­ myl-Met-Leu-Phe-Benzylamid, N-Formyl-Met-Leu-Phe-Methylester, N-Formyl-Met-Leu-Phe-Phe, N-Formyl-Met-Phe und N-Formyl-Nor-Leu-Leu-Phe, ausgewählt ist. Die Endkonzentration des chemotaktischen Peptids in der Probe ist etwa 10-5 bis 10-7 mol/l, vorzugsweise 10-6 mol/l.
Durch das starke Stimulans wird ein maximaler oxidativer Burst in den Leukozyten hervorgerufen ("high control"), wäh­ rend durch das schwache Stimulans nur eine vergleichsweise schwache Reaktion ausgelöst wird ("low control"), bei der man auch additive Effekte von weiteren Prüfsubstanzen, z. B. Im­ munmodulatoren (Tumor-Nekrosis-Faktor (TNF), Granulozyten-Ma­ krophagen-Koloniestimulierender Faktor (GM-CSF)) bestimmen kann.
Als inaktive Fluoreszenzsubstratvorstufe bzw. als fluorogenes Substrat verwendet man eine Substanz, die durch Oxidation in eine fluoreszierende Substanz umgewandelt werden kann und im aktiven Zustand an einen intrazellulären Bestandteil bindet, so daß eine Diffusion aus der Zelle möglichst gering gehalten wird. Vorzugsweise verwendet man als Fluoreszenzsubstratvor­ stufe Dihydro-rhodamin 123 (DHR), ein ungeladenes und nicht­ fluoreszierendes Derivat des Fluoreszenzfarbstoffs Rhodamin 123 (R123), der innerhalb der Zelle an Mitochondrien bindet. Die Herstellung und Verwendung von DHR als Indikator zur Bestimmung des oxidativen Bursts in neutrophilen Granulozyten wurde bereits beschrieben (Rothe et al., Naturwissenschaften 75 (1988), 354-355).
Es können jedoch auch andere Farbstoffe verwendet werden, z. B. Fluoresceinderivate wie etwa Dichlorfluorescindiacetat, welches durch intrazelluläre Esterasen zu Dichlorfluorescin umgewandelt wird und dann zu Dichlorfluorescein oxidiert wird. Die letztgenannte Farbstoff-Vorstufe muß jedoch an einen Immunkomplex gekoppelt werden, um in der Zelle gehalten zu werden und ist daher für das erfindungsgemäße Verfahren im allgemeinen weniger bevorzugt.
Alle Oxidasesubstrate sind naturgemäß sehr leicht durch Luft­ sauerstoff oxidierbar und werden daher vorzugsweise unter inertem Gas (z. B. Argon) gasdicht ampulliert. Vorzugsweise wird das erfindungsgemäße Verfahren durchgeführt, indem das Substrat auf Filterscheiben geträufelt wird, um ein reprodu­ zierbares Auflösen und Verdünnen zu ermöglichen.
Die Endkonzentration des Substrats kann z. B. etwa 0,05 bis 1 µg, vorzugsweise 0,2 µg auf 100 µl getestete Körperflüssig­ keit betragen. Die Einstellung dieser Endkonzentration er­ folgt beispielsweise mit Hilfe der Filterscheiben. Dazu werden 10 µl Dihydrorhodamin 123 Lösung (1 mg/ml in DMF) auf eine Filterscheibe gegeben. Für den Versuch erfolgt dann ein Verdünnungsschritt von 1 : 100. Von dieser verdünnten Lösung (10 µg/ml) werden wiederum 20 µl auf 100 µl Testlösung einge­ setzt. Daraus resultiert die besonders bevorzugte Substrat­ konzentration von 0,2 µg Substrat auf 100 µl Testflüssigkeit. Konzentrationen, die oberhalb von 1 µg Substrat pro 100 µl Testflüssigkeit liegen, führen (bei Verwendung von DMF als Lösungsmittel) zu hohen Konzentrationen an organischem Lö­ sungsmittel, die für Zellen toxisch sind. Zu niedere Mengen an Substrat (< 0,05 µg/100 µl Testflüssigkeit) sind wiederum aufgrund der resultierenden schwächeren Fluoreszenzintensität im Test weniger bevorzugt.
Die Inkubationszeit der Leukozyten mit dem Stimulans (Schritt (a) des erfindungsgemäßen Verfahrens) kann 2 bis 120 Minuten, vorzugsweise 5 bis 20 Minuten, besonders bevorzugt etwa 10 Minuten bei einer Temperatur von 30 bis 40°C betragen. Die Inkubationszeit der Zellen mit der Substratlösung (Schritt (b) des erfindungsgemäßen Verfahrens) kann ebenfalls 2 bis 120 Minuten, vorzugsweise 5 bis 20 Minuten, bevorzugt etwa 10 Minuten bei einer Temperatur von 30 bis 40°C betragen. Es ist aber auch möglich, das erfindungsgemäße Verfahren in mehreren parallelen Ansätzen mit verschiedenen Inkubationszeiten durchzuführen, so daß eine Zeitkinetik gemessen werden kann, die genauere Aussagen über den oxidativen Burst zuläßt.
Die Abfolge der Schritte (a) und (b) bei dem erfindungsge­ mäßen Verfahren ist vorzugsweise so, daß Schritt (b) nach Schritt (a) erfolgt. Es ist jedoch auch möglich, daß die Schritte (a) und (b) gleichzeitig durchgeführt werden.
Sind in der zu testenden Körperflüssigkeit Erythrozyten vor­ handen, so ist eine Lysebehandlung erforderlich. Dazu wird zum Reaktionsgemisch ein Lysereagenz zugegeben, das die in der Lösung vorhandenen Erythrozyten zerstört, die nachzuwei­ senden Leukozyten jedoch praktisch unversehrt läßt. Hierzu wird vorzugsweise eine isotone oder hypotone Salzlösung ver­ wendet, z. B. eine Lösung, die einen für Erythrozyten toxisch hohen Anteil an NH4Cl sowie gegebenenfalls EDTA enthält. Besonders bevorzugt zur Zerstörung der Erythrozyten sind Lösungen, die Formaldehyd und/oder Diethylenglykol enthalten. Besonders bevorzugt wird eine Lösung verwendet, die als FACS-Lysing Solution (Fa. Becton Dickinson) im Handel erhältlich ist.
Bei dem erfindungsgemäßen Verfahren ist es vorteilhaft, nach der Lysis der Erythrozyten eine DNA-Färbelösung zuzugeben, die einen fluoreszierenden DNA-Farbstoff enthält. Auf diese Weise ist es möglich, Bakterienaggregate von Leukozyten deut­ lich zu unterscheiden. Als DNA-Farbstoff kann ein hierfür bekannter und geeigneter Farbstoff verwendet werden, der eine andere Wellenlänge hat als der für die Fluoreszenzmar­ kierung der Bakterien verwendete Farbstoff. Vorzugsweise verwendet man Propidiumjodid als DNA-Farbstoff. Bei der Aus­ wertung der Fluoreszenz werden dann nur solche Zellen erfaßt, deren DNA-Gehalt mindestens der einer menschlichen Zelle ist, was Bakterienaggregate, Zellbruchstücke oder Aggregationsar­ tefakte ausschließt.
Nach der Lysis der Erythrozyten, die günstigerweise durch 20-minütige Inkubation des Reaktionsgemisches bei Raumtemperatur mit dem Lysereagenz stattfindet, wird zentrifugiert und der Überstand (mit den lysierten Erythrozyten) verworfen. An­ schließend werden die Proben mit Waschlösung gewaschen, zen­ trifugiert und der Überstand abgekippt.
Der letzte Schritt des erfindungsgemäßen Verfahrens ist die Bestimmung der Fluoreszenz. Die Auswertung kann dabei in einem Durchflußzytometer, einem Bildanalysesystem (auf Mi­ kroskopbasis) oder in einem Spektralfluorimeter (auch für Mikrotiterplatten) durchgeführt werden. Vorzugsweise erfolgt die Auswertung in einem Durchflußzytometer, das auf Einzel­ zellebene durchgeführt wird, so daß eine Unterscheidung von Subpopulation der weißen Blutzellen durch eine geeignete Wahl des Versuchsdesigns möglich ist.
Weiterhin ein Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein Reagenzien-Kit zur Bestimmung der intrazellulären oxidativen Vernichtung von Fremdpartikeln in Säugerleukozyten, das Lö­ sungen von mindestens einem Stimulans für Säugerleukozyten, eine Substratlösung mit einer inaktiven Fluoreszenzsubstrat­ vorstufe, ein Lysereagenz sowie übliche Puffer physikalisch getrennt voneinander enthält. Die "Lösungen" des Reagenzien-Kits können sowohl fertige Lösungen sein oder auch Lyophili­ sate darstellen, aus denen der Anwender die Lösungen erst herstellt.
Das Reagenzien-Kit enthält vorzugsweise Lösungen mit unter­ schiedlichen Stimulantien, von denen das eine eine starke und das andere eine schwache oxidative Reaktion in der Zelle hervorruft. Weiterhin ist bevorzugt, daß das Reagenzien-Kit zusätzlich eine Färbelösung mit einem fluoreszierenden DNA-Farbstoff enthält, der eine andere Fluoreszenzwellenlänge als die des aktivierten Fluoreszenzsubstrats besitzt. Wird als Fluoreszenzsubstrat Rhodamin 123 verwendet, so eignet sich als fluoreszierender DNA-Farbstoff beispielsweise Propidium­ jodid. Ferner können die Reagenzienlösungen des Kits auch ein Konservierungsmittel, insbesondere Thimerosal enthalten.
In einer besonders bevorzugten Ausführungsform der vorliegen­ den Erfindung enthält das Reagenzien-Kit die folgenden Lösun­ gen:
  • 1. stabilisierte opsonisierte E.coli-Suspension mit Konser­ vierungsmittel,
  • 2. Lösung des chemotaktischen Peptids N-Formyl-Met-Leu-Phe in einem organischen, flüchtigen Lösungsmittel,
  • 3. gasdichte Ampullen (unter Inertgasatmosphäre) der Fluo­ reszenzsubstratvorstufe Dihydrorhodamin 123 mit einer Substratscheibe (durch Injektion von Waschlösung direkt vor Gebrauch zu rekonstituieren, danach verwerfen),
  • 4. Salze für die Waschlösung zur Rekonstitution in jeweils 100 ml H2O bidest., vor Gebrauch 1 : 10 mit H2O bidest. verdünnen (ergibt jeweils 1 l gebrauchsfertige 1×-Wasch­ lösung), enthält Konservierungsmittel,
  • 5. Lösung des Lysereagenz zur Lysis der Erythrozyten und simultaner Fixierung der Leukozyten und
  • 6. DNA-Färbelösung zur Ausgrenzung der Bakterien bei der Leukozytenanalyse, enthält Konservierungsmittel.
Als Meßgerät wird vorzugsweise ein Durchflußzytometer (z. B. FACScan, Firma Becton Dickinson) mit 488 nm Lichtanregung (Argonlaser oder Quecksilberdampflampe) verwendet.
Der Reagenzien-Kit wird günstigerweise bei +4°C im Dunklen aufbewahrt. Die Bakterien müssen vor der Verwendung gründ­ lich gemixt oder mit einer Spritze vereinzelt werden. Die Haltbarkeit eines derartigen unbenutzten Kits beträgt min­ destens 3 Monate. Die Substratlösung und die N-Formyl-Met-Leu-Phe-Ge­ brauchslösung müssen nach der sofortigen Verwendung verworfen werden.
Die Erfindung wird weiterhin durch die folgenden Beispiele veranschaulicht.
Beispiel 1 Bestimmung der Phagozytoseaktivität von Monozyten und Granu­ lozyten in Vollblut
Frisch entnommenes, heparinisiertes Vollblut wird gemixt (Vortex) und auf dem Boden eines 5 ml-Röhrchens aliquotiert, wobei pro Ansatz 100 µl verwendet werden. Durch EDTA oder Citrat stabilisiertes Vollblut ist für das Verfahren nicht sonderlich geeignet. Die Blutproben werden vor der Zugabe der Bakterien ca. 15 Minuten im Eiswasserbad inkubiert, um auf 0°C abgekühlt zu sein.
Die vorgekühlten E.coli-Bakterien (1 × 10 pro ml) werden gut gemixt (Vortex) und 20 µl pro Ansatz zum Vollblut pipettiert ("high control", Röhrchen 1). Gegebenenfalls können 20 µl N-Formyl-Met-Leu-Phe-Gebrauchslösung als "low control" in ein weiteres Röhrchen (Röhrchen 2) gegeben werden (Endkonzentra­ tion 10-6 mol/l). 20 µl Waschlösung (phosphatgepufferte Salz­ lösung ohne Calcium2+ und Magnesium2+ mit 0,02% EDTA) werden als Negativkontrolle in ein drittes Röhrchen (Röhrchen 3) gegeben.
Alle Röhrchen werden nochmals gemixt (Vortex) und 10 Minuten lang bei 37°C im Wasserbad unter starkem Schütteln inkubiert (bei einer kinetischen Messung können auch längere Inkuba­ tionszeiten erforderlich sein).
Nach 10 Minuten erfolgt die Zugabe von 20 µl frisch angesetz­ ter Substratlösung und Mischen (Vortex) (Endkonzentration 0,2 µg Dihydrorhodamin 123 auf 100 µl Körperflüssigkeit). Alle Röhrchen werden 10 Minuten bei 37°C im Wasserbad unter star­ kem Schütteln inkubiert (bei kinetischen Messungen kann auch hier eine längere Inkubation erfolgen).
Am Ende der Inkubationszeit werden alle Proben zum Stoppen der Phagozytose dem 37°C-Wasserbad entnommen. Das Vollblut wird anschließend mit 2 ml Lyse-Lösung (1 × FACS Lysing Solu­ tion, Firma Becton Dickinson, Best. Nr. 920002) bei Raumtempe­ ratur aufgefüllt und gründlich gemischt (Vortex). Das Blut wird durch 20-minütige Inkubation bei Raumtemperatur lysiert und fixiert. Anschließend wird 5 Minuten bei 250 g und 4°C in einer Kühlzentrifuge zentrifugiert und der Überstand abge­ kippt.
Dann werden die Proben 1× mit 3 ml kalter Waschlösung gewa­ schen und 5 Minuten lang bei 250 g und 4°C in einer Kühlzen­ trifuge zentrifugiert. Der Überstand wird abgekippt.
Zur DNA-Färbung werden 100 µl DNA-Färbelösung (0,04 mg/ml Propidiumjodid (Sigma) in PBS) zugegeben, gemischt und 10 Minuten bei 0°C in einem lichtgeschützten Eiswasserbad inku­ biert. Die Messung muß innerhalb von 30 Minuten erfolgen. Das Volumen der Zellprobe kann durch Zugabe von Waschlösung er­ höht werden.
Die Auswertung erfolgt im Durchflußzytometer (FACScan) unter Verwendung von handelsüblicher Software (z. B. Consort30). Dazu werden mindestens 15 000 Leukozyten bei blaugrüner Lichtanregung (488 nm beim Argonlaser) im Durchflußcytometer aquiriert. Während der Datenaufnahme wird ein sogenanntes Live Gate im Histogramm der Rotfluoreszenz (Propidiumjodid) auf diejenigen Ereignisse gesetzt, die mindestens den DNA-Gehalt einer menschlichen Zelle besitzen (= Ausschluß von Bakterienaggregaten, die die gleichen Streulichteigenschaften wie Leukozyten besitzen). Dieses Gating spart Speicherkapazi­ tät, kann aber auch nach der Datenaufnahme erfolgen.
Ausgewertet werden der prozentuale Anteil der oxidierenden Zellen (Rekrutierung) sowie deren mittlere Fluoreszenzinten­ sität (Menge an umgesetztem Substrat, Aktivierung). Dadurch wird das entsprechende Leukozytencluster im Software-Programm im Streulichtdiagramm (lin SSC/y gegen lin FSC/x) gegatet und dessen Histogramm der Grünfluoreszenz (FL1) analysiert (SSC = Seit­ wärtsstreulicht (side scatter); FSC = Vorwärtsstreulicht (forward scatter); lin = lineare Verstärkung).
Dazu wird im Grünfluoreszenzhistogramm eine Region auf die gegenüber der Negativkontrolle positiven, grünfluoreszieren­ den Zellen gesetzt (= Anteil der oxidierenden Zellen) und nur deren mittlere Fluoreszenzintensität (Mean) abgelesen (= mittlere Aktivität pro einzelnem Leukozyt). Das Streulicht­ fenster für Granulozyten ist so zu bemessen, daß auch die im höchsten SSC-Kanal liegenden Zellen miterfaßt werden, oder es muß der SSC-Verstärkungsfaktor reduziert werden.
Erwartungswerte

Claims (22)

1. Verfahren zur Bestimmung der intrazellulären oxidativen Vernichtung von Fremdpartikeln in Säugerleukozyten, dadurch gekennzeichnet, daß man
  • a) eine Körperflüssigkeit mit einer definierten Menge von mindestens einem Leukozyten-Stimulans versetzt, unter Schütteln 2 bis 120 Minuten bei einer Tempe­ ratur von 30 bis 40°C inkubiert,
  • b) eine definierte Menge einer Substrat-Lösung zugibt, die eine inaktive Fluoreszenzsubstrat-Vorstufe enthält, die durch Oxidation aktiviert werden kann und im aktiven Zustand vorzugsweise an einen intra­ zellulären Bestandteil bindet, und erneut unter Schütteln 2 bis 120 Minuten bei einer Temperatur von 30 bis 40°C inkubiert,
  • c) ein Lysereagenz, sofern erforderlich, zugibt, das in der Probelösung vorhandene Erythrozyten ly­ siert und
  • d) anschließend die Fluoreszenz bestimmt.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man zwei parallele Bestimmungen mit unterschiedli­ chen Leukozyten-Stimulantien durchführt, von denen das eine starke und das andere eine schwache oxidative Reak­ tion in der Zelle hervorruft.
3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß man als starkes Leukozyten-Stimulans opsonisierte Bakterien oder Phorbolester verwendet.
4. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß man als opsonisierte Bakterien E.coli, Staphylococ­ cus aureus oder Pseudomonas aeruginosa verwendet.
5. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß man als schwaches Leukozyten-Stimulans ein chemotak­ tisches Peptid oder Peptidderivat mit N-terminalem Formyl-Met-Rest, insbesondere ein solches, ausgewählt aus der Gruppe, bestehend aus N-Formyl-Met-Leu-Phe und seiner Strukturanaloga, verwendet.
6. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß man die Bestimmung der Leukozytenaktivität in Gegen­ wart von mindestens einer weiteren Prüfsubstanz durch­ führt.
7. Verfahren nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, daß man als weitere Prüfsubstanz einen körpereigenen Immunmodulator, insbesondere Tumornekrosis-Faktor, Granulozyten-Kolonienstimulierenden Faktor (G-CSF) oder Granulozyten-Makrophagen-Kolonienstimulierenden Faktor (GM-CSF) verwendet.
8. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß man als inaktive Fluoreszenzsubstrat-Vorstufe Di­ hydrorhodamin 123 verwendet.
9. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß man die Substratlösung auf eine Filterscheibe gibt, um eine reproduzierbare Auflösung und Verdünnung zu ermöglichen.
10. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß man als Körperflüssigkeit Vollblut verwendet.
11. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die Inkubationszeit in Schritt (a) 5 bis 20 Minuten beträgt.
12. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die Inkubationszeit in Schritt (b) 5 bis 20 Minuten beträgt.
13. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß man ein Lysereagenz verwendet, das Formaldehyd oder/und Diethylenglykol enthält.
14. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß man ein Lysereagenz verwendet, das Ammoniumchlorid und EDTA enthält.
15. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß man nach Schritt (c) einen fluoreszierenden DNA-Farbstoff zugibt.
16. Verfahren nach Anspruch 15, dadurch gekennzeichnet, daß man als fluoreszierenden DNA-Farbstoff Propidiumjo­ did verwendet.
17. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß man Reagenzlösungen verwendet, die ein Konservie­ rungsmittel, insbesondere Thimerosal enthalten.
18. Reagenzien-Kit zur Bestimmung der intrazellulären oxida­ tiven Vernichtung von Fremdpartikeln in Säugerleukozy­ ten, dadurch gekennzeichnet, daß es Lösungen von mindestens einem Stimulans für Säu­ gerleukozyten, eine Substratlösung mit einer inaktiven Fluoreszenzsubstrat-Vorstufe, ein Lysereagenz sowie übliche Puffer physikalisch getrennt voneinander ent­ hält.
19. Reagenzien-Kit nach Anspruch 18, dadurch gekennzeichnet, daß sich die Substratlösung der inaktiven Fluoreszenz­ substrat-Vorstufe unter einer Inertgasatmosphäre befin­ det.
20. Reagenzien-Kit nach Anspruch 18 oder 19, dadurch gekennzeichnet, daß es Lösungen mit unterschiedlichen Stimulantien ent­ hält, von denen das eine starke und das andere eine schwache oxidative Reaktion in der Zelle hervorruft.
21. Reagenzien-Kit nach einem der Ansprüche 18 bis 20, dadurch gekennzeichnet, daß es weiterhin eine DNA-Färbelösung enthält.
22. Reagenzien-Kit nach einem der Ansprüche 18 bis 21, dadurch gekennzeichnet, daß die Reagenzienlösungen ein Konservierungsmittel, insbesondere Thimerosal enthalten.
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