DE2653537A1 - Verfahren und mittel zur bestimmung von hydroperoxiden - Google Patents
Verfahren und mittel zur bestimmung von hydroperoxidenInfo
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Description
Merck Patent Gesellschaft 23. liovember 1976
mit beschränkter Haftung
Darmstadt
Verfahren und Mittel zur Bestimmung von Hydroperoxiden
Die Erfindung betrifft ein Verfahren und ein Mittel zur
photometrischen Bestimmung von Hydroperoxiden bzw. von Substanzen, die unter Freisetzung von Hydroperoxiden
reagieren, in eiv;eißhaltigen Flüssigkeiten. Die Bestimmung
von Hydroperoxide^ insbesondere von Wasserstoffperoxid, spielt eine wichtige Solle in der klinischen
Chemie, Viele ensymatische Substratbestimmungen werden
ra'it Oxidasen durchgeführt, z.B. Cholesterin mit Cholesterinoxidase,
Glucose mit Glucoaeoxiäase, Aminosäuren mit Aminosäureoxidase, Harnsäure mit Uricase usv/. Das
bei diesen Reaktionen in äquimolaren Mengen entstehende Wasserstoffperoxid kann in bekannter Weise elektrochemisch
oder photometrisch bestimmt werden. Dabei sind die elektrochemischen Verfahren wegen der Notwendigkeit
spezieller Apparaturen und deren Anfälligkeit nachteilig. Günstiger und verbreiteter sind die photometrischen
Bestimmungsmethoden.
809822/015
Eine der bekanntesten photometrischen Bestimmungsmethoden
beruht auf der Oxydation bestimmter Chromogene durch Wasserstoffperoxid
zu einem Farbstoff mit Hilfe eines Katalysators. Im Zusammenhang mit G-lucosebestimmungen sind
als Katalysatoren Peroxidase sowie die Systeme Jodid/ Molybdat (DAS 1 284 124), Joäid/Vanadat (DOS 1 598 828),
und Jodid/Wolframat (DOS 2 163 421) bekannt.
Aus Anal. Chem. 3±, 452 (1962) ist ferner eine Glucosebestimmung
bekannt, bei der ohne Verwendung eines Chromogens in Gegenwart des Katalysatorsystems Jodid/Molybdat
das entstehende Trijodid direkt photometrisch gemessen
wird. Diese Methode hat den Vorteil, daß der hohe Extinktionskoeffizient
des Irijodids (ca. 20 cm /uM) bei
der spektrophotometrischen Bestimmung ausgenutzt werden kann, wodurch eine hohe Präzision erreicht wird. G-Ieichzeitig
v/erden die durch farbige Begleitstoffe in der Probe verursachten Störungen niedrig gehalten. Außerdem
ist die Reagenzlösung sehr stabil und kann deshalb bei Raumtemperatur aufbewahrt werden. Die Verwendung von
cancerogenen und cocancerogenen Chromogenen kann vermieden werden.
Der entscheidende !fachteil dieser Methoden besteht darin,
daß die zu untersuchende Probe der Körperflüssigkeit vorher enteiweißt werden muß, weil sonst die Färbung
des Trijodids nicht beständig ist. Die zeitraubende Enteiweißung erschwert jedoch nicht nur die Bestiramungsmethode,
sondern sie verhindert die Anwendung dieser an sich günstigen Methode in den Fällen völlig, in denen
keine Enteiweißung möglich ist, wie z.B. bei der Oholesterinbestimmung in Körperflüssigkeiten, weil
Cholesterin an Protein gebunden vorliegt.
809822/01B4
Der Erfindung lag dalier die Aufgabe zugrunde, ein Verfahren
und ein Mittel zur photometrischen Bestimmung von Hydroperoxiden in eiweißhaltigen Flussigkeiten auf
der Basis einer Trijodidmessung zur Verfügung zu stellen,
das ohne vorausgehende Enteiweißung exakte Analysenergebnisse
liefert.
Erfindungsgemäß wurde die Aufgabe dadurch gelöst, daß das Katalysatorsystem in einer gegenüber den bekannten
Konzentrationen um Größenordnungen niedrigeren Konzentration zusammen mit einem Stabilisator verwendet -wird.
Gegenstand der Erfindung ist somit ein Verfahren zur photoraetrischen Bestimmung von Hydroperoxiden bzw. von
Substanzen, die unter. Freisetzung von Hydroperoxiden reagieren, in eiweißhaltigen Flüssigkeiten mit Hilfe
eines wasserlöslichen Jodids, eines Redoxkatalysators
und eines Stabilisators, das dadurch gekennzeichnet
ist, daß der Redoxkatalysator in einer Konzentration
von 5 ~ 500 JiM. zusammen mit 5. - 100 mg/1 mindestens
eines Stabilisators verwendet wird.
Ferner umfaßt der Gegenstand der Erfindung ein Mittel
zur photometrischen Bestimmung von Hydroperoxiden bzw. von Substanzen, die unter Freisetzung von Hydroperoxiden
reagieren, in eiweißhaltigen Flüssigkeiten, bestehend aus einem wasserlöslichen O'odid, 5 - 500 uM
eines Redoxkatalysators und 5 - 100 mg/1 mindestens eines Stabilisators.
809822/0 1 5
Überraschenderweise wird durch die niedrige Katalysatorkonzentration
und durch den Zusatz mindestens eines Stabilisators eine stabile Färbung des Trijodids in
der Probelösung auch in nicht enteiweißten Körperflüssigkeiten erreicht. Dieser Effekt tritt erstaunlicherweise
nur dann ein, wenn sowohl der Katalysator als auch der Stabilisator im angegebenen Konzentrationsbereich
kombiniert verwendet werden.
Als Redoxkatalysator werden nach der Erfindung die Fatrium-, Kalium- oder Ammoniumsalze von Molybdänsäure,
Wolframsäure oder Vanadinsäure verwendet, vorzugsweise Ammoniummolybdat. Die Konzentrationen liegen im Bereich
von 5 - 500 uM, wobei Ammoniummolybdat vorzugsweise in
einem Eonzentrationsbereich von 5~5O pM verwendet wird,
insbesondere in einer Konzentration von 10 uM. Die bevorzugten Bereiche bei Verwendung γοη Hatriumwolframat
liegen bei 50 - 200 \M und von !Tatriuravanadat bei
50 - 500 pH. Im Falle des bevorzugten Ammoniummolybdats
z.B. ist die Konzentration gegenüber dem Stand der !Technik (1-10 mM) um Größenordnungen niedriger.
Geeignete Stabilisatoren nach der Erfindung sind Hatriumazid,
Hexamethylentetramin, Kaliurafluorid, Kaliumthiocyanat,
Ä'thylendiamintetraesaigsäure und/oder
Nitrilotriessigsäure, vorzugsweise Natriuraazid . J3s
kann entweder einer der genannten Stabilisatoren oder auch eine Mischung mehrerer Stabilisatoren eingesetzt
werden. Die Konzentration sollte im Bereich von 5 bis 100 mg/1 liegen. Die bevorzugte Konzentration beträgt
etwa 10 mg/1.
Als wasserlösliches Jodid wird vorzugsweise Natrium-,
Kalium- oder Ammonium jodid verwendet. Kai iuta jodid ist
besonders gut geeignet, weil es nicht hygroskopisch ist.
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r-
Utn die enzymatischen Reaktionen in einem optimalen pH-Bereich
ablaufen zu lassen, enthält das Mittel auch Puffersubstanzen, die einen pH-Bereich von 6,0 - 7,5
aufrechterhalten können. Als Puffer kommen die gebräuchlichen,
wie z.B. Phosphat-, Citrat-, Borat- oder Tris(hydroxymethyl)-aminomethan-Puffer infrage.
Das erfindungsgemäße Verfahren eignet sich zur Bestimmung
von Wasserstoffperoxid, von Substanzen, die unter Bildung von Wasserstoffperoxid reagieren, sowie von
peroxidatisch wirksamen Substanzen in eiweißhaltigen Flüssigkeiten. Es ist insbesondere in den Fällen geeignet,
in denen eine vorausgehende Enteiweißung der zu untersuchenden Flüssigkeit nicht möglich ist, weil
die nachzuweisende Substanz z.B. an Eiweiß gebunden vorliegt. Ein wichtiges Beispiel für ein^-s^u-fihe^Sub^__
stanz ist das Cholesterin im Blut oder Serum.
Bei der enzymatischen Cholesterinbestimmung muß das Cholesterin und seine Ester aus den Lipoproteinen
freigesetzt werden. Das kann z.B. durch eine Protease erfolgen oder durch Behandlung mit bestimmten Detergentien,
durch Gallensäuren oder durch Detergentien zusammen mit Gallensäuren. Um das freigesetzte Cholesterin
und seine Ester in Lösung zu halten, ist ebenfall ein Detergens notwendig. Für die erfindungsgemäße Cholesterinbestiraraung
hat si'ch zu diesem Zweck eine Detergent ienkoTflbination aus Polyäthylenglycol-mono-(1.1.3.3.-tetramethylbutyl)-phenyläther
und Alkyldimethylbenzylammoniumchlorid als besonders günstig erwiesen. Diese
Detergentienkombination hat den Vorteil, daß sie im Vergleich zu anderen in diesem Zusammenhang bekannten
Detergentien den Reagenzienleerwert praktisch nicht erhöht und daß ein Cholesterinoxidase hemmender Gallensäurezusatz
vermieden werden kann. Außerdem findet die
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Zersetzung der Lipoproteine "bei Verwendung von Alkyldimethylbenzylamraoniumchlorid
bereits bei Raumtemperatur statt, während bei den zu diesem Zweck bekannten
Detergentien höhere Temperaturen notwendig sind.
Im Rahmen, der bevorzugten Reagenzienkombination besteht
ein besonders geeignetes Mittel zur Cholesterinbestimmung
nach dem erfindungsgemäßen Verfahren aus
einer Puffer-Farbreagenz-Lösung und einer Enzymlösung:
Puf f e r-ga^rb re a ge nz-Lo s ung
10 - 30 g/l Kaliumiodid,
5-50 uM Amraoniummolybdat,
5-15 mg/1 Matriumazid,
5-15 mg/1 Matriumazid,
2 g/l Polyäthylenglycol-mono-(1.1.3.3-tetramethylbutyl)-phenylather,
0,1 g/l Alkyldimethylbenzylammoniumehlorid, 0,1-0,5 M . Puffer pH 6,2.
Enzymlösung
0,2 - 0,6 U/ml Cholesterinesterase, 0,3 - 1,0 IT/ml Cholesterinoxidase.
Zur Durchführung des erfindungsgefi]äi3en Verfahrens
wird eine Seruraprobe mit der Pufxer-Farbreagenzlösung
gemischt und ein abgemessener Teil der Enzymlösung zugegeben. Fach einer Inkubationszeit von etwa 15 bis
45 Minuten bei einer geeigneten Temperatur wird die Extinktion der Probe gegen den Leerwert bei 366 nm
gemessen.
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Die Snzymlösung besteht im Ealle einer Glucosebestimtnung
aus Glucoseoxidase, im Ealle einer Aminosäurebestimtnung
aus Aminosäureoxidase, im Ealle einer Harnsäurebestiramung
aus TJricase usw.
Bestimmung von Wasserstoffperoxid in einer eiweißhaltigen
•Lösung
Puffer-Ear-breagenz-Lösung:
Kaliumiodid,
2,0 g/l Polyäthylenglycol-mono-Ö.1.3.3-tetramethyl~
butyl)-phenyläther,
Alkyldiraethylbenzylammoniumchloriä,
Ammoniuramolybdat,
mg/1 Fatriumazid, .
0,2 M Kaliuraphosphatpuffer pH 6,2.
5 ml der Puffer-Earbreagenz-Lösung werden mit 20 μΐ
wasserstoffperoxidhaltigera Serum gemischt, 20 bzv/. 40 Minuten lang bei 3O0O inkubiert und anschließend bei 366 nm die
.Extinktion gemessen, Ss werden 100 °fi der eingesetzten
Wasserstoffperoxideenge wiedergefunden.
Das Verfahren wird mit verschiedenen Amiaoniummolybdatkonzentrationen
und Kombinationen von Aramoniuramolybdat
und Fatriumazid wiederholt. Die erhaltenen Ergebnisse, ausgedrückt als Wiederfindung der eingesetzten Wasserstoffperoxidmengein
Prozent, zeigt die nachstehende Tabelle.
20 | g/l |
2,0 | g/l |
0,1 | g/l |
10 | uM |
10 | mg/ |
0,2 | M |
809822/0164
Sr·.
AO
7ersuch | Ammoniuramolyb- dat [μΜ] |
JTatriumazid [ tag/1 ] |
¥iederfindu- [ * ] nach 20 Min |
ng nach 40 Min |
1 | 1000 | 1000 | 0 | 0 |
2 | - | - | 83 | 86 |
3 | 1000 | - | 89 | 88 |
4 | 10 | - | 96 | 95 |
5 | 10 | 10 | 100 | 100 |
Die obigen Ergebnisse zeigen, daß unter den angewandten Bedingungen
nur die erfindungsgeraäß verwendete Kombination eine ausreichend schnelle Reaktion und eine stabile Färbung
gewährleistet und deswegen für eine quantitative Bestimmung geeignet ist.
Analoge Ergebnisse v/erden erhalten, wenn man anstelle von
10 μΜ Ammoniuramolybdat z.B. 100 uM Natriumwolfraraat oder
200 μΜ Uatriuravanadat einsetzt, sowie beira Austausch von
Batriumazid durch Hexamethylentetramin, Kaliurafluorid,
Kaliumthiocyanat, Äthylendiamintetraessigsäure und/oder
Nitrilotriessigsäure«
Beispiel 2
Bestimmung von Cholesterin im Serum
Bestimmung von Cholesterin im Serum
Die Puffer-I'arbreagenz-Lösung ist die gleiche wie im
Beispiel 1 beschrieben. Die Ensym-Lösung besteht aus
0,4 IT/ml Cholesterinesterose und 0,6 U/ral Cholesterinoxidase.
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5 ml der Puffer-Farbreagenz-Lösung werden mit 20 μί.
Seruia einer bekannten Cholesterinkonzentration gemischt.
50 ul der Enzym-Lösung werden zu 1 ml dieser Mischung plpettiert,
gemischt und 20 "bzw. 40 Minuten bei 300C inkubiert.
Anschließend wird die Extinktion der Probe gegen einen Leerwert bei 366 nm gemessen. Es werden 100 ^ der eingesetzten
Cholesterinmenge wiedergefunden.
Der Cholesteringehalt des Serums wird wie folgt berechnet:
10 Cholesteringehalt [mg/100 ml] =
440
Der Kalibrierungsfaktor wird primären Standard ermittelt.
durch Messungen mit einem
Analog Beispiel 1 wird das Verfahren mit verschiedenen Konzentrationen von Ammoniummolybdat und Mischungen mit
ITatriumazid wiederholt. Die erhaltenen Ergebnisse, ausgedrückt
als Wiederfindung der eingesetzten Cholesterin menge in Prozent, zeigt die nachstehende Tabelle.
V.ersuch | Ammoniummolybdat [ uM ] |
Natri-umazid Lmg/1 ] |
Wiederfi 20 min |
ndung 40 min |
1 | 1000 | 1000 | 0 | 0 |
2 | - | - | 91 | 98 |
3 | 1000 | — | 92 | 90 |
4 · | 10 | - | 93 | 91 |
5 | 10 | 10 | 100 | 100 |
809822/01S
Die obigen Ergebnisse zeigen, daß unter den angewandten Bedingungen nur die erfindungsgemäß verwendete Kombination
eine ausreichend schnelle Reaktion und eine stabile Färbung gewährleistet und deswegen für eine quantitative
Cholesterinbestiimiiung geeignet ist.
Analoge Ergebnisse werden bei der Glueosebestinnnung mit
Glucoseoxidase, der Aminosäurebestimmung mit Aminosäureoxidase
und der Harnsäurebestimmung mit Uricase erhalten.
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Claims (1)
- Patentansprüche1. Verfahren zur photometrischen Bestimmung von Hydroperoxideh "bzw. von Substanzen, die unter Freisetzung von Hydroperoxiden reagieren, in eiweißhaltigen Plüsssigkeiten mit Hilfe eines wasserlöslichen Jodids, eines Redoxkatalysators und eines Stabilisators, dadurch gekennzeichnet, daß der Redoxkata-.; lysator in einer Konzentration von 5 - 500 uM zusammen mit 5 - 100 rag/1 mindestens eines Stabilisators verwendet wirdi2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß als Redoxkatalysator Molybdat, Yfolframat oder Yanadat verwendet wird.3. Verfahren nach den Ansprüchen 1 und 2, dadurch gekennzeichnet, daß als Redoxkatalysator Ammoniutamolyhdat in einer Konzentration von 5 ·- 50 uM verwendet wird. - .4. Verfahren nach den Ansprüchen 1 "ois 3> dadurch gekennzeichnet, daß als Stabilisator Hatriuinazid, Hexainethylentetramin, Kaliumfluorid, Kaliurathiocyanat, Ithylendiamintetraessigsäure und/oder liitrilotriessigsäure verwendet wird.5. Verfahren aur photoraetrischen Bestimmung von aus Cholesterin mit Cholesterinoxidase freigesetztem l'/asserstoffperoxid in eiweißhaltigen Flüssigkeiten mit Hilfe eines wasserlb'slichen Jodids, eines Redoxkatalysatora und eines Stabilisators, dadurch gekennzeichnet, daß der Redoxkataiysator in einer Konzentration von 5 - 500 jaM zusammen mit 5 -100 mg/1 mindestens eineB Stabilisators verwendet vv .Lx1U.8.09 822/01 B-4 original inspected6. Verfahren nach. Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, daß die Bestimmung in Gegenwart von Polyäthylenglycol-mono-(1.1.3.3.-tetratne thy lbutyl)-pheny lather und Alkyldimethylbenzylafflraoniumchlorid durchgeführt wird.7. Mittel zur photoraetrischen Bestimmung von Hydroperoxiden bzw. von Substanzen, die unter Freisetzung von Hydroperoxiden reagieren, in eiweißhaltigen Flüssigkeiten, enthaltend ein wasserlösliches Jodid, 5 - 500 μΐί eines Redoxlcatalysators und 5-100 mg/1 mindestens eines Stabilisators.8. Mittel nach Anspruch 7, enthaltend Kaliumiodid, 5-50 pM. Ammoniuimnolybdat und 10 mg/l ITatriuraazid.809822/0154
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