DE19903895A1 - Selektive Immobilisierung und Nachweis der O·6·-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase in der aktiven Form - Google Patents
Selektive Immobilisierung und Nachweis der O·6·-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase in der aktiven FormInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren gemäß dem Oberbegriff des Anspruchs 1.
Die O6-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase ist ein wichtiges DNA-Reparaturenzym und spielt
außerdem eine große Rolle in der Chemotherapie von Krebs durch DNA-alkylierende
Medikamente, da resistente Tumore häufig die O6-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase
überexprimieren (A. E. Pegg et al., Progress in Nucleic Acid Research and Molecular Biology,
Vol. 51, 167). Der einfache und hochsensitive Nachweis aktiver O6-Alkylguanin-DNA-
Alkyltransferase, beispielsweise in Tumorgewebe, ist deshalb wünschenswert. Der am
weitesten verbreitete Assay zum Nachweis aktiver O6-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase
funktioniert über den Einsatz radioaktiv markierter O6-Alkylguanin-DNA-Derivate, bei der
die Übertragung der Radioaktivität von der DNA auf das Enzym verfolgt wird (siehe
beispielsweise N. H. Zaidi et al., Clinical Cancer Research 1996, 2, 577 und darin zitierte
Arbeiten). Dieser Assay ist jedoch sehr zeitaufwendig und auf Grund der eingesetzten
radioaktiven Materialien nur in spezialisierten Labors durchzuführen. Dies erhöht natürlich
auch den Preis des Assays.
Die Aufgabe der Erfindung ist es, ein einfaches, empfindliches Verfahren zum Nachweis
aktiver O6-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase zu ermöglichen, das auch automatisiert
werden kann und in der Durchführung keine höheren Anförderungen an das Personal stellt.
Das hier beschriebene Verfahren beruht darauf, daß durch die Verwendung von O6-
Alkylguanin-Derivaten (2) (eingebaut entweder in Oligonucleotide oder als Nucleoside und
Nucleotide) als Substrate der humanen O6-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase eine
chemische Gruppe X (4) kovalent mit der O6-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase (1)
verknüpft wird und somit die darauffolgende Immobilisierung der modifizierten O6-
Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase (3) über die Gruppe X (4) an einer Oberfläche erlaubt.
Die immobilisierte O6-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase (1) kann dann durch
immunchemische Verfahren oder spektroskopische Techniken nachgewiesen werden.
Dieses Verfahren benötigt wenige Stunden bis das Testresultat vorliegt, stellt keine hohen
Anforderungen an das ausführende Personal, benötigt lediglich ein minimalen apperativen
Aufwand, kommt ohne Radioaktivität aus und ist auch für die Automatisierung (insbesondere
mit Mikrotiterplatten) geeignet. Weiterhin ist das Verfahren in der Empfindlichkeit mit
radioaktiven Assays vergleichbar. Darüber hinaus ist der Assay für das Screening von
chemischen Bibliotheken nach neuen Inhibitoren der O6-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase
geeignet.
Die der selektiven Immobilisierung zu Grunde liegende Chemie ist in den Zeichnungen Fig. 1,
Fig. 2 und Fig. 3 verdeutlicht. Die hier vorliegenden Protokolle beruhen auf der
Immobilisierung rekombinanter, humaner O6-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase (hAGT)
über Biotin/Streptavidin-Wechselwirkungen, nachdem hAGT durch eine irreversible
Reaktion mit den Substraten (5a) und (5b) biotinyliert wurde. Die Detektion immobilisierter
hAGT erfolgt nach immunochemischen Methoden durch einen Antikörper gegen einen an die
hAGT N-terminal angefügten 6×His-Tag. Die Protokolle dienen nur als Beispiele für die
generelle Durchführbarkeit des beschriebenen Verfahrens.
Der Reaktionsansatz mit 1.2 nmol hAGT und 1.2 nmol (5b) in 100 µl TRIS-Puffer [50 mM
TRIS-Cl, pH 7,6; 10 mM DTT; 1 mM EDTA; 200 µg/ml BSA] inkubierte für eine Stunde
bei Raumtemperatur. Die anschließende Verdünnung des Reaktionsansatzes mit PBST
(phosphate buffered saline mit 0,05% Tween 20) enthielt 10 µmol hAGT in 300 µl
Gesamtvolumen, entsprechend dem Volumen der Streptavidin-bedeckten Oberfläche der
einzelnen Mikrotiterplatten-Vertiefungen, welche zuvor für eine Stunde mit 3%iger
Trockenmilch-Lösung geblockt worden waren.
Nach der einstündigen Inkubation der Verdünnung in den Streptavidin-beschichteten
Mikrotiterplatten-Vertiefungen bei Raumtemperatur wurde jeweils dreimal mit PBST bzw.
PBS (phosphate buffered saline) gewaschen. Anschließend wurden 300 µl des Anti-6×His
tag-Antikörpers (Wirtsspezies: Maus) in einer 1 : 1000 Verdünnung in PBST (mit 1% BSA)
für eine Stunde bei Raumtemperatur in die Vertiefungen gegeben. Nachdem erneut dreimal
mit PBST und dreimal mit PBS gewaschen worden war, erfolgte die Inkubation mit 300 µl
eines sekundären Antikörper-Peroxidase-Konjugats (Anti-Maus IgG Meerrettich-Peroxidase-
Konjugat) in einer 1 : 1000 Verdünnung in PBST (mit 1% BSA) für eine Stunde bei
Raumtemperatur. Vor der Zugabe der Substratlösung [1 mg/ml ABTS in 0,1 M Citrat-
Phosphat-Puffer, pH 4; 3 µl 30%iger H2O2-Lösung in 10 ml Substratlösung] wurde nochmals
dreimal mit PBST bzw. PBS gewaschen. Die Reaktion der Peroxidase wurde über die
Änderung der Extinktion bei einer Wellenlänge von 405 nm über einen Zeitraum von 1,5
Stunden mit Hilfe eines Microtiterplatten-Readers bestimmt.
Zur Darstellung des Substrats wurde das Nucleosid (5a) (über das geschützte
Phosphoramidid) in ein 20 Basenpaare langes Oligonucleotid eingebaut, welches nach der
Hybridisierung mit dem komplementären Strang in doppelsträngiger Form vorlag.
Der Reaktionsansatz enthielt 10 µmol hAGT und 10 µmol doppelsträngiges Oligo
nucleotidsubstrat in 100 µl TRIS-Puffer [50 mM TRIS-Cl, pH 7,6; 10 mM DTT; 1 mM;
EDTA; 200 µg/ml BSA] und wurde nach einer Inkubationszeit von 15 Minuten auf 300 µl
Gesamtvolumen mit PBST aufgefüllt. Danach wurde die Verdünnung in die Streptavidin-
beschichteten Mikrotiterplatten gegeben, welche zuvor für eine Stunde mit 3-%iger
Trockenmilch-Lösung geblockt worden waren.
Die Detektion immobilisierter hAGT erfolgte mit den gleichen immunchemischen Methoden
wie in Protokoll 1.
Es wurde dasselbe Oligonucleotid wie in Protokoll 2 verwendet.
Die Reaktionsansätze enthielten 0,2-1 µmol hAGT und jeweils 5 µmol doppelsträngiges
Oligonucleotidsubstrat in 100 µl TRIS-Puffer [50 mM TRIS-Cl; pH 7,6; 10 mM DTT; 1 mM
EDTA; 200 µg/ml BSA] und wurden nach einer Inkubationszeit von 15 Minuten auf 50 µl
Gesamtvolumen mit PBST aufgefüllt. Danach wurden die Verdünnungen in die
Mikrotiterplatten gegeben, welche zuvor für eine Stunde mit 3%iger Trockenmilch-Lösung
geblockt worden waren. Nach der einstündigen Inkubation der Verdünnungen in den
Streptavidin-beschichteten Mikrotiterplatten-Vertiefungen bei Raumtemperatur wurde jeweils
zweimal mit PBST und einmal mit. PBS gewaschen. Anschließend wurden 50 µl des Anti-
6xHis-tag-Antikörpers (Wirtsspezies: Maus) in einer 1 : 1000 Verdünnung in PBST (mit 1
BSA) für eine Stunde bei Raumtemperatur in die Vertiefungen gegeben. Nachdem erneut
dreimal mit PBST und dreimal mit PBS gewaschen worden war, erfolgte die Inkubation mit
50 µl eines sekundären Antikörper-Peroxidase-Konjugats (Anti-Maus IgG Meerrettich-
Peroxidase-Konjugat) in einer 1 : 1000 Verdünnung in PBST (mit 1% BSA) für eine Stunde
bei Raumtemperatur. Vor der Zugabe von 50 µl der Substratlösung [ECL-Detektionslösung;
Amersham LIFE SCIENCE] wurde nochmals zweimal mit PBST und einmal PBS
gewaschen. Die Reaktion der Peroxidase wurde über Chemilumineszenz über einen
Detektionszeitraum von zwei Stunden mit Hilfe eines FluorS-Imagers (Biorad) verfolgt.
Claims (3)
1. Verfahren zur selektiven Immobilisierung des, Enzyms O6-Alkylguanin-DNA-
Alkyltransferase (1) auf Oberflächen und der darauffolgenden Detektion der immobilisierten
O6-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase (1) durch immunchemische Nachweisverfahren oder
spektroskopische Techniken,
dadurch gekennzeichnet, daß durch die Verwendung von O6-(Alkyl-X)-guanin-Derivaten
(2) (eingebaut entweder in Oligonucleotide oder als Nucleoside und Nucleotide) als Substrate
der O6-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase eine chemische Gruppe X (4) kovalent vom O6-
(Alkyl-X)-guanin-Derivat (2) auf die O6-Alkylguaniri-DNA Alkyltransferase (1) übertragen
wird und somit die darauffolgende Immobilisierung der modifizierten O6-Alkylguanin-DNA-
Alkyltransferase (3) über die Gruppe. X (4) an einer Oberfläche erlaubt. Die chemische
Gruppe X (4) ist hierbei als eine Gruppe definiert, die eine selektive kovalente oder nicht-
kovalente Bindung mit einem anderem, auf einer Oberfläche befindlichen, Molekül erlaubt.
(siehe Fig. 1).
2. Verfahren nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet, daß durch, die Verwendung von über die O6-Alkylgruppe
biotinylierten O6-Alkylguanin-Derivaten (5a) oder (5b) (eingebaut entweder in
Oligonucleotide oder als Nucleoside und Nucleotide) als Substrate der O6-Alkylguanin-DNA-
Alkyltransferase eine Biotin-Gruppe vom biotinylierten O6-Alkylguanin-Derivat (5a) oder
(5b) kovalent auf die O6-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase übertragen wird und somit die
Immobilisierung der modifizierten O6-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase (6) auf
Streptavidin-beschichteten Oberflächen (7) erlaubt (siehe Fig. 2).
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2,
dadurch gekennzeichnet, daß die O6-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase direkt mit einem
Marker (8) (beispielsweise einem Enzym oder einem Fluoreszenz-Farbstoff) kovalent
gekoppelt ist, so daß nach Immobilisierung nach Ansprüch 1 oder 2 ein direkter Nachweis der
immobilisierten O6-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase erfolgen kann (siehe Fig. 3).
Priority Applications (1)
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|---|---|---|---|
| DE1999103895 DE19903895A1 (de) | 1999-02-01 | 1999-02-01 | Selektive Immobilisierung und Nachweis der O·6·-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase in der aktiven Form |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE1999103895 DE19903895A1 (de) | 1999-02-01 | 1999-02-01 | Selektive Immobilisierung und Nachweis der O·6·-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase in der aktiven Form |
Publications (1)
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Family
ID=7896015
Family Applications (1)
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| DE1999103895 Withdrawn DE19903895A1 (de) | 1999-02-01 | 1999-02-01 | Selektive Immobilisierung und Nachweis der O·6·-Alkylguanin-DNA-Alkyltransferase in der aktiven Form |
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