DE19816932A1 - Neue Peptide, Verfahren zu ihrer Herstellung und diese Peptide enthaltende pharmazeutische Zusammensetzungen - Google Patents
Neue Peptide, Verfahren zu ihrer Herstellung und diese Peptide enthaltende pharmazeutische ZusammensetzungenInfo
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Abstract
Die Erfindung betrifft Peptide der allgemeinen Formel I DOLLAR F1 und deren pharmazeutisch annehmbare Salze, worin die Reste R·1·, R·2·, A, B und D die in der Beschreibung angegebenen Bedeutungen besitzen sowie deren Herstellung und Verwendung. Die neuen Verbindungen haben NPY-agonistische und/oder NPY-antagonistische Eigenschaften.
Description
Die Erfindung betrifft neue Peptidderivate der allgemeinen
Formel I
und deren pharmazeutisch annehmbare Salze. Die Verbindungen
haben NPY-agonistische und/oder NPY-antagonistische
Eigenschaften.
Die in dieser Beschreibung und den Ansprüchen für die
Aminosäuren verwendeten Abkürzungen entsprechen dem üblichen
Dreibuchstabencode wie er z. B. in Europ. J. Biochem., 138, 9
(1984) beschrieben ist. Die übrigen Abkürzungen werden
nachfolgend erklärt:
Bum = t-Butyloxymethyl
Bzl = Benzyl
Cha = L-Cyclohexylalanin
DCCI = Dicyclohexylcarbodiimid
DC = Dünnschichtchromatogramm
DCH = Dicyclohexylharnstoff
DIC = Diisopropylcarbodiimid
DMF = Dimethylformamid
Fmoc = 9-Fluorenylmethoxycarbonyl
HOBt = Hydroxybenztriazol
Hpa = L-Homophenylalanin
HPLC = High Performance Liquid Chromatography
Me = Methyl
Mtr = 4-Methoxy-2,3,6-trimethylphenylsulfonyl
Orn = L-Ornithin
Phg = L-Phenylglycin
RT = Raumtemperatur
tBu = t-Butyl
TFA = Trifluoressigsäure
THF = Tetrahydrofuran
Thi = L-2-(2-Thienyl)alanin
Z = Benzyloxycarbonyl.
Bum = t-Butyloxymethyl
Bzl = Benzyl
Cha = L-Cyclohexylalanin
DCCI = Dicyclohexylcarbodiimid
DC = Dünnschichtchromatogramm
DCH = Dicyclohexylharnstoff
DIC = Diisopropylcarbodiimid
DMF = Dimethylformamid
Fmoc = 9-Fluorenylmethoxycarbonyl
HOBt = Hydroxybenztriazol
Hpa = L-Homophenylalanin
HPLC = High Performance Liquid Chromatography
Me = Methyl
Mtr = 4-Methoxy-2,3,6-trimethylphenylsulfonyl
Orn = L-Ornithin
Phg = L-Phenylglycin
RT = Raumtemperatur
tBu = t-Butyl
TFA = Trifluoressigsäure
THF = Tetrahydrofuran
Thi = L-2-(2-Thienyl)alanin
Z = Benzyloxycarbonyl.
Der Ausdruck Aminosäure umfaßt (falls im folgenden Text nicht
ausdrücklich etwas anderes angegeben ist) natürliche und
unnatürliche Aminosäuren, sowohl der D- als auch der L-Form.
Ferner umfaßt der Ausdruck "α-Aminosäure" auch α, α-
disubstituierte Aminosäuren.
Wenn eine Aminosäure ohne Präfix angegeben ist (z. B. Orn) steht
diese Angabe für die L-Form der Aminosäure. Die D-Form wird
ausdrücklich angegeben.
Unter Halogen werden in den Definitionen Fluor, Chlor, Brom und
Jod verstanden.
Die Erfindung betrifft neue Peptidderivate der allgemeinen
Formel I
oder deren pharmazeutisch annehmbare Salze, worin R1 und R2,
die gleich oder verschieden sein können, Wasserstoff,
(C1-C6)-Alkyl, mono- oder disubstituiertes (C1-C6)-Alkyl,
(worin der/die Substituent(en) Phenyl oder Mono- oder
Di-Halogenphenyl, Pyrrolidinyl, Morpholino, Perhydroazepinyl,
Amino, (C1-C6)-Alkylamino oder Di(C1-C6)alkylamino ist (sind)),
oder Phenyl oder Mono- oder Di-Halogenphenyl sind;
oder R1 Wasserstoff ist und R2 die Gruppe
oder R1 Wasserstoff ist und R2 die Gruppe
bedeutet;
oder die Gruppe R1(R2)N- für den Ring
oder die Gruppe R1(R2)N- für den Ring
steht, worin n 2 oder 3 bedeutet und
R3 Wasserstoff, (C1-C6)-Alkyl, mono- oder disubstituiertes (C1-C6)-Alkyl (worin der/die Substituent(en) Di(C1-C6)alkyl-amino, (C3-C6)-Cycloalkyl, Phenyl oder Mono- oder Di-Halogenphenyl oder Methylendioxyphenyl ist (sind)), (C3-C7)-Cycloalkyl, Phenyl, Mono- oder Di-Halogenphenyl, Nitrophenyl (vorzugsweise p-Nitrophenyl), Amidino oder N1,N2-Dicyclohexylamidino ist;
A
R3 Wasserstoff, (C1-C6)-Alkyl, mono- oder disubstituiertes (C1-C6)-Alkyl (worin der/die Substituent(en) Di(C1-C6)alkyl-amino, (C3-C6)-Cycloalkyl, Phenyl oder Mono- oder Di-Halogenphenyl oder Methylendioxyphenyl ist (sind)), (C3-C7)-Cycloalkyl, Phenyl, Mono- oder Di-Halogenphenyl, Nitrophenyl (vorzugsweise p-Nitrophenyl), Amidino oder N1,N2-Dicyclohexylamidino ist;
A
- (a) ein aus 3 bis 6 Ringatomen bestehender gesättigter oder ungesättigter, verbrückter oder unverbrückter Ring ist, worin alle Ringatome Kohlenstoff sind oder ein Ringatom O, S oder N ist und die anderen Ringatome Kohlenstoff, wobei jeweils 2 benachbarte C-Atome des Ringes an die mit der Gruppe A verbundenen Carbonylgruppen gebunden sind;
- (b) die Gruppe
oder
ist; - (c) die Gruppe -CH2-W-CH2- ist,
worin W für eine Bindung, O, S, NR6(worin R6
(C1-C6)Alkyl oder Phenyl-(C1-C3)-alkyl ist), die
Gruppe
(worin R4
und R5
unabhängig voneinander Wasserstoff,
(C1
-C6
)-Alkyl oder Phenyl sind),
oder W für die Gruppe
oder W für die Gruppe
(worin m 2, 3, 4, 5 oder 6 bedeutet) steht;
B Arg, Lys, Ser, His, Pro, Ala, Val, Phe, Phe(p-CN), Phe (p-C(NH)NH2), Asn, Asp, Gly oder Orn oder der Aminosäurerest
B Arg, Lys, Ser, His, Pro, Ala, Val, Phe, Phe(p-CN), Phe (p-C(NH)NH2), Asn, Asp, Gly oder Orn oder der Aminosäurerest
in der L- oder D-Konfiguration gegebenenfalls mit
geschützten Seitenketten ist;
D Tyr, Phe, Cha, His, Cys, Thr, Ser, Asp, Glu, Tyr(3,5-di-Br), Phe(p-F), Phe(p-Cl), Phe(p-NO2), Phenylglycin, 2-Thienylalanin, Cyclohexylalanin, Homophenylalanin oder N-Methyl-phenylalanin, in der L oder D-Konfiguration, gegebenenfalls mit geschützten Seitenketten ist.
D Tyr, Phe, Cha, His, Cys, Thr, Ser, Asp, Glu, Tyr(3,5-di-Br), Phe(p-F), Phe(p-Cl), Phe(p-NO2), Phenylglycin, 2-Thienylalanin, Cyclohexylalanin, Homophenylalanin oder N-Methyl-phenylalanin, in der L oder D-Konfiguration, gegebenenfalls mit geschützten Seitenketten ist.
Die Verbindungen können Aminosäuren (siehe Definition der
Gruppen B und D) enthalten, deren Seitenketten geschützt sind.
Als Schutzgruppen sind dafür die in der Synthese üblichen
Gruppen geeignet. Bevorzugt sind solche Schutzgruppen, die
homoaromatische Gruppen wie beispielsweise Benzyl enthalten.
Verbindungen der allgemeinen Formel I besitzen Säuregruppen,
hauptsächlich Carboxylgruppen, oder phenolische Hydroxygruppen,
und/oder basische Gruppen wie z. B. Guanidino- oder
Aminofunktionen. Verbindungen der allgemeinen Formel I können
deshalb entweder als innere Salze, als Salze mit pharmazeutisch
verwendbaren anorganischen Säuren wie Salzsäure, Schwefelsäure,
Phosphorsäure, Sulfonsäure oder organischen Säuren (wie
beispielsweise Maleinsäure, Fumarsäure, Zitronensäure,
Weinsäure oder Essigsäure) oder als Salze mit pharmazeutisch
verwendbaren Basen wie Alkali- oder Erdalkalimetallhydroxiden
oder Carbonaten, Zink- oder Ammoniumhydroxiden oder organischen
Aminen wie z. B. Diethylamin, Triethylamin, Triethanolamin u. a.
vorliegen.
Die Chiralitätszentren in den neuen Peptiden können jeweils R-,
S- oder R,S-Konfiguration besitzen.
Bevorzugt sind Peptidderivate der allgemeinen Formel I, worin
R1 und R2, die gleich oder verschieden sein können,
Wasserstoff, (C1-C3)-Alkyl, mono- oder disubstituiertes
(C1-C3)-Alkyl (worin der/die Substituent(en) Phenyl,
Pyrrolidinyl, Morpholino, Perhydroazepinyl oder
Di(C1-C3)alkylamino ist (sind)), bedeuten; insbesondere solche,
worin R1 Wasserstoff oder Methyl ist;
sowie solche, worin die Gruppe R1(R2)N- für den Ring
sowie solche, worin die Gruppe R1(R2)N- für den Ring
steht, worin
R3 (C1-C3)-Alkyl, mono- oder disubstituiertes (C1-C3)-Alkyl (worin der/die Substituent(en) Di(C1-C3)alkylamino, Cyclohexyl, Phenyl, durch Halogen mono- oder disubstituiertes Phenyl oder Methylendioxyphenyl ist (sind)), Cyclohexyl, Cyclopentyl, Pyridyl, Phenyl, durch Halogen mono- oder disubstituiertes Phenyl, Nitrophenyl, Amidino oder N1,N2-Dicyclohexylamidino ist.
R3 (C1-C3)-Alkyl, mono- oder disubstituiertes (C1-C3)-Alkyl (worin der/die Substituent(en) Di(C1-C3)alkylamino, Cyclohexyl, Phenyl, durch Halogen mono- oder disubstituiertes Phenyl oder Methylendioxyphenyl ist (sind)), Cyclohexyl, Cyclopentyl, Pyridyl, Phenyl, durch Halogen mono- oder disubstituiertes Phenyl, Nitrophenyl, Amidino oder N1,N2-Dicyclohexylamidino ist.
Bevorzugt sind besonders Verbindungen der allgemeinen Formel I,
worin R3 Methyl, mono- oder di-substituiertes Methyl oder mono- oder
di-substituiertes Ethyl ist, worin der (die)
Substituent(en) Dimethylamino, Methylendioxyphenyl, Phenyl oder
mono- oder di-Halogen-substituiertes Phenyl oder Nitrophenyl
ist (sind), insbesondere solche, worin R3 Phenyl, Nitrophenyl,
Diphenylmethyl oder Di-(fluorphenyl)methyl ist.
Ferner sind Verbindungen der allgemeinen Formel I bevorzugt,
worin A ein in 1- und 2-Stellung verknüpftes Phenyl, ein in 3- und
4-Stellung verknüpftes Furyl oder Thienyl, ein in 2- und
3-Stellung verknüpfter 5-Norbornenring oder die
Gruppe
worin
p 1, 2, 3 oder 4 ist, bedeutet; oder worin A die Gruppe -CH2-W-CH2- ist, worin W für eine Bindung, O, S, NR6 (worin R6 Phenyl-(C1-C3)-alkyl ist), die Gruppe
p 1, 2, 3 oder 4 ist, bedeutet; oder worin A die Gruppe -CH2-W-CH2- ist, worin W für eine Bindung, O, S, NR6 (worin R6 Phenyl-(C1-C3)-alkyl ist), die Gruppe
(worin R4 und R5 unabhängig voneinander Wasserstoff,
(C1-C3)-Alkyl oder Phenyl sind), oder für die Gruppe
(worin m 3, 4, 5 oder 6 bedeutet) steht; insbesondere
solche, worin A die Gruppe -CH2-W-CH2- ist, worin W die Gruppe
ist, worin m 4 oder 5 ist.
Ein weiterer bevorzugter Aspekt der Erfindung sind Verbindungen
der allgemeinen Formel I, worin
B Arg, Lys, Ser, His, Pro, Ala, Val, Phe, Asn, Asp, Gly oder Orn ist; und
D Tyr, Phe, Cha, His, Tyr(3,5-di-Br), Phe(p-F), Phe(p-Cl), Phe(p-NO2), Phenylglycin, 2-Thienylalanin, Cyclohexylalanin, Homophenylalanin, N-Methyl phenylalanin, Tyr(O-Methyl), Tyr(O-Benzyl), Tyr (O-2,6- dichlorbenzyl), Cys(benzyl), Thr(benzyl), Ser(benzyl), Asp(benzyl) oder Glu(benzyl) ist;
insbesondere solche, worin B Arg ist und D Tyr, Tyr(Bzl) oder Phe ist.
B Arg, Lys, Ser, His, Pro, Ala, Val, Phe, Asn, Asp, Gly oder Orn ist; und
D Tyr, Phe, Cha, His, Tyr(3,5-di-Br), Phe(p-F), Phe(p-Cl), Phe(p-NO2), Phenylglycin, 2-Thienylalanin, Cyclohexylalanin, Homophenylalanin, N-Methyl phenylalanin, Tyr(O-Methyl), Tyr(O-Benzyl), Tyr (O-2,6- dichlorbenzyl), Cys(benzyl), Thr(benzyl), Ser(benzyl), Asp(benzyl) oder Glu(benzyl) ist;
insbesondere solche, worin B Arg ist und D Tyr, Tyr(Bzl) oder Phe ist.
Bevorzugte Verbindungen gemäß der Erfindung sind die
Verbindungen
und
sowie deren pharmazeutisch annehmbare Salze.
Untersuchungsergebnisse für erfindungsgemäße Verbindungen:
Die Rezeptoraffinität wurde an einer NPY-Rezeptoren- Präparation, die aus Kaninchennieren gewonnen wurde, anhand der Verdrängung von 125J-markiertem NPY gemessen. Die so erhaltenen IC50-Werte betrugen:
Die Rezeptoraffinität wurde an einer NPY-Rezeptoren- Präparation, die aus Kaninchennieren gewonnen wurde, anhand der Verdrängung von 125J-markiertem NPY gemessen. Die so erhaltenen IC50-Werte betrugen:
Verb. Beispiel 1.) 4,0.10-8 M
Verb. Beispiel 63.) 1,2.10-7 M
Verb. Beispiel 67.) 2,0.10-7 M
Verb. Beispiel 38.) 1,4.10-7 M
Verb. Beispiel 13.) 1,5.10-7 M.
Verb. Beispiel 63.) 1,2.10-7 M
Verb. Beispiel 67.) 2,0.10-7 M
Verb. Beispiel 38.) 1,4.10-7 M
Verb. Beispiel 13.) 1,5.10-7 M.
Eine NPY-agonistische, d. h. blutdrucksteigernde Wirkung wurde
für die Verbindungen Beispiel 1, Beispiel 63 und Beispiel 38
nachgewiesen. ED20-Werte - die Dosis, die den Blutdruck an
narkotisierten Ratten nach intravenöser Verabreichung um
20 mmHg steigert - betrugen 0,36 mg/kg für Verb. Beispiel
1,1 mg/kg für Beispiel 63 und 0,35 mg/kg für Beispiel 38.
Höhere Dosen (3 mg/kg i.v.) dieser Verbindungen hemmten die am
gleichen Modell durch NPY (3 mg/kg i. v.) ausgelöste
Blutdrucksteigerung zu über 80% (Bsp. 1: 83%; Bsp. 63: 84%;
Bsp. 38: 84%) und beweisen damit eine NPY-antagonistische
Wirkung.
Darüberhinaus senkten die genannten Verbindungen in den hohen
Dosen den Blutdruck narkotisierter Ratten.
Ausführung der Blutdruckuntersuchungen:
Männliche Ratten (Chbb: Thom SPF) im Gewicht von ca. 250 Gramm wurden mit Urethan (1,25 g/kg i. p.) narkotisiert. Zur Blutdruckmessung wurde ein Polyethylen-Katheter (PE 20) in die rechte Arteria carotis eingebunden. Intravenöse Substanzapplikationen erfolgten über einen in die linke Uena jugularis eingebundenen Katheter (PE 20). Der mittlere arterielle Blutdruck wurde über einen Statham pressure transducer und Watanabe Multicorder registriert.
Männliche Ratten (Chbb: Thom SPF) im Gewicht von ca. 250 Gramm wurden mit Urethan (1,25 g/kg i. p.) narkotisiert. Zur Blutdruckmessung wurde ein Polyethylen-Katheter (PE 20) in die rechte Arteria carotis eingebunden. Intravenöse Substanzapplikationen erfolgten über einen in die linke Uena jugularis eingebundenen Katheter (PE 20). Der mittlere arterielle Blutdruck wurde über einen Statham pressure transducer und Watanabe Multicorder registriert.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen können zur Therapie
cardiovasculaerer Störungen wie Hypertension und Hypotension,
koronarer, cerebraler und renaler Vasospasmen sowie Obesitas,
Bulimie, Asthma und Depression verwendet werden. Darüberhinaus
können diese Verbindungen als wertvolle Hilfsmittel zur
Erzeugung und Reinigung (Affinitätschromatographie) von
Antikörpern und in RIA- oder ELISA-Assays Anwendung finden.
Die Erfindung betrifft daher auch die Verwendung der
erfindungsgemäßen Verbindungen als Heilmittel und
pharmazeutische Zubereitungen, die diese Verbindungen
enthalten. Bevorzugt ist die Anwendung am Menschen. Die
Applikation der erfindungsgemäßen Verbindungen kann intravenös,
subcutan, intramuskulär, intraperitoneal, intranasal
inhalativ, transdermal, bevorzugt durch Iontophorese oder
literaturbekannte Enhancer gefördert, und oral erfolgen. Am
Ganztier verschiedener Spezies liegen die Dosen, die eine
deutliche Blutdrucksenkung (<20 mmHg) auslösen bei 1-5
(insbesondere 3) mg/kg i. v.
Zur parenteralen Applikation werden die Verbindungen der
Formel I oder deren physiologisch verträglichen Salze, eventuell
mit den dafür üblichen Substanzen wie Lösungsvermittler,
Emulgatoren oder weitere Hilfsstoffe in Lösung, Suspension oder
Emulsion gebracht. Als Lösungsmittel kommen z. B. in Frage:
Wasser, physiologische Kochsalzlösungen oder Alkohole, z. B.
Ethanol, Propandiol oder Glycerin, Zuckerlösungen wie Glucose- oder
Mannit-Lösungen oder auch eine Mischung aus verschiedenen
Lösungsmitteln.
Außerdem können die Verbindungen durch Implantate, z. B. aus
Polylactid, Polyglycolid oder Polyhydroxybuttersäure bzw.
intranasale Zubereitungen appliziert werden.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen können nach allgemein
bekannten Methoden der Peptidchemie, wie z. B. in "Houben-Weyl,
Methoden der organischen Chemie, Bd.15/2", beschrieben oder
nach der Festphasenpeptidsysthese (z. B. R.C. Sheppard, Int. J.
Pept. Prot. Res., 21, 118 [1983]) oder gleichwertigen bekannten
Methoden hergestellt werden. Dabei werden die jeweiligen
Aminosäuren oder Aminosäureteilsequenzen schrittweise
kondensiert und die so erhaltenen Peptide werden in freier Form
oder in Form der gewünschten Salze isoliert. Als
Aminoschutzgruppen werden die in "Houben-Weyl, Methoden der
organischen Chemie, Bd. 15/1" beschriebenen verwendet, wobei in
konventionellen Synthesen die Benzyloxycarbonylgruppe (Z) und
in Festphasensynthesen die Fluorenylinethoxy-carbonylgruppe
(Fmoc) bevorzugt wird. Die Seitenkette des Arginins wurde im
Fall der konventionellen Synthese durch Protonierung geschützt,
im Fall der Festphasensynthese wurde die Mtr-Gruppe verwendet.
In der Festphasenpeptidsynthese wurden z. B. auch folgende
seitenkettengeschützte Aminosäuren eingesetzt: Lys(Boc),
His(Bum), Ser(tBu) und Asp(tBu). Die speziellen
Synthesebedingungen sind den nachfolgenden Beispielen zu
entnehmen.
Zur Synthese der Verbindungen der allgemeinen Formel I nach der
Festphasensynthese sind als Ankergruppen alle diejenigen
geeignet, die bei der Abspaltung des Peptids vom polymeren
Träger Peptidamide liefern. In Kombination mit der BOC-
Aminoschutzgruppe werden bevorzugt die Benzhydrylamino-
Ankergruppe (P.G. Pietta u. a., J. Org. Chem. 39, 44 (1974)) und
die 4-Methylbenzyhdrylaminankergruppe (G.R. Matsueda u. a.,
Peptides 2, 45 (1981)) verwendet. In Kombination mit der
Fmoc-Schutzgruppe sind verschiedene Ankergruppen anwendbar:
p-Aminomethyl-phenoxymethyl-Gruppe (P.Pietta u. a., J. Org. Chem. 40, 2995 (1975).
Bis- und Trialkoxybenzylamin-Linker (F.Albericio, G. Barany, Int. J. Pept. Prot. Res. 30, 206 (1987).
Benzhydrylalkohol-Linker (G. Breipohl u. a., Tetrah. Lett. 28, 5651 (1987)).
p-Aminomethyl-phenoxymethyl-Gruppe (P.Pietta u. a., J. Org. Chem. 40, 2995 (1975).
Bis- und Trialkoxybenzylamin-Linker (F.Albericio, G. Barany, Int. J. Pept. Prot. Res. 30, 206 (1987).
Benzhydrylalkohol-Linker (G. Breipohl u. a., Tetrah. Lett. 28, 5651 (1987)).
Besonders der Dimethoxyphenoxyvaleriansäure-Anker, der an mit
Alanin beladenes Benzhydrylamin-polystyrol über die
Carboxygruppe geknüpft wurde, bewährt sich.
Nach Abspaltung der Aminoschutzgruppe der an das Harz
gekuppelten Aminosäure mit einem geeigneten Reagenz z. B.
Trifluoressigsäure in Dichlormethan im Falle der BOC-Gruppe
oder einer 20-50%igen Lösung von Piperidin in DMF im Falle der
Fmoc-Gruppe werden die geeignet geschützten Aminosäuren
angekuppelt. Dieser Cyclus wird nacheinander so oft durchlaufen
bis das gewünschte Harz-gebundene Peptid entstanden ist.
Zur Kupplung können die in der Peptidchemie bekannten Methoden
(s. Houben-Weyl, Methoden der organischen Chemie Bd 15/2
angewendet werden. Bevorzugt verwendet werden Carbodiimide, wie
z. B. Dicyclohexylcarbodiimid, Diisopropylcarbodiimid oder
Ethyl-(3-dimethylamino- propyl)-carbodiimid oder
O-Benzotriazol-tetramethyl- uroniumhexafluorophosphat oder
Benzotriazol-1-yl-oxy-tris-(dimethylamino)-
phosphoniumhexafluorophosphat. Durch Zusatz von
1-Hydroxybenzotriazol (HOBt) oder 3-Hydroxy-4-oxo-3,4-
dihydrobenzotriazin (HOObt) kann gegebenenfalls die
Racemisierung unterdrückt bzw. die Reaktionsgeschwindigkeit
gesteigert werden. Die Aminosäuren Asn und Gln werden bevorzugt
in Form ihrer N-geschützten p-Nitrophenylester gekuppelt. Die
Kupplungen werden normalerweise mit einem 2- bis 5-fachen
Überschuß an N-geschützter Aminosäure und Kupplungsreagenz in
Lösungsmitteln wie Dichlormethan, Dimethylformamid,
N-Methylpyrrolidon (NMP) oder Gemischen aus diesen
durchgeführt. Der Verlauf der Kupplungsreaktion wird durch den
Kaiser-Test (E. Kaiser u. a., anal. Biochem. 34, 595 (1970) oder
durch den TNBS-Test verfolgt. Falls eine unvollständige
Acylierung festgestellt wird, wird die Kupplung bis zur
Vollständigkeit wiederholt. Die Festphasensynthese kann sowohl
manuell als auch automatisch mit Hilfe eines Peptidsynthesizers
erfolgen.
Bevorzugt werden Festphasensynthesen unter Verwendung des
Dimethoxyvaleriansäure-Linkers, Fmoc-Aminoschutzgruppen und
des automatischen Synthesizers von ABT mit selbst entwickelten
Syntheseprogrammen. Es werden Doppelkupplungen durchgeführt,
die erste mit DCC/HOBt in DMF, die zweite mit symmetrischen
Anhydriden in N-Methylpyrrolidon. Nach der ersten Kupplung wird
ein Waschschritt mit N-Ethylmorpholin in NMP
zwischengeschaltet. Nach der zweiten Kupplung erfolgt Capping
mit Acetanhydrid und N-Ethylmorpholin. Gewaschen wird das Harz
nach jedem Kupplungsschritt mit DMF, NMP und Isopropanol.
Die zum Teil bei den Sequenzen der vorliegenden Erfindung
auftretende N-terminale Acetylgruppe wird durch Acetylierung
des Peptids am Harz mit Acetanhydrid oder Acetylimidazol in DMF
oder NMP mit eventuellem Zusatz von Pyridin als Base
eingeführt.
Nach Aufbau der Peptide am Harz kann das Peptid mit geeigneten
Reagenzien wie flüssigem Fluorwasserstoff im Falle der nach der
BOC-Strategie aufgebauten Peptide oder Trifluoressigsäure im
Falle der nach der Fmoc-Strategie aufgebauten Peptide vom
polymeren Träger abgespalten werden. Bei Verwendung der oben
angeführten Ankergruppen erhält man direkt die entsprechenden
Peptidamide. Mit diesen Reagenzien werden in der Regel und bei
Verwendung der entsprechenden Seitenkettenschutzgruppen auch
die funktionellen, während der Synthese geschützten Gruppen des
Peptids freigesetzt.
Überlicherweise werden bei der Abspaltung des Peptids vom Harz
als Kationenfänger Substanzen wie Phenol, Kresol, Anisol,
Thiokresol, Thioanisol, Indol, Dimethylsulfid oder
Ethylmethylsulfid oder eine Mischung dieser Substanzen dem
Fluorwasserstoff bzw. der Trifluoressigsäure zugesetzt.
Die Reinigung der erhaltenen Rohprodukte erfolgt mittels
Gelchromatographie z. B. an Sephadex G25 (MR<1400) oder G15
(MR<1400) mit 1%iger oder 5%iger Essigsäure. Falls
erforderlich erfolgt die weitere Aufreinigung mittels
präparativer RP-HPLC mit Methanol- oder
Acetonitril-Wasser-Gradienten unter Zusatz von 1 bis 2%
Trifluoressigsäure. Zur Reinigung können auch
Kationenaustauscher auf Sephadex- oder Polystyrol-Basis
angewendet werden.
Verbindungen der allgemeinen Formel I, worin B Phe(p-C(NH)NH2)
ist, können aus entsprechenden Verbindungen der Formel I, worin
B Phe(p-CN) ist, in an sich bekannter Weise durch Umsetzen mit
NH3 hergestellt werden. Zum Beispiel wird die
Ausgangsverbindung in Methanol gelöst und mit 20 ml Petrolether
versetzt. Die Mischung wird mit Eis gekühlt und mit
Chlorwasserstoff gesättigt. Nach mehreren Stunden wird im
Vakuum eingedampft, der Rückstand wird in Methanol aufgenommen
und unter Eiskühlung mit konz. Ammoniaklösung auf einen pH von
ca. 10 eingestellt. Nach 24 Stunden wird im Vakuum bei 40-45°C
zur Trockne eingedampft. Man versetzt mit Methylenchlorid
und Methanol (85 : 15), filtriert und wäscht den Rückstand nach.
Der Rückstand wird mit Diisopropylether gewaschen
(Ultraschallbad) und getrocknet.
Analytik:
Die Schmelzpunkte wurden an einem Büchi-510-Schmelzpunktgerät gemessen, die Drehwerte an einem Perkin-Elmer-241 Polarimeter. Die FAB-Massenspektren wurden gemessen an einem MAT-90-Massenspektrometer der Fa. Finnigan. Rf-Werte wurden auf Merck Kieselgel-DC-Platten des Typs 60 F254 der Schichtdicke 0,25 mm ermittelt, wobei Sakaguchi's Reagens als Indikator verwendet wurde.
Die Schmelzpunkte wurden an einem Büchi-510-Schmelzpunktgerät gemessen, die Drehwerte an einem Perkin-Elmer-241 Polarimeter. Die FAB-Massenspektren wurden gemessen an einem MAT-90-Massenspektrometer der Fa. Finnigan. Rf-Werte wurden auf Merck Kieselgel-DC-Platten des Typs 60 F254 der Schichtdicke 0,25 mm ermittelt, wobei Sakaguchi's Reagens als Indikator verwendet wurde.
Die Verbindungen der allgemeinen Formel I können mittels
RP-HPLC auf Reinheit geprüft werden. Es wird jeweils eine
Aminosäureanalyse am Ionenaustauscher (LKB) und am
Gaschromatographen an chiraler Säule zur zusätzlichen
Racemisierungskontrolle durchgeführt. Darüberhinaus werden
13C-NMR-Spektren (Bruker 400MHz) aufgenommen. Die Prüfung auf
Peptidamide erfolgt mittels Resistenzermittlung gegenüber
Carboxypeptidase Y. Die Seguenzbestimmung erfolgt mittels
Gasphasensequenzierung.
In der folgenden Zusammenstellung der Beispiele wird die Art
der Darstellung der Formeln verwendet, worin Methylgruppen
nicht ausgeschrieben werden. Zum Beispiel steht in Beispiel 6
die Gruppe -N für -N(CH3)2.
Fp.: 125-135°C; [α]20 D (MeOH): -10,9°.
Fp.: 95-107°C; [α]20 D (MeOH): -13,5°.
Fp.: 98-102°C; [α]20 D (MeOH): -12,8°.
Fp.: 95-105°C; [α]20 D (MeOH): -9,6°.
Fp.: 85-95°C; [α]20 D (MeOH): -11,9°.
Fp.: 104°C; [α]20 D (MeOH): -14,5°.
Fp.: 104-106°C; [α]20 D (MeOH): -13,5°.
Fp.: 93° Zers.; [α]20 D (MeOH): -10,7°.
Fp.: 65-75°C; [α]20 D (MeOH): -9,8°.
Fp.: 110-120°C; [α]20 D (MeOH): -11,9°.
Fp.: 85-95°C; [α]20 D (MeOH): -8,8°.
Fp.: 85-95°C; [α]20 D (MeOH): -12,2°.
Fp.: 90-100°C (Zers.); [α]20 D (MeOH): -11,5°.
Fp.: 120°C Zers.; [α]20 D (MeOH): -12,8°.
Fp.: 65-75°C (Zers.); [α]20 D (MeOH): -12,2°.
Fp.: 60-70°C; [α]20 D (MeOH): -12,8°.
Fp.: 75-85°C; [α]20 D (MeOH): -13,0°.
Fp.: 90-100°C; [α]20 D (MeOH): -12,1°.
Fp.: 70-80°C; [α]20 D (MeOH): -11,9°.
Fp.: 95-105°C; [α]20 D (MeOH): -12,5°.
Fp.: 60-70°C; [α)20 D (MeOH): -13,0°.
Fp.: 75-85°C; [α]20 D (MeOH): -14,4°.
Fp.: 65-75°C; [α]20 D (MeOH): -12,6°.
Fp.: 75-85°C; [α]20 D (MeOH): -9,7°.
Fp.: 65-75°C; [α]20 D (MeOH): -11,3°.
Fp.: 60-70°C; [α]20 D (MeOH): -9,7°.
Fp.: 80-90°C; [α]320 D (MeOH): -9,3°.
Fp.: 80-90°C; [α]20 D (MeOH): -12,5°.
Fp.: 103-113°C; [α]20 D (MeOH): -5,4°.
Fp.: 98-110°C; [α]20 D (MeoH): -10,6°.
Fp.: 60-65°C; [α]20 D (MeOH): -10,9°.
Fp.: 85-95°C; [α]20 D (MeOH): -12,1°.
Fp.: 85-92°C (Zers.); [α]20 D (MeOH): -8,3°.
Fp.: 87-97°C (Zers.) ; [α]20 D (MeOH): -6,8°.
Fp.: 103-113°C (Zers.); [α]20 D (MeOH): -9,1°.
Fp.: 82-92°C; [α]20 D (MeOH): -7,2°.
Fp.: 115-125°C; [α]20 D (MeOH): -4,1°.
Fp.: 165-175°C; [α]20 D (MeOH): -4,9°.
Fp.: 85-95°C; [α]20 D (MeOH): -7,4°.
Fp.: 103-113°C; [α]20 D (MeOH): -8,6°.
Fp.: 120-130°C; [α]20 D (MeOH): -7,4°.
Fp.: 95-105°C; [a]20 D (MeOH): -5,9°.
Fp.: 80-90°C; [α]20 D (MeOH): -4,7°.
Fp.: 90-100°C; [α]20 D (MeOH): -3,1°.
Fp.: 80-90°C; [α]20 D (MeOH): -6,6°.
Fp.: 85-95°C; [α]20 D (MeOH): -4,9°.
Fp.: 90-100°C; [α]20 D (MeOH): -6,2°.
Fp.: 75-85°C; [α]20 D (MeOH): -8,8°.
Fp.: 100-110°C; [α]20 D (MeOH): -11,8°.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 629,3.
Rf = 0,21, Fließmittel Acetonitril/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
Rf = 0,21, Fließmittel Acetonitril/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 687,3.
Rf = 0,55, Fließmittel Acetonitril/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
Rf = 0,55, Fließmittel Acetonitril/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 725,3.
Rf = 0,5, Fließmittel Acetonitril/MeOH/Ameisensäure 14 : 6 : 1.
Rf = 0,5, Fließmittel Acetonitril/MeOH/Ameisensäure 14 : 6 : 1.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 703,3.
Rf = 0,28, Fließmittel Acetonitril/MeOH/Ameisensäure 16 : 4 : 1.
Rf = 0,28, Fließmittel Acetonitril/MeOH/Ameisensäure 16 : 4 : 1.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 671,4.
Rf = 0,37, Fließmittel Acetonitril/MeOH/Ameisensäure 14 : 6 : 1.
Rf = 0,37, Fließmittel Acetonitril/MeOH/Ameisensäure 14 : 6 : 1.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 776,4.
Rf = 0,38, Fließmittel Acetonitril/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
Rf = 0,38, Fließmittel Acetonitril/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 727,5.
Rf = 0,48, Fließmittel Acetonitril/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
Rf = 0,48, Fließmittel Acetonitril/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 709,5.
Rf = 0,47, Fließmittel MeCN/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
Rf = 0,47, Fließmittel MeCN/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 753,6.
Rf = 0,44, Fließmittel MeCN/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
Rf = 0,44, Fließmittel MeCN/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 697,5.
Rf = 0,43, Fließmittel MeCN/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
Rf = 0,43, Fließmittel MeCN/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 751,8.
Rf = 0,43, Fließmittel MeCN/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
Rf = 0,43, Fließmittel MeCN/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 735,6.
Rf = 0,43, Fließmittel MeCN/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
Rf = 0,43, Fließmittel MeCN/MeOH/Ameisensäure 11 : 9 : 1.
Fp.: 115-125°C; [α]20 D (MeOH): -3,2°.
Gradient 5% B auf 80% B in 10 Minuten, Fluß 10 ml/min.,
Retentionszeit 8,85 min.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 723,3.
Retentionszeit 8,85 min.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 723,3.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 723,3.
Retentionszeit 8,7 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
Retentionszeit 8,7 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
FAB-MS: (M+H)⁺ = 737,3.
Retentionszeit 9,35 min.
Retentionszeit 9,35 min.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 737,3.
Retentionszeit 9,2 min.
Retentionszeit 9,2 min.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 829,4.
Retentionszeit 11,6 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
Retentionszeit 11,6 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
FAB-MS: (M+H)⁺ = 897,2.
Retentionszeit 13,25 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
Retentionszeit 13,25 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
Retentionszeit 12,0 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
Retentionszeit 12,25 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
Retentionszeit 11,1 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
FAB-MS: (M+H)⁺ = 781,3.
Retentionszeit 11,3 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
Retentionszeit 11,3 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
Retentionszeit 12,05 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
Retentionszeit 11,7 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
Retentionszeit 11,45 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
FAB-MS: (M+H)⁺ = 713,3.
Retentionszeit 9,15 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
Retentionszeit 9,15 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
Retentionszeit 9,45 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
FAB-MS: (M+H)⁺ = 709,3.
Retentionszeit 10,4 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
Retentionszeit 10,4 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
Retentionszeit 11,45 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
Retentionszeit 7,7 min. (HPLC wie in Bsp. 63).
Reinheitskontrolle erfolgt wie in Beispiel 63, mit dem
Unterschied, daß als Gradient 20% B auf 100% B in 9 Minuten
verwendet wurde. Retentionszeit 8,95 min.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 741,3.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 741,3.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 769,3.
Retentionszeit 9,35 min. (HPLC wie in Bsp. 81).
Retentionszeit 9,35 min. (HPLC wie in Bsp. 81).
Retentionszeit 8,6 min. (HPLC wie in Bsp. 81).
Retentionszeit 7,75 min. (HPLC wie in Bsp. 81).
Retentionszeit 7,85 min. (HPLC wie in Bsp. 81).
FAB-MS: (M+H)⁺ = 711,3.
Retentionszeit 7,5 min. (HPLC wie in Bsp. 81].
Retentionszeit 7,5 min. (HPLC wie in Bsp. 81].
Reinheitskontrolle erfolgt wie in Beispiel 81 mit dem
Unterschied, daß eine Dynamax C18-Säule (3 µ) mit den Maßen
10×50 mm verwendet wird. Retentionszeit 3,9 min.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 711,3.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 711,3.
Retentionszeit 3,95 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
Retentionszeit 3,85 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
FAB-MS: (M+H)⁺ = 697,3.
Retentionszeit 3,9 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
Retentionszeit 3,9 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
Retentionszeit 4,9 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
FAB-MS: (M+H)⁺ = 654,3.
Retentionszeit 5,7 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
Retentionszeit 5,7 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
Retentionszeit 6,25 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
Retentionszeit 6,85 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
Retentionszeit 7,1 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
Retentionszeit 5,05 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
Retentionszeit 5,1 min. (HPLC wie in BSP. 87).
Retentionszeit 4,85 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
Retentionszeit 4,85 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
FAB-MS: (M+H)⁺ = 698,2.
Retentionszeit 5,1 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
Retentionszeit 5,1 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
FAB-MS: (M+H)⁺ = 698,2.
Retentionszeit 5,15 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
Retentionszeit 5,15 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
Retentionszeit 5,2 min. (HPLC wie in Bsp. 87)
Retentionszeit 5,6 min. (HPLC wie in Bsp. 87).
FAB-MS: (M+H)⁺ = 768,3.
Retentionszeit 11,35 min. (HPLC wie in Bsp. 87)
Retentionszeit 11,35 min. (HPLC wie in Bsp. 87)
α20 D (Methanol): -6,5°
α20 D (Methanol): -8,4
Fp. 110°C (Zersetzung), α20 D (Methanol): -12°
Fp.: 175-182°C; α20 D (Methanol): -21,2°
Fp.: 138-143°C; α20 D (Methanol): -8,6°
3,36 g 3,3-Tetramethylenglutarsäureanhydrid (20 mMol) werden
in 80 ml THF gelöst, und die Lösung im Eisbad abgekühlt. Bei
5-10° wird dann unter Rühren eine Lösung von 5,05 g
1-(Diphenylmethyl)-piperazin (20 mMol) in 40 ml CHCl3
zugetropft. Man läßt 15 min bei 5° nachreagieren, läßt auf
Raumtemperatur kommen und rührt über Nacht bei Raumtemperatur.
Von wenig weißem Niederschlag wird abgesaugt und das Filtrat
eingeengt bis zur Gewichtskonstanz. Es werden 7,94 g
Cyclopentan-1-[essigsäure-(4-diphenylmethyl-piperazid]-1-
essigsäure (Ausbeute 95%) als weiße Festsubstanz erhalten.
Fp.: 67-72°
Fp.: 67-72°
15 g Z-Arg-OH.HCl (43,5 mMol), 7,83 g H-Tyr-NH2 (43,5 mMol)
und 6,66 g HOBt (43,5 mMol) werden in 160 ml absolutem DMF
gelöst, die Mischung auf 35° abgekühlt und unter Rühren mit
52,2 mMol DCII versetzt. Man beläßt 1 h bei 3-5°, und rührt
anschließend über Nacht bei Raumtemperatur.
Dünnschichtkontrolle zeigt vollständige Umsetzung. Vom
ausgefallenen DCH wird abfiltriert, das Filtrat unter
vermindertem Druck und schließlich im Hochvakuum eingeengt und
der Rückstand in 600 ml 0,1n HCl aufgenommen. Vom Ungelösten
wird abfiltriert und das Filtrat mit 60 ml 1n NaOH
neutralisiert. Nach Zugabe von 150 ml gesättigter
NaHCO3-Lösung wird vom ausgefallenen zähen Öl abdekantiert und
filtriert. Das Filtrat wird zur Trockne eingeengt, der
Rückstand mit 300 ml einer Mischung aus
Acetonitril/Wasser/Methanol im Verhältnis 4 : 1 : 1 aufgenommen
und vom Ungelösten abgesaugt. Das Filtrat wird direkt über
Kieselgel mit Acetonitril/Wasser/Methanol (4 : 1 : 1) als
Fließmittel chromatographiert. Die im DC einheitlichen
Fraktionen des Eluats werden vereinigt und im Vakuum bis zur
Gewichtskonstanz eingeengt. Man erhält 18,9 g Z-Arg-Tyr-
NH2.HCl (Ausbeute 86%) als weiße Festsubstanz.
Fp.: 96-106°. [α]20 D (MeOH): -11,6°.
Fp.: 96-106°. [α]20 D (MeOH): -11,6°.
18,9 g Z-Arg-Tyr-NH2.HCl (37 mMol) werden in 500 ml Methanol
gelöst, mit 2 g Pd-Kohle (5%) versetzt und im Autoklaven bei
200 über 3 h bei einem Druck von 5 Bar H2 der Hydrogenolyse
unterworfen. Die Reaktionsmischung wird filtriert und das
Filtrat eingeengt bis zur Gewichtskonstanz. Man erhält 13,5 g
H-Arg-Tyr-NH2.HCl (Ausbeute 98%) als weiße Festsubstanz.
Fp.: 114-24° (Zers.); [α]20 D (MeOH): +24,4°.
Fp.: 114-24° (Zers.); [α]20 D (MeOH): +24,4°.
0,841 g CycloPentan-1-[essigsäure-(4-diphenylmethyl
piperazid)]-1-essigsäure (2 mMol), 0,75 g H-Arg-Tyr- NH2.HCl
(2 mMol) und 0,308 g HOBt (2 mMol) werden in 30 ml DMF gelöst,
auf 3-5° abgekühlt und mit 0,5 g DCCI (2,4 mMol) versetzt. Man
beläßt 1 h bei 3-5°, Iäßt auf Raumtemperatur kommen und rührt
über Nacht. Vom ausgefallenen DCH wird abfiltriert und das
Filtrat zur Trockne eingeengt. Der Rückstand wird über
Kieselgel mit Acetonitril/MeOH/Ameisensäure (16 : 4 : 1)
chromatographiert, die DC-einheitlichen Fraktionen
zusammengefaßt und unter vermindertem Druck zur Trockne
eingeengt. Man nimmt den Rückstand in MeOH auf, filtriert, und
engt das Filtrat wiederum zur Trockne ein. Es werden 0,63 g
(Ausbeute 41%) der erfindungsgemäßen Verbindungen als weiße
Festsubstanz erhalten.
Fp.: 125-135°; [α]20 D (MeOH): -10,9°.
Fp.: 125-135°; [α]20 D (MeOH): -10,9°.
Die Herstellung erfolgt analog zu Beispiel 1.
Die Synthese erfolgt am halbautomatischen Peptidsynthetizer
Modell SP 640 der Fa. Labortec unter Anwendung der Fmoc-
Strategie. Als feste Phase werden 0,25 mMol 5(4-Fmoc-amino
methyl-3,5-dimethoxy-phenoxy)-valerianoyl-Gly-aminomethyl-Harz
verwendet. Zunächst wird die Fmoc-Gruppe abgespalten mit
40%iger Piperidin-Lösung in DMF (2×10 min.), anschließend
wird in 10 Spülungen mit DMF gewaschen.
Dann wird gekuppelt mit 0,4 g Fmoc-Phe-OH (1 mMol), HOBt
(1 mMol) und DCCl (1,25 mMol) in DMF (ca. 1 h). Nach 7
Waschgängen mit DMF wird in einem 2. Cyclus die Fmoc-Gruppe
abgespalten und die nächste Kupplung mit 0,6 g Fmoc-Arg(Mtr)-
OH (1 mMol) in der beschriebenen Weise durchgeführt. Nach
erneuter Fmoc-Abspaltung wird gekuppelt mit 0,4 g Cyclopentan-
1-[essigsäure-(4-diphenylmethyl-piperazid)-1-essigsäure
(1 mMol) analog zur Aminosäure-Kupplung und unter Zusatz von
2 ml Ethyl-diisopropylamin (1 mMol). Es wird 7x mit DMF
gewaschen und 3× mit CH2Cl2. Vom Harz wird abgespalten durch
3×20 min. Behandlung mit TFA/5% Anisol. Zur
Vervollständigung der Schutzgruppenabspaltung läßt man die
erhaltene Lösung über Nacht bei Raumtemperatur stehen. Die
Lösung wird unter vermindertem Druck zur Trockne eingeengt, 3×
mit Ether gewaschen und im trockenen N2-Strom bei
Raumtemperatur getrocknet.
Es werden 103 mg Substanz erhalten. Reinheitskontrolle erfolgt
mittels analytischer HPLC an einer Dynamax C18-Säule (3 µ,
21,4×50 mm), Detektion 215 nm. Die Gradienten werden aus den
Komponenten A und B gebildet. A = H2O/MeCN/TFA 95 : 5 : 0,2;
B = H2O/MeCN/TFA 20 : 80 : 0,2.
Gradient 5% B auf 80% B in 10 min, Fluß 10 ml/min.,
Retentionszeit 8,85 min.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 723,3.
Gradient 5% B auf 80% B in 10 min, Fluß 10 ml/min.,
Retentionszeit 8,85 min.
FAB-MS: (M+H)⁺ = 723,3.
Die Herstellung erfolgt analog zu Beispiel 63.
Die Synthese erfolgt am Pipettierroboter der Fa. Tecan vom Typ
RSP 5052 (G. Schnorrenberg et al., Tetrah. 45, 7759-7764
[1989]). Chemikalieneinsatz und Procedere erfolgt analog zu
Beispiel 63, mit der Ausnahme, daß anstelle von DCCI das DIC
als Kupplungsreagens verwendet wird, beginnend mit 20 mg,
entsprechend 15 mMol, 5-(4-Fmoc-aminomethyl-3,5-dimethoxy
phenoxy)-valerianoyl-glycyl-aminomethyl-Harz. Die Abspaltung
vom Harz und von der Mtr-Schutzgruppe erfolgt durch
einstündige Behandlung mit TFA/5% Anisol bei 50°C. Es werden
8,2 mg Substanz erhalten. Im Bedarfsfall wurden die Rohpeptide
unter den angegebenen Bedingungen chromatographisch gereinigt
(Aufgabe 5 mg Rohpeptid). Retentionszeit 11,6 min (HPLC wie in
Bsp. 63) FAB-MS: (M+H)⁺ = 829,4.
Die Herstellung erfolgt analog zu Beispiel 67.
Die Herstellung erfolgt analog zu Beispiel 1
Die Herstellung erfolgt durch Hydrierung der Verbindung des
Beispiels 109 nach in der Peptidsynthese üblichen Methoden.
Das für die Herstellung der Verbindung gemäß Beispiel 106
benötigte P-Cyano-phenylalanin kann wie unten beschrieben,
hergestellt werden. Die weiteren Umsetzungen zu
erfolgen nach den in der Peptidsynthese üblichen Methoden.
Eine aus 8,5 g Natrium und 370 ml wasserfreiem Ethanol frisch
bereitete Natriumethylatlösung wird bei Raumtemperatur und
innerhalb von ca. 15 Minuten zu einer aus 73,3 g 4-
Brommethylbenzonitril, 82 g Acetamidornalonsäurediethylester
(97%ig), 18,3 g Kaliumiodid und 1700ml trockenem Dioxan
erhaltenen Mischung zugetropft. Man rührt 30 Minuten bei
Raumtemperatur und kocht dann 5 Stunden unter Rückfluß. Man
läßt ca. 16 Stunden bei Raumtemperatur stehen, erhitzt dann
auf 70°C und filtriert vom Unlöslichen ab. Das Filtrat wird
auf 15°C abgekühlt und in 3,2 l Eiswasser eingerührt. Der
entstandene Niederschlag wird in einer Nutsche gesammelt,
gründlich mit Wasser gewaschen und bei 80°C getrocknet. Man
erhält 120 g α-(Acetylamino)-α-[(4-cyanophenyl)methyl]-
malonsäurediethylester als farblose Kristalle. Fp. 168-170°C.
123 g α-(Acetylamino)-α-[(4-cyanophenyl)methyl]-
malonsäurediethylester werden in 330 ml Eisessig gelöst und
nach Zugabe von 660 ml 3-normaler wäßriger Salzsäure 6 Stunden
unter Rückfluß gekocht. Man kühlt auf 8°C ab und filtriert,
das Filtrat wird im Wasserstrahl-Vakuum eingedampft. Letzte
Reste von Wasser und Essigsäure werden durch azeotrope
Destillation min Xylol entfernt.
Das Rohprodukt wird in der erforderlichen Menge Methanol
gelöst und heiß filtriert. Das Filtrat wird nach dem Abkühlen
auf Raumtemperatur mit dem gleichen Volumen Diisopropylether
sorgfältig verrührt. Der Niederschlag wird abfiltriert und bei
80°C getrocknet. Man erhält 78 g p-Cyanophenylalanin als
farblose Kristalle. IR (KBr): 2235 (C∼N); 1740 (COOH) cm-1.
Das für die Herstellung der Verbindung gemäß Beispiel 107
benötigte Ausgangsmaterial (für die Einführung des
Aminosäurerestes B)
kann wie folgt hergestellt werden:
5 g N-Boc-Arginin werden in 100 ml Wasser/Dioxan 1:1 gelöst, mit 8,8 g Kaliumcarbonat und 10,95 g Pentan-1,4-dion versetzt und 8 h bei 37°C gerührt. Man engt zur Trockene ein und chromatographiert über 500 g Kieselgel mit Acetonitril/Methanol/Wasser 4 : 1 : 1. Die im DC einheitlichen Fraktionen werden vereint und im Vakuum zur Trockene eingedampft. Man erhält 4,5 g elfenbeinfarbene Substanz. 4 g der so gewonnen Substanz werden in 100 ml Methanol/Wasser 1 : 1 gelöst, mit 0,6 g PtO2/RhO2 versetzt und 3 h bei 70°C und 5 bar Wasserstoff hydriert. Anschließend wird vom Katalysator abfiltriert und zur Trockene eingeengt. Der Rückstand wird in 150 ml Acetonitril gelöst und über Calciumchlorid getrocknet. Man filtriert vom Trockenmittel ab und engt erneut zur Trockene ein. Man erhält 2,6 g
5 g N-Boc-Arginin werden in 100 ml Wasser/Dioxan 1:1 gelöst, mit 8,8 g Kaliumcarbonat und 10,95 g Pentan-1,4-dion versetzt und 8 h bei 37°C gerührt. Man engt zur Trockene ein und chromatographiert über 500 g Kieselgel mit Acetonitril/Methanol/Wasser 4 : 1 : 1. Die im DC einheitlichen Fraktionen werden vereint und im Vakuum zur Trockene eingedampft. Man erhält 4,5 g elfenbeinfarbene Substanz. 4 g der so gewonnen Substanz werden in 100 ml Methanol/Wasser 1 : 1 gelöst, mit 0,6 g PtO2/RhO2 versetzt und 3 h bei 70°C und 5 bar Wasserstoff hydriert. Anschließend wird vom Katalysator abfiltriert und zur Trockene eingeengt. Der Rückstand wird in 150 ml Acetonitril gelöst und über Calciumchlorid getrocknet. Man filtriert vom Trockenmittel ab und engt erneut zur Trockene ein. Man erhält 2,6 g
als gelblichen Feststoff. Fp: 120°C (Zersetzung).
Das für die Herstellung der Verbindung gemäß Beispiel 109
benötigte
kann wie folgt hergestellt werden:
55,3 g meta-Nitroanilin werden zusammen mit 37,7 g
Ammoniumthiocyanat und 3 g Natriumhydrogensulfit in 31 ml
Wasser und 44 ml 32%iger Salzsäure 6,5 Stunden bei 100°C
gerührt. Nach Abkühlen auf Raumtemperatur wird die entstandene
orangefarbene Suspension durch eine Nutsche filtriert. Der
abfiltrierte Niederschlag wird mit verdünnter Salzsäure und
Wasser gewaschen und bei 70°C getrocknet. Man erhält 77,4 g
Thioharnstoff als gelborangefarbenen Feststoff. Die Substanz
wird in 770 ml Acetonitril zusammen mit 30,5 ml Methyljodid
eine Stunde unter Rückfluß gekocht. Man entfernt das
Lösungsmittel im Vakuum, der ölige Rückstand kristallisiert
nach animpfen mit einem Impfkristall. Man verrührt die
Kristalle mit Acetonitril, saugt ab, wäscht mit Acetonitril und
Essigester und trocknet bei 50°C. Man erhält 74,3 g des
methylierten Thioharnstoffs als gelbe Kristalle.
74 g des methylierten Thioharnstoffs werden zusammen mit
27,4 ml 1,3-Diaminopropan in 400 ml Methanol zehn Stunden unter
Rückfluß gekocht. Anschließend wird das Lösungsmittel im Vakuum
entfernt. Der ölige Rückstand kristallisiert beim Stehenlassen
über Nacht teilweise. Man versetzt mit 400 ml Wasser, 200 ml 2 n
Natronlauge und 35 ml Ether und rührt eineinhalb Stunden lang
9ut durch. Anschließend wird der Niederschlag abgesaugt, mit
Wasser gut gewaschen und bei 50°C im Vakuum getrocknet. Man
erhält 34,9 g des cyclischen Harnstoffs 4 als orangefarbene
Kristalle.
34,5 g der Verbindung 4 werden in 500 ml DMF gelöst und rasch
mit 45,9 ml Benzylbromid versetzt. Die Mischung wird 6,5
Stunden erhitzt (Ölbad 130°C) und gerührt. Danach wird das
Lösungsmittel zunächst im Vakuum, dann im Hochvakuum entfernt.
Der ölige Rückstand wird mit 300 ml Wasser, 300 ml 2 n
Natronlauge und 600 ml Essigester versetzt und gerührt, bis
alles gelöst ist. Man trennt die wässerige Phase ab und wäscht
sie mit 200 ml Essigester. Die wässerige Phase wird dann mit
5 n Natronlauge stark akalisch gestellt, mit Kochsalz gesättigt
mit 300 ml Essigester gewaschen. Die organischen Phasen werden
vereint, filtriert und im Vakuum bis auf ca. 20-30 ml
eingeengt. Dabei kristalliert etwas Substanz aus. Man versetzt
mit 300 ml Ether, schüttelt, läßt absitzen und dekantiert. Die
Prozedur wird mit 200 ml Ether wiederholt. Der teilkristalline
Bodensatz wird mit wenig Essigester bei 50°C gut gerührt. Man
kühlt wieder auf Raumtemperatur ab, saugt die Kristalle ab und
wäscht sie mit Essigester und Ether. Die Kristalle werden in
300 ml Methylenchlorid suspendiert und dreimal mit je 100 ml
5 n Natronlauge gewaschen. Die organische Phase wird filtriert
und im Vakuum vom Lösungsmittel befreit. Der kristalline
Rückstand wird mit Ether verrührt, abfiltriert, mit Ether
gewaschen und im Vakuum bei 50°C getrocknet. Man erhält 17,3 g
gelbe Kristalle 5.
16 g der Verbindung 5 werden in 300 ml DMF gelöst. Man fügt
4,5 g Braunstein zu und rührt 1,5 Stunden bei 100°C. Nach dem
Abkühlen auf Raumtemperatur filtriert man und entfernt das
Lösungsmittel zunächst im Vakuum, anschließend im Hochvakuum.
Der dunkelrote Rückstand wird mit Essigester/Methanol 8 : 2 über
160 g Kieselgel chromatographiert, die im DC einheitlichen
Fraktionen werden vereinigt und im Vakuum vom Lösungsmittel
befreit. Der feste Rückstand wird mit Ether verrührt,
abfiltriert, mit Ether gewaschen und bei 50°C im Vakuum
getrocknet. Man erhält 10,9 g der Verbindung 6 als rotbraune
Kristalle.
7,8 g 6 werden in 150 ml THF mit Wasserstoff unter 5 bar 8
Stunden mit methanol-feuchtem Raney-Nickel als Katalysator
hydriert. Nach der Hydrierung filtriert man vom Katalysator ab,
entfernt das Lösungsmittel im Vakuum und verrührt den Rückstand
mit ca. 50 ml Ether. Der kristalline Niederschlag wird
abgesaugt, mit Ether und Petrolether (Siedebereich 40-80°C)
gewaschen und bei 50°C im Vakuum getrocknet. Man erhält 5,3 g
der Aminoverbindung 7 als beigefarbene Kristalle.
200,0 mg Wirksubstanz*
1,2 mg Monokaliumhydrogenphosphat = KH2
1,2 mg Monokaliumhydrogenphosphat = KH2
PO4
(Puffer)
0,2 mg Dinatriumhydrogenphosphat = NaH2
0,2 mg Dinatriumhydrogenphosphat = NaH2
PO4
.2H2
O (Puffer)
94,0 mg Natriumchlorid (Isotonans) oder
520,0 mg Glucose (Isotonans)
4 mg Albumin (Proteasenschutz)
q.s. Natronlauge, ad pH 6
q.s. Salzsäure, ad pH 6
ad 10 ml Wasser für Injektionszwecke
94,0 mg Natriumchlorid (Isotonans) oder
520,0 mg Glucose (Isotonans)
4 mg Albumin (Proteasenschutz)
q.s. Natronlauge, ad pH 6
q.s. Salzsäure, ad pH 6
ad 10 ml Wasser für Injektionszwecke
200 mg Wirksubstanz*
94 mg Natriumchlorid oder
520 mg Gucose
4 mg Albumin
q.s. Natronlauge, ad pH 9
q.s. Salzsäure, ad pH 9
ad 10 ml Wasser für Injektionszwecke
94 mg Natriumchlorid oder
520 mg Gucose
4 mg Albumin
q.s. Natronlauge, ad pH 9
q.s. Salzsäure, ad pH 9
ad 10 ml Wasser für Injektionszwecke
200 mg Wirksubstanz*
520 mg Mannit (Isotonans/Gerüstbildner)
4 mg Albumin
520 mg Mannit (Isotonans/Gerüstbildner)
4 mg Albumin
10 ml Wasser für Injektionszwecke
20 mg Polysorbat®80 = Tween®80 (oberflächenaktiver Stoff)
10 ml Wasser für Injektionszwecke.
10 ml Wasser für Injektionszwecke.
* Wirksubstanz: erfindungsgemäße Verbindungen, z. B. die der
Beispiele 1, 63, 67, 38 und 13.
Dosis für Mensch von 67 kg.
Claims (19)
1. Peptid der allgemeinen Formel I
oder dessen pharmazeutisch annehmbares Salz, worin R1 und R2, die gleich oder verschieden sein können, Wasserstoff, (C1-C6)-Alkyl, mono- oder disubstituiertes (C1-C6)-Alkyl, (worin der/die Substituent(en) Phenyl oder Mono- oder Di-Halogenphenyl, Pyrrolidinyl, Morpholino, Perhydroazepinyl, Amino, (C1-C6)-Alkylamino oder Di(C1-C6)alkylamino ist (sind)), oder Phenyl oder Mono- oder Di-Halogenphenyl sind;
oder R1 Wasserstoff ist und R2 die Gruppe
bedeutet;
oder die Gruppe R1(R2)N- für den Ring
steht, worin n 2 oder 3 bedeutet und
R3 Wasserstoff, (C1-C6)-Alkyl, mono- oder disubstituiertes (C1-C6)-Alkyl (worin der/die Substituent(en) Di(C1- C6)alkyl-amino, (C3-C6)-Cycloalkyl, Phenyl oder Mono- oder Di-Halogenphenyl oder Nitrophenyl oder
Methylendioxyphenyl ist (sind)), (C3-C7)-Cycloalkyl, Phenyl, Mono- oder Di-Halogenphenyl, Nitrophenyl, Amidino oder N1, N2-Dicyclohexylamidino ist;
A
(worin m 2, 3, 4, 5 oder 6 bedeutet) steht; B Arg, Lys, Ser, His, Pro, Ala, Val, Phe, Phe(p-CN), Phe(p-C(NH)NH2), Asn, Asp, Gly oder Orn oder der Aminosäurerest
in der L- oder D-Konfiguration gegebenenfalls mit geschützten Seitenketten ist;
D Tyr, Phe, Cha, His, Cys, Thr, Ser, Asp, Glu, Tyr(3,5-di-Br), Phe(p-F), Phe(p-Cl), Phe(p-NO2), Phenylglycin, 2-Thienylalanin, Cyclohexylalanin, Homophenylalanin oder N-Methyl-phenylalanin, in der L oder D-Konfiguration, gegebenenfalls mit geschützten Seitenketten ist.
oder dessen pharmazeutisch annehmbares Salz, worin R1 und R2, die gleich oder verschieden sein können, Wasserstoff, (C1-C6)-Alkyl, mono- oder disubstituiertes (C1-C6)-Alkyl, (worin der/die Substituent(en) Phenyl oder Mono- oder Di-Halogenphenyl, Pyrrolidinyl, Morpholino, Perhydroazepinyl, Amino, (C1-C6)-Alkylamino oder Di(C1-C6)alkylamino ist (sind)), oder Phenyl oder Mono- oder Di-Halogenphenyl sind;
oder R1 Wasserstoff ist und R2 die Gruppe
bedeutet;
oder die Gruppe R1(R2)N- für den Ring
steht, worin n 2 oder 3 bedeutet und
R3 Wasserstoff, (C1-C6)-Alkyl, mono- oder disubstituiertes (C1-C6)-Alkyl (worin der/die Substituent(en) Di(C1- C6)alkyl-amino, (C3-C6)-Cycloalkyl, Phenyl oder Mono- oder Di-Halogenphenyl oder Nitrophenyl oder
Methylendioxyphenyl ist (sind)), (C3-C7)-Cycloalkyl, Phenyl, Mono- oder Di-Halogenphenyl, Nitrophenyl, Amidino oder N1, N2-Dicyclohexylamidino ist;
A
- (a) ein aus 3 bis 6 Ringatomen bestehender gesättigter oder ungesättigter, verbrückter oder unverbrückter Ring ist, worin alle Ringatome Kohlenstoff sind oder ein Ringatom O, S oder N ist und die anderen Ringatome Kohlenstoff, wobei jeweils 2 benachbarte C-Atome des Ringes an die mit der Gruppe A verbundenen Carbonylgruppen gebunden sind;
- (b) die Gruppe
oder
ist; - (c) die Gruppe -CH2-W-CH2- ist,
worin W für eine Bindung, 0, S, NR6 (worin R6
(C1-C6)Alkyl oder Phenyl-(C1-C3)-alkyl ist), die
Gruppe
(worin m 2, 3, 4, 5 oder 6 bedeutet) steht; B Arg, Lys, Ser, His, Pro, Ala, Val, Phe, Phe(p-CN), Phe(p-C(NH)NH2), Asn, Asp, Gly oder Orn oder der Aminosäurerest
in der L- oder D-Konfiguration gegebenenfalls mit geschützten Seitenketten ist;
D Tyr, Phe, Cha, His, Cys, Thr, Ser, Asp, Glu, Tyr(3,5-di-Br), Phe(p-F), Phe(p-Cl), Phe(p-NO2), Phenylglycin, 2-Thienylalanin, Cyclohexylalanin, Homophenylalanin oder N-Methyl-phenylalanin, in der L oder D-Konfiguration, gegebenenfalls mit geschützten Seitenketten ist.
2. Peptid nach Anspruch 1, worin R1 und R2, die gleich oder
verschieden sein können, Wasserstoff, (C1-C3)-Alkyl,
mono- oder disubstituiertes (C1-C3)-Alkyl (worin der/die
Substituent(en) Phenyl, Pyrrolidinyl, Morpholino,
Perhydroazepinyl oder Di (C1-C3)alkylamino ist (sind),
bedeuten.
3. Peptid nach Anspruch 1 oder 2, worin R1 Wasserstoff oder
Methyl ist.
4. Peptid nach Anspruch 1, worin die Gruppe R1(R2)N- für den
Ring
steht, worin
R3 (C1-C3)-Alkyl, mono- oder disubstituiertes (C1-C3)-Alkyl (worin der/die Substituent(en) Di(C1-C3) alkylamino, Cyclohexyl, Phenyl, durch Halogen mono- oder disubstituiertes Phenyl oder Methylendioxyphenyl ist (sind)), Cyclohexyl, Cyclopentyl, Pyridyl, Phenyl, durch Halogen mono- oder disubstituiertes Phenyl, Nitrophenyl, Amidino oder N1,N2- Dicyclohexylamidino ist.
steht, worin
R3 (C1-C3)-Alkyl, mono- oder disubstituiertes (C1-C3)-Alkyl (worin der/die Substituent(en) Di(C1-C3) alkylamino, Cyclohexyl, Phenyl, durch Halogen mono- oder disubstituiertes Phenyl oder Methylendioxyphenyl ist (sind)), Cyclohexyl, Cyclopentyl, Pyridyl, Phenyl, durch Halogen mono- oder disubstituiertes Phenyl, Nitrophenyl, Amidino oder N1,N2- Dicyclohexylamidino ist.
5. Peptid nach Anspruch 4, worin R3 Methyl, mono- oder
di-substituiertes Methyl oder mono- oder
di-substituiertes Ethyl ist, worin der (die)
Substituent(en) Dimethylamino, Methylendioxyphenyl,
Phenyl oder mono- oder di-Halogen-substituiertes Phenyl
ist (sind).
6. Peptid nach Anspruch 4 oder 5, worin R3 Phenyl,
Nitrophenyl, Diphenylmethyl oder Di-(fluorphenyl)-methyl
ist.
7. Peptid nach einem der Ansprüche 1 bis 6, worin A ein in
1- und 2-Stellung verknüpftes Phenyl, ein in 3- und
4-Stellung verknüpftes Furyl oder Thienyl, ein in 2- und
3-Stellung verknüpfter 5-Norbornenring oder die Gruppe
worin p 1, 2, 3 oder 4 ist, bedeutet.
worin p 1, 2, 3 oder 4 ist, bedeutet.
8. Peptid nach einem der Ansprüche 1 bis 6, worin A die
Gruppe -CH2-W-CH2- ist, worin W für eine Bindung O, S,
NR6 (worin R6 Phenyl-(C1-C3)-alkyl ist), die Gruppe
(worin R4 und R5 unabhängig voneinander Wasserstoff, (C1-C3)-Alkyl oder Phenyl sind), oder für die Gruppe
(worin m 3, 4, 5 oder 6 bedeutet) steht.
(worin R4 und R5 unabhängig voneinander Wasserstoff, (C1-C3)-Alkyl oder Phenyl sind), oder für die Gruppe
(worin m 3, 4, 5 oder 6 bedeutet) steht.
9. Peptid nach Anspruch 8, worin A die Gruppe -CH2-W-CH2
ist, worin W die Gruppe
ist, worin m 4 oder 5 ist.
ist, worin m 4 oder 5 ist.
10. Peptid nach einem der Ansprüche 1 bis 9, worin
B Arg, Lys, Ser, His, Pro, Ala, Val, Phe, Asn, Asp, Gly oder Orn ist; und
D Tyr, Phe, Cha, His, Tyr(3,5-di-Br), Phe(p-F), Phe(p-Cl), Phe(n-NO2), Phenylglycin, 2-Thienylalanin, Cyclohexylalanin, Homophenylalanin, N-Methyl-phenylalanin, Tyr(O-Methyl), Tyr(O- Benzyl), Tyr(O-2,6-dichlorbenzyl), Cys(benzyl), Thr(benzyl), Ser(benzyl), Asp(benzyl) oder Glu(benzyl) ist.
B Arg, Lys, Ser, His, Pro, Ala, Val, Phe, Asn, Asp, Gly oder Orn ist; und
D Tyr, Phe, Cha, His, Tyr(3,5-di-Br), Phe(p-F), Phe(p-Cl), Phe(n-NO2), Phenylglycin, 2-Thienylalanin, Cyclohexylalanin, Homophenylalanin, N-Methyl-phenylalanin, Tyr(O-Methyl), Tyr(O- Benzyl), Tyr(O-2,6-dichlorbenzyl), Cys(benzyl), Thr(benzyl), Ser(benzyl), Asp(benzyl) oder Glu(benzyl) ist.
11. Peptid nach Anspruch 9, worin B Arg ist und D Tyr,
Tyr(Bzl) oder Phe ist.
12. Peptid nach Anspruch 1, das
oder
oder dessen pharmazeutisch annehmbares Salz ist.
oder
oder dessen pharmazeutisch annehmbares Salz ist.
13. Verfahren zur Herstellung eines Peptides nach einem der
Ansprüche 1 bis 12 oder dessen Salzes, dadurch
gekennzeichnet, daß man nach in der Peptidchemie
bekannten Methoden schrittweise die jeweiligen
Aminosäuren oder Aminosäureteilsequenzen kondensiert und
das so erhaltene Peptid in freier Form oder in Form des
gewünschten Salzes isoliert.
14. Pharmazeutische Zubereitung enthaltend eine Verbindung
nach einem der Ansprüche 1 bis 12.
15. Verwendung einer Verbindung nach einem der Ansprüche 1
bis 12 zur Therapie von cardiovasculären Störungen.
16. Verwendung einer Verbindung nach einem der Ansprüche 1
bis 12 zur Therapie von koronaren, cerebralen oder
renalen Vasospasmen.
17. Verwendung einer Verbindung nach einem der Ansprüche 1
bis 12 zur Therapie von Obesitas.
18. Verwendung einer Verbindung nach einem der Ansprüche 1
bis 12 zur Therapie von Bulimie.
19. Verwendung einer Verbindung nach einem der Ansprüche 1
bis 12 zur Therapie von Asthma.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE1998116932 DE19816932A1 (de) | 1998-04-16 | 1998-04-16 | Neue Peptide, Verfahren zu ihrer Herstellung und diese Peptide enthaltende pharmazeutische Zusammensetzungen |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE1998116932 DE19816932A1 (de) | 1998-04-16 | 1998-04-16 | Neue Peptide, Verfahren zu ihrer Herstellung und diese Peptide enthaltende pharmazeutische Zusammensetzungen |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE19816932A1 true DE19816932A1 (de) | 1999-10-21 |
Family
ID=7864752
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE1998116932 Withdrawn DE19816932A1 (de) | 1998-04-16 | 1998-04-16 | Neue Peptide, Verfahren zu ihrer Herstellung und diese Peptide enthaltende pharmazeutische Zusammensetzungen |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE19816932A1 (de) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7153822B2 (en) | 2002-01-29 | 2006-12-26 | Wyeth | Compositions and methods for modulating connexin hemichannels |
WO2007142431A1 (en) * | 2006-06-02 | 2007-12-13 | Ewha University - Industry Collaboration Foundation | New non-peptide compounds, process for the preparation thereof and pharmaceutical composition comprising the same |
-
1998
- 1998-04-16 DE DE1998116932 patent/DE19816932A1/de not_active Withdrawn
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7153822B2 (en) | 2002-01-29 | 2006-12-26 | Wyeth | Compositions and methods for modulating connexin hemichannels |
WO2007142431A1 (en) * | 2006-06-02 | 2007-12-13 | Ewha University - Industry Collaboration Foundation | New non-peptide compounds, process for the preparation thereof and pharmaceutical composition comprising the same |
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