DE19813174A1 - Mikropartikel aus Polymeren und mindestens einer gerüstbildenden Komponente und ihre Herstellung und Verwendung in der Ultraschalldiagnostik und zur ultraschallinduzierten Wirkstofffreisetzung - Google Patents
Mikropartikel aus Polymeren und mindestens einer gerüstbildenden Komponente und ihre Herstellung und Verwendung in der Ultraschalldiagnostik und zur ultraschallinduzierten WirkstofffreisetzungInfo
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Description
Die vorliegende Erfindung betrifft neue gasgefüllte Mikropartikel, die ein Polymer und
mindestens eine gerüstbildende Komponente enthalten. Weitere Aspekte der Erfindung sind
pharmazeutische Mittel, die die erfindungsgemäßen Mikropartikel enthalten, deren
Verwendung in der Ultraschalldiagnostik und zur ultraschallinduzierten Freisetzung von
therapeutischen Wirkstoffen oder diagnostischen Substanzen in vivo sowie Verfahren zur
Herstellung dieser Mikropartikel und pharmazeutischen Mittel.
Es ist bekannt, daß durch periphere Injektion von Lösungen, die feine Gasblasen enthalten,
kardiale Echokontraste erzielt werden können (Roelandt J, Ultrasound Med Biol 8 (1982):
471-492). Diese Gasblasen werden in physiologisch verträglichen Lösungen z. B. durch
Schütteln, durch andere Arten der Agitation oder durch Zusatz von Kohlendioxid erhalten.
Sie sind jedoch hinsichtlich ihrer Anzahl und Größe nicht standardisiert und können nur
unzulänglich reproduziert werden. Auch sind sie in der Regel nicht stabilisiert, so daß ihre
Lebensdauer gering ist. Ihre mittleren Durchmesser liegen meist über Erythrozytengröße, so
daß keine Lungenkapillarpassage mit nachfolgender Kontrastierung von Organen wie linkes
Herz, Leber, Niere oder Milz möglich ist. Darüber hinaus eignen sie sich nicht für
Quantifizierungen, da sich das von ihnen erzeugte Ultraschallecho aus mehreren, nicht
voneinander zu trennenden Prozessen wie Blasenentstehung, Koaleszenz und Auflösung
zusammensetzt. So ist es z. B. nicht möglich, mit Hilfe dieser Ultraschall-Kontrastmittel über
die Messung des Kontrastverlaufs im Myokard Aussagen über die Transitzeiten zu
gewinnen.
In der EP-0 131 540 ist die Stabilisierung der Gasblasen durch Zucker beschrieben. Damit
wird zwar die Reproduzierbarkeit und Homogenität des Kontrasteffektes verbessert, eine
Lungenpassage überstehen diese Blasen jedoch nicht.
In den EP-0 122 624 und EP-0 123 235 wird beschrieben, daß der Gasblasen stabilisierende
Effekt von Zuckern, Zuckeralkoholen und Salzen durch Zusatz von Tensiden verbessert
wird. Es werden Gasbläschen enthaltende Ultraschall-Kontrastmittel beschrieben, die die
Lungenkapillaren passieren können und damit den gewünschten Kontrasteffekt bewirken.
Eine Lungenkapillargängigkeit und die Möglichkeit zur Darstellung des arteriellen Gefäß
schenkels und verschiedener Organe wie Leber und Milz sind bei diesen Ultraschall
kontrastmitteln gegeben.
Für Organdarstellungen mit ausreichender Signalintensität sowie für Quantifizierungen ist es
jedoch weiterhin erforderlich, daß das verwendete Ultraschallkontrastmittel über längere
Zeit unverändert im Körper verbleibt. Es stellt sich daher das Problem, Gase, die als
Kontrastmittel geeignet sind, mit möglichst geringem Aufwand so zu verkapseln, daß dabei
stabile, bioverträgliche und für die Ultraschalldiagnostik geeignete Mikropartikel entstehen.
WO 92/18164 beschreibt in diesem Zusammenhang ein Zweistufenverfahren zur Herstellung
weitgehend proteinöser, gasgefüllter Mikrokapseln, mittels dessen zunächst vergleichsweise
instabile Proteinkapseln entstehen, die nachträglich stabilisiert werden. WO 96/40277
beschreibt die einstufige Herstellung von Mikropartikeln aus synthetischen Polymeren
mittels Sprühtrocknung, die u. a. bei der Ultraschalldiagnostik eingesetzt werden können.
Mikropartikel aus synthetischen Polymeren für die Ultraschalldiagnostik und Verfahren zu
ihrer Herstellung sind auch Gegenstand der EP-0 398 935 und EP-0 441 468. In US
5,565,215 und 5,578,325 wird beschrieben, wie die in vivo-Stabilität von injizierbaren
Partikeln aus synthetischen Polymeren durch die Verwendung von Copolymeren mit Poly-
(alkylenglykolen) erhöht werden kann. US 5,611,344 beschreibt, daß sich die Echogenizität
von Mikropartikeln aus synthetischen Polymeren erhöhen läßt, wenn anstelle von Luft
fluorinierte Gase verkapselt werden. In WO 95/07072 werden Mikropartikel beschrieben,
die neben einer gasförmigen Phase einen Wirkstoff oder eine Kombination von Wirkstoffen
enthalten, und deren Verwendung zur ultraschallgesteuerten Wirkstofffreisetzung in vivo.
Häufig erweist es sich, beispielsweise bei mikroskopischer Betrachtung, daß Partikel, die
Polymere enthalten, keine glatte Oberfläche besitzen und/oder porös sind. Erfahrungsgemäß
gehen solche morphologischen Merkmale häufig mit funktionellen Schwächen einher,
beispielsweise Instabilität, einem raschen Verlust der Gasfüllung oder einer hohen
Agglomerationstendenz in Serum.
Entsprechend besteht eine Aufgabe der vorliegenden Erfindung darin, neue Ultraschall
kontrastmittel auf der Basis von Mikropartikeln bereitzustellen, die nicht nur hinsichtlich
ihrer Größe und Zusammensetzung standardisiert sind, sondern darüber hinaus eine deutlich
erhöhte Stabilität und eine verringerte Porosität aufweisen. Eine weitere Aufgabe besteht in
der Bereitstellung eines Verfahrens zur Herstellung solcher Mikropartikel. Diese und
weitere Aufgaben werden durch den Gegenstand der Ansprüche gelöst.
Entsprechend betrifft ein Aspekt der Erfindung gasgefüllte Mikropartikel, die ein Polymer
und mindestens eine gerüstbildende Komponente enthalten, insbesondere Mikropartikel, bei
denen das Polymer entweder ein Polylactid-co-glykolid (PLGA) oder ein Copolymer,
beispielsweise ein Block-copolymer, aus PLGA und Polyethylenglykol (PEG) ist. Gemäß
einem weiteren Aspekt der vorliegenden Erfindung enthalten die gasgefüllten Mikropartikel
als gerüstbildende Komponente oder Komponenten ein oder mehrere Proteine, beispiels
weise Albumin, Casein oder Gelatine, und/oder einen oder mehrere Zucker, beispielsweise
Monosaccharide, Disaccharide (z. B. Lactose) oder Polysaccharide (z. B. Dextran). Ein
weiterer Aspekt der Erfindung besteht darin, daß die erfindungsgemäßen Mikropartikel im
wesentlichen frei von Tensiden sind. Noch ein weiterer Aspekt der Erfindung besteht darin,
daß die Gasfüllung der erfindungsgemäßen Mikropartikel aus Luft, Sauerstoff, Stickstoff,
Edelgasen, Kohlenstoffdioxid, gasförmigen Kohlenwasserstoffen, Perfluorgasen oder
Mischungen dieser Gase besteht.
Ein anderer Aspekt der Erfindung betrifft ein Herstellungsverfahren für die erfindungs
gemäßen Mikropartikel, das (i) die Emulgierung einer nicht-wäßrigen Polymerlösung und
einer wäßrigen Lösung der gerüstbildenden Komponente(n), beispielsweise unter Ein
wirkung von Ultraschall, und (ii) die Sprühtrocknung der erhaltenen Emulsion beinhaltet.
Die hierbei entstehenden gasgefüllten Mikropartikel sind für eine Vielzahl ultraschall
diagnostischer Anwendungen geeignet, einschließlich solcher, die eine Kapillargängigkeit
der Partikel (d. h. eine Größe von kleiner als 10 µm) erfordern. Aufgrund ihrer hohen
Stabilität können die erfindungsgemäßen Mikropartikel einem zusätzlichen Filtrationsschritt
unterworfen werden, wodurch sich Partikel definierter Größen herstellen lassen. Eine
erhöhte Kontrasteffektivität kann desweiteren auch dadurch erhalten werden, daß nach der
Sprühtrocknung die kontrastreichen Bestandteile durch Flotation von vorhandenen
kontrastarmen Bestandteilen abgetrennt werden können. Besonders kontrastaktive
Ultraschalldiagnostika können erhalten werden, wenn die Luftfüllung der Mikropartikel in
einem weiteren Schritt durch andere Gase, beispielsweise die obengenannten, bevorzugt
aber durch Perfluorverbindungen, ersetzt wird.
Noch ein weiterer Aspekt der vorliegenden Erfindung betrifft die Verwendung erfindungs
gemäßer Mikropartikel als Träger von therapeutischen Wirkstoffen und diagnostischen
Substanzen, insbesondere von Arzneistoffen und/oder biologisch aktiven Substanzen, und
die ultraschallinduzierte Freisetzung dieser Stoffe. Das zugrunde liegende Prinzip wird dem
Fachmann aus WO 95/07072 bekannt sein. Es besteht, kurz gesagt, darin, daß Feststoffe in
gasgefüllte, kontrastaktive Mikropartikel eingebracht, in dieser Form verabreicht und in
vivo unter Einwirkung von Ultraschall in zeitlich und örtlich kontrollierter Weise freigesetzt
werden.
Die Herstellung solcher erfindungsgemäßen Mikropartikel, die zusätzlich therapeutische
Wirkstoffe oder diagnostische Substanzen enthalten, erfolgt ebenfalls nach dem oben
genannten Herstellungsverfahren, das (i) die Emulgierung einer nicht-wäßrigen Polymer
lösung und einer wäßrigen Lösung der gerüstbildenden Komponente(n), beispielsweise
unter Einwirkung von Ultraschall, und (ii) die Sprühtrocknung der erhaltenen Emulsion
beinhaltet. Dabei kann der entsprechende Stoff entweder direkt der Emulsion zugefügt oder,
beispielsweise unter Verwendung eines Dreistoffaggregats, als separate wäßrige Lösung
versprüht werden.
Die erfindungsgemäßen gasgefüllten Mikropartikel enthalten ein Polymer und mindestens
eine gerüstbildende Komponente. Die erfindungsgemäßen Mikropartikel sind kleiner als
100 µm. Bevorzugt sind Partikelgrößen unter 20 µm, und besonders bevorzugt sind
Partikel, die kleiner als 10 µm sind. Die erfindungsgemäßen Mikropartikel besitzen im
Vergleich zu bekannten Mikropartikeln auf Polymerbasis eine nicht-poröse, glatte Ober
fläche, weisen eine signifikant erhöhte Stabilität auf und liefern desweiteren bei ultraschall
diagnostischen in vivo-Anwendungen deutlich stärkere bzw. länger anhaltende Kontraste.
Der Begriff "Polymer", wie er im folgenden verwendet wird, schließt Polymere,
Copolymere sowie deren Derivate ein. "Derivate" im Sinne des hier gebrauchten Begriffes
schließen wiederum substituierte und um funktionelle Gruppen ergänzte Polymere ein,
beispielsweise durch Alkylierungen, Alkylenierungen, Hydroxylierungen, Oxidationen und
andere Modifikationen, die vom Fachmann routinemäßig durchgeführt werden, eingeführte
Gruppen. Die Polymere sind vorzugsweise synthetisch und biologisch abbaubar.
Als mögliche Polymere seien genannt: Polylactide, Polyglykolide, Polylactid-co-glykolide,
Polyanhydride, Polyorthoester, Polyamide, Polykarbonate, Polyalkylene wie etwa Poly
ethylen und Polypropylen, Polyalkylenglykole wie etwa Polyethylenglykol, Polyalkylen
terephthalate wie etwa Polyethylenterephthalat, Polyvinylalkohole, Polyvinylether,
Polyvinylester, Polyvinylpyrrolidon, Polysiloxane, Polyvinylacetat, Polystyrol, Polyurethane,
derivatisierte Zellulosen wie etwa Alkyzellulose, Hydroxyalkylzellulosen, Zelluloseether,
Zelluloseester und Nitrozellulosen, Polymere aus Acrylsäure und Methacrylsäure und deren
Derivaten einschließlich Estern sowie Polycaprolactone.
Bevorzugt sind biologisch abbaubare synthetische Polymere aus Hydroxysäuren wie etwa
Polylactide, Polyglykolide und Polylactid-co-glykolide (PLGA), Polyethylenglykol (PEG),
Polyanhydride, Polyorthoester, Polyurethane, Polyhydroxybuttersäure, Polyvaleriansäure
und Polylactid-co-caprolacton, sowie diese Komponenten enthaltende Copolymere. Diese
Substanzen werden in vivo in der Regel sowohl nicht-enzymatisch als auch enzymatisch
abgebaut.
Durch die Exposition von Polyalkylenglykolen wie beispielsweise Polyethylenglykol (PEG)
auf der Oberfläche der Mikropartikel wird deren Hydrophilie und infolgedessen auch ihre
Stabilität in vivo erhöht. Bevorzugt sind daher Copolymere aus Polylactid-co-glykoliden
und Polyethylenglykol ("PLGA-PEG-Copolymere"), wobei es sich bei diesen Copolymeren
beispielsweise um A-B-Block-Copolymere oder A-B-A-Block-Copolymere mit einem A-Block
aus PEG bzw. PLGA und einem B-Block aus PLGA bzw. PEG handeln kann.
Möglichkeiten zur Herstellung von Block-Copolymeren sind dem Fachmann bekannt,
beispielsweise aus dem US-Patent 5,565,215, in dem verschiedene Verfahren zur Her
stellung von Di-, Tri- und Multi-Block-Copolymeren offenbart sind.
Als gerüstbildende Komponenten haben sich Biomoleküle, beispielsweise Proteine, Oligo
peptide, Aminosäuren, Mono-, Di- und Polysaccharide sowie deren Gemische als besonders
geeignet erwiesen. Es hat sich herausgestellt, daß sowohl der Zusatz solcher gerüst
bildenden Komponenten an sich als auch die Auswahl bestimmter Kombinationen dieser
gerüstbildenden Komponenten für die Morphologie und die funktionellen Qualitäten der
erfindungsgemäßen Mikropartikel entscheidend sind. Auch eine Quervernetzung der
gerüstbildenden Komponente(n) durch Methoden, die dem Fachmann wohlbekannt sind,
etwa chemisch durch Glutaraldehyd, aber auch Erwärmen oder Autoklavierung, ist denkbar.
Unter den Proteinen sind Albumin, Casein, Gelatine, Lysozym, Myoglobin oder
Gammaglobulin als gerüstbildende Komponenten bevorzugt, besonders bevorzugt ist
Albumin. Die Proteine können aus biologischem Material isoliert oder mittels gängiger, dem
Fachmann bekannter rekombinanter Verfahren hergestellt werden. Es hat sich erwiesen, daß
insbesondere der Zusatz von Albumin sehr günstige Auswirkungen auf die morphologischen
und funktionellen Eigenschaften der Mikropartikel hat. Die erfindungsgemäßen Mikro
partikel zeichnen sich insbesondere durch eine nicht-poröse Oberfläche und eine erhöhte
Stabilität aus.
Neben Proteinen lassen sich auch Zucker, beispielsweise Monosaccharide, Disaccharide
(z. B. Lactose) und/oder Polysaccharide (z. B. Dextran, Stärke, Amylose, Hydroxyethyl
stärke) als gerüstbildende Komponente(n) verwenden. Überraschenderweise wurde darüber
hinaus festgestellt, daß die Verwendung von Albumin in Verbindung mit einem Mono-, Di-
oder Polysaccharid zu einer zusätzlichen signifikanten Verbesserung der Qualität der
Mikropartikel führt. Besonders bevorzugt sind in diesem Zusammenhang Mikropartikel, die
neben einem Polymer sowohl Albumin als auch Lactose als gerüstbildende Komponenten
enthalten. Diese besonders bevorzugten Mikropartikel sind, wie auch die PLGA-PEG-
Albumin-Mikropartikel, nicht-porös, weisen aber im Vergleich zu diesen zusätzlich eine
auffällig glatte Oberfläche, eine stark verringerte Agglomerationstendenz im Serum, eine
äußerst homogene Partikelform und eine besonders ausgeprägte Stabilität auf. Darüber
hinaus haben Analysen, bei denen unter mikroskopischer Sichtkontrolle die Zerstörung und
Gasblasenfreisetzung der Mikropartikel unter Ultraschall untersucht wurden, über
raschenderweise ergeben, daß diese bevorzugten erfindungsgemäßen Mikropartikel - im
Gegensatz zu früheren, auf Mikropartikeln basierenden Ultraschallkontrastmitteln - nicht
bereits bei dem ersten Puls einer zerstörerisch wirkenden Frequenz ihre gesamte Gasfüllung
verlieren, sondern erst nach und nach. Dies bedeutet, daß die erfindungsgemäßen Mikro
partikel im Vergleich zu den bekannten Partikeln unter diesen Bedingungen über längere
Zeiträume hinweg kontrastaktiv bleiben.
Durch den Zusatz von gängigen, dem Fachmann bekannten Tensiden, beispielsweise
Tweens, Synperonics, Pluronics, Poloxamene, Poloxamine, Alkylsulfate, Alkylbenzol
sulfonate, Alkylpolyglykoside, Alkylammoniumhalogenide oder deren Gemische, können die
Eigenschaften der erfindungsgemäßen Mikropartikel weiter modifiziert werden. Die
Verwendung solcher Zusatzstoffe ist jedoch nicht erforderlich. Die erfindungsgemäßen
Mikropartikel, die im wesentlichen frei von Tensiden sind, besitzen bereits die erforderliche
Stabilität. Bevorzugt sind daher Mikropartikel, die z. B. nicht mehr als 0,1% (w/v) Tenside
enthalten. Besonders bevorzugt sind solche, die vollkommen frei von Tensiden sind.
Als Gase, die in den Mikropartikeln in freier oder gebundener Form enthalten sein können,
sind beispielsweise geeignet: Luft, Edelgase, Stickstoff, Kohlenstoffdioxid, Sauerstoffs
gasförmige Kohlenwasserstoffe, fluorinierte Gase sowie Mischungen dieser Gase.
Hinsichtlich der fluorinierten Gase sind vor allem Perfluorverbindungen bevorzugt, wie z. B.
CF4, C2F6, C3F8, C4F8, SF6, C2F4, C3F6, besonders bevorzugt ist Perfluorbutan (C4F10).
Ein geeignetes Gasgemisch ergibt sich ebenfalls, wenn in einem mit gasförmigen Stickstoff
gefüllten Gefäß bei Normaldruck und 10°C flüssiges Perfluorhexan eingebracht wird. Durch
den Dampfdruck von Perfluorhexan bei 10°C reichert sich ausreichend gasförmiges Per
fluorhexan in der Gasphase an (ca. 20 Vol%), so daß für die Ultraschalldiagnostik besonders
geeignete Mikropartikel mit dem entstandenen Gasgemisch erzeugt werden können.
Derartige Mischungen lassen sich auch mit anderen Gasen (z. B. O2, Ar, Xe, CF4, SF6) und
bei Raumtemperatur flüssigen, aber ausreichend flüchtigen Verbindungen (z. B. C7F16)
erzeugen.
Die Erfindung betrifft weiterhin ein Verfahren zur Herstellung der erfindungsgemäßen
Mikropartikel, das (i) die Emulgierung einer nicht-wäßrigen Polymerlösung und einer
wäßrigen Lösung der gerüstbildenden Komponente(n), beispielsweise unter Einwirkung von
Ultraschall, und (ii) die Sprühtrocknung der erhaltenen Emulsion beinhaltet. Die
Emulgierung wird bevorzugt unter Einwirkung von Ultraschall durchgeführt. Statt unter
Einwirkung von Ultraschall kann die Herstellung der Emulsion jedoch auch anders,
beispielsweise mechanisch erfolgen.
Als Lösungsmittel für das Polymer sind alle organischen Lösungsmittel geeignet, die
vergleichsweise niedrige Siedetemperaturen besitzen und in Spurenmengen dem Menschen
verabreicht werden können, wie etwa Methylenchlorid. Andere Lösungsmittel, beispiels
weise Ethylacetat, Aceton, Ethanol, DMSO und Chloroform können ebenfalls alleine oder
in Kombination - miteinander oder mit Methylenchlorid - verwendet werden.
Allgemein sind 0,1-10%-ige Polymerlösungen zur Emulgierung geeignet. Bevorzugt sind
0,1-5%-ige Lösungen, besonders bevorzugt sind 0,2-1%-ige Lösungen. Diese nicht
wäßrigen Lösungen können Tenside enthalten. Ein Vorteil der erfindungsgemäßen Mikro
partikel besteht jedoch darin, daß ihre günstigen morphologischen und funktionellen Eigen
schaften nicht vom Zusatz von Tensiden abhängen, so daß die Mikropartikel im
wesentlichen frei von Tensiden sein können. Besonders bevorzugt sind Polymerlösungen,
die Polymilchsäure (PLA), Polyglykolsäure (PGA) und Polyethylenglykol (PEG) enthalten.
Geeignet sind vor allem PLA:PGA-Gemische, deren PLA-Gewichtsanteil 50-100% (w/w)
beträgt. Bevorzugt sind PLA:PGA-Verhältnisse im Bereich zwischen 80 : 20 (w/w) und
20 : 80 (w/w), und besonders bevorzugt sind PLA:PGA-Gemische mit einem Verhältnis von
PLA:PGA von 70 : 30 (w/w). Die PEG-Ketten können ein Molgewicht im Bereich von 1000-20 000
g/mol besitzen. Bevorzugt ist PEG mit einem Molgewicht von 2000-10 000 g/mol,
wobei PEG 5000, d. h. PEG mit einem Molekulargewicht von 5000 g/mol, besonders
bevorzugt ist. Im Falle von PLGA-PEG-Lösungen, die als Lösungsmittel Methylenchlorid
enthalten, haben sich Lösungen mit einer inherenten Viskosität zwischen 0,4 und 1,0 dl/g als
geeignet erwiesen. Bevorzugt sind solche mit einer inherenten Viskosität zwischen 0,5 und
0,8 dl/g, und besonders bevorzugt solche mit einer inherenten Viskosität zwischen 0,68 und
0,74 dl/g. Zur Herstellung erfindungsgemäßer Mikropartikel eignen sich ferner Polymer
lösungen, die PLGA und PLGA-PEG enthalten. Besonders geeignet sich dabei Mischungen
von 9 Teilen PLGA mit 1 Teil PLGA-PEG.
Allgemein können wäßrige Lösungen der gerüstbildenden Komponente(n) verwendet
werden, die diese in einer Konzentration von 0,1-50% (w/v) enthalten. Bevorzugt sind
Konzentrationen von 0,5-20% (w/v), besonders bevorzugt Konzentrationen von 2-10%
(w/v). Wenn Mischungen verwendet werden, so beziehen sich die genannten Angaben zur
bevorzugten Konzentration auf die Gesamtkonzentration dieser Komponenten. Im Falle der
besonders bevorzugten Kombination von Albumin und Lactose hat sich ein Verhältnis
dieser beiden Stoffe zwischen 1 : 10 und 10 : 1 (w/w) als geeignet erwiesen. Bevorzugt ist ein
Verhältnis zwischen 1 : 5 und 5 : 1, und besonders bevorzugt ein Verhältnis von 1 : 2,5. Die
genannten Verhältnisse beziehen sich auf die Albumin- und Lactoseanteile in der zur
Emulgierung verwendeten wäßrigen Phase.
Das Gewichtverhältnis (w/w) des Polymers und der gerüstbildenden Komponente(n) liegt
üblicherweise im Bereich zwischen 1 : 50 und 50 : 1. Bevorzugt ist hierbei der Bereich
zwischen 1 : 30 und 30 : 1 und besonders bevorzugt der zwischen 1 : 5 und 1 : 20.
Eines der besonders bevorzugten Verfahren zur Herstellung der erfindungsgemäßen Mikro
partikel besteht darin, 1 Volumenteil einer PLGA-PEG-Lösung in Methylenchlorid (mit
einem PLA:PGA-Massenverhältnis von 70 : 30 und PEG 5000) in 5 Volumenteilen einer
wäßrigen Lösung, die 2% (w/v) Albumin und 5% (w/v) Lactose enthält, unter Einwirkung
von Ultraschall mindestens 10-30 Sekunden zu emulgieren. Anschließend wird die dabei
erhaltene Emulsion in einer gängigen, dem Fachmann geläufigen Sprühtrocknungsapparatur
sprühgetrocknet, beispielsweise in einem mit einer Zweistoffdüse ausgestatteten Büchi-
Sprühtrockner B-191.
Bei der Sprühtrocknung wird die Emulsion atomisiert und durch die direkte Einwirkung
heißer Gase getrocknet. Mit den üblicherweise verwendeten Geräten wird die zu trocknende
Lösung oder Emulsion durch das Einlaßventil eingebracht, durch ein Rohr transportiert und
dann durch das Auslaßventil atomisiert. Die Temperaturen an den Ein- und Auslaßventilen
sind jeweils variabel. Die Größe der entstehenden Teilchen ist außer von den Temperaturen
noch von einer Reihe weiterer Parameter abhängig, etwa der verwendeten Düse, dem
Düsendruck, der angelegten Pumpleistung, der "Flow"-Rate, der Art und Konzentration des
verwendeten Polymers und der ausgewählten gerüstbildenden Komponente(n) sowie deren
Massenverhältnisse.
Die Wahl der Parameter bei der Sprühtrocknung ist weitgehend geräteabhängig. Im Falle
des verwendeten Büchi Mini Spray Dryers B191 hat sich jedoch beispielsweise als günstig
erwiesen: Einlaßtemperatur: 110°C; Auslaßtemperatur: 60°C; Aspirator: 100%; Pumpe:
15%; Düse: 0,7 mm; Flow: 600 l/hr. Zur Resuspension des Sprühtrocknungsgutes wird
bevorzugt eine 0,9%-ige NaCl-Lösung verwendet. Als Richtwert kann hierbei gelten, daß
ein Volumen von 1 ml zur Resuspension von 0,1 g Sprühtrocknungsgut geeignet ist.
Das aus oben genanntem Verfahren erhältliche Sprühtrocknungsgut kann zur Abtrennung
von nicht-gasgefüllten Bestandteilen einem Flotationsschritt unterworfen werden. Dies ist in
zweierlei Hinsicht vorteilhaft: Zum einen wird durch die Abtrennung nicht-kontrastaktiver
oder kontrastarmer Bestandteile die Qualität des Ultraschallkontrastmittels verbessert, zum
anderen werden möglicherweise noch vorhandene überschüssige Moleküle entfernt.
Bevorzugt wird das Partikelflotat durch Zentrifugation hergestellt. Aufgrund ihrer hohen
Stabilität überstehen die erfindungsgemäßen Mikropartikel den Flotationsschritt unbe
schadet, und man erhält auf diesem Wege eine Partikelsuspension, die in sich einen hohen
Grad an Homogenität aufweist.
Mikroskopisch erscheinen die bei diesem Herstellungsverfahren erhältlichen Mikropartikel
insgesamt sehr homogen, und die einzelnen Partikel besitzen eine außergewöhnlich glatte
und nicht-poröse Oberfläche. Desweiteren wurde festgestellt, daß die erfindungsgemäßen
Mikropartikel eine außergewöhnlich hohe Beständigkeit aufweisen. Es wurde beobachtet,
daß ihr Gaskern im Wasser nur sehr langsam entweicht, wodurch eine Filtration, etwa durch
ein 10 µm-Filter, ermöglicht wird.
Die Luftfüllung der nach dem oben beschriebenen, bevorzugten Verfahren erhältlichen
Mikropartikel kann durch fluorierte Gase, vorzugsweise Perfluorverbindungen, ersetzt
werden. Dazu werden erfindungsgemäße, durch Sprühtrocknung einer Emulsion erhaltene
Mikropartikel im Gefriertrockner evakuiert und dann mit dem gewünschten Gas oder
Gasgemisch begast.
Die erfindungsgemäßen Mikropartikel sind für eine Vielzahl diagnostischer Verfahren
geeignet. Sie können zur Darstellung physiologischer und pathologischer Zustände des
gesamten Herz-/Kreislaufsystems, der Gewebeperfusion und der inneren Organe verwendet
werden. Darüber hinaus gelingt mit den erfindungsgemäßen Partikeln die Detektion und
Charakterisierung von Tumoren, von Perfusionsdefekten und von Gefäßanomalien. Die
Darstellung innerer Organe ist während der Perfusionsphase möglich, aber auch nach der
Phagozytose der Mikropartikel durch die Zellen des retikohistiozytären Systems (RHS), wie
z. B. der Milz, der Leber und/oder der Lymphknoten.
Die Verwendung der Mikropartikel führt u. a. zur Kontrast- bzw. Signalverstärkung bei
Verwendung konventioneller (z. B. B-Bild, Doppler-, Korrelations- und Duplexverfahren),
aber auch neuerer Ultraschallverfahren (z. B. Harmonic-, Stimulated Acoustic Emission- und
Pulse Inversion-Verfahren.)
Daneben lassen sich erfindungsgemäße Mikropartikel auch als Träger von therapeutischen
Wirkstoffen und diagnostischen Substanzen, insbesondere von Arzneistoffen und/oder
biologisch aktiven Substanzen einsetzen. Dazu werden die entsprechenden Stoffe in
gasgefüllte, kontrastaktive Mikropartikel eingebracht, in dieser Form verabreicht und in
vivo unter Einwirkung von Ultraschall in zeitlich und örtlich kontrollierter Weise freigesetzt.
Solche Mikropartikel könnten sowohl für therapeutische Zwecke (beispielsweise bei der
Tumortherapie) als auch bei diagnostische Verfahren (z. B. einer lokal begrenzten
Freisetzung von Adrenalin oder Theophyllin zur Funktionstestung) eingesetzt werden. Bei
der Herstellung solcher Mikropartikel wird der entsprechende Stoff entweder direkt der
Voremulsion zugefügt oder, beispielsweise im Falle der Verwendung eines Dreistoff
aggregats, in Form einer separaten Lösung sprühgetrocknet.
Als Wirkstoffe sind, neben Arzneistoffen, biologisch aktive Moleküle besonders geeignet.
Als Beispiele hierfür seien genannt: Peptide, Proteine (etwa Antigene, Enzyme, Hormone
oder Rezeptoren), Kohlenhydrate, Nukleinsäuren (RNA- und/oder DNA-Moleküle,
Nukleoside, Nukleotide), Lipide, Polysaccharide, desweiteren synthetische anorganische
oder organische Moleküle, die eine biologische Wirkung hervorrufen, wenn sie einem
Menschen oder einem Tier verabreicht werden. Diese, sowie weitere, dem Fachmann
bekannte Wirkstoffe können einzeln oder in Kombination in den erfindungsgemäßen
Mikropartikeln enthalten sein. Die erfindungsgemäßen Mikropartikel sind in der Lage, die
enthaltenen Wirkstoffe lokal freizusetzen. Die bevorzugten Freisetzungsorte sind diejenigen,
die auch besonders gut diagnostisch dargestellt werden können (siehe oben).
Das Vorhandensein von freien PEG-Enden auf der Oberfläche der Mikropartikel bietet
darüber hinaus die Möglichkeit der zusätzlichen Ankopplung reaktiver Gruppen, die sich in
vivo selbst gezielt an freie Rezeptoren anlagern können ("Targetting"). Dadurch lassen sich
die therapeutischen und diagnostischen Einsatzmöglichkeiten der erfindungsgemäßen
Mikropartikel bedeutend erweitern.
Üblicherweise werden die erfindungsgemäßen Mikropartikel in einer physiologisch
verträglichen Lösung resuspendiert. Die dadurch entstehenden pharmazeutischen Mittel
werden bevorzugt durch Injektion, z. B. intravenös, intraarteriell, intracutan oder subcutan
verabreicht. Die Verabreichung kann aber auch oral, intrauterin, intravesikulär erfolgen.
In den nachfolgenden Beispielen wurden folgende Geräte verwendet: Die Sprühtrocknung
wurde in einem Büchi Mini Spray Dryer B191 durchgeführt, die standardmäßig mit einer
Zweistoffdüse mit einem Innendurchmesser von 0,7 mm ausgestattet ist. Für die Herstellung
Wirkstoff enthaltender Mikropartikel wurde diese Sprühtrocknungsapparatur üblicherweise
in Verbindung mit einem Dreistoffaggregat (Sonderanfertigung der Firma Schlick-Düsen,
Germany, für B-191 (Innendurchmesser der Düse: 0,8 mm); auf Anfrage erhältlich) ver
wendet. Dieser Aufsatz ist jedoch nicht unbedingt erforderlich. Vielmehr lassen sich auch
wirkstoffhaltige erfindungsgemäße Mikropartikel mit einem standardmäßigen, d. h. mit einer
Zweistoffdüse ausgerüsteten Sprühtrockner, herstellen. Die Beschallung der Lösung mit
Ultraschall wurde mit einem Branson Sonifier II unter Verwendung eines Standard
Resonators 1/2", Best.Nr. 101-147-037 durchgeführt. Die Gefriertrocknung der Lösungen
und die Begasung der Lyophilisate erfolgte im Gefriertrockner Lyovac GT2, Leybold-
Heraeus. Die Dispergierung zur Herstellung der Emulsionen wurde mit einem Ultra Turrax
(Janke u. Kunkel; IKA-Labortechnik) durchgeführt. Die in vivo-Untersuchungen erfolgten
mit einem HP 77020 E (5 MHZ-Schallkopf) und einem ATL-UM9 (L 10-5-Schallkopf).
Zur Untersuchung der Partikelmorphologie wurde ein Zeiss Axioplan Phasenkontrast
mikroskop verwendet.
Die nachfolgenden Beispiele dienen der Erläuterung des Erfindungsgegenstandes, ohne ihn
auf diese beschränken zu wollen:
12 ml einer 2,5% (w/v)-igen Polylactid-co-glykolidlösung in Methylenchlorid (PLGA,
70 : 30, Resomer RG 503) werden in 60 ml einer 5%-igen Albuminlösung unter Ultraschall
(Branson Sonifier, Stufe 7) für 2 Minuten emulgiert. Die gebildete o/w-Emulsion wird unter
folgenden Bedingungen sprühgetrocknet (Büchi Mini Spray Dryer B191): Einlaßtemperatur
= 69°C; Auslaßtemperatur = 40°C; Aspirator = 100%; Pumpe = 5%; Düse = 0,7 mm, Flow
= 600 l/hr. 0,1 g Sprühtrocknungsgut werden in 1 ml 0,9%iger NaCl-Lösung resuspendiert.
Die Suspension wird gegebenenfalls durch 10 µm filtriert.
Die Teilchenzahlbestimmung ergibt eine Partikelkonzentration von ca. 8.107 T/ml an
gasgefüllten Mikropartikeln. Die Teilchengrößenbestimmung der Partikel erfolgte mittels
Malvern MasterSizerS und liegt bei < 10 µm.
12 ml einer 2,5%-igen (w/v) Polylactid-co-glykolid-polyethylenglykol Lösung in Methylen
chlorid (PLGA-PEG, 70 : 30, PEG 5000, inh.visc. 0,68d l/g, Birmingham Polymers Inc.,
Alabama, U.S.A.) werden in 60 ml einer wäßrigen Lösung, die 2% (w/v) Albumin und 5%
(w/v) Lactose enthält, unter Ultraschall (Branson Sonifier, Stufe 7) für 2 Minuten emulgiert.
Die gebildete o/w-Emulsion wird unter folgenden Bedingungen sprühgetrocknet (Büchi
Mini Spray Dryer B191): Einlaßtemperatur = 110°C; Auslaßtemperatur = 60°C; Aspirator =
100%; Pumpe = 20%; Düse = 0,7 mm, Flow = 600 l/hr. 0,1 g des Sprühtrocknungsgut
werden in 1 ml 0,9%iger NaCl-Lösung resuspendiert. Die Suspension wird gegebenenfalls
10 µm filtriert.
Die Teilchenzahlbestimmung ergibt eine Partikelkonzentration von ca. 5,8.108 T/ml an
gasgefüllten Mikropartikeln. Die Teilchengrößenbestimmung der Partikel erfolgte mittels
Malvern MasterSizerS und liegt bei < 10 µm.
12 ml einer 2,5% (w/v) Polylactid-co-glykolid-polyethylenglykol Lösung in Methylenchlorid
(PLGA (70 : 30)-PEG 5000, inh.visc. 0,68 dl/g, Birmingham Polymers Inc., Alabama,
U.S.A.) werden in 60 ml einer 5% Albuminlösung unter Ultraschall (Branson Sonifier,
Stufe 7) für 2 Minuten emulgiert. Die gebildete o/w-Emulsion wird unter folgenden
Bedingungen sprühgetrocknet (Büchi Mini Spray Dryer B191): Einlaßtemperatur = 110°C;
Auslaßtemperatur = 60°C; Aspirator = 100%; Pumpe = 20%; Düse = 0,7 mm, Flow =
600 l/hr. 0,1 g des Sprühtrocknungsgut werden in 1 ml 0,9%iger NaCl-Lösung re
suspendiert. Die Suspension wird gegebenenfalls 10 µm filtriert.
Die Teilchenzahlbestimmung ergibt eine Partikelkonzentration von ca. 9.108 T/ml an
gasgefüllten Mikropartikeln. Die Teilchengrößenbestimmung der Partikel erfolgte mittels
Malvern MasterSizerS und liegt bei < 10 µm.
12 ml einer 2,5% (w/v) Polylactid-co-glykolid-polyethylenglykol Lösung in Methylenchlorid
(PLGA (70 : 30)-PEG 5000, inh.visc. 0,98 dl/g, Lot# D97002, Birmingham Polymers Inc.,
Alabama, U.S.A.) werden in 60 ml einer 5% Albuminlösung unter Ultraschall (Branson
Sonifier, Stufe 7) für 2 Minuten emulgiert. Die gebildete o/w-Emulsion wird unter
folgenden Bedingungen sprühgetrocknet (Büchi Mini Spray Dryer B191): Einlaßtemperatur
= 110°C; Auslaßtemperatur = 60°C; Aspirator = 100%; Pumpe = 20%; Düse = 0.7 mm,
Flow = 600 l/hr. 0,1 g des Sprühtrocknungsguts werden in 1 ml 0,9%igen NaCl-Lösung
resuspendiert. Die Suspension wird gegebenenfalls 10 µm filtriert.
Die Teilchenzahlbestimmung ergibt eine Partikelkonzentration von 5.108 T/ml an
gasgefüllten Mikropartikeln. Die Teilchengrößenbestimmung der Partikel erfolgte mittels
Malvern MasterSizerS und liegt bei < 10 µm.
0,3 g Polylactid-co-glykolid-polyethylenglykol (PLGA (50 : 50)-PEG 5000, inh. visc.
0,41 dl/g, Lote D97033, Birmingham Polymers Inc., Alabama, U.S.A.) werden in 5 ml
DMSO gelöst und mit 7 ml Methylenchlorid verdünnt und in eine 5% Albuminlösung unter
Ultraschall (Branson Sonifier, Stufe 7) für 2 Minuten emulgiert. Die gebildete o/w-Emulsion
wird unter folgenden Bedingungen sprühgetrocknet (Büchi Mini Spray Dryer B191):
Einlaßtemperatur = 80°C; Auslaßtemperatur = 49°C; Aspirator = 100%; Pumpe = 10%;
Düse = 0.7 mm, Flow: 600 l/hr. 0,1 g des Sprühtrocknungsgut werden in 1 ml 0,9%iger
NaCl-Lösung resuspendiert. Die Suspension wird gegebenenfalls 10 µm filtriert.
Die Teilchenzahlbestimmung ergibt eine Partikelkonzentration von 4,8.108 T/ml an
gasgefüllten Mikropartikel. Die Teilchengrößenbestimmung der Partikel erfolgte mittels
Malvern MasterSizerS und liegt bei < 10 µm.
12 ml einer 2,5% (w/v) Polylactid-co-glykolid-polyethylenglykol Lösung in Methylenchlorid
(PLGA-PEG, 70 : 30, PEG 5000, inh.visc. 0,68 dl/g, Birmingham Polymers Inc., Alabama,
U.S.A.) werden in 60 ml einer 5%igen autoklavierten Gelatinelösung unter Ultraschall
(Branson Sonifier, Stufe 7) für 2 Minuten emulgiert. Die gebildete o/w-Emulsion wird unter
folgenden Bedingungen sprühgetrocknet (Büchi Mini Spray Dryer B191): Einlaßtemperatur
= 110°C; Auslaßtemperatur = 60°C; Aspirator = 100%; Pumpe = 20%; Düse = 0,7 mm,
Flow: 600 l/hr. 0,1 g des Sprühtrocknungsgut werden in 1 ml 0,9%iger NaCl-Lösung
resuspendiert. Die Suspension wird gegebenenfalls 10 µm filtriert.
Die Teilchenzahlbestimmung ergibt eine Partikelkonzentration von 1,8.108 T/ml an
gasgefüllten Mikropartikeln. Die Teilchengrößenbestimmung der Partikel erfolgte mittels
Malvern MasterSizerS und liegt bei < 10 µm.
12 ml einer 2, 5%-igen (w/v) Polylaktid-co-glykolid-polyethylenglykol Lösung in
Methylenchlorid (PLGA (70 : 30)-PEG 5000, inh. visc. 0,68 dl/g, Birmingham Polymers Inc.,
Alabama, U.S.A.) werden in 60 ml einer wäßrigen Lösung, die 10% (w/v) Dextran enthält,
unter Ultraschall (Branson Sonifier, Stufe 7) für 2 min emulgiert. Die gebildete o/w-Emul
sion wird unter folgenden Bedingungen sprühgetrocknet (Büchi Mini Spray Dryer
B191): Einlaßtemperatur = 110 °C; Auslaßtemperatur = 60°C; Aspirator = 100%; Pumpe =
20%; Düse = 0,7 mm, Flow: 600 l/hr. 0,1 g des Sprühtrocknungsgut werden in 1 ml
0,9%iger NaCl-Lösung resuspendiert. Die Suspension wird gegebenenfalls 10 µm filtriert.
Die Teilchenzahlbestimmung ergibt eine Partikelkonzentration von 3.108 T/ml an
gasgefüllten Mikropartikeln. Die Teilchengrößenbestimmung der Partikel erfolgte mittels
Malvern MasterSizerS und liegt bei < 10 µm.
12 ml einer 2,5% (w/v) Polylactid-co-glykolid-polyethylenglykol Lösung in Methylenchlorid
(PLGA (70 : 30)-PEG 5000, inh.visc. 0,68 dl/g, Birmingham Polymers Inc., Alabama,
U.S.A.) werden in 60 ml einer 5% Caseinlösung unter Ultraschall (Branson Sonifier, Stufe
7) für 2 Minuten emulgiert. Die gebildete o/w-Emulsion wird unter folgenden Bedingungen
sprühgetrocknet (Büchi Mini Spray Dryer B 191): Einlaßtemperatur = 110°C; Auslaß
temperatur = 60°C; Aspirator = 100%; Pumpe = 20%; Düse = 0,7 mm, Flow 600 l/hr. 0,1 g
des Sprühtrocknungsguts werden in 1 ml 0,9%iger NaCl-Lösung redispergiert. Die
Suspension wird gegebenenfalls 10 µm filtriert.
Die Teilchenzahlbestimmung ergibt eine Partikelkonzentration von 2,6.107 T/ml an
gasgefüllten Mikropartikeln. Die Teilchengrößenbestimmung der Partikel erfolgte mittels
MasterSizerS und liegt bei < 10 µm.
In 12 ml einer 2,5% (w/v) Polylactid-co-glykolid-polyethylenglykol Lösung mit 0,1%
Tween 20 in Methylenchlorid (PLGA (70 : 30)-PEG 5000, inh.visc. 0,68 dl/g, Birmingham
Polymers Inc., Alabama, U.S.A.) werden 1 ml einer 0,1%igen Propandiollösung in 1 ml
0,9%iger NaCl-Lösung. unter Ultraschall (Branson Sonifier, Stufe 7) für 20 s emulgiert. Die
gebildete w/o-Emulsion in 30 ml einer 10%-igen Lactoselösung. dispergiert (Ultra Turrax
T25, 2000 Upm). Die gebildete w/o/w Emulsion wird unter folgenden Bedingungen
sprühgetrocknet (Büchi Mini Spray Dryer B191): Einlaßtemperatur = 55°C; Auslaß
temperatur = 37°C; Aspirator = 100%; Pumpe = 10%; Düse = 0,7 mm, Flow: 600 l/hr. 0,1 g
des Sprühtrocknungsguts werden in 1 ml 0,9%iger NaCl-Lösung redispergiert. Die
Suspension wird gegebenenfalls 10 µm filtriert.
Die Teilchenzahlbestimmung ergibt eine Partikelkonzentration von 1,0.107 T/ml an
gasgefüllten Mikropartikeln. Die Teilchengrößenbestimmung der Partikel erfolgte mittels
Malvern MasterSizerS und liegt bei < 20 µm.
0,1 g des in der Formulierung C-3 gewonnenen Sprühguts werden in ein Vial abgefüllt und
im Gefriertrockner auf 200 mbar evakuiert. Anschließend wird die Probe mit Decafluor
butan (Flurochem) belüftet, erneut evakuiert und ein zweites Mal mit Decafluorbutan begast
und luftdicht verschlossen. 0,1 g des Sprühtrocknungsguts werden in 1 ml 0,9%iger NaCl-Lö
sung resuspendiert.
Die Teilchenzahlbestimmung ergibt eine Partikelkonzentration von 1,2.109 T/ml an
perfluorgasgefüllten Mikropartikeln. Die Teilchengrößenbestimmung der Partikel erfolgte
mittels MasterSizerS und liegt bei < 70 µm.
1,2 g des in der Formulierung C-3 gewonnenen Sprühguts werden in 100 ml Wasser
resuspendiert und in einem Scheidetrichter 48 h bei 4°C flotiert. Der Unterstand wird
verworfen und das Flotat wird in 10 ml Wasser aufgenommen. Die Suspension wird in
Aliquots à 2 ml abgefüllt, in flüssigem Stickstoff eingefroren und für 72 h gefriergetrocknet.
Mit 2 ml 0,9%iger NaCl-Lösung wird das Lyophilisat resuspendiert, 10 µm filtriert und
analysiert.
Die Teilchengrößenbestimmung der Partikel erfolgte mittels MasterSizerS und liegt bei
< 10 µm.
12 ml einer 2,5% (w/v) Polylactid-co-glykolid -polyethylenglykol Lösung in Methylenchlorid
(PLGA-PEG, 70 : 30,PEG 5000, inh.visc. 0,68 dl/g, Birmingham Polymers Inc., Alabama,
U.S.A.) werden in 60 ml einer wäßrigen Lösung, die 2% (w/v) Albumin und 5% (w/v)
Lactose enthält, unter Ultraschall (Branson Sonifier, Stufe 7) für 2 min emulgiert (o/w1).
Die wäßrige Phase (w2) besteht aus 20 ml einer 1% (w/v) Methylenblau-Lösung. Die
Sprühtrocknung erfolgt am Büchi Mini Spray Dryer B191, der mit einem Dreistoffaggregat
(Sonderanfertigung der Fa. Schlick-Düsen, Germany) ausgerüstet ist unter folgenden
Bedingungen: Kanal 1: o/w1-Emulsion, 10 ml/min; Kanal 2: w2, 2,7 ml/min; Einlaß
temperatur = 110°C; Auslaßtemperatur = 60°C; Aspirator = 100%; Düseninnendurchmesser
= 0,8 mm, Flow=600 l/hr. 0,1 g des Sprühtrocknungsguts werden in 1 ml 0,9%iger NaCl-Lö
sung. resuspendiert. Die Suspension wird gegebenenfalls 10 µm filtriert.
Die Teilchenzahlbestimmung ergibt eine Partikelkonzentration von ca. 5,5.108 T/ml an
gasgefüllten Mikropartikeln. Die Teilchengrößenbestimmung der Partikel erfolgte mittels
Malvern MasterSizerS und liegt bei < 10 µm.
3 ml einer 2,5% (w/v) Polylactid-co-glykolid-polyethylenglykol Lösung in Methylenchlorid
(PLGA-PEG, 70 : 30,PEG 5000, inh.visc. 0,68 dl/g, Birmingham Polymers Inc., Alabama,
U.S.A.) werden in 15 ml einer wäßrigen Lösung die 2% (w/v) Albumin und 5% (w/v)
Lactose enthält unter Ultraschall (Branson Sonifier, Stufe 7) für 2 min emulgiert (o/w1).
Für die Herstellung der wäßrigen DNA -Lösung wird 1 mg DNA (β-gal Plasmid pUT 651,
Cayla) in Gegenwart von 0,075% (w/v) Polyethylenimin (80% ethoxyliert, Aldrich) in 2 ml
Tris-Puffer 10 mM pH 7,4 bei RT für 30 min inkubiert. Anschließend wird das Volumen auf
10 ml mit Tris-Puffer aufgefüllt (w2).
Die Sprühtrocknung erfolgt am Büchi Mini Spray Dryer B191, der mit einem Dreistoff
aggregat (Sonderanfertigung der Fa. Schlick-Düsen, Germany) ausgerüstet ist unter
folgenden Bedingungen: Kanal 1: o/w1-Emulsion, 5 ml/min; Kanal 2: w2, 2,8 ml/min;
Einlaßtemperatur = 90 °C; Auslaßtemperatur= 50°C; Aspirator= 100%; Düsen ID. = 0,8
mm, Flow = 600 l/hr. 0,1 g des Sprühtrocknungsgut werden in 1 ml 0,9%iger NaCl-Lösung.
resuspendiert. Die Suspension wird gegebenenfalls 10 µm filtriert.
Die Teilchenzahlbestimmung ergibt eine Partikelkonzentration von ca. 5,5.108 T/ml an
gasgefüllten Mikropartikeln. Die Teilchengrößenbestimmung der Partikel erfolgte mittels
Malvern MasterSizerS und liegt bei < 10 µm.
Die in vitro Kontrasteffektivität der gasgefüllten Mikropartikel wurde bestimmt, um
Hinweise auf die Eignung des Kontrastmittels in vivo ableiten zu können. Es wurden 100 µl
der resuspendierten Mirkropartikelsuspension in 500 ml entgastem aqua purificata (37°C)
gegeben. Die Beschallung erfolgte mit einem HP Sonus 1000 mit einem Schallkopf bei einer
Frequenz von 3,5 MHZ und einer Schalleistung von 25 dB im B-Mode. Der Schallkopf
wurde senkrecht in die Suspension eingetaucht bis gerade die Transducer Oberfläche
vollständig von der Lösung benetzt wurde. Als Parameter für die Qualität des Kontrastes
wurden die visuelle Kontrastdauer und -intensität im Vergleich zu Mikropartikeln,
hergestellt gemäß den Ausführungen des Patents EP 19602930.9 herangezogen. Die
Ergebnisse sind in der nachstehenden Tabelle 1 zusammengefaßt.
Das Kontrastmittel wurde intravenös in den Hund (Beagle) appliziert und sowohl die
Signalverstärkung im B-Mode im linken Ventrikel gemessen als auch die Intensitäts-
Steigerung des Dopplersignals im Spektraldoppler an der Arteria femoralis bestimmt. In
einer weiteren Untersuchung wurde der Dopplershift durch "stimulated accoustic emission"
im Farbdoppler Mode im Nierenparenchym nachgewiesen. Die Ergebnisse sind in der
nachfolgenden Tabelle 2 zusammengefaßt.
Die Morphologie PLGA-PEG-haltiger Mikropartikel, die als gerüstbildende Komponente(n)
entweder nur Albumin (a) oder aber Albumin in Verbindung mit Lactose (b) enthielten,
wurde mit Hilfe eines Phasenkontrastmikroskops (1000-fache Vergrößerung; Phasen
kontrast ph 2). Dazu wurden je 10 µl resuspendiertes Partikelflotat pro Deckgläschen
eingesetzt.
Diese Aufnahmen (vgl. Abb. 7) zeigen, daß die Verwendung von Albumin als einzigen
gerüstbildenden Komponente zu relativ homogenen PLGA-PEG-Mikropartikeln führt, die
eine vergleichsweise geringe Aggregationstendenz aufweisen (Abb. 7a). Sie zeigen
weiterhin, daß PLGA-PEG-Mikropartikel, die gemäß einem weiterem Aspekt der Erfindung
als gerüstbildende Komponenten Albumin und Lactose enthalten, ihrer Form nach noch
homogener sind und nahezu keine Aggregationstendenz mehr aufweisen (Abb. 7b).
Abb. 1 Ultraschallaufnahmen des linken Herzventrikels eines Hundes im apikalen 4-
Kammerblick im B-Mode (a) ohne Ultraschallkontrastmittel (Leerwert) und (b) nach
intravenöser Gabe von gasgefüllten Polylactid-co-glykolid-PEG-Albumin-Lactose-
Mikropartikeln (Beispiel B-2; Dosis: 1 µl/kg).
Abb. 2 Ultraschallaufnahmen des linken Herzventrikels eines Hundes im apikalen 4-
Kammerblick im B-Mode (a) ohne Ultraschallkontrastmittel (Leerwert) und (b) nach
intravenöser Gabe von gasgefüllten Polylactid-co-glykolid-PEG-Albumin-Mikropartikeln
(Beispiel C-3; Dosis: 1 µl/kg).
Abb. 3 Ultraschallaufnahmen der Arteria femoralis eines Hundes (Spektraldoppler) (a)
ohne Ultraschallkontrastmittel (Leerwert) und (b) nach intravenöser Gabe von Decafluor
butan-gefüllten Polylactid-co-glykolid-PEG Mikropartikeln (Beispiel J-10; Dosis: 1 µl/kg).
Abb. 4 Ultraschallaufnahme der Arteriafemoralis eines Hundes (Spektraldoppler) (a) ohne
Ultraschallkontrastmittel und (b) nach intravenöser Gabe von gasgefüllten, durch Flotation
von kontrastarmen Bestandteilen abgetrennten Polylactid-co-glykolid-PEG-Albumin-Mikro
partikeln (Beispiel K-11; Dosis: 5 µl/kg).
Abb. 5 Ultraschallaufnahme der Niere eines Hundes (Farbdoppler) (a) ohne
Ultraschallkontrastmittel und (b) nach intravenöser Gabe von gasgefüllten, durch Flotation
von kontrastarmen Bestandteilen abgetrennten Polylactid-co-glykolid-PEG-Albumin-Mikro
partikeln (Beispiel K-11; Dosis: 5 µl/kg).
Abb. 6 Ultraschallaufnahme des linken Herzventrikels eines Hundes im apikalen 4-
Kammerblick im B-Mode nach intravenöser Gabe von gasgefüllten, durch Flotation von
kontrastarmen Bestandteilen abgetrennten Polylactid-co-glykolid-PEG-Albumin-Mikro
partikeln (Beispiel K-11; Dosis: 2 µl/kg).
Abb. 7 Phasenkontrastmikroskopische Aufnahmen von Polylactid-co-glykolid-PEG-
Albumin-Mikropartikeln (a) bzw. Polylactid-co-glykolid-PEG-Albumin-Lactose-Mikro
partikeln (b) (jeweils 1000-fache Vergrößerung).
Claims (16)
1. Gasgefüllte Mikropartikel, die ein Polymer und mindestens eine gerüstbildende
Komponente enthalten.
2. Gasgefüllte Mikropartikel gemäß Anspruch 1, wobei das Polymer entweder ein
Polylactid-co-glykolid (PLGA) oder ein Copolymer oder Block-Copolymer aus PLGA und
Polyethylenglykol (PEG) ist.
3. Gasgefüllte Mikropartikel gemäß den Ansprüchen 1 oder 2, die als gerüstbildende
Komponente(n) ein oder mehrere Proteine und/oder einen oder mehrere Zucker enthalten.
4. Gasgefüllte Mikropartikel gemäß dem Anspruch 3, wobei Albumin, Casein und/oder
Gelatine als gerüstbildende Komponente(n) verwendet werden.
5. Gasgefüllte Mikropartikel gemäß dem Anspruch 3, wobei Mono-, Di- und/oder Poly
saccharide als gerüstbildende Komponente(n) verwendet werden.
6. Gasgefüllte Mikropartikel gemäß den Ansprüchen 1-5, wobei die Mikropartikel im
wesentlichen frei von Tensiden sind.
7. Gasgefüllte Mikropartikel gemäß den Ansprüchen 1-6, wobei die Gasfüllung aus Luft,
Sauerstoff Stickstoff- Edelgasen, Kohlenstoffdioxid, gasförmigen Kohlenwasserstoffen
oder Perfluorgasen oder aus Mischungen dieser Gase besteht.
8. Gasgefüllte Mikropartikel gemäß den Ansprüchen 1-7, die therapeutische Wirkstoffe
oder diagnostische Substanzen enthalten.
9. Gasgefüllte Mikropartikel gemäß Anspruch 8, wobei es sich bei dem Wirkstoff um einen
Arzneistoff oder um eine biologisch aktive Substanz handelt.
10. Gasgefüllte Mikropartikel gemäß den Ansprüchen 8 und 9, wobei es sich bei der
biologisch aktiven Substanz um Peptide, Proteine und/oder Nukleinsäuren handelt.
11. Verfahren zur Herstellung von gasgefüllten Mikropartikeln gemäß den Ansprüchen 1-10,
das folgende Schritte beinhaltet:
- (i) Emulgierung einer nicht-wäßrigen Lösung des Polymers und einer wäßrigen Lösung mindestens einer gerüstbildenden Komponente und
- (ii) Sprühtrocknung der erhaltenen Emulsion.
12. Verfahren gemäß Anspruch 11, wobei die Luftfüllung der Mikropartikel in einem
weiteren Schritt durch andere Gase, bevorzugt Perfluorverbindungen, ersetzt wird.
13. Verfahren gemäß den Ansprüchen 11 und 12, wobei das Sprühtrocknungsgut
anschließend einem Flotationsschritt zur Abtrennung nicht-kontrastaktiver Bestandteile
unterzogen wird.
14. Verwendung der Mikropartikel gemäß den Ansprüchen 1 bis 10 als Kontrastmittel in
der Ultraschalldiagnostik.
15. Verwendung der Mikropartikel gemäß den Ansprüchen 1 bis 10 zur ultraschall
induzierten Wirkstofffreisetzung.
16. Pharmazeutische Mittel, die die Mikropartikel gemäß den Ansprüchen 1 bis 10 in einem
pharmazeutisch verträglichen Suspensionsmedium enthalten.
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