DE19525285A1 - In vitro Testverfahren zum Nachweis Chemikalien-induzierter embryotoxischer/teratogener Effekte - Google Patents
In vitro Testverfahren zum Nachweis Chemikalien-induzierter embryotoxischer/teratogener EffekteInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein in vitro-Testverfahren zum Nachweis
Chemikalien-induzierter embryotoxischer (z. B. auch teratogener)
Effekte auf der Basis differenzierender pluripotenter embryona
ler Stamm(ES)-Zellen der Maus und Ratte sowie an aus primordia
len Keimzellen etablierten embryonalen Keim(EG)-Zellen.
Der Nachweis teratogener Eigenschaften von chemischen Wirk
stoffen erfolgt derzeit durch Bestimmungen der Reproduktions
toxizität von Prüfsubstanzen nach Einfach- und Mehrfachappli
kation an trächtigen Laborsäugern und durch Prüfungen der
Embryotoxizität in frühen Stadien der Schwangerschaft (Holz und
Siegemund, Der Einsatz von Tieren in der Forschung und Entwick
lung im Verbraucher- und Umweltschutz, Abschlußbericht zur
Basiserhebung des Batelle-Instituts 1988). Des weiteren werden
in vitro-Versuche mit Säuger-Embryonen (Neubert und Merker, Cell
culture techniques - applicability for studies on prenatal
differentiation and toxicity, de Gruyter, Berlin - New York
(1981)) und embryonalen Organen für Teratogenitätsteste einge
setzt. Diese Testverfahren haben jedoch den großen Nachteil, daß
sie nach wie vor den Einsatz einer großen Anzahl von lebenden
Säugern, insbesondere Ratten und Mäusen voraussetzen. In vitro-
Testverfahren, bei denen Primärzellkulturen aus Extremitäten
knospen (z. B. "limb buds", Kochhar, Teratology 11, 273-287
(1975)), oder Gehirnanlagen embryonaler Ratten (Flint and Orton,
Toxicol. Appl. Pharmacol. 76, 383-395 (1984)) oder permanente
Zellinien aus embryonalen oder adulten Säugetiergeweben oder aus
menschlichen Geweben, wie Tumorzellen des Ovars oder embryonale
Gaumenzellen eingesetzt wurden, erfüllen im engeren Sinn nicht
die Anforderungen, die an Teratogenitätstests gestellt werden,
nämlich Hinweise auf mögliche Entwicklungsstörungen während der
Embryogenese zu geben.
Seit einigen Jahren gibt es Bemühungen, permanente Kulturen
totipotenter/pluripotenter embryonaler Stammzellen (ES-Zellen)
auch zum Nachweis embryotoxischer und mutagener Stoffe zu ver
wenden (Laschinski et al, Reproductive Toxicol. 5, 57-65 (1991),
Newall and Beedles, Toxicol. in Vitro 8, 697-701 (1994), Sehl
meyer and Wobus, Mutation Res. 324, 69-76 (1994)). Embryonale
Stammzellen sind die totipotenten Zellen des frühen Embryos,
aus denen sich der komplette Säugetierorganismus entwickelt.
Störungen während der Keimblatt- und pränatalen Entwicklung kön
nen zum Absterben der Embryonen (präimplantativem Tod), zu
Entwicklungsstörungen, Fehlentwicklungen bzw. Mißbildungen
führen.
Als in vitro-Systeme totipotenter bzw. pluripotenter Zellen sind
- 1. Embryonale Stammzellen (ES-Zellen), permanente Linien toti potenter embryonaler Zellen (Evans and Kaufman, Nature 282, 507- 509 (1981)) und
- 2. Embryonale Keimzellen ("embryonic germ cells", EG-Zellen), die aus primordialen Keimzellen (PGC) ca. 9 Tage alter Embryonen gewonnen und als permanente Zellinien kultiviert werden (Stewart et al, Dev. Biol. 161, 626-628 (1994))
bekannt.
Sowohl ES-Zellen als auch EG-Zellen sind totipotent und nehmen
in vivo nach Retransfer in die Blastozyste an der normalen
Embryogenese teil und sind in der Lage, die Keimbahn zu kolo
nisieren (Bradley et al, Nature Bd. 309, 255-256 (1984), Matsui
et al, Cell 70, 841-847 (1992)).
In vitro können ES-Zellen nach Differenzierung in Embryo-ähnli
chen Aggregaten, sogenannten "embryoid bodies" Derivate aller
drei Keimblätter bilden, d. h. in kardiogene (Doetschmann et al,
J. Embryol. Exp. Morphol. 87, 27-45 (1985)), myogene (Rohwedel
et al, Dev. Biol. 164, 87-101 (1994), neuronale und hämatopoie
tische Zellen (Wiles and Keller, Development 111, 259-267
(1991)) differenzieren.
In bisherigen Experimenten wurde nachgewiesen, daß das Teratogen
Retinsäure (RA) zu gravierenden Veränderungen der Expression
gewebespezifischer Gene führt, wenn es zu bestimmten Zeiten der
"embryoid body"-Differenzierung einwirkte und zu Aktivierung,
Hemmung oder Modulation der Expression von Herz- oder Skelett
muskel-spezifischen Genen führte (Wobus et al., Roux′s Arch.
Dev. Biol. 204, 1994, 36-45). Diese Aktivierung, Reprimierung
oder Modulation der Genexpression kann auch über Reportergene,
z. B. X-Gal oder Luziferase, sichtbar gemacht werden.
Bisherige in vitro-Verfahren mit ES-Zellen betreffen in erster
Linie Testverfahren zum Nachweis der zytotoxischen Wirksamkeit
embryotoxischer Verbindungen mit Hilfe des MTT-Testes
(Laschinski et al s. o.). Dabei wurde in ES-Zellen eine höhere
zytotoxische Sensitivität beobachtet als in differenzierten
Zellen.
Untersuchungen zur Zytotoxizität mit Hilfe des "stem cell tests"
zum Nachweis teratogener Effektivität wurden von Newall and
Beedles, Toxicol. in Vitro 8, 697-701 (1994) beschrieben.
In allen diesen Untersuchungen dienten zytotoxische Effekte als
Maß für embryoschädigende Eigenschaften teratogener/embryotoxi
scher Substanzen.
Es ist festzustellen, daß ES-Zellen das zur Zeit wichtigste
Zellmodell in der Entwicklungsbiologie sind, vor allem zur
Konstruktion transgener Organismen, ihr Einsatz in der Reproduk
tions- und Gentoxikologie bisher jedoch begrenzt ist.
Die Erfindung hat das Ziel, ein routinemäßig einsetzbares in
vitro-Testverfahren zur Ermittlung Chemikalien-induzierter
embryotoxischer/teratogener Effekte bereit zu stellen.
Die Aufgabe der Erfindung liegt darin, ein in vitro-Testverfah
ren zum Nachweis embryotoxischer/teratogener Eigenschaften von
chemischen Wirkstoffen an embryonalen Stamm(ES)-Zellen oder
an aus primordialen Keimzellen etablierten embryonalen Keim(EG)-
Zellen zu entwickeln. Das Testverfahren soll insbesondere geeig
net sein, Hinweise auf mögliche Entwicklungs- und Differenzie
rungsstörungen während der Embryogenese zu geben.
Die Erfindung wird gemäß der Ansprüche realisiert.
Es werden stabile transgene ES- oder EG-Stammzellklone konstru
iert, bei denen ein bakterielles Reportergen LacZ oder das
Luziferasegen unter die Kontrolle von gewebespezifischen Promo
toren oder Entwicklungskontrollgenen gebracht wird. Nach Diffe
renzierung der ES-Zellen in Anwesenheit teratogener Substanzen
in die verschiedenen Keimbahnderivate erfolgt eine differenzie
rungsanhängige Expression in den Zellen, die die gewebespezi
fischen Promotoren exprimieren. Die Aktivierung, Reprimierung
oder Modulation dieser gewebespezifischen Gene wird mit einer
einfachen Färbereaktion, dem X-Gal Assay, bestimmt. Mit der
Erfindung wird eine Batterie von relevanten Test-ES-Zellklonen
entwickelt, die neben dem Reportergen LacZ (und einer Neomycin
kassette zur Selektion stabiler Transfektanten) Promotor
sequenzen enthalten, die charakteristische und wesentliche
Merkmale der ektodermalen und mesodermalen Linie regulieren. Das
sollten insbesondere Gene sein, die die neuronale, kardiogene,
die Muskel- und die Skelettentwicklung determinieren. Nach
Transfektion dieser Vektoren in pluripotente ES-/EG-Zellen der
Maus oder der Ratte werden stabile Stammzellklone selektiert und
diese nach "embryoid body"-Entwicklung zu spezifischen Zeiten in
Anwesenheit von Testsubstanzen differenziert (Abb. 1). Danach
kann die differenzierungsabhängige Expression der gewebespezi
fischen Gene mit Hilfe der X-Gal-Färbung in verschiedenen Ent
wicklungsstadien (unter Zeiteinhaltung und Einsatz dafür geeig
neter Vektoren) nachgewiesen werden. Diese Färbetechnik ist
standardisierbar und über photometrische Verfahren automati
sierbar.
Mit diesem Testverfahren ist es möglich, in vitro Chemikalien-
induzierte Veränderungen der zellulären Differenzierung, die
während der Keimblattdifferenzierung und frühen embryonalen
Entwicklung stattfinden und zu Entwicklungsstörungen führen,
festzustellen. Bei dem erfindungsgemäßen Testverfahren werden
keine lebenden Tiere, sondern permanente Zellinien eingesetzt.
Der wesentliche Vorteil der Erfindung besteht darin, daß ein
standardisierbares, im Routine-Screening einsetzbares in vitro
Modell etabliert wird, das zu einer Einsparung von Versuchstie
ren führt. So wurden im Bereich der Reproduktionstoxikologie in
Deutschland pro Jahr (1987) ca. 20 000 Säugetiere und Vögel ein
gesetzt. Darüber hinaus werden eine große Anzahl von Säugern zur
Entnahme embryonaler Organe und Gewebe (embryonale Herzmuskel
zellen, "limb bud" Kulturen, "micromass"-Assay u. a.) benötigt,
so daß die Gesamtzahl bei Tierzahlen von mindestens 50 000
liegen dürfte.
Mit dem erfindungsgemäßen Verfahren können im Vorscreening fol
gende Testverfahren teilweise ersetzt und ergänzt werden:
- - in vivo-Segment II-Studien,
- - Teste mit embryonalen Organen ("limb bud" Kulturen) und Pri märkulturen
- - Testverfahren mit artifiziellen Embryonen
Anschließend wird die Erfindung an einem Ausführungsbeispiel nä
her erläutert, das die Anmeldung jedoch nicht beschränken soll.
Das Testverfahren ist in Abb. 1 schematisch dargestellt.
Es werden transgene ES-Zellklone, bei denen LacZ unter der
Kontrolle des vetrikelspezifischen MCL-2V Promotors (Franz et
al, Circ. Res. 73 (1993) 629-638) exprimiert wird, für die Un
tersuchung solcher kardiotoxischen Substanzen eingesetzt, die zu
Entwicklungsstörungen am Herzen führen.
Zum Einsatz kommen Klone, die mit dem Vektor pGNA-MLC 2.1-LacZ
transfiziert wurden und MLC-2V stabil exprimieren.
Während der mesodermalen Differenzierung in embryoid bodies wird
die Testsubstanz Retinsäure (RA) zugegeben (z. B. von Tag 5 bis
15) und anschließend eine X-Gal-Färbung der differenzierten em
bryoid bodies durchgeführt.
Abb. 2 zeigt die Aktivierung der MLC-2V-Expression im MLC-Klon
3 durch 10-8M (E,F)und 10-9M (C,D)RA nach Behandlung zwischen 5.
und 15. Tag der embryoid body-Differenzierung. Die Kontrollzel
len (A,B) zeigen X-Gal-Färbung ohne Induktion durch die terato
gene Substanz RA.
Die Vektoren werden auch zur Transfektion von EG-Zellen oder von
Ratten-ES-Zellen benutzt.
Claims (7)
1. In vitro-Testverfahren zum Nachweis Chemikalien-induzierter
embryotoxischer/teratogener Effekte auf der Basis differenzie
render pluripotenter embryonaler Stamm(ES)-Zellen oder an aus
primordialen Keimzellen etablierten embryonalen Keim(EG)-Zellen
der Maus und Ratte durch
- - Selektion stabiler transgener ES-/EG-Zell-Klone,
- - differenzierungsabhängige Expression gewebespezifischer Gene von ES-/EG-Zell-Klonen in Anwesenheit von zu bestimmten Zei ten der in vitro Differenzierung einwirkenden teratogenen Sub stanzen und nachfolgende Differenzierung in die verschiedenen Keimbahnderivate und
- - Nachweis der Chemikalien-induzierten Aktivierung, Repri mierung oder Modulation von gewebespezifischen und die Embryo nalentwicklung beeinflussenden Genen.
2. In vitro-Testverfahren nach Anspruch 1, dadurch gekenn
zeichnet, daß zur Konstruktion der transgenen Zell-Klone belie
bige Reportergene, z. B. LacZ oder Luciferase, unter die Kon
trolle von gewebespezifischen Promotoren, die zellspezifische
Strukturgene, Transkriptionsfaktoren oder Entwicklungskontroll
gene kontrollieren, gebracht werden.
3. In vitro-Testverfahren nach Anspruch 1 + 2, dadurch
gekennzeichnet, daß die Zell-Klone
- - das Reportergen LacZ und eine Neomycinkassette zur Selektion stabiler Transfektanten sowie
- - Promotorsequenzen von Genen, die charakteristische und wesent liche Merkmale der ektodermalen und mesodermalen Linie kodie ren,
enthalten.
4. In vitro-Testverfahren nach Anspruch 1 + 2, dadurch
gekennzeichnet, daß als Promotoren solche eingesetzt werden, die
gewebespezifische Gene kodieren, wie z. B. Gene, die die neuro
nale Herz-, Muskel- oder Skelettentwicklung determinieren, oder
Promotoren anderer Entwicklungskontrollgene (Hox oder Pax-Gene).
5. In vitro-Testverfahren nach Anspruch 1 + 2, dadurch gekenn
zeichnet, daß im Verlauf der Differenzierung durch exogene
Testsubstanzen die Reportergenkonstrukte spezifisch aktiviert,
reprimiert oder moduliert werden und daß die differenzierungs
abhängige Expression im Testverfahren über "embryoid body"-
Differenzierung in verschiedene Linien, siehe 4, erfolgt.
6. In vitro-Testverfahren nach Anspruch 1-6, dadurch gekenn
zeichnet, daß durch Einwirkung von Chemikalien das Expressions
muster der Promotor-Reportergenkonstrukte beeinflußt und mit
Hilfe der X-Gal-Färbung bestimmt wird.
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