DE10037687A1 - Verfahren zur Herstellung von Oligonucleotid-Arrays und zur Durchführung von Hybridisierungs-Assays sowie Anlagen zur Durchführung dieser Verfahren - Google Patents
Verfahren zur Herstellung von Oligonucleotid-Arrays und zur Durchführung von Hybridisierungs-Assays sowie Anlagen zur Durchführung dieser VerfahrenInfo
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Abstract
Beschrieben wird ein Verfahren zur Herstellung eines Oligonucleotid-Arrays auf einer Träger-Disk 10, wobei auf einer Untersuchungsseite 11 Kupplungsorte vorgesehen sind, an denen die Oligonucleotide seriell mit der Disk verknüpft werden. Der Oligonucleotid-Array kann in Hybridisierungs-Assays verwendet werden. Zum Herstellen des Arrays wird die Disk rotiert und/oder werden Lichtquelle und Disk in radialer Richtung relativ zueinander verschoben. Die Auswertung eines Hybridisierungs-Assays erfolgt auf analoge Weise.
Description
Die Erfindung betrifft Verfahren zur Herstellung von Oligonucleotid-
Arrays und zur Durchführung von Hybridisierungs-Assays sowie Anlagen zur
Durchführung dieser Verfahren.
Mit dem Fortschreiten der molekulargenetischen Kenntnisse, beispiels
weise im Human Genome Project, ist ein rasches Anwachsen der Zahl bekannter
DNA-Sequenzen verbunden. Mit den gewonnenen Sequenz-Informationen lassen
sich spezifische Nucleinsäuren (DNA, RNA oder chemisch modifizierte
Nucleinsäuren) herstellen, mit denen in Hybridisierungs-Verfahren bei
spielsweise pathogene Bakterien oder das Vorliegen von Mutationen (Gen-
Diagnostik) detektiert und gegebenenfalls identifiziert werden können.
Wegen der hohen Aussagesicherheit solcher Hybridisierungs-Assays
werden Anstrengungen unternommen, durch Automatisierung und Miniaturisie
rung eine möglichst hohe Anzahl von Proben und Sonden in möglichst kurzer
Zeit untersuchen zu können.
Häufig wird dabei auf einem festen Träger eine Nucleinsäure, zumeist
die Sonde, immobilisiert oder gleich an Ort und Stelle synthetisiert. Im
letzteren Fall wird zunächst ein Startmolekül als Kupplungssubstanz,
beispielsweise ein sogenannter Spacer oder Linker wie beispielsweise
Bernsteinsäure oder Aminopropyl-Spacer, auf der Träger-Oberfläche fixiert.
Um an unterschiedlichen Orten auf dem Träger unterschiedliche
Nucleinsäuren synthetisieren zu können, ist eine ortsabhängige, gesteuerte
Reaktionsführung notwendig.
Insbesondere hat sich ein Synthese-Verfahren nach Fodor et al.,
Science 251, 767 (1991) etabliert, bei dem die benötigten Synthese-Bauele
mente, nämlich Linker und einzelne Nucleoside, jeweils mit photolabilen
Schutzgruppen ausgestattet sind. Beispiele für solche Schutzgruppen werden
insbesondere von W. Pfleiderer in "Biophosphates and Their Analogues -
Synthesis, Structure, Metabolism and Activity", Elsevier (Amsterdam) 1987
angegeben.
Die zunächst auf dem Träger fixierten (geschützten) Linker-Moleküle
werden an den Orten, an denen ein Syntheseschritt stattfinden soll,
belichtet, wodurch dort die photolabilen Linker-Schutzgruppen entfernt und
die Linker entschützt werden. Dann wird eine Lösung hydroxyl-geschützter
(Desoxy-)Nucleoside appliziert. Diese werden an den photochemisch ent
schützten Linkem kovalent gebunden. Die nicht gebundenen Nucleoside werden
vom Träger abgewaschen. Anschließend werden die ortsabhängige Belichtung
(Entschützung weiterer Linker und/oder bereits angelagerter Nucleosid-
Bauelemente) und die Zugabe von (weiteren) Nucleosid-Bauelementen (mit
jeweils vorbestimmten Basen) so oft wiederholt, bis an jedem Kupplungsort
des Trägers die Synthese abgeschlossen ist. Als Ergebnis liegt dann auf dem
Träger ein Nucleinsäure-Array vor. Üblicherweise sind die an den Kupplungs
orten erzeugten, fixierten Oligonucleotide zwischen 6 und 30 Basen lang. Im
Rahmen dieser Erfindung werden unter dem Begriff "Oligonucleotid" aber auch
längere, z. B. 200 Basen lange Nucleinsäuren oder Polynucleotide, beispiels
weise ganze Chromosomen, verstanden.
Moderne Geräte, mit denen das Verfahren nach Fodor et al. durch
geführt wird, verwenden Silizium-Chips, auf denen mit Hilfe von Photolitho
graphie-Belichtungstechniken mehrere Zehntausend unterschiedliche Nuclein
säuren pro Chip synthetisiert werden. Diese Geräte sind jedoch, beispiels
weise wegen der Reinheits- und Präzisionsanforderungen der Chip-Technik und
der Photolithographie, in Anschaffung und Betrieb sehr teuer, so daß sie
nur für wenige große Firmen in Frage kommen. Außerdem besteht die Gefahr,
daß mit einer einzigen Fehlbelichtung, beispielsweise durch eine im Bezug
zum Träger-Chip minimal falsch ausgerichtete photolithographische Maske,
alle auf dem Chip hergestellten Nucleinsäuren eine falsche Basenfolge
besitzen und der gesamte Chip dadurch unbrauchbar ist.
Es war daher die primäre Aufgabe der vorliegenden Erfindung, ein
Verfahren zur Erzeugung eines Oligonucleotid-Arrays anzugeben, das tech
nisch einfach durchzuführen ist und vorzugsweise mit einer üblichen
Antriebstechnik und mit üblichen (eventuell leicht modifizierten) Geräten
durchgeführt werden kann.
Dis gestellte Aufgabe wird erfindungsgemäß gelöst durch ein Verfahren
zur Erzeugung eines Oligonucleotid-Arrays, mit folgenden Schritten:
- a) Bereitstellen
- - einer Träger-Disk mit (zumindest) einer Untersuchungsseite, auf der an einer Anzahl von Kupplungsorten photochemisch aktivier bare Kupplungssubstanzen zur jeweiligen Fixierung eines Oligo nucleotids oder Oligonucleotid-Bauelements (z. B. ein mit Schut zgruppen versehenes Nucleosid) angeordnet sind und
- - einer Lichtquelle zur selektiven photochemischen Aktivierung der Kupplungssubstanzen an einzelnen Kupplungsorten,
- b) Verkuppeln der Kupplungssubstanz an einem ersten Kupplungsort mit
einem Oligonucleotid oder Oligonucleotid-Bauelement, indem
- - das Oligonucleotid bzw. Oligonucleotid-Bauelement auf zumindest den ersten Kupplungsort appliziert,
- - die Lichtquelle auf den ersten Kupplungsort gerichtet und
- - die Kupplungsverbindung am ersten Kupplungsort durch Beleuchten mit der Lichtquelle aktiviert wird,
- c) Rotieren der Disk und/oder Verschieben von Lichtquelle und Disk in radialer Richtung relativ zueinander, um die Lichtquelle auf einen weiteren Kupplungsort zu richten.
Besonders wichtig ist im Rahmen der vorliegenden Erfindung, daß die
Träger-Disk gemäß Schritt c) zwischen zwei Kupplungsorten (Syn
theseschritten) rotiert wird. Durch diese Verfahrensführung wird nämlich
auf vorteilhafte Weise nicht nur eine technisch einfach zu realisierende
Bewegung des Trägers erreicht, sondern zusätzlich auch die Möglichkeit
eröffnet, durch Fliehkräfte mechanisch einfach und unmittelbar auf die
üblicherweise in flüssiger Darreichungsform (als Lösung oder Suspension)
applizierten Oligonucleotide bzw. Oligonucleotid-Bauelemente einzuwirken.
Beispielsweise können unter der Wirkung von Fliehkräften sehr leicht
Flüssigkeitstropfen auf der Träger-Disk-Oberfläche radial verschoben oder
ganz vom Träger abgeschleudert werden. Letzteres ist bei den in Synthese-
und Hybridisierungsverfahren üblicherweise notwendigen Waschschritten von
besonderem Vorteil. Durch das Vorsehen besonderer Oberflächenstrukturen,
beispielsweise Kanäle oder durch besonders beschichtete, hydrophile bzw.
hydrophobe Bereiche der Trägeroberfläche kann bei einer Rotation die
aufgrund der Fliehkraft induzierte Radial-Beschleunigung einer Flüssigkeit
auf der Träger-Disk in eine Bewegung auf einer Kreis- oder Spiralbahn um
die Rotationsachse umgesetzt werden. Insgesamt führen diese Vorteile dazu,
daß in dem erfindungsgemäßen Verfahren zumindest weitgehend auf Pipetten
oder ähnliche Mittel verzichtet werden kann, mit denen ansonsten Flüssig
keiten von Träger-Oberflächen abgesaugt werden können.
Bei der im erfindungsgemäßen Verfahren eingesetzten Träger-Disk
handelt es sich um eine vorzugsweise flache, im wesentlichen kreisförmige
Scheibe. Bei solchen Disks ist es sehr einfach, den Schwerpunkt für eine
unwuchtarme Rotationsbewegung zu bestimmen. Im Rahmen dieser Beschreibung
gelten dabei solche Disks als flach, bei denen das Verhältnis von Höhe zu
Durchmesser des Umfangskreises kleiner oder gleich 1 : 10 ist.
Vorzugsweise umfaßt die Träger-Disk eine zentral angeordnete Aus
nehmung. Dadurch wird es besonders erleichtert, die Disk auf einem Drehtel
ler zur Rotation auszurichten und zu fixieren. Die zentrale Ausnehmung wird
häufig kreisförmig sein, kann aber auch eine andere Ausgestaltung haben.
Letzteres kann insbesondere dann vorteilhaft sein, wenn eine exakte
Ausrichtung der Disk auf dem Drehteller, beispielsweise wegen des Vorhan
denseins besonderer Disk-Elemente (wie elektrischer Kontakte) oder zur
Verhinderung minimaler Relativ-Verschiebungen von Disk und Drehteiler,
erwünscht ist. Der Drehteller besitzt dann eine komplementär zur Ausnehmung
ausgestaltete Halteeinrichtung zum Eingriff in die Ausnehmung.
Vorzugsweise entspricht die Träger-Disk in ihrem Außendurchmesser und
gegebenenfalls dem Durchmesser der zentralen Ausnehmung einer herkömmlichen
Langspielplatte (LP), Compact Disk (CD), DVD oder Minidisk. Bei diesen
Abmessungen kann zur Rotation der Disk auf die zum Abspielen herkömmlicher
LPs oder CDs entwickelte Antriebstechnik zurückgegriffen werden, was die
Fertigung des Rotations-Antriebssystems für die Träger-Disk erleichtert.
Wie erwähnt, besitzt die im erfindungsgemäßen Verfahren eingesetzte
Disk auf einer Untersuchungsseite eine Anzahl von Kupplungsorten, an denen
photochemisch aktivierbare Kupplungssubstanzen zur jeweiligen Fixierung
eines Oligonucleotids oder Oligonucleotid-Bauelements angeordnet sind (vgl.
Verfahrensschritt a). Die Kupplungssubstanzen sind dabei vorzugsweise
übliche, photochemisch aktivierbare Linker/Spacer, wie sie beispielsweise
auch von Fodor et al. eingesetzt werden. Die Photo-Reaktionsmechanismen
dieser Kupplungssubstanzen sowie ihre Herstellung sind dem Fachmann
bekannt; er kann aus einer Reihe möglicher Stoffe diejenigen auswählen, die
seinen speziellen Bedürfnissen am besten entsprechen. Anstelle üblicher
Linker/Spacer können auch mit Schutzgruppen versehene, verlängerbare
Nucleoside oder Oligonucleotide auf dem Fachmann bekannte Weise direkt mit
dem Trägermaterial verknüpft sein und als Kupplungssubstanz dienen.
Die Kupplungsorte können auf der Träger-Disk vorbestimmt sein, indem
nur bestimmte, räumlich gegeneinander abgegrenzte Bereiche der Unter
suchungsseite (Mikrochemotope) mit Kupplungssubstanz beschichtet sind. Dies
ist insbesondere dann vorteilhaft, wenn auf der (zumindest einen) Unter
suchungsseite besondere Oberflächenstrukturen wie Mikrokanäle oder Reak
tions-Ausnehmungen (wells, Kavitäten) vorgesehen sind. Die benötigte Menge
an Kupplungssubstanz oder -substanzen zur Herstellung der gemäß Verfah
rensschritt a) bereitzustellenden Träger-Disk kann dann sehr gering sein.
Alternativ kann die Untersuchungsseite auch einen zusammenhängenden
Bereich besitzen, der überall mit Kupplungssubstanz beschichtet ist, und
von dem Teilbereiche als Kupplungsorte verwendet werden. In diesem Falle
werden die Kupplungsorte vorzugsweise nicht bereits bei der Herstellung der
Disk genau vorbestimmt, sondern werden erst bei Durchführung des erfin
dungsgemäßen Verfahrens definiert. Da dann bei der Herstellung der Träger-
Disk die genaue Lage der Kupplungsorte noch nicht berücksichtigt werden
muß, ist die Herstellung solcher Träger besonders einfach.
Zumindest an den Kupplungsorten (als Basis für die photochemisch
aktivierbaren Kupplungssubstanzen) besitzt die Disk vorzugsweise eine Glas-
oder Kunststoff-Oberfläche, da an solchen Oberflächen zahlreiche Fest
phasen-Synthesereaktionen und Hybridisierungsreaktionen besonders einfach
durchgeführt werden können. Alternativ kann jedoch auch Silizium die Basis
für die Kupplungsorte bilden.
Gemäß einer bevorzugten Ausgestaltung des erfindungsgemäßen Ver
fahrens ist zumindest die Kupplungssubstanz am ersten Kupplungsort,
vorzugsweise aber auch jede der Kupplungssubstanzen an den weiteren Kupp
lungsorten, mit einer Schutzgruppe versehen, welche durch Beleuchten mit
der Lichtquelle so entfernbar ist, daß eine ungeschützte (aktivierte)
Kupplungssubstanz entsteht, die in definierter Weise mit dem Oligonucleotid
bzw. Oligonucleotid-Bauelement kuppeln kann, Bem Fachmann sind eine Reihe
geeigneter Schutzgruppen bekannt, mit denen das erfindungsgemäße Verfahren
einfach durchgeführt werden kann.
Die im erfindungsgemäßen Verfahren eingesetzte Lichtquelle zur selek
tiven photochemischen Aktivierung der Kupplungssubstanzen ist vorteilhaf
terweise eine zur photochemischen Aktivierungen der Kupplungssubstanzen
(und gegebenenfalls zur Aktivierung auf entsprechende Weise aktivierbarer
Oligonucleotide und/oder Oligonucleotid-Bauelemente) eingerichtete Laser-
Lichtquelle. Laserlicht hat den Vorteil, daß es nur einen eng begrenzten,
auf die betreffende Photoreaktion abgestimmten Wellenlängenbereich umfaßt,
gut fokussierbar ist und dabei auf dem Fachmann bekannte Weise preiswert
erzeugt werden kann.
Besonders vorteilhaft ist es, wenn im erfindungsgemäßen Verfahren
photoaktivierbare Substanzen (z. B. mit Schutzgruppen versehene Linker,
Oligonucleotide oder Oligonucleotid-Bauelemente) verwendet werden, die
durch das Licht herkömmlicher, in CD- oder DVD-Lese- und/oder -Schreibgerä
ten verwendeten Laser-Lichtquellen aktiviert werden können.
Es kann notwendig sein, bei der Synthese mehr als eine Laser-Licht
quelle zu verwenden, beispielsweise wenn für unterschiedliche Photo-
Reaktionen jeweils unterschiedliche Wellenlängen benötigt werden.
Die Lichtquelle wird erfindungsgemäß nacheinander auf verschiedene
Kupplungsorte gerichtet. Die jeweilige Ausrichtung kann dabei beispielweise
über ein Lichtleitsystem mit Spiegeln oder über optisch leitfähige Kabel
wie Glasfaserkabel erfolgen. Dies ist insbesondere dann vorteilhaft, wenn
eine oder mehrere benötigte Lichtquellen zu sperrig oder zu massiv sind, um
selbst sowohl schnell als auch exakt radial gegenüber der Disk verschoben
zu werden.
Vorzugsweise umfaßt die Träger-Disk Bereiche, auf denen digitale
Daten in maschinenlesbarer Form gespeichert und/oder ausgelesen werden
können. Besonders vorteilhaft ist es, wenn die Träger-Disk so eingerichtet
ist, daß gemäß den allgemeinen Prinzipien der CD-Technik mittels einer
(Laser-)Lichtquelle (vorzugsweise einer zur Durchführung einer Kupplungs
reaktion geeigneten Lichtquelle) ein Beschreiben der Disk mit digitalen
Daten und/oder ein Auslesen digitaler Daten von der Disk möglich ist.
Im erfindungsgemäßen Verfahren wird gemäß Schritt b) an einem ersten
Kupplungsort die dort vorliegende Kupplungssubstanz mit einem Oligonu
cleotid oder Oligonucleotid-Bauelement verkuppelt; in Folgeschritten können
weitere Bauelemente angekuppelt werden. Es gibt eine Reihe von Verfahren
zur präparativen Synthese von Nucleinsäuren unter Einsatz von Bauelementen
mit photochemischen Schutzgruppen, derer sich der Fachmann auch im Rahmen
der vorliegenden Erfindung bedienen kann. Auf das Synthese-Verfahren nach
Fodor et al. wurde bereits hingewiesen. Mit fortschreitender Entwicklung
der Oligonucleotid-Synthese-Chemie werden dem Fachmann weitere Methoden zur
Verfügung gestellt werden, die dann auch (gegebenenfalls in angepaßter
Form) im erfindungsgemäßen Verfahren zum Einsatz kommen können.
Zur Applikation der Oligonucleotide oder Oligonucleotid-Bauelemente -
in Schritt b) des erfindungsgemäßen Verfahrens und entsprechenden Folge
schritten - werden vorteilhafterweise Dispensiereinrichtungen wie (Mikro-)Pi
petten, die dem Fachmann zur Applikation kleiner Flüssigkeitsmengen
bekannt sind, verwendet. Solche Pipetten haben eine hohe Abmeßgenauigkeit.
Anstelle herkömmlicher Pipetten können ebensogut Kombinationen aus
feinen Düsen und Druckimpuls-Elementen eingesetzt werden, z. B. Piezo-
Elemente ähnlich den in Tintenstrahl-Druckerköpfen verwendeten Systemen.
Diese Systeme bieten insbesondere den Vorteil, daß auch kleinste Flüssig
keitsmengen im Mikro- und Nanoliter-Bereich mit hoher Genauigkeit unter
Verwendung einer geringen Zahl beweglicher Bauteile selektiv auf kleine
Zielflächen (beispielsweise mit einem Durchmesser von weniger als 1 mm)
appliziert werden können.
Außerdem oder alternativ dazu können die gegebenenfalls auf der Disk-
Oberfläche vorgesehenen besonderen Oberflächenstrukturen wie Kanäle,
Kavitäten und dergleichen derart als Applizierhilfen ausgestaltet sein, daß
bei (ausreichend schneller) Rotation des Trägers durch das Zusammenwirken
von Fliehkraft und Oberflächengestaltung Flüssigkeiten von einer Startposi
tion aus gezielt zu einzelnen Kupplungsorten hin befördert werden können.
Eine Flüssigkeit mit einem zu applizierenden Oligonucleotid oder
Oligonucleotid-Baustein kann dann in einer Startposition in einiger
Entfernung vom entsprechenden Kupplungsort auf die Träger-Disk aufgetragen
und durch die bei der Disk-Rotation wirkenden Kräfte entlang einer von der
Oberflächenstruktur vorgegebenen Bahn zum Kupplungsort transportiert
werden.
Die Synthese-/Kupplungsreaktionen können unter einer transparenten
Schicht in einem abgegrenzten Volumen, beispielsweise in einer röhrenförmi
gen Kanalstruktur oder in einer abgedeckten Kammer, durchgeführt werden.
Bei Vorgabe derartiger Strukturelemente kann das spätere Reaktionsvolumen
bereits bei der Herstellung der Träger-Disk definiert werden. Die Kupp
lungs- und Synthesereaktion kann dann mit Zugabe eines Überschusses der
beteiligten Lösungen durchgeführt werden, wobei der überschüssige Rest
beispielsweise in geeignete, auf der Träger-Disk vorzusehende Auffangkam
mern abgeführt werden kann. Dementsprechend muß bei einer solchen Begren
zung des Reaktionsvolumens die Abmeßgenauigkeit für die Applikation der
beteiligten Lösungen lediglich ausreichend sein, um die Applikation jeweils
eines Lösungs-Überschusses zu sichern; die exakte Dosierung wird dann durch
die Strukturelemente der Träger-Disk vorgenommen.
Zudem verringert eine transparente Abdeckung, beispielsweise aus Glas
oder Kunststoff, die Verdunstung von Flüssigkeiten am Kupplungsort.
Nach dem Verkuppeln am ersten Kupplungsort wird die Lichtquelle gemäß
Schritt c) auf einen weiteren Kupplungsort ausgerichtet, indem gegebenen
falls die Disk rotiert bzw. die Lichtquelle radial gegenüber der Träger-
Disk verschoben wird. Beide Bewegungen können auch gleichzeitig statt
finden. Nach der Neuanordnung von Lichtquelle und/oder Disk ist die
Lichtquelle auf den weiteren Kupplungsort ausgerichtet, an dem dann auf die
beschriebene Weise eine weitere photochemische Kupplungs-Synthese-Reaktion
durchgeführt werden kann.
Vorteilhaft ist es, wenn mehr als zwei, vorzugsweise mehr als zehn
Kupplungssubstanzen an verschiedenen Kupplungsorten zeitlich nacheinander
(seriell) photochemisch aktiviert und mit einem jeweiligen Oligonucleotid
oder Oligonucleotid-Bauelement verkuppelt werden, wobei zwischen je zwei
photochemischen Aktivierungsschritten an verschiedenen Kupplungsorten die
Disk rotiert und/oder Lichtquelle und Disk in radialer Richtung relativ
zueinander verschoben werden, um die Lichtquelle auf den jeweils nächsten
Kupplungsort zu richten.
Auf vorteilhafte Weise kann so erreicht werden, daß ein großer Teil
der auf dem Träger für Kupplungsreaktionen zur Verfügung stehenden Fläche
genutzt wird. So können auf einer Träger-Disk ortsaufgelöst eine Vielzahl
von Kupplungs-Synthesen durchgeführt werden.
Nachdem an allen gewünschten Kupplungsorten die jeweiligen Kupplungs
reaktionen durchgeführt wurden, kann die Träger-Disk in schnelle Rotation
versetzt werden, um die auf ihr befindlichen Flüssigkeitströpfchen ab
zuschleudern. Ein Abschleudern kann natürlich ebensogut nach jedem einzel
nen Kupplungsschritt erfolgen. Waschflüssigkeiten können auf den Träger
appliziert und gegebenenfalls durch Rotation der Träger-Disk verteilt
werden, und auch diese Flüssigkeiten können wiederum durch Rotation
abgeschleudert werden.
Ferner ist ein Verfahren bevorzugt, bei dem eine aktivierte Kupp
lungssubstanz an einem oder, zeitlich nacheinander, aktivierte Kupplungs
substanzen an mehreren Kupplungsorten mit einem geschützten Nucleosid ver
kuppelt werden, welches anschließend seinerseits durch Beleuchten mit der
Lichtquelle aktiviert werden kann. Durch die photochemische Aktivierung
angekuppelter Nucleoside und ihre Umsetzung mit weiteren, lokal zugeord
neten Nucleosiden, ist dann auf einfache Weise eine beliebige Verlängerung
der Nucleotid-Kette möglich.
Die Erfindung betrifft auch eine Anlage zur Durchführung der be
schriebenen Verfahren zur Herstellung eines Oliugonucleotid-Arrays, wobei
die Anlage umfaßt:
- - eine Träger-Disk mit (zumindest) einer Untersuchungsseite, auf der an einer Anzahl von vorbestimmten Kupplungsorten photo chemisch aktivierbare Kupplungssubstanzen zur Fixierung eines Oligonucleotids oder Oligonucleotid-Bauelements angeordnet sind
- - eine Lichtquelle zur selektiven photochemischen Aktivierung der Kupplungssubstanzen an einzelnen Kupplungsorten,
- - eine Adressiereinrichtung zum Rotieren der Disk und zum Ver schieben von Lichtquelle und Disk in radialer Richtung relativ zueinander, um die Lichtquelle auf einen vorgegebenen Kupplungsort auf der Untersuchungsseite der Disk zu richten.
Die durch verschiedene Gestaltungsmöglichkeiten der Anlage erziel
baren Vorteile wurden zuvor beschrieben.
Wie eingangs erwähnt betrifft die vorliegende Erfindung nicht
ausschließlich ein Verfahren und eine Anlage zur Herstellung eines Oligonu
cleotid-Arrays, sondern auch ein Verfahren zur Durchführung eines Nybridis
ierungs-Assays, umfassend:
- a) das Bereitstellen einer auf erfindungsgemäße Weise mit einem Oligonucleotid-Array versehenen Träger-Disk und
- b) die Applikation von Nucleinsäuren (DNA, RNA oder deren Deriva te) an zumindest einem Kupplungsort auf der Träger-Disk und das Einstellen ausreichend stringenter Hybridisierungsbedingungen.
Ein solches Verfahren ermöglicht vorteilhaft, eine Vielzahl von
Hybridisierungsreaktionen mit einer einzelnen Träger-Disk durchzuführen.
Auf diese Weise können beispielsweise verschiedene, an der Träger-Disk
gebundene Sonden mit einer Probe einer Nucleinsäure unbekannter Sequenz in
Kontakt gebracht werden, um Aufschluß über die Sequenz der beprobten
Nucleinsäure zu erhalten. Der Fachmann kann bei der Durchführung des
Verfahrens geeignete Hybridisierungsbedingungen wählen, die er gegebenen
falls anhand üblicher Versuchsreihen bestimmen wird.
In der Regel wird bei der Durchführung des Assays eine optische Aus
wertung des Hybridisierungs-Resultats vorgenommen. In einer entsprechenden
Anlage zur Auswertung eines Hybridisierungs-Assays kann eine Auswerteoptik
vorgesehen sein, die vorzugsweise mit einer Adressiereinrichtung zusammen
wirkt, die so eingerichtet ist, daß ein Rotieren der Disk und/oder ein Ver
schieben von Disk und Auswerteoptik in radialer Richtung relativ zueinander
durchführbar ist, um die Auswerteoptik zwischen zwei Kupplungsorten (Aus
wertepositionen) zu verschieben. Nach der Auswertung an einer ersten Aus
werteposition ist also ein Rotieren der Disk und/oder ein Verschieben von
Disk und Auswerteoptik in radialer Richtung relativ zueinander durch
führbar, um die Auswerteoptik auf eine weitere Auswerteposition (einen
weiteren Kupplungsort) zu richten. Die optische Auswertung des Hybridis
ierungs-Resultats erfolgt somit auf eine dem Erzeugen des Oligonucleotid-
Arrays analoge Weise, indem mittels der Auswerteoptik eine Detektion an
einem ersten Kupplungsort vorgenommen wird, anschließend die Disk rotiert
und/oder Disk und Auswerteoptik in radialer Richtung relativ zueinander
verschoben werden, um die Auswerteoptik auf einen weiteren Kupplungsort zu
richten, und dann an diesem weiteren Kupplungsort eine Detektion vor
genommen wird. Vgl. auch die nachfolgende Figurenbeschreibung.
Der Fachmann wird sich bei der Ausgestaltung der Anlagen zur Durch
führung eines Oligonucleotid-Arrays und zur Auswertung eines Hybridi
sierungs-Assays insbesondere an der Ausgestaltung von Anlagen zum Beschrei
ben und Auslesen von optischen Datenträgern (CD, Minidisc, DVD) orientie
ren. In diesem Bereich der Technik ist in naher Zukunft ein großer Fort
schritt zu erwarten, der auch die Ausgestaltung erfindungsgemäßer Anlagen
beeinflussen wird.
Die Erfindung betrifft schließlich auch mehrteilige, ein Adapter
element und ein oder mehrere Substrat-Elemente umfassende Träger-Disks,
wobei das Substrat-Element oder die Substrat-Elemente zur Aufnahme eines
Arrays biologischer oder chemischer Substanzen ausgerüstet sind oder ein
solches Array tragen. Die Träger-Disk kann dabei in einem ihrer Nutzzustän
de vorliegen, d. h. insbesondere
- - in einem gemäß Schritt a) des erfindungsgemäßen Verfahrens zur Erzeu gung eines Oligonucleotid-Arrays bereitgestellten Zustand, d. h. mit bereits angeordneten Kupplungssubstanzen, aber vor der Erzeugung eines Oligonucleotid-Arrays,
- - in einem (Roh-)Zustand vor der Anordnung von Kupplungssubstanzen (z. B. Spacer oder Linker), wobei auf der Träger-Disk aber bereits Kupplungsorte oder -regionen vorgesehen sind, die im Vergleich mit ihrer jeweiligen unmittelbaren Umgebung besonders gut zur Anbringung einer Kupplungssubstanz geeignet sind,
- - im zur Durchführung eines Assays vorbereiteten Zustand, in dem die mehrteilige Träger-Disk mit einem Oligonucleotid-Array oder - für andere Untersuchungsaufgaben - mit einem Protein-Array, insbesondere Peptid-Array, oder mit einem Array anderer biologischer oder chemi scher Substanzen (Zellen, Kohlenhydraten etc.), versehen ist oder
- - im Zustand nach der Durchführung eines entsprechenden Assays, aber auch in entsprechenden Zwischenzuständen.
Dementsprechend betrifft die Erfindung auch allgemein ein Verfahren
zum Anbringen eines Arrays biologischer oder chemischer Substanzen auf
einer Träger-Disk, wobei ein (oder mehrere) Substratelement(e) mit einem
Adapterelement (und gegebenenfalls weiteren Bauelementen) zu der Träger-
Disk verbunden und zuvor oder anschließend auf dem (den) Substratele
ment(en) ein Array biologischer oder chemischer Substanzen angeordnet wird.
Mit dem Array wird dann der molekularbiologische Assay durchgeführt.
Eine bevorzugte mehrteilige Träger-Disk umfaßt dabei ein oder mehrere
in der Draufsicht rechteckige oder sonstwie gestaltete Substrat-Elemente,
wobei diese vorzugsweise von einem Typ sind, wie er bereits bei der
Herstellung von Mikroarrays industriell Verwendung findet. Besonders
bevorzugt sind solche Ausführungsformen der Erfindung, bei denen das
Substrat-Element (a) ein Mikroarray-Chip (insbesondere mit Kunststoff-,
Glas- oder Silizium-Grundkörper), eine Membran oder Folie (insbesondere
Blotting-Membranen wie Nitrocellulose-, Nylon- oder Polyvinylidenfluorid-
(PVDF)-Membranen) oder ein Papierträger (beispielsweise Filterpapier oder
beschichtete Papiere) ist oder (b) ein anderes Trägersubstrat zur Aufnahme
eines Arrays biologischer oder chemischer Substanzen ist.
Ein bevorzugtes Beispiel für ein solches Substrat-Element des Typs
Mikroarray-Chip sind rechteckige Objektträger aus Glas mit für die An
haftung von Kupplungssubstanzen vorbereiteter (aktivierter) Oberfläche.
Das oder die Substrat-Elemente lassen sich (vorzugsweise lösbar) mit
dem Adapterelement verbinden, welches im Verbundzustand gemeinsam mit ihm
bzw. ihnen die Träger-Disk bildet. Die Art der Verbindung von Adap
terelement und Substrat-Element(en) kann dabei, jeweils mit dem Ziel einer
guten Handhabbarkeit des Trägerdisk-Ensembles, unterschiedlich sein. Das
oder die Substrat-Elemente können formschlüssig, reibschlüssig, kraft
schlüssig oder stoffschlüssig mit dem Adapterelement verbunden sein.
Beispielsweise kann ein jeweiliges Substrat-Element in eine seiner Form
angepaßte durchgehende Öffnung im Adapterelement oder Vertiefung in dessen
Oberfläche eingepaßt, eingelegt, eingeklemmt oder eingeklebt sein oder auf
die Oberfläche eines scheibenförmigen Adapterelements geklebt oder geklemmt
sein.
Bei Verwendung mehrteiliger Träger-Disks aus (a) Adapterelement und
(b) Substrat-Element(en) mit für die Anhaftung von Kupplungssubstanzen vor
bereiteter (aktivierter) Oberfläche ist es möglich, mit dem erfindungs
gemäßen Verfahren zur Erzeugung eines Oligonucleotid-Arrays z. B. recht
eckige Chips (oder andere Substrat-Elemente wie Folien, Papiere etc.) mit
einem Mikroarray zu versehen. Sämtliche Kupplungsorte der Träger-Disk sind
dabei vorzugsweise im Bereich des oder der Substrat-Elemente angeordnet.
Letztere können dann vom Adapterelement gelöst, einem Assay unterzogen und
unter Einsatz handelsüblicher Substrat-Reader (Biochip-Analysegeräte)
untersucht werden. Das Adapterelement einer derartigen mehrteiligen Träger-
Disk ist hierbei nach Abtrennung des oder der Substrat-Elemente (z. B.
Mikroarray-Chips) vorzugsweise zur neuerlichen Kombination mit frischen
(bauartgleichen) Substrat-Elementen geeignet. Gemäß diesem Aspekt der
Erfindung läßt sich also die erfindungsgemäße Herstellung eines Oligonu
cleotid-Arrays (die sich regelmäßig insbesondere durch die Rotation der
Träger-Disk auszeichnet) vorteilhaft mit den bereits bekannten Techniken
zur Untersuchung nicht-rotationssymmetrischer, insbesondere rechteckiger
Mikroarray-Chips kombinieren.
Wie erwähnt betrifft die Erfindung auch mehrteilige Träger-Disks aus
Adapterelement und Substrat-Element(en), wobei das oder die Substrat-
Elemente in einem zur Durchführung eines Assays vorbereiteten Zustand
vorliegen und mit einem Oligonucleotid-Array oder einem Array anderer
biologischer oder chemischer Substanzen versehen sind. Wie im vorstehenden
Absatz beschrieben, können die Substrat-Elemente dabei unter Einsatz des
erfindungsgemäßen Verfahrens mit einem Oligonucleotid-Array versehen worden
sein. Es wird sich bei ihnen aber vorzugsweise um handelsübliche, ins
besondere rechteckige Mikroarray-Chips (oder sonstige Substrat-Elemente der
oben beschriebenen Typen) handeln, die auf herkömmliche (nicht-erfindungs
gemäße) Weise mit einem Oligonucleotid-Array versehen wurden. Solche
mehrteiligen, beispielsweise einen oder mehrere Mikroarray-Chips umfassen
den Träger-Disks können dann dem erfindungsgemäßen Hybridisierungs-Assay
unterzogen werden, bei dem Nucleinsäuren an zumindest einem Kupplungsort
(auf dem oder den Chips der Träger-Disk) appliziert und ausreichend
stringente Hybridisierungsbedingungen eingestellt werden. Hinsichtlich der
Besonderheiten der Durchführung und insbesondere der Auswertung des
Hybridisierungs-Assays wird auf die obigen Ausführungen verwiesen. Im
Vergleich zwischen (a) der Auswertung von Hybridisierungs-Assays auf
handelsüblichen Mikroarray-Chips unter Verwendung üblicher Chip-Reader und
(b) der Auswertung von Hybridisierungs-Assays auf Mikroarray-Chips als
Bestandteil einer erfindungsgemäßen mehrteiligen Träger-Disk unter Ver
wendung moderner CD- oder DVD-Lesetechnik liegen die Vorteile eindeutig auf
Seiten der mehrteiligen Träger-Disks, denn mit den modernen Lesetechniken
aus dem CD- und DVD-Bereich läßt sich eine sehr viel bessere Ortsauflösung
erreichen als selbst mit den modernsten Chip-Readern. Gemäß diesem Aspekt
der Erfindung werden also auf herkömmliche Weise mit einem Oligonucleotid-
Array versehene Mikrochips unter Verwendung der erfindungsgemäßen Lehren
bzw. Techniken in Assays eingesetzt und ausgewertet.
Es ist natürlich auch möglich, ein oder mehrere herkömmliche Mikro
array-Chips (oder andere Substrat-Elemente der genannten Typen) auf übliche
(nicht-erfindungsgemäße) Weise in einem Hybridisierungs- oder sonstigen
Assay einzusetzen und erst zur Auswertung mit einem Adapterelement zu einer
Träger-Disk zu verbinden. Die Auswertung erfolgt dann auf die zuvor
beschriebene Weise.
Nachfolgend werden bevorzugte Ausführungsbeispiele der Erfindung
anhand der beigefügten Figuren näher erläutert. Es stellen dar:
Fig. 1 eine perspektivische schematische Darstellung einer
photochemischen Aktivierung in einem erfindungsgemäßen
Verfahren,
Fig. 2a-h eine schematische Darstellung der Synthesevorgänge in
einem erfindungsgemäßen Verfahren,
Fig. 3a-c eine schematische Darstellung einer Hybridisierungs- und
Nachweisreaktion an einem Kupplungsort nach Fig. 2a-h,
Fig. 4a eine Draufsicht auf eine mehrteilige Träger-Disk mit
einem Adapterelement und einem rechteckigen Mikroarray-
Chip,
Fig. 4b eine Querschnitt-Ansicht des Adapterelements und des
Mikroarray-Chips aus Fig. 4a in nicht verbundener Anord
nung.
In Fig. 1 ist eine Disk 10 dargestellt. Die Disk 10 hat eine im
wesentlichen kreisförmige Grundfläche mit einer zentral angeordneten, eben
falls im wesentlichen kreisförmigen Ausnehmung 12. Die Disk ist flach,
wobei ihre Dicke erheblich kleiner (etwa 1 : 30-1 : 120) als ihr Durchmesser
ist.
Auf der Disk-Oberseite (Untersuchungsseite) 11 sind zwanzig Kup
plungsorte 20 angeordnet, die jeweils in ihrem Inneren lichtsensible
(photochemisch aktivierbare) Kupplungssubstanzen umfassen (nicht darge
stellt). Die Kupplungsorte 20 definieren zwei voneinander getrennte,
konzentrische Ringe 15 und 16 (gestrichelt dargestellt), wobei der äußere
Ring 15 zwölf und der innere Ring 16 acht Kupplungsorte umfaßt. Alternativ
könnten die Kupplungsorte 20 auch auf andere Weise, beispielsweise auf
einer oder mehreren Spiralbahnen, angeordnet sein. Die Zahl der Kupplungs
orte 20 ist ebenfalls nicht festgelegt; der Fachmann erkennt, daß bei einer
möglichst hohen Zahl von Kupplungsorten 20 die auf der Untersuchungsseite
11 zur Verfügung stehende Fläche besser ausgenutzt werden kann, so daß pro
eingesetzter Disk mehr Synthese- und Hybridisierungsreaktionen durchgeführt
werden können.
Die Kupplungsorte 20 sind in der dargestellten Ausführungsform
kreisförmig, wobei es auf die genaue Form aber nicht ankommt. Ebensogut
könnten dreieckige, rechteckige oder andere Formen gewählt werden.
Oberhalb der Disk 10 ist an einem parallel zur Oberfläche der Disk 10
verlaufenden Träger 35 eine Lichtquelle 30 angebracht, die nur schematisch
wiedergegeben ist. Die Lichtquelle 30 ist vorzugsweise ein auf die licht
sensiblen Kupplungssubstanzen an den Kupplungsorten 20 abgestimmer Laser.
In Fig. 1 ist ein von der Lichtquelle 30 ausgehender Lichtkegel 38 darge
stellt, der auf einen Kupplungsort 20 eingestellt ist.
Neben der Lichtquelle 30 können Dispensiereinrichtungen (nicht
dargestellt) wie (Mikro-)Pipetten oder dergleichen angeordnet sein, um
Oligonucleotide oder Oligonucelotid-Bausteine auf die Kupplungssubstanzen
an den Kupplungsorte 20 zu applizieren.
Die Disk 10 ist auf einem Drehteller (nicht dargestellt) rotierbar
angeordnet (vgl. Pfeil 19). Die Lichtquelle 30 kann am Träger 35 entlang in
Richtung des Pfeils 39 radial zur Disk 10 bewegt werden. Alternativ könnte
die Disk 10 gegenüber der (dann stationären) Lichtquelle 30 radial (in
Richtung des Pfeils 39) verschiebbar sein.
Bei der Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens werden zunächst
die Disk 10 und die Lichtquelle 30 bereitgestellt.
Anschließend wird eine photochemische Kupplungsreaktion am ersten
Kupplungsort 20 durchgeführt, wobei zunächst Kupplungsort 20 und Licht
quelle 30 durch Rotation der Disk 10 in Richtung des Pfeils 19 und gegebe
nenfalls radiales Verschieben der Lichtquelle 30 entlang des Trägers 35 in
Richtung des Pfeils 39 aufeinander ausgerichtet werden.
Der erste Kupplungsort 20 wird hiernach mittels der Lichtquelle 30
belichtet, so daß die zugeordnete Kupplungssubstanz aktiviert wird und die
Kupplungsreaktion zwischen Kupplungssubstanz und Oligonucleotid bzw.
Oligonucleotid-Bauelement stattfinden kann.
Am ersten Kupplungsort 20 wird dann das Oligonucleotid oder
Oligonucleotid-Bauelement appliziert (nicht dargestellt).
Anschließend wird an einem weiteren Kupplungsort 20' eine Kupplungs
reaktion durchgeführt. Dieser liegt im dargestellten Beispiel im inneren
Ring 16, während Kupplungsort 20 im äußeren Ring 15 angeordnet ist.
Um den weiteren Kupplungsort 20' anzusteuern, wird die Disk 10 in
Richtung des Pfeils 19 um drei Positionen weiter gedreht (rotiert).
Zusätzlich wird die Lichtquelle 30 am Träger 35 in Richtung auf die
zentrale Ausnehmung 12 bewegt. Beide Bewegungen können gleichzeitig oder in
beliebiger Reihenfolge nacheinander ausgeführt werden. Am Ende der Bewe
gungsvorgänge ist die Lichtquelle 30 auf den Kupplungsort 20' gerichtet, so
daß nun an diesem Ort eine Kupplungsreaktion durchgeführt werden kann. Die
Vorgehensweise hierbei entspricht der Vorgehensweise am Kupplungsort 20.
Fig. 2a-d zeigt schematisch die Anlagerung von Nucleosiden an
einzelne Kupplungssubstanzen. Es wurde der Übersichtlichkeit halber darauf
verzichtet, die Bezugszeichen in den verschiedenen Teilfiguren sowie in
Fig. 3a-c zu wiederholen, soweit sie einander entsprechen.
In Fig. 2a ist schematisch im Querschnitt ein Abschnitt einer Unter
suchungsseite 11 einer Disk 10 dargestellt. Kupplungssubstanzen 40, 43, 46
sind an der Untersuchungsseite 11 kovalent gebunden. Jede Kupplungssubstanz
40, 43, 46 ist einem separaten Kupplungsort 41, 44, 47 zugeordnet. Auf die
Darstellung von räumlichen Abgrenzungen zwischen den Kupplungsorten wurde
der Übersichtlichkeit halber verzichtet.
Die Kupplungssubstanzen 40, 43, 46 besitzen als Kreise dargestellte
lichtempfindliche Schutzgruppen 42, 45, 48 an ihren von der Untersuchungs
seite 11 fortweisenden Enden.
In Fig. 2b ist schematisch ein Belichtungsvorgang eines Kupplungs
ortes 41 dargestellt. Licht 50 wird auf die lichtempfindliche Gruppe 42 der
Kupplungssubstanz 40 eingestrahlt, so daß diese photochemisch aktiviert
(entfernt) wird (angedeutet durch Schwärzung). Die übrigen Kupplungssub
stanzen 43, 46 bleiben unbelichtet, ihre lichtempfindlichen Gruppen 45, 48
werden nicht aktiviert.
Nach Applikation eines mit einer lichtempfindlichen Schutzgruppe 62
versehenen Oligonucleotid-Bausteins 60 auf den Kupplungsort 41 wird der
Oligonucleotid-Baustein 60 kovalent mit der Kupplungssubstanz 40 verbunden
(vgl. Fig. 2c).
Auf analoge Weise, nämlich durch Belichten der jeweiligen Kup
plungssubstanz und Applikation von Oligonucleotid-Bausteinen, werden auch
an den übrigen Kupplungsorten 44, 47 Oligonucleotid-Bausteine angeknüpft
(vgl. Fig. 2d).
In den Fig. 2e-h ist schematisch die spezifische Verlängerung einer
Nucleotid-Kette an verschiedenen Kupplungsorten dargestellt.
Fig. 2e zeigt die Belichtung des Kupplungsortes 40 mit Licht 51. Die
übrigen Kupplungsorte bleiben unbelichtet. Die Schutzgruppe 62 des Oligo
nucleotid-Bausteins 60 am Kupplungsort 41 wird durch die Belichtung
aktiviert (vgl. Fig. 2f, dargestellt als Schwärzung der Schutzgruppe 62).
Nach Zugabe eines mit einer lichtempfindlichen Schutzgruppe 72 versehenen
Oligonucleotid-Bausteins 70 am Kupplungsort 41 wird der Oligonucleotid-
Baustein 60 kovalent mit dem weiteren Oligonucleotid-Baustein 70 verbunden
(vgl. Fig. 2g). In analoger Weise werden die Nucleinsäuren der übrigen
Kupplungsorte 44, 47 verlängert, so daß im Ergebnis an allen drei Kupp
lungsorten 41, 44, 47 Dinucleotide kovalent mit den jeweiligen Kupplungs
substanzen 40, 43, 46 verbunden sind. Die Synthese kann, da jedes end
ständige Nucleotid eine photosensible Schutzgruppe trägt, an jedem der
Kupplungsorte 41, 44, 47 fortgesetzt werden. Vor der Durchführung von
Hybridisierungsreaktionen kann es notwendig sein, die endständigen Schutz
gruppen, beispielsweise durch Belichten, zu entfernen.
In Fig. 3a ist schematisch (als geschlängelte Linie) ein beliebiges
mit der Kupplungssubstanz 40 verbundenes Oligonucleotid 100 dargestellt,
wie es nach Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens entsprechend den
Fig. 2a-h erhalten werden kann.
In Fig. 3b ist schematisch ein mit dem Oligonucleotid 100 hybridis
iertes zweites Oligonucleotid 105 dargestellt. Häufig wird die das Oligonu
cleotid 105 enthaltende Proben-Lösung weitere Oligonucleotide umfassen, die
bei genügend stringenten Hybridisierungsbedingungen nicht stabil mit dem
Oligonucleotid 100 hybridisieren können (nicht dargestellt). Die weiteren
(nicht hybridisierenden) Oligonucleotide werden häufig, ebenso wie das
Oligonucleotid 105, eine photodetektierbare Gruppe 106 umfassen, und müssen
daher vor der Detektion ausgewaschen werden, um Fehlmessungen zu vermeiden.
Bei der photodetektierbaren Gruppe 106 wird es sich häufig um einen
Fluoreszenzfarbstoff handeln, dessen Fluoreszenz auf übliche Weise nach
weisbar ist. Des weiteren könnten anstelle von kovalent mit einem Oligonu
cleotid verknüpften photodetektierbaren Gruppen auch Doppelstrang-erkennen
de Faröstoffe wie DAPI (4',6-diamino-2-phenylindol) oder Ethidiumbromid als
photodetektierbaren Gruppen verwendet werden. Alternativ könnte eine
photodetektierbare Gruppe auch ein Biomolekül (Enzym, Antikörper o. dgl.)
umfassen, das zusammen mit einem jeweiligen Substrat beispielsweise einen
farbigen Niederschlag, ein Fluoreszenz- oder Lumineszenzsignal erzeugt. Bei
der Auswahl geeigneter Farbstoffe und photodetektierbarer Gruppen kann sich
der Fachmann insbesondere am "Handbook of Fluorescent Probes and Research
Chemicals", zu beziehen von Molecular Probes Inc., orientieren.
In Fig. 3c ist schematisch ein Detektionsvorgang dargestellt. Dabei
wird Licht 55 auf die photodetektierbare Gruppe 106 eingestrahlt. Von der
photodetektierbaren Gruppe 106 wird daraufhin Fluoreszenz-Licht 56 aus
gesandt. Dieses hat eine gegenüber dem eingestrahlten Licht 55 längere
Wellenlänge. Das Licht 56 wird optisch aufgefangen und gemessen (nicht
dargestellt) und auf übliche Weise zur Auswertung der Hybridisierungs
reaktion verwendet. Die Auswerteoptik ist dabei so eingerichtet, daß nach
der Auswertung an einer ersten Auswerteposition (Kupplungsorten) ein
Rotieren der Disk und/oder ein Verschieben von Disk und Auswerteoptik in
radialer Richtung relativ zueinander durchführbar ist, um die Auswerteoptik
auf eine weitere Auswerteposition (einen weiteren Kupplungsort) zu richten.
Die Auswertung erfolgt dann auf eine dem Erzeugen des Oligonucleotid-Arrays
analoge Weise, vgl. Fig. 1.
In Fig. 4a ist eine erfindungsgemäße mehrteilige Träger-Disk 1
dargestellt, welche einen Mikroarray-Chip 2 sowie ein Adapterelement 3
umfaßt. Der Mikroarray-Chip ist formschlüssig in eine Aussparung (in Fig.
4a nicht separat dargestellt) im Adapterelement eingepaßt und schließt zur
Oberfläche des Adapterelements bündig mit diesem ab. In dem Adapterelement
3 ist zudem eine freie Aussparung 4 zur Aufnahme eines weiteren Mikroarray-
Chips mit gleichen Abmessungen vorgesehen.
In Fig. 4b sind das Adapterelement 3 und der Mikroarray-Chip 2 im
Querschnitt entlang der Linie A-B aus Fig. 4a dargestellt, wobei der
Verbund zwischen diesen beiden Bauteilen jedoch gelöst dargestellt ist.
Bei dem Mikroarray-Chip 2 handelt es sich um einen handelsüblichen
Glasobjektträger (25 × 76 mm), auf dem in üblicher Weise ein definiertes
Mikroarray (Mikroanordnung) von Oligonucleotiden fixiert ist. Der Mikroar
ray-Chip 2 ist von im wesentlichen rechteckiger Gestalt und läßt sich, wie
insbesondere aus Fig. 4b hervorgeht, formschlüssig in jede der zwei
entsprechenden Aussparungen 4 des scheibenförmigen Adapterelements 3
einlegen (in Richtung des Pfeiles in Fig. 4b).
Die Abmessungen der aus Adapterelement 3 und Mikroarray-Chip 2
zusammengesetzten Träger-Disk 1 entsprechen denen einer handelsüblichen CD.
Das Adapterelement 3 ist außerhalb des Bereichs der Aussparung 4 mit
Informationen beschrieben, die auf aus der CD- oder DVD-Technik bekannte
Weise ausgelesen werden können. Vgl, beispielsweise L. Boden, Mastering CD-
ROM Technology, John Wiley & Sons (1995), ISBN 0-471-12174-6 für einen
Überblick über relevante Techniken zum Beschreiben und Auslesen von
Informationen im CD-Format.
Claims (12)
1. Verfahren zur Erzeugung eines Oligonucleotid-Arrays, umfassend
folgende Schritte:
- a) Bereitstellen
- - einer Träger-Disk (10) mit einer Untersuchungsseite (11), auf der an einer Anzahl von Kupplungsorten (20) photo chemisch aktivierbare Kupplungssubstanzen (40, 43, 46) zur jeweiligen Fixierung eines Oligonucleotids oder Oligonucleotid-Bauelements (60) angeordnet sind und
- - einer Lichtquelle (30) zur selektiven photochemischen Ak tivierung der Kupplungssubstanzen (40, 43, 46) an einzel nen Kupplungsorten (20),
- b) Verkuppeln der Kupplungssubstanz (40, 43, 46) an einem ersten
Kupplungsort (20) mit einem Oligonucleotid oder Oligonucleotid-
Bauelement (60), indem
- - das Oligonucleotid bzw. Oligonucleotid-Bauelement (60) auf zumindest den ersten Kupplungsort (20) appliziert,
- - die Lichtquelle (30) auf den ersten Kupplungsort (20) gerichtet und
- - die Kupplungssubstanz (40, 43, 46) am ersten Kupplungsort (20) durch Beleuchten mit der Lichtquelle (30) aktiviert wird,
- c) Rotieren der Disk (10) und/oder Verschieben von Lichtquelle (30) und Disk (10) in radialer Richtung relativ zueinander, um die Lichtquelle (30) auf einen weiteren Kupplungsort (20) zu richten.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß mehr als zwei,
vorzugsweise mehr als zehn Kupplungssubstanzen (40, 43, 46) an
verschiedenen Kupplungsorten (20) zeitlich nacheinander (seriell)
photochemisch aktiviert und mit einem jeweiligen Oligonucleotid oder
Oligonucleotid-Bauelement (60) verkuppelt werden, wobei zwischen je
zwei photochemischen Aktivierungsschritten an verschiedenen Kupp
lungsorten (20) die Disk (10) rotiert und/oder Lichtquelle (30) und
Disk (10) in radialer Richtung relativ zueinander verschoben werden,
um die Lichtquelle (30) auf den jeweils nächsten Kupplungsort (20) zu
richten.
3. Verfahren nach einem der vorangehenden Ansprüche, dadurch gekenn
zeichnet, daß zumindest die Kupplungssubstanz (40, 43, 46) am ersten
Kupplungsort (20), vorzugsweise aber auch jede der Kupplungssub
stanzen (40, 43, 46) an den weiteren Kupplungsorten (20), mit einer
Schutzgruppe (42, 45, 48) versehen ist, welche durch Beleuchten mit
der Lichtquelle (30) so entfernbar ist, daß eine ungeschützte (akti
vierte) Kupplungssubstanz (40, 43, 46) entsteht, die in definierter
Weise mit dem Oligonucleotid bzw. Oligonucleotid-Bauelement (60)
kuppeln kann.
4. Verfahren nach einem der vorangehenden Ansprüche, dadurch gekenn
zeichnet, daß eine aktivierte Kupplungssubstanz (40, 43, 46) an einem
oder, zeitlich nacheinander, aktivierte Kupplungssubstanzen (40, 43,
46) an mehreren Kupplungsorten (20) mit einem geschützten Nucleosid
(60) verkuppelt werden, welches durch Beleuchten mit der Lichtquelle
(30) aktiviert werden kann.
5. Anlage zur Durchführung des Verfahrens nach einem der Ansprüche 1-4,
umfassend:
eine Träger-Disk (10) mit einer Untersuchungsseite (11), auf der an einer Anzahl von vorbestimmten Kupplungsorten (20) photochemisch aktivierbare Kupplungssubstanzen (40, 43, 46) zur Fixierung eines Oligonucleotids oder Oligonucleotid-Bauelements (60) angeordnet sind,
eine Lichtquelle (30) zur selektiven photochemischen Ak tivierung der Kupplungssubstanzen (40, 43, 46) an einzelnen Kupplungsorten (20),
eine Adressiereinrichtung zum Rotieren der Disk (10) und zum Verschieben von Lichtquelle (30) und Disk (10) in radialer Richtung relativ zueinander,
um die Lichtquelle (30) auf einen vorgegebenen Kupplungsort (20) auf der Untersuchungsseite (11) der Disk (10) zu richten.
eine Träger-Disk (10) mit einer Untersuchungsseite (11), auf der an einer Anzahl von vorbestimmten Kupplungsorten (20) photochemisch aktivierbare Kupplungssubstanzen (40, 43, 46) zur Fixierung eines Oligonucleotids oder Oligonucleotid-Bauelements (60) angeordnet sind,
eine Lichtquelle (30) zur selektiven photochemischen Ak tivierung der Kupplungssubstanzen (40, 43, 46) an einzelnen Kupplungsorten (20),
eine Adressiereinrichtung zum Rotieren der Disk (10) und zum Verschieben von Lichtquelle (30) und Disk (10) in radialer Richtung relativ zueinander,
um die Lichtquelle (30) auf einen vorgegebenen Kupplungsort (20) auf der Untersuchungsseite (11) der Disk (10) zu richten.
6. Verfahren zur Durchführung eines Hybridisierungs-Assays, umfassend:
- a) das Bereitstellen einer gemäß einem der Ansprüche 1-4 mit einem Oiigonucleotid-Array versehenen Träger-Disk (10) und
- b) die Applikation von Nucleinsäuren (105) an zumindest einem Kupplungsort (20) auf der Träger-Disk (10) und das Einstellen ausreichend stringenter Hybridisierungsbedingungen.
7. Verfahren nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, daß
- a) eine optische Auswertung des Hybridisierungs-Resultats vor genommen wird, indem mittels einer Auswerteoptik eine Detektion an einem ersten Kupplungsort (20) vorgenommen wird, anschlie ßend die Disk (10) rotiert und/oder Disk (10) und Auswerteoptik in radialer Richtung relativ zueinander verschoben werden, um die Auswerteoptik auf einen weiteren Kupplungsort (20) zu rich ten, und dann an diesem weiteren Kupplungsort (20) eine Detek tion vorgenommen wird.
8. Anlage zur Auswertung eines Hybridisierungs-Assays nach einem der
Ansprüche 6 oder 7, umfassend
eine Träger-Disk (10) mit einer Untersuchungsseite (11), auf der an einer Anzahl von vorbestimmten Kupplungsorten (20) Oligonucleotide (100) zur Durchführung eines Hybridisierungs assays angeordnet sind,
eine Auswerteoptik zur Detektion von Hybridisierungen, und
eine Adressiereinrichtung, die so eingerichtet ist, daß ein Rotieren der Disk (10) und/oder ein Verschieben von Disk (10) und Auswerteoptik in radialer Richtung relativ zueinander durchführbar ist, um die Auswerteoptik zwischen zwei Kupplungs orten (20) zu verschieben.
eine Träger-Disk (10) mit einer Untersuchungsseite (11), auf der an einer Anzahl von vorbestimmten Kupplungsorten (20) Oligonucleotide (100) zur Durchführung eines Hybridisierungs assays angeordnet sind,
eine Auswerteoptik zur Detektion von Hybridisierungen, und
eine Adressiereinrichtung, die so eingerichtet ist, daß ein Rotieren der Disk (10) und/oder ein Verschieben von Disk (10) und Auswerteoptik in radialer Richtung relativ zueinander durchführbar ist, um die Auswerteoptik zwischen zwei Kupplungs orten (20) zu verschieben.
9. Träger-Disk (1), umfassend ein Adapterelement (3) und zumindest ein
Substrat-Element (2), wobei das Substrat-Element (2) zur Aufnahme
eines Arrays biologischer oder chemischer Substanzen ausgerüstet ist
oder ein solches Array trägt.
10. Träger-Disk nach Anspruch 9, wobei das Substrat-Element
- a) ein Mikroarray-Chip (2), ein Papierträger oder eine Membran (Folie) ist oder
- b) ein anderes Trägersubstrat zur Aufnahme eines Arrays biologi scher oder chemischer Substanzen ist.
11. Träger-Disk nach einem der Ansprüche 9 oder 10, dadurch gekennzeich
net, daß Adapterelement und Substrat-Element lösbar miteinander
verbunden sind.
12. Verfahren zum Anbringen eines Arrays biologischer oder chemischer
Substanzen auf einer Träger-Disk (1), wobei ein Substrat-Element (2)
mit einem Adapterelement (3) zu der Träger-Disk verbunden und zuvor oder anschließend
auf dem Substratelement (2) ein Array biologischer oder chemi scher Substanzen angeordnet wird.
mit einem Adapterelement (3) zu der Träger-Disk verbunden und zuvor oder anschließend
auf dem Substratelement (2) ein Array biologischer oder chemi scher Substanzen angeordnet wird.
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