CZ503590A3 - Způsob vyhledávání potenciálních fungicidních prostředků - Google Patents

Způsob vyhledávání potenciálních fungicidních prostředků Download PDF

Info

Publication number
CZ503590A3
CZ503590A3 CS905035A CS503590A CZ503590A3 CZ 503590 A3 CZ503590 A3 CZ 503590A3 CS 905035 A CS905035 A CS 905035A CS 503590 A CS503590 A CS 503590A CZ 503590 A3 CZ503590 A3 CZ 503590A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
infection
soil
temperature
test
layer
Prior art date
Application number
CS905035A
Other languages
English (en)
Inventor
Maria Fattori
Stefaan Renaat Maria Horemans
Marc Lefébvre
Annabel Renwick
Keith Adrian Powell
Original Assignee
Zeneca Limited
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Zeneca Limited filed Critical Zeneca Limited
Publication of CZ503590A3 publication Critical patent/CZ503590A3/cs
Publication of CZ284515B6 publication Critical patent/CZ284515B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/18Testing for antimicrobial activity of a material
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205Bacterial isolates
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N63/00Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing microorganisms, viruses, microbial fungi, animals or substances produced by, or obtained from, microorganisms, viruses, microbial fungi or animals, e.g. enzymes or fermentates
    • A01N63/20Bacteria; Substances produced thereby or obtained therefrom
    • A01N63/27Pseudomonas
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/38Pseudomonas
    • C12R2001/39Pseudomonas fluorescens
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/874Pseudomonas
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/874Pseudomonas
    • Y10S435/876Pseudomonas fluorescens
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/911Microorganisms using fungi
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/911Microorganisms using fungi
    • Y10S435/929Fusarium
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/911Microorganisms using fungi
    • Y10S435/939Rhizopus

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Agronomy & Crop Science (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Pest Control & Pesticides (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Pretreatment Of Seeds And Plants (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Description

Způsob vyhledávání potenciálních fúngiTTÍdrTTTh prostředků
Oblast techniky
Vynález se týká způsobu vyhledávání potenciálních fungicidních prostředků provedením dvou testů.
Dosavadní stav techniky
V mikrobiologické praxi je obvyklé vyhledávat mikroorganismy mající zajímavé vlastnosti zkoumáním velkého počtu, obvykle mnoha tisíc, organismů z půdy na jejich účinek významný pro zamýšlená použití. Jedním takovým použitím je isolace biologicky účinných prostředků, které jsou účinné proti vybraným druhům rostlinných pathogenů. Tyto biologicky účinné prostředky lze používat jako alternativní nebo daolňující orostředky k chemickým prostředkům pro hubení pathogenů.
V běžné praxi se odebírají vzorky půdy z míst, kde se požadovaný pathagen zdá být potlačen, což může znamenat, že sám tento mikroorganismus může v půdě inhibovat pathogenicitu.
Z jednotlivých vzorků se potom v laboratoři isolují tyto mikroorganismy vymýváním z kořenů a nechají se růst na agaru při jedné nebo dvou teplotách optimálních pro mikrobiologický růst, obvykle od 25 do 33 °C. Tyto organismy se potom testují nejprve proti různým pathogenům na agaru v sérii Petrího misek za použití metody dvojí kultury. Toto je primární zkoušení. Nadějné organismy z tohoto primárního zkoušení se potom podrobí důkladnějšímu zkoumání v sérii sekundárního zkoušení za použití půdy.
Podle zkušeností autorů tohoto vynálezu organismy, které nakonec projdou dalšími testy a polními pokusy, nevykazují při prvním zkoušení ani příslušnou ani dostatečnou selektivitu. Obvyklé primární zkoušení propustí velký počet organismů (obvykle okolo 20 které se zdají být nadějnými, ale většina z nich je potom v následujících testech zavržena.
Kroně tohoto js nyní autorům tohoto vynálezu známo, že při primárním zkoušení projdou kromě organismů, které se následně ukáží jako nepoužitelné, také určité organismy, které jsou zcela schopné projít dalšími následnými testy. Výsledkem toho je, že tradiční testy propouštějí organis/my, které jsou slabými inhibitory pathogenicity a nepropouštějí organismy, které jsou dobrými inhibitory pathogenicity.
Je tedy třeba najít nový způsob vyhledávání organismů z půdy, aby byl nalezen velký počet potenciálně dobrých organismů a aby byly vyloučeny pokud možno nejvíce látky se špatným účinkem.
Podstata vynálezu
Podstatou vynálezu je tedy způsob vyhledávání potenciálních fungicidnich prostředků, který spočívá podle vynálezu v tom, že se testuje inhibiční účinek potenciálního fungicidního prostředku ve dvou testech, přičemž první test je na inhibici vývinu pathogenu ve sterilisované půdě infikované myceliem Pythium spo. a druhý test je dále na inhibici vývinu choroby v rostoucí rostlině náchylné k onemocnění vyvolanému přítomností komplexu způsobujícího vadnuti klíčících rostlin, načež se prostředky mající potenciální inhibiční účinek v obou testech ve srovnání s kontrolou identifikují a podrobí se dalšímu zkoumání.
Předložený vynález je použitelný zvláště, i když ne výlučně, pro testování mikroorganismů ze vzorků půdy na jejich možný biologický účinek, ale není žádný zvláštní důvod k tomu, aby tentýž postup podle vynálezu nemohl být použit pro chemické prostředky, aniž by byl jakkoliv uoravován.
Jak již bylo uvedeno výše, tradiční způsob isolace mikroorganismů není sám o sobě selektivní: předložený vynález proto také poskytuje způsob předběžného testování mikroorganismů isolovaných ze vzorků půdy, který spočívá v tom, že se do uzavíratelné nádoby umístí vrstva vlhkého sterilního písku a na ni se umístí vlhký vzorek půdy a do vzorku půdy se zaseje semena rostliny náchylné k určitému onemocnění, nádoba se uzavře a umístí se do takového prostředí, které způsobuje vývin choroby, semeno se nechá vyklíčit a kořeny se nechají prorůst z vrstvy půdy do vrstvy písku, vyřízne se tunel podélně oběma vrstvami, vyberou se kořeny pouze z vrstvy písku a z těchto kořenů se isolují mikroorganismy.
Prostředky chemické nebo mikrobiologická , která prošly dvěma výše popsanými testy podle vynálezu, mohou být potom dále zkoumány na inhibiční účinek proti plísnové infekci v jednom nebo ve více než jednom testu, které zahrnují:
a) infekci cukrové řepy organismem Aphanomyces cochlioides při teplotě od 12 do 15 °C,
b) infekci hrachu organismem Pythium ultimum při teolotě od 12 do 15 °C,
c) infekci hrachu organismem Pythium ultimum při teplotě od 24 do 27 °C,
d) infekci hrachu organismem Rhizoctonia solani pří teplotě od 24 do 27 °C,
e) infekci pšenice organismem Fusarium culmorum při teplotě od 13 do 21 °C,
f) infekci sojového bobu organismem Phytoohthora megasperma při teplotě od 20 do 24 °C,
g) infekci řezu bramboru organismem Fusarium maniliforme při teplotě od 20 do 24 °C,
h) infekci řezu bramboru organismem Fusarium sambusinum při teplotě od 20 do 24 °C a
i) infekci cukrové řepy organismem Phoma soo. při teplotě od 15 do 19 °C.
Takto lze při využití všech složek vynálezu isolovat potenciální biologicky účinné prostředky způsobem, který je určen jen pro získávaní aktivních organismů z kořenů, jejich zkoušením ve dvou počátečních testech, kterými se identifikují organismy s vysokou potenciální aktivitou a ty se potom po4 drobí sériím přísných testů, kterými se identifikují prostředky, u kterých se pak při testování za nejrůznějších polních podmínek dokáže jejich vysoká účinnost. Toto představuje oproti známým způsobům, jak jsou výše uvedeny, značný pokrok, neboť známými způsoby by byly odmítnuty organismy, které prošly testy podle vynálezu a naopak jimi prošla řada organismů, které se testy padle vynálezu ukázaly jako většinou neúčinné nebo méně účinné než kontrola.
Způsobem podle vynálezu byly isolovány čtyři mikroorganismy, které se ukázaly být obzvláště účinné proti různým plísňovým onemocněním, obvykle doprovázeným vadnutím.
Pro případ zkoušení účinnosti podle vynálezu byla použita tradiční metoda in vitro, kterou bylo testováno asi 7 000 organismů, a bylo zjištěno, že touto metodou prošlo asi 20 % organismů, zatímco způsobem podle vynálezu prošlo pouze i až 5 ΐ organismů. Důležité je, že soubor organismů, které prošly každým z minimálně dvou testů podle vynálezu, je velmi stejnoměrný, zatímco tradičním agarovým testem prošel zcela různorodý soubor organismů. Některé z organismů, které by třeba byly odmítnuty tradiční vyhledávací metodou, vykázaly v následujících vyhledávacích testech a v palních pokusech vysokou účinnost. Toto je základní výhoda předloženého vynálezu: počátečním vyhledáváním se sníží celkový počet organismů, které vyžadují další testování a velká část těch, které byly vybrány pro další testování, vykázala potom požadovaný účinek při polních testech. Předpokládá se, že důvod tohoto je následující. Parametry testování, například teplota a nutriční složení, jsou u tradiční metody optimalisovány, aby se podoořil růst mikroorganismu v agaru. Tato potrava je velmi rozdílná od skutečné potravy v drsném životním prostředí za podmínek, ve kterých se má mikroorganismus připravovat.
Proto mnohé z mikroorganismů, které přežijí tyto počáteční testy, jsou obvykle slabé a jsou schopné pouze přežití v uzavřeném prostředí agarové kultury a následně selžou, protože přísnější druhé a další testy jsou mnohem více přibližné sku5 až 10 tečnému polnímu prostředí. Na druhé straně v souboru organismů existují, a zkušenosti autorů tohoto vynálezu to potvrzují, kmeny mikroorganismů, které dávají přednost polním oodmínkám, například nízkým teplotám nebo potravě méně bohaté nebo různého složení. Tyto mikroorganismy nerostou dobře v aga rovem testu a normálně by byly odmítnuty. Bylo tak zjištěno, že dvojí testování, které je podstatou tohoto vynálezu, zaručuje testovací podmínky bližší polním podmínkám a poskytuje tak realističtější náznak schopnosti mikroorganismu prospívat v prostředí, ve kterém by měl být používán.
Nyní následuje popis isolace, charakteristiky a testování bakteriálních organismů na účinek proti některým plísním, které infikují sklizňová plodiny. Byl isolován velmi velký počet mikroorganismů, identifikován a testován výše uvedeným způsobem.
Isolace mikroorganismů
Připraví se trubice z dialysační trubice dlouhá 35 cm a široká 5,5 cm s uzávěrem 5 až 7 cm od jednoho konce. Jemný písek se promyje, vysuší a nasype se do trubice do hloubky 12 cm a zvlhčí se 20 ml destilované vody. Trubice s oískem se pro podepření uloží dovnitř skleněných zkumavek (7 cm v průměru a 30 cm dlouhých). Trubice se potom uzavřou u dna gumovou zátkou pokrytou hliníkovou folií a navrchu zátkou z vaty a potom se zabalí do hliníkové folie. Celá sestava se autoklávujs dvakrát při 121 °C po dobu 60 minut.
Vzorek půdy se odebere z určené strany půdy a dva dny po odebrání se udržuje při 4 °C na 40 % vlhkosti. Vzorek pfkdy se presije sítem 4 mm a přidá se do trubice na povrch písku do hloubky 3 cm. Zasadí se semeno / hrách, pšenice, cukrová řepa, slunečnice, kukuřice nebo sója / a přikryje se půdou na celkovou hloubku 6 cm. Trftbice se potom postaví kolmo do drátěného koše, který se pak umístí do plastikového kontejneru s otvory, které umožňují výměnu vzduchu, přičemž tento kontejner minimalisuje ztráty z odpařování. Koše se potom umístí do růstové skříně a inkubují se čtyři týdny při teplotách 10 °C až 24 °C a 70 % vlhkosti s cyklem 16 hodin den / 8 hodin noc.
Po čtyřtýdenní inkubaci ae plastické dialysační trubice rozříznou předem sterilisovaným skalpelem. Z půdy a· písku se vytrhají kořeny každé rostliny a rostlina se umístí na bílou plastickou misku. Vrcholové části rostliny se rozřežou a promyjí odděleně ve sterilní vodě.
Rozřezané části se umístí do sterilních c
Erlenmeyerových baněk obsahujících 20 ml dwionisované vody a vrstvu skleněných kuliček. Banky se potom třepou v orbitálním inkubátoru při 120 otáčkách za mi- 12 nutu po Sobu 30 minut· Za použiti neředěného roztoku z kořenů a promývacich roztoků z kořenů a vrcholků rostlin z baněk se připraví zředění 1 : 9 ve sterilním Ringerově roztoku na zředění 10*\ Alikvotní část 100 /ul z každého roztoku se potom rozprostře na povrchy tri agarových medií, majících následující složení :
1/10 trypton sojový agar trypton sojový bujón 3,0 g bakteriologický agar 17,5 g deionisovaná voda 1000 ml / prostředí se autoklávuje 15 minut při 121 °C / agar s kořenovým extraktem Čerstvé pšeničné kořínky 10 g agar S. 3 17,5 g deionisovaná voda 1000 ml / Čerstvé kořínky se naváží a smísí s malým množstvím deionisované vody v mixéru· Hustá suspense se potom umístí do váčku ze čtyř vrstev hustého mušelínu a ten se potom suspenduje ve zbývající deionisované vodě ve dvoulitrové kádince a inkubuje se 4 dny při 20 °C. Mušelínový váček se potom odstraní a ke kořenovému extraktu se přidá agar· Prostředí se
- 13 potom autoklávuje 15 minut při 121 °G /,
Agar s extraktem z půdy vzorek půdy 10 g agar č. 3 17,5 g deionisovaná voda 1000 ml / Půda se naváží a umístí se do deionisované vody ve dvoulitrové kádince. Suspense půdy se přikryje a inkubuje se 4 dny při 20 °Cr načež se odsaje přes čtyřnásobnou vrstvu hustého mušelínu. Potom se přidá agar a prostředí se autoklávuje 15 minut při 121 °C /.
Pro každé ředění jsou tři opakování. Agarové misky se inkubují při 12 °C až do 5 dnů, načež se spočte počet kolonií na každé misce a zapíše se. Kde to je možné, vybere se miska, která obsahuje padesát nebo méně kolonií. Kde to není možné, udělá se na misce mřížka z padesáti průsečíků a vyberou se kolonie, které jsou na každém průsečíku nebo nejblíže k němu. Takto je selekce kolonií zcela náhodná.
Jednotlivé kolonie se stáhnou z misky použitím sterilního očka a kultivují se na Petriho miskách o průměru 5 cm obsahujících 1/10 trypton sojový agar / 1JÓ.0 TSA /. Misky se potom inkubují 5 dnů při 12 °C, Organismy se potom zkontrolují na čistotu. Kde byla smíšená kultura, organismus se naočkuje na
- 14 šikmý 1/10 trypton sojový agar, aby se získaly jednotlivé kolonie. Jedna kolonie se vybere a pěstuje se ve vedlejší kultuře na 1/10 trypton sojovém agaru. Sbírka kultur se skladuje při 4 °C.
Charakteristika mikroorganismů
Morfologie
Morfologické charakteristiky mikroorganismů jsou následující :
Morfologie buněk : gram-negativní tyčinkové bakterie Morfologie kolonie :
NCIB 40 136 : špinavě bílé, kulové, pravidelné, neporušené, mírně konvexní, hladké, lesklé, poloprůhledné, průměr 1,5 aš 2 mm.
NCIB 40 137 x špinavě bílé, kulové, pravidelné, neporušené, vypouklé, hladké, lesklé, poloprůhledné, průměr 1 mm.
NCIB 40 188 : špinavě bílé, kulové, pravidelné, neporušená, mírně konvexní, hladké, lesklé, poloprůhledné, průměr 1,5 a2 2 mm.
NCIB 40 190 : Špinavě bílé, kulové, pravidelné, neporušené, ploché, hladké, lesklé, poloprůhledné , průměr .1 mm.
- 15 Teplota růstu :
všechny kmeny 37 °C +ve
41 °C -ve
45 °C -ve
Fluorescence všechny kmeny +ve
Katalasa všechny kmeny +ve
Oxidasa všechny kmeny +ve
Fermentace
v glukose OF všechny kmeny -ve
Rychlý test / API /
NCI3 40186 40187 40188 40190
redukce nitrátů - - -
produkce indolu - - - -
kyselina z glukosy - ·* - -
arginin dehydrolasa + + + +
ureasa - - - -
hydrolysa eskulinu - - - -
hydrolysa želatiny + +
β-galaktosidasa - - - -
asimilace glukosy + + + +
asimilace arabinosy + + +
asimilace manosy + + +
asimilace mannitu + + + +
- 16 asimilace N-acetylglukosaminu asimilace maltosy asimilace glukonátu asimilace kaprinátu asimilace adipátu asimilace malátu asimilace citrátu asimilace fenylacetátu cytochromoxidasa +
+ +
+ +
+ +
+ +
+ +
+ +
+ +
+ +
+ +
+
Primární zkoušení
Půdní test na Petriho miskách
Petriho misky /5 cm / se naplní 10 ml aga ru s bramborovou dextrosou / PM /, Na tento agar se do středu umístí agarová zátka / 5 mm / ze 7 dní staré kultury Pythium ultimum rostoucí při 20 °C. Misky se inkubují 5 dnů při 20 °C, během nichž se na misce vytvoří kolonie P. ultimum.
Minster Mendip · půda se autoklávu je 60 mi nut při 120 °C. Do této půdy 3e dají pšeničné klíčky / l % hmotV/hmoť. / a dobře se promíchá. Přibližně 6 g půdy se unístí do každé Petriho misky a překryje se jí vzrostlé Pythium.
- 17 Testované bakterie rostou na 1/10 TSB nebo na 1/10 TSA deskách 48 hodin při 12 °C,
Na každou Petriho misku se aplikují 2 ml kultury : připraví se duplikátní desky.
Zkoušení : 1/10 TSB samotný metalaxyl / 100 ppm / testovaný organismus
1/10 TSB přidaný k půdě na agaru s bramborovou dextrosou nenaočkovaná organismem Pythium
Desky se inkubují 4 dny při 10 °C.
Účinek vyjádřený ve stupnici od 0 do 3 se stanoví na základě úplné inhibice růstu plísně v půdě.
Test na plíseň bramborovou
Sterilní kotouč z filtračního papíru / průměr 9 cm / se důkladně zvlhčí vodou a umístí se na dno sterilní Petriho misky. Pro každý pokus se připraví dvě misky.
Kultury Pusarium / Pusarium sambusinum, Pusarium culmorum a Pusarium moniliforme / se nechají růst na agaru s bramborovou dextrosou 14 dnů při 20 °C na světle, čímž se vyprodukují konidie. Konidie se potom suspendují ve sterilním solném roztoku / 0,85 % /
- 18 a upraví se na 20 # transmitanci na spektrofotometru při 420 nm.
Polovina očka bakterie rostoucí na výživném agaru / Oxoid / 24 hodin při 20 °C se suspenduje v 2,5 ml sterilního solného roztoku. Jako kontrola se připraví captan v koncentraci 2,0 g/1. Jako kontrola se také použije samotný solný roztok.
Suspense kultury Fusarium / 50 yul / se umístí do sterilní zkumavk^píkroceníriíugy, jedna zkumavka pro každý pokus.
Ito každé Petriho misky se umístí jeden plátek bramboru tenčí než 10 mm, do kterého se korkovrtem o průměru 10 mm vyříznou 4 otvory. Povrch bramborového plátku se sterilisuje ethanolem a vysuší se sterilním filtračním papírem. Plátky se užívají v prů běhu 30 minut od řezání / nebo 60 minut, jestliže jsou uchovávány při 4 °C /.
Do tří ze čtyř otvorů v bramborovém plátku se umísti 50 /ul vzorek suspense spor Fuearium / 10® konidií na 1 ml /. V jednom ze třech otvorů se smísí vzorek bakteriální suspense / 50 //Ul, přibližně 10® buněk na 1 ml / se suspensí Fusarium, do další ho se přidá benon^l v množství 100 ppm a třetí otvor slouží jako nenaočkovaná kontrola.
- 19 Petriho misky se uzavřou víčky a inkubují se 3 dny při 20 °C.
Stupeň onemocnění tkáně se vyhodnotí stupnicí od O do 3.
Testování na Phoma betae
Z vnitřku bulvy cukrové řepy se vyříznou koosíty o velikosti 2,5 x 2,5 x 1,5 nm a zvlhčí se asi 13 ml sterilní vody v plastikové nádobě.
Povrch kousků cukrové řepy se zahrne vzorkem kultury Phama betae se vzorkem předpokládaného fungicidnfho mikroorganismu nebo bez něho a kousky řepy se inkubují 3 týdny.
Ke konci inkubační periody se vzorky řepy vyhodnotí na přítomnost hniloby.
Půdní testování s cukrovou řepou
Přírodní půda, která je známá tím, Že způsobuje * vadnutí cukrové řepy, se zvlhčí na vlhkost 45 %. Do půdy se zašijí semena neošetřené cukrové řepy a semena potažená testovanými bakteriemi. Vzorky se potom inkubují 10 dnů při 15 °C za 12hodinového denního osvětlování. Fungicidní účinnost bakterií se vyhodnotí na basi počtu vzešlých semenáčků ve srovnání
- 20 s chemickým ošetřením tschigarenem /TMTtyí.
Druhé testování
Pro testování účinnosti vybraných mikroorga nismů sa použijí dva organismy : Pythium ultimum a Rhizoctonia solani.
Kultury P. ultimum a R. solani se pěstuji na agarp7ých deskách s bramborovou dextrosou po dobu 7 dnů při 20 °G.
Směs 200 g stříbřitého písku, 5 g kukuřičné mouky, 4 g pšeničných klíčků Beemax a 40 ml vody se autoklávuje 20 minut při 120 °C, potom se umístí do banky a inokuluje se čtvrtinou desky Pythium. Pro Rhizoctonia se použije tentýž substrát, ale bez kukuřičné mouky.
Baňky se inkubují 7 dnů při 20 °C.
ZřeSovací serie
Obsahy každé baňky s lýthium ultimum se smí sí s jemným pístem na konečnou hmotnost 300 g.
Jedna baňka Pythium v 8 litrech hlinitopísčité půdy * Mendip Minater = 2 normální / 2 N /.
Tuto půdu lze ředit čistou hlinitopísčitou půdou * Mendip · na další požadovaná zředění. Organismy se obvykle testují na lithium při zředění N/8 a HT/32 při 12 až 15 °C.
- 21 3/4 banky inokula Rhizoctonia solani v 6 litrech hlinitopísčité půdy Mendip Minster = nor máÍcí* Pro testování se používají koncentrace N/4 a ΪΙ/16.
Pokus se provádí v květináčích o průměru 7,62 cm, přičemž květináče se naplní ze tří čtvrtin infikovanou půdou· Do každého květináče se zaseje 5 hrachů a překryjí se čistou půdou. Přidá se 35 ml vody nebo bakteriální suspense jako zálivka pro každý květináč. Pro každé ošetření se připraví pět dvojic květináčů. Při testech biologicky účinných prostředků rostou bakterie 48 hodin při 20 °C v 1/10 TSB. Ke květináčům se přidá celá suspense / 35 ml /. Jako kontroly slouží obvykle 1/10 TSB a chemický pro středek. U testů na Rhizoctonia se jako zálivka přidá Pencycuron v koncentracích 10 , 100 nebo 200 ppm a na Pythium se jako zálivka použije metalaxyl v kon centraci 100 ppm.
Rostliry se nechají růst u testu na R. solani 7 až 14 dnů při 20 až 25 °G a na Pythium 14 dnů při 12 až 15 °C. Vzcházení rostlinek se monitoruje týdně. Rostliny se denně zalévají vodou. Zvláštní péče byla věnována tomu, aby byla půda během testů udržována vlhká, protože obě choroby mají sklon způsobovat uvadání rostlin.
- 22 Testování na Phytophthora megasperma
Kotouček z kultury P. megasperma o průměru 5 mm se umístí na misku o průměru 9 cm na medium V-8 na dobu 13 dnů při 25 °C. Medium 7-8 má následující složení :
V-8 Campbellova šláva 180 ml
GaGO^ 2,7 S
destilovaná voda 720 ml
Difeo agar 13,5 g
/ Složky kromě agaru se smísí a prohřívají se 30 minut parou, přefiltrují se, pH se upraví na 7,2, přidá se agar a medium se sterilisuje 20 minut při 120 °C /,
Vlhké proso / 50 g + 20 ml destilované vody / se sterilisuje dvakrát 45 minut při 110 °C. Čtvrtina desky P· megasperma se položí dnem vzhůru na povrch prosa a inkubuje se ve tmě 28 dnů při 25 °C.
Proso infikované P. megasperma / o hmotnosti 22,5 g / se pečlivě v mixéru promísí se sterilisovanou půdou / 1 477,5 g / a vodou / 112,5 g /· Jako půda se použije směs 1:1:1 Obj,/obj. stříbřitého písku, polní půdy o pH 7 a rašeliny, která byla sterilisována 1 hodinu při ICO °0,
Do Leonardových nádob se naváží 500 g infikovaného prosa a půdní směsi a nádoby se potom přikryjí plastickými uzávěry až do zpracovávání· Dno vodní ná- 23 držky Leonardových nádob ae naplní 100 ml destilované vody.
Na povrchu prosa a směsi půdy se utvoří čtyři jamky pro rostliny a do každé se zasadí sojový bob / c.v, Azzurra / a překryje se oklfoní směsí.
Kultury testovaného organismu se připraví na deskách s živným agarem kultivovaných 24 hodin při 28 °C a v 250 ml NB baňkách / 150 ml NB / kultivovaných 24 hodin při 28 °C. Vzorek 75 ml kultury se centrifuguje 5 minut při 8 000 otáčkách za minutu při 20 °C. Supernatant se vyhodí, přidá se další 75 ml vzorek, centrifuguje se a supernatant se opět vyhodí. Usazenina zbylá ve zkumavce v centrifuze se opakovaně promývá 5 ml dávkami solného roztoku /9,2 g/1 /. Nakonec se usazenina disperguje do suspense ve 150 ml solného roztoku.
Do každé Leonardovy nádoby se 60 ml stříkačkou injikuje 30 ml solné suspense.
Pro srovnání s chemickými prostředky se do Leonardových nádob jako kontrola injíkují 30 ml vzorky roztoku 285,5 g metalaxylu 35 % / obchodní značka APRON / v 500 ml destilované vody.
Také se nasadí neinfikované kontroly za použití vzorků neinfikované směsi prosa a půdy.
- 24 Semena se potom nechají růst ve skleníku pri 20 + 2 °C za osvětlování 15 000 až 17 000 lux. Vyhodnocování se vyjadřuje v procentech vzcházení ve srovnání s chemickým ošetřením.
Test na Fusarium culmorum
Kultura Fusarium culmorum se pěstuje na agaru s bramborovou dextrosou 10 dnů při 20 °C, až se vytvoří konidíe, Konidie se seberou a spočítají o
na rozmezí koncentrací od 10* do 10 konidif na 1 ml. Ke ICO g pšeničných semen v nádobě se přidá 5 ml konidií a ná3oba se potom nechá přes noc rotovat při 10 °C,
Vzorek infikovaných semen se před setím umístí do směsi testovaných bakterií a stříbřitého písku na 60 minut, čímž dojde k povlečení asi 10^ bteěk na semeno. Druhý vzorek se ošetří benomylem / 100 pum / jako chemickou kontrolou.
Jedno sto semen se zasadí do rašelinového kompostu v sázecí misce do hloubky 2 cm. Kompost se zalije vodou na začátku pokusu, nechá se 2 týdny při 20 °C a zalije se opět pátý den po zasetí. Po tomto počátečním zalití kompostu za účelem vzklíčení semen se kompost nechá uschnout, aby se podpořil vývin choroby.
- 25 Sleduje 3e vzcházení semenáčků a vývin choroby. Příznaky choroby se hodnotí ve stupnici od nuly / žádné příznaky / do 4 / vážné onemocnění /.
Výsledky
Asi 7 CCC bakteriálních půdních, organismů se podrobí testování popsanému výše. Tabulka 1 níže sumarizuje výsledky těchto testů. Číslice ve sloupcích jsou ve stupnici od nuly / Žádný fungicidní účinek / do 3 / žádné zjistitelné příznaky choroby /.
V tabulce je také zahrnut srovnávací příklad typického neúčinného bakteriálního kmene označeného 53/87.
Tabulka 1
primární testy NCIB 40186 40187 40188 40190 53/87
Fusarium culmorum 1 2 0 2 1
Fusarium moniliíorme 1 1 0 1 1
Fusarium sambusinum 0 1 0 0 1
Pýthium ultimum 2 3 2 2 0
Aphanomyces 3 1 0 2 0
Phoma betae 2 0 3 1 0
cukrová řeca/půda 3 2 2 3 0
sekundární te3ty NCI3 40186 40187 40188 40190 53/87
Hhizoctonia solani 0 3 3 0 0
lythium ultimum 15°C 3 3 0 0
Pythium ultimum 24°C 3 2 2 2 0
Pusarium culaorum 2 2 2 2 0
P. megasperma 2 1 1 1 0
Výsledky polních pokusů 1989
Kmeny, které byly nejslibnější v primárních a sekundárních testech byly vybrány pro polní pokusy jako biologické prostředky proti chorobě padání klíčících rostlin * / vadnutí / u hrachu a cukrové řepy.
Obr. 1 znázorňuje výsledky získané s kmenem NCIB 40 186 proti vadnutí hrachu, Tyto pokusy byly prováděny ve Velké Británii. Tímto kmenem bylo dosaženo ochrany okolo 80 % z ochrany dosažené chemickým ošetřením metalaxylem / obchodní značka APRON /,
Kmen NCI3 40 137 byl v tomto pokusu z velké části neúčinný.
Obr, 2 a 3 znázorňují výsledky polních pokusů na cukrové řepě za použití kmenů NCI3 40 136 a
190. Tyto pokusy byly prováděny v Belgii. Btylo
- 27 vybráno 6 míst na polí. Tři místa /1 , 3 a 6/ byla oseta cukrovou řepou v březnu a zbylá tři místa byla oseta v květnu. Obr. 2 uvádí výsledky při prvním výhod nocováni, které bylo prouděno 3 týdny po vysetí a abr. 3 uvádí výsledky po 6 až 3 týdnech po vysetí.
Sumárně tyto výsledky ukazují, Že vadnutí hrachu způsobené Pythium ultimum se aplikací kmene NCIB 40 136 sníží na hladinu srovnatelnou s hladinou dosaženou chemickým ošetřením metalaxylem. Výsledky u cukrové řepy ukazují na zlepšené vzcházení semenáčků při aplikaci kmenů NCIB 40 135 a 40 190 ve srovná44 ní s neožtřenou kontrolou na všech 6 místech. Vzcházení semenáčků na třech místech v přítomnosti uvedených kmenů je srovnatelné se vzcházením dosaženým při použití metalaxylu.
Výsledky polních pokusů 1990
Během polních pokusů v roce 1990 byly mikroorganismy NCIB 40 186 a 40 190 zkoušeny na jejich možnou inhibici Pythium spp. . Pokusy byly prováděny ve Spojených státech amerických, v Belgii a ve Francii a výsledky jsou uvedeny níže. Pro účely pokusů byly πύΐ£ΓοοΓδ3ηί3πξ7 aplikovány jako postřiky semen s následujícím vysušením v písku při pokusech
- 28 v Evropě a jako gumovíto-rašelinové přípravky ve Spojených státech amerických. Dljaší pokusy probíhají v ostatních částech světa, kde choroby vadnutí jsou endemické, například u zeleninových plodin v Hala jsii. I když ještě nemůžeme dodat výsledky pokusů z celého světa, prostě proto, že pokusy nejsou ještě kompletní a nelze je samozřejmě 2 důvodů sezónních omezení zemědělských postupů urychlit, lze přesto již nyní říci, že tyto zvláštní mikro/organismy vykazují přinejmenším velkou schopnost být komerčními biologickými prostředky k ochraně rostlin.
Další testování ostatních výše uvedených mikroorganismů pokračuje v laboratoři a ve skleníku v souladu s normální praxí pro zjišťování účinnosti a bezpečnosti jak pro lidi, tak pro životní prostředí. Výsledky, která jsou v současné době k disposici potvrzují to, co bylo nalezeno dříve a co je již výše popsáno.
Kmeny NCIB 40 186 a 40 190 byly testovány proti vadnutí cukrové řepy při pokusech na 9 políčkách v Belgii a ve Francii. Během setí v časném jaru tylo počasí velmi teplé a sttché, což způsobilo určité problény s vývinem choroby vadnutí cukrové řepy.
V každém testovaném políčku bylo vyseto celkově 200
- 29 semen. Výsledky z těchto 9 pokusů jsou následující.
Belgické a francouzské pokusy 1990 testovaná plodina : cukrová řepa chemická kontrola : tachigaren/TLÍTO
pokus č« počet semen , vzešlých ze 200 s semen zasetých
neosetřená kontrola chemické ošetření NC13 40136 NC 13 40190
1 93 125 130* 114
£ 113 141* 124 127
3 113 157* 146* 138*
4 107 139* 131* 122*
5 120 15031 123 130
6 84 116* 111* 114*
7 135 153* 143 13S
8 119 148* 141 135
9 134 155* 144 144
x = L3D při 5 % pravděpodobnosti
Francouzské pokusy 1990 testovaná plodina : hrách • 30 chemická kontrola : jak je uvedeno níže
Počet rostlin znamená střední počet rostlin, které vzešly na pruhu 5 m dlouhém 22 dnů po ošetření.
Sloupec 2 v tabulkách uvádí počet rostlin, které vzešly z 200 semen sa 22 dnů po vysetí. Písmena za Čísly znamenají statistickou významnost. Obecně při 5 % hladině pravděpodobnosti není žádný signifikantní rozdíl mezi hodnotami označenými stejnými písmeny.
Kontrolní ošetření
Testy byly prováděny v normální polní půdě bez jakýchkoliv přidaných pathogenů.
ošetření počet vzešlých
neoáetřené semeno 172,58 AC
NCIB 40186 - 107 buněk na semeno 184,75 A
APRON - 30 g ÚČ.lítky/100 kg semen 171,50 AC
EEDOIÍIL 23 metalaxyl - zálivka do řádku 151,00 A
blank semeno 100 buněk/semeno 176,00 AC
- 31 Testy
Pathogen / Pýthium / se přidá v množství 200 g na metr řádku ošetření počet vzešlých neoŠetřené semeno
NCI3 40186 - 107 buněk na semeno
APRON - 30 g úč.látky /ICO kg semen
RHXMEL 25 metalaxyl - 2álivka do řádku blank semeno 100 buněk/semeno
111.25 I 144,75 DC157.25 SCDF
164.25 AD
119,88 ΞΙ
Kalifornské / USA / pokusy 1990 testovaná plodina : hrách testovaný pathogen : lithium v dávce 30 g na metr řádku ošetření % vzešlých žádný přidaný pathogen, žádné ošetření pathogen + NCI3 40186 - 107 buněk/semeno pathogen + blank semeno - ICO buněk/semeno pathogen + APBON 30g úč. látky /ICC kg
93,13 A3
75,31 ECD
51,56 5F
92,81 A3
- 32 Misaissippeký pokus / USA / 1990 testovaná plodina : kukuřice testovaný pathogen : Fusarium i/ 10 z na metr řádku ii/ 30 g na metr řádku
Vzcházení se počítá v % po 15 dnech co vysetí
ošetření % vzešlých
žádný přidaný pathogen, žádné ošetření 65,833 0
žádný přidaný pathogen,
NCIB 40 136 107 bunek/semeno 67,917 C
žádný přidaný pathogen,
CAPTAN jako ošetření semene 69,583 EC
pathogen i/, žádné ošetření 51,250 D
pathogen i/ +
NCIB 40186 107 bunšk/semeno 50,000 A3
pathogen ii/, Žádné ošetření 69,375 HC
pathogen ii/ +
NCIB 40186 107 bunšk/semano 82,708 A
pathogen ii/ +
CAPTAN jako ošetření semene 63,958 C

Claims (6)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1, Způsob vyhledávání potenciálního fungicidního prostředku, vyznačující se tím, že zahrnuje stanovení inhibičního účinku tohoto prostředku na houbové napadení ve dvou testech, přičemž v prvním testu se připraví mycelium pathogena, kterým je Pythium spp, ve vrstvě kultivačního média, na kultivační vrstvu se umístí vrstva sterilní půdy, do vrstvy půdy se přidá vzorek potenciálního fungicidního prostředku, testovací jednotka se inkubuje a stanoví se inhibiční vliv fungicidního prostředku na růst pathogena, a ve druhém testu se inokuluje vzorek půdy pathogenní houbou, do této houbou infikované půdy se vyseje semeno rostliny citlivé na napadení touto houbou, na půdu se aplikuje vzorek potenciálního fungicidního prostředku, semeno se nechá vyklíčit a nechá se z něj vyrůst rostlina, a stanoví se inhibiční vliv fungicidního prostředku srovnáním zdravotního stavu rostliny s neinfikovanou kontrolou.
  2. 2. Způsob podle nároku 1, vyznačující se t í tn , že rostlinou náchylnou k infekci komplexem způsobujícím vadnutí klíčících rostlin je cukrová řepa.
  3. 3. Způsob podle nároku 1 nebo 2, vyznačující se tím, že potenciálním fungicidním prostředkem je mikroorganismus.
  4. 4. Způsob podle nároku 3, vyznačující se tím, že mikroorganismem je mikroorganismus žijící na kořenech .
  5. 5. Způsob podle nároku 4, vyznačující se tím, že se mikroorganismus žijící na kořenech isoluje ze vzorku půdy tak, že se do uzavíratelné nádoby umístí vrstva vlhkého sterilního písku a na ni se umístí vlhký vzorek půdy a do vzorku půdy se zaseje semeno rostliny náchylné k určitému onemocnění, nádoba se uzavře a umístí se do takového prostředí, které způsobuje vývin choroby, semeno se nechá vyklíčit a kořeny se nechají prorůst z vrstvy půdy do vrstvy písku, vyřízne se tunel podélně oběma vrstvami, vyberou se kořeny pouze z vrstvy písku a z těchto kořenů se isolují mikroorganismy.
  6. 6. Způsob podle kteréhokoliv z předcházejících nároků, vyznačující se tím, že se prostředek, který vykazuje inhibici choroby v obou uvedených testech podrobí dalšímu testování na inhibici plísňové infekce v jednom ne bo ve více než jednom testu, které zahrnují :
    a) infekci cukrové řepy organismem Aphanomyces cochlioides při teplotě od 12 do 15 UC,
    b) infekci hrachu organismem Pythium ultimum při teplotě od 12 do 15 °C,
    c) infekci hrachu organismem Pythium ultimum při teplotě od 24 do 27 °C,
    d) infekcí hrachu organismem Shizoctania solani při teplotě cd 24 dc 27 °C,
    e) infekcí pšenice organismem Fusarium culmorum při teplotě od 13 do 21 °C,
    f) infekci sojového bobu organismem Phytophthora megasparma při teplotě od 20 do 24 °C,
    g) infekci řezu bramboru organismem Fusarium moniliforme při teplotě od 20 do 24 °C,
    n) infekci řezu bramboru organismem Fusarium sambusinum při teplotě od 20 do 24 °C a
    i) infekci cukrové řepy organismem Phoma spp. při teplotě od 15 do 19 °C.
CS905035A 1989-10-17 1990-10-17 Způsob vyhledávání potenciálních fungicidních prostředků CZ284515B6 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB898923407A GB8923407D0 (en) 1989-10-17 1989-10-17 Antifungal microorganism

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ503590A3 true CZ503590A3 (cs) 1998-10-14
CZ284515B6 CZ284515B6 (cs) 1998-12-16

Family

ID=10664731

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS905035A CZ284515B6 (cs) 1989-10-17 1990-10-17 Způsob vyhledávání potenciálních fungicidních prostředků
CZ941524A CZ284829B6 (cs) 1989-10-17 1990-10-17 Fungicidní prostředek

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ941524A CZ284829B6 (cs) 1989-10-17 1990-10-17 Fungicidní prostředek

Country Status (23)

Country Link
US (1) US5260302A (cs)
EP (1) EP0496791B1 (cs)
JP (1) JPH05501407A (cs)
AT (1) ATE147580T1 (cs)
AU (1) AU652132B2 (cs)
BG (1) BG61671B1 (cs)
CZ (2) CZ284515B6 (cs)
DE (1) DE69029739T2 (cs)
DK (1) DK0496791T3 (cs)
ES (1) ES2095879T3 (cs)
FI (1) FI102615B1 (cs)
GB (1) GB8923407D0 (cs)
GR (1) GR3022295T3 (cs)
HU (1) HU214457B (cs)
MY (1) MY107283A (cs)
NO (1) NO302955B1 (cs)
NZ (1) NZ235711A (cs)
PL (2) PL166131B1 (cs)
RU (1) RU2108038C1 (cs)
SK (1) SK503590A3 (cs)
WO (1) WO1991005475A1 (cs)
YU (1) YU195990A (cs)
ZA (1) ZA908268B (cs)

Families Citing this family (19)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5639949A (en) * 1990-08-20 1997-06-17 Ciba-Geigy Corporation Genes for the synthesis of antipathogenic substances
US5662898A (en) * 1990-08-20 1997-09-02 Ciba-Geigy Corporation Genes for the synthesis of antipathogenic substances
EP0472494A3 (en) * 1990-08-20 1992-10-21 Ciba Geigy Ag Anti-pathogenic biocontrol agents, genes encoding antibiotics synthesis and the use of said antibiotics
US5670350A (en) * 1990-08-20 1997-09-23 Novartis Finance Corporation Genomic DNA encoding a pseudomonas global transcriptional activation element and its use in activating gene expression
KR0145740B1 (ko) * 1991-05-23 1998-08-01 채영복 고정화 미생물 농약과 그의 제조방법
US5348742A (en) * 1991-05-24 1994-09-20 Ciba-Geigy Corporation Anti-pathogenic bacterial strains of Pseudomonas fluorescens
IT1248095B (it) * 1991-06-20 1995-01-05 Ministero Dell Uni E Della Ceppi batterici di pseudomonas (ncimb 40403, ncimb 40376, ncimb 40375,ncimb 40377, ncimb 40402, ncimb 40379) in grado di controllare le infezioni fungine.
FI92790C (fi) * 1991-11-19 1995-01-10 Kemira Oy Mikrobintorjuntamenetelmä
IT1254507B (it) * 1992-03-06 1995-09-25 Composizione per la confettatura di semi, semi confettati con tale composizione e relativo procedimento di confettatura
GB9207352D0 (en) * 1992-04-03 1992-05-13 Ici Plc Method to control fungal disease
US5614188A (en) * 1993-10-06 1997-03-25 Murakashi Lime Industry Co., Ltd. Anti-fusarium composition containing strains of bacillus Sp., a chitin-containing material, and a powdery material
FI95598C (fi) * 1994-01-31 1996-02-26 Kemira Agro Oy Mikro-organismi kasvitautien biologiseen torjuntaan
US6117670A (en) * 1994-06-08 2000-09-12 Novartis Finance Corporation Pyrrolnitrin biosynthesis genes and uses thereof
IN186436B (cs) * 1996-09-03 2001-09-01 Council Scient Ind Res
EP1021954B1 (de) * 1998-12-24 2002-10-02 Gabriele Dr. Berg Rhizobakterienisolate zur Anwendung gegen phytopatogene Bodenpilze und Verfahren zur Anwendung der Rhizobakterienisolate
AU1964900A (en) * 2000-01-04 2001-07-16 Friedrich Felsenstein Method for detecting and characterising active agents against plant pathogens
WO2011154959A1 (en) * 2010-06-09 2011-12-15 Patel, Babubhai C. Advance method of preparation of bacterial formulation using pseudomonas fluorescens for controlling various diseases of crop plant
RU2618873C2 (ru) * 2010-10-25 2017-05-11 Синтетик Дженомикс, Инк. Способ высокоэффективного отбора микробных антагонистов против патогенов
US10004237B2 (en) * 2013-03-14 2018-06-26 Georgia State University Research Foundation, Inc. Inhibiting or reducing fungal growth

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4456684A (en) * 1982-09-08 1984-06-26 The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture Method for screening bacteria and application thereof for field control of diseases caused by Gaeumannomyces graminis
US4588584A (en) * 1983-06-01 1986-05-13 The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture Medium for the isolation of Pseudomonas cepacia biotype from soil and the isolated biotype
US4647533A (en) * 1984-09-14 1987-03-03 The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture Method for screening bacteria and application thereof for field control of Pythium spp. on small grain crops
US4798723A (en) * 1986-07-28 1989-01-17 Lubrizol Genetics, Inc. Agricultural products from Pseudomonas cepacia strains and methods of preparation
US4996049A (en) * 1988-12-19 1991-02-26 Pioneer Hi-Bred International, Inc. Biological control of corn seed rot and seedling blight

Also Published As

Publication number Publication date
FI921722A0 (fi) 1992-04-16
BG61671B1 (bg) 1998-03-31
EP0496791A1 (en) 1992-08-05
YU195990A (sh) 1993-05-28
NO921519D0 (no) 1992-04-15
PL166131B1 (pl) 1995-04-28
FI102615B (fi) 1999-01-15
RU2108038C1 (ru) 1998-04-10
FI921722A (fi) 1992-04-16
GR3022295T3 (en) 1997-04-30
NO921519L (no) 1992-06-12
CZ284515B6 (cs) 1998-12-16
MY107283A (en) 1995-10-31
NO302955B1 (no) 1998-05-11
CZ284829B6 (cs) 1999-03-17
ATE147580T1 (de) 1997-02-15
CZ152494A3 (en) 1995-03-15
DE69029739D1 (de) 1997-02-27
SK279149B6 (sk) 1998-07-08
HU214457B (hu) 1998-03-30
ES2095879T3 (es) 1997-03-01
AU652132B2 (en) 1994-08-18
HU9201282D0 (en) 1992-06-29
ZA908268B (en) 1991-07-31
PL166864B1 (pl) 1995-06-30
EP0496791B1 (en) 1997-01-15
AU6614190A (en) 1991-05-16
FI102615B1 (fi) 1999-01-15
HUT60423A (en) 1992-09-28
GB8923407D0 (en) 1989-12-06
DE69029739T2 (de) 1997-05-15
US5260302A (en) 1993-11-09
SK503590A3 (en) 1998-07-08
NZ235711A (en) 1992-03-26
WO1991005475A1 (en) 1991-05-02
BG96249A (bg) 1993-12-24
DK0496791T3 (da) 1997-06-16
JPH05501407A (ja) 1993-03-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR100331125B1 (ko) 스트렙토마이세스 wyec108을 사용하여 식물병원체를 억제시키는 방법
CZ503590A3 (cs) Způsob vyhledávání potenciálních fungicidních prostředků
BG61345B1 (bg) Изолати от триходерма,фунгицидни състави,съдържащи тези изолати,и използването им срещу в.сinеrеа и s.sсlеrотiоruм
FI95598B (fi) Mikro-organismi kasvitautien biologiseen torjuntaan
CN110317735A (zh) 生防寡雄腐霉菌及应用
JP2827093B2 (ja) 青枯病防除資材
Gindi et al. Efficacy of streptomyces spp. And bacillus spp. For their antagonistic potential against dry root rot (rhizoctonia bataticola) of chickpea
RAMESH COMPARATIVE PERFORMANCE OF FUNGICIDES WITH BIOAGENTS FOR MANAGEMENT OF ANTHRACNOSE DISEASE OF MANGO’
Bhagwan EVALUATION OF FUNGAL CONSORTIUM AGAINST WILT OF SENNA
Samjik EVALUATION OF BIOCONSORTIA AGAINST FUSARIUM WILT OF TOMATO (Lycopersicon esculentum L.)
Al-Khafaji et al. Evaluation of the Efficiency of Ordinary and Nano-Chitosan in Stimulating Acquired Systemic Resistance of Cucumber Plants Against the Fungus Fusarium solani Which Causes Root Rot Disease
Al et al. Biological control of Rhizoctonia Solani and Sclerotium Rolfsii by using local isolates of Trichoderma Spp
KR100298221B1 (ko) 접합균류인 자이고린쿠스 모엘레리 pf-425 균주와 이를 이용한식물 생장 촉진제 및 병 발생 억제제로의 이용방법
RAKESH STUDIES ON THE EFFECT OF CHEMICALS, BIOAGENTS AND SEED COAT POLYMERS ON SOIL BORNE DISEASES OF CASTOR AND GROUNDNUT
JPH01299207A (ja) 植物病害用防除菌及びそれによる植物病害の防除方法
GINDI et al. EFFICACY OF STREPTOMYCES SPP. AND BACILLUS SPP. FOR THEIR ANTAGONISTIC
Remand STUDIES ON BLACK ROT OF CABBAGE
Li Cultivar, pH and inoculum density effects on root rot of strawberry associated with Rhizoctonia spp. and Phytophthora cactorum
Cunliffe The Transmission and Reproduction of Phytophthora erythroseptica Pethyb. in Relation to Pink Rot of the Potato
Chet et al. Biological control of plant diseases using microorganisms grown on agricultural forestry wastes
Ramasubramaniam Effects of herbicides on growth and survival, and influence of latitude on anastomosis group diversity in Rhizoctonia solani
JPH06256126A (ja) 新規微生物、該微生物を含有する土壌病害防除剤及びこれらを利用した土壌病害防除方法
CA2066309A1 (en) Antifungal microorganism
Hudson Diseases of Maize Caused by Fusarium Species in the UK

Legal Events

Date Code Title Description
IF00 In force as of 2000-06-30 in czech republic
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20001017