CZ307927B6 - Heterogenní způsob výroby rutinosy - Google Patents

Heterogenní způsob výroby rutinosy Download PDF

Info

Publication number
CZ307927B6
CZ307927B6 CZ2018-352A CZ2018352A CZ307927B6 CZ 307927 B6 CZ307927 B6 CZ 307927B6 CZ 2018352 A CZ2018352 A CZ 2018352A CZ 307927 B6 CZ307927 B6 CZ 307927B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
quercetin
rutinose
rutin
reaction
rutinosidase
Prior art date
Application number
CZ2018-352A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ2018352A3 (cs
Inventor
Vladimír Křen
Jana Krejzová
Lucie Turková
Lucie Petrásková
Jana Fritschková
Original Assignee
Mikrobiologický ústav AV ČR, v. v. i.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Mikrobiologický ústav AV ČR, v. v. i. filed Critical Mikrobiologický ústav AV ČR, v. v. i.
Priority to CZ2018-352A priority Critical patent/CZ2018352A3/cs
Publication of CZ307927B6 publication Critical patent/CZ307927B6/cs
Publication of CZ2018352A3 publication Critical patent/CZ2018352A3/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/145Fungal isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/16Yeasts; Culture media therefor
    • C12N1/165Yeast isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P17/00Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
    • C12P17/02Oxygen as only ring hetero atoms
    • C12P17/06Oxygen as only ring hetero atoms containing a six-membered hetero ring, e.g. fluorescein
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/12Disaccharides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P39/00Processes involving microorganisms of different genera in the same process, simultaneously
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01168Hesperidin 6-O-alpha-L-rhamnosyl-beta-D-glucosidase (3.2.1.168)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645Fungi ; Processes using fungi
    • C12R2001/66Aspergillus
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645Fungi ; Processes using fungi
    • C12R2001/66Aspergillus
    • C12R2001/685Aspergillus niger
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645Fungi ; Processes using fungi
    • C12R2001/84Pichia

Abstract

Předmětem tohoto řešení je heterogenní způsob výroby rutinosy z rutinu v heterogenním systému, kdy se rutin ve formě suspenze ve vodném prostředí při pH v rozmezí od 2,05 do 10,1 a při teplotě od 10 do 70 °C, podrobí působení enzymu rutinosidasy za vniku rutinosy a kvercetinu, následně se kvercetin z reakční směsi oddělí centrifugací, filtrací nebo dekantací, a rutinosa se získá krystalizací nebo odpařením reakční směsi po oddělení pevných složek.

Description

Oblast techniky
Vynález se týká heterogenní enzymové přípravy rutinosy (a-L-rhamnopyranosid-(l—>6)-Dglukopyranosy) z výchozí látky rutinu pomocí glykosidas, získaných z mikroorganismů rodu Aspergillus. Ceněným vedlejším produktem reakce je kvercetin (2-(3,4-dihydroxyfenyl)-3,5,7trihydroxy-4H-chromen-4-on) o vysoké čistotě, který je účinným antioxidantem a je využitelný v nutraceutikách a dalších ochranných přípravcích (např. kosmetice, chemoprotektivních látkách a funkčních potravinách).
Dosavadní stav techniky
Flavonoidy, které se hojně vyskytují v rostlinách, jsou obecně považované za účinné antioxidanty a chemoprotektivní látky. Typickými komponenty přírodních flavonoidů jsou jejich polyfenolické aglykony a glykosidické substituenty. Mezi nejběžnější glykony v přírodních flavonoidech patří D-glukosa, L-rhamnosa, D-galaktosa, D-xylosa, L-arabinosa, a to jak ve formě monoglykosidů, diglykosidů a vzácněji i komplexnějších oligoglykosidů. Jedním z nejhojnějších polyfenolických aglykonů je kvercetin (viz dále).
Typickými reprezentanty rutinosylovaných flavonoidů jsou např. rutin a hesperidin, které se ve značném množství nacházejí v citrusech, pohance a mnoha jiných rostlinných zdrojích. Rutin je vyráběn v multi-tunových množstvích a je široce využíván v léčivech a potravních doplňcích. Obě komponenty rutinu - kvercetin a rutinosa - mají rozsáhlé použití a velmi zajímavé biologické aplikace. Technologicky jednoduchá, biokompatibilní a vysoce výnosná výroba obou těchto komponent (ideálně v jednokrokové reakci) by byla značným technologickým pokrokem.
Rutinosa
Rutinosa (a -L-rhamnopyranosid-(l—>6)-D-glukopyranosa, vázaná na polyfenol β-glykosidickou vazbou, patří mezi často se vyskytující disacharidy ve flavonoidech. Zatímco kvercetin (viz níže) je velmi dobře prozkoumán a jeho využití je rozsáhlé a dobře dokumentované, pak druhá komponenta rutinu - rutinosa - na svoje využití ve velkém rozsahu zatím čeká. Jedním z hlavních důvodů limitovaného využití rutinosy je její špatná dostupnost - v katalozích renomovaných chemických firem je nabízena v miligramových množstvích za excesivní ceny jako analytický standard, což vůbec neumožňuje praktickou aplikaci (25 mg á 10 000 CZK, Sigma-Aldrich).
Největší potenciál pro využití rutinosy je v kosmetickém průmyslu. Rhamnosa, která se nachází na neredukujícím konci rutinosy, je již široce využívána v kosmetice, např. v přípravcích firmy LOreal, pro odstranění nebo omezení tvorby vrásek. Mechanismus účinku rhamnosy a rhamnooligosachaidů, složených z rhamnosy, glukosy, fukosy a dalších sacharidů je založen na principu inhibice elastasy a dalších metaloproteinas ve fibroblastech. Rozsah tzv. „anti-aging“ účinku závisí na struktuře vybraných rhamnooligosacharidů. Je doloženo, že zcela zásadním strukturálním elementem nutným pro účinek na fibroblasty, snížení degradace elastinu a další komplex efektů, je L-rhamnosa vázaná α-glykosidickou vazbou na různé cukerné struktury (jako též i v rutinose). Dále je známo, že derivatizace rhamnosy na redukujícím konci zlepšuje její biodostupnost při topické aplikaci přes epidermis do buněk keratinocytů, kde pak působí. LRhamnosa je sacharid běžný v rostlinné říši, avšak u obratlovců se nevyskytuje. Interaguje však s některými lektinovými receptory v buňkách epidermis na bázi lektinových interakcí (působí výše uvedený „anti-aging“ efekt), avšak do buněk není aktivně transportována. Naopak D-glukosa je základem energetického metabolismu buněk a nej lepším energetickým zdrojem a prakticky
- 1 CZ 307927 B6 všechny buňky ji velmi aktivně importují pomocí série glukosových transportérů. Tento efekt je známý i u glukosidů, které jsou aktivně importovány do buněk výše uvedenými glukosovými transportéry, přičemž do buněk se pak dostane celý glukosid, a to v mnohem vyšší koncentraci, a tedy umožňující i zásadní zvýšení účinku. Glukosidy se též vyznačují obecně nižší toxicitou a tím se podstatně snižuje možnost vzniku vedlejších negativních účinků.
V literatuře jsou popsány poměrně komplikované metody přípravy rutinosy chemickou syntézou. Jedna z prvních prací na toto téma prakticky jen ukazuje přítomnost rutinosy v rutinu komplikovanou sekvenční chemickou degradací rutinu (J.H. Looker et al. Carbohydrate Reseach 13, 179, 1970). Dále sérii (regio)isomerů rutinosy připravili komplexní vícekrokovou chemickou syntézou s nízkými celkovými výtěžky, postačujícími pro spektrální charakteristiku produktů v roce 1959 P.A.J. Gorin a A.S. Perlin (Canadian Journal of Chemistry 37, 1930, 1959) a poté později jinou totální syntézou L. Birkofer et al. (Justus Liebigs Annalen der Chemie 1973, 731, 1973). Malé množství rutinosy vedle methylrutinosidu bylo připraveno jako nové látky extrakcí z rostliny Datisca glomerata a následnou vícekrokovou izolací, zahrnující kolonovou chromatografii a další procedury autory M. Schubert et al. (Planta 231, 507, 2010). V této práci bylo ukázáno, že rutinosa má u některých rostlin podobně důležitou roli ve skladování a přenosu energetických substancí jako mnohem běžnější sacharosa.
Dále je popsáno několik pokusů o přípravu rutinosy pomocí enzymového štěpení, které jsou však komplikovány nutností přídavku toxických organických rozpouštědel, jako např. postup popsaný v práci Simčíková et al. (Advanced Synthesis Catalysis 357, 107 až 117, 2015) - zde byl rutin rozpuštěn ve směsi dimethylsulfoxidu a pufiru a po působení rutinosidasy bylo nutno odštěpenou rutinosu čistit kolonovou chromatografii na silikagelu s použitím organických rozpouštědel s celkovým výtěžkem 63 %.
Celkově je tedy možno shrnout, že žádná publikovaná metoda nepopisuje přímou přípravu čisté rutinosy bez nutnosti např. kolonové chromatografie. Metody totální syntézy jsou mnohakrokové a poskytují rutinosu v nízkých výtěžcích, popsané enzymové metody používají buď organické kosolventy, nebo komplexní enzymové preparáty z pohanky, které kvůli kontaminaci dalšími monoglykosidasami poskytují nečistý preparát, typicky obsahující kontaminující monosacharidy, který je nutno dále chromatografovat. Všechny popsané metody pracují výlučně s roztokem rutinu ve velmi nízkých koncentracích (do 5 g/L) a nadto vůbec neřeší paralelní získání kvercetinu. Žádná z popsaných metod kvůli inherentním důvodům neumožňuje recyklaci enzymu.
Kvercetin
Flavonol kvercetin patří mezi nejběžnější a nejhojnější flavonoidy v rostlinné říši. Mnoho flavonoidů je v přírodních zdrojích přítomno ve formě glykosidů. Kvercetin a jeho glykosidy kvercetin-3-3-D-glukopyranosid (isoquercitrin) a kvercetin-3-rutinosid (rutin) mají širokou škálu pozitivních účinků na lidský organismus. Struktura kvercetinu je zcela unikátní: katecholová část (ort/zo-dihydroxybenzen) spolu s volnou hydroxyskupinou na uhlíku C-3, která je v konjugaci se 4-oxo skupinou a zajišťuje delokalizaci elektronové hustoty z kruhu B a dále konfigurace hydroxyskupin na C-3, -5 a -7 spolu se 4-oxoskupinou činí z kvercetinu unikátní antioxidant. Právě volná C-3 hydroxyskupina, která je velmi často glykosylována v přírodních derivátech kvercetinu (např. rutin, kvercitrin, isokvercitrin) má pro antioxidační aktivitu kvercetinu zásadní důležitost, proto má obecně aglykon kvercetin vyšší antioxidační účinky než jeho glykosidy. Vzhledem k faktu, že kvercetin se v přírodních zdrojích vyskytuje prakticky výhradně ve formě výše zmíněných i dalších glykosidů je nezbytné pro dosažení nejvyšších antioxidačních, chemoprotektivních a dalších prospěšných účinků tento aglykon z příslušných glykosidů uvolnit. Kvercetin byl dříve považován i za potenciálně škodlivý vzhledem k pozitivní reakci v Amesově testu, která implikuje mutagenitu a případnou karcinogenitu této látky (Manach et al., Nutr. Res. 16, 517, 1996). Nicméně tyto pochyby byly v nedávné době rozptýleny a Federal Drug Agency (USA) vydala pro kvercetin tzv. GRAS Notice No. GRN 000341 (2010) - Generally Recognized
-2CZ 307927 B6 as Safe. Tato certifikace pak umožnila značný rozmach komerčního využití této látky v mnoha různých preparátech, nejen pro speciální lidskou výživu, ale i ve veterinárních preparátech.
Rutin je běžně připravován extrakcí z přírodních materiálů. Tato látka je běžnou farmaceutickou komoditou a je rozsáhle využívána v mnoha terapeutických aplikacích, např. při léčbě křehkosti cévních kapilár, cerebrální trombosy, retinitidy a jako systémový chemoprotektant. Kvercetin je typicky přítomný v běžných plodinách západní diety (např. cibuli, jablkách), a to převážně ve formě různých glykosidů, avšak přímo z přírodních zdrojů se dá získat jen velmi obtížně a v nedostatečné čistotě, takže tyto zdroje pro výrobu funkčních potravin prakticky nelze využít.
Extrakce samotného kvercetinu z přírodních zdrojů (např. z cibule - KR 2003016191-A) je ekonomicky zcela nekompetitivní především vzhledem k nízkým výtěžkům a náročnosti procedur; další popsanou metodou v ruských patentech (RU 2182906-C1) je oxidace taxifolinu (dihydrokvercetinu), který je získáván extrakcí z některých sibiřských dřevin a následnou oxidací dusitanem sodným. 1 tato vícestupňová metoda neposkytuje příliš čistý preparát, používá jedovaté chemikálie a není ekonomická.
Kvercetin se v současnosti běžně připravuje chemickou hydro lýzou rutinu, typicky několikahodinovým varem se zředěnou kyselinou chlorovodíkovou (ca 1 %) nebo i jinými anorganickými kyselinami (Wang et al. Afričan J. Biotechnol. 10, 1460, 2011; CN 104387357-A, 2011). Při tomto procesu za vzniku aglykonu (kvercetinu) odpadají hydrolyzované monosacharidy D-glukosa a L-rhamnosa, protože diglykosid rutinosa vázaná β-glykosidickou vazbou na C-3 kvercetinu je kompletně rozštěpen (nelze ji tedy získat). Dále varem v silné kyselině může docházet k částečnému rozkladu všech reaktantů, včetně kvercetinu, což zhoršuje kvalitu produktu a snižuje výtěžek. Pro hydrolýzu rutinu se využívá i vysokotlaká hydrolýza samotnou vodou (0,2 až 0,8 MPa), kde vzniká směs kvercetinu a isokvercitrinu a uvolněné monosacharidy (CN 1817876-A).
V akademické i patentové literatuře jsou popsány i enzymatické metody přípravy kvercetinu z rutinu. Např. Wang et al. (Afričan J. Biotechnol. 10, 1460, 2011) testoval enzymy hesperidinasu, snailasu a cellulasu-T2440, což jsou směsné preparáty obsahující a-Lrhamnosidasu, β-Dglukosidasu a i další hydrolytické enzymy v různých poměrech. Výtěžky kvercetinu byly pak 30 až 60 % a přitom vznikaly částečně deglykosylované produkty (např. isoquercitrin) a směs monosacharidů (rutinosu tedy nebylo možno získat). Patentový dokument WO 2006/105843 A2 využívá pro deglykosylaci rutinu různých kvasinek, které mají glykosidasovou aktivitu. Z uvolněných monosacharidů je glukosa utilizována in šitu metabolizujícími kvasinkami, takže zůstává čistá L-rhamnosa (kterou kvasinky nemetabolizují) a uvolněný kvercetin. Nevýhodou metody je nízká objemová produktivita a přítomnost kvasinek ve výsledném preparátu, což komplikuje izolaci produktu (např. nelze použít prostou filtraci a promytí, protože kvasinky jsou nerozpustné partikule a zůstávají v preparátu). Patentový dokument CN 101787361-A využívá pro deglykosylaci rutinu enzymu extrahovaného ze semen pohanky, kdy vlastní reakce probíhá ve směsi vody a etanolu (20 až 30 %) a enzym je při reakci inaktivován. Nam et al. (Biotechnol. Lett. 34, 483, 2012) využívá pro štěpení rutinu β-glukosidasu z extremofilního mikroorganismu Pyrococcus furiosus. Konverze rutinu proběhla pouze za přítomnosti kosolventu v roztoku, kterým byl dimethylsulfoxid s koncentrací rutinu 10 mM (ca 6 g/L). Tento enzym je sice deklarován jako rutinosidasa, avšak při hydrolýze rutinu vznikají i monosacharidy, vzhledem k tomu, že enzym má i samotnou glukosidasovou a rhamnosidasovou aktivitu, tj. jde zřejmě o směs různých enzymů. Touto metodou nelze prakticky získat čistou rutinosu.
Problémem existujících postupů je velmi nízká rozpustnost rutinu, která vede k nutnosti použití buď velmi nízkých koncentrací reaktantů nebo přídavku organických rozpouštědel (např. etanolu, dimethylsulfoxidu a dalších) pro zlepšení rozpustnosti (viz výše). Nízké koncentrace substrátu limitují objemovou produktivitu procesu a přídavky organických rozpouštědel kromě jiného částečně inhibují použité enzymy a snižují jejich stabilitu. Dosavadní způsoby, které vždy pracují s rozpuštěným rutinem, mají nejen velmi nízkou objemovou produktivitu, ale nadto neumožňují
-3 CZ 307927 B6 ani vícenásobné použití enzymu, s výjimkou jeho případné imobilizace, která však vyžaduje další výrobní náklady, dochází ke snížení celkové aktivity enzymu a výsledný kvercetin, který je prakticky nerozpustný ve vodě se špatně od imobilizovaného enzymu odstraňuje. Organické kosolventy velmi komplikují nebo prakticky znemožňují přímé získání rutinosy, která je s nimi v roztoku. V případě použití netěkavých rozpouštědel pak nezbývá než použít kolonovou chromatografii. Další je problém možných reziduí kosolventů v rutinose (ale i v kvercetinu), což pak znemožňuje použití v kosmetice nebo dokonce pro perorální podání.
Samotné enzymy pro konverzi lze získat buď komerčně (např. naringinasu, která je směsí a-Lrhamnosidasy, β-D-glukosidasy a dalších hydrolytických enzymů, z mikroorganismu Penicillium decumbens) nebo fermentací příslušných mikroorganismů. Tyto enzymy se dají použít pouze jednou (při izolaci produktu se inaktivují), nebo v imobilizované formě, což však vyžaduje úplné rozpuštění rutinu. Hrubé enzymové preparáty typu pohanková mouka jsou pro paralelní výrobu kvercetinu a rutinosy absolutně nevhodné. Úplného rozpuštění rutinu je dosaženo při použití velmi nízké koncentrace substrátu nebo přidáním organických rozpouštědel, která jsou těkavá, hořlavá, toxická, zvyšují náklady na proces, a navíc enzymy denaturují.
Z výše popsaného je zřejmé, že dosavadními metodami nelze ekonomicky výhodným způsobem z přírodního materiálu přímo izolovat rutinosu ani kvercetin. Vhodným komerčně dostupným prekursorem rutinosy a kvercetinu je rutin. Chemická hydrolýza rutinu ovšem není vhodná, vzhledem k nutnosti využití agresivních chemikálií a dále vzhledem k tomu, že rutinosa je rozložena na monosacharidy. Dále použití agresivní kyseliny ve výrobě může mít negativní komerční konotaci - proti tomu využití enzymů zakládá možnost deklarovat výsledný produkt jako biotechnologicky připravený preparát (bio-produkt). Popsané enzymové nebo jiné biologické metody (kvasinky) pracují s využitím vysokých koncentrací kosolventů, které snižují aktivitu použitého enzymu, nižší objemovou produktivitou a uvolněná rutinosa je částečně nebo úplně rozštěpena na monosacharidy, takže ji není možné získat.
Podstata vynálezu
Uvedené nevýhody dosavadních metod přípravy rutinosy a kvercetinu odstraňuje způsob podle předkládaného vynálezu. Předmětem předkládaného vynálezu je heterogenní způsob výroby rutinosy z rutinu za vzniku kvercetinu jako cenného vedlejšího produktu, kdy se rutin ve formě suspenze, při pH v rozmezí od 2,05 do 10,1 a při teplotě od 10 do 70 °C, podrobí působení enzymu rutinosidasy za vniku rutinosy a kvercetinu, a následně se pevný vedlejší produkt kvercetin z reakční směsi oddělí centrifůgací, filtrací nebo dekantací. Enzym rutinosidasa je s výhodou 6-0-a-L-rhamnopyranosyl^-D-glukopyranosidasa. Rutin se, s výhodou v koncentraci 6 až 600 g/L, rozmíchá na suspenzi ve vodném prostředí (vodným prostředím může být například voda, pufir nebo pufirované kultivační médium po submerzní fermentaci produkčního mikroorganismu, který produkuje výše zmíněný enzym rutinosidasu), které obsahuje enzym rutinosidasu a jeho hodnota pH je vyšší než 2,05. Použité vodné prostředí s výhodou neobsahuje žádná organická rozpouštědla, zejména neobsahuje alkoholy a DMSO. Enzymová reakce pak probíhá tak, že se při teplotě nad 10 °C rutin rozštěpí na rutinosu (a-L-rhamnopyranosid-(l —>6)D-glukopyranosa) a kvercetin (Schéma 1) bez tvorby jakýchkoliv monosacharidů.
-4CZ 307927 B6
iwercetífi
Schéma 1: Enzymová deglykosylace rutinu podle vynálezu za vzniku rutinosy a kvercetinu.
Kvercetin, který je v reakční směsi v pevné fázi, se po ukončení reakce oddělí centrifůgací, filtrací nebo dekantací. Reakční směs po zreagování veškerého rutinu a oddělení pevného kvercetinu obsahuje produkt rutinosu, která se z reakčního roztoku získá krystalizací. Takto získaná rutinosa není kontaminována žádnými monosacharidy, protože za výše uvedených podmínek reakce k hydrolýze rutinosy na monosacharidy nedochází. S výhodou probíhá získání rutinosy následovně: pH matečného louhu se upraví, s výhodou pomocí vápenné vody (nasycený roztok Ca(OH)2), na hodnotu pH 7,0 až 8,0, potom se přidá práškové aktivní uhlí (5 g/L) a křemelina (3 g/L) a roztok se uvede k varu, přefiltruje, zkoncentruje a ponechá se krystalizovat (s výhodou za teploty 0 až 5 °C). Rutinosu lze z roztoku získat též odpařením vody, s výhodou lyofilizací, kdy produktem je amorfní rutinosa.
Zbylý reakční roztok se zachovanou enzymovou aktivitou po odstranění pevného kvercetinu se může použít pro opakovanou výrobu rutinosy (a kvercetinu) z rutinu (po úpravě pH na hodnotu 2,05 a vyšší pomocí roztoku hydroxidu, s výhodou hydroxidu draselného), tedy pro suspendování rutinu pro další reakci. Obsah rutinosy v reakční směsi se postupně s probíhající reakcí zvyšuje a po ukončení reakce (například pokud již není enzymová aktivita dostačující), se nejprve odstraní pevný kvercetin a následně se z matečného louhu izoluje rutinosa. Získaná rutinosa i kvercetin mohou být dále přečištěny rekrystalizací.
Zásadním znakem předkládaného vynálezu je pevné skupenství rutinu vstupujícího do reakce a pevné skupenství kvercetinu, vznikajícího jako vedlejší produkt reakce. Reakční směsí je tedy suspenze rutinu ve vodě, pufru nebo pufrovaném kultivačním médiu po submerzní fermentaci produkčního mikroorganismu, který produkuje výše zmíněný enzym rutinosidasu, a reakce probíhá heterogenně v suspenzi za vzniku suspenze kvercetinu v roztoku rutinosy. Zásadním faktorem pro reakci je pevná fáze rutinu, vstupujícího do reakce, a rovněž produkce kvercetinu v pevné fázi, zatímco rutinosa zůstává v roztoku. U reakcí v roztoku platí termodynamická rovnováha, tj. reaktant a produkt reakce jsou v rovnováze. Oproti tomu při reakci v mikroprostředí pevné fáze podle předkládaného vynálezu, kdy je pevná výchozí látka rutin konvertována na rutinosu v roztoku a pevný vedlejší produkt kvercetin, dochází k okamžitému vysrážení kvercetinu a tím k posunu termodynamické rovnováhy směrem k produktům reakce. Vzniklý pevný kvercetin se neúčastní termodynamické rovnováhy v roztoku a nemůže tak probíhat jeho zpětná reakce, srážení nerozpustného kvercetinu tedy vede k reakci dalšího rutinu na rutinosu a kvercetin, aniž by docházelo ke zpětnovazebně inhibici reakce produktem. Výsledkem jsou téměř kvantitativní výtěžky rutinosy a kvercetinu.
Oproti tomu v přítomnosti, byť i jen malého množství organického kosolventu, ve kterém je rutin a zejména kvercetin rozpustný, zůstává produkt i jen částečně v roztoku, termodynamická rovnováha se posouvá směrem k reaktantu a blokuje se tak vlastní reakce. Proto je velmi důležité, aby reakční systém zůstal zcela heterogenní. Rovněž z hlediska využití produktu, např. v potravních doplňcích, je organický kosolvent, např. typu DMSO, zcela kontraindikován, už jen proto, že toto rozpouštědlo prakticky ze směsi nelze odstranit (např. odpařením) kvůli vysokému bodu varu (189 °C za současného rozkladu). Dále je u DMSO prokázána toxicita - je to například vývojový neurotoxin působí alergické reakce a má mnoho jiných toxických reakcí (Hanslick, JL; Lau, K; Noguchi, KK; Olney, JW; Zorumski, CF; Mennerick, S; Farber, NB (2009). Dimethyl sulfoxide (DMSO) produces widespread apoptosis in the developing centrál nervous systém. Neurobiology of disease. 34 (1): 1-10. doi:10.1016/j.nbd.2008.11.006). Použití i stopového množství DMSO při výrobě rutinosy a kvercetinu by kompletně diskvalifikovalo jeho použití v lidské nebo zvířecí výživě z hygienických důvodů. Vůbec by ani nebylo možné pak deklarovat komerčně výhodnou kvalitu produktu jako „bio“.
Ve výhodném provedení je koncentrace rutinu v suspenzi na začátku reakce v rozmezí od 6 g/L do 600 g/L, s výhodou v rozmezí od 9 g/L do 450 g/L, nejvýhodněji 150 g/L až 250 g/L.
V jednom provedení je objemová aktivita rutinosidasy v počáteční reakční směsi v rozmezí od 1,0 do 10 nkat/mL, s výhodou v rozmezí od 2,5 do 7 nkat/mL, výhodněji v rozmezí od 2,5 do 3,3 nkat/mL.
Ve výhodném provedení se získaný vedlejší produkt kvercetin přečistí rekrystalizací, s výhodou rekrystalizací z roztoku NaOH o koncentraci 50 až 500 mmol.L1 za teploty v rozmezí od 20 do 100 °C.
Ve výhodném provedení se rutinosa získá odpařením reakční směsi po oddělení pevných složek. Výhodněji se rutinosa získá lyofilizací reakční směsi po oddělení pevných složek.
V jiném výhodném provedení se rutinosa získá z reakční směsi po oddělení pevných složek způsobem, kdy se pH reakční směsi po oddělení pevných složek (matečného louhu) upraví, s výhodou pomocí vápenné vody (nasycený roztok Ca(OH)2), na hodnotu pH 7,0 až 8,0, potom se přidá práškové aktivní uhlí (s výhodou cca 5 g/L) a křemelina (s výhodou cca 3 g/L) a roztok se uvede k varu, přefiltruje, zkoncentruje a ponechá se krystalizovat (s výhodou za teploty 0 až 5 °C). Vzniklé krystaly rutinosy se oddělí centrifůgací, filtrací nebo dekantací.
Ve výhodném provedení je enzymem rutinosidasa 6-č?-a-L-rhamnopyranosyl-3-Dglukopyranosidasa.
Ve výhodnějším provedení je 6-D-a-L-rhamnopyranosyl-3-D-glukopyranosidasa izolovaná z mikroorganismu rodu Aspergillus, Penicillium, Mucor, Chaetomium, Acremonium nebo bakterie rodu Actinoplanes, s výhodou z mikroorganismu rodu Aspergillus. Alternativně může být 6-0-(/.-L-rhamnopyranosyl-P-D-glukopyranosidasa připravená heterologní expresí v průmyslovém produkčním mikroorganismu, například v kvasince Píchla pastoris, s výhodou heterologní expresí 6-O-a-L-rhamnopyranosyl-3-D-glukopyranosidasy z mikroorganismu Aspergillus niger v kvasince Pichia pastoris. Jako induktoru pro heterologní expresi se s výhodou použije metanol v koncentraci 5 % (výsledná koncentrace v roztoku je pak 0,5 %).
V jednom provedení se 6-č?-a-L-rhamnopyranosyl-3-D-glukopyranosidasa připraví submerzní kultivací výše uvedeného mikroorganismu, s výhodou druhu Aspergillus niger, submersní kultivací v kapalném médiu obsahujícím rutin jako induktor.
V jiném provedení se 6-č?-a-L-rhamnopyranosyl-3-D-glukopyranosidasa připraví heterologní expresí v kvasince Pichia pastoris v kapalném médiu. Jako induktoru pro heterologní expresi se s výhodou použije metanol v koncentraci 5 % (výsledná koncentrace v roztoku 0,5 %).
Ve výhodném provedení se pro suspendování rutinu v prvním kroku podle způsobu výroby kvercetinu v heterogenním systému použije voda a/nebo reakční směs obsahující aktivní enzym rutinosidasu, zbylá po oddělení kvercetinu z reakční směsi, a/nebo přefiltrované kapalné médium
-6CZ 307927 B6 po submerzní kultivaci mikroorganismu, produkujícího 6-O-a -L-rhainnopyranosyl-β-Ι)glukopyranosidasu. Ve všech uvedených případech je celý reakční systém heterogenní.
Předkládaný vynález nárokuje enzymatický způsob výroby za použití zcela neobvyklých reakčních podmínek. Nečekané bylo zjištění, že za podmínek, při nichž je většina substrátu i produktu reakce přítomna v pevné fázi (suspenze), enzymová reakce probíhá v mikroprostředí pevné fáze za vzniku roztoku produktu rutinosy a precipitace vedlejšího produktu kvercetinu. Jde tedy o nový přístup, kdy se na imobilizovaný substrát (přítomný v heterogenní reakční směsi jako pevná fáze) působí enzymem v roztoku. Takové uspořádání umožňuje použití velmi vysokých koncentrací substrátu, které jsou o řád a více vyšší než koncentrace v dosud popsaných postupech (pro srovnání viz CN 101787361-A a WO 2006/105843 A2), čímž se objemová produktivita procesu řádově zvyšuje. Tento způsob kromě toho zcela eliminuje nutnost použití kosolventů, jako např. DMSO, které využívají jiné popsané postupy, např. Nam et al. (Biotechnol. Lett. 34, 483, 2012), CN 101787361-A a WO 2006/105843 A2, a proto odpadá i případná nutnost jejich odstranění z výsledného produktu a hygienických problémů s residui toxických kosolventů ve výsledném produktu. Tento neobvyklý, ale velmi účinný postup podle předkládaného vynálezu dále také umožňuje snadné oddělení velmi čistého vedlejšího produktu kvercetinu od použitého enzymu prostou filtrací s promytím přímo na filtru či dokonce dekantací a použitý enzym obsažený v reakční směsi lze navíc, po jednoduché úpravě reakčních podmínek, s výhodou pH, výhodně opět použít k další reakci.
Podstatnou výhodou nárokovaného způsobu je tedy skutečnost, že enzymové štěpení rutinu lze provádět i v heterogenním systému, kdy se výchozí rutin a též produkovaný kvercetin nacházejí v suspenzi a vlastní reakce pak probíhá v nasyceném roztoku nebo na mezifázovém prostředí za vzniku ekvimolámího množství rutinosy. Podmínky reakce jsou mírné a nedochází ke štěpení rutinosy na monosacharidy jako v dosavadním stavu techniky.
Další značnou výhodou nárokovaného způsobuje též skutečnost, že enzymovým preparátem pro konverzi rutinu na rutinosu a kvercetin může být přímo kultivační médium po fermentaci produkčního kmene, s výhodou jde o mikroorganismus Aspergillus niger, který byl rozsáhlým screeningem vybrán jako nejvhodnější, neboť poskytuje nejvyšší aktivitu rutinosidasy, nebo i heterologního produkčního kmene Pichia pastoris, tedy bez nutnosti izolace a čištění enzymu. Fermentační médium se pouze naředí destilovanou vodou na potřebnou aktivitu a pH se upraví na požadovanou hodnotu pomocí anorganické báze či kyseliny, s výhodou hydroxidem sodným/kyselinou fosforečnou.
Další významnou výhodou způsobu podle předkládaného vynálezu je jednoduchá izolace produktu (rutinosy), který krystaluje z reakční směsi po oddělení pevných složek odstředěním, filtrací nebo dekantací.
Filtrát po reakční směsi po reakci obsahuje odštěpenou rutinosu, kterou je možno izolovat a přečistit například krystalizací. Filtrát z enzymové reakce rovněž obsahuje stále aktivní rutinosidasu, takže ho lze po případné úpravě pH znovu použít jako enzymovou složku k opakované konverzi rutinu na rutinosu a kvercetin. Tento postup je možné opakovat, přičemž vyprodukovaná rutinosa se z procesu odvětví ředěním filtrátu a dále se izoluje. Izolace rutinosy, která má potenciál ve využití v kosmetice, je velmi jednoduchá především díky skutečnosti, že při způsobu podle předkládaného vynálezu nejsou přítomny jiné glykosidasy a ani se nepoužívají takové podmínky (např. velmi nízké pH a vysoká teplota), při kterých by mohlo dojít k jejímu štěpení až na monosacharidy. Díky tomu je pak v roztoku pouze rutinosa a stopy anorganických solí z média, které se snadno odstraní, např. fosfáty neutralizací vápennou vodou a dále krystalizací rutinosy ze zahuštěného roztoku.
Příprava vysoce čisté rutinosy a kvercetinu se provede rekrystalizací hrubého produktu po enzymové konverzi. Rekrystalizace rutinosy byla popsána výše. Rekrystalizace kvercetinu se provede tak, že se surový kvercetin rozpustí za varu v roztoku NaOH o koncentraci 0,1 až 1
-7 CZ 307927 B6 mol.L1, pH se za tepla upraví na hodnotu pH 9 až 10 a za chladnutí probíhá krystalizace. Výsledný produkt, který má obsah přes 99 % hmotnostních kvercetinu, se promyje zředěnou kyselinou sírovou v koncentraci 0,05 mol.L1 a poté trojnásobně vodou. Rekrystalizace se může opakovat, čímž se čistota produktu dále zvyšuje.
Fermentace se provádí sterilně za aerobních podmínek, za míchání a při teplotě s výhodou 28 °C v třepaných baňkách nebo v míchaném fermentoru. Po fermentaci, která trvá typicky 4 až 7 dní, se mycelium mikroorganismu odstraní odstředěním nebo filtrací. Zbylé médium s obsahem rutinosidasy se po úpravě pH na hodnotu nejméně 2,05 a ohřátí na reakční teplotu v rozmezí od 10 do 60 °C, s výhodou 40 °C, použije přímo pro reakci, tj. rozmíchá se v něm rutin a reakce se za konstantních podmínek a za míchání nechá proběhnout do požadované konverze. Sekvence proteinu, tj. rutinosidasy z Aspergillus niger je známa a tento enzym byl nakloňován standardním způsobem v expresním mikroorganismu Pichia pastoris (Šimčíková a spol. Adv. Synth. Catal. 357, 107, 2015).
Objasnění výkresů
Obr. 1 HPLC chromatogram dokumentující průběh enzymového štěpení rutinu. Kolona Chromolith Performance RP-18e, lOOx 3 mm (Měrek); předkolona Chromolith RP-18e, 5x4,6 mm; mobilní fáze [objemová %]: A = 5 % acetonitril, 0,1 % kyselina mravenčí, B = 80 % acetonitril, 0,1% kyselina mravenčí, ve vodě (objem/objem); gradientová eluce 0 až 3 min 7 až 25 % B, 3 až 5 min 30 % B, 5 až 7 min 7 % B; průtok 1,5 mL/min, 25 °C, detekce při 360 nm. A - 0 hodin (počátek reakce), B - 4 hodiny, C - 7 hodin (konec reakce). 1- Rutin, 2- kvercetin. Na ose x vynesena odezva UV detektoru v mV, na ose y čas v minutách.
Obr. 2 Průběh konverze rutinu na rutinosu, vstupní konc. rutinu 200 g/L, objem reakce 10 mL, 40 °C, pH 3, médium obsahující rutinosidasu 4,8 nkat/mL.
Obr. 3 Průběh konverze rutinu na rutinosu při použití různého množství enzymu, vstupní konc. rutinu 200 g/L, objem reakce 3 mL, 35 °C, pH 3,5.
Obr. 4 Průběh konverze rutinu na rutinosu při různém pH, vstupní konc. rutinu 200 g/L, objem reakce 3 mL, 35 °C, množství rutinosidasy 1,11 nkat/mL.
Příklady uskutečnění vynálezu
Příklad 1: Příprava enzymu rutinosidasy pomocí Aspergillus niger
Enzym rutinosidasa (EC 3.2.1.168) byl připraven submerzní fermentaci mikroorganismu Aspergillus niger v kapalném médiu. Médium pro produkční fermentaci mělo následující složení [g/L]: 5,0 rutin; 15,0 KH2PO4; 4,0 NH4CI; 0,5 KC1; 5,0 kvasinkového extraktu; 1,0 hydrolyzátu kaseinu; 1 mL roztoku stopových prvků, pH bylo upraveno na hodnotu 5,0; po sterilizaci v autoklávu při teplotě 121 °C a po dobu 30 minut pak byly přidány 1,0 mL sterilního 10% (hmotnost/objem) roztoku MgSCL./ILO. Roztok stopových prvků měl následující složení [g/L]: 50,00 EDTA (etylendiamintetraoctová kyselina); 22,00 ZnSCU · 7 ILO; 5,54 CaCl2; 5,06 MnCl2 · 4 H2O; 4,99 FeSO4 · 7 H2O; 1,10 (NH4)6Mo7O24 · 4 H2O; 1,57 CuSO4 · 5 H2O a 1,61 CoCl2 · 6 H2O, komponenty byly rozpuštěny v destilované vodě a pH bylo upraveno na hodnotu 6,0 40% roztokem KOH. Ke kultuře mikroorganismu narostlé na šikmém agaru [g/L]: 125 glycerol, 45 sladový výtažek, 15 NaCl, 0,44 NH4NO3, 0,06 MgSCU . 7 H2O 0,0015 CuSCfi. 5 H2O, 30 agar; pH 5,5 (HC1) bylo sterilně napipetováno 6 mL 0,1% roztoku Tweenu 80 (polyoxyethylensorbitanmonooleát) a seškrábnutím spor mikroorganismu Aspergillus niger do roztoku byla vytvořena suspenze spor a částí mycelií. Do 200 mL inokulačního média bylo
-8CZ 307927 B6 zaočkováno 1 mL této suspenze (107 spor/mL). Zaočkované inokulační médium bylo kultivováno v Erlenmayerově baňce o objemu 500 mL při teplotě 28 °C po 6 dnů za stálého míchání (200 ot./min.). Šestý den po inokulaci kultivačního média bylo mycelium odseparováno filtrací. Objemová aktivita rutinosidasy na konci fermentace měla hodnotu 0,58 nkat/mL.
Příklad 2: Příprava enzymu rutinosidasy pomocí Pichia pastoris
Rutinosidasu (EC 3.2.1.168) je možné s výhodou též připravit heterologní expresí např. v kvasinkách Pichia pastoris dle následujícího příkladu provedení. Heterologní exprese rutinosidasy v kvasinkách Pichia pastoris KM71H probíhala po dobu 5 dnů. Expresní vektor obsahující gen pro rutinosidasu (pPicZaA-Rut; Šimčíková a spol. Adv. Synth. Catal. 357, 107, 2015), nesoucí rezistenci k antibiotiku zeocin) byl nejprve linearizován a následně elektroporován do buněk P. pastoris KM71H. Transformované buňky byly kultivovány na médiu YPD (Yeast Peptone Dextrose medium) na Petriho miskách (YPD [g/LJ: 10,00 kvasinkový extrakt; 20 pepton; 20 glukosa, 15 agar a antibiotikum zeocin (o finální koncentraci 1 mg/mL). Misky byly inkubovány 3 dny při 28 °C. Narostlé kolonie byly následně použity pro kultivaci v kapalném médiu a pro jejich screening s cílem najít kolonii produkující rutinosidasu v co největším množství. Celý postup byl proveden podle manuálu Easy Select Pichia Expression Kit (Invitrogen, USA). Vybraná kolonie produkující rutinosidasu byla přes noc kultivována v kapalném YPD médiu. Druhý den byla peleta oddělena centrifůgací a následně rozpuštěna v kapalném YPD médiu obsahujícím 15% glycerol. Takto připravené konzervy buněk produkujících rutinosidasu (100 pL) byly uchovány při teplotě -80 °C. Produkce rutinosidasy byla provedena v 1 L média, mající následující složení: 700 mL vody; 100 mL 10% glycerolu; 100 mL 1M draselno-fosfátového pufiru pH 6; 100 mL 13,4% YNB (Yeast Nitrogen Base, ROTH) a 2 mL 0,2 % roztoku biotinu. Do 1 L média byla přidána kryokonzerva transformovaných buněk P. pastoris obsahující 100 pL buněk a takto zaočkované médium bylo kultivováno v Erlenmayerově baňce o objemu 3 L při teplotě 28 °C jeden den za stálého míchání (250 ot/min). Druhý den byly buňky oddělené centrifůgací resuspendovány ve 200 mL média v Erlenmayerově baňce o objemu 1 L, obsahujícího 140 mL vody; 20 mL 1M draselnofosfátového pufru pH 6; 20 mL 13,4% YNB (Yeast Nitrogen Base, ROTH); 400 pL roztoku 0,2% biotinu a 20 mL 5% metanolu ve vodě sterilizovaného ultrafiltrací. Kultivace probíhala 4 dny při teplotě 28 °C za stálého míchání (250 ot/min). Genová exprese byla indukována každý den přídavkem 1 mL 100% metanolu po dobu 4 dnů. Výsledný supematant obsahující rutinosidasu byl od buněk oddělen centrifůgací. Objemová aktivita rutinosidasy na konci fermentace měla hodnotu typicky ca 7 nkat/mL.
Supematant po konci fermentace byl pro účely purifikace dialyzován (dialyzační střevo šíře 33 mm, cut off 10 kDa, Sigma-Aldrich) 2 h proti 10 mM acetátovému pufru pH 3,5. Následně byl supematant 2krát naředěn nanovodou a pH bylo upraveno pomocí kyseliny octové na pH 3,5. Ionexová chromatografie byla provedena na koloně Fractogel EMD SO3 (1,5 x 10,0 cm, Měrek). Jako mobilní fáze použity nanášecí pufr A (10 mM acetátový pufr, pH 3,5) a eluční pufr B (obsahující navíc 1M NaCl). Průtok mobilní fáze byl 2 mL/min a čistá rutinosidasa byla eluována 100% pufrem B. Eluovaný protein byl zakoncentrován pomocí ultrafiltrace na aparatuře Amicon 8400 (Merck-Millipore). Ultrafiltrační membrána měla eut-off 10 kDa. Výtěžek této purifikace činí ca 30 %.
Výsledná aktivita rutinosidasy v reakčním médiu má mít s výhodou pro optimální průběh reakce (tj., délka trvání konverze ca 7 h) hodnotu 2 až 2,8 nkat/mL). Enzymová aktivita rutinosidasy byla měřena spektrofotometricky diskontinuální metodou s použitím chromogenního substrátu pnitrofenyl-rutinosidu (pNP-Rut). Absorbance p-nitrofenolu byla měřena při vlnové délce 420 nm. Reakční směs obsahující 10 pL roztoku s rutinosidasou, 10 pL pNP-Rut (10 mM) a 30 pL citrátfosfátového pufru (pH 5) byla inkubována v termomixeru po dobu 10 minut při 35 °C (600 rpm). Enzymová reakce byla ukončena přídavkem 1 mL Na2CO3 (0,1 M).
-9CZ 307927 B6
Příklad 3: Příprava rutinosy a kvercetinu štěpením rutinu
Rutinosu je možné připravit enzymovým štěpením rutinu za vzniku rutinosy a kvercetinu podle následujícího příkladu provedení. 80 mL kultivačního média obsahujícího rutinosidasu získanou heterologní expresí v buňkách P. pastoris podle příkladu 2, jehož pH bylo pomocí kyseliny fosforečné upraveno na hodnotu pH 3,0 (Obr. 4), bylo 2,5krát naředěno nanovodou na celkový objem 200 mL, tak aby aktivita rutinosidasy byla s výhodou v rozmezí 2,5 až 3,3 nkat/mL (Obr. 3). Byly též testovány aktivity enzymu 1,0; 2,0; 5,0 a 10,0 nkat/mL přitom reakce probíhala s uspokojujícím výsledkem. I při nižších koncentracích než 1 nkat/mL reakce probíhá, avšak konverze není úplná. Do takto připraveného roztoku rutinosidasy bylo přidáno 40 g rutinu (finální konc. 200 g/L) a reakční směs byla dále inkubována při 40 °C s výhodou po dobu 7 h (Obr. 2) za stálého míchání. Průběh reakce byl sledován metodou HPLC, prováděnou za následujících podmínek: byla použita Chromolith Performance RP-18e, 100 x 3 mm (Měrek); předkolona Chromolith RP-18e, 5 x 4,6 mm; mobilní fáze: A = 5% acetonitril, 0,1% kyselina mravenčí, B = 80% acetonitril, 0,1% kyselina mravenčí, ve vodě (objem/objem); gradientová eluce 0 až 3 min 7 až 25 % B, 3 až 5 min 30 % B, 5 až 7 min 7 % B; průtok 1,5 mL/min, 25 °C, UV detekce při 360nm, teplota místnosti (viz Obr. 1). Reakce byla ukončena oddělením pevné a kapalné fáze filtrací. Filtrační koláč byl promyt horkou vodou (3x10 mL vody) k odstranění nečistot. Filtrační koláč obsahující téměř čistý kvercetin byl poté vysušen v sušárně při 50 °C.
Získaný jemný žlutý prášek (19,2 g; 97 %) obsahoval 98 % kvercetinu; 0,4 % rutinu a ca 1,6 % neidentifikovaných nečistot (všechny údaje jsou v hmotnostních procentech). Konverze rutinu při zachování reakčních podmínek (teplota, pH, a objemová aktivita enzymu) nezávisí na objemu reakce (testovány byly objemy 0,5 L až 10 L). Dle výše uvedeného postupu byla reakce provedena pro počáteční koncentrace rutinu 6 g/L až 600 g/L (g/L: 6,4; 128; 256; 320; 450; 600). Při použití vyšší koncentrace, převyšující 150 g/L výchozího rutinu, bylo třeba pro dosažení odpovídající, tj. minimálně 98% konverze, sledované analytickým HPLC jak uvedeno výše, prodloužit reakční dobu na 20 až 60 hodin. Struktura kvercetinu byla potvrzena pomocí NMR II a 13C (v CD3OD) a pomocí hmotové spektrometrie HPLC MS a dále srovnáním s autentickým standardem kvercetinu (Sigma). Čistota produktu byla určena pomocí HPLC výše uvedenou metodou (viz Obr. 1).
Příklad 4: Izolace rutinosy z reakční směsi
Pro získání rutinosy byl zbylý filtrát po odseparování kvercetinu dále zpracován s výhodou následujícím postupem. pH roztoku upraveno pomocí vápenné vody (vodný nasycený roztok Ca(OH)2) na hodnotu pH 7,0 až 8,0, poté bylo přidáno práškové aktivní uhlí (5 g/L) a křemelina (3 g/L, Měrek) a roztok byl uveden k varu, přefiltrován a zakoncentrován na odparce. Takto zakoncentrovaný vzorek rutinosy byl ohřát k varu a po zchladnutí byl vzorek dán do lednice krystalizovat. Pro získání rutinosy je možné krystalizaci obejít a výsledný roztok pouze odpařit ve vakuu na rotační odparce nebo s výhodou i lyofilizací.
Příklad 5: Příprava rutinosy a kvercetinu s opětovným použitím reakčního média
Použité reakční médium (100 mL) po konverzi rutinu a oddělení kvercetinu dle příkladu 3 je možno znovu použít ke štěpení rutinu na rutinosu a kvercetin, protože většina enzymové aktivity rutinosidasy je v roztoku zachována. Do média byl po kontrole pH a případné úpravě s výhodou na hodnotu pH 3 přidán pevný rutin do výsledné koncentrace 200 g/L. Dále bylo postupováno stejně jako v příkladu 3 s tím rozdílem, že bylo nutno prodloužit reakční dobu na 18 hodin (podle průběhu konverze, která byla monitorována pomocí HPLC). Výtěžek a čistota získaného kvercetinu byly stejné jako v příkladu 3. Takovouto recyklaci enzymu je možno provést i vícekrát v závislosti na zbytkové koncentraci enzymu. Rutinosa se ve výsledném filtrátu akumuluje a je možné ji získat postupem, jak je uvedeno v příkladu 4.
- 10CZ 307927 B6
Příklad 6: Rekrystalizace kvercetinu
Kvercetin o čistotě vyšší než 99 % hmotnostních byl získán opakovanou krystalizací produktu získaného dle příkladu 3. Žlutý prášek (140 g, 98 % hmotnostních kvercetinu) byl rozmíchán v 1 litru 0,25 M NaOH. Směs byla za stálého míchání přivedena k varu pro rozpuštění kvercetinu a poté byl horký roztok filtrován. Následovalo pomalé chlazení (20 h při teplotě místnosti, poté 4 h při 5 °C). Vyloučené žluté krystaly kvercetinu byly odfiltrovány, promyty vodou o teplotě 40 °C (500 mL) a rozpuštěny ve 100 mL 1 M NaOH. Následovalo pomalé chladnutí (20 h při teplotě 25 °C) a po dosažení této teploty chlazení (4 h při 5 °C). Vyloučené krystaly byly odfiltrovány a resuspendovány ve vodě. Vodná suspenze byla okyselena zředěnou kyselinou sírovou na pH 3,5 a nerozpustný materiál byl odfiltrován a sušen; při této operaci se ze suspenze kvercetinu oddělily zbytky alkálií (sodné ionty) z předchozí krystalizace. Získaný žlutý prášek (6 g) obsahoval 99,85 % hmotnostních kvercetinu a 0,15 % hmotnostních rutinu, což bylo stanoveno analýzou za využití HPLC podle příkladu 3. Veškeré nečistoty byly takto odstraněny. Kvercetin o nižší čistotě lze získat další precipitací z matečných louhů, a to zvláště dalším stáním v chladu a/nebo okyselením.
Příklad 7: Rekrystalizace rutinosy
Rutinosa získaná podle příkladu 4 se rozpustí v destilované vodě na koncentraci 200 až 400 g/L za zvýšené teploty. Pokud je roztok barevný (např. žlutý) odbarví se přídavkem aktivního uhlí (1 g/L) a křemeliny (1 až 3 g/L) s krátkým povařením a filtrací za horka. Získaný čirý roztok se ponechá vychladnout a poté se nechá přes noc krystalovat při nižší teplotě s výhodou 3 až 7 °C. S výhodou je možno roztok ke krystalizací naočkovat malým množstvím krystalků rutinosy. Krystaly se oddělí filtrací nebo centrifůgací. Na filtru se pouze odsají a bez promytí se suší. Matečný roztok po odpaření poskytne další krystaly rutinosy. Výtěžky rekrystalizace se pohybují mezi 70 až 85 %. Rekrystalizovaná rutinosa je bílý nebo lehce zažloutlý jemný krystalický prášek, který je hygroskopický a je nutno ho uchovávat v dobře uzavřené nádobě.
Průmyslová využitelnost
Rutinosa má potenciální využití v kosmetice a jako nízkokalorické sladidlo, vedlejší produkt kvercetin je účinný antioxidant s vysokým chemoprotektivním potenciálem a je využitelný v nutraceutikách, funkčních potravinách, pro zlepšení nutriční hodnoty potravin a dále např. v kosmetických přípravcích.
PATENTOVÉ NÁROKY

Claims (10)

1. Způsob výroby rutinosy z rutinu v heterogenním systému, vyznačující se tím, že rutin ve formě suspenze ve vodném prostředí při pH v rozmezí od 2,05 do 10,1 a při teplotě od 10 do 70 °C, se podrobí působení enzymu rutinosidasy za vzniku rutinosy a kvercetinu, následně se kvercetin z reakční směsi oddělí centrifůgací, filtrací nebo dekantací, a rutinosa se získá krystalizací nebo odpařením reakční směsi po oddělení pevných složek.
2. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že vodným prostředím je voda, pufr nebo pufrované kultivační médium po submerzní fermentaci produkčního mikroorganismu, který produkuje enzym rutinosidasu.
3. Způsob podle nároku 1 nebo 2, vyznačující se tím, že koncentrace rutinu v suspenzi na začátku reakce je v rozmezí od 6 g/L do 600 g/L, s výhodou od 9 g/L do 450 g/L, ncjvýliodnčji od 150 g/L do 250 g/L.
- 11 CZ 307927 B6
4. Způsob podle nároků 1, 2 nebo 3, vyznačující se tím, že objemová aktivita rutinosidasy v počáteční reakční směsi je v rozmezí od 1,0 do 10 nkat/mL, s výhodou v rozmezí od 2,5 do 7 nkat/mL, výhodněji v rozmezí od 2,5 do 3,3 nkat/mL.
5. Způsob podle kteréhokoliv z předchozích nároků, vyznačující se tím, že enzymem rutinosidasou je ó-O-a-L-rhamnopyranosyl-P-D-glukopyranosidasa.
6. Způsob podle nároku 5, vyznačující se tím, že 6-O-a-L-rhamnopyranosyl-3-Dglukopyranosidasa je izolovaná z mikroorganismu rodu Aspergillus, Penicillium, Mucor, Chaetomium, Acremonium nebo Actinoplanes; nebo je připravená heterologní expresí v průmyslovém produkčním mikroorganismu, s výhodou je 6-O-a-L-rhamnopyranosyl-3-Dglukopyranosidasa z mikroorganismu rodu Aspergillus, nejvýhodněji z mikroorganismu Aspergillus niger, připravená heterologní expresí v kvasince Pichia pastoris.
7. Způsob podle nároku 6, vyznačující se tím, že se 6-O-a-L-rhamnopyranosyl-3-D- glukopyranosidasa připraví submerzní kultivací mikroorganismu v kapalném médiu.
8. Způsob podle nároku 6, vyznačující se tím, že se 6-O-a-L-rhamnopyranosyl-3-D- glukopyranosidasa připraví heterologní expresí v kvasince Pichia pastoris v kapalném médiu.
9. Způsob podle kteréhokoliv z předchozích nároků, vyznačující se tím, že se pH reakční směsi po skončení reakce a po oddělení pevných složek upraví na hodnotu pH 7,0 až 8,0, potom se do roztoku přidá práškové aktivní uhlí a křemelina a výsledná směs se uvede k varu, přefiltruje, zkoncentruje a ponechá se krystalizovat za vzniku krystalické rutinosy.
10. Způsob podle kteréhokoliv z předchozích nároků, vyznačující se tím, že vzniklý kvercetin se přečistí rekrystalizací, s výhodou rekrystalizací z roztoku NaOH o koncentraci 50 až 500 mmol.L1 za teploty v rozmezí od 20 do 100 °C.
CZ2018-352A 2018-07-11 2018-07-11 Heterogenní způsob výroby rutinosy CZ2018352A3 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2018-352A CZ2018352A3 (cs) 2018-07-11 2018-07-11 Heterogenní způsob výroby rutinosy

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2018-352A CZ2018352A3 (cs) 2018-07-11 2018-07-11 Heterogenní způsob výroby rutinosy

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ307927B6 true CZ307927B6 (cs) 2019-08-28
CZ2018352A3 CZ2018352A3 (cs) 2019-08-28

Family

ID=67686313

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ2018-352A CZ2018352A3 (cs) 2018-07-11 2018-07-11 Heterogenní způsob výroby rutinosy

Country Status (1)

Country Link
CZ (1) CZ2018352A3 (cs)

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101787361A (zh) * 2010-01-11 2010-07-28 山西大学 芦丁水解酶及其制备方法和应用

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101787361A (zh) * 2010-01-11 2010-07-28 山西大学 芦丁水解酶及其制备方法和应用

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Amaretti, Alberto et al. "Hydrolysis of the Rutinose-Conjugates Flavonoids Rutin and Hesperidin by the Gut Microbiota and Bifidobacteria." Nutrients (2015); ISSN 2072-6643 *
BASSANINI, Ivan, et al. A Sustainable One‐Pot, Two‐Enzyme Synthesis of Naturally Occurring Arylalkyl Glucosides. ChemSusChem, 2017, 10.9: 2040-2045; ISSN: 1864-5631 *
Ivan Bassanini, Jana Krejzová, Walter Panzeri, Daniela Monti, Vladimir Křen and Sergio Riva, A Sustainable One‐Pot, Two‐Enzyme Synthesis of Naturally Occurring Arylalkyl Glucosides, ChemSusChem, 10, 9, (2040-2045), (2017). *
Nam, HK., Hong, SH., Shin, KC. et al. Biotechnol Lett (2012) 34: 483. https://doi.org/10.1007/s10529-011-0786-2; Online ISSN 1573-6776 *
ŠIMČÍKOVÁ, Daniela, et al. α‐L‐Rhamnosyl‐β‐D‐glucosidase (Rutinosidase) from Aspergillus niger: Characterization and Synthetic Potential of a Novel Diglycosidase. Advanced Synthesis & Catalysis, 2015, 357.1: 107-117; ISSN: 1615-4150 *
WEIZ, Gisela, et al. Enzymatic deglycosylation of flavonoids in deep eutectic solvents-aqueous mixtures: Paving the way for sustainable flavonoid chemistry. Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, 2016, 130: 70-73; ISSN: 1381-1177 *

Also Published As

Publication number Publication date
CZ2018352A3 (cs) 2019-08-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR100923665B1 (ko) 유효 물질의 추출방법 및 정제방법
EP1838862B1 (en) Manufacturing method of kaempferol
CN107201331A (zh) 表达羟基酪醇和羟基酪醇葡萄糖苷的大肠杆菌及构建方法及应用
Bassanini et al. A Sustainable One‐Pot, Two‐Enzyme Synthesis of Naturally Occurring Arylalkyl Glucosides
US4758283A (en) Process for preparing L-rhamnose
US6048712A (en) Process for producing α-monoglucosyl hesperidin-rich substance
US6420142B1 (en) Method for enzymatic splitting of rutinosides
Křen et al. Rutinosidase and other diglycosidases: Rising stars in biotechnology
Nakagawa et al. Anomer-selective glucosylation of l-menthol by yeast α-glucosidase
CZ307927B6 (cs) Heterogenní způsob výroby rutinosy
JPH0710898A (ja) 水難溶性フラボノイドの改質方法
US8580955B2 (en) Purification method and production method for cellobiose
US2950974A (en) Conversion of flavonoid glycosides
Lundt et al. 1, 5-Anhydro-D-fructose: biocatalytic and chemical synthetic methods for the preparation, transformation and derivatization
CN103014076B (zh) 一种利用棘孢曲霉制备甜菊醇和纯化莱鲍迪苷a的方法
CN113754626B (zh) 一种酶法制备漆黄素的方法
JP4023539B2 (ja) 有効物質の抽出方法および精製方法
David et al. Biotransformations in carbohydrate synthesis. N-Acetylgalactosaminyl and N-acetylglucosaminyl transfer onto methyl α-and β-glucosides catalysed by the β-N-acetylhexosaminidase from Aspergillus oryzae
KR101315942B1 (ko) 아스트라갈린의 제조 방법
US20220389043A1 (en) Improved isolation of steviol glycosides
JP4699661B2 (ja) Ruscus aculeatusステロイド配糖体の誘導体の製造方法
KR101525956B1 (ko) 베타-글루코시데이즈를 이용한 퀘세틴 또는 이소퀘시트린의 제조방법
CZ2009720A3 (cs) Zpusob výroby quercetin-3-beta-D-glukopyranosidu za vzniku L-rhamnosy
Park The Preparation of Crystalline β-1, 4-Mannotriose from Poonac Using the Enzyme System and Yeast Fermentation
JP2003501045A6 (ja) Ruscus aculeatusステロイド配糖体の誘導体の製造方法

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20230711