CZ305780B6 - Derivát syntetického kanabinoidu, způsob jeho přípravy a použití - Google Patents

Derivát syntetického kanabinoidu, způsob jeho přípravy a použití Download PDF

Info

Publication number
CZ305780B6
CZ305780B6 CZ2014-985A CZ2014985A CZ305780B6 CZ 305780 B6 CZ305780 B6 CZ 305780B6 CZ 2014985 A CZ2014985 A CZ 2014985A CZ 305780 B6 CZ305780 B6 CZ 305780B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
synthetic
preparation
conjugation
pentyl
derivative according
Prior art date
Application number
CZ2014-985A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ2014985A3 (cs
Inventor
Martin Kuchař
Anna Šuláková
Lucie Fojtíková
Oldřich Lapčík
Original Assignee
Vysoká škola chemicko- technologická v Praze
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Vysoká škola chemicko- technologická v Praze filed Critical Vysoká škola chemicko- technologická v Praze
Priority to CZ2014-985A priority Critical patent/CZ305780B6/cs
Publication of CZ2014985A3 publication Critical patent/CZ2014985A3/cs
Publication of CZ305780B6 publication Critical patent/CZ305780B6/cs

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Vynález se týká nově připravených derivátů syntetických kanabinoidů, součástí jejichž struktury je krátký spojovací můstek nesoucí karboxylovou funkční skupinu, a chemických postupů vedoucích k přípravě takovýchto sloučenin. Tyto deriváty syntetických kanabinoidů lze s výhodou využít pro konjugaci s fluorescentní značkou, která by následně umožnila vizualizaci interakcí takto značených ligandů s kanabinoidními receptory, či pro přípravu imunogenů konjugací s nosným proteinem. Polyklonální králičí protilátky získané z imunizovaných laboratorních zvířat lze uplatnit při vývoji rychlých, uživatelsky příjemných imunochemických testů formátu LFIA (Lateral-Flow Immunochromatographic Assay).

Description

Derivát syntetického kanabinoidů, způsob jeho přípravy a použití
Oblast techniky
Vynález se týká nově připravených derivátů syntetických kanabinoidů, součástí jejichž struktury je krátký spojovací můstek nesoucí karboxylovou funkční skupinu, a chemických postupů vedoucích k přípravě takovýchto sloučenin. Tyto deriváty syntetických kanabinoidů lze s výhodou využít pro konjugaci s íluorescentní značkou, která by následně umožnila vizualizaci interakcí takto značených ligandů s kanabinoidními receptory, či pro přípravu imunogenů konjugací s nosným proteinem. Polyklonální králičí protilátky získané z imunizovaných laboratorních zvířat lze uplatnit při vývoji rychlých, uživatelsky příjemných imunochemických testů formátu LFIA (Lateral-Flow Immunochromatographic Assay).
Dosavadní stav techniky
Na drogové scéně se v posledních letech kromě tradičních drog (kokain, opiáty, amfetaminy, kanabinoidy) objevují také nové syntetické drogy (NSD). Důvodem je snaha výrobců a distributorů obejít stávající legislativní normy, v nichž jsou omamné a psychotropní látky vymezeny obvykle taxativně. Na ilegální trh se tak dostávají analoga známých látek s psychotropním potenciálem, která dosud nejsou uvedena na seznamu ilegálních látek, nebo jejichž prekurzory nejsou monitorovanými substancemi. Hlavní nebezpečí spojené s užíváním těchto nových syntetických drog (NSD) tkví v nedostatku informací o jejich farmakokinetickém a toxikologickém chování, neboť tyto látky neprošly žádnými klinickými testy.
Početně nejbohatší a ze strukturního hlediska značně rozmanitou skupinou NSD jsou syntetické kanabinoidy. Tyto látky se váží na kanabinoidní receptory, což jsou s G-proteinem spřažené transmembránové receptory. Podtyp receptorů CB1 se nachází především v centrální nervové soustavě, podtyp CB2 je exprimován zejména v buňkách imunitního systému. Endokanabinoidní systém dodnes nebyl zcela pochopen. Je však známo, že endogenní kanabinoidy, jejichž nejznámějším zástupcem je anandamid, ovlivňují cítění bolesti, náladu, paměť, ale i chuť k jídlu. Ke kanabinoidním receptorům se váže též celá řada exogenních sloučenin, k nejvýznamnějším patří aktivní složky konopí A9-tetrahydrokanabinol (THC) a kanabidiol (CBD), které jsou parciálními agonisty obou zmíněných podtypů receptorů. Syntetické kanabinoidy jsou plní agonisté kanabinoidních receptorů s mnohem dramatičtějšími psychickými účinky. Zaznamenána byla celá řada intoxikací, které měly v některých případech i fatální důsledky. Popsány jsou i případy indukované psychózy. (Banister SD, Wilkinson SM, Longworth M, Stuart J, Apetz N, English K, Brooker L, Goebel C, Hibbs DE, Glass M, Connor M, McGregor IS, Kassiou M. The Synthesis and Pharmacological Evaluation of Adamantane-Derived Indoles: Cannabimimetic Drugs of Abuse. Chern. Neurosci. 2013;4:1081-92.)
Tradiční drogy lze detekovat pomocí komerčních imunochemických testů založených na selektivní reakci protilátky a antigenu, kterým je v tomto případě hledaná omamná či psychotropní látka. K detekci NSD však tyto testy použít nelze. (Páleniček T, Kuchař M. Je možná detekce a identifikace nových syntetických drog (NSD) pomocí orientačních testů? Adiktologie 2011; 11:208-14.) Odhalit intoxikaci osob novými syntetickými drogami je možné pomocí metod klinické biochemie, a to zejména analýzou pomocí plynové chromatografie s hmotnostním detektorem (LC-MS), což je poměrně náročné jak na přístroje, tak na odbornost obsluhy. Sestavení přístrojově nenáročných, jednoduchých, uživatelsky příjemných imunochemických testů na principu LFIA (Lateral Flow Immunochromatographic Assay) by umožňovalo daleko rychlejší a levnější orientační detekci látek v biologickém materiálu ve zdravotnictví nebo při dopravních kontrolách řidičů.
’ 1 CZ 305780 B6
Přestože existuje mnoho evaluovaných imunochemických testů pro stanovení tradičních kanabinoidů, možnosti imunoanalýzy syntetických kanabinoidů jsou omezené. V literatuře jsou popsány příklady metod pro ELISA (Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay) stanovení JWH-018 a JWH250 v krvi, krevním séru a moči (Arntson A, Ofsa B, Lancaster D, Simon JR, McMullin M, Logan B. Validation of a Novel Immunoassay for the Detection of Synthetic Cannabinoids and Metabolites in Urine Specimens. J. Anal. Toxicol. 2013; 37:284-90.). JWH-200 ve slinách (Rodrigues WC, Catbagan P, Rana S, Wang G, Moore C. Detection of Synthetic Cannabinoids in Oral Fluid Using ELISA and LC-MS-MS. J. Anal. Toxicol. 2013; 37:526-33.) a HEIA (Homogenous Enzyme ImmunoAssay) stanovení JWH-018 A-pentanové kyseliny, což je významný metabolit JWH-018, v moči (Barnes AJ, Young S, Spinelli E, Martin TM, Klette KL, Huestis MA. Evaluation of a homogenous enzyme immunoassay for the detection of synthetic cannabinoids in urine. Forensic Sci Int. 2014;241:27-34.).
Jako nosičové proteiny se používají hovězí sérový albumin (BSA), hovězí thyroglobumin (BTG), popř. další proteiny vhodných vlastností. Konjugáty se připravují reakcí aktivované formy haptenu (reaktivní anhydridy či estery) s ε-aminoskupinami lysinových zbytků proteinu za vytvoření amidových vazeb. Konjugací se dosáhne statisticky náhodného obsazení lysylů přítomných v proteinu.
Podstata vynálezu
Podstatou vynálezu jsou nové deriváty syntetických kanabinoidů. Tyto deriváty nesou krátký spojovací můstek s karboxylovou skupinou. Spojovací můstek je využitelný pro připojení fluorescentní značky, která následně umožní vizualizaci interakcí kanabinoidů s kanabinoidními receptory, či je karboxylová skupina spojovacího můstku využitelná pro přípravu imunogenů konjugací s nosným proteinem. Z laboratorních zvířat imunizovaných těmito imunogeny lze získat polyklonální králičí protilátky a uplatnit je při vývoji imunoanalytických metod stanovení syntetických kanabinoidů.
Spojovací můstek je připojen přes kyslík v poloze 4 benzenového jádra l-alkyl-3-benzoylindolů nebo v poloze 4 naftalenu u 1-alky 1-3-naftoylindolů či přímo na dusíku l-alkyl-77/-indol-3karboxamidů.
Sloučeniny obecného vzorce V a VI se připraví tak, že se spojovací můstek zavede přímo na výchozí primární amin jeho V-alkylací ethyl-esterem ω-bromalkanové kyseliny. Získaný sekundární amin je acylován chloridem alkyl-777-indol-3-karboxylové kyseliny. Finální produkty jsou získány hydrolýzou příslušných esterů.
Připravené deriváty syntetických kanabinoidů lze s výhodou využít pro konjugaci s fluorescentní značkou, která by následně umožnila vizualizaci interakcí takto značených ligandů s kanabinoidními receptory, či pro přípravu imunogenů konjugací s nosným proteinem. Polyklonální králičí protilátky získané z imunizovaných laboratorních zvířat lze uplatnit při vývoji rychlých, uživatelsky příjemných imunochemických testů formátu LFIA (Lateral-Flow Immunochromatographic Assay).
Pro získání protilátek proti těmto syntetickým kanabinoidům, tedy nízkomolekulámím látkám (haptenům), bylo nutné připojit je k nosnému proteinu. Pro tyto účely byl jako vhodný nosný protein vybrán hovězí sérový albumin (BSA). Při tvorbě konjugátů byla využita metoda aktivovaného esteru, při níž je hapten reakcí s N.N -dicyklohexylkarbodiimidem (DCC) a V-hydroxysukcinimidem (NHS) nejprve převeden na nestabilní derivát O-acylisomočoviny, a poté na aktivovaný ester. Vlastní konjugační reakce, při níž dochází k tvorbě amidové vazby mezi karboxylovou skupinou haptenu a primární aminoskupinou aminokyseliny lysinu v BSA, pak probíhala v reverzním micelámím prostředí anionaktivního tenzidu.
-2CZ 305780 B6
Způsob přípravy derivátů syntetických kanabinoidů
Zatímco 4-benzyloxybenzoová kyselina byla připravena standardním, v literatuře popsaným způsobem, pro přípravu 4-benzyloxynaftalen-l*karboxylové kyseliny je představena inovativní syntetická cesta. V molekule l-benzyloxy4-bromnaftalenu je brom nejprve nahrazen nitrilovou funkční skupinou při Rosenmundově - von Braunově reakci. Redukce získaného nitrilu diisobutylaluminium hydridem a zpětná oxidace aldehydu oxidem stříbrným, připravovaným in situ z dusičnanu stříbrného a hydroxidu sodného, umožní zavést do molekuly karboxylovou funkční skupinu s vyšším výtěžkem, než publikovaný postup založený na lithiaci a následné reakci organokovového species s oxidem uhličitým, přestože je reakční sekvence delší.
Sloučeniny obecného vzorce V a VI se připraví tak, že se spojovací můstek zavede přímo na výchozí primární amin jeho V-alkylací ethyl-esterem ω-bromalkanové kyseliny. Získaný sekundární amin je acylován chloridem alkyl-/F/-indol-3-karboxylové kyseliny. Finální produkty jsou získány hydrolýzou příslušných esterů. Vzhledem k dostupnosti výchozích surovin a nízkému počtu reakčních kroků je tato syntetická cesta výhodná, přestože výtěžky acylační reakce, pravděpodobně z důvodu sterické náročnosti substituentu na dusíku, nejsou vysoké.
Metodou enzymové imunoanalýzy byly testovány interakce polyklonálních králičích protilátek připravených proti příslušným syntetickým kanabinoidům. S protilátkami vykazujícími nej lepší charakteristiky byly pro imunochemické stanovení optimalizovány a charakterizovány varianty ELISA v nepřímém kompetitivním uspořádání. Byl určen významný analytický parametr tzv. 50% intercept, (I50í viz tabulka). I5o představuje koncentraci analytu, potřebnou k vyvázání 50 % protilátek přítomných v reakčním roztoku, která je nezbytná pro kvalitativní stanovení syntetického kanabinoidů v neznámém vzorku.
Při imunoanalýze v nepřímém kompetitivním uspořádání soutěží antigen zakotvený na pevném nosiči (imobilizační konjugát) se stanovovaným antigenem ve vzorku o omezený počet vazebných míst na molekulách protilátky. Čím více antigenu obsahuje analyzovaný vzorek, tím méně protilátky se naváže na zakotvený antigen. Nenavázané složky se odstraní a přidá se enzymem značená sekundární protilátka proti navázané protilátce. Detekce je uskutečněna enzymovou reakcí, kdy vzniká barevný produkt, jehož intenzita zbarvení je měřena spektrofotometricky.
Přehled obrázků na výkresech
Obr. 1: Schéma syntézy haptenu V
Obr. 2: Schéma syntézy haptenu VI
Obr. 3: Schéma provedené konjugace hapten s BSA
Obr. 4: MALDI spektrum prokazující strukturu připraveného konjugátu haptenu V s BSA, detekující, že 49 molekul haptenu V se průměrně navázalo na nosný protein - BSA
Obr. 5: MALDI spektrum prokazující strukturu připraveného konjugátu haptenu VI s BSA, detekující, že 43 molekul haptenu VI se průměrně navázalo na nosný protein - BSA
Obr. 6: Schematický průběh nepřímé kompetitivní ELISA; A imobilizace konjugátu na stěny jamek mikrotitrační destičky; B aplikace kompetujících složek; C aplikace sekundární protilátky značené enzymem (peroxidázou); D aplikace substrátu pro peroxidázu; E enzymová reakce peroxidázy se substrátem; F zastavení enzymové reakce kyselinou sírovou; · imobilizační konjugát; ®cílový analyt ve vzorku; y primární protilátka; sekundární protilátka značená enzymem; O ubstrát pro peroxidázu.
-3CZ 305780 B6
Obr. 7: Přehled použitých konjugátů a protilátek při vývoji metod ELISA; BSA: hovězí sérový albumin z ang. bovine serum albumin; specifická protilátka: protilátka proti imunogenu příslušného kanabinoidu s BSA
Obr. 8: Chemická struktura haptenu V
Obr. 9: Chemická struktura haptenu VI
Příklady provedení vynálezu
Příklad 1
Syntéza haptenu V l-pentyl-7Jf-indol-3-karboxylová kyselina (1273 mg, 5,50 mmol) byla rozpuštěna v suchém dichlormethanu (40 mL), k roztoku bylo přidáno několik kapek A,7V-dimethylformamidu a stříkačkou byl postupně přikapáván oxalylchlorid (944 pL, 11,00 mmol). Po přidání veškerého oxalylchloridu byla reakční směs ještě 1 hodinu míchána při laboratorní teplotě. Byl přidán toluen (10 mL), přebytečný oxalylchlorid a rozpouštědla byly odpařeny. Surový produkt l-pentyl-77/indol-3-karbonylchlorid byl bez dalšího čištění použit v následné reakci.
Ethyl-4-(naftalen-l-ylamino)butanoát (348 mg, 1,35 mmol) byl rozpuštěn v suchém dichlormethanu (25 mL), k roztoku byl přidán triethylamin (394 pL, 2,82 mmol). Po 60 minutách byl stříkačkou přikapán roztok l-pentyl-77/-indol-3 -karbony(chloridu (283 mg, 1,13 mmol) v suchém dichlormethanu (5 mL), reakční směs byla 20 hodin míchána při laboratorní teplotě. Rozpouštědlo bylo odpařeno a odparek extrahován mezi ethyl-acetát a vodu. Organická fáze byla postupně promyta třemi podíly 1 mol/1 kyseliny chlorovodíkové, třemi podíly nasyceného roztoku hydrogenuhličitanu sodného a nasyceným roztokem chloridu sodného, poté byla vysušena pomocí síranu hořečnatého. Ethyl-acetát byl odpařen a produkt přečištěn sloupcovou chromatografií (hexan-ethyl-acetát, gradient 20/1—>5/1). Byl izolován produkt ethyl-4-[V-(naftalen-l-y 1)-1-( 1pentyl-72/-indol-3-yl)formamido]butanoát (324 mg, 0,69 mmol) ve výtěžku 61 %.
Ethyl-4-[/V-(naftalen-l-yl)-l-(l-pentyl-777-indol-3-yl)formamido]butanoát (142 mg, 0,30 mmol) byl rozpuštěn v ethanolu (20 mL), k roztoku byl stříkačkou přikapán 1M roztok hydroxidu sodného (18 mg, 0,45 mmol) ve vodě. Reakce probíhala 90 minut při teplotě 60 °C. Ethanol byl odpařen, vodná fáze byla zředěna 1 mol/1 roztokem kyseliny chlorovodíkové a protřepána se dvěma podíly dichlormethanu. Organické extrakty byly spojeny a vysušeny pomocí síranu hořečnatého. Dichlormethan byl odpařen a produkt přečištěn sloupcovou chromatografií (dichlormethanmethanol, gradient 99/1—>10/1). Byl izolován produkt 4-[/V-(naftalen-l-yl)-l-(l-pentyl-77/-indol3-yl)formamido]butanová kyselina (107 mg, 0,24 mmol) ve výtěžku 80 %.
1H NMR (300 MHz, CDC13) δ ppm: 0.61 - 0.75 (m, 5 H), 1.03 (q, >7.20 Hz, 2 H), 1.30 (t, >7,50 Hz, 2 H), 1.96-2,14 (m, 2 H), 2.55 (t, J=6.60 Hz, 2 H), 3.58 (t, J=6.60 Hz, 3 H), 4.58 (quint, >6.60 Hz, 1 H), 5.61 (s, 1 H), 7.11 - 7.23 (m, 4 H, ArH), 7.38 (d, J=6.90 Hz, 1 H, ArH), 7.46 - 7.53 (m, 3 H, ArH), 7.91 - 7.95 (m, 3 H, ArH), 7.47 (d, >7.50 Hz, 1 H, ArH). 13C NMR (75 MHz, CDC13) δ ppm: 13.86, 22.06, 23.90, 28.37, 28.78, 32.21, 46.32, 49.26, 108.17, 109.32, 121.62, 122.63, 122.88, 122.91, 125.90, 126.97, 127.43, 127.80, 128.69, 128.84, 128.89, 130.78, 131.65, 134.92, 135.22, 139.76, 167.09, 178.47. IČ (CHC13): 3130, 3067, 3050, 2955, 2927, 2872, 2855, 2700, 2628, 1704. 1626. 1589. 1572. 1523, 1509, 1484, 1466, 1449, 1415, 1395, 1377, 1359, 1311, 1292, 1281, 1249, 1226, 1199, 1164, 1125, 1115, 1073, 1015, 953,927, 896, 857, 803, 789, 777, 744, 680, 658, 569, 421. HRMS-ESI: monoisotopická hmota: 442.22564 Da, nalezeno (m/z) 443.23304 (vypočteno 443.23292) odpovídá iontu [M+H]+ připravené látky.
-4CZ 305780 B6
Příklad 2
Syntéza haptenu VI
Ethyl-4-(adamantan-l-ylamino)butanoát hydrochlorid (275 mg, 0,91 mmol) byl rozpuštěn v suchém dichlormethanu (25 mL), k roztoku byl přidán triethylamin (407 pL, 2,92 mmol). Po 2 hodinách byl stříkačkou přikapán roztok 1-pentyl-JH-indol-3-karbonylchloridu (250 mg, 1,00 mmol) v suchém dichlormethanu (5 mL), reakční směs byla 20 hodin míchána při laboratorní teplotě. Rozpouštědlo bylo odpařeno a odparek extrahován mezi ethyl-acetát a vodu. Organická fáze byla postupně promyta třemi podíly 1 mol/1 kyseliny chlorovodíkové, třemi podíly nasyceného roztoku hydrogenuhličitanu sodného a nasyceným roztokem chloridu sodného, poté byla vysušena pomocí síranu hořečnatého. Ethyl-acetát byl odpařen a produkt přečištěn sloupcovou chromatografií (hexan-aceton, gradient 99/1—>4/5). Byl izolován produkt ethyl-4-[7V-(adamantanl-yl)-l-(l-pentyl-7H-indol-3-yl)formamido]butanoát (201 mg, 0,42 mmol) ve výtěžku 46 %.
Ethyl-4-[A-(adamantan-1 -yl)-1 -(1 -pentyl-///-indol-3-yl)formamido]butanoát (180 mg,
0,38 mmol) byl rozpuštěn v ethanolu (20 mL), k roztoku byl stříkačkou přikapán 1M roztok hydroxidu sodného (34 mg, 0.85 mmol) ve vodě. Reakce probíhala 90 minut při teplotě 60 °C. Ethanol byl odpařen, vodná fáze byla zředěna 1 mol/1 roztokem kyseliny chlorovodíkové a protřepána se dvěma podíly dichlormethanu. Organické extrakty byly spojeny a vysušeny pomocí síranu hořečnatého. Dichlormethan byl odpařen a produkt přečištěn sloupcovou chromatografií (dichlormethan-methanol, gradient 99/1—>10/1). Byl izolován produkt 4-[jV-(adamantan-l-y 1)-1-( 1pentyl-7//-indol-3-yl)formamido]butanová kyselina (45 mg, 0,10 mmol) ve výtěžku 27 %.
1H NMR (300 MHz, CDC13) δ ppm: 0.80 (t, J=6.90 Hz, 3 H, CH3), 1.19 - 1,27 (m, 4 H, 2xCH2), 1.61 - 1.78 (m, 10 H, 3xCH2), 2.01 (t, J=7.50 Hz, 2 H, CH2COOH), 2.08 (s, 3 H, CH-CH2-CH), 2.28 (s, 6 H, CH2-CH-CH2), 3.54 (t, J=7.35 Hz, 2 H, NCH2), 4.00 (t, J=7.20 Hz, 2 H, NCH2), 7.06 - 7.25 (m, 3 H, ArH), 7.37 (s, 1 H, ArH), 7.48 (d, J=7,50 Hz, 1 H, ArH). 13C NMR (75 MHz, CDC13) δ ppm: 14.02, 22.38, 27.98, 29.17, 29.81, 30.39, 31.16, 36.73, 40.91, 46.06, 49.72, 58.42, 110.04, 114.48, 120.24, 120.71, 122.18, 125.54, 130.55, 135.75, 169.62, 177.69. IČ (CHC13): 3118, 3055, 2956, 2927, 2901, 2850, 2701, 2589, 2499, 1724, 1709, 1613, 1561, 1539, 1466, 1452, 1415, 1392, 1356, 1341, 1322, 1307, 1273, 1213, 1183, 1142, 1119, 1074, 1053, 1014, 979, 893, 854, 780, 741, 702, 573, 524, 436. HRMS-ESI: monoisotopická hmota: 450.28824 Da, nalezeno (m/z) 451.29553 (vypočteno 451.29552) odpovídá iontu [M+H]+ a 473.27723 (vypočteno 473.473,27746) odpovídá iontu [M+Na]+ připravené látky.
Příklad 3
Provedení nepřímé nekompetitivní ELISY
Imobilizace konjugátu na stěny jamek mikrotitrační destičky
Zásobní roztok imobilizačního konjugátu (I-BSA - VI-BSA) byl vhodně naředěn v 0,05 mol/1 karbonát-bikarbonátovém pufru, pH 9,6 a pipetován do jamek mikrotitrační destičky v množství 100 μΐ na jamku. Imobilizace probíhala přes noc při laboratorní teplotě. Nenavázaný imobilizační konjugát byl následující den odstraněn pomocí automatické promývačky 4x 300 μΐ 0,01 mol/1 PBS-Tw (0,01 mol/1 PBS, pH 7,4 obohacený 0,05% Tweenem).
Aplikace kompetujících složek
Po promytí nenavázaného konjugátu byly do jamek mikrotitrační destičky pipetovány kompetující složky v pořadí 50 μΐ roztoku antigenu (kalibračního standardu nebo vzorku) ředěného v PBS a 50 μΐ roztoku polyklonální králičí protilátky ředěné v příslušném pufru (různé pufry pro různé systémy). Inkubace probíhala za mírného třepání při laboratorní teplotě, po dobu 1 hodiny. Nezreagované imunoreaktanty byly odstraněny opakovaným promytím jamek 0,01 mol/1 PBS-Tw (4x 300 μΐ, promývačka).
-5CZ 305780 B6
Aplikace sekundární protilátky
Ke kvantifikaci navázaných králičích protilátek na imobilizační konjugát bylo využito tzv. sekundární protilátky GAR-Po (z angl. Goat Anti-Rabbit - kozí protilátky proti králičím protilátkám značené peroxidázou). Sekundární protilátka byla ředěna 1:10 000 v příslušném pufru (v závislosti na systému) a pipetována v množství 100 μΙ na jamku. Inkubace probíhala za mírného třepání při laboratorní teplotě, po dobu 1 hodiny. Nenavázaná protilátka byla poté odstraněna opakovaným promytím jamek 0,01 mol/1 PBS-Tw (4x 300 μΐ, promývačka).
Aplikace substrátu pro peroxidázu
Do každé jamky bylo následně přidáno 100 μΐ čerstvě připraveného roztoku substrátu pro peroxidázu Enzymová reakce probíhala za mírného třepání při laboratorní teplotě deset minut.
K zastavení enzymové reakce byl použit přídavek 2 mol/1 kyseliny sírové v množství 50 μΐ na jamku. Absorbance reakční směsi byla měřena v jamkách mikrotitrační destičky při vlnové délce 450 nm.
Průmyslová využitelnost
Aplikace v imunoanalytických metodách stanovení syntetických kanabinoidů ve formátech nepřímé ELISA, LFIA, FIA a dalších, které využívají kompetice mezi haptenem - některým z připravených derivátů syntetických kanabinoidů, a analytem - psychoaktivní látkou přítomnou ve vzorku, o vazebná místa protilátky.

Claims (6)

1. Derivát syntetického kanabinoidů o názvu 4-[A-(R2-1-y 1)-1-( l-pentyl-///-indol-3-yl)formamido]butanová kyselina, přičemž R2 je naftalen nebo adamantan.
2. Derivát syntetického kanabinoidů podle nároku 5 o názvu 4-[A-(naftalen- 1-y 1)-1-( 1-pentyl777-indol-3-yl)formamido]butanová kyselina a struktuře:
3. Derivát syntetického kanabinoidů podle nároku 1 o názvu 4-[A-(adamantan-l-yl)-l-(lpentyl-777-indol-3-yl)formamido]butanová kyselina a struktuře:
-6CZ 305780 B6
4. Způsob přípravy derivátu syntetického kanabinoidu podle nároku 1 až 3, vyznačující se tím, že výchozí adamantyl/naftylamin se podrobí jV-alkylaci, kdy se přidá ethyl-ester ωbromalkanové kyseliny, ke vzniklému sekundárnímu aminu se přidá chlorid l-alkylindol-3-karboxylové kyseliny a provede se acylace, vzniklý ester nesený na spojovacím můstku se v zásaditém prostředí hydrolyzuje na karboxylovou skupinu.
5. Použití derivátu syntetického kanabinoidu podle nároku 1 až 4 pro výrobu prostředku pro vizualizaci interakcí s kanabinoidními receptory.
6. Použití derivátu syntetického kanabinoidu podle nároku 1 až 4 pro výrobu prostředku pro přípravu imunogenů konjugací s nosným proteinem, pro získání protilátky pro analýzu drog interagujících s kanabinoidními receptory.
CZ2014-985A 2014-12-31 2014-12-31 Derivát syntetického kanabinoidu, způsob jeho přípravy a použití CZ305780B6 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2014-985A CZ305780B6 (cs) 2014-12-31 2014-12-31 Derivát syntetického kanabinoidu, způsob jeho přípravy a použití

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2014-985A CZ305780B6 (cs) 2014-12-31 2014-12-31 Derivát syntetického kanabinoidu, způsob jeho přípravy a použití

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ2014985A3 CZ2014985A3 (cs) 2016-03-09
CZ305780B6 true CZ305780B6 (cs) 2016-03-09

Family

ID=55456348

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ2014-985A CZ305780B6 (cs) 2014-12-31 2014-12-31 Derivát syntetického kanabinoidu, způsob jeho přípravy a použití

Country Status (1)

Country Link
CZ (1) CZ305780B6 (cs)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6013648A (en) * 1995-06-21 2000-01-11 Sanofi CB2 Receptor agonist compounds
US20130066053A1 (en) * 2011-02-14 2013-03-14 Randox Laboratories Limited Detection of Synthetic Cannabinoids
US20130196354A1 (en) * 2011-02-14 2013-08-01 Randox Laboratories Limited Detection of Synthetic Cannabinoids

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6013648A (en) * 1995-06-21 2000-01-11 Sanofi CB2 Receptor agonist compounds
US20130066053A1 (en) * 2011-02-14 2013-03-14 Randox Laboratories Limited Detection of Synthetic Cannabinoids
US20130196354A1 (en) * 2011-02-14 2013-08-01 Randox Laboratories Limited Detection of Synthetic Cannabinoids

Also Published As

Publication number Publication date
CZ2014985A3 (cs) 2016-03-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2726793B2 (ja) 免疫アッセイ
JP5852578B2 (ja) 両性イオン含有アクリジニウム化合物
EP2950104B1 (en) Immunoassay for compounds of the nbome family
CZ2015962A3 (cs) Derivát tryptaminu, způsob jeho přípravy a použití
Xia et al. Molecularly imprinted polymer based microtiter chemiluminescence array for determination of phenothiazines and benzodiazepines in pork
US8569000B2 (en) Immunoassays using antibodies specific to carbamazepine
Cooper et al. Development of antibodies and immunoassays for monitoring of nitrofuran antibiotics in the food chain
WO2020197786A1 (en) Immunoassay for mitragynine
JP4213029B2 (ja) 特異的標識化方法
CN108558718A (zh) 氟苯尼考及氟苯尼考胺抗原、抗体及其同时检测酶联免疫分析方法
US8476029B2 (en) MCPP immunoassay
CN105061339A (zh) 一种半抗原、其人工抗原及其在检测喹乙醇残留标志物中的应用
CN110872344B (zh) 一种氯霉素完全抗原及其制备方法与应用
JP2005506520A (ja) 新規カンナビノイド検出用試薬
CZ305780B6 (cs) Derivát syntetického kanabinoidu, způsob jeho přípravy a použití
JP2023175753A (ja) 化学発光アンドロステンジオンコンジュゲート
JP2005247822A (ja) コプラナーpcbハプテン、コプラナーpcbに対する抗体およびそれを用いる免疫学的測定方法
US10775394B2 (en) Immunoassay for phenethylamines of the 2C and DO sub-families
CZ306547B6 (cs) Derivát syntetického kanabinoidu, způsob jeho přípravy a použití
JP5690514B2 (ja) アゾキシストロビン誘導体、アゾキシストロビンに対する抗体またはそのフラグメント、ならびにそれらの抗体またはフラグメントを用いた測定キットおよび測定方法
US20040096903A1 (en) Immobilised cardiolipin probes
US20130310277A1 (en) Multi-analyte microarrays using tag-specific antibodies and tag-anchored antibodies
US10591497B2 (en) Immunoassay for synthetic cannabinoids of the adamantyl indazole/indole-3-carboxamide family
CN104535763B (zh) β-受体阻断剂均相酶免疫检测试剂及其制备和检测方法
WO2018181935A1 (ja) 抗ApoA1抗体

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20211231