CZ303252B6 - Zpusob eliminace antigenních vlastností 5-ethynyl-2´-deoxyuridinu a 5-ethynyluridinu pri detekci nukleových kyselin - Google Patents

Zpusob eliminace antigenních vlastností 5-ethynyl-2´-deoxyuridinu a 5-ethynyluridinu pri detekci nukleových kyselin Download PDF

Info

Publication number
CZ303252B6
CZ303252B6 CZ20110324A CZ2011324A CZ303252B6 CZ 303252 B6 CZ303252 B6 CZ 303252B6 CZ 20110324 A CZ20110324 A CZ 20110324A CZ 2011324 A CZ2011324 A CZ 2011324A CZ 303252 B6 CZ303252 B6 CZ 303252B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
azido
deoxyuridine
dimethylamine
edu
ethynyl
Prior art date
Application number
CZ20110324A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ2011324A3 (cs
Inventor
Koberna@Karel
Ligasová@Anna
Rosenberg@Ivan
Liboska@Radek
Original Assignee
Ústav organické chemie a biochemie Akademie ved Ceské republiky, v. v. i.
Ústav experimentální medicíny Akademie ved Ceské republiky, v.v.i.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ústav organické chemie a biochemie Akademie ved Ceské republiky, v. v. i., Ústav experimentální medicíny Akademie ved Ceské republiky, v.v.i. filed Critical Ústav organické chemie a biochemie Akademie ved Ceské republiky, v. v. i.
Priority to CZ20110324A priority Critical patent/CZ303252B6/cs
Publication of CZ2011324A3 publication Critical patent/CZ2011324A3/cs
Publication of CZ303252B6 publication Critical patent/CZ303252B6/cs

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)

Abstract

Popsaný zpusob dovoluje efektivne eliminovat 5-ethynyl-2´-deoxyuridin inkorporovaný v DNA nebo 5-ethynyluridin inkorporovaný v RNA jako antigen, který je rozeznáván protilátkami, primárne namírenými proti strukturne podobným molekulám. Príkladem takových molekul jsou 5-brom-2´-deoxyuridin, 5-chlor-2´-deoxyuridin, 5-jod-2´-deoxyuridin ci 5-bromuridin a 5-fluoruridin. Zpusob je založen na reakci 5-ethynyl-2´-deoxyuridinu v DNA nebo 5-ethynyluridinu v RNA s malými azidovanými molekulami v prostredí s mednými ionty, provádené pred reakcí s protilátkou, rozeznávající 5-ethynyl-2´-deoxyuridin a 5-ethynyluridin.

Description

Oblast techniky
Vynalez se týká způsobů eliminace 5-ethynyi-2'-deoxy uridinu a 5-ethynyluridinu jako antigenů rozeznávaných protilátkami, reagujícími s uvedenými molekulami. Příkladem takových protilátek, které reagují s molekulou 5-ethynyl-2'-deoxyuridinu nebo 5-ethynyluridinu, jsou některé protilátky rozeznávající analogy thymidinu, jako 5-brom-2'-deoxyuridin. 5~chlor-2'-deoxyuridin, 5-jod-2'-deoxyundin, 5-bromuridin nebo 5-fluorurÍdin. Tento přístup dovoluje cíleně eliminovat antigenní vlastnosti 5-ethynyl-2'-deoxyuridinu a 5-ethynyluridinu, které by komplikovaly například detekci replikované DNA nebo nově syntetizované RNA.
Dosavadní stav techniky
Použití systémů, založených na reakci nukleosidů v DNA nebo RNA se specifickými protilátkami, je běžné jak v základním, tak aplikovaném výzkumu. Příkladem takto používaných nukleosidů jsou 5-brom-2'-deoxyuridin (BrdU), 5-ehlor-2'-deoxyuridin (CldU), 5-jod-2'-deoxyuridin (IdU), 5-bromuridin (BrU) nebo 5-fluoruridin (FU). Jejich použití dovoluje např. rychlou analýzu buněčných populací z hlediska jejich proliferační aktivity. Další využití uvedených systémů zahrnuje izolace fragmentů DNA značených modifikovanými nukleosidy. Své uplatnění mají i ve výzkumu DNA replikace a transkripce. Jednou z nových metod, používaných právě pro detekci replikované DNA nebo nově syntetizované RNA, je použití 5-ethynyl-2'-deoxyuridinu (EdU) a 5-ethynyluridinu (EU) ajejich následná detekce pomocí tzv, click reakce (Jao and Salic, Proč. Nati. Acad. Sci. USA 2008, 105, 15779 až 15784; Salic and Mitchison, Proč. Nati. Acad. Sci. USA 2008. 105, 2415 až 2420; Chehrehas et al., Journal of Neuroscience Methods 2009, 177, 122 až 130), Ta spočívá v reakci alkynu s azidoderivátem fluorochromu nebo biotinu nebo digoxigeninu či jiné relativně velké molekuly, která později slouží k detekci EdU v prostředí jednomocných iontů mědi. K azidům mohou být případně připojeny i jiné molekuly, které slouží jako značky. Příkladem je BrdU-azid (Cappella P. et al., Cytometry 2008, 73, 626 až 63), který se detekuje pomocí anti-BrdU protilátky bez potřeby použití HCI pro denaturaci DNA.
Současná detekce BrdU (alternativně i CldU nebo IdU) pomocí protilátek a EdU prostřednictvím azidovaných fluorochromů, případně např. azidovaného biotinu, digoxigeninu nebo jiné relativně velké molekuly, která později slouží k detekci EdU, je však podle našich zjištění komplikována několika skutečnostmi. Tyto skutečnosti komplikují i současnou detekci BrU nebo FU a EU. Hlavní nevýhodou je fakt, že jak EdU, tak i EU jsou zpravidla rozeznávány protilátkami, které reagují se strukturně podobnými molekulami, jakými jsou právě BrdU, CldU, IdU, BrU nebo FU. Jednou z výjimek je klon MoBu-1 (Bradford and Clarke, Current Protocols in Cytometry, 2011, 55, chapter, 7, unit 7.38). Navíc při click reakci, v níž reagují EdU v DNA nebo EU v RNA s velkými azidovánými molekulami, reagují tyto azidované molekuly jen s částí molekul EdU nebo EU, pravděpodobně ze sterických důvodů. Velká část EdU nebo EU tak zůstává v DNA nebo RNA neoznačena a může reagovat s protilátkami, pro které je důležitá oblast v okolí polohy 5 uracilové části molekuly EdU nebo EU. Po reakci s azidovanou molekulou je však tato oblast pro protilátku nedostupná. Ačkoli podle našich výsledků lze molekuly inkorporovaného EdU přeměnit na 5-acetyl-2'-deoxyuridin (AdU) pomocí koncentrovaných roztoků kyselin, tento krok s sebou přináší jen částečné řešení uvedeného problému. Pro úplnou přeměnu je nutné použít vysoce koncentrované kyseliny, což vede ve svém důsledku k rozsáhlému poškození buněčné struktury. Navíc řada protilátek proti BrdU, CldU a IdU současně rozeznává i AdU. V případě EU pak nelze tento přístup použít vůbec, neboť použitím koncentrovaných kyselin dojde k celkové degradaci RNA.
- 1 CZ 303252 B6
Podstata vynálezu
Podle tohoto vynálezu je řešením výše zmíněných problémů použití malých azidovaných ne5 fluoreskujících molekul, které vzhledem ke svým rozměrům reagují s inkorporovaným EdU nebo EU daleko účinněji než relativně velké molekuly azidovaných fluorochromů, případně např. azidovaného biotinu, digoxigeninu nebo jiné relativně velké molekuly běžně používaných k detekcím EdU/EU. Nespornou výhodou navrhovaných molekul je rovněž skutečnost, že nefluoreskují a tudíž jejich případná vazba na DNA, RNA nebo proteiny nevede ke zvýšení pozadí. Použít lze io tyto malé molekuly: azidomethylfenylsulfid, 2-azidoethanol, azidomethylbenzylsulfid, azidomethylmethylsulfíd, 3-azido-l,2-propandiol, l,3-diazido-2-propanol, 3-azido-2-propanol, 3azidopropanol, 1,3-diazidopropan, 1,2-diazidoethan, 2-(2-azidoethoxy)ethanol, 8-azido-3,6— dioxaoktanol, 11 -azido-3,6,9-trioxaundekanol, 2-azidoethylamin, 3-azidopropy lamin, 4-azidobutylamin, 5-azidopentylamin, 6-azidohexylamin, 2-(2-azidoethoxy)ethylamin, 8-azido-3,615 dioxaoktylamin, 1 l-azido-3,6,9-trioxaundecylamin, N-(2-azidoethyl)di methy lamin, N-(3azidopropyl)dimethylamin, N-(4-azidobutyl)dimethylamin, N-(5~azidopentyl)dimethylamin, N(6-azidohexyl)dimethylamin, N-{5 azido-3-oxapentyl)dimethylamin, N-(8-azido-3,6-dioxaoktyl)dimethylamin, N—(t l-azido-3,6,9-trioxaundecyl)dimethylamin, dále chloridy, bromidy, jodidy, sulfáty, chloristany, tosyláty, mesyláty, nitráty, tetrafiuorboráty a hexafluorfosfáty, N-(220 azidoethyl)trimethy lamonia, N-(3-azidopropyl)tri methy lamonia, N-(4-azidobutyl)trimethyl· amonia, N-(5-azidopentyl)trimethylamonia, N-(6-azidohexyl)trimethylamonia, N-(5-azido-3oxapentyl)trimethylamonia, N-(8-azido-3,6-dioxaoktyl)trimethylamonia či N-(l l-azido-3,6,9trioxaundecyl)trimethylamonia, nebo jejich kombinaci. Pri eliminaci nezreagovaného EdU/EU se využije rovněž princip click reakce, pri němž reakce mezi terminálním ethynylem molekuly EdU (EU) a azidoskupinou malé molekuly probíhá v prostředí obsahující měďné ionty. Je to stejný princip, jaký se využívá i pri detekcích EdU v DNA nebo EU v RNA. Reakce s malou nefluoreskuj ící azidovanou molekulou se provede až po reakci s azidovanou molekulou s fluorochromem nebo s biotinem či digoxigeninem nebo s jinou relativně velkou molekulou, která později slouží k detekci EdU. Tento přístup umožňuje účinně eliminovat antigenní vlastnosti EdU (EU) vůči protilátkám, které by jinak s těmito molekulami reagovaly. Jedná se o protilátky, pro jejichž vazbu na uvedené molekuly analogů thymidinu je důležitá jejich modifikace v pozici 5, tedy protilátky specificky reagující např. sBrdU,CldU,IdU nebo BrU, případně FU.
Podstatou předkládaného vynálezu je tedy způsob eliminace 5-ethynyl-2'-deoxyuridÍnu a 535 ethynyluridinu jako antigenů, rozeznávaných protilátkami reagujícími s uvedenými molekulami při detekci nukleových kyselin, vyznačující se tím, že vzorky obsahující DNA s inkorporovaným 5-ethynyl-2'-deoxyuridinem nebo RNA s inkorporovaným 5-ethynyluridinem se ve vodných roztocích obsahujících měďné ionty inkubují s malou azidovanou nefluoreskující sloučeninou zvolenou ze skupiny, zahrnující azidomethylfenylsulfid, 2-azidoethanol, azidomethyl benzy 1to sulfid, azidomethylmethylsulfid, 3-azÍdo-l,2-propandiol, l,3-diazido-2~propanol, 3-azido-2propanol, 3-azidopropanol, 1,3-diazidopropan, 1,2-diazidoethan, 2-(2-azidoethoxy)ethanol, 8azido-3,6-díoxaoktanol, 11 -azido-3,6,9-trioxaundekanol, 2-azidoethylamin, 3-azidopropy 1amin, 4-azidobutylamin, 5-azidopentylamin, 6-azidohexylamin, 2-(2-azidoethoxy)ethytamin, 8-azido-3,6-dioxaoktylamin, 1 l-azido-3,6,9-trioxaundecylamin, N~(2-azidoethyl)dimethyl45 amin, N-(3-azidopropyl)dimethylamin, N-(4-azidobutyl)dimethylamin, N-(5-azidopentyl)dimethylamin, N-(6-azidohexyl)dimethylamin, N-(5-azido-3-oxapentyl)di methy lamin, N-(8azido-3,6-dioxaoktyl)dimethylamin, N-(l l-azido-3,6,9-trioxaundecyl)dimethylamin, dále chloridy, bromidy, jodidy, sulfáty, chloristany, tosyláty, mesyláty, nitráty, tetrafiuorboráty a hexafluorfosfáty, N-(2-azidoethyl)tri methy lamonia, N-(3-azidopropyl)trimethylamonia, N50 (4-azidobutyl)trimethylamonia, N-(5-azidopentyl)trimethylamonia, N-(6-azidohexyl)trimethylamonia, N-(5-azido-3~oxapentyl)trimethy lamonia, N-(8-azido-3,6—dioxaoktyl)trimethylamonia či N-(l 1-azido-3,6,9-trioxaundecyl)trimethylamonia, nebo jejich kombinace, čímž se účinně blokuje interakce 5-ethynyl-2'-deoxyuridinu nebo 5-ethynyluridinu s protilátkami namířenými proti strukturně podobným molekulám.
-2CZ 303252 B6
Význakem uvedeného způsobu eliminace 5-ethynyl-2'deoxyuridinu a 5 ethynyluridinu jako antigenů, rozeznávaných protilátkami reagujícími s uvedenými molekulami pri detekci nukleových kyselin je skutečnost, že reakce s malou nefluoreskující azidovanou molekulou se provede mezi dvěma reakcemi, běžně používanými při detekci nukleových kyselin, tedy následně po reak5 ci nukleových kyselin s azidovanou molekulou s fluorochromem nebo biotinem ěi digoxigeninem případně jinou relativně velkou molekulou, která později slouží k detekci EdU a před reakcí specifických protilátek vůči nukleosidům obsaženým v detekovaných nukleových kyselinách.
Využití uvedeného přístupu lze předpokládat při současné lokalizaci BrdU (alternativně i CldU io nebo IdU) s EdU nebo BrU či FU s EU, případně EdU nebo EU s dalšími nukleosidy, pri jejichž detekci bude nutné potlačit schopnost protilátek rozeznávat EdU nebe EU. Předkládaný vynález bude tedy nej přínosnější při výrobě sad dodávaných pro základní výzkum, jako např. sady pro detekci replikované DNA nebo nově syntetizované RNA. Nespornou výhodou tohoto vynálezu je možnost použití širokého spektra protilátek proti BrdU, CldU, IdU, FU nebo BrU a případně i dalších nukleosidů bez potřeby selekce těch protilátek, které nevykazují afinitu vůči EdU nebo EU či AdU.
Autorům přihlášky není známo, že by tento přístup byl někdy použit pro eliminaci EdU nebo EU jako antigenů, který reaguje s protilátkami, které rozeznávají tyto molekuly.
Přehled obrázků na výkresech
Obr. 1. Detekce EdU pomocí protilátky namířené proti BrdU bez použití popsaného vynálezu pro eliminaci EdU.
a) Detekce EdU pomocí azidováného fluorochromu
b) Detekce EdU pomocí protilátky
Obr. 2. Detekce EdU pomocí protilátky, namířené proti BrdU, po použití předloženého vynálezu k eliminaci EdU.
a) Detekce EdU pomocí azidovaného fluorochromu
b) Detekce EdU pomocí protilátky
Příklady provedení vynálezu
HeLa
DMEM PBS BrdU CldU IdU
FU BrU EdU EU
SMEM buněčná linie lidských epiteliálních buněk
Dulbeccova modifikace Eaglova média fosfátem pufrovaný fyziologický roztok
5-bromo-2—deoxyuridin
5-chloro-2'-deoxyuridin
5-jodo-2 '-deoxyuridin
5-fluoruridin
5-bromuridin
5-cthyny 1-2 '-deoxyuridin
5-ethynyluridin modifikace Eaglova minimálního média pro suspenzní buňky
- 3 CZ 303252 B6
Příklad 1
Eliminace EdU jako antigenu v buňkách přisedlých na podložní skla pomocí nefluoreskuj ících azidovaných látek.
Následující postup popisuje eliminaci EdU jako antigenu v HeLa buňkách přisedlých na podložních sklíčkách, ve kterých se provádí současná lokalizace EdU s BrdU, CldU nebo IdU, anebo v buňkách, ve kterých se provádí eliminace EdU v DNA bez inkorporovaného BrdU, CldU nebo IdU. Není-Π uvedeno jinak, veškeré kroky byly prováděny při teplotě místnosti, přičemž kroky následovaly po sobě bez dalších prodlev.
A) Lidské HeLa buňky (dále jen vzorky) byly pěstovány v Petriho miskách na kruhových sklech o průměru 13 mm v růstovém médiu DMEM s L-glutaminem, doplněném 10% (obj./obj.) fetálním telecím sérem (PAA Laboratories), 1% (obj./obj.) gentamicinem a 0,85 g/1 NaHCCf v atmosféře s 5% (obj./obj.) CO2 pri 37 °C.
B) Druhý den po pasáži byl do růstového média přidán EdU v konečné koncentraci 2 μιηοΙ.Γ1. Vzorky byly inkubovány 10 minut v atmosféře s 5% (obj./obj.) CO2 pri 37 °C. Dále následoval krok C. Alternativně bylo růstové médium obsahující EdU odstraněno a nahrazeno stejným množstvím média stejného složení bez EdU. Vzorky byly inkubovány 3 hodiny v atmosféře s 5% (obj./obj.) CO2 při 37 °C. Po třech hodinách byl do média přidán BrdU v konečné koncentraci 2 pmol.l Vzorky byly inkubovány 10 minut v atmosféře s 5% (obj./obj.) CO2 pri 37 °C. Namísto BrdU byl alternativně do růstového média přidán CldU nebo IdU ve stejné koncentraci jako BrdU. Pak následoval krok C.
C) Následně bylo růstové médium odstraněno a nahrazeno pufrem (lx PBS, složení viz část Použité roztoky a chemikálie, přidány byly přibližně 1 až 2 ml pufru na 4 cm2 plochy).
D) Pufr byl odstraněn a vzorky byly 10 minut fixovány 2% (hmotnost/obj.) roztokem formaldehydu v IxPBS (pH 7,4; I až 2 ml fixačního roztoku na 4 cm2 plochy).
Alternativně byly vzorky fixovány methanolem a následně acetonem. V tomto případě byla skla se vzorky nejdříve inkubována 10 minut v methanolu při teplotě -20 °C (přibližně 1 až 2 ml methanolu na 4 cm2 plochy) a následně ponořena na 30 sekund do kádinky s 50 ml acetonu o teplotě místnosti; skla se vzorky pak byla usušena a po usušení vložena do Petriho misky s lx PBS. V případě použití methanolu a acetonu následoval krok G).
E) Roztok formaldehydu byl odstraněn a vzorky byly převrstveny lx PBS (přibližně 1 až 2 ml 1 x PBS na 4 cm2 plochy). Po 5 minutách byl pufr odstraněn a nahrazen novým o stejném složení. Tento krok byl opakován ještě jednou.
F) Následně byl pufr odstraněn. Vzorky byly 10 minut permeabilizovány 0,2% (obj./obj.) roztokem Tritonu X-100 v lx PBS (přibližně 1 až 2 ml permeabilizačního roztoku na 4 cm2 plochy). Po odstranění permeabilizačního roztoku byly vzorky převrstveny lx PBS (přibližně 1 až 2 ml lx PBS na 4 cm2 kultivační plochy).
G) Po 5 minutách byl roztok lx PBS odstraněn a nahrazen stejným množstvím téhož roztoku. Tento krok byl opakován ještě jednou.
H) Z misek byl odstraněn roztok lx PBS, vzorky byly převrstveny stejným množstvím 0,5x PBS, po 1 minutě byl roztok 0,5x PBS odstraněn a nahrazen stejným množstvím 0,25x PBS. Nakonec byl uvedený roztok ze vzorků odstraněn a vzorky byly převrstveny destilovanou vodou (přibližně 1 až 2 ml vody na 4 cm2 kultivační plochy). Po 5 minutách byla voda odstraněna a nahrazena stejným množstvím destilované vody. Pak byla skla se vzorky vyjmuta pomocí pinzety
-4CZ 303252 B6 z Petriho misky a přebytek vody byl odsát pomocí filtračního papíru tak, že skla se vzorky byla položena stranou bez vzorků na filtrační papír. Poté byla skla se vzorky položena na kapky destilované vody na parafinu (50 μΙ/kapka). Skla směřovala vzorky směrem dolů do kapky vody.
I) Následně byl přebytek vody ze vzorků odsát pomocí filtračního papíru tak, že byl filtrační papír jemně přiložen k hraně skla a skla se vzorky byla přemístěna na 50μ1 kapku inkubační ho roztoku i s azidovanou značící látkou (IR-1; složení roztoku je uvedeno v části Použité roztoky a chemikálie) a inkubována 30 minut.
io J) Po inkubaci byly vzorky přeneseny na kapku destilované vody (50 μΙ). Po 5 minutách byly vzorky přeneseny na novou stejně veikou kapku destilované vody. Tento krok byi opakován ještě jednou.
K) Bod K byl alternativně proveden podle popisu v bodu K 1 nebo K 2 pro vzorky značené
EdU a BrdU (nebo CldU nebo IdU), nebo podle popisu v bodu K 3 pro vzorky značené výhradně EdU.
K 1
a) Následně byl přebytek vody ze vzorků odsát pomocí filtračního papíru tak, že byl filtrační papír jemně přiložen k hraně skla a skla se vzorky byla přemístěna do inkubační ho roztoku 2 v Petriho misce (IR-2; 1,5 ml roztoku na 9 cm2 plochy, složení inkubačního roztoku je uvedeno v části Použité roztoky a chemikálie). Alternativně byla Petriho miska zcela zaplněna IR-2. Tím došlo k minimalizaci provzdušňování směsi. V dalším případě byla plná Petriho miska po uzavře25 ní utěsněna omotáním parafilmem po celém obvodu, nebo byla směs po dobu inkubace probublávána dusíkem. Skla byla umístěna do Petriho misek tak, že směřovala vzorky nahoru do roztoku.
b) Petriho misky se vzorky na sklech byly přemístěny na třepačku (PS-M3D, Grant-Bio) a zde byly inkubovány alternativně po dobu 10 nebo 30 minut při rychlosti 30 otáček/minutu.
c) Inkubační roztok byl odstraněn a vzorky byly převrstveny destilovanou vodou (přibližně 1 až 2 ml vody na 4 cm2 plochy). Po jedné minutě byla voda odstraněna a nahrazena stejným množstvím vody. Tento krok byl opakován ještě jednou.
d) Voda byla odstraněna a nahrazena vymývacím roztokem (1,5 ml roztoku na 9 cm2 plochy). Složení vymývací ho roztoku je uvedeno v části Použité roztoky a chemikálie. Petriho misky se vzorky na sklech byly přemístěny na třepačku a zde byly inkubovány do odbarvení, minimálně ale 30 minut, nebo v případě nezabarvených vzorků 30 minut. V průběhu vymývání byla skla vždy po 10 minutách nadzvednuta pinzetou tak, aby došlo k vymytí prostoru pod skly a rovněž spodní strany skla. Skla byla v průběhu nadzvedávání zcela ponořena v roztoku,
e) Vymývací roztok byl odstraněn a vzorky byly převrstveny destilovanou vodou (přibližně 1 až 2 ml vody na 4 cm2 plochy). Po 2 minutách byla voda odstraněna a nahrazena stejným množstvím vody. Tento krok byl opakován ještě jednou.
f) Následně byly alternativně provedeny kroky I) nebo /7) po kterých pak následoval bod L.
I)
Z misek byla odstraněna voda, vzorky byly převrstveny stejným množstvím 100 mmol.]'1 TrisCl (pH 7,4), po jedné minutě byl roztok odstraněn a nahrazen stejným množstvím roztoku stejného složení. Tento krok byl ještě třikrát opakován. Dále byla skla se vzorky vyjmuta pomocí pinzety z Petriho misky a přebytek pufru byl odsát pomocí filtračního papíru tak, že skla se vzorky byla položena stranou bez vzorků na filtrační papír. Skla se vzorky byla položena na kapky
- 5 CZ 303252 B6
100 mmol.l 1 Tris-CI (pH 7,4) na parafinu (50 μΙ/kapka). Skla směřovala vrstvou se vzorky směrem dolů do kapky.
//)
Skla se vzorky byla vyjmuta pomocí pinzety z Petriho misky a přebytek vody byl odsát pomocí filtračního papíru tak, že skla byla položena stranou bez vzorků na filtrační papír. Skla se vzorky pak byla položena na kapky destilované vody na parafilmu (50 μΙ/kapka), Skla směřovala vrstvou se vzorky směrem dolů do kapky vody. Vzorky pak byly inkubovány 30 minut s exonukleáio zou lil (složení roztoku je uvedeno v části Použité roztoky a chemikálie) na kapkách o velikosti μί. Následně byla skla se vzorky přenesena na kapku 100 mmol.l 1 Tris-O (pH 7,4, 50 μΙ).
Po 2 minutách byla skla se vzorky přenesena na novou kapku roztoku stejného složení. Tento krok byl ještě třikrát opakován.
K2
a) Následně byl přebytek vody ze vzorků odsát pomocí filtračního papíru tak, že filtrační papír byl jemně přiložen k hraně skla a skla se vzorky byla přemístěna do Petriho misek se 4 mol.l 1 kyselinou chlorovodíkovou nebo 0,07 mol.l 1 hydroxidem sodným (přibližně 1 až 2 ml roztoku kyseliny nebo hydroxidu na 4 cm plochy), přičemž strana se vzorky směřovala nahoru do roztoku. Vzorky v kyselině chlorovodíkové byly inkubovány 20 minut při teplotě 25 °C. Vzorky v hydroxidu sodném byly inkubovány 3 minuty při teplotě 25 °C.
b) Z misek byl odstraněn roztok kyseliny nebo hydroxidu, vzorky byly převrstveny stejným množstvím 100 mmol.l1 Tris-CI (pH 7,4), po 1 minutě byl roztok nahrazen stejným množstvím roztoku stejného složení a tento krok ještě třikrát opakován.
c) Skla se vzorky pak byla vyjmuta pomocí pinzety z Petriho misky a přebytek roztoku byl odsát pomocí filtračního papíru tak, že skla se vzorky byla položena stranou bez vzorků na filtrační papír. Poté byla skla se vzorky položena na kapky 100 mmol.l“1 Tris-CI (pH 7,4; 50 μί) na parafilmu. Skla směřovala se vzorky směrem dolů do kapky vody.
K3
V případě vzorků značených jenom EdU následoval po bodu J okamžitě bod L.
L) Následně byl přebytek vody ze vzorků odsát pomocí filtračního papíru tak, že byl filtrační papír jemně přiložen k hraně skla a skla se vzorky byla poté přemístěna na kapku (50 μί) inkubačního roztoku 3 (IR-3; složení roztoku je uvedeno v části Použité roztoky a chemikálie) a inkubovány alternativně 1 minutu, 30 minut nebo 3 hodiny.
M) Po inkubaci byly vzorky přeneseny na kapku 100 mmol.l1 Tris—Cl (pH 7,4, 50 μΙ) a inkubovány 10 minut. Tento krok byl opakován ještě dvakrát.
Příklad 2
Eliminace EdU jako antigenů pomocí nefluoreskujících azidovaných látek v tkáních.
so Následující postup popisuje eliminaci EdU v jatemí tkáni třídenních potkanů, ve které se provádí současná lokalizace EdU s BrdU, CldU nebo IdU, nebo v tkáni, ve které se provádí eliminace EdU v DNA bez inkorporovaného BrdU, CldU nebo IdU. Není-li uvedeno jinak, veškeré kroky byly prováděny při teplotě místnosti, přičemž kroky následovaly po sobě bez dalších prodlev.
-6 CZ 303252 B6
A) Třídenní potkaní samci byli usmrceni dekapitací a následně jim byla vyjmuta játra. Játra byla nakrájena na malé kousky (3 mm - nejdelší rozměr) a položena do Petriho misek s HeLa buňkami inkubovanými jeden den v růstovém médiu DMEM s L glutaminem. doplněném 10% (obj./obj.) fetálním telecím sérem (PAA Laboratories), 1% (obj,/obj.) gentamicinem a 0,85 g/l NaHCO?.
B) Do růstového média byl přidán EdU v konečné koncentraci 2 μπιοΙ.Γ1. Vzorky byly inkubovány 10 minut v atmosféře s 5% (obj./obj.) CO? pri 37 °C. Dále následoval krok C. Alternativně bylo růstové médium obsahující EdU odstraněno a nahrazeno stejným množstvím média stejného složení bez EdU. Kousky jater byly inkubovány 3 hodiny v atmosféře s 5% (obj./obj.) CO2 při 37 °C. Po třech hodinách byi do média přidán BrdU v konečné kuncentraci 2 μπιοΙ.Γ1. Kousky jater byly inkubovány 10 minut v atmosféře s 5% (obj./obj.) CO2 při 37 °C. Alternativně byl do listového média namísto BrdU přidán CldU nebo ídU ve stejné koncentraci jako BrdU. Pak následoval krok C.
C) Následně bylo růstové médium odstraněno a kousky jater byly převrstveny pufrem (lx PBS, složení viz část Použité roztoky a chemikálie, přidány byly přibližně 1 až 2 ml putřu na 4 cm kultivační plochy). Po 5 minutách byl pufr odstraněn a nahrazen stejným množstvím lx PBS stejného složení. Tento krok byl ještě jednou opakován.
D) Kousek jater byl vložen mezi dvě kruhová skla o průměru 13 mm potažené 1% (hmotnost/obj.) želatinou a tkáň byla po povrch skel roztažena pomocí jemného tlaku pinzetou na sklo. Skla byla oddělena a obě byla vložena do Petriho misky s lx PBS tak. že skla směřovala vzorky tkání nahoru do roztoku.
Ε) V dalších krocích bylo postupováno dle kroků uvedených v Příkladu 1 (D-M).
Příklad 3
Eliminace EdU jako antigenů pomocí nefluoreskujících azidovaných látek v suspenzntch buňkách.
Následující postup popisuje eliminaci EdU vsuspenzních HeLa S3 buňkách, u kterých se EdU lokalizuje současně s BrdU, CldU nebo IdU, nebo v buňkách, v nichž se provádí eliminace EdU v DNA bez inkorporovaného BrdU, CldU nebo IdU. Není-li uvedeno jinak, veškeré kroky byly prováděny při teplotě místnosti, přičemž kroky následovaly po sobě bez dalších prodlev,
A) Lidské HeLa S3 buňky (dále jen vzorky) byly pěstovány v kultivačních lahvích (objem lahví byl 50 ml), které byly třepány, v růstovém médiu S-MEM (modifikace Eaglova minimálního média pro suspenzní buňky, Sigma) s 2 mmol.l1 L glutaminem a s 10% (obj./obj.) fetálním telecím sérem (PAA Laboratories), 1% (obj./obj.) gentamicinem a 0,22% (hmotnost/obj.) NaHCO3 v atmosféře s 5% (obj./obj.) CO2 při 37 °C. Buněčná suspenze obsahovala přibližně 5 až 8 x 105 buněk na 1 mililitr.
B) Druhý den po pasáži byi do růstového média přidán EdU v konečné koncentraci 2 μιτιοΐ.1 Vzorky byly inkubovány 10 minut v atmosféře s 5% (obj./obj.) CO2 pri 37 °C.
C) Následně byla suspenze buněk přenesena do 15mililitrové centrifugační zkumavky a vzorky byly odstřeďovány 1 minutu při 180 g. Supematant byl odstraněn (ve zkumavce bylo ponecháno 200 μΐ média) a ke vzorkům bylo přidáno nové médium (10 ml). Vzorky byly rozsuspendovány a následně opět odstřeďovány 1 minutu pri 180 g. Supematant byl odstraněn (ve zkumavce bylo ponecháno 200 μΐ média) a k peletu vzorků bylo přidáno 10 ml nového média. Pelet vzorků byl rozsuspendován. Dále následoval buď bod E), nebo byly vzorky inkubovány 3 hodiny v atmosféře s 5% (obj./obj.) CO2 při 37 °C a následoval bod D).
-7CZ 303252 B6
D) Po třech hodinách byl do růstového média přidán BrdU v konečné koncentraci 2 μπιοΙ.Γ1. Vzorky byly inkubovány 10 minut v atmosféře s 5% (obj./obj.) CO2 pri 37 °C. Alternativně byl do růstového média namísto BrdU přidán CldU nebo IdU ve stejné koncentraci jako BrdU. Nás5 ledně byly vzorky odstřeďovány 1 minutu při 180 g. Supematant byl odstraněn (ve zkumavce bylo ponecháno 200 μΐ média) a ke vzorkům bylo přidáno nové médium (10 ml). Vzorky byly rozsuspendovány a následně opět odstřeďovány 1 minutu při 180 g. Supematant byl odstraněn (ve zkumavce bylo ponecháno 200 μΐ média) a k peletu vzorků bylo přidáno 10 ml nového média. Pelet vzorků byl rozsuspendován.
E) Vzorky byly rozsuspendovány a následně opět odstřeďovány 1 minutu při 180 g. Supematant byl odstraněn (ve zkumavce bylo ponecháno 200 μΐ média) a k peletu vzorků byl přidán 1 ml nového média. Pelet vzorků byl rozsuspendován. 50 μΙ kapka suspenze buněk byla přenesena na kruhová skla o průměru 13 mm, potažené vrstvou poly-L-lysinu (způsob přípravy těchto skel je popsán v Části Použité roztoky a chemikálie). Po 2 minutách byl přebytek média odsát pomocí filtračního papíru tak, že byl filtrační papír jemně přiložen k hraně skla. Skla byla položena do 2% (hmotnost/obj.) roztoku formaldehydu v Petriho misce a skla se vzorky byla fixována 10 minut. Skla byla umístěna do Petriho misek tak, že směřovala vzorky nahoru do roztoku.
F) V dalších krocích bylo postupováno podle bodů E-M příkladu 1.
Navržený postup lze použít i pri práci se suspenzí buněk po celou dobu jejich zpracování, například pro FACS (Fluorescence Activated Cell Sortin). V tomto případě bylo postupováno dle bodů A až D příkladu 3 a následně podle bodů D-M příkladu 1 s tím, že pri odstraňování veškerých roztoků, přidávání nových a pri promývání byly buňky odstřeďovány 1 minutu při 180 g, následně byl odstraněn supematant (ve zkumavce bylo ponecháno 200 μΙ roztoku), k buňkám byl přidán nový roztok dle rozpisu v příkladu 1 (2 ml), buňky v něm byly rozsuspendovány a inkubovány po doby, uvedené vjednotlivých bodech příkladu 1. V průběhu těchto kroků byly buňky třepány na třepačce (Vortex Wizard, VELP Scientifica, pri 300 otáčkách za minutu), V případě inkubace v IR byly zkumavky zcela naplněny IR a uzavřeny nebo probublávány dusíkem po celou dobu inkubace v IR.
Příklad 4
Eliminace EdU jako antigenu pomocí nefluoreskujících azidovaných látek v buňkách přisedlých na podložní skla, suspenzních buňkách a tkáních před inkubací, zpřístupňující pyrimidinové nukleosidy.
Následující postup popisuje alternativní eliminaci EdU jako antigenu v HeLa buňkách přisedlých na podložních sklíčkách, suspenzních HeLA S3 buňkách nebo v jaterní tkáni třídenních potkanů, u kterých se EdU lokalizuje současně s BrdU, CldU nebo IdU, anebo v buňkách, v nichž se eliminuje EdU v DNA bez inkorporovaného BrdU, CldU nebo IdU. Není-li uvedeno jinak, veškeré kroky byly prováděny při teplotě místnosti a následovaly po sobě bez dalších prodlev.
Postup byl shodný s protokoly z příkladu 1, 2 a 3 s následujícími změnami;
Po bodu J příkladu 1 následovala nejdříve inkubace vzorků v IR-3 podle bodu L příkladu 1: Nejprve byl přebytek vody ze vzorků odsát pomocí filtračního papíru tak, že byl filtrační papír jemně přiložen k hraně skla a skla se vzorky byla přemístěna na kapku (50 μΙ) 1R-3 (složení roztoku je uvedeno v části Použité roztoky a chemikálie). Vzorky zde byly inkubovány alternativně 1 minutu, 30 minut nebo 3 hodiny. Po inkubaci byly vzorky přeneseny na kapku destilované vody (50 μΐ). Po 5 minutách byly vzorky přeneseny na novou stejně velkou kapku destilované vody. Tento krok byl opakován ještě jednou. Pak následoval bod K a po něm bod M podle příkladu I.
- 8 CZ 303252 B6
Příklad 5
Eliminace EU jako antigenu pomocí nefluoreskuj ících azidovaných látek v buňkách přisedlých 5 na podložní skla, suspenzních buňkách a tkáních.
Následující postup popisuje eliminaci EU jako antigenu v HeLa buňkách přisedlých na podložních sklíčkách, suspenzních HeLa S3 buňkách nebo v jatemí tkáni třídenních potkanů, u kterých se EU lokalizuje současně s BrU, případně FU, anebo v buňkách, v nichž se eliminuje EU v DNA io bez inkorporovaného BrU nebo FU. Není-li uvedeno jinak, veškeré kroky byly prováděny při teplotě místnosti, přičemž kroky následovaly po sobě bez dalších prodlev.
Postup byl shodný s protokoly z příkladu I, 2 a 3 s následujícími změnami:
Vzorky byly místo s EdU inkubovány s EU, a to v konečné koncentraci 5 pmol.I1, vzorky byly stejně jako v případě EdU inkubovány 10 minut. Vzorky nebyly inkubovány s BrdU, CldU nebo IdU, ale byly inkubovány s BrU nebo FU v koncentraci 5 pmol.r’.
Byl zcela vynechán bod K.
Alternativně jsme použili postup popsaný v příkladu 4. V tomto případě byly vzorky rovněž místo s EdU inkubovány s EU, a to v konečné koncentraci 5 μιηοΙ.Γ1, vzorky byly stejně jako v případě EdU inkubovány 10 minut. Vzorky nebyly inkubovány s BrdU, CldU nebo IdU, ale byly inkubovány s BrU nebo FU v koncentraci 5 μπιοΙΤ1.
Byl zcela vynechán bod K.
Použité roztoky a chemikálie:
1. Fosfátem pufrovaný fyziologický roztok (PBS) lOx PBS (desetinásobně koncentrovaný roztok PBS):
1,4 mol.F1 NaCl 26 mmol.l1 KC1
90 mmol.l1 Na2HPO4 mmol.l1 KH2PO4
Uvedené složky byly rozpuštěny v destilované vodě a pH upraveno do rozmezí 7,3 až 7,4 lx PBS (fosfátem pufrovaný fyziologický roztok v obvyklé koncentraci)
0,5x PBS (fosfátem pufrovaný fyziologický roztok v poloviční koncentraci)
0,25x PBS (fosfátem pufrovaný fyziologický roztok ve čtvrtinové koncentraci)
2. Inkubační roztok l (1R-1):
A.
a. Destilovaná voda
b. 100 mmol.r’ Tris-Cl, pH 7,4 50 c. 10 mmol.l 1 askorbát sodný
-9 CZ 303252 B6
d. 4 mmol.l 1 síran měďnatý
e. 20 gmol.l 1 tetramethylrhodamin-azid (TAMRA-azid)
Zmíněné složky IR byly přidávány v uvedeném pořadí.
B.
f. Destilovaná voda
g. 100 mmol.l 1 Tris-Cl, pH 7,4
h. 10 mmol.l·1 askorbát sodný
i. 4 mmol.l 1 síran měďnatý
j. 20 pmol.l 1 biotin-azid
Zmíněné složky IR byly přidávány v uvedeném pořadí.
2. Inkubační roztok 2 (IR 2):
a. Destilovaná voda
b. 10 mmol.l“1 askorbát sodný
c. 4 mmol.l“1 síran měďnatý
Zmíněné složky IR byly přidávány v uvedeném pořadí.
3. Inkubační roztok 3 (IR-3):
a. Destilovaná voda
b. 100 mmol.r1 Tris-Cl, pH 7,4
c. 10 mmoU“1 askorbát sodný
d. 4 mmol.l1 síran měďnatý
e. Alternativně 0,001; 2 nebo 100 mmol.r1 azidomethylfenylsulfid
Zmíněné složky IR byly přidávány v uvedeném pořadí.
Alternativně byl namísto azidomethylfenylsulfidu použit 2-azidoethanol, azidomethylbenzylsulfid, azidomethylmethylsulfíd, 3-azido-l,2-propandiol, l,3-diazido-2-propanol, 3-azido-2propanol, 3-azidopropanol, 1,3-diazidopropan, 1,2-diazidoethan, 2-(2-azidoethoxy)ethanol, 8azido-3,6-díoxaoktanol, 1 l-azído-3,6,9-trioxaundekanol, 2-azidoethy lamin, 3-azidopropylamin, 4-az ido buty lamin, 5-azidopenty lamin, 6-azidohexy lamin, 2-(2-azidoethoxy)ethy lamin, 8-azido-3,6-dioxaokty lamin, 11-azido-3,6,9-trioxaundecy lamin, N(2-azidoethyl)dimethyiamin, N-(3-azÍdopropyl)dimethy lamin, N—(4-az idobu ty l)d i methy lamin, N-(5-azidopentyI)dimethylamin, N-( 6-azidohexy l)d i methy lamin, N-( 5 -azido-3-oxape n ty l)d imethy lamin, N-(8azido~3,6-dioxaoktyl)dimethyíamin, N-(l l-azido-3,6,9-trioxaundecyl)dimethylamin, dále chloridy, bromidy, jodidy, sulfáty, chloristany, tosyláty, mesyláty, nitráty, tetrafluorboráty a hexafluorfosfáty, N-(2-azidoethy l)trimethylamonia, N-(3-azidopropyl)trimethylamonia, N-{4azidobutyljtrimethylamonia, N-(5-azidopentyl)trimethyIamonia, N-(6-azidohexyl)trimethylamonia, N-(5-azido-3-oxapentyl)trimethylamonia, N-(8-azido-3,6-díoxaoktyl)trimethylamonia čí N-(11-azido-3,6,9-trioxaundecy l)trimethylamonia ve stejné koncentraci jako azidomethylfenylsulfid, nebo byla použita kombinace uvedených látek,
CZ 303252 Bó
4. Vymývací roztok:
a. 100 mmol.l 1 Tris-HCl, pH 7,4
b. 100 mmol.l“1 NaCl
Roztok exonukleázy Ilí:
a) Destilovaná voda
b) !x pufr pro exonnkleázu 111 (Fermentas, 2 μΙ lOx koncentrovaného pufru do 20 μΐ směsi), tento pufr jc dodáván jako ÍOx koncentrovaný. Složení lOx koncentrovaného pufru ie následující; 660 mmol.l“1 Tris-HCl (pH 8,0 při 30 °C), 6,6 mmol.l1 MgCh.
c) IU/μΙ Exonukleáza Ilí (Fermentas)
Jedna jednotka (U) enzymu uvolni za 30 minut 1 mmol produktu z DNA E. coli při 37 °C. Enzymatická aktivita byla měřena v následující směsi: 50 mmol.l“1 Tris-HCl (pH 8,0), 5 mmol.l·1 MgCh, I mmol.l1 dithiothreitol a 0,05 mmol.l’1 ultrazvukem dezintegro vane (sonikované) DNA z E. coli.
6. Příprava polylysinových skel pro ukotveni suspenzních buněk
Kruhová skla s průměrem 13 mm byla položena do 50ml kádinky s 20 ml 96% (obj./obj.) ethanolu. Po 10 minutách byla pomocí pinzety přenesena do Petriho misky, ve které byl na dně položený filtrační papír a usušena. Skla byla na dob 1 minuty ponořena do 0,01% (obj./obj.) roztoku poly-L-lysinu v DMEM, následně na 30 sekund do Ix PBS a ještě jednou na 30 sekund do PBS. Tento krok byl ještě 3x opakován. Nakonec byla skla položena na filtrační papír a usušena.
Průmyslová využitelnost
Způsob eliminace EdU a EU jako antigenů rozeznávaného protilátkami reagujícími s uvedenými molekulami je využitelný v případech, kdy je nutné provádět několikanásobné detekce pomocí protilátek namířených proti strukturně podobné, současně detekované molekule. Jedná se např. o současnou lokalizaci BrdU a EdU nebo BrU a EU. V této souvislosti je možné mimo jiné předpokládat včlenění této procedury a jednotlivých použitých látek do sad pro detekci DNA nebo RNA.

Claims (2)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Způsob eliminace 5-ethynyl-2'-deoxyuridinu a 5-ethynyluridinu jako antigenů, rozeznávaných protilátkami reagujícími s uvedenými molekulami při detekci nukleových kyselin, vyznačující se tím, že vzorky obsahující deoxyribonukleovou kyselinu s inkorporovaným 5-ethyny 1-2'-deoxyuridinem nebo ribonukleovou kyselinu s inkorporovaným 5-ethynyluridinem se ve vodných roztocích obsahujících měďné ionty inkubují s malou azídovanou nefluoreskující sloučeninou zvolenou ze skupiny, zahrnující azidomethyl fenyl sulfid, 2-azidoethanol, azidomethylbenzylsulfid, azidomethylmethylsulfid, 3-azido-l,2-propandiol, 1,3-diazido-2-propanol, 3-azido-2-propanol, 3-azidopropanol, 1,3-diazidopropan, 1,2-diazidoethan, 2(2-azidoethoxy)ethanol, 8-azido-3,6-dioxaoktanol, 1 l-azido-3,6,9-trioxaundekanol, 2-azidoethylamin, 3-azidopropy lamin, 4-azidobuty lamin, 5-azidopentylamin, 6-azidohexylamin, 2-(2azidoethoxy)ethylamin, 8-azido-3,6-dioxaoktylamin, 1 l-azido-3,6,9-trioxaundecylamin, N-(2- 11 CZ 303252 B6 azidoethyljdimethylamin, N-(3-azidopropyl)dimethylamin, N~{4-azidobutyl)dimethylamin, N~ (5-azidopentyl)dimethylamin, N-(6-azidohexyl)dimethy lamin, N-(5-azido-3—oxapentyl)dimethylamin, N-(8-azÍdo-3,6-dioxaoktyl)dimethylamin, N—< 1 1 -azido-3,6,9-trioxaundecyl)dimethylamin, dále chloridy, bromidy, jodidy, sulfáty, chloristany, tosyláty, mesyláty, nitráty, tetra5 fluorboráty a hexafluorfosfáty, N-(2-azidoethyl)trimethyIamonia, N-(3-azidopropyl)trimethylamonia, N-(4-az i dobutyl)tri methy lamonia, N-{5-azidopentyl)tr i methy lamonia, N-(6-azidohexyl)tr imethy lamonia, N-(5-azido-3-oxapentyl)trimethylamonia, N-(8-azido-3,6-dioxaoktyl)tri methy lamonia, N—(1I-azido-3,6,9-trioxaundecyl)tr i methy lamonia nebo jejich kombinace, čímž se účinně blokuje interakce 5-ethynyl-2'-deoxyurídinu nebo 5-ethynyluridinu s protito látkami namířenými proti strukturně podobným molekulám.
  2. 2. Způsob eliminace 5-ethynyl-2'-deoxyuridinu a 5-ethynyluridinu jako antigenů, rozeznávaných protilátkami reagujícími s uvedenými molekulami při detekci nukleových kyselin podle nároku 1, vyznačující se tím, že reakce s malou nefluoreskuj ící azidovanou moleku15 lou se provede mezi dvěma reakcemi, používanými při detekci nukleových kyselin, tedy
    - následně po reakci nukleových kyselin s azidovanou molekulou nesoucí fluorochrom nebo biotin nebo digoxigenin nebo jinou relativně velkou molekulu, která později slouží k detekci EdU a
    - před reakcí specifických protilátek vůči nukleosidům obsaženým v detekovaných nukleových kyselinách.
    2 výkresy
    - 12ί Z 303252 Βυ
    Obr. ί
CZ20110324A 2011-06-01 2011-06-01 Zpusob eliminace antigenních vlastností 5-ethynyl-2´-deoxyuridinu a 5-ethynyluridinu pri detekci nukleových kyselin CZ303252B6 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ20110324A CZ303252B6 (cs) 2011-06-01 2011-06-01 Zpusob eliminace antigenních vlastností 5-ethynyl-2´-deoxyuridinu a 5-ethynyluridinu pri detekci nukleových kyselin

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ20110324A CZ303252B6 (cs) 2011-06-01 2011-06-01 Zpusob eliminace antigenních vlastností 5-ethynyl-2´-deoxyuridinu a 5-ethynyluridinu pri detekci nukleových kyselin

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ2011324A3 CZ2011324A3 (cs) 2012-06-20
CZ303252B6 true CZ303252B6 (cs) 2012-06-20

Family

ID=46232375

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ20110324A CZ303252B6 (cs) 2011-06-01 2011-06-01 Zpusob eliminace antigenních vlastností 5-ethynyl-2´-deoxyuridinu a 5-ethynyluridinu pri detekci nukleových kyselin

Country Status (1)

Country Link
CZ (1) CZ303252B6 (cs)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CZ307016B6 (cs) * 2015-03-13 2017-11-15 Univerzita PalackĂ©ho v Olomouci Způsob stabilizace protilátek rozeznávajících 5-bromo-2´-deoxyuridin a/nebo 5-chloro-2´-deoxyuridin a/nebo 5-jodo-2´-deoxyuridin v místech inkorporace těchto nukleosidů do DNA po působení jednomocnou mědí a/nebo exonukleázou III
EP3186387B1 (en) * 2014-08-26 2018-10-17 Univerzita Palackého v Olomouci Method of determining the activity of enzymes converting cytosine derivatives to uracil derivatives in cells, tissues and organisms
CZ309218B6 (cs) * 2014-08-26 2022-06-01 Univerzita Palackého v Olomouci Způsob stanovení aktivity enzymů přeměňujících cytosinové deriváty na uracilové deriváty v buňkách a tkáních

Non-Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Bradford J.A., Clarke S.T. Dual-pulse labeling using 5-ethynyl-2'-deoxyuridine (EdU) and 5-bromo-2'-deoxyuridine (BrdU) in flow cytometry. Current Protocols in Cytometry, 2011, 55, Chapter 7, Unit 7.38. *
Buck S.B. et al. Detection of S-phase cell cycle progression using 5-ethynyl-2'-deoxyuridine incorporation with click chemistry, an alternative to using 5-bromo-2'-deoxyuridine antibodies. BioTechniques 2008, 44, 927-929. *
Cappella P. et al. A novel method based on click chemistry, which overcomes limitations of cell cycle analysis by classical determination of BrdU incorporation, allowing multiplex antibody staining. Cytometry 2008, 73, 626-636. *
Chehrehasa F. et al. EdU, a new thymidine analogue for labelling proliferating cells in the nervous system. Journal of Neuroscience Methods 2009, 177, 122û130. *
Jao C.Y, Salic A. Exploring RNA transcription and turnover in vivo by using click chemistry. Proc Natl Acad Sci USA 2008, 105, 15779-15784. *
Li K. et al. Fluorogenic "clickö reaction for labeling and detection of DNA in proliferating cells. BioTechniques 2010, 49, 525-527. *
Salic A., Mitchison T.J. A chemical method for fast and sensitive detection of DNA synthesis in vivo. Proc Natl Acad Sci USA 2008, 105, 2415-2420. *
Zeng C. et al. Evaluation of 5-ethynyl-2'-deoxyuridine staining as a sensitive and reliable method for studying cell proliferation in the adult nervous system. Brain Research 2010, 1319, 21-32. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP3186387B1 (en) * 2014-08-26 2018-10-17 Univerzita Palackého v Olomouci Method of determining the activity of enzymes converting cytosine derivatives to uracil derivatives in cells, tissues and organisms
CZ309218B6 (cs) * 2014-08-26 2022-06-01 Univerzita Palackého v Olomouci Způsob stanovení aktivity enzymů přeměňujících cytosinové deriváty na uracilové deriváty v buňkách a tkáních
CZ307016B6 (cs) * 2015-03-13 2017-11-15 Univerzita PalackĂ©ho v Olomouci Způsob stabilizace protilátek rozeznávajících 5-bromo-2´-deoxyuridin a/nebo 5-chloro-2´-deoxyuridin a/nebo 5-jodo-2´-deoxyuridin v místech inkorporace těchto nukleosidů do DNA po působení jednomocnou mědí a/nebo exonukleázou III

Also Published As

Publication number Publication date
CZ2011324A3 (cs) 2012-06-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US9464315B2 (en) Modified surfaces as solid supports for nucleic acid purification
EP2479268B1 (en) Dissociation method and dissociation agent for avidin and biotinderivatives
Pugh et al. Effects of S-adenosylhomocysteine analogs on vaccinia viral mRNA synthesis and methylation
JP5763545B2 (ja) ホルマリン固定組織からの種々の生体分子の並行抽出
US4898951A (en) Compounds used as intermediates in the preparations of non-radioactive biological probes
JP2011236237A (ja) 回収可能な形式での安定なタンパク質保管および安定な核酸保管
JP2015520385A (ja) アプタマーに基づく多重化アッセイ
CZ303252B6 (cs) Zpusob eliminace antigenních vlastností 5-ethynyl-2´-deoxyuridinu a 5-ethynyluridinu pri detekci nukleových kyselin
CN109023535A (zh) 一种用抗体针对无识别标记蛋白或细胞裂解物的dna编码化合物筛选方法
Bendayan A review of the potential and versatility of colloidal gold cytochemical labeling for molecular morphology
WO2016026453A2 (zh) 一种检测样品中靶核酸的试剂盒及检测方法
JP5670737B2 (ja) 膜タンパク質の抽出方法
EP0155854B1 (en) Non-radioactive biological probes
Schäfer Mercurated nucleotides: essessment of a new tool to study RNA synthesis and processing in isolated nuclei
CZ309218B6 (cs) Způsob stanovení aktivity enzymů přeměňujících cytosinové deriváty na uracilové deriváty v buňkách a tkáních
Nosov et al. Extra perspectives of 5-ethynyl-2′-deoxyuridine click reaction with fluorochrome azides to study cell cycle and deoxyribonucleoside metabolism
CZ38478U1 (cs) Sada pro identifikaci buněk postrádajících funkční cytidinovou deaminázu
CN102640000B (zh) 采用次级离子质谱法(sims)高灵敏度检测和定量生物分子的改进方法
US20250034547A1 (en) Compositions and methods for the purification and concentration of nucleic acids from large-volume samples
CZ28964U1 (cs) Sada pro zpřístupnění specifických pyrimidinových nukleosidů ve struktuře dvouřetězcové DNA pro reakci s protilátkami, které s těmito nukleosidy reagují
CZ2015183A3 (cs) Způsob stabilizace protilátek rozeznávajících 5-bromo-2´-deoxyuridin a/nebo 5-chloro-2´-deoxyuridin a/nebo 5-jodo-2´-deoxyuridin v místech inkorporace těchto nukleosidů do DNA po působení jednomocnou mědí a/nebo exonukleázou III
EP1813938A1 (en) Composition for an electrophoresis matrix
Lee et al. Intracellular localization of viral RNA in Eimeria necatrix of the domestic fowl
CZ2011309A3 (cs) Zpusob znacení dvouretezcových molekul DNA
JP2025005848A (ja) 検出対象物の検出方法、排水の監視方法、検出対象物検出キット、及び排水監視キット

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20190601