CZ2011309A3 - Zpusob znacení dvouretezcových molekul DNA - Google Patents

Zpusob znacení dvouretezcových molekul DNA Download PDF

Info

Publication number
CZ2011309A3
CZ2011309A3 CZ20110309A CZ2011309A CZ2011309A3 CZ 2011309 A3 CZ2011309 A3 CZ 2011309A3 CZ 20110309 A CZ20110309 A CZ 20110309A CZ 2011309 A CZ2011309 A CZ 2011309A CZ 2011309 A3 CZ2011309 A3 CZ 2011309A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
dna
double
mmol
exonuclease
stranded dna
Prior art date
Application number
CZ20110309A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ303251B6 (cs
Inventor
Koberna@Karel
Ligasová@Anna
Rosenberg@Ivan
Liboska@Radek
Original Assignee
Ústav organické chemie a biochemie Akademie ved Ceské republiky, v.v.i.
Ústav experimentální medicíny Akademie ved CR, v.v.i.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ústav organické chemie a biochemie Akademie ved Ceské republiky, v.v.i., Ústav experimentální medicíny Akademie ved CR, v.v.i. filed Critical Ústav organické chemie a biochemie Akademie ved Ceské republiky, v.v.i.
Priority to CZ20110309A priority Critical patent/CZ303251B6/cs
Publication of CZ2011309A3 publication Critical patent/CZ2011309A3/cs
Publication of CZ303251B6 publication Critical patent/CZ303251B6/cs

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Popsaný zpusob dovoluje efektivne znacit dvouretezcovou DNA. Zpusob spocívá v inkubaci dvouretezcové DNA v prítomnosti jednomocných iontu medi a kyslíku a/nebo aktivních okyslicovadel. Zdrojem techto iontu mohou být vodné roztoky obsahující ionty medi, nebo se muže jednat o jednomocnou med, která byla na DNA navázána. Pusobením kyslíku a jednomocných iontu medi vznikají v retezcích DNA prerušení, která slouží v následujícím kroku inkubace se znacenými nukleotidy a enzymy s DNA polymerázovou aktivitou jako pocátecní místa pro syntézu retezcu DNA pomocí techto enzymu. Použity mohou být bud terminální deoxynukleotidylfransferáza nebo DNA polymerázy, syntetizující nový retezec podle predlohového retezce. Pokud tyto DNA polymerázy nemají exonukleázovou aktivitu a/nebo vytesnovací aktivitu, je z hlediska zabezpecení dostatecne silného signálu nutné, ješte pred inkubací s DNA polymerázou, vzorky obsahující dvouretezcovou DNA inkubovat s enzymy, které exonukleázovou a/nebo fosfatázovou aktivitu mají. Inkubacní krok s temito enzymy je možné využít i za úcelem zvýšení signálu v prípade, že se použijí následne DNA polymerázy s exonukleázovou a/nebo vytesnovací aktivitou. V prípade terminální deoxynukleotidyltransferázy je výhodné provést pred inkubací s tímto enzymem inkubaci v prítomnosti enzymu s 3´-5´ exonukleázovou a/nebo fosfatázovou aktivitou. Pro odstranení nežádoucích produktu medi je možné volitelne použít vymývací látky.

Description

Oblast techniky
Vynález se týká způsobu značení dvouřetězcové DNA. V přihlášce je popsán způsob, který dovoluje rychle a efektivně inkorporovat značené nukleotidy do dvouřetězcových molekul DNA.
Dosavadní stav techniky
Pro značení dvouřetězcové DNA se nejčastěji používají látky, které se váží na DNA a současně slouží jako fluorescenční značky. Jedná se např. o DAPI (4',6-diamidino-2-
- fen^lindol dihydrochlorid), Hoechst 33258 (hydrát trihydrochloridu 2'-(4-hydroxyfeny 1)-5-(4-
- meťýl-l-piperazinyl)-2,5'-bi-lH-benzimidazolu) nebo Hoechst 33342 (trihydrochlorid 2'-(4-
- etoxyfenyl)-5-(4-mefyl-l-piperazinyl)-2,5'-bi-lH-benzimidazolu). Vazba těchto látek na DNA se pravděpodobně uskutečňuje v oblasti malého žlábku dvouřetězcové DNA. Další skupina látek se interkaluje do struktury DNA. Jedná se např. o YOYO-1 (3-[dimetyl-[3-[4-[(E)-(3- λ A L
- metýl-1,3-benzoxazol-2-yliden)metyl]quinolin-l -ium-1 -yl]propyl]-azaniumyl]propyl-dimetýl- n i
- [3-[4-[(Z)-(3-metyl-1,3-benzoxazol-2-yliden)metyl]quinolin-1 -ium-1 -yl]propyl]-azanium í, tetrajodid), nebo TQTO-1 (1 -1 ’-[ 1,3-propandiylbis[(dimetýliminio)-3,1 -propandiy ljjbis [4-((3-
- metýl-2(3H)-benzotiazolyliden)meÍýl]J-tetrajodid). Většina z těchto látek vykazuje afinitu i k RNA. To ovšem představuje zásadní problém při detekci dvouřetězcové DNA v buňkách, které pravidelně obsahují vysoká množství různých molekul RNA. Navíc řada těchto sond vykazuje sekvenční specifitu. Příkladem je DAPI, která se selektivně váže na sekvence obsahující páry A-T. To vede k dalším obtížím při určení skutečného obsahu DNA v určité oblasti.
Podstata vynálezu
Předkládaná přihláška vynálezu popisuje postup dovolující efektivní a vysoce selektivní značení dvouřetězcové DNA pomocí inkorporace modifikovaných nukleotidů. V řetězci DNA jsou nejprve vytvořena přerušení pomocí jednomocné mědi za přítomnosti kyslíku. Následně jsou tato místa detekována pomocí enzymatické reakce. Typicky jsou vzorky obsahující DNA inkubovány s jednomocnými ionty mědi. Měďné ionty je možné v roztoku generovat in šitu redukcí měďnatých iontů, např. pomocí askorbátu sodného, hydrazinu nebo tris(2λ αΐ’’
- karboxyetýl)fosfmu (TCEP) (Pharm Res, 25, 2216*2230). Jinou možností je přímá aplikace rz.’ měďných solí, např. měďných halogenidů (Pharm Rest 25, 2216*2230). Další možností je použití komplexů obsahujících jednomocnou měď, jako je hexafluorfosforečnan (tetraacetonitrilo)měďný ([Cu(CH3CN)4]PF6), nebo tetrafluoroboritan (tetraacetonitrilo)měďný ((Cu(CH3CN)4]BF4). Vzorky obsahující DNA jsou pak inkubovány v těchto roztocích. Alternativní možností je inkubace vzorků nejprve v roztoku obsahujícím měďnaté ionty, kdy se využije schopnosti měďnatých iontů vázat se na DNA a následně se vzorky buď okamžitě, nebo až po promytí inkubují v roztoku, který redukuje měďnaté ionty na měďné ionty.
Podle tohoto vynálezu je výhodné vzorky v průběhu inkubace s měďnými ionty, nebo okamžitě po redukci měďnatých iontů vázaných na DNA na měďné ionty f a to ještě v redukčním roztoku, provzdušňovat, např. klasickou laboratorní třepačkou nebo probubláváním směsi vzduchem, případně kyslíkem a tím zabezpečit přístup kyslíku. Provzdušňování je možné provést také následně, vpromývacích roztocích, tedy až po inkubaci s měďnými ionty nebo po přeměně měďnatých iontů vázaných na DNA na ionty měďné. Namísto provzdušňování lze použít i aktivní okysličovadla. Příkladem je použití monopersíranu draselného [2KHSO5.KHSO4.K2SO4], peroxidu vodíku [H2O2], dihydrogenperoxofosforečnanu draselného [KH2PO5], nebo peroxoboritanu sodného [Ν32(Β2Ο4(ΟΗ)4).6Η2Ο].
Podle tohoto vynálezu je množství přerušení v DNA přímo úměrné koncentraci měďných iontů a času inkubace DNA s měďnými ionty, ať již v přítomnosti nebo nepřítomnosti, respektive za velice omezené přítomnosti kyslíku při probublávání směsí např. dusíkem nebo při přípravě roztoků jednomocné mědi v převařené vodě a následné inkubaci v uzavřených nádobách. V případě inkubace v nepřítomnosti kyslíku dochází se zvyšujícími se koncentracemi a s narůstajícím časem inkubace k vyššímu navázání měďných iontů na DNA. Pro štěpení je však nutná následující inkubace v roztocích obsahující kyslík a/nebo v roztocích obsahující aktivní okysličovadla. Tyto dva kroky: 1) navázání měďných iontů v nepřítomnosti nebo za omezené přítomnosti kyslíku a 2) štěpení v roztocích obsahující kyslík, je možné mnohonásobně opakovat ke zvýšení počtu přerušení. Pokud jsou vzorky inkubovány v přítomnosti kyslíku, dochází k postupné přeměně měďných iontů zpět na měďnaté ionty. Proto je nutné po určité době, po níž dojde k úplné přeměně měďných iontů na měďnaté ionty, zpravidla též doprovázené změnou zabarvení roztoku, tyto roztoky pro další zvýšení množství přerušení nahradit novými roztoky měďných iontů. Takto lze postupovat až do dosažení dostatečného počtu přerušení. Z praktického hlediska je vhodné používat koncentrace měďných iontů v řádech mmol.l1 a časů v řádech desítek minut. Nicméně podle získaných výsledků k vytvoření přerušení dochází již za použití daleko nižších koncentrací v řádech μιηοΙ.Γ1 a časů v řádech několika sekund.
Provedené experimenty navíc ukázaly, že v průběhu inkubace s jednomocnými ionty vznikají nežádoucí málo rozpustné produkty mědi, které brání správné funkci enzymů. Nebylo testováno, zda se jedná o sloučeniny mědi nebo o kovovou měď, avšak v závislosti na jejich množství je nutné jejich odstranění. Takové odstranění je zpravidla nezbytné v případech delších inkubací DNA v prostředí s ionty jednomocné mědi. Především se jedná o případy, kdy se vzorky v průběhu inkubace zabarví. K odstranění těchto produktů^slouží inkubace vzorků y roztocích následujících látek (dále jen vymývací látky): kyseliny efylenglykol-bis(2-
- aminoeíýléter)-N,N,N',NMetraoctové (EjGTA), kyseliny etylendiaminotetraoctové (EDTA), kyseliny 4-(2-hydroxyeřyl)-l-piperaziiftáhsulfonové (Hepes), kyseliny 3-[4-(2-hydroxyeiýl)-
Á A
- l-piperazinyl]propansulfonové (Hepps),
- aminopropansulfonové (TAPS),
- [tris(hydroxyrnetýl)metýl]glycinu
λ. á Z
-bis(hydroxymetýl)eiýl)amino]eiánsulfonové (TES), £ iminodioctové (ADA), kyseliny A-bis(2-hydroxyetrýl)-2-amini
- bis(hydroxymeityl)-2,2\2-nitrilotrieť/nolu (BIS-TRIS),
A kyseliny N-[tris(hydroxymefyl)mefýl] -3 yN-bis(2-hydroxyetýl)glycinu (Bicin), N(Tricin), kyseliny 2-[(2-hydroxy-l ,1-O kyseliny^ /V-(karbamoylmeřýl)Loetansulfonoyé (BES), 2^2tris(hydroxymeiýl)aminometánu (Tris), glycyl-glycinu, kyseliny p-hydroxy-4-morfolinpropansulfonové (MOPSO), kyseliny piperazin-N,N'-bís(2-hydroxypropansulfonové) (POPSO), glycinamidu, D- a L-a- aminokyselin (např. glycinu, alaninu, šeřinu, prolinu, lysinu, argininu, asparaginu, glutaminu, kyseliny asparagové, kyseliny glutamové, citrulinu, threoninu), amoniaku, etůnolaminu, ,V ,v ,-V .A dietánolaminu, trietánol aminu, dieťýlaminu, trietýlaminu, diisopropyletýlaminu, diisopropylaminu diisopropylaminu, v principu je možné použít jakýkoli primární nebo sekundami amin. K odstranění těchto produktů dochází i v roztocích ob sáhuj ící; aktivní okysličovadla jako monopersíran draselný, peroxid vodíku, dihydrogen-peroxofosforečnan draselný, nebo peroxoboritan sodný. Je možné rovněž použít kombinace těchto látek.
« 4 ♦
<444
Jelikož nežádoucí produkty jsou relativné silné zabarvené, jejich odstranění doprovází odbarvení vzorku. Pro úspěšnou interakci sledovaného nukleosidů s protilátkou je nutné preparáty odbarvit úplně. Také při tomto kroku je výhodné preparáty obsahující DNA provzdušňovat. Se zvyšující se efektivitou provzdušňování dochází k rychlejšímu odstranění nežádoucích produktů. Rovněž zvyšující se koncentrace vymývacích látek vede k rychlejšímu vymytí.
Kromě přítomnosti vymývacích látek nebyly zjištěny další specifické požadavky na složení používaných roztokůfa to ať již obsahujících jednomocné ionty mědi a/nebo vymývací látky. Podle získaných výsledků je tudíž možné v případě potřeby použít např. přídavky solí typu chloridu sodného nebo draselného. Získané výsledky rovněž ukázaly, že s výjimkou EDTA a EGTA je možné vymývací látky nebo jejich kombinace přidat přímo do reakční směsi. Tím se docílí zásadního snížení tvorby nežádoucích nerozpustných produktů a výrazného zkrácení doby promývání v roztocích výše uvedených vymývacích látek, nebo úplného odstranění nutnosti promývání.
Po první fázi, která byla popsána v předchozí části, následuje inkubace vzorku se značenými nukleotidy a enzymy, které využívají přerušení v řetězcích DNA pro syntézu nového řetězce DNA. Navrženy a experimentálně prověřeny byly dva základní případy. V prvním z nich jsou tato přerušení využita pro syntézu nového řetězce pomocí terminální deoxynukleotidyl^ ^transferázy. Tento enzym nepotřebuje předlohový řetězec a syntetizuje jednořetězcovou
DNA. Ve druhém případě jsou k syntéze použity DNA polymerázy, které vyžadují pro svoji funkci přítomnost předlohového řetězce, příkladem je DNA polymeráza I z E. coli. Pro vysokou míru značení je vyžadována 3'-5' exonukleázová aktivita a současně buď 5'-3' exonukleázová aktivita, nebo aktivita vytěsňující řetězec vázaný k předlohovému řetězci, která dovoluje uvolnění předlohového řetězce. Důvodem zvýšení míry značení v přítomnosti enzymů s 3’-5' exonukleázovou aktivitou je pravděpodobně fakt, že značná část řetězců DNA neobsahovala v místě přerušení na svém 3’ konci hydroxylovou skupinu. Z provedených experimentů vyplynulo, že DNA po působení jednomocných iontů mědi v přítomnosti kyslíku obsahuje dostatečné množství přerušení a zároveň uchovává strukturu předlohového řetězce pro efektivní značení DNA. Současně bylo prokázáno, že není nutné používat DNA polymerázy s 5'-3' exonukleázovou aktivitou nebo silnou vytěsňovací aktivitou v případě, že inkubaci s těmito enzymy předchází inkubace s enzymy, které vykazují 5'-3' nebo 3'-5' ·
« · * ♦ ·
£ 4 · 4 ♦ * · exonukleázovou aktivitu. Tyto enzymy je možné použít i pro zvýšení signálu, tedy v případech, kdy DNA polymerázy exonukleázovou nebo vytěsň ovací aktivitu vykazují.
Rovněž není nutné používat polymerázy s 3'-5' exonukleázovou aktivitou v případě, že inkubaci s těmito enzymy předchází inkubace s těmi enzymy, které vykazují 3'-5' exonukleázovou a/nebo fosfatázovou aktivitu. Toto pozorování ukázalo na vysokou četnost přítomnosti fosfátové skupiny na 3' konci DNA v přerušeních. Vzhledem k absenci 3’-5' exonukleázové aktivity u terminální deoxynukleotidyl transferázy jsme rovněž v tomto případě pozorovali významné zvýšení míry signálu po použití enzymů s 3'-5' exonukleázovou aktivitu a/nebo s fosfatázovou aktivitou.
Popsaný přístup je možné použít např. při detekcích dvouřetězcové DNA a doplňuje přístupy založené na použití značení DNA pomocí látek, které se váží na její strukturu. Významnou výhodu zde předloženého přístupu představuje, v případě inkubace v roztocích s jednomocnými ionty mědi a použití terminální deoxynukleotidyltransferázy, nezávislost na sekvenci DNA. V případě použití DNA polymeráz lze sekvenční závislost řídit díky možnosti použití různých značených nukleotidů. Dále pak, nezávisle na provedení, výhody popsaného přístupu spočívají v naprosté selektivitě pro dvouřetězcovou DNA, v necitlivosti vůči přítomnosti RNA, v možnosti dalšího zvýšení signálu pomocí několikanásobného značení nebo pomocí detekčního kroku zahrnujícího enzymatické postupy, např. postupy založené na peroxidáze nebo alkalické fosfatáze, v možnosti vizualizace DNA bez potřeby fluorescenčního mikroskopu, v možnosti využít nepřeberné množství jinak značených nukleotidů a protilátek konjugovaných s různými fluorochromy a za použití enzymů, které syntetizují DNA podle předlohy, rovněž ve faktu, že jsou vytvořeny předpoklady pro studium vazby fluorescenčně značených proteinů k této DNA.
Novost přístupu spočívá v použití iontů mědi pro vytvoření zlomů ve dvouřetězcové DNA a následného enzymatického značení DNA. Doposud není známo, že by tento přístup byl někdy použit pro značení dvouřetězcové DNA.
Využití uvedeného přístupu je možné zejména v komerční výrobě sad dodávaných pro základní výzkum.
« v < « ♦ · t « « * 41»· **«··· · * *
II * ( < » » 4 < ·«
Současně s touto přihláškou je podávána i druhá přihláška, která popisuje způsob zpřístupnění pyrimidinových nukleosidů v dvouřetězcové DNA. Ačkoli i druhá přihláška vychází z působení jednomocné mědi na DNA, výsledkem je zpřístupnění pyrimidinových nukleosidů, které je možné následně detekovat. To je zásadní rozdíl oproti této přihlášce, kde je popsán způsob detekce celkové dvouřetězcové DNA.
Přehled obrázků na výkresech
Obr. 1. Detekce DNA v HeLa buňkách pomocí popsaného přístupu.
A: značení dvouřetězcové DNA pomocí Klenowova fragmentu a exonukleázy III.
B: značení dvouřetězcové DNA pomocí DNA polymerázy I
Příklady provedení vynálezu
Seznam použitých zkratek
HeLa buněčná linie lidských epiteliálních buněk
DMEM Dulbeccova modifikace Eaglova média
PBS fosfátem pufrovaný fyziologický roztok
S-MEM modifikace Eaglova minimálního média pro suspenzní buňky
BrdUTP 5-bromo-2'-deoxyuridin 5'-trifosfát
CldUTP 5-chloro-2'-deoxyuridin 5'-trifosfát
IdUTP 5-jodo-2'-deoxyuridin 5'-trifosfát
Biotin-dUTP biotin-16-2'-deoxyuridin 5'-trifosfát
Digoxigenin-dUTP TCEP digoxigenin-1 l-2'-deoxyuridin 5'-trifosfát L tris(2-karboxyetýl)fosfín 0
EGTA kyselina etýlenglykol-bis(2-aminoetýléter)-N,N,N',N'-tetraoctová
EDTA λ kyselina eťýlendiaminotetraoctová
BrdU 5 -bromo-2 '-deoxyuridin
Biotin biotin-16-2'-deoxyuridin
Digoxigenin BSA digoxigenin-1 l-2'-deoxyuridin hovězí sérový albumin
ι l
Příklad 1
Značení dvouřetězcové DNA pomocí měďných iontů v buňkách přisedlých na podložních sklíčkách.
Následující postup popisuje značení dvouřetězcové DNA v HeLa buňkách přisedlých na podložních sklíčkách. Není-li uvedeno jinak, veškeré kroky byly prováděny při teplotě místnosti, přičemž kroky následovaly po sobě bez dalších prodlev.
A) Lidské HeLa buňky (dále jen vzorky) byly pěstovány v Petriho miskách na kruhových sklech o průměru 13 mm v růstovém médiu DMEM s L-glutaminem (Dulbeccova modifikace Eaglova média, Gibco) s 10% (obj./obj.) fetálním telecím sérem (PAA Laboratories), 1% (obj./obj.) gentamicinem a 0,85 g/1 NaHCO3 v atmosféře s 5% (obj./obj.) CO2 při 37 °C.
B) Druhý den po pasáži bylo růstové médium odstraněno a nahrazeno pufrem (lx PBS, složení viz část Použité roztoky a chemikálie, přidány byly přibližně 1 až 2 ml pufru na 4 cm2 plochy).
C) Pufr byl odstraněn a vzorky byly 10 minut fixovány 2% (hmotnost/obj.) roztokem formaldehydu v lx PBS (pH 7,4; 1 až 2 ml fixačního roztoku na 4 cm2 plochy). Alternativně byly vzorky fixovány metanolem a následně acetonem. V tomto případě byla skla se vzorky nejdříve inkubována 10 minut v metanolu při teplotě -20 °C (přibližně 1 až 2 ml mefénolu na 4 cm2 plochy) a následně ponořena na 30 sekund do kádinky s 50 ml acetonu o teplotě místnosti. Skla se vzorky pak byla usušena a po usušení položena do Petriho misky s lx PBS. V případě použití metanolu a acetonu následoval krok F).
D) Roztok formaldehydu byl odstraněn a vzorky byly převrstveny lx PBS (přibližně 1 až 2 ml lx PBS na 4 cm2 plochy). Po 5 minutách byl pufr odstraněn a nahrazen novým o stejném složení. Tento krok byl opakován ještě jednou.
E) Následně byl pufr odstraněn. Vzorky byly 10 minut permeabilizovány 0,2% (obj./obj.) roztokem Tritonu X-100 v lx PBS (přibližně 1 až 2 ml permeabilizačního roztoku na 4 cm2 plochy). Po odstranění permeabilizačního roztoku byly vzorky převrstveny lx PBS (přibližně 1 až 2 ml lx PBS na 4 cm2 plochy).
, · · * » * · · , '*<«·· « ’· ~ Q ~ 1 * ’ ‘ '
O I < · « · ' < 1 » » ·
F) Po 5 minutách byl roztok lx PBS odstraněn a nahrazen stejným množstvím téhož roztoku. Tento krok byl opakován ještě jednou.
G) Z misek byl odstraněn roztok lx PBS, vzorky byly převrstveny stejným množstvím 0,5x PBS, po 1 minutě byl roztok 0,5x PBS odstraněn a nahrazen stejným množstvím 0,25x PBS. Nakonec byl uvedený roztok ze vzorků odstraněn a vzorky byly převrstveny destilovanou vodou (přibližně 1 až 2 ml vody na 4 cm2 plochy). Po 5 minutách byla voda odstraněna a nahrazena stejným množstvím destilované vody. Pak byla skla se vzorky vyjmuta pomocí pinzety z Petriho misky a přebytek vody byl odsát pomocí filtračního papíru tak, že skla se vzorky byla položena stranou bez vzorků na filtrační papír. Poté byla skla se vzorky položena na kapky destilované vody na parafilmu (50 μΐ/kapka). Skla směřovala se vzorky směrem dolů do kapky vody.
H) Následně byla skla uchopena do pinzety a přebytek vody ze vzorků odsát pomocí filtračního papíru tak, že filtrační papír byl jemně přiložen k hraně skla a skla se vzorky byla přemístěna do inkubačního roztoku (IR) v Petriho misce (1,5 ml roztoku na 9 cm2 plochy, složení inkubačního roztoku je uvedeno v části Použité roztoky a chemikálie). Alternativně byla Petriho miska zcela zaplněná IR. Tím došlo k minimalizaci provzdušňování směsi. V dalším případě byla plná Petriho miska po uzavření omotána po obvodu parafilmem, nebo byla směs po celou dobu inkubace probublávána dusíkem. Skla byla umístěna do Petriho misek tak, že směřovala vzorky nahoru do roztoku.
I) Petriho misky se vzorky na sklech byly přemístěny na třepačku (PS-M3D, Grant-Bio) a zde byly alternativně inkubovány po dobu 20 sekund, 10, 30 minut a 3 hodiny při rychlosti 30 otáček/minutu. Některé vzorky, které byly inkubovány v 1,5 ml IR, byly alternativně namísto míchání na třepačce probublávány vzduchem nebo kyslíkem.
J)
a) Inkubační roztok byl odstraněn a vzorky byly převrstveny destilovanou vodou (přibližně 1 až 2 ml vody na 4 cm2 plochy). Po jedné minutě byla voda odstraněna a nahrazena stejným množstvím vody. Tento krok byl opakován ještě jednou. Pak následoval bod K.
b) Alternativně byl inkubační roztok odstraněn a ke vzorkům byla přidána destilovaná voda (přibližně 1 až 2 ml vody na 4 cm2 plochy). Po jedné minutě byla voda c * - * odstraněna a nahrazena stejným množstvím vody. Tento krok byl opakován ještě jednou. Následně byla voda odstraněna a k buňkám byl na 1, 5, 30 nebo 120 minut přidán množství alternativně 0,001* 4 nebo 100 mmolT1 roztok stabilizovaného monopersíranu draselného (2KHSO5.KHSO4.K2SO4). V některých případech byl namísto stabilizovaného roztoku monopersíranu draselného použitý vodný roztok peroxidu vodíku (H2O2), nebo dihydrogenperoxofosforečnanu draselného (KH2PO5), nebo peroxoboritanu sodného [Na2(B2O4(OH)4).6H2O] (ve všech případech přibližně 1 až 2 ml roztoku na 4 cm2 kultivační plochy). Jejich koncentrace byly stejné jako koncentrace u monopersíranu draselného. Uvedené roztoky byly připraveny těsně před přidáním k buňkám. Po inkubaci byly tyto roztoky odstraněny a bylo pokračováno podle bodu J a).
K) Voda byla odstraněna a nahrazena vymývacím roztokem (1,5 ml roztoku na 9 cm2 plochy). Složení vymývacího roztoku je uvedeno v části Použité roztoky a chemikálie. Petriho misky se vzorky na sklech byly přemístěny na třepačku a zde byly inkubovány buď do odbarvení, minimálně ale 10 minut, nebo v případě nezabarvených skel alternativně 1 minutu, 30 nebo 60 minut. V průběhu vymývání byla skla vždy po 5 minutách nadzvednuta pinzetou tak, aby došlo k vymytí prostoru pod skly a rovněž spodní strany skla. V případě skel inkubovaných 1 minutu ve vymývacím roztoku, byla skla nadzvednuta po 30 sekundách. Skla byla v průběhu nadzvedávání zcela ponořena v roztoku. Alternativně byl vymývací roztok probubláván vzduchem nebo kyslíkem. V některých případech byl vymývací krok zcela vynechán a bylo pokračováno bodem M.
L) Vymývací roztok byl odstraněn a vzorky byly převrstveny destilovanou vodou (přibližně 1 až 2 ml vody na 4 cm2 plochy). Po 2 minutách byla voda odstraněna a nahrazena stejným množstvím vody. Tento krok byl opakován ještě jednou.
M) Skla se vzorky byla vyjmuta pomocí pinzety z Petriho misky a přebytek vody byl odsát pomocí filtračního papíru tak, že skla byla položena stranou bez vzorků na filtrační papír. Skla se vzorky pak byla položena na kapky destilované vody na parafilmu (50 μΐ/kapka). Skla směřovala vrstvou se vzorky směrem dolů do kapky vody. Následně byla provedena reakce s enzymem s exonukleázovou a/nebo fosfatázovou aktivitou podle bodu a) a b). Alternativně byly vzorky hned inkubovány s enzymy, které byly použity pro značení dvouřetězcové DNA. V tomto případě následoval bod N.
• a · I 4 I Μ ·« t « a * «< t c < « a i ! i I4
M f I 4 4 1 * t4 . t « * i i
Π 44*< * aiíaítil
a) Vzorky byly inkubovány 30 minut s enzymem s exonukleázovou a/nebo fosfatázovou aktivitou (použité enzymy a složení roztoku je uvedeno v části Použité roztoky a chemikálie) na kapkách o velikosti 20 μΐ V některých případech byly vzorky inkubovány nejprve s enzymem s 3'-5' exonukleázovou a/nebo fosfatázovou aktivitou a následně s enzymem s 5'-3' exonukleázovou aktivitou nebo naopak. V tomto případě byla skla se vzorky mezi inkubacemi promyta 2 minuty na kapce destilované vody (50 μΐ). Tento krok byl ještě třikrát opakován.
b) Skla se vzorky byla přenesena na kapku destilované vody (50 μΐ). Po 2 minutách byla skla se vzorky přenesena na novou kapku destilované vody. Tento krok byl ještě třikrát opakován. Pak následoval krok N.
N) Vzorky byly inkubovány alternativně 1, 10, 20 nebo 60 minut s terminální deoxynukleotidyljransferázou nebo DNA polymerázami (použité enzymy a složení roztoků je uvedeno v části Použité roztoky a chemikálie) na kapkách o velikosti 20 μΐ.
O) Skla se vzorky byla přenesena na kapku destilované vody (50 μΐ). Po 2 minutách byla skla se vzorky přenesena na novou kapku destilované vody. Tento krok byl ještě třikrát opakován. V případě, že DNA vzorků byla značena nukleotidy konjugovanými s fluorochromem, následoval bod R. V ostatních případech bylo postupováno podle bodu P.
p)
a) Skla se vzorky byla přenesena na kapku 0,25x PBS (50 μΐ), po jedné minutě na stejně velkou kapku 0,5x PBS a následně po jedné minutě na kapku lx PBS.
b) Vzorky značené enzymem ve směsi s BrdUTP byly inkubovány s myší anti-bromodeoxyuridinovou protilátkou (Roche Diagnostics, klon BMC 9318, ředění 1:20 v lx PBS), vzorky značené enzymem ve směsi s biotin-dUTP byly inkubovány s králičí anti-biotinovou protilátkou (Enzo Lifesciences, ředění 1:100 v lx PBS) a vzorky značené enzymem ve směsi s digoxigenin-dUTP s myší anti-digoxigeninovou protilátkou (Roche Diagnostics, ředění 1:100 v lxPBS). Inkubace probíhala na kapkách o velikosti 20 μΐ. Délka inkubace byla 30 minut.
c) Skla se vzorky byla přenesena na kapku lx PBS. Po 5 minutách byla skla se vzorky přenesena na novou kapku lx PBS stejného složení. Tento krok byl ještě třikrát opakován.
MM
MM * 4 • 4 · 4
d) Skla se vzorky byla inkubována 30 minut s kozí anti-myší (vzorky značené BrdU nebo digoxigeninem) nebo kozí anti-králičí (vzorky značené biotinem) protilátkou konjugovanou s fluorochromem Cy3 (Jackson Immunoresearch Laboratories, ředěni u obou protilátek bylo l:100v lxPBS) na kapkách o velikosti 20 μΐ.
Q) Skla se vzorky byla přenesena na kapku lx PBS (50 μΐ). Po 5 minutách byla skla s buňkami přenesena na novou kapku lx PBS stejného složení. Tento krok byl ještě třikrát opakován. Následně byla skla se vzorky přenesena na kapku destilované vody (50 μΐ). Po 5 minutách byla skla se vzorky přenesena na novou kapku destilované vody. Tento krok byl ještě třikrát opakován.
R) Nakonec byla voda ze skel odsáta pomocí filtračního papíru, skla byla položena na nový filtrační papír vzorky nahoru a usušena.
S) Po usušení byla skla položena na kapičky (2 μΐ) připraveného montovacího média na podložním skle (roztok Mowiol - Polyvinylalkohol 20x98, Fluka). Vzorky směřovaly do kapičky roztoku. Jemným tlakem pomocí pinzety na horní stranu skel se vzorky došlo k roztažení roztoku Mowiolu po celé ploše skel. Tento krok sloužil k zalití vzorků a získání trvalého preparátu. Signál byl detekován pomocí fluorescenčního mikroskopu.
Příklad 2
Značení dvouřetězcové DNA pomocí měďných iontů v tkáních.
Následující postup popisuje příklad značení dvouřetězcové DNA vjatemí tkáni třítýdenních potkanů. Není-li uvedeno jinak, veškeré kroky byly prováděny při teplotě místnosti, přičemž kroky následovaly po sobě bez dalších prodlev.
A) Třítýdenní potkaní samci byli usmrceni dekapitací a následně jim byla odebrána játra. Játra byla nakrájena na malé kousky (3 mm - nejdelší rozměr) a položena do Petriho misek s PBS (lx PBS, složení viz část Použité roztoky a chemikálie, přibližně 1 až 2 ml pufru na 4 cm plochy). Po 1 minutě byl pufr odstraněn a nahrazen stejným množstvím lx PBS stejného složení. Tento krok byl ještě jednou opakován.
-1 η 4 4 4 4 4 · · · · · · ·· ··· ··“
Β) Kousek jater byl dán mezi dvě kruhová skla o průměru 13 mm potažené 1% (hmotnost/objem) želatinou a tkáň byla roztažena po povrchu skel pomocí jemného tlaku pinzetou na sklo. Skla byla oddělena a obě byla dána do Petriho misky s lx PBS a to tak, že skla směrovala vzorky tkání nahoru do roztoku.
C) V dalších krocích bylo postupováno dle kroků uvedených v Příkladu 1 (C-S).
Příklad 3
Značení dvouřetězcové DNA pomocí měďných iontů v suspenzních buňkách.
Následující postup popisuje příklad značení dvouřetězcové DNA v suspenzních HeLa S3 buňkách. Není-li uvedeno jinak, veškeré kroky byly prováděny při teplotě místnosti, přičemž kroky následovaly po sobě bez dalších prodlev.
A) Lidské HeLa S3 buňky (dále jen vzorky) byly pěstovány v kultivačních lahvích (objem lahví byl 50 ml), které byly třepány, v růstovém médiu S-MEM (modifikace Eaglova minimálního média pro suspenzní buňky, Sigma) s2 mmoLl’1 L-glutaminem a s 10% (obj./obj.) fetálním telecím sérem (PAA Laboratories), 1% (obj./obj.) gentamicinem a 0,22% (hmotnost/obj.) NaHCO3 v atmosféře s 5% (obj./obj.) CO2 při 37 °C. Buněčná suspenze ať 5 obsahovala přibližně 5«8 x 10 buněk na 1 mililitr.
B) Druhý den po pasáži byla suspenze buněk přenesena do 15jmililitrové centrifugační zkumavky a vzorky byly odstřeďovány 1 minutu při 180 g. Supematant byl odstraněn (ve zkumavce bylo ponecháno 200 μΐ média) a ke vzorkům bylo přidáno nové médium (10 ml). Vzorky byly resuspendovány a následně opět odstřeďovány 1 minutu při 180 g. Supematant byl odstraněn (ve zkumavce bylo ponecháno 200 μΐ média) a k peletu vzorků byl přidán 1 ml nového média. Pelet vzorků byl resuspendován.
C) 50 μ1 kapka suspenze buněk byla přenesena na kruhová skla o průměru 13 mm potažené vrstvou poly-L-lysinu (způsob přípravy těchto skel je popsán v části Použité roztoky a chemikálie). Po 2 minutách byl přebytek média odsát pomocí filtračního papíru tak, že byl filtrační papír jemně přiložen k hraně skla. Skla byla položena do 2% (hmotnost/obj.) roztoku formaldehydu v Petriho misce a vzorky byly fixovány 10 minut. Skla byla umístěna do Petriho misek tak, že směřovala vzorky nahoru do roztoku.
♦ t t * * t ·
• · ·
M « « t » · I
D) V dalších krocích se postupovalo podle bodů D-S příkladu 1.
Námi navržený postup značení dvouřetězcové DNA lze použít i pro práci se suspenzí buněk po celou dobu jejich zpracování například pro FACS (Fluorescence Activated Cell Sorting). V tomto případě se postupovalo dle bodů A a B příkladu 3 a následně podle bodů CQ příkladu 1 s tím, že při odstraňování veškerých roztoků, přidávání nových roztoků a při promývání byly buňky odstfeďovány 1 minutu při 180 g, následně byl odstraněn supematant (ve zkumavce bylo ponecháno 200 μΐ roztoku), k buňkám byl přidán nový roztok (2 ml), respektive pufr, buňky v něm byly resuspendovány a inkubovány po doby uvedené v jednotlivých bodech příkladu 1. V průběhu těchto kroků byly buňky třepány na třepačce (Vortex Wizard,VELP Scientifica, 300 otáček za minutu, rpm). V případě inkubace v IR byly alternativně zkumavky zcela naplněny IR a uzavřeny nebo probublávány dusíkem po celou dobu inkubace v IR. V bodě Q podle příkladu 1 nebyly vzorky inkubovány ve vodě, ale ponechány v lx PBS.
Příklad 4
Značení dvouřetězcové DNA pomocí měďných iontů, které byly vytvořeny redukcí změďnatých iontů navázaných na DNA v buňkách přisedlých na podložních sklíčkách, v tkáních a suspenzních buňkách.
Následující postup popisuje příklad značení dvouřetězcové DNA v buňkách přisedlých na podložních sklíčkách, v tkáních a suspenzních buňkách. Není-li uvedeno jinak, veškeré kroky byly prováděny při teplotě místnosti, přičemž kroky následovaly po sobě bez dalších prodlev.
Postup byl shodný s protokoly z příkladu 1, 2 a 3 s následujícími změnami:
Namísto inkubace v IR byly vzorky inkubovány alternativně v 0,001? 4 nebo 40 mmol.V1 vodném roztoku síranu měďnatého (5 minut; 1,5 ml roztoku na 9 cm2 plochy). Namísto roztoku síranu měďnatého byly alternativně použity roztoky chloridu měďnatého nebo dusičnanu měďnatého nebo octanu měďnatého nebo bromidu měďnatého ve stejných koncentracích jako u síranu měďnatého. Uvedené roztoky byly poté odstraněny a vzorky byly inkubovány 5 minut v destilované vodě (přibližně 1 až 2 ml vody na 4 cm2 plochy). Následně byla voda odstraněna a nahrazena stejným množstvím vody. Tento krok byl opakován ještě
jednou. Potom byla voda odstraněna a ke vzorkům byl přidán alternativně 0,001? 10 nebo 100 mmol.r1 roztok askorbátu sodného v destilované vodě (1,5 ml roztoku na 9 cm2 plochy). Namísto roztoku askorbátu sodného byl alternativně použit i 0,001? 20 nebo 200 mmol.r1 roztok hydrazinu nebo 0,001? 8 nebo 80 mmol.l'1 roztok TCEP. Vzorky byly v roztoku inkubovány 5 minut.
Alternativně nebyly vzorky promývány destilovanou vodou, ale byly okamžitě po odstranění síranu měďnatého nebo chloridu měďnatého nebo dusičnanu měďnatého nebo octanu měďnatého nebo bromidu měďnatého inkubovány v uvedených roztocích askorbátu sodného nebo hydrazinu nebo TCEP.
Při inkubaci vzorků ve vymývacím roztoku činila doba inkubace na třepačce 10 minut, přičemž po 5 minutách byla skla nadzvednuta pinzetou tak, aby došlo k vymytí prostoru pod skly. Skla byla v průběhu nadzvedávání zcela ponořena v roztoku.
Pro práci se suspenzí buněk zpracovávaných např. pro FACS ^e| postupovalo stejně, jako je popsáno v posledním odstavci příkladu 3 se změnami popsanými v tomto příkladu.
Příklad 5
Značení dvouřetězcové DNA pomocí měďných iontů v purifíkované DNA.
Následující postup popisuje příklad značení plazmidu pEXP5-NT/CALM3 (Invitrogen, 3195 párů bází, bp, dále jen plazmid). Není-li uvedeno jinak, veškeré kroky byly prováděny při teplotě místnosti, přičemž kroky následovaly po sobě bez dalších prodlev.
A) 4 μΐ (600 ng) plazmidu bylo přidáno k 36 μΐ IR v mikrozkumavce, vzorek byl umístěn na třepačku a tam byl inkubován po dobu 5 minut (Vortex Wizard,VELP Scientifíca, 300 rpm). Složení IR je uvedeno v části Použité roztoky a chemikálie.
B) Následně byly ke vzorku přidány 2 μΐ 0,5 mol.l'1 EGTA a vzorek byl promícháván asi 3 sekundy na laboratorní třepačce (GVLab, Gilson).
C) Vzorek byl okamžitě přenesen do díalyzační komůrky s 10 kDa MWCO celulózovou membránou (Fast Dialyser PY8 74-0415 a PY8 7421-RC1K, Harvard Apparatus). Vzorky mr • I L <i
1· · » « · I ffí k C í 4lil byly míchány na magnetické míchačce a dialyzovány proti 4 litrům vymývacího roztoku po dobu 6 hodin a následně přes noc proti 4 litrům lx koncentrovanému pufru pro DNA polymerázu I při 4 °C (složení vymývacího roztoku a lOx koncentrovaného pufru pro DNA polymerázu je uvedeno v části Použité roztoky a chemikálie). Alternativně byly vzorky dialyzovány pouze proti lx koncentrovanému pufru pro DNA polymerázu I.
D) 18,45 μΐ vzorku bylo umístěno do mikrozkumavky. Následně k němu bylo přidáno 0,4 μΐ (4U, definice jednotky viz bod 11 část Použité roztoky a chemikálie) roztoku DNA polymerázy I (složení roztoku viz Použité roztoky a chemikálie), 1 μΐ směsi dATP, dGTP, dCTP (zásobní roztok byl 1 mmol.l·1) a 0,25 μΐ 1 mmol.l·1 roztoku modifikovaného nukleotidu. Použité nukleotidy jsou uvedeny v části Použité roztoky a chemikálie, část Roztok DNA polymerázy I z E. coli, bod 7).
E) Vzorek byl promícháván asi 3 sekundy na laboratorní třepačce (GVLab, Gilson) a inkubován při 15 °C po dobu 90 minut.
F) Ke vzorku byl přidán 1 μΐ 0,5 mol.l·1 EGTA a vzorek byl promícháván asi 3 sekundy na laboratorní třepačce (GVLab, Gilson).
Použité roztoky a chemikálie:
7. Fosfátem pufrovaný fyziologický roztok (PBS) lOx PBS (desetinásobně koncentrovaný roztok PBS):
1,4 mol.l*1 NaCl mmol.l·1 KC1 mmol.l*1 Na2HPO4 mmol.l*1 KH2PO4
Uvedené složky byly rozpuštěny v destilované vodě a pH upraveno do rozmezí 7,3χ7,4 lx PBS (fosfátem pufrovaný fyziologický roztok v obvyklé koncentraci) 0,5x PBS (fosfátem pufrovaný fyziologický roztok v poloviční koncentraci) 0,25x PBS (fosfátem pufrovaný fyziologický roztok ve čtvrtinové koncentraci)
2.
IR (inkubační roztoky):
164 ί t
A)
a. Destilovaná voda
b.
Látka Askorbát sodný (mmol.l·1) Síran měďnatý Alternativně byly použity následující sloučeniny: chlorid měďnatý (CuCL); dusičnan měďnatý (CuNCh); octan měďnatý; bromid měďnatý (CuBr2). (mmol.l·1)
Použitá koncentrace 10 4
Použitá koncentrace 0,001 0,004
Použitá koncentrace 100 40
B)
a. Destilovaná voda
b.
Látka Hydrazin (mmol.l·1) Síran měďnatý Alternativně byly použity následující sloučeniny: chlorid měďnatý (CuCh); dusičnan měďnatý (CuNCty); octan měďnatý; bromid měďnatý (CuBr2). (mmol.l·1)
Použitá koncentrace 20 4
Použitá koncentrace 0,001 0,004
Použitá koncentrace 200 40
C)
a. Destilovaná voda
b.
Látka TCEP (mmol.l·1) Síran měďnatý Alternativně byly použity následující sloučeniny: chlorid měďnatý (CuCL); dusičnan měďnatý (CuNCh); octan měďnatý; bromid měďnatý (CuBr2). (mmol.l·1)
Použitá koncentrace 8 4
Použitá koncentrace 0,001 0,004
Použitá koncentrace 80 40
D) « 4
a. 10 mmol.l·1 hexafluorfosforečnan (tetraacetonitrilo)měďný ([Cu(CH3CN)4]PFé, navážen těsně před použitím)
b. Převařená destilovaná voda
Alternativně byl použit hexafluorfosforečnan (tetraacetonitrilo) měďný v koncentraci 0,001 mmol.l·1 nebo 100 mmol.l1.
E)
a. 10 mmol.l·1 tetrafluoroboritan (tetraacetonitrilo)měďný ([Cu(CH3CN)4]BF4, navážen těsně před použitím)
b. Převařená destilovaná voda
Alternativně byl použit tetrafluoroboritan (tetraacetonitrilo)měďný v koncentraci 0,001 mmol.l'1 nebo 100 mmol.l·1.
Uvedené složky IR byly přidávány v uvedeném pořadí.
Dále byly jako IR použity roztoky uvedené v bodu A), B), C), D) a E) s přídavkem vymývacích látek. Vymývací látka byla v případě A), B) a C) přidána jako druhá v pořadí (přidána do vody). V případě D) a E) byla vymývací látka přidána do vody, následně byl tento roztok přidán k výše uvedeným komplexům mědi a tyto v něm byly rozpuštěny. Seznam a koncentrace přidaných vymývacích látek je uvedena v odstavci 4: „Vymývací látky“. Použitá koncentrace je uvedena před závorkou. Pokud není Číslo uvedeno, nebyly tyto látky použity jako přídavek do IR.
3. Vymývací roztoky:
a) 100 mmol.l·1 Tris (C4HhNO3), pH 7,4
100 mmol.l·1 NaCl
Alternativně byly použity tyto koncentrace: 0,001 mmol.l·1 Tris a 0,001 mmol.l·1 NaCl nebo 1 mol.I1 Tris a 1 mol.l·1 NaCl.
b) 20 mmol.l·1 EGTA (C14H24N2O10), pH 8
Alternativně byly použity tyto koncentrace: 0,001 mmol.l·1 EGTA nebo 0,5 mol.l·1 EGTA.
Tris, popřípadě EGTA byly alternativně nahrazeny dalšími vymývacími látkami. Kompletní seznam látek a jejich koncentrací přidaných do vymývacích roztoků je uveden níže v odstavci 4: „Vymývací látky“. Z výsledků je nicméně jasné, že lze použít jakýkoli primární nebo sekundární amin. Koncentrace použitá ve vymývacích roztocích je uvedena v závorce.
* · ♦ • · · « « « « I · ♦ ♦ » * · · <
• t « < · · · * » · 9
..... «♦ »· · ·«*
Hodnota pH promývacích roztoků byla upravena do rozmezí mezi 6,5 a 8 pomocí HC1 nebo
NaOH. Je možné použít i kombinace vymývacích látek.
4. Vymývá cí látky:
Koncentrace, které byly alternativně použity v IR, jsou uvedeny před závorkou, koncentrace, které byly alternativně použity ve vymývacích roztocích, jsou uvedeny v závorce. Pokud údaj před závorkou chybí, nebyla látka v IR použita.
A (0,001; 20, 500) mmol.l* EGTA (kyselina etýlenglykol-bis(2-aminoetyléter)-N,N,Ν',N'-
- tetraoctová) (0,001; 20; 500) mmol.11 EDTA (kyselina efýlendiaminotetraoctová)..
i
0,001; 200^1000 (0,001; 200; 1000) mmol.l* Hepes (kyselina 4-(2-hydroxyetýl)-l-
- piperazineransulfonová)
0,001; 200; 1000 (0,001; 200; 1000) mmol.l·1 Hepps (kyselina 3-[4-(2-hydroxyetýl)-l-
- piperazinyljpropansulfonová)
0,001; 400; 450 (0,001; 200; 1000) mmol.l·1 TAPS (kyselina N-[tris(hydroxymetýl)meíýl]-3-
- aminopropansulfonová)
0,001; 1; 1000 (0,001; 100; 1000) mmol.l·1 Bicin (MTV-bisíl-hydroxye^ljgly^in)
0,001; 1; 1000 (0,001; 100; 1000) mmol.l·1 Tricin (Y-[tris(hydroxymetýl)meřýl]glycin)
0,001; 200; 350 (0,001; 100; 1000) mmol.l·1 TES (kyselina 2-[(2-hydroxy-l,l.jř. *2.
- bis(hydroxymerýl)eřýl)amino]etánrsulfbnová)?
0,001; 20; 50 (0,001; 10; 50) mmol.l·1 ADA (kyselina N-(karbamoylmetýl)iminodioctová)
0,001; 2Q0 (0,001; 200; 1000) mmol.l·1 BES (kyselina Y-bis(2-hydroxye$l)-2-
- aminoeťánsulfonová)
0,001; 10; 1000 (0,001; 100; 1000) mmol.l'1 BIS-TRIS (2,2-bis(hydroxymetýl)-2,2',2-
- nitrilotrietánol) >
A
0,001; 1; 1000 (0,001; 100; 1000) mmol.l·1 Tris (tris(hydroxymetýl)aminomeián)
0,001; 10; 1000 (0,001; 100; 1000) mmol.l*1 glycyl-glycin
0,001; 200; 500 (0,001; 200; 500) mmol.l*1 MOPSO (kyselina p-hydroxy-4
- morfolinpropansulfonová)
0,001; 100(0,001; 100) mmol.l·1 POPSO (kyselina piperazin-N,N'-bis(2
- hydroxypropansulfonová)
0,001; 20; 1000 (0,001; 200; 1000) mmol.l·1 glycin
0,001; 10; 1000 (0,001; 100; 1000) mmol.l·1 glycinamid t I « i a tri · « 1 « · « 4 t A • )*«·«· a * · ~19~
0,001; 20; 1000 (0,001; 20; 1000) mmol.l'1 D- a L-a-aminokyseliny (např. alanin, lysin, arginin)
0,001; 20; 400 (0,001; 20; 400) mmol.r1 D- a L-a-aminokyseliny (např. serin, prolin, asparagin, kyselina asparagová; kyselina glutamová, threonin)
0,001; 20; 150 (0,001; 20; 150) mmol.l'1 D- a L-a-aminokyseliny (např. glutamin, citrulin)
0,001; 4; 100 (0,001; 10; 100) mmol.l1 amoniak
0,001; 4, 100 (0,001; 10; 100) mmol.r1 efónolamin
0,001; 4; 100 (0,001; 10; 100) mmol.r1 dietánolamin
0,001; 4; 100 (0,001; 10; 100) mmol.r1 trie&nolamin
0,001; 4; 100 (0,001; 10; 100) mmol.r1 dietýlamin
0,001; 4; 100 (0,001; 10; 100) mmol.r1 trieíýlamin
0,001; 4; 100 (0,001; 10; 100) mmol.r1 diisopropyleřylamin
0,001; 4; 100 (0,001; 10; 100) mmol.l*1 diisopropylamin
0,001; 4; 100 (0,001; 10; 100) mmol.l1 stabilizovaný monopersíran draselný (2KHSO5.KHSO4.K2SO4)
0,001; 4; 100 (0,001; 10; 100) mmol.r1 vodný roztok peroxidu vodíku [H2O2]
0,001; 4; 100 (0,001; 10; 100) mmol.l'1 dihydrogenperoxofosforečnan draselný [KH2PO5]
0,001; 4; 100 (0,001; 10; 100) mmol.l’1 peroxoboritan sodný [Na2(B2O4(OH)4).6H2O]
5. Enzymy s exonukleázovou a/nebo fosfatázovou aktivitou
I Roztok exonukleázy III:
a) destilovaná voda,
b) lx pufr pro exonukleázu III (Fermentas, 2 μΐ lOx koncentrovaného pufru do 20 μΐ směsi), tento pufr je dodáván jako lOx koncentrovaný; složení lOx koncentrovaného pufru je následující: 660 mmol.l'1 Tris-HCl (pH 8,0 při 30 °C), 6,6 mmol.l'1 MgCL;
c) lU/μΙ Exonukleáza III (Fermentas), definice jednotky viz bod 11.
II Roztok exonukleázy λ:
a) destilovaná voda,
b) lx pufr pro exonukleázu λ (Fermentas, 2 μΐ lOx koncentrovaného pufru do 20 μΐ směsi), tento pufr je dodáván jako lOx koncentrovaný; složení lOx koncentrovaného pufru je následující: 670 mmol.l'1 glycin-KOH (pH 9,4), 25 mmol.1'1 MgCL, 0,1%
I « ·
Triton X-100;
d) 0,1 U/ μΐ Exonukleáza λ (Fermentas), definice jednotky viz bod 11.
III. Roztok exonukleázy T7:
a) destilovaná voda,
b) lx pufr pro exonukleázu T7 (New England BioLabs, 2 μΐ lOx koncentrovaného pufru do 20 μΐ směsi), tento pufr je dodáván jako lOx koncentrovaný; složení lOx koncentrovaného pufru je následující: 200 mmol.l·1 Tris-acetát (TAE; pH 7,9 při 25 °C), 500 mmol.l'1 octan draselný, 100 mmol.l·1 octan hořečnatý, 10 mmol.l·1 dithiothreitol;
e) 1 U/ μΐ Exonukleáza T7 (New England BioLabs), definice jednotky viz bod 11.
IV. Roztok endonukleázy IV:
a) destilovaná voda,
b) lx pufr pro endonukleázu IV (Fermentas, 2 μΐ lOx koncentrovaného pufru do 20 μΐ směsi), tento pufr je dodáván jako 1 Ox koncentrovaný; složení 1 Ox koncentrovaného pufru je následující: 500 mmol.l·1 Tris-acetát (TAE; pH 7,5), 500 mmol.l'1 chlorid draselný, 0,5 % (obj./obj.) Triton X-100, 10 mmol.l·1 EDTA;
c) 0,1 U/ μΐ Endonukleáza IV (Fermentas), definice jednotky viz bod 11.
V. Roztok alkalické fosfatázy z krevety (SAP):
a) destilovaná voda,
b) lx pufr pro SAP (Fermentas, 2 μΐ lOx koncentrovaného pufru do 20 μΐ směsi), tento pufr je dodáván jako lOx koncentrovaný; složení lOx koncentrovaného pufru je následující: 100 mmol.l·1 Tris-HCl (pH 7,5 při 37 °C), 100 mmol.l·1 chlorid hořečnatý, lmg/ml BSA;
c) 1 U/ μΐ SAP (Fermentas), definice jednotky viz bod 11.
6. Roztok terminálni deoxynukleotidyl transferázy:
a) destilovaná voda,
b) lx pufr pro terminální deoxynukleotidyl transferázu (Fermentas, 4 μΐ 5x koncentrovaného pufru do 20 μΐ směsi), tento pufr je dodáván jako 5x koncentrovaný; složení 5x koncentrovaného pufru je následující: 125 mmol.l'1 Tris (pH 7,2 při 25 °C), 1 mol.I'1 kakodylát draselný, 5 mmol.l'1 chlorid kobaltnatý, 0,05 % (obj./obj.) Triton X100;
• « 4
c) 2 U/μΙ DNA terminální deoxynukleotidyl transferáza (Fermentas), definice jednotky viz bod 11;
d) 0,05 mmol.l·1 dATP, dGTP, dCTP,
e) alternativně 0,05 nebo 0,01 mmol.l·1 5-bromo-2'-deoxyuridin-5'-trifosfáů 5-chloro-
- 2'-deoxyuridin-5'-trifosfát, 5-jodo-2’-deoxyuridin-5'-trifosfát, nebo alternativně 0,0125 mmol.l·1 biotin-16-2'-deoxyuridin-5'-trifosfát, digoxigenin-1 l-2'-deoxyuridin-5'-trifosfát, 2’-deoxy-5-ethynyluridin-5'-trifosfát, biotin-11 -2'-deoxycytidin-5'-trifosfát, nebo konjugáty deoxyuridin-5'-trifosfátu (dUTP) s fluorescenčními barvivý fluoresceinového, rhodaminového nebo kumarinového typu, které jsou připojeny k atomu C5 uracilové nukleobáze prostřednictvím alkynového linkeru (dále jen fluorescein-dUTP, rhodamin-
- dUTP, kumarin-dUTP). Je možné použít rovněž kombinace uvedených nukleotidů, případně jakékoli další značené nukleotidy, které jsou substráty terminální deoxynukleotidyljransferázy.
7. Roztok DNA polymerázy 12 E. coli
a) destilovaná voda,
b) lx pufr pro DNA polymerázu I (Fermentas, 2 μΐ lOx koncentrovaného pufru do 20 μΐ směsi), tento pufr je dodáván jako lOx koncentrovaný; složení lOx koncentrovaného pufru je následující: 500 mmol.l·1 Tris-HCl (pH 7,5 při 25^C), 100 mmol.l·1 MgCl2, 10 mmol.l·1 dithiothreitol;
c) 0,2 U/μΙ DNA polymeráza I (Fermentas), definice jednotky viz bod 11;
d) 0,05 mmol.l·1 dATP, dGTP, dCTP,
e) alternativně 0,0125 mmol.l·1 biotin-16-2'-deoxyuridm-5'-trifosfát, digoxigenin-11-
- 2’-deoxyuridin-5'-trifosfát, 2’-deoxy-5-ethynyluridin-5'-trifosfát, biotin-11 -2'-deoxycytidin-5'-trifosfát, fluorescein-dUTP, rhodamin-dUTP, kumarin-dUTP. Je možné rovněž použít kombinace uvedených nukleotidů, případně jakékoli další značené nukleotidy, které jsou substráty DNA polymerázy I.
8, Roztok Klenowova enzymu
a) destilovaná voda,
b) lx pufr pro Klenowův fragment (Fermentas, 2 μΐ lOx koncentrovaného pufru do μΐ směsi), tento pufr je dodáván jako lOx koncentrovaný; složení lOx koncentrovaného pufru je následující: 500 mmol.l·1 Tris-HCl (pH 8 při 25PC), 50 mmol.l·1 MgCh, 10 mmol.l·1 dithiothreitol;
t * 4 ·
* « a 4i
4« 4 44
4 4 *
J ♦ 4 « 4If
c) 0,2 U/μΙ Klenowův enzym (Fermentas), definice jednotky viz bod 11;
d) 0,05 mmol.l·1 dATP, dGTP, dCTP,
e) alternativně 0,0125 mmol.l'1 biotin-16-2’-deoxyuridin-5’-trifosfát, digoxigenin-11-
- 2'-deoxyuridin-5'-trifosfát, 2’-deoxy-5-ethynyluridin-5'-trifosfát, biotin-11-2'-
- deoxycytidin-5'-trifosfát, fluorescein-dUTP, rhodamin-dUTP, kumarin-dUTP. Je možné rovněž použít kombinace uvedených nukleotidů, případně jakékoli další značené nukleotidy, které jsou substráty Klenowova enzymu.
9. Roztok T7 DNA polymerázy
a) destilovaná voda
b) lx pufř pro T7 DNA polymerázu (Fermentas, 2 μΐ lOx koncentrovaného pufru do 20 μΐ směsi), tento pufř je dodáván jako lOx koncentrovaný; složení lOx koncentrovaného pufru je následující: 400 mmol.l'1 Tris-HCl (pH 7,5 při 25 °C), 100 mmol.l'1 NígCh, 10 mmol.l1 dithiothreitol;
c) 0,2 U/μΙ T7 DNA polymeráza (Fermentas), definice jednotky viz bod 11;
d) 0,05 mmol.l'1 dATP, dGTP, dCTP;
e) 0,0125 mmol.l·1 biotin-16-2'-deoxyuridin-5'-trifosfát, digoxigenin-11-2' deoxyuridin-5'-trifosfát, 2’-deoxy-5-ethynyluridin-5'-trifosfát, biotin-1 l-2'-deoxycytidin-
- 5'-trifosfát, fluorescein-dUTP, rhodamin-dUTP, kumarin-dUTP. Je možné rovněž použít kombinace uvedených nukleotidů, případně jakékoli další značené nukleotidy, které jsou substráty T7 DNA polymerázy.
10, Roztok T4 DNA polymerázy
a) destilovaná voda,
b) lx pufř pro T4 DNA polymerázu (Fermentas, 4 μΐ 5x koncentrovaného pufru do 20 μΐ směsi), tento pufř je dodáván jako 5x koncentrovaný; složení 5x koncentrovaného pufru je následující: 335 mmol.l'1 Tris-HCl (pH 8,8 při 25|°C), 33 mmol.l·1 MgCh, 84 mmol.l'1 (NH^SCU, 5 mmol.l·1 dithiothreitol;
c) 0,2 U/μΙ T4 DNA polymeráza (Fermentas), definice jednotky viz bod 11;
d) 0,05 mmol.l·1 dATP, dGTP, dCTP;
e) alternativně 0,0125 mmol.l·1 biotin-16-2'-deoxyuridin-5l-trifosfát, digoxigenin-11-
- 2'-deoxyuridin-5'-trifosfát, biotin-1 l-2’-deoxycytidin-5'-trifosfát, 2’-deoxy-5-ethynyluridin-5'-trifosfát, fluorescein-dUTP, rhodamin-dUTP, kumarin-dUTP. Je možné rovněž použít kombinace uvedených nukleotidů, případně jakékoli další značené nukleotidy, které jsou substráty T4 DNA polymerázy.
11. Definice jednotky použitých enzymů.
a) Exonukleáza III (Fermentas)
Jedna jednotka (U) enzymu uvolní za 30 minut 1 nmol produktu z DNA E. coli při 37 °C. Enzymatická aktivita byla měřena v následující směsi: 50 mmol.l·1 Tris-HCl (pH 8,0), 5 mmol.l·1 MgCh, 1 mmol.l·1 dithiothreitol a 0,05 mmol.l·1 DNA z E. coli dezintegrované ultrazvukem (sonikované).
b) Exonukleáza λ (Fermentas)
Jedna jednotka (U) enzymu uvolní za 30 minut 10 nmol produktu z DNA E. coli při 37 °C. Enzymatická aktivita byla měřena v následující směsi: 67 mmol.l·1 glycin-KOH (pH 9,4), 2,5 mmol.l·1 MgCh, 0,1% (obj./obj.) Tritonu X-100 a 20 pg/ml sonikované DNA z E. coli.
c) Exonukleáza T7 (New England BioLabs)
Jedna jednotka (U) enzymu uvolní za 30 minut 1 nmol produktu z DNA E. coli při 25 °C. Enzymatická aktivita byla měřena v následující směsi: 20 mmol.l·1 Tris-acetát (TAE; pH 7,9 při 2^C), 50 mmol.l·1 octan draselný, 10 mmol.l·1 octan hořečnatý, 1 mmol.l'1 dithiothreitol, 0,15 mmol.l·1 sonikované DNA z E. coli.
d) Endonukleáza IV (Fermentas)
Jedna jednotka (U) enzymu uvolní za 30 minut 1 pg produktu z částečně depurinováného plazmidu při 37 °C. Enzymatická aktivita byla měřena v následující směsi: 50 mmol.l·1 Tris-acetát (TAE; pH 7,5), 50 mmol.l·1 chlorid draselný, 1 mmol.l·1 EDTA, 0,05% (obj./obj.) Triton X-100, 2 pg částečně depurinované DNA plazmidu pUC19.
e) Alkalická fosfatáza z krevety (SAP, Fermentas)
Jedna jednotka (U) enzymu hydrolyzuje 1 pmol 4-nitrofenylfosfátu za 1 minutu při 37 °C. Enzymatická aktivita byla měřena v následující směsi: 1 mol.l·1 dietanolamin-HCl (pH 9,8), 0,5 mmol.l·1 MgCh, 10 mmol.l·1 4-nitrofenylfosfát.
< 4 4
Terminální deoxynukleotidyljransferáza (Fermentas):
Jedna jednotka enzymu katalyzuje za 60 minut inkorporaci 1 nmol monofosfátu deoxythymidinu (dTMP) při 37 °C. Enzymatická aktivita byla měřena v následující směsi: 200 mmol.l·1 kakodylát draselný (pH 7,2), 1 mmolT1 chlorid kobaltnatý, 0,01% (obj./obj.) Triton X-100, 10 gmol.l·1 oligo(dT)10, 1 mmol.l·1 trifosfátu deoxythymidinu (dTTP) a 0,4 MBq/ml [3H]-dTTP.
g) DNA polymeráza I z E. coli (Fermentas)
Jedna jednotka enzymu katalyzuje za 30 minut inkorporaci 10 nmol deoxyribonukleotidů při 37 °C. Enzymatická aktivita byla měřena v následující směsi: 67 mmol.l·1 fosfát draselný (pH 7,4), 6,7 mmol.l·1 chlorid hořečnatý, 1 mmol.l·1 2-
- merkaptoetáiol, 0,033 mmol.l·1 dATP, 0,033 mmol.l·1 dTTP, 0,4 MBq/ml [3H]-dTTP a 62,5 pg/ml poly(dA-dT)*poly(dA-dT).
h) Klenowův enzym (Fermentas)
Jedna jednotka enzymu katalyzuje za 30 minut inkorporaci 10 nmol deoxyribonukleotidů při 37 °C. Enzymatická aktivita byla měřena v následující směsi: 67 mmol.l·1 fosfát draselný (pH 7,4), 6,7 mmol.l·1 chlorid hořečnatý, 1 mmol.l·1 2-
- merkaptoelŠnol, 0,033 mmol.l·1 dATP, 0,033 mmol.l·1 dTTP, 0,4 MBq/ml [3H]-dTTP a 62,5 pg/ml poly(dA-dT)“poly(dA-dT).
i) T7 DNA polymeráza (Fermentas)
Jedna jednotka enzymu katalyzuje za 30 minut inkorporaci 10 nmol deoxyribonukleotidů při 37 °C. Enzymatická aktivita byla měřena v následující směsi: 40 mmol.l'1 Tris-HCl (pH 7,5), 10 mmol.l·1 chlorid hořečnatý, 1 mmol.l·1 dithiothreitol, 0,1 mg/ml BSA, 0,33 mmol.l'1 dATP, 0,33 mmol.l·1 dGTP, 0,33 mmol.l·1 dCTP, 0,33 mmol.l·1 dTTP, 0,4 MBq/ml [3H]-dTTP a 0,5 mmol.l·1 denaturované DNA z telecího brzlíku.
j) T4 DNA polymeráza (Fermentas)
Jedna jednotka enzymu katalyzuje za 30 minut inkorporaci 10 nmol deoxyribonukleotidů při 37 °C. Enzymatická aktivita byla měřena v následující směsi: 67 mmol.l·1 Tris-HCl (pH 8,8), 6,7 mmol.l·1 chlorid hořečnatý, 1 mmol.l·1 dithiothreitol, 16,7 mmol.l·1 síran amonný, 0,2 mg/ml BSA, 0,033 mmol.l·’ dTTP, 0f4
MBq/ml [3H]-dTTP a 0,2 mmol.l·1 denaturované DNA z telecího brzlíku.
12. Příprava polvlysinovych skel pro ukotvení suspenzních buněk
Kruhová skla s průměrem 13 mm byla vložena do 50 ml kádinky s 20 ml 96_% (obj./obj.) etánolu. Po 10 minutách byla pomocí pinzety přenesena do Petriho misky, na jejímž dně byl položený filtrační papír a usušena. Skla byla na dobu 1 minuty ponořena do 0,011% roztoku poly-L-lysinu v DMEM, následně na 30 sekund do lx PBS a ještě jednou na 30 sekund do PBS. Tento krok byl ještě 3x opakován. Nakonec byla skla položena na filtrační papír a usušena.
13. Dialyzační pufr mmol.r1 Tris-HCl, pH 8 mmol.l·1 EDTA, pH 8 uchováván při 4 °C.
Alternativně byly použity vdialyzačním pufru vymývací látky uvedené v bodu 3 a 4 této části.
Použitá literatura:
Hein, C.D., Liu, X.M. and Wang, D. (2008) Click chemistry, a powerful tool for pharmaceutical sciences. Pharm Res, 25, 2216*2230.
Průmyslová využitelnost:
Způsob značení dvouřetězcové DNA podle předkládaného vynálezu lze využít v případech, kdy je důležité selektivní a citlivé značení DNA. V této souvislosti je možné mimo jiné předpokládat včlenění této procedury a jednotlivých použitých látek do sad na detekci DNA. Současně je možné použití pro přípravu hybridizačních DNA prób.

Claims (15)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Způsob značení dvouřetězcové DNA, vyznačující se t i m , že vzorky sDNA se inkubují v přítomnosti jednomocných iontů mědi a kyslíku, přičemž zdrojem těchto iontů mohou být vodné roztoky obsahující ionty mědi, nebo jednomocná měď, která byla na DNA navázána; působením jednomocných iontů mědi a kyslíku na DNA se v jejích řetězcích vytvoří početná přerušení, následně se vzorky inkubují se značenými nukleotidy a enzymy s DNA polymerázovou aktivitou, jako jsou terminální deoxynukleotidyljransferáza nebo DNA polymerázy, které použijí vzniklá přerušení jako počáteční místa pro syntézu nového řetězce DNA podle řetězce předlohového a inkorporují do těchto míst značené nukleotidy, které potom slouží jako značky pro detekci DNA, přičemž volitelně se pro odstranění nežádoucích produktů, které vznikají při inkubaci vzorků DNA v přítomnosti iontů mědi, použijí vymývací látky, jejichž použití předchází enzymatickým krokům.
  2. 2. Způsob značení dvouřetězcové DNA podle nároku 1, vyznačující se tím, že v případě absence 5'-3' exonukleázové a/nebo vytěsňovací aktivity u použité DNA polymerázy, zpřístupňující předlohový řetězec, se vzorky před tímto krokem inkubují s enzymem, který vykazuje vlastní exonukleázovou aktivitu ve směru 5'- 3'; následně se vzorky inkubují s DNA polymerázou.
  3. 3. Způsob značení dvouřetězcové DNA podle nároků l či 2, vyznačující se tím, že v případě absence 3’-5‘ exonukleázové aktivity u použité DNA polymerázy, zpřístupňující předlohový řetězec, se vzorky před tímto krokem inkubují s enzymem, který vykazuje vlastní 3'-5’ exonukleázovou a/nebo fosfatázovou aktivitu a až následně se vzorky inkubují sDNA polymerázou.
  4. 4. Způsob značení dvouřetězcové DNA podle nároku 1, vyznačující se tím, že vzorky s DNA se před inkubací s DNA polymerázou, která vykazuje vlastní 5-3' exonukleázovou a/nebo vytěsňovací aktivitu, nejprve inkubují s enzymem, majícím rovněž exonukleázovou aktivitu, čímž se dosáhne dalšího zvýšení měřitelného signálu.
  5. 5. Způsob značení dvouřetězcové DNA podle nároku 1, vyznačující se tím, že před použitím terminální deoxynukleotidyl transferázy se vzorky inkubují s enzymem, který vykazuje vlastní 3'-5' exonukleázovou a/nebo fosfatázovou aktivitu a až následně se inkubují s terminální deoxynukleotidyljtransferázou.
  6. 6. Způsob značení dvouřetězcové DNA podle kteréhokoliv z nároků laž5, vyznačující s e t í m , že jednomocné ionty mědi vázané na dvouřetězcovou DNA se získají inkubací vzorků s touto DNA ve vodných roztocích obsahujících jednomocné ionty mědi, přičemž inkubace se výhodně provádí bez přístupu kyslíku, ať už v uzavřené nádobě se vzorky či za probublávaní dusíkem a v přítomnosti vymývacích látek.
  7. 7. Způsob značení dvouřetězcové DNA podle kteréhokoliv z nároků laž5, vyznačující se t í m , že jednomocné ionty mědi vázané na dvouřetězcovou DNA se získají redukcí dvojmocných iontů mědi navázaných na dvouřetězcovou DNA, se kterou byly předem inkubovány, účinkem redukujících látek jako jsou askorbát sodný, hydrazin Či tris(2- .k
    - karboxyetýl)fosfin, popřípadě v přítomnosti vymývacích látek.
  8. 8. Způsob značení dvouřetězcové DNA podle kteréhokoliv z nároků 1 až5,vyznačují c í se t í m , že přítomnost kyslíku se během inkubace ve vodných roztocích za přítomnosti iontů jednomocné mědi, a to jak volných, tak navázaných na DNA, zajistí aktivním prokysličováním.
  9. 9. Způsob značení dvouřetězcové DNA podle kteréhokoliv z nároků laž 5, vyznačují c í se t í m , že vymývací látky se použijí ve vodných roztocích pro inkubaci s jednomocnými ionty mědi, jak volnými, tak navázanými na DNA.
  10. 10. Způsob značení dvouřetězcové DNA podle kteréhokoliv z nároků laž 5, vyznačují c í se t í m , že vymývací látky se aplikují po inkubaci sjednomocnými ionty mědi, jak volnými, tak navázanými na DNA.
  11. 11. Způsob značení dvouřetězcové DNA podle nároku 9 nebo 10, vy znač uj í c í se t í m, že vymývací látky se zvolí ze skupiny, zahrnující kyselinu 4-(2-hydroxyetýl)-l-
    - piperazinetónsulfonovou, kyselinu 3-[4-(2-hydroxyetýl)-1 -piperazinyljpropansulfonovou, kyselinu N-[tris(hydroxymetýl)metýl]-3-aminopropansulfonovou, A,A-bis(2-hydroxyetýl)glycin, } A-[tris(hydroxymetyl)metyl]glycin, kyselinu 2-[(2-hydroxy-1,1-
    - bis(hydroxymetyl)etýl)amino]etansulfonovou, kyselinu A'-(karbamoylmetyl)iminodioctovou, kyselinu Ί V-bis(2-hydroxyefýl)-;2-aminoet&nsulfonovou, 2,2-bis(hydroxymetýl)-2,2',2Λ·* A u
    - nitrilotriet&iol, tris(hydroxymetyl)aminomeťfin, glycyl-glycin, kyselinu P-hydroxy-4-
    - morfolinpropansulfonovou, kyselinu piperazin-N,N'-bis(2-hydroxypropansulfonovoi^ glycin, glycinamid, D- a L-a-aminokyseliny jako alanin, serin, prolin, lysin, arginin, asparagin, diisopropylamin nebo jiný primární nebo sekundární amin, popřípadě se použije kombinace výše uvedených látek.
  12. 12. Způsob značení dvouřetězcové DNA podle nároku 10^ vyznačující se tím,že vymývací látky se zvolí ze skupiny, zahrnující kyselinu etýlenglykol-bis(2-aminoetýleter)-
    - Ν,Ν,Ν',Ν-tetraoctovou či kyselinu etýlendiamintetraoctovou, popřípadě v kombinaci s vymývacími látkami uvedenými v nároku 11.
  13. 13. Způsob značení dvouřetězcové DNA podle kteréhokoliv z nároků 1 až 5, vyznačují c í s e t í m , že značené nukleotidy se s výhodou zvolí ze skupiny, zahrnující: 5-bromo-
    - 2'-deoxyuridin-5,-trifosfát, 5-chloro-2'-deoxyuridin-5'-trifosfát, 5-jodo-2'-deoxyuridin-5'-trifosfát biotin-16-2’-deoxyuridin-5'-trifosfát, digoxigenin-1 l-2'-deoxyuridin-5'-trifosfát, 2’-
    - deoxy-5-ethynyluridin-5'-trifosfát, biotin-11 -2'-deoxycytidin-5'-trifosfát, nebo konjugáty deoxyuridin-S-trifosfátu (dUTP) s fluorescenčními barvivý fluoresceinového, rhodaminového nebo kumarinového typu, které jsou připojeny k atomu C5 uracilové nukleobáze prostřednictvím alkynového linkeru.
  14. 14. Způsob značení dvouřetězcové DNA podle kteréhokoliv z nároků 2až5, vyznačují c í s e t í m, že enzymy, vyznačující se exonukleázovou a/nebo fosfatázovou aktivitou, se s výhodou zvolí ze skupiny, která zahrnuje: exonukleázu III, exonukleázu λ, exonukleázu T7, endonukleázu IV a alkalickou fosfatázu.
  15. 15. Způsob značení dvouřetězcové DNA podle kteréhokoliv z nároků laž4, vyznačují c í s e t í m, že DNA polymerázy se s výhodou zvolí ze skupiny, která zahrnuje: DNA polymerázu I, Klenowův fragment, T7 DNA polymerázu a T4 DNA polymerázu.
CZ20110309A 2011-05-24 2011-05-24 Zpusob znacení dvouretezcových molekul DNA CZ303251B6 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ20110309A CZ303251B6 (cs) 2011-05-24 2011-05-24 Zpusob znacení dvouretezcových molekul DNA

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ20110309A CZ303251B6 (cs) 2011-05-24 2011-05-24 Zpusob znacení dvouretezcových molekul DNA

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ2011309A3 true CZ2011309A3 (cs) 2012-06-20
CZ303251B6 CZ303251B6 (cs) 2012-06-20

Family

ID=46232374

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ20110309A CZ303251B6 (cs) 2011-05-24 2011-05-24 Zpusob znacení dvouretezcových molekul DNA

Country Status (1)

Country Link
CZ (1) CZ303251B6 (cs)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CZ307016B6 (cs) * 2015-03-13 2017-11-15 Univerzita PalackĂ©ho v Olomouci Způsob stabilizace protilátek rozeznávajících 5-bromo-2´-deoxyuridin a/nebo 5-chloro-2´-deoxyuridin a/nebo 5-jodo-2´-deoxyuridin v místech inkorporace těchto nukleosidů do DNA po působení jednomocnou mědí a/nebo exonukleázou III

Also Published As

Publication number Publication date
CZ303251B6 (cs) 2012-06-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US20250333787A1 (en) Methods and reagents for nucleic acid analysis
JP2015520385A (ja) アプタマーに基づく多重化アッセイ
WO2009021031A2 (en) Proximity ligation assay
AU593806B2 (en) Prolonged chemiluminescence
EP3380841B1 (en) Autonomous sensing molecules (asm)
CN104975079A (zh) 基于DNA纳米结构的17β-雌二醇可视化检测方法及检测试剂盒
CN114746099A (zh) 真核半合成生物体
JP5108166B2 (ja) グルコースオキシダーゼを自己組織化膜上に固定する方法
EP3344767B1 (en) Small-molecule mediated size selection of nucleic acids
CN105238852A (zh) 基于核酸适配体检测鼠伤寒沙门氏菌的生物传感器及其制备方法
Oda et al. Inhibition of telomerase by linear-chain fatty acids: a structural analysis
Zhao et al. An electrochemical aptasensor for thrombin detection based on the recycling of exonuclease III and double-stranded DNA-templated copper nanoparticles assisted signal amplification
WO2015076356A1 (ja) 短鎖rnaの検出方法
EP0334756A1 (fr) Procédé de coloration d&#39;acides nucléiques détectés par marquage non-radioactif et ensemble de réactifs pour la mise en oeuvre de ce procédé
JP2014504282A (ja) イサト酸無水物またはその誘導体を用いる官能化法およびこのような方法に用いる試薬、こうして処理された生体分子およびキット
CZ2011309A3 (cs) Zpusob znacení dvouretezcových molekul DNA
JPH06502079A (ja) ゲノム識別用のプローブ組成物および方法
JP7402429B2 (ja) アルカリホスファターゼ組成物並びに脱リン酸化核酸及び標識化核酸の製造方法
JPH0847399A (ja) 生物発光の測定方法
WO2020067121A1 (ja) アルカリホスファターゼ組成物並びに脱リン酸化核酸及び標識化核酸の製造方法
US7323319B2 (en) RNA containing coenzymes, biotin, or fluorophores, and methods for their preparation and use
CZ2011308A3 (cs) Zpusob zprístupnení specifických pyrimidinových nukleosidu ve strukture dvouretezcové DNA pro reakci s protilátkami, které s temito nukleosidy reagují
CZ2011324A3 (cs) Zpusob eliminace antigenních vlastností 5-ethynyl-2´-deoxyuridinu a 5-ethynyluridinu pri detekci nukleových kyselin
CN105349620A (zh) 一种检测K-ras基因突变的试剂盒及应用
PT99177B (pt) Processo para a deteccao especifica de acidos nucleicos

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20190524