CZ286747B6 - Enzyme immobilization process - Google Patents

Enzyme immobilization process Download PDF

Info

Publication number
CZ286747B6
CZ286747B6 CZ19974187A CZ418797A CZ286747B6 CZ 286747 B6 CZ286747 B6 CZ 286747B6 CZ 19974187 A CZ19974187 A CZ 19974187A CZ 418797 A CZ418797 A CZ 418797A CZ 286747 B6 CZ286747 B6 CZ 286747B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
enzyme
phase
aqueous phase
immobilized
lipase
Prior art date
Application number
CZ19974187A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ418797A3 (cs
Inventor
Martin Roger Grote
Johan Paul T Geurtsen
Putte Karel P A M Van
Original Assignee
Unilever Nv
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Unilever Nv filed Critical Unilever Nv
Publication of CZ418797A3 publication Critical patent/CZ418797A3/cs
Publication of CZ286747B6 publication Critical patent/CZ286747B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/64Fats; Fatty oils; Ester-type waxes; Higher fatty acids, i.e. having at least seven carbon atoms in an unbroken chain bound to a carboxyl group; Oxidised oils or fats
    • C12P7/6436Fatty acid esters
    • C12P7/6445Glycerides
    • C12P7/6458Glycerides by transesterification, e.g. interesterification, ester interchange, alcoholysis or acidolysis
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/64Fats; Fatty oils; Ester-type waxes; Higher fatty acids, i.e. having at least seven carbon atoms in an unbroken chain bound to a carboxyl group; Oxidised oils or fats
    • C12P7/6436Fatty acid esters
    • C12P7/6445Glycerides
    • C12P7/6454Glycerides by esterification
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/10Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a carbohydrate

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Fats And Perfumes (AREA)

Description

Oblast techniky
Předkládaný vynález se týká způsobu imobilizace enzymů pro použití pro katalýzu zpracování triglyceridových tuků a pevných částic s obsahem tímto způsobem imobilizováných enzymů.
Dosavadní stav techniky
Enzymy se používají v průmyslovém měřítku jako katalyzátory pro zpracování různých surovin. Často jsou tyto způsoby z ekonomického hlediska výhodné pouze tehdy, jestliže mohou být enzymy mnohokrát opakovaně použity. Pro recirkulaci enzymů je zapotřebí oddělit enzymy ze zpracovávané kapaliny. To je možné vtom případě, když jsou enzym navázány na nosič, který může být filtrován nebo centrifugován.
Důležitá skupina průmyslových enzymů má amfifilní povahu. Do této skupiny enzymů, která je charakterizována přítomností hydrofilní části i hydrofobní části v molekule patří lipázy a fosfolipázy. Tyto enzymy, jestliže jsou dispergovány v emulzi, budou migrovat a hromadit se na rozhraní vodné a olejové fáze. Hydrofobní část enzymu směřuje do hydrofobní fáze a hydrofilní část směřuje do vodné fáze.
Vynález bude popisován s lipázou jako příkladem amfifilního enzymu. Dalším průmyslově důležitým amfífilním enzymem je fosfolipáza, u které je známo mnoho typů a která se používá pro hydrolýzu fosfolipidů na lyzofosfolipidy. Průmyslovým použitím je enzymatické odgumování (degumming) triglyceridových olejů, které se popisuje například v EP 513 709.
Lipázy se používají pro svou schopnost modifikovat strukturu a složení triglyceridových olejů a tuků. Katalyzují různé druhy triglyceridových přeměn, jako je hydrolýza, esterifikace a přeesteriflkace. Jde o rovnovážné reakce, které v jednom směru vedou khydrolýze triglyceridů na volné mastné kyseliny a glycerol, mono- nebo díglyceridy, a v opačném směru vedou k reesterifikaci glycerolu, monoglyceridů a diglyceridů na triglyceridy. Pro proces reesterifikace je nutné odstraňovat z reakčního prostředí vodu, aby došlo k posunu rovnováhy ve směru syntézy triglyceridů.
Použití lipázy ve v podstatě bezvodém prostředí je spojeno s hlavním probléme, kterým je solubilizace lipázy v oleji. K tomu účelu se používá s výhodou lipáza, která je aktivní v bezvodém prostředí a která je imobilizována.
V současnosti je hlavním způsobem výroby lipázy mikrobiologická fermentace vhodných mikroorganismů, které za vhodných podmínek enzym produkují. K vyčištěnému roztoku lipázy se přidá nosič a enzym se ponechá přichytit na povrch nosiče. Takový způsob imobilizace se uvádí na příkladu interesterifikačního postupu například v GB 2 159 527. Připojení enzymy na nosič umožňuje snadné oddělení nevratně imobilizovaného enzymu z výrobního média pro následující použití.
Obvykle jsou použité nosiče porézní a ve formě částic, ale vždy jsou ve vodě nerozpustní a poskytují velkou plochu povrchu na jednotku objemu. Příprava imobilizovaných enzymů se popisuje například v EP 0 140 542, EP 0 382 767, WO 95/22606, EP 0 444 092 a WO 89/01032.
Protože současné způsoby imobilizace vyžadují použití čistého enzymu, musí být surová fermentační média podrobena důkladnému a nákladnému čisticímu procesu, který představuje hlavní nevýhodu pro současnou produkci systémů imobilizovaných enzymů.
- 1 CZ 286747 B6
Navíc v rozsahu, ve kterém jsou aktivní části imobilizováného enzymu nasměrovány k nosnému materiálu spíše než směrem k substrátu, bude aktivita enzymu odpovídajícím způsobem snížena. V obvyklých porézních nosných materiálech dále limitují aktivitu lipázy vlivy spojené s přenosem hmoty.
Předkládaný vynález má za cíl poskytnout způsob imobilizace enzymů, při kterém je možno použít nečištěného enzymového preparátu. Navíc si předkládaný vynález klade cíl poskytnout vysoce účinný preparát imobilizovaného enzymu, který je možno regenerovat a reaktivovat.
Podstata vynálezu
Vynález poskytuje způsob imobilizace enzymu, který se vyznačuje kroky:
a. selekce amfifilního enzymu ze skupin lipáz a fosfolipáz pro imobilizaci,
b. příprava emulze obsahující spojitou hydrofobní fázi a dispergovanou vodnou fázi, přičemž ve vodné fázi je rozpuštěn enzym a materiál vhodný jako nosič enzymu při provádění dalšího kroku,
c. odstraňování vody z dispergované fáze, dokud se tato fáze nepřemění na pevné enzymem pokryté částice.
Vynález dále poskytuje amfifilní enzym, který je imobilizován připojením na nosič ve formě částic, který je rozpustný ve vodné fázi.
Výchozí emulze se připravuje s výhodou s 5 až 10 % hmotnostními vodné fáze. Vodná fáze by měla obsahovat amfifilní enzym určený k imobilizaci a dále rozpuštěný materiál, který může působit jako nosič po převedení na pevnou látku. Vodnou fází je s výhodou fermentační kapalina, která stále obsahuje fermentační zbytky. Fermentační kapalina je s výhodou kapalina, ve které byl enzym vytvořen. Alternativně může být jako vodná fáze použit roztok více nebo méně čištěného enzymu, hlavní výhodou předkládaného vynálezu je to, že předběžná izolace a purifikace enzymu z fermentační kapaliny není nutná.
Nosný materiál je ve vodě rozpustný a volí se s výhodou ze skupiny cukrů, škrobu jako je pšeničný škrob, dextranu, ve vodě rozpustných derivátů celulózy a fermentačních zbytků. Jestliže již není přítomen ve vodné fázi, nosný materiál se přidává k vodné fázi před nebo potom, kdy byla dispergována do hydrofobní spojité fáze. Tento přídavek je nezbytný, pokud vodná fáze neobsahuje dostatečné množství nosného materiálu. Tento přídavek může být dodatečný materiál k jiným nosným materiálům, například již přítomným zbytkům fermentace.
Nosný materiál je přítomen s výhodu v množství 0,5 až 5 % hmotnostních, výhodněji 1 až 2 % hmotnostní, vztaženo na olej. Termín rozpustný znamená, že nosná látka se při použití v uvedených množstvích úplně rozpouští ve vodné fázi.
Pod fermentačními zbytky se rozumí všechny látky, které jsou ještě přítomny v supematantu: fermentační médium pro výrobu enzymu se například odstředí, čímž se odstraní ve vodě nerozpustné materiály včetně biomasy. Tento supematant se popřípadě koncentruje například jeho průtokem mikrofiltračním membránovým modulem s dutými vlákny (známý jako umělá ledvina). Fermentační zbytky zahrnují polysacharidy, proteinový materiál, soli a cukry. Tyto látky jsou rozpustné ve vodné fermentační kapalině, ale oddělují se jako pevný materiál ve formě částic při odstranění vody.
-2 CZ 286747 B6
Vodná fáze obsahující enzym se disperguje obvyklými způsoby emulgace jako jemné kapičky v hydrofobní fázi. Amfifilní enzym migruje do mezifázového rozhraní a hromadí se v něm.
Je možno použít jakékoliv lipázy vhodné pro hydrolýzu triglyceridu nebo reesterifikaci, ale s výhodou se lipáza získává fermentací z Rhizomucor miehei, Humicola lanuginosa nebo Rhizopus niveus. Množství přidané enzymatické aktivity se přizpůsobí konkrétnímu postupu. Obvykle je vhodnou aktivitou lipázy 165 LU na gram oleje.
Hydrofobní fází emulze může být jakákoliv potravinářská kapalina, ve které může být vodná fáze dispergována. Může jít například o hexan, nebo s výhodou o jedlý triglyceridový olej. Jestliže se použije triglyceridového oleje, volí se s výhodou olej, který v podstatě neobsahuje fosfolipidy, neboť jinak mohou fosfolipidy nepříznivě interferovat s vytvářením enzymem pokrytých částic. Triglyceridový olej s výhodou neobsahuje více než 100 ppm hydratovatelných fosfolipidů.
Pro odstranění vody z emulze jsou dostupné standardní způsoby včetně přídavku molekulárních sít a prohánění dusíku emulzí, ale sušení se nejlépe provádí postupným odpařováním vody, s výhodou použitím vakua 0,1 až lOkPa, s výhodou 0,3 až 2,5 kPa nebo kombinací těchto způsobů.
Odstraňováním vody z dispergované vodné fáze se kapičky smršťují a stávají se suššími. Nejprve se rozpuštěný nosný materiál, například fermentační zbytky, oddělí jako pevný materiál ve formě částic a potom se enzym nahromaděný na rozhraní uloží na povrh a připojí se na materiál pevné částice. Tímto způsobem prováděné sušení dispergované fáze poskytuje in šitu imobilizovaný enzymový preparát, který se dále odlišuje od imobilizovaných enzymů podle stavu techniky tím, že enzym není na nosič navázán nevratně. Enzym může být použit buď jakmile byl imobilizován za předpokladu, že je přítomen substrát, nebo může být přidán do hydrofobní fáze, nebo může být oddělen a skladován pro pozdější použití.
Protože hydrofobní část enzymu s aktivním místem zůstává v průběhu odstraňování vody orientována ve směru opačném k povrchu nosiče, v hotovém imobilizovaném enzymu je pro katalýzu k dispozici maximální množství aktivních enzymových míst.
V závislosti na množství enzymu ve vodné fázi budou pevné částice pokryty enzymem úplně nebo částečně. S výhodou hydrofobní fáze buď obsahuje nebo se skládá ze zpracovávané látky a v případě fosfolipidů se volí ze skupiny zahrnující triglyceridy, diglyceridy, monoglyceridy, glycerol, fosfolipidy a mastné kyseliny.
Jakmile se vytvořila emulze vody voleji obsahující lipázu, molekuly glyceridů se začínají hydrolyzovat, pokud jsou přítomny, na mastné kyseliny a diglyceridy, monoglyceridy a glycerol. Hydrolýza, s výhodou v míchaném reaktoru, pokračuje dokud nedosáhne zvolené úrovně. Jakmile je v dalším reakčním kroku, voda ze směsi odstraněna, hydrolýza se převrátí na reesterifikaci. Je možno snadno dosáhnout nízkého obsahu volných mastných kyselin dokonce až 4 % hmotnostní.
Předkládaný vynález se dále týká imobilizovaných amfifílních enzymů, připojených k nosiči ve formě částic, ve kterých je materiál částic rozpustný ve vodné fázi.
Enzymy imobilizované podle předkládaného vynálezu jsou ve srovnání se systémem podle stavu techniky velmi aktivní. Ktéto vysoké aktivitě mohl přispět způsob imobilizace. Pokud je imobilizovaným enzymem lipáza, může být bez aktivace použit při zvýšených teplotách za předpokladu, že enzym působí v nevodném prostředí. V závislosti na typu lipázy je možnou použít teplot 60 °C nebo dokonce 70 °C. S těmito odolnými enzymovými systémy je možno zpracovávat tuhé tuky, které mají teploty tání vyšší než 30 °C až 40 °C v oblasti, ve které většina vodných preparátů s lipázami má svou maximální teplotu zpracování.
-3CZ 286747 B6
Imobilizované enzymy podle vynálezu mohou být použity při zpracování vsádkovým způsobem stejně jako při kontinuálním způsobu. Velikost enzymem pokrytých částic by měla být dostatečná pro umožnění separace centrifugací aje alespoň 0,1 pm, svýhodou alespoň 1 pm a výhodněji 5 až 15 pm.
Imobilizované enzymy podle vynálezu mohou být použity při enzymatických postupech, k nimž patří hydrolýza buď triglyceridů lipázou nebo fosfolipidů fosfolipázou, lipázou katalyzovaná reesterifikace hydrolyzovaných triglyceridů (odkyselení) nebo kombinace postupů jak je interesterifíkace.
Interesterifikační postupy mohou zahrnovat mono-, di- nebo triglyceridy, ve kterých se skupiny mastných kyselin za katalytického působení lipázy na glycerolové kostře vyměňují.
Enzymatické odkyselení triglyceridového oleje zahrnuje katalytické působení lipázy, kdy se esterifikují mastné kyseliny a mono- nebo diglyceridy přítomné v oleji.
Imobilizované enzymy podle vynálezu mohou být použity při odstraňování fosfolipidů z triglyceridového oleje (odgumování), který zahrnuje kroky:
a. míšení triglyceridového oleje obsahujícího fosfolipidy s prostředkem obsahujícím patřičnou fosfolipázu,
b. hydrolýzu fosfolipidů na lyzofosfolipidy,
c. oddělení hydrolyzovaných fosfolipidů z oleje, a který se vyznačuje tím, že fosfolipázovým prostředkem je imobilizovaný enzym podle předkládaného vynálezu. Z několika fosfolipáz, které jsou známé a dostupné se vybírá ta, která je pro požadovaný typ hydrolýzy nej vhodnější.
Pro výrobu imobilizované fosfolipázy by měla být použita hydrofobní fáze neobsahující fosfolipidy. Po oddělení hotové imobilizované fosfolipázy může být tato přidána do oleje s obsahem fosfolipidů bez poškození enzymového prostředku.
Enzym imobilizovaný in šitu se z výrobní šarže snadno odděluje filtrací, výhodněji však centrifugací a po oddělení může být mnohokrát opakovaně použit.
Pro opětné použití imobilizované lipázy není nutné do další šarže přidávat žádnou vodu. Pro počáteční krok hydrolýzy je dostatečné množství vody, které je rozpuštěno v triglyceridovém oleje určeném k interesterifikaci.
Každému opětovnému použití enzymu může předcházet reaktivace: namísto oddělování použitého imobilizovaného enzymu z hydrofobní fáze se do hydrofobní fáze přidá a disperguje s výhodou 5 až 10% hmotnostních vody, čímž se enzym spolu sjeho nosným materiálem rozpustí v kapičkách vody. Enzym opět migruje do mezifázového povrchu a hromadí se na styku vody s olejem. Když se voda odstraní jak bylo popsáno dříve, kapičky se sušením smrští a nosný materiál se opět oddělí jako pevná látka. Jak se voda postupně odděluje z vysychajících kapiček, separovaný nosný materiál se nakonec pokryje enzymem. Nová imobilizace má za následek obnovení nebo alespoň částečné obnovení enzymové aktivity. Reaktivace s novou imobilizací může být prováděna znovu a znovu a dosáhne se jí prodlouženého použití enzymu a nosného materiálu. Obraz 3 ukazuje opětovné použití imobilizovaného enzymu lipázy v následných šaržích. Postupný pokles aktivity enzymu se částečně zmírní novou imobilizací s použitím
-4CZ 286747 B6 stejného enzymu a stejného nosného materiálu (vystínované oblasti). Enzym poškozený nebo vyčerpaný v průběhu postupu může být popřípadě nahrazen přídavkem určitého množství čerstvého enzymového preparátu. Možnost opětovného použití materiálu navíc k lacinému zdroji enzymu v nepurifikované formě, nepřítomnost nákladného nosného materiálu a vysoká účinnost imobilizovaného enzymu ve velké míře zlevňuje nákladnou katalýzu. Současně také chybí problémy týkající se ukládání odpadního vyčerpaného enzymového materiálu. Tyto výhodné rysy jsou jedinečné a nepopisují se u žádných enzymů imobilizovaných podle dosavadního stavu techniky.
Přehled obrázků na výkresech
Obr. 1 ukazuje průběh reakce interesterifikace směsi triglyceridů se střední délkou řetězce a slunečnicového oleje s vysokým obsahem kyseliny olejové v přítomnosti imobilizované lipázy. Je ukázán obsah volných mastných kyselin a stupeň přeměny u postupu používající lipázy (Lypozyme™) tradičně imobilizovanou na materiálu Duolite™ (čáry proložené silně tečkovanými body) a u postupu používajícího lipázu (Lypozyme™ 10 OOOL), která je imobilizována in šitu podle předkládaného vynálezu (čáry proložené slabě tečkovanými body).
Obr. 2 je diagram ukazující obsah volné mastné kyseliny při odkyselování tří směsí kyseliny olejové a glycerolu v přítomnosti imobilizované lipázy, porovnávající
1. lipázu Lypozyme™ 1000L (165 LU/g oleje) imobilizovanou in šitu podle vynálezu (označeno tečkovanou čárou),
2. lipázu Lypozyme™ (1750 LUP/g oleje) tradičně imobilizovanou na materiálu Duolite™ (onačeno čárou proloženou čtverci) a
3. lipázu Lypozyme™ (35000 LU/g oleje), tradičně imobilizovanou na materiálu Duolite™ (označeno čárou proloženou kosočtverci.
Obr. 3 ukazuje lipázu získanou zHumicola lanuginosa a použitou v následných řadách šarží interesterifikace, s vynesenou aktivitou (gram přeměněného oleje na gram enzymu za hodinu) jako funkcí času (dny). Pro 24 hodinové šarže tmavě stínovaných oblastí je použita lipáza poprvé imobilizována podle vynálezu. Reakcí při tomto postupu je interesterifikace slunečnicového oleje s vysokým obsahem kyseliny olejové/triglycerid se střední délkou řetězce, prováděná při teplotě 35 °C. Pro 8 hod, 15 hod a víkendové šarže ostatních (světle šedé) oblastí se imobilizovaná lipáza používá pro interesterifíkaci POs/PKs při 60 °C v „suché“ formě po separaci odstředěním z předcházející šarže interesterifikace.
Vynález bude osvětlen pomocí následujících příkladů:
Příklady provedení vynálezu
Roztok Lipozyme™ 10000L je surové fermentační médium zbavené mikroorganismů, obsahující lipázu (firmy NOVO) Rhizomucor miehei, kde aktivita lipázy je 10 kLU/ml.
Čištěná forma lipázy uvádí na trh firma NOVO pod názvem Lipozyme IM™ nebo lipozyme Immobilized on Duolite™. Aktivita je 70 kLU/gram prášku.
Duolite™ je slabě aniontová iontoměničová pryskyřice vhodná pro imobilizaci enzymů.
Jedna lipázová jednotka (LU) je definována jako množství enzymu, které uvolní 1 mikromol kyseliny máselné za minutu z emulgovaného tributyrinového substrátu (při pH 7,0 a 30 °C).
-5 CZ 286747 B6
Aby bylo možno monitorovat postup tohoto postupu v následujících příkladech, byly v určitých časových odstupech odebírány vzorky. Vzorky odebrané z reakčního média pomocí jehly byly ohřátý na teplotu vyšší než 85 °C ve 2 ml skleněných zkumavkách, aby byly enzymy deaktivovány.
Obsah volné mastné kyseliny byl stanoven rozpuštěním přibližně 0,5 g homogenizovaného oleje v 50 ml neutrálního rozpouštědla, obsahujícího stejné objemy ethanolu (96 %) a diethyletheru (p.a) a titrací vzniklé směsi roztokem hydroxidu sodného o koncentraci 0,1 mol/1 s použitím fenolftaleinu jako indikátoru. Obsah volné mastné kyseliny (FFA) se vypočte z rovnice:
V x M x 282 %FFA =----------x 100%
Wx 1000 kde: V = titrovaný objem (ml)
W = hmotnost vzorku oleje (g)
M = molarita roztoku NaOH
282 = průměrná molekulová hmotnost mastných kyselin.
Stupeň konverze se vypočte z následujících rovnic:
k =-In(l-x)*M/Wxt kde k = aktivita katalyzátoru (g oleje/katalyzátoru za h)
M = hmotnost oleje (g)
W = hmotnost katalyzátoru (g enzymového preparátu) t = doba cyklů (h) x = stupeň přeměny definovaný jako
ZCNO-lCNi x =----------ECNe-ZCNi
ECN představuje součet hodnot rozsahu počtu atomů uhlíku zvolených pro specifický postup, kde index (o, i, e) označují výstup z reaktoru v jakémkoli okamžiku v čase (o), vstup (i) a rovnováhu (e) distribucí. Hodnoty počtu atomů uhlíku se získávají pomocí plynové chromatografie (GLC) vzorku. Pro interesterifikaci HOSF/MCT se volí hodnoty pro výpočet stupně přeměny CN 34 - 46 a pro systémy POs/PK. se hodnoty CN volí 44 - 46.
Příklad 1
Porovnání lipázy imobilizované in šitu a tradičně imobilizované lipázy pro použití při interesterifikaci
Vsádkový reaktor opatřený míchadlem a vodním pláštěm byl naplněn pro interesterifikaci směsí 131,5 g triglyceridů se střední délkou řetězce (MCT) a 229,0 g slunečnicového oleje s vysokým obsahem kyseliny olejové (HOSF). 95% mastných kyselin MCT tvořily C8 - C10 mastné kyseliny a 5 % jiných kyselin.
Směs MCT/HOSF byla zahřáta na 35 °C. Za míchání byl olej smísen s 5 % hmotnostními vody, čímž vznikla emulze vody v oleji. K emulzi bylo přidáno takové množství roztoku
-6CZ 286747 B6
Lipozyme™10000L, že emulze obsahovala 165 LU aktivity na gram oleje. Důkladným mícháním bylo dosaženo jemné disperze s velkým mezifázovým povrchem olej - voda.
Hydrolýza molekul triglyceridu začala po přídavku vodné fáze a pokračovala při teplotě 35 °C, dokud nebylo dosaženo obsah 30 % volných mastných kyselin.
Snížením tlaku na 0,6 kPa se odpařila voda, čímž bylo dosaženo uložení a imobilizování lipázy na suchých fermentačních zbytcích.
Reesterifikace začala, když byla ze systému odstraněna voda a teplota byla zvýšena na 50 °C. Obsah 1 (čáry proložené světlými body) ukazuje, že po 50 hodinách reesterifikace klesl obsah FFA z přibližně 30 % hmotnostních na přibližně 4 % hmotnostní. Stupeň konverze triglyceridů dosáhl téměř 80 %.
Stejným způsobem byla připravena srovnávací dávka, která byla zpracována s použitím lipázy Lipozyme IM™ tradičně imobilizované na materiálu Duolite™. Hydrolýza začala, když bylo přidáno dostatečné množství lipázy pro dosažení její aktivity voleji 165 LU na gram oleje. Pouze po 50 hod dosáhl obsah FFA koncentrace 24 %. Bylo použito vakuum, ze systému byla odstraněna voda a začala reesterifikace.
Obr. 1 (čáry proložené tmavými body) ukazuje účinnost porovnávací šarže.
Lipáza imobilizovaná in šitu podle vynálezu ukazuje velkou rychlost hydrolýzy a po odstranění vody rychlé snížení obsahu FFA s vysokým stupněm přeměny. Naopak způsob s použitím tradičně imobilizované lipázy ukazuje velmi nízkou rychlost hydrolýzy a nízkou rychlost reesterifikace FFA, což obojí má za následek odpovídajícím způsobem nižší rychlost přeměny.
Příklad 2
Porovnání lipázy imobilizované in šitu a tradičně imobilizované lipázy z hlediska použití při odkyselování
Obr 2 je graf ukazující obsah volných mastných kyselin při odkyselování směsi kyseliny olejové a glycerolu v přítomnosti imobilizované lipázy porovnáním lipázy imobilizované in šitu s lipázou imobilizovanou tradičním způsobem na nosiči Duolite™.
Ve vsádkovém reaktoru se smísí 165,3 g kyseliny olejové a 18,0 g glycerolu a za stálého míchání se zahřeje na 35 °C. Připraví se olej s aktivitou 165 LU na gram oleje s použitím in šitu imobilizované lipázy připravené z roztoku Lipozyme™ 10000L. Šarže obsahovala na počátku 7 g molekulárních sít a trvale byl probubláván olejem dusík pro odstranění vody. Po 83 hod reakce bylo ke směsi přidáno dalších 5 g molekulárních sít. Viz čára na obr. 2 proložená tečkami.
Stejným způsobem byly připraveny dvě srovnávací šarže s použitím stejného postupu zpracování, ale s použitím lipázy Lipozyme IM™, která byla tradičně imobilizována na nosiči Duolite™. Jedna šarže obsahovala 1750 LU/gram oleje a v obr. 2 byla označena čtverečkem, zatímco druhá šarže obsahovala 3500 LU/gram oleje a v obr. 2 byla označena kosočtverci.
S lipázou imobilizovanou in šitu bylo dosaženo počáteční rychlosti esterifikace 7,5 % redukce FFA/hod stejně jako celkového snížení obsahu FFA z 88,4 % na 3,3 % v průběhu 150 hodin Počáteční rychlosti esterifikace s použitím tradičním způsobem imobilizovaných lipáz byly 7,4% a 12,5 % redukce FFA/hod v případě nízké, popřípadě vysoké koncentrace. S vysokou koncentrací lipázy bylo dosaženo celkového snížení obsahu FFA v průběhu 70 hod na 2,3 %.
-7 CZ 286747 B6
Ačkoliv tyto tři postupy odkyselování probíhaly porovnatelnou rychlostí, šarže obsahující systém lipázy imobilizované in šitu potřeboval pouze zlomek aktivity lipázy obou ostatních šarží pro stejný výkon.

Claims (8)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Způsob imobilizace enzymu, vyznačující se tím, že se:
    a. zvolí enzym ze skupiny lipáz a fosfolipáz pro imobilizaci,
    b. připraví emulze obsahující spojitou hydrofóbní fázi a dispergovanou vodnou fázi, přičemž ve vodné fázi je rozpuštěn enzym a materiál vhodný jako nosič enzymu při provádění dalšího kroku,
    c. odstraňuje voda z dispergované fáze, dokud se tato fáze nepřemění na pevné enzymem pokryté částice.
  2. 2. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že se použije lipáza získaná z Rhizomucor miehei, Humicola lanuginosa nebo Rhizopus niveus.
  3. 3. Způsob podle některého z nároků 1 až 2, vyznačující se tím, že se použije vodná fáze obsahující supematant z fermentace.
  4. 4. Způsob podle některého z nároků 1 až 3, vyznačující se tím, že jako hydrofóbní fáze se použije jedlý triglyceridový olej.
  5. 5. Způsob podle některého z nároků laž4, vyznačující se tím, že nosný materiál se volí ze skupiny cukrů, škrobu, dextranu, ve vodě rozpustných derivátů celulózy a zbytků z fermentace.
  6. 6. Způsob podle některého z nároků 1 až 5, vyznačující se tím, že se použije hydrofóbní fáze obsahující látku určenou ke zpracování zvolenou ze skupiny zahrnující triglyceridy, diglyceridy, monoglyceridy, glycerol, fosfolipidy a mastné kyseliny.
  7. 7. Způsob podle některého z nároků 1 až 6, vyznačující se tím, že se použije enzymu stejně jako nosné látky, která má být rozpuštěna ve vodné fázi, pocházejících z částic imobilizovaného enzymu, připravených podle některého z předcházejících nároků a oddělených z reakční směsi.
  8. 8. Pevná částice, vyznačující se tím, že obsahuje imobilizovaný enzym specifikovaný v nároku 1 připojený na nosič a kde nosná látka je rozpustná ve vodné fázi.
CZ19974187A 1995-06-27 1996-06-14 Enzyme immobilization process CZ286747B6 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP95201738 1995-06-27

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ418797A3 CZ418797A3 (cs) 1998-06-17
CZ286747B6 true CZ286747B6 (en) 2000-06-14

Family

ID=8220419

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ19974187A CZ286747B6 (en) 1995-06-27 1996-06-14 Enzyme immobilization process

Country Status (13)

Country Link
US (1) US6162623A (cs)
EP (1) EP0835304A1 (cs)
JP (1) JP3403202B2 (cs)
AU (1) AU720776B2 (cs)
BR (1) BR9609381A (cs)
CA (1) CA2225475A1 (cs)
CZ (1) CZ286747B6 (cs)
MX (1) MX9800035A (cs)
PL (1) PL324288A1 (cs)
SK (1) SK176397A3 (cs)
TR (1) TR199701705T1 (cs)
WO (1) WO1997001632A1 (cs)
ZA (1) ZA965375B (cs)

Families Citing this family (42)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
HUP0000486A3 (en) * 1996-12-19 2001-10-29 Unilever Nv Immobilized enzyme and its use for the processing of triglyceride oils
KR20020043349A (ko) * 2000-12-04 2002-06-10 김병기 고정화 포스포리파제 a-2 및 이를 이용한 인지질 또는그를 포함하는 레시틴의 가수분해방법
US7226771B2 (en) 2002-04-19 2007-06-05 Diversa Corporation Phospholipases, nucleic acids encoding them and methods for making and using them
CN102174546A (zh) 2002-04-19 2011-09-07 维莱尼姆公司 磷脂酶,编码磷脂酶的核酸以及制备和应用磷脂酶的方法
SE0201581D0 (sv) * 2002-05-29 2002-05-29 Scandinavian Biotechnology Res New improved acyltransferase
CA3007908A1 (en) 2003-03-07 2005-04-14 Dsm Ip Assets B.V. Hydrolases, nucleic acids encoding them and methods for making and using them
DE10340739A1 (de) * 2003-09-04 2005-04-07 Satia Gmbh Verfahren zur enzymatischen Herstellung von Mono- und Diacylglycerid-haltigen Emulgatoren
US20080070291A1 (en) 2004-06-16 2008-03-20 David Lam Compositions and Methods for Enzymatic Decolorization of Chlorophyll
EP1791853B1 (en) 2004-06-16 2014-02-26 DSM IP Assets B.V. Compositions and methods for enzymatic decolorization of chlorophyll
US7390522B2 (en) * 2004-10-26 2008-06-24 Loders Croklaan Usa Llc Composition and coated bakery products
US7931778B2 (en) 2005-11-04 2011-04-26 Cargill, Incorporated Lecithin-starches compositions, preparation thereof and paper products having oil and grease resistance, and/or release properties
MY140578A (en) * 2005-12-07 2009-12-31 Malaysian Agricultural Res And Dev Inst Mardi Modified coconut oils with broad antimicrobial spectrum
EP2216403A3 (en) 2006-02-02 2010-11-24 Verenium Corporation Esterases and related nucleic acids and methods
EP1840203A1 (en) 2006-03-31 2007-10-03 Cargill, Inc. Enzymatic modification in a continuously regenerated packed bed column
ES2451266T3 (es) 2006-09-21 2014-03-26 Dsm Ip Assets B.V. Fosfolipasas, ácidos nucleicos que las codifican, y métodos para obtenerlas y usarlas
UA97127C2 (uk) 2006-12-06 2012-01-10 Бандж Ойлз, Инк. Спосіб безперервної ферментативної обробки композиції, що містить ліпід, та система для його здійснення
GB0700074D0 (en) * 2007-01-03 2007-02-07 Danisco process
IL180598A0 (en) * 2007-01-08 2007-07-04 Basheer Sobhi Immobilized interfacial enzymes of improved and stabilized activity
TWI438279B (zh) 2007-03-16 2014-05-21 Nisshin Oillio Group Ltd 脂肪酶粉末製劑,其製造方法及使用
US20100209968A1 (en) * 2007-05-04 2010-08-19 Akermin, Inc. Immobilized enzymes and uses thereof
EP2177608B1 (en) * 2007-07-31 2015-10-14 Fuji Oil Company, Limited Immobilized lipase and method for producing the same
US8076123B2 (en) * 2007-10-26 2011-12-13 Oilseeds Biorefinery Corporation Emulsification-free degumming of oil
AR077042A1 (es) 2009-06-12 2011-07-27 Danisco Metodo para tratar una composicion que contiene pirofiofitina
UA109884C2 (uk) 2009-10-16 2015-10-26 Поліпептид, що має активність ферменту фосфатидилінозитол-специфічної фосфоліпази с, нуклеїнова кислота, що його кодує, та спосіб його виробництва і застосування
UA111708C2 (uk) 2009-10-16 2016-06-10 Бандж Ойлз, Інк. Спосіб рафінування олії
CN102844418B (zh) 2010-03-12 2015-11-25 杜邦营养生物科学有限公司 方法
WO2011158203A1 (en) 2010-06-17 2011-12-22 Danisco A/S Process
DE102010025764A1 (de) * 2010-07-01 2012-01-05 Süd-Chemie AG Phospholipase-Träger-Komplex
WO2012114234A1 (en) 2011-02-23 2012-08-30 Dupont Nutrition Biosciences Aps Process
AR085251A1 (es) 2011-02-23 2013-09-18 Danisco Proceso para tratar aceite vegetal
WO2013104660A1 (en) 2012-01-13 2013-07-18 Dupont Nutrition Biosciences Aps Process for treating a plant oil comprising hydrolysing chlorophyll or a chlorophyll derivative and involving partial caustic neutralisation
WO2013104659A2 (en) 2012-01-13 2013-07-18 Dupont Nutrition Biosciences Aps Process
WO2013160374A1 (en) 2012-04-27 2013-10-31 Dupont Nutrition Biosciences Aps Process for refining crude plant oil involving enzymatic hydrolysis and gum recycling
WO2013160372A1 (en) 2012-04-27 2013-10-31 Dupont Nutrition Biosciences Aps Process for treating plant oil involving addition of serial doses of chlorophyll or chlorophyll derivative degrading enzyme
US20150353970A1 (en) 2012-12-31 2015-12-10 Trans Bio-Diesel Ltd. Enzymatic transesterification/esterification processing systems and processes employing lipases immobilzed on hydrophobic resins
US20160150805A1 (en) * 2013-06-27 2016-06-02 Nestec S.A. Compositions and nutritional products with improved emulsion stability
WO2015017045A1 (en) 2013-07-03 2015-02-05 Keclon Sa Modified bacillus cereus phospholipase c protein and method of processing vegetable oil
CN106103704A (zh) 2014-03-19 2016-11-09 诺维信公司 具有磷脂酶c活性的多肽和编码这些多肽的多核苷酸
AR102318A1 (es) 2014-05-15 2017-02-22 Novozymes As Composiciones que comprenden polipéptidos que tienen actividad fosfolipasa c y sus usos
CN109628211A (zh) * 2018-12-26 2019-04-16 广东省农业科学院蚕业与农产品加工研究所 一种去除油脂中游离脂肪酸的方法
CN113355369B (zh) * 2020-03-02 2022-11-15 大连医诺生物股份有限公司 一种采用流加方式的固定化脂肪酶催化制备共轭亚油酸的方法及应用
CN116286731A (zh) * 2023-04-19 2023-06-23 中国农业科学院农产品加工研究所 蛋白基固定化酶及其制备方法及高效制备甘油二酯的方法

Family Cites Families (20)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5584397A (en) * 1978-12-20 1980-06-25 Ajinomoto Kk Fat and oil ester exchange using lipase
AU540882B2 (en) * 1980-03-08 1984-12-06 Fuji Oil Company Limited Enzymatic transesterification of lipid and enzyme used therein
JPS6034189A (ja) * 1983-08-02 1985-02-21 Kanegafuchi Chem Ind Co Ltd 油脂のエステル交換法
DK402583D0 (da) * 1983-09-05 1983-09-05 Novo Industri As Fremgangsmade til fremstilling af et immobiliseret lipasepraeparat og anvendelse deraf
US4940845A (en) * 1984-05-30 1990-07-10 Kao Corporation Esterification process of fats and oils and enzymatic preparation to use therein
US4629742A (en) * 1986-01-27 1986-12-16 Akzo America Inc. Hydrolysis of fats
DK399387D0 (da) * 1987-07-31 1987-07-31 Novo Industri As Immobiliseret lipase og dennes anvendelse
US5219744A (en) * 1987-08-26 1993-06-15 Ajinomoto Co., Inc. Process for modifying fats and oils
WO1989002916A1 (en) * 1987-09-28 1989-04-06 Novo-Nordisk A/S Method for immobilizing lipase
EP0320132B1 (en) * 1987-12-09 1995-06-21 Kao Corporation Immobilized enzyme and esterification and interesterification therewith
US5316927A (en) * 1988-10-04 1994-05-31 Opta Food Ingredients, Inc. Production of monoglycerides by enzymatic transesterification
DK638688D0 (da) * 1988-11-16 1988-11-16 Novo Industri As Partikelformet immobiliseret lipase-praeparat, fremgangsmaade til fremstilling deraf og anvendelse deraf
GB8915299D0 (en) * 1989-07-04 1989-08-23 Cerestar Holding Bv Carbohydrate refining process and a supported enzyme for use therein
US5288619A (en) * 1989-12-18 1994-02-22 Kraft General Foods, Inc. Enzymatic method for preparing transesterified oils
DE4027290C2 (de) * 1990-08-29 1995-03-23 Forschungszentrum Juelich Gmbh Verfahren zur Gewinnung von Enzymen aus enzymhaltigen Suspensionen
US5182201A (en) * 1990-10-26 1993-01-26 Uop Lipase immobilization without covalent bonding on an amphiphilic support containing lipophilic alkyl chains
DE4115938A1 (de) * 1991-05-16 1992-11-19 Metallgesellschaft Ag Enzymatisches verfahren zur verminderung des gehaltes an phosphorhaltigen bestandteilen in pflanzlichen und tierischen oelen
JP3194792B2 (ja) * 1992-06-12 2001-08-06 天野エンザイム株式会社 酵素を用いた脂肪族ポリエステルの分解法
WO1995022606A1 (en) * 1994-02-21 1995-08-24 Novo Nordisk A/S Method for production of an immobilized enzyme preparation and use of the immobilized enzyme preparation
HUP0000486A3 (en) * 1996-12-19 2001-10-29 Unilever Nv Immobilized enzyme and its use for the processing of triglyceride oils

Also Published As

Publication number Publication date
CA2225475A1 (en) 1997-01-16
JP3403202B2 (ja) 2003-05-06
AU720776B2 (en) 2000-06-08
AU6303696A (en) 1997-01-30
TR199701705T1 (xx) 1998-04-21
BR9609381A (pt) 1999-05-18
PL324288A1 (en) 1998-05-11
SK176397A3 (en) 1998-07-08
EP0835304A1 (en) 1998-04-15
CZ418797A3 (cs) 1998-06-17
WO1997001632A1 (en) 1997-01-16
US6162623A (en) 2000-12-19
MX9800035A (es) 1998-11-29
ZA965375B (en) 1997-12-25
JPH11500319A (ja) 1999-01-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CZ286747B6 (en) Enzyme immobilization process
JP4017082B2 (ja) 固定化酵素及びトリグリセリド油の処理のためのその使用
Knezevic et al. Immobilization of lipase from Candida rugosa on Eupergit® C supports by covalent attachment
KR101556799B1 (ko) 개량되고 안정화된 활성을 갖는 고정된 계면 효소
DK2152866T3 (en) Modified-immobilized enzymes of high tolerance for hydrofilesubstrater in organic media
WO2009010561A1 (en) Immobilization of enzymes
EP1008647B1 (en) A process for preparing an immobilized enzyme
Otero et al. Influence of the support on the reaction course of tributyrin hydrolysis catalyzed by soluble and immobilized lipases
de Castro et al. Immobilization of porcine pancreatic lipase on celite for application in the synthesis of butyl butyrate in a nonaqueous system
JP2554469B2 (ja) 脂肪酸エステル類の製造法
JP2657887B2 (ja) 固定化酵素の調製方法
JP2676470B2 (ja) 固定化リパーゼ、その製造方法及び該リパーゼを用いた油脂類のエステル交換方法
KR950010816B1 (ko) 에스테르 교환 반응용 고정화 리파제
JP2657886B2 (ja) 固定化酵素及びこれを用いるエステル交換法
JPH06327486A (ja) 固定化酵素を用いるエステル交換法

Legal Events

Date Code Title Description
IF00 In force as of 2000-06-30 in czech republic
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20010614